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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de diferentes medios de cultivo in vitro en el desarrollo de híbridos de Phalaenopsis (Orchidaceae)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The Phalaenopsis hybrids have a significant economic importance throughout the world, as ornamental flower or plant. It is because of its attractive flowers and its adaptation capacity into different environments. The different culture media in vitro are vital to improve the efficacy of germination, growing and development of the Orchids for commercial and research purposes. In this research, the most appropriated medium for in vitro propagation of Phalaenopsis hybrid was determined. At first, the seeds viability was evaluated by using tetrazolium test (TZ). The seeds were disinfected and cultivated by means of the syringe method. The viability percentage average was 92.2 % (P&le; 0.05: Tukey HSD), with a percentage of germination of 95.1 % (P&le; 0.05: Tukey HSD) in all the environments. The most efficient culture Medium for Phalaenopsis hybrid phenological development, at 16 weeks, was Murashige &#38; Skoog (MS). Coconut water and pineapple juice were used as supplement showing statistically significant differences (P&le; 0,05: Tukey HSD), in comparison with the other culture media, contributing this way to the usage of organic components, which will be employed to improve the germination and development of the Phalaenopsis.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><a href="http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v15n2.41268" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v15n2.41268</a></p>          <p align="right"><b>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></p>     <p><font size="4"><b>Evaluaci&oacute;n de diferentes medios de cultivo <i>in vitro</i> en el desarrollo de h&iacute;bridos de <i>Phalaenopsis</i> (Orchidaceae)</b></font></p>     <p><font size="3"><b>Evaluation of different <i>in vitro</i> culture media in the development of <i>Phalaenopsis</i> hybrid (Orchidaceae)</b></font></p>     <p><i>Seir Antonio Salazar Mercado<sup>1</sup>, Anggy Zulay Amaya Nieto<sup>2</sup>, Fernando Barrientos Rey<sup>3</sup></i></p>     <p><sup>1</sup> BSc. Grupo de Investigaci&oacute;n Ambiente y vida. Semillero Grupo Acad&eacute;mico de Investigaciones Agrobiotecnolog&iacute;cas, Universidad Francisco de Paula Santander, San Jos&eacute; de C&uacute;cuta, Colombia. Email: <a href="mailto:salazar663@hotmail.com">salazar663@hotmail.com</a>.    <br>   <sup>2</sup> Ing. Semillero Grupo Acad&eacute;mico de Investigaciones Agrobiotecnolog&iacute;cas, Universidad Francisco de Paula Santander, San Jos&eacute; de C&uacute;cuta, Colombia.    <br> <sup>3</sup> Ing. Semillero Grupo Acad&eacute;mico de Investigaciones Agrobiotecnolog&iacute;cas, Universidad Francisco de Paula Santander, San Jos&eacute; de C&uacute;cuta, Colombia.</p>     <p>Recibido: febrero 12 de 2013. Aprobado: noviembre 9 de 2013</p> <hr size="1" />     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resumen</b></p>     <p>Los h&iacute;bridos de <i>Phalaenopsis</i> tienen una gran importancia econ&oacute;mica a nivel mundial, como flor cortada y planta ornamental,   debido a sus flores vistosas y a la capacidad de adaptaci&oacute;n a diferentes condiciones ambientales. Las t&eacute;cnicas de cultivo <i>in vitro</i> resultan indispensables para mejorar la eficacia germinativa, el crecimiento y desarrollo de orqu&iacute;deas con fines comerciales   e investigativos. En esta investigaci&oacute;n se determin&oacute; el medio de cultivo m&aacute;s apropiado para la germinaci&oacute;n <i>in vitro</i> de un h&iacute;brido de <i>Phalaenopsis</i>. Inicialmente se evalu&oacute; la viabilidad de las semillas utilizando la prueba de tetrazolio (TZ). Las semillas se desinfectaron y se cultivaron aplicando el m&eacute;todo de la jeringuilla. El porcentaje de viabilidad en promedio fue de 92,2 % (P&le; 0,05: <i>Tukey</i> HSD), con un porcentaje de germinaci&oacute;n entre todos los medios de 95,1 % (P&le; 0,05: <i>Tukey</i> HSD). El medio de cultivo m&aacute;s eficiente para la germinaci&oacute;n de h&iacute;bridos de <i>Phalaenopsis</i> a las 18 semanas de cultivo fue el Murashige &#38; Skoog (MS) suplementado con agua de coco, y jugo de pi&ntilde;a con diferencias estad&iacute;sticamente significativas (P&le; 0,05: <i>Tukey</i> HSD), con respecto a los dem&aacute;s medios de cultivo, contribuyendo de esta manera al uso de componentes org&aacute;nicos con el fin de mejorar la germinaci&oacute;n y desarrollo de <i>Phalaenopsis</i>.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: Componente org&aacute;nico, germinaci&oacute;n <i>in vitro</i>, hibrido, <i>Phalaenopsis</i>, viabilidad.</p>  <hr size="1" />              <p><b>Abstract</b></p>     <p>The <i>Phalaenopsis</i> hybrids have a significant economic importance throughout the world, as ornamental flower or plant. It is because of its attractive flowers and its adaptation capacity into different environments. The different culture media <i>in vitro</i> are vital to improve the efficacy of germination, growing and development of the Orchids for commercial and research purposes. In this research, the most appropriated medium for <i>in vitro</i> propagation of <i>Phalaenopsis</i> hybrid was determined. At first, the seeds viability was evaluated by using tetrazolium test (TZ). The seeds were disinfected and cultivated by means of the syringe method. The viability percentage average was 92.2&nbsp;%&nbsp;(P&le; 0.05: <i>Tukey</i> HSD), with a percentage of germination of 95.1&nbsp;%&nbsp;(P&le; 0.05: <i>Tukey</i> HSD) in all the environments. The most efficient culture Medium for <i>Phalaenopsis</i> hybrid phenological development, at 16 weeks, was Murashige &#38; Skoog (MS). Coconut water and pineapple juice were used as supplement showing statistically significant differences (P&le; 0,05: <i>Tukey</i> HSD), in comparison with the other culture media, contributing this way to the usage of organic components, which will be employed to improve the germination and development of the <i>Phalaenopsis</i>.</p>     <p><b>Key words</b>: organic components, germination, <i>in vitro</i>, hybrid, <i>Phalaenopsis</i>, viability.</p> <hr size="1" />       <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>     <p><i>Phalaenopsis</i> es un g&eacute;nero de la familia Orquidaceae, conformado por aproximadamente 66 especies nativas   en todo el mundo (Chu <i>et al</i>., 2012), presenta un crecimiento monopodial (crecimiento vertical definido),   carecen de seudobulbos, las hojas son d&iacute;sticas y carnosas (Griesbach, 2002), Las flores son de diferentes   tama&ntilde;os y colores, que le confieren un aspecto atractivo como planta ornamental. (Chen y Lin, 2012; Lesar <i>et al</i>., 2012). Como resultado de extensivos trabajos   de hibridaci&oacute;n, este g&eacute;nero representa uno de los grupos de orqu&iacute;deas m&aacute;s apreciados por el colorido,   forma y duraci&oacute;n de sus flores como planta en maceta   o flor cortada a nivel mundial (Chen <i>et al</i>., 2012; Niknejad <i>et al</i>., 2011). Algunas orqu&iacute;deas del genero <i>Phalaenopsis</i> no son comercializadas por su belleza, sino por usos en la industria alimentaria, otras son utilizadas medicinalmente como tratamientos para la diarrea y como afrodisiaco (Leva y Rinaldi, 2012). El crecimiento en condiciones naturales es lento, debido a la dependencia de una relaci&oacute;n simbi&oacute;tica con un hongo formador de micorriza, lo que ha dificultado la multiplicaci&oacute;n vegetativa (Murdad., <i>et al</i>., 2010). En cuanto a la reproducci&oacute;n sexual, <i>Phalaenopsis</i> se ha visto perjudicada por la esterilidad de algunos de sus h&iacute;bridos (Chen <i>et al</i>., 2012; Feria <i>et al</i>., 2007).</p>     <p>La propagaci&oacute;n natural de <i>Phalaenopsis</i> es dif&iacute;cil y demanda   mucho tiempo, las t&eacute;cnicas de cultivo <i>in vitro</i>, han permitido obtener grandes vol&uacute;menes de <i>Phalaenopsis</i>   con el fin de producir plantas a gran escala para el comercio. Sin embargo, es indispensable la utilizaci&oacute;n   de medios de cultivos simples, que permitan disminuir los costos de producci&oacute;n de <i>Phalaenopsis</i> (Leva y Rinaldi, 2012). No obstante, El &eacute;xito depende del tipo de explante a utilizar (Zhao <i>et al</i>., 2010). Recientes   estudios en protocolos de cultivos vegetales <i>in vitro</i> espec&iacute;ficos para <i>Phalaenopsis</i> se han desarrollado de una forma satisfactoria, incluyendo los tallos con yemas axilares (Feria <i>et al</i>., 2007), meristemos (Arditti y Ernst, 1993), segmentos nodales (Ko&scaron;ir <i>et al</i>., 2004), fragmentos de hojas, botones florales (Tokuhara y Mii, 2001) y ra&iacute;ces (Park <i>et al</i>., 2003). Asimismo estos m&eacute;todos   se han reportados como complicados e ineficientes   (Murdad <i>et al</i>., 2006).</p>     <p>Varios medios de cultivos se han utilizado para la propagaci&oacute;n   <i>in vitro</i> de <i>Phalaenopsis</i>, el medio Vacin y Went (VW) (Vacin y Went, 1949), el medio Murashige   y Skoog (MS) (Murashige y Skoog, 1962), el medio Knudson C (KC) (Knudson, 1946) y el medio Hyponex (Nishimura, 1982). Actualmente se ha mejorado la germinaci&oacute;n de orqu&iacute;deas, suplementando los medios de cultivos con componentes org&aacute;nicos (Asghar <i>et al</i>., 2011; Salazar y Cancino 2012; Salazar, 2012).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Teniendo en cuenta la importancia desde el punto de vista econ&oacute;mico que revisten estos h&iacute;bridos de <i>Phalaenopsis</i>   (Lesar <i>et al</i>., 2012), en el cultivo <i>ex vitro</i> se corre con el riesgo de perder su variabilidad gen&eacute;tica y adem&aacute;s, los tiempos de germinaci&oacute;n y desarrollo son extensos (Niknejad <i>et al</i>., 2011; Murdad <i>et al</i>., 2010), por tal motivo esta investigaci&oacute;n busca establecer el mejor medio de cultivo <i>in vitro</i> para la germinaci&oacute;n asimbi&oacute;tica de semillas de <i>Phalaenopsis</i> h&iacute;brida.</p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>     <p><b><i>Material vegetal</i></b></p>     <p>Las c&aacute;psulas dehiscentes del hibrido de <i>Phalaenopsis</i> de inter&eacute;s comercial fueron colectadas maduras a los 5 meses en el municipio de Bochalema - Norte de Santander,   Colombia. Las c&aacute;psulas se polinizaron manualmente,   transfiriendo las polinias de la planta donadora (<i>Phalaenopsis</i> Carmela's Wild Thing; <a href="#fig1">figura 1A</a>) a la cavidad   estigm&aacute;tica de la planta receptora (<i>Phalaenopsis</i> Taipei Pearl; <a href="#fig1">figura 1B</a>). Se emplearon en total cuatro plantas: dos donadoras y dos receptoras, obteniendo cuatro c&aacute;psulas. Posteriormente, fueron extra&iacute;das las semillas de su interior y se procedi&oacute; a la respectiva conservaci&oacute;n en sobres de papel kraft, se almacenaron en una caja est&eacute;ril con un agente desecante (silica gel), para evitar la excesiva humedad. (Mckendrick, 2002; Vogel y Macedo, 2011).</p>       <p align="center"><a href="img/revistas/biote/v15n2/v15n2a12fig1.gif" target="_blank">Figura 1</a><a name="fig1"></a></p>     <p><b><i>Preparaci&oacute;n del medio de cultivo:</i></b></p>     <p>El medio de cultivo basal fue el MS, utilizando las concentraciones   de macro y micronutrientes al 100% (Murashige   y Skoog, 1962), adicionado con 3000 mg/L de sacarosa, 700 mg/L de agar, 100 mg/L de mioinositol y 1000mg/L de carb&oacute;n activado. Se emplearon cinco medios de cultivos, el medio basal MS como control, MS suplementado con jugo de pi&ntilde;a (MS+JP), MS con agua de coco (MS+AC), MS m&aacute;s 0,5 mg/L de &aacute;cido indolac&eacute;tico (AIA) y MS con 0,5 mg/L de &aacute;cido giber&eacute;lico   (MS+GA<sub>3</sub>). Los medios con suplementos org&aacute;nicos   (agua de coco y jugo de pi&ntilde;a), se prepararon adicionando 200 mL/L.</p>     <p><b><i>Viabilidad de las semillas</i></b></p>     <p>Para determinar la viabilidad de las semillas se utiliz&oacute; la prueba de Tetrazolio en concordancia con lo reportado   por Ossenbach <i>et al</i>. (2007). Para lo anterior se sumergieron 100 semillas de orqu&iacute;deas en la soluci&oacute;n de CTT al 1%, durante 24 horas en la oscuridad Se realizaron   cinco repeticiones, las cuales fueron evaluadas en el microscopio estereoscopio.</p>     <p>Para analizar el efecto de la viabilidad de semillas con respecto a los tratamientos de hipoclorito de sodio con los tiempos de inmersi&oacute;n (<a href="#tab1">tabla 1</a>), se utiliz&oacute; la metodolog&iacute;a descrita por Batty (2001).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/biote/v15n2/v15n2a12tab1.gif"><a name="tab1"></a></p>     <p><b><i>Desinfecci&oacute;n del material vegetal</i></b></p>     <p>Primeramente, las semillas fueron colocadas en etanol (70%) durante 45 s. Al t&eacute;rmino de dicho tiempo las semillas se lavaron con 5 mL de agua est&eacute;ril (cinco veces). Finalmente, las semillas se sumergieron en de hipoclorito de sodio (NaOCI: 1%), suplementado con dos gotas de Tween 20, y se agitaron por 5 min (Batty, 2001). Seguidamente, las semillas fueron cultivas.</p>     <p><b><i>Siembra de las semillas</i></b></p>     <p>Una vez finalizado el protocolo de desinfecci&oacute;n se retir&oacute;   el filtro de tela, seguidamente, se cultivaron aproximadamente   100 semillas en agua destilada est&eacute;ril, en cajas Petri que conten&iacute;an 25 mL del medio de cultivo. Esta t&eacute;cnica se realiz&oacute; en la c&aacute;mara de flujo laminar, donde se procedi&oacute; a sellar con papel parafilm, posteriormente   fueron incubadas en el cuarto de crecimiento   bajo condiciones ambientales controladas (26 &plusmn; 2&deg;C, fotoperiodo de 16 horas luz y 8 oscuridad, con una intensidad de luz 25&mu;mol/m por segundo, provista por luz fluorescente y 60 % de humedad relativa.</p>     <p><b><i>Desarrollo fenol&oacute;gico</i></b></p>     <p>El desarrollo fenol&oacute;gico de las semillas se evalu&oacute; cada 15 d&iacute;as mediante observaciones, descripciones y fotograf&iacute;as   en cada una de las etapas de desarrollo de <i>Phalaenopsis</i> (<a href="#tab2">tabla 2</a>).</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/biote/v15n2/v15n2a12tab2.gif"><a name="tab2"></a></p>     <p><b><i>Dise&ntilde;o experimental y an&aacute;lisis estad&iacute;stico</i></b></p>     <p>El dise&ntilde;o experimental para la evaluaci&oacute;n de las concentraciones   de hipoclorito. Consisti&oacute; en un dise&ntilde;o factorial 5x3 completamente al azar (cinco concentraciones   de NaOCl y tres tiempos de inmersi&oacute;n), con tres repeticiones, 45 unidades experimentales.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El dise&ntilde;o experimental para la evaluaci&oacute;n del medio de cultivo fue de 6x5 completamente al azar (seis fases del desarrollo y cinco medios de cultivo), con cinco repeticiones con promedios de tres cajas Petri (cada una con 100 semillas), para un total de 75 unidades experimentales.</p>     <p>Los datos fueron sometidos a an&aacute;lisis de varianza (Anova) y posteriormente las medias se compararon utilizando la prueba de rangos m&uacute;ltiples de HSD (Honestly   Significant Difference) de <i>Tukey</i> para determinar   las diferencias significativas a un nivel de P&le;0.05 (<i>Tukey</i>, 1994).</p>     <p>El desarrollo fenol&oacute;gico se evalu&oacute; cada quince d&iacute;as, durante 18 semanas mediante las fases de desarrollo   de orqu&iacute;deas adaptadas por Vasudevan y Staden (2010). Para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico se utiliz&oacute; el software Statgraphic Centuri&oacute;n&reg; versi&oacute;n 16.</p>     <p><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></p>     <p><b><i>Viabilidad de las semillas</i></b></p>     <p>La prueba de TZ (<a href="#fig2">figura 2</a>), logr&oacute; determinar la viabilidad   de las semillas del hibrido de <i>Phalaenopsis</i> (92.2%), esta t&eacute;cnica permiti&oacute; combrobar lo descrito por Pedroza <i>et al</i>., (2010), donde afirma que las semillas   maduras de <i>Phalaenopsis</i> permiten lograr un completo   desarrollo morfofisiol&oacute;gico, el cual asegura el posterior desarrollo fenol&oacute;gico de las mismas. Vujanovic   <i>et al</i>., (2000), Lauzer <i>et al</i>. (2007) y Padilla (2011), demostraron que la prueba de TZ no es un buen indicador   de germinaci&oacute;n, ya que no eval&uacute;a la capacidad de divisi&oacute;n celular y a su vez el desarrollo fenol&oacute;gico. Por otro lado, Yamazaki y Miyoshi (2006) reportaron que en c&aacute;psulas maduras de <i>Phalaenopsis</i>, las semillas no se ti&ntilde;en fuertemente con tetrazolio, a menos que sea eliminada la cubierta de &eacute;stas, debido a las caracter&iacute;sticas   morfol&oacute;gicas de la cubierta, que act&uacute;an como barrera en la difusi&oacute;n del TZ. As&iacute; mismo, Mweetwa <i>et al</i>. (2008) afirmaron, que la tinci&oacute;n de tetrazolio en semillas   de <i>Phalaenopsis</i> es m&aacute;s opaca, debido a la fuerte estructura que recubre la semilla.</p>       <p align="center"><a href="img/revistas/biote/v15n2/v15n2a12fig2.gif" target="_blank">Figura 2</a><a name="fig2"></a></p>     <p><b><i>Porcentaje de viabilidad con relaci&oacute;n   a la concentraci&oacute;n de NaOCl.</i></b></p>     <p>El mayor porcentaje de viabilidad de las semillas del hibrido de <i>Phalaenopsis</i> se encontr&oacute; en el tratamiento con hipoclorito de sodio (NaOCl) al 1 %, con un tiempo   de inmersi&oacute;n de 5 minutos. Esta t&eacute;cnica permiti&oacute; determinar el efecto perjudicial ejercido por el NaOCl a altas concentraciones sobre las semillas, mediante la prueba de rangos m&uacute;ltiples de <i>HSD</i> seg&uacute;n <i>Tukey</i> (P&le;0.05), se logra encontrar diferencias significativas en el tratamiento con NaOCl al 1 %, por 5 minutos de inmersi&oacute;n, frente a los dem&aacute;s tratamientos, a diferencia   de los fueron manejados con concentraciones de 1.5, 2.0, 2.5 y 3.0%, donde no se encontraron diferencias   significativas entre ellas (<a href="#tab3">tabla 3</a>).</p>       <p align="center"><a href="img/revistas/biote/v15n2/v15n2a12tab3.gif" target="_blank">Tabla 3</a><a name="tab3"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La prueba de incidencia del NaOH en la viabilidad de las semillas, permiti&oacute; demostrar lo descrito por Mweetwa   <i>et al</i>., (2008), donde describe que la viabilidad de <i>Phalaenopsis</i> cae bruscamente, con tiempos de exposici&oacute;n   largos a altas concentraciones de hipoclorito de sodio, causando un efecto negativo sobre la fisiolog&iacute;a de las semillas, provocando la muerte del tejido embrionario   y la p&eacute;rdida total en la viabilidad de las semillas. Quiala <i>et al</i>., (2005) y Feria (2007), demostraron que el uso de diferentes concentraciones de NaOH con diferentes tiempos de exposici&oacute;n, permiten observar   el efecto toxico que recae sobre la morfofisiolog&iacute;a de las semillas de orqu&iacute;deas.</p>     <p><b><i>Prueba de viabilidad y germinaci&oacute;n</i></b></p>     <p>La germinaci&oacute;n en los cinco medios de cultivo fue alta, con un porcentaje promedio de 95.1% (<a href="#tab4">tabla 4</a>), donde   la diferencia entre las pruebas de germinaci&oacute;n y viabilidad fue del 2.9%, con un valor de P&le;0.05, donde   no presentaron diferencias significativas, hecho que permite observar la relaci&oacute;n que existe entre el porcentaje   de viabilidad y el porcentaje de germinaci&oacute;n, lo que demuestra que la aplicaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de tetrazolio es un paso importante para la conservaci&oacute;n y propagaci&oacute;n <i>in vitro</i> de orqu&iacute;deas, como lo describe Thompson <i>et al</i>., (2006). En efecto, Kauth <i>et al</i>. (2011) y Salazar (2012) afirmaron que la prueba de tetrazolio   permite predecir la capacidad de germinaci&oacute;n y de crecimiento de las pl&aacute;ntulas de una amplia gama de especies de orqu&iacute;deas. De igual manera, Vendrame <i>et al</i>., 2007; Hirano <i>et al</i>., 2011, afirmaron que la t&eacute;cnica de tetrazolio es una prueba que permite indicar la capacidad   de germinaci&oacute;n de las semillas de orqu&iacute;deas en general y a su vez, afirman que la viabilidad de las semillas de diferentes c&aacute;psulas, var&iacute;a considerablemente,   y en diversas especies de orqu&iacute;deas, disminuye durante el almacenamiento.</p>       <p align="center"><img src="img/revistas/biote/v15n2/v15n2a12tab4.gif"><a name="tab4"></a></p>     <p><b><i>Germinaci&oacute;n y desarrollo fenol&oacute;gico</i></b></p>     <p>Las semillas de <i>Phalaenopsis</i> germinaron cuando el embri&oacute;n absorbi&oacute; agua e increment&oacute; su circunferencia   y longitud, llegando a romper la testa "fase 2" (15 d&iacute;as). La germinaci&oacute;n m&aacute;xima alcanzada en los cinco medios de cultivos evaluados a las 18 semanas de crecimiento   para el h&iacute;brido de <i>Phalaenopsis</i>, tienen un promedio de germinaci&oacute;n del 95.1% (<a href="#tab4">tabla 4</a>), la cual dio inicio a partir de la semana 3.</p>     <p>Durante el desarrollo <i>in vitro</i> de <i>Phalaenopsis</i> h&iacute;brida, se observaron las diferentes etapas fenol&oacute;gicas, las cuales fueron muy variables en el transcurso de las 18 semanas evaluadas; a diferencia de la fase 0, (<a href="#fig3">figura 3a</a>), donde las semillas no germinadas variaron hasta la semana 3 en cada medio de cultivo.</p>     <p align="center"><a href="img/revistas/biote/v15n2/v15n2a12fig3.gif" target="_blank">Figura 3</a><a name="fig3"></a></p>     <p>Pierik (1990), Arditti (1993), Arditti y Gani (2000), consideran   la fase 1, como la primera etapa en el proceso de germinaci&oacute;n en las semillas de orqu&iacute;deas; en esta fase se logra observar el mayor porcentaje de imbibici&oacute;n   (figura 3B), en el medio MS control, con un porcentaje de 57.33%, presentando diferencia significativa   (p&le;0.05; tukey con HSD) (<a href="#tab5">tabla 5</a>, fase I), frente a los dem&aacute;s medios evaluados, esta fase se vio reflejada al inicio de la semana 2, donde las semillas presentaron hinchamiento pronunciado y una coloraci&oacute;n verde p&aacute;lida   del embri&oacute;n, ocasionado por la absorci&oacute;n del agua presente en cada uno de los medios. Sin embargo, las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas de impermeabilidad de la testa en las semillas de <i>Phalaenopsis</i>, dificulta el inicio del desarrollo de esta fase, por tal motivo, Vujanovic <i>et al</i>. (2000) y Ervin y Wetzel, (2002), afirman que el NaOH es un compuesto que estimula la germinaci&oacute;n de semillas, por la erosi&oacute;n de la cubierta de la semilla y el aumento en la permeabilidad del ox&iacute;geno.</p>       <p align="center"><a href="img/revistas/biote/v15n2/v15n2a12tab5.gif" target="_blank">Tabla 5</a><a name="tab5"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En la fase de imbibici&oacute;n, el embri&oacute;n logra un incremento   en el tama&ntilde;o y a su vez, una coloraci&oacute;n verde acentuada, dando origen al rompimiento de la testa y al inicio de la fase de germinaci&oacute;n (<a href="#fig3">figura 3C</a>), la cual inicia al finalizar la semana 4, donde el desarrollo se da de en forma muy equilibrada, alcanzando el mayor porcentaje de germinaci&oacute;n en el medio MS+AC con un 67.53%, resultado que presenta diferencia significativa   (p&le;0.05; tukey con HSD) con el medio MS+ AIA. (<a href="#tab5">tabla 5</a>, fase II).</p>     <p>As&iacute; mismo Thompson <i>et al</i>., (2006), afirmaron que el uso adecuado de las concentraciones de NaOH en la desinfecci&oacute;n, influye directamente en la inducci&oacute;n a la germinaci&oacute;n de las semillas de orqu&iacute;deas, como lo alcanzado en esta investigaci&oacute;n. Adicionalmente, una baja germinaci&oacute;n en las semillas no se deber&aacute; atribuir al poco efecto de escarificaci&oacute;n generado en las mismas,   sino al periodo de latencia como lo afirma Fl&oacute;rez y Pedroza, (2006); por otro lado, Vasudevan y Staden (2010) afirma que la disponibilidad del agua en el medio   de cultivo puede llegar a influir en el desarrollo &oacute;ptimo de esta fase.</p>     <p>La formaci&oacute;n de protocormo y de rizoidez (<a href="#fig3">figura 3D</a> y <a href="#fig3">E</a>), se desarroll&oacute; notablemente en los medios suplementados   con componentes org&aacute;nicos, resultado que coincide con lo descrito por Kitsaki <i>et al</i>., (2004), quien afirma que el uso de aditivos org&aacute;nicos potencializa el medio de cultivo, por tal motivo, se puede establecer que los componentes org&aacute;nicos usados en el establecimiento   de semillas del hibrido de <i>Phalaenopsis</i>, permiten que las semillas crezcan de una forma r&aacute;pida y logren almacenar reservas, posibilitando una mayor sobrevivencia en invernadero.</p>     <p>Los tratamientos sin componentes org&aacute;nicos muestran la talla m&aacute;s baja en la formaci&oacute;n de pl&aacute;ntulas (<a href="#fig3">figura 3F</a>), esto coincide con lo descrito por Rodr&iacute;guez <i>et al</i>. (2000), en <i>Phaphiopedillum caudatum</i>, donde se observaron   los mejores resultados al agregar al medio de cultivo agua de coco, esto manifiesta lo dicho por Nongrum <i>et al</i>., (2007) y Abbas <i>et al</i>. (2011), quienes afirmaron que la adici&oacute;n de componentes org&aacute;nicos al medio de cultivo ejerce un efecto ben&eacute;fico en la germinaci&oacute;n   y el desarrollo de tejidos celulares, formando   pl&aacute;ntulas de <i>Coelogyne ovalis</i> y <i>Grammatophyllum scriptum</i>. De igual manera Shina <i>et al</i>. (2004), obtuvieron   los mayores tama&ntilde;os de brotes de Vanda, al agregar 10% de agua de coco.</p>     <p>La germinaci&oacute;n y desarrollo de pl&aacute;ntulas de h&iacute;bridos de <i>Phalaenopsis</i>, en general, present&oacute; la mejor germinaci&oacute;n   en el medio de cultivo MS+AC, encontrando diferencias   significativas, resultado que no coincide con lo descrito por (Salazar y Cancino, 2012), donde el mejor porcentaje de germinaci&oacute;n se desarroll&oacute; en el medio de cultivo suplementado con jugo de pi&ntilde;a para las especies   de <i>Prosthechea vespa</i> y Sobralia klotzscheana, posiblemente debido a que todas las especies tienen diferentes necesidades nutricionales, por tal motivo, se ve la necesidad de estudiar las condiciones para cada especie como lo afirma Ruiz <i>et al</i>., (2008), en donde Dutra <i>et al</i>., (2009); Basker <i>et al</i>., (2010); Kauth <i>et al</i>., (2011), implementaron diferentes medios de cultivos para la preservaci&oacute;n de orqu&iacute;deas.</p>     <p>Por otra parte, Pedroza (2009), demostr&oacute; que la adici&oacute;n   de AIA (0,5 mg/L) al medio de cultivo MS promov&iacute;a   las fases del desarrollo de <i>Epidendrum elongatum</i>, as&iacute; mismo, autores como Manrique <i>et al</i>., (2005); Coello <i>et al</i>., (2010) resaltan la importancia de la GA<sub>3</sub>, en la germinaci&oacute;n y el crecimiento de las orqu&iacute;deas, sin embargo cabe considerar, que a pesar de la dificultad   en el an&aacute;lisis de su composici&oacute;n y la poca informaci&oacute;n   en la literatura acerca de los efectos que tienen los componentes org&aacute;nicos, como el agua de coco y el jugo de pi&ntilde;a, estos son ricos en energ&iacute;a, vitaminas, amino&aacute;cidos y fitohormonas (Kitsaki <i>et al</i>., 2004; Yam y Arditti, 2008; Yong <i>et al</i>., 2009). En esta investigaci&oacute;n se reporta que la adici&oacute;n de estos aditivos org&aacute;nicos al medio MS mejora la eficacia de &eacute;ste, y por lo tanto, permite un mayor crecimiento y desarrollo de los h&iacute;bridos   de <i>Phalaenopsis</i>.</p>     <p><b>Conclusiones</b></p>     <p>La prueba de tetrazolio permiti&oacute; evidenciar la p&eacute;rdida de viabilidad de las semillas de <i>Phalaenopsis</i>, demostrando   la eficacia de este m&eacute;todo para predecir la capacidad   de germinaci&oacute;n de esta especie de orqu&iacute;dea. Y a su vez, concluir que la concentraci&oacute;n y el tiempo de inmersi&oacute;n, son directamente proporcionales a la disminuci&oacute;n de la viabilidad del tejido embrionario.</p>     <p>El medio MS suplementado con agua de coco tuvo una mayor eficacia en la germinaci&oacute;n y formaci&oacute;n de pl&aacute;ntulas en el h&iacute;brido de <i>Phalaenopsis</i>. Demostrando que la adici&oacute;n de compuestos org&aacute;nicos en los medios de cultivo <i>in vitro</i> es de suma importancia para obtener grandes vol&uacute;menes de material vegetal, contribuyendo   de esta manera al uso de componentes org&aacute;nicos como posible sustituto de las hormonas sint&eacute;ticas debido   a los bajos costos de rentabilidad que presentan estos suplementos org&aacute;nicos por su f&aacute;cil adquisici&oacute;n.</p>     <p><b>Agradecimientos</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A la universidad Francisco de Paula Santander por el financiamiento del proyecto FINU titulado: Evaluaci&oacute;n de la germinaci&oacute;n in-vitro de <i>Phalaenopsis</i> hibrida, (Orchidaceae);   a Yuri Osorio por su asistencia t&eacute;cnica. A la Ingeniera Alina Sigarroa por administrar el dinero del proyecto FINU.</p>     <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>     <!-- ref --><p>1 Abbas, B., Heningtyas, F., Amriati, B. 2011. In vitro seeds germination   and plantlets development of <i>Grammatophyllum scriptum</i> Lindl.  (Orchidaceae). <i>International Research Journal of Plant Science</i>. 2  (5): 154-159.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-3475201300020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2 Arditti, J., Ernst, R. 1993. <i>Micropropagation of orchids</i>. John Wiley &#38; Sons, New York, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-3475201300020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3 Arditti, J., GHANI, A. 2000. Numerical and physical properties of orchid seeds and their biological implications. <i>New Physiologist</i>. 145  (3): 367-421.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-3475201300020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>4 Asghar, S., Ahmad, T., Ahmad, I., Yaseen, M. 2011. In vitro propagation   of orchid  (<i>Dendrobium nobile</i>) var. Emma white. <i>African Journal of Biotechnology</i>. 10  (16): 3097-3103.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0123-3475201300020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>5 Basker, S., Bai, N. 2010. In vitro propagation of an epiphytic and rare orchid Eria bambusifolia Lindl. <i>Research in Biotechnology</i> 1: 15-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-3475201300020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6 Batty, M. Brundett, M.  (2001). Orchid conservation techniques manual. Canberra. Plant Science, Kings Park and Botanic Garden. First International Orchid Conservation Congress - Training Course. Perth, Western Australia, 20 September 2001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-3475201300020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>7 Canuto, R.A. 2012. Dehydrogenases. InTech Design Team. Croatia. ISBN 978-953-307-019-3, p 366.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-3475201300020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8 Chen, C., y Li, S. 2012. CO<sup>2</sup> uptake patterns in <i>Phalaenopsis amabilis</i>. <i>African Journal of Agricultural Research</i>. 7 (1): 128-141.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-3475201300020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>9 Chen, G., Chen, D., Wang, T., Li, L. 2012. Analysis of the proteins related to browning in leaf culture of <i>Phalaenopsis</i>. <i>Scientia Horticulturae</i>. 141: 17-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-3475201300020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>10 Chu, C., Chung, Y., Shium, Y., Lin, W., Hung, C. 2012. Plastid trnL intron   polymorphisms among <i>Phalaenopsis</i> species used for identifying   the plastid genome type of <i>Phalaenopsis</i> hybrids. <i>Scientia Horticulturae</i>. 142: 84-91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-3475201300020001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11 Coello, C., Miceli, C., Orantes, C., Dendooven. L, Guti&eacute;rrez, A. 2010. Plant growth regulators optimization for <i>in vitro</i> cultivation   of the orchid <i>Guarianthe kinneri</i>  (Bateman) Dressier &#38; W.E. Higgins. <i>Gayana Botanica</i>. 67 (1): 19-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0123-3475201300020001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12 Dutra, D., Johnson, T., Kauth P., Stewart, S., Kane, M. 2008. Asymbiotic   seed germination, <i>in vitro</i> seedling development, and greenhouse acclimatization of the threatened terrestrial orchid <i>Bletia purpurea</i>. <i>Plant Cell Tissue and Organ Culture</i>. 94: 11-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0123-3475201300020001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>13 Ervin, G.N., Wetzel, R. 2002. Effects of sodium hypochlorite sterilization   and dry cold storage on germination of Juncus effusus L. <i>Wetlands</i>. 22: 191-195.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0123-3475201300020001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>14 Feria, M., Ch&aacute;vez, M., Quiala, M. 2007. Establecimiento <i>in vitro</i> de <i>Phalaenopsis</i>. <i>Biotecnolog&iacute;a Vegetal</i>. 1: 27-33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0123-3475201300020001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>15 Fl&oacute;rez, V., Pedroza, J. 2006. Germinaci&oacute;n y dormancia en semillas. Bogot&aacute;: Universidad Nacional de Colombia. pp. 49-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0123-3475201300020001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16 Griesbach, R.J. 2002. Development of <i>Phalaenopsis</i> Orchids for the Mass-Market. p. 458-465. In: J. Janick and A. Whipkey  (eds.), <i>Trends in New Crops and New uses</i>. ASHS Press, Alexandria, VA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0123-3475201300020001200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17 Hirano, T., Yukawa, T., Miyoshi, K., Mii, M. 2011. In vitro germination and seedling development of cryopreserved Dendrobium hybrid   mature seeds for seeds of some Cymbidium species. <i>Plant Biotechnol</i>. 28: 99-102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0123-3475201300020001200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>18 Kauth, P., Kane, M., Vendrame, W. 2011. Comparative <i>in vitro</i> germination ecology of Calopogon tuberosus var. tuberosus  (Orchidaceae) across its geographic range. <i>In Vitro Cellular &#38; Developmental Biology - Plant</i>. 47: 148-156.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0123-3475201300020001200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>19 Kitsaki, C., Zygouraki, S., Ziobora, M., Chintziest, S. 2004. In vitro germination, protocorm formation and plantlet development of mature versus immature seeds from several Ophrys species  (Orchidaceae). <i>Plant Cell Reports</i>. 23:284-290.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0123-3475201300020001200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>18 Kosir, P., Skof, S., Luthar, Z. 2004. Direct shoot regeneration from nodes of <i>Phalaenopsis</i> orchids. <i>Acta agriculturae Slovenica</i>. 83 (2): 233-242.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0123-3475201300020001200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>19 Knudson, L. 1946. A nutrient for germination of orchid seeds. <i>American   Orchid Society Bulletin</i>. 15: 214-217.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0123-3475201300020001200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>20 Lauzer, D., Renaut, S., Arnaud., Barab&eacute;, D. 2007. In vitro asymbiotic   germination, protocorm development, and plantlet acclimatization of <i>Aplectrum hyemale</i>  (Muhl. ex Willd.) Torr.  (Orchidaceae). <i>Journal of the Torrey Botanical Society</i>. 134 (3): 344-348.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0123-3475201300020001200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21 Lesar, H., Ceranic, N., Kastelec, D., Luthar, K. 2012. Asymbiotic seed germination of <i>Phalaenopsis</i> Blume orchids after hand pollination. <i>Acta agriculturae Slovenica</i>. 99 (1): 5-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0123-3475201300020001200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>22 Leva, A., Rinaldi, L. 2012. Recent Advances In Plant In Vitro Culture. <i>InTech Prepress, Novi Sad</i>. p 219.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0123-3475201300020001200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>23 Manrique, J., Fernandez, C., Su&aacute;rez, A. 2005. Evaluation of the effect of three growth regulators in the germination of Comparettia falcata seeds under <i>in vitro</i> conditions. <i>In Vitro Cellular &#38; Developmental   Biology - Plant</i>. 41: 838-843.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0123-3475201300020001200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>24 McKendrick, S., J. Leake, D. Taylor D. Read. 2002. Symbiotic germination and development of the myco-heterotrophic orchid Neottia nidus-avis in nature and its requirement for locally distributed Sebacina spp. <i>New Phytologist</i>. 154  (1): 233-247.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0123-3475201300020001200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>25 Murashige, T., Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. <i>Plant Physiology</i>. 15: 437-497.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0123-3475201300020001200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>26 Murdad, R., Latip, M., Aziz, Z., Ripin, R. 2010. Effects of carbon source and potato homogenate on <i>in vitro</i> growth and development   of Sabah's Endangered orchid: <i>Phalaenopsis</i> gigantean. <i>Asia-Pacific Journal of Molecular Biology and Biotechnology</i>. 18  (1): 199-202.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0123-3475201300020001200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>27 Murdad, R., Kuik, S.H., Choo, K.S, Mariam, A., Aziz, Z.A., Ripin, R. 2006. High frequency multiplication of <i>Phalaenopsis gigantea</i> using trimmed base protocorms technique. <i>Scientia Horticulturae</i>. 111  (1): 73-79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0123-3475201300020001200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>28 Mweetwa, A., Welbaum, G., Tay, D. 2008. Effects of development, temperature, and calcium hypochlorite treatment on <i>in vitro</i> germinability of <i>Phalaenopsis</i> seeds. <i>Scientia Horticulturae</i>. 117: 257-262.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0123-3475201300020001200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>29 Niknejad, A., Kadir, M., Kadzimin, B. 2011. In vitro plant regeneration   from protocorms-like bodies  (PLBs) and callus of <i>Phalaenopsis   gigantea</i>  (Epidendroideae: Orchidaceae). <i>African Journal of Biotechnology</i>. 10  (56): 11808-11816.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0123-3475201300020001200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>30 Nishimura, G. 1982. Japanese orchids. In: Arditti J  (ed) Orchid Biology:   Reviews and Perspectives II, Orchid seed germination and seeding culture- a manual. Ithaca: Cornell University Press, New York. pp. 331-346.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0123-3475201300020001200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>31 Nongrum, L., Kumaria, S., Tandon, P. 2007. The influence of <i>in vitro</i> media on asymbiotic germination, plantlet development and <i>ex vitro</i> establishment of <i>Coelogyne ovalis</i> Lindl. and <i>Coelogyne nitida</i>  (Wall. Ex Don) Lindl. <i>Proceedings of the Indian National Science Academy</i>. 73  (4): 205-207.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0123-3475201300020001200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>32 Ossenbach, C., Arce, J., Warner, J. 2007. Almacenamiento de semillas   de diferentes especies de orqu&iacute;deas para su conservaci&oacute;n en un banco de germoplasma: Deshidrataci&oacute;n, almacenamiento   y pruebas de viabilidad de las semillas. <i>Tierra Tropical</i>. 3  (1): 47-59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0123-3475201300020001200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>33 Padilla, J. 2011. Prueba de viabilidad con tetrazolio. Consultado en Diciembre 8, 2011, en <a href="http://snics.sagarpa.gob.mx/Documents/pruebaviabilid" target="_blank">http://snics.sagarpa.gob.mx/Documents/pruebaviabilid</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0123-3475201300020001200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>34 Park, S.Y., Murthy, H.N., Paek, K. 2003. Protocorm-like body induction   and subsequent plant regeneration from root tip cultures of Doritaenopsis. <i>Plant Science</i>. 164: 919-923.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0123-3475201300020001200036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>35 Pedroza, J. 2009. The effect of activated charcoal, indol acetic acid  (IAA) and benzyl amino purine  (BAP) on <i>Epidendrum elongatum</i>   Jacq protocorm-like body  (PLB) development <i>in vitro</i> conditions. <i>Revista Colombiana de Biotecnolog&iacute;a</i>. 6  (1): 17-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0123-3475201300020001200037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>36 Pedroza, J., Serrato, L. 2010. Efecto del carb&oacute;n activado y &aacute;cido indol   ac&eacute;tico en el desarrollo de protocormos de <i>Masdevallia coccinea</i> Linden y <i>Maxillaria nutans</i> Lindl. <i>in vitro</i>. <i>Revista Colombiana   de Biotecnolog&iacute;a</i>. 12  (2): 86-102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0123-3475201300020001200038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>37 Pierik, K. 1990. Cultivo <i>in vitro</i> de las plantas superiores. Mundi Prensa   Madrid, p 301.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0123-3475201300020001200039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>38 Quiala, E., Montalvo, G., Matos, J., Ch&aacute;vez, M., de Feria M, Mederos,   R. 2005. Establecimiento y multiplicaci&oacute;n <i>in vitro</i> de Guettarda clarense, especie end&eacute;mica de Cuba en peligro de extinci&oacute;n. <i>Biotecnolog&iacute;a Vegetal</i>. 5  (1): 23-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0123-3475201300020001200040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>39 Ru&iacute;z, B., Laguna, C., Iglesias, A., Damon, A., Mar&iacute;n, H. Azp&iacute;roz, R. 2008. In vitro germination of <i>Encyclia adenocaula</i>  (La Llave &#38; Lex.) Schltr  (Orchidaceae) seeds. <i>Python Revista Internacional De Bot&aacute;nica Experimental</i>. 77: 203-215.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0123-3475201300020001200041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>40 Rodr&iacute;guez, F. 2000. Germinaci&oacute;n y desarrollo <i>in vitro</i> de <i>Paphiopedilum   extaminodium</i> y <i>P. caudatum</i>, especies en peligro de extinci&oacute;n. Tesis de Maestr&iacute;a. Facultad de ciencias. UNAM. pp.56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0123-3475201300020001200042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>41 Salazar, S. 2012. Germinaci&oacute;n asimbi&oacute;tica de semillas y desarrollo <i>in vitro</i> de pl&aacute;ntulas de <i>Cattleya mendelii</i> Dombrain  (Orchidaceae). <i>Acta Agron&oacute;mica</i>. 61 (1): 68-78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0123-3475201300020001200043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>42 Salazar, S., Cancino, G. 2012. Evaluaci&oacute;n del efecto de dos suplementos   org&aacute;nicos en la germinaci&oacute;n <i>in vitro</i> de orqu&iacute;deas nativas de la provincia de Pamplona, Colombia. <i>Revista Colombiana   de Biotecnolog&iacute;a</i>. 14 (1): 53-59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0123-3475201300020001200044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>43 Sinha, P., Roy, S. 2004. Regeneration of an indigenous orchid, <i>Vanda teres</i>  (Roxb.) Lindl. Throug <i>in vitro</i> culture. <i>Plan Tissue Culture</i>. 14 (1):55-61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0123-3475201300020001200045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>44 Thompson, D., Trevor, J., Van, J. 2006. Evaluating asymbiotic seed culture methods and establishing Disa  (<i>Orchidaceae</i>) germinability   <i>in vitro</i>: relationships, requirements and first-time reports. <i>Plant Growth Regulation</i>. 49: 269-284.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0123-3475201300020001200046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>45 Tokuhara, K., y Mii, M. 2001. Induction of embryogenic callus and cell suspension culture from shoot tips excised from flower stalk buds of <i>Phalaenopsis</i>  (Orchidaceae). <i>In Vitro Cellular &#38; Developmental Biology - Plant</i>. 37: 457-461.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0123-3475201300020001200047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>46 Tukey, J. W. 1994. The problem of multiple comparisons. En: H. L. Braun  (ed.). The collected works of John W. Tukey. Nueva York: Chapman and Hall. VIII, p 300.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0123-3475201300020001200048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>47 Vacin, E., Went, F. 1949. Some pH changes in nutrient solutions. <i>Botanical Gazette</i>. 110: 605-613.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0123-3475201300020001200049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>48 Vasudevan, R. y Staden, J. 2010. In vitro asymbiotic seed germination   and seedling growth of <i>Ansellia africana</i> Lindl. <i>Journal Scientia Horticulturae</i>. 123: 496-504.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S0123-3475201300020001200050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>49 Vendrame, W., Carvalho, V., Dias, J. 2007. In vitro germination and seedling development of cryopreserved Dendrobium hybrid mature seeds. <i>Scientia Horticulturae</i>. 114  (3): 188-193.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S0123-3475201300020001200051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>50 Vogel, I., Macedo, A. 2011. Influence of IAA, TDZ, and light quality   on asymbiotic germination, protocorm formation, and plantlet development of <i>Cyrtopodium glutiniferum</i> Raddi., a medicinal orchid. <i>Plant Cell, Tissue and Organ Culture</i>. 104: 147-155.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S0123-3475201300020001200052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>51 Vujanovic, V., Arnaud, M., Barab&eacute;, D., Thibeault, G. 2000. Viability Testing of Orchid Seed and the Promotion of Colouration and Germination. <i>Annals of Botany</i>. 86: 79-86.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S0123-3475201300020001200053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>52 Yamazaki, J., Miyoshi, K., 2006. In vitro asymbiotic germination of immature seed and formation of protocorm by <i>Cephalanthera falcata</i>  (Orchidaceae). <i>Annals of Botany</i>. 98, 1197-1206.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S0123-3475201300020001200054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>53 Yam, W., Nair, H., Hew S., Arditti J. 2002. Orchid seeds and their germination: An historical account. In: Kull T, Arditti J  (Ed) Orchid   biology: reviews and perspectives, VIII. Kluwer, Dordrecht, pp 387-504.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S0123-3475201300020001200055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>54 Yam, Tim., Arditti, J. 2009. History of orchid propagation: a mirror of the history of biotechnology. <i>Plant Biotechnology Reports</i>. 3  (1): 1-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S0123-3475201300020001200056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>55 Yong, J., Ge, L., Yan, F., Ngin, S. 2009. The chemical composition and biological properties of coconut  (<i>Cocos nucifera</i> L.) water. <i>Molecules</i>. 14: 5144-5164.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S0123-3475201300020001200057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>56 Zhao, Y., Yang, S.H., Ge, W.Y., Li, Q., Chen, H.X., Ge, H., 2010. The metabolism of phenolics and reactive oxygen species in relation to the explant browning differences among the varieties of <i>Phalaenopsis</i> during the tissue culture. <i>Acta Horticulturae</i>. 37: 963-970.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S0123-3475201300020001200058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>      ]]></body><back>
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<surname><![CDATA[Amriati]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
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