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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estimulación de cardenólidos en brotes de Digitalis purpurea L. cultivados in vitro mediante elicitores]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Digitalis purpurea L. is one of the main sources of cardenolides such as digitoxin and digoxin. These drugs are widely used to strengthen cardiac diffusion and to regulate heart rhythm. The aim of this study was to evaluate the influence of three elicitors on shoots of Digitalis purpurea var. Roter Berggold in semisolid media in order to increase cardenolides biosynthesis. Elicitation is a strategy to increase biomass and secondary metabolites production on in vitro cultures. The elicitors evaluated were ChitoPlant (0,001; 0,01; 0,1 g.L-1); SilioPlant (0,01; 0,1; 1,0 g.L-1) and Methyl jasmonate (60, 80, 100 µM), which are reported here to induce cardenolide production for first time. Elicitation resulted an effective strategy to increase cardenolide production on D. purpurea shoot cultures. ChitoPlant induced a decrease in shoots length, but had no effect on the rest of morphological parameters evaluated. As well, ChitoPlant increased cardenolide content. SilioPlant (0,01 g.L-1) did not affect biomass production and at the same time, increased in 3,6-fold and 6,9-fold digoxin and digitoxin content respectively. Elicitation with Methyl jasmonate resulted in decreased biomass production. Digoxin and digitoxin content was slight and significantly increased by Methyl jasmonate 80 and 100 µM respectively. The best integral result was reached with 0,01 g.L-1 of SilioPlant, which induced the highest net yields per culture flask (4,72 µg of digoxin and 88,27 µg of digitoxin).]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p><a href="http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v16n1.44225" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v16n1.44225</a></p>     <p align="right"><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></font></p>     <p><font size="4"><b>Estimulaci&oacute;n de carden&oacute;lidos en brotes de <i>Digitalis purpurea</i> L. cultivados <i>in vitro</i> mediante elicitores</b></font></p>     <p><font size="3">Stimulation of cardenolides production in <i>Digitalis purpurea</i> L. shoot cultures by elicitors addition</font></p>     <p><font size="3">T&iacute;tulo corto: Elicitores en la producci&oacute;n de carden&oacute;lidos</font></p>     <p><i>Naivy Lisbet P&eacute;rez-Alonso<sup>1,a</sup>, Franklyn Arana Labrada<sup>2,b</sup>, Alina Capote P&eacute;rez<sup>1,b</sup>, Anabel P&eacute;rez P&eacute;rez<sup>1,c</sup>, Rafael Sosa<sup>3,b</sup>, Angel Mollineda<sup>4,c</sup> y Elio Jim&eacute;nez Gonz&aacute;lez<sup>5,a</sup>.</i></p>     <p> <sup>1</sup> Instituto de Biotecnolog&iacute;a de las Plantas, Universidad Central &#39;&#39;Marta Abreu&#39;&#39; de Las Villas, Carretera a Camajuan&iacute; km 5,5, 54830 Santa Clara, Villa Clara, Cuba. E-mail: <a href="mailto:naivy@ibp.co.cu">naivy@ibp.co.cu</a>;  <a href="mailto:alina@ibp.co.cu">alina@ibp.co.cu</a>; <a href="mailto:anabel@ibp.co.cu">anabel@ibp.co.cu</a>      <br>  <sup>2</sup> Universidad de las Tunas &quot;Vladimir Ilich Lenin&quot;, Ave. Carlos J. Finlay s/n, Reparto Buenavista 75200 Israel Santos, Las Tunas, Cuba. E-mail: <a href="mailto:franklynal@ult.edu.cu">franklynal@ult.edu.cu</a>    <br>  <sup>3</sup> Centro de Bioactivos Qu&iacute;micos, Universidad Central &#39;&#39;Marta Abreu&#39;&#39; de Las Villas, Carretera a Camajuan&iacute; km 5,5, 54830 Santa Clara, Villa Clara, Cuba     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  <sup>4</sup> Centro de Investigaciones Agropecuarias, Universidad Central &#39;&#39;Marta Abreu&#39;&#39; de Las Villas, Carretera a Camajuan&iacute; km 5,5, 54830 Santa Clara, Villa Clara, Cuba.     <br>  <sup>5</sup> University of Florida, Tropical Research & Education Center Institute of Food & Agricultural Sciences. 18905 SW 280th Street Homestead, FL  33031. E-mail: <a href="mailto:eliojimenez@ufl.edu">eliojimenez@ufl.edu</a>    <br>  <sup>a</sup> Doctor en Ciencias Agr&iacute;colas     <br>  <sup>b</sup> Master en Biotecnolog&iacute;a vegetal      <br>  <sup>c</sup> T&eacute;cnico especialista     <br>  </p>     <p>Recibido: octubre 24 de 2013   Aprobado: abril 15 de 2014</p> <hr>    <p><b>Resumen</b></p>     <p><i>Digitalis purpurea</i> L. es una de las principales fuentes de carden&oacute;lidos tales como digoxina y digitoxina. Estos f&aacute;rmacos son ampliamente usados en la disfunci&oacute;n card&iacute;aca y para regular las arritmias del coraz&oacute;n. El presente trabajo se realiz&oacute; con el objetivo de estudiar el efecto de tres elicitores en el cultivo de brotes de <i>Digitalis purpurea</i> var. Roter Berggold para incrementar la producci&oacute;n <i>in vitro</i> de carden&oacute;lidos. La elicitaci&oacute;n es una estrategia para incrementar la producci&oacute;n de biomasa y metabolitos secundarios en el cultivo <i>in vitro</i>. Los elicitores evaluados fueron ChitoPlant (0,001; 0,01; 0,1 g.L<sup>-1</sup>); SilioPlant (0,01; 0,1; 1,0 g.L<sup>-1</sup>) y Jasmonato de metilo (60, 80 y 100 &micro;M), descritos por primera vez para el incremento de carden&oacute;lidos. Se demostr&oacute; que la elicitaci&oacute;n es una estrategia viable para el incremento de carden&oacute;lidos en brotes de <i>D. purpurea</i>. El ChitoPlant&reg;, redujo la altura sin afectaci&oacute;n en el resto de las variables morfol&oacute;gicas evaluadas. Adem&aacute;s indujo un incremento significativo en el contenido de carden&oacute;lidos. El SilioPlant&reg; (0,01 g.L<sup>-1</sup>) no provoc&oacute; afectaciones en la biomasa e increment&oacute; significativamente la s&iacute;ntesis de carden&oacute;lidos en los brotes en 3,6 y 6,9 veces el contenido de digoxina y digitoxina respectivamente. La elicitaci&oacute;n con el jasmonato de metilo provoc&oacute; una reducci&oacute;n de la biomasa. Los contenidos de digoxina y digitoxina se incrementaron ligera y significativamente con 80 y 100 &micro;M de jasmonato de metilo respectivamente. El mejor resultado integral se obtuvo con 0,01 g.L<sup>-1</sup> de SilioPlant, el cual indujo la mayor producci&oacute;n neta de carden&oacute;lidos por frasco de cultivo (4,72 &micro;g digoxina y 88,27 &micro;g digitoxina).</p>     <p><b>Palabras clave</b>: chitoplant, digitoxina, digoxina, jasmonato de metilo, silioplant </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Abstract</b></p>     <p><i>Digitalis purpurea</i> L. is one of the main sources of cardenolides such as digitoxin and digoxin. These drugs are widely used to strengthen cardiac diffusion and to regulate heart rhythm. The aim of this study was to evaluate the influence of three elicitors on shoots of <i>Digitalis purpurea</i> var. Roter Berggold in semisolid media in order to increase cardenolides biosynthesis. Elicitation is a strategy to increase biomass and secondary metabolites production on <i>in vitro</i> cultures. The elicitors evaluated were ChitoPlant (0,001; 0,01; 0,1 g.L<sup>-1</sup>); SilioPlant (0,01; 0,1; 1,0 g.L<sup>-1</sup>) and Methyl jasmonate (60, 80, 100 &micro;M), which are reported here to induce cardenolide production for first time. Elicitation resulted an effective strategy to increase cardenolide production on <i>D. purpurea</i> shoot cultures. ChitoPlant induced a decrease in shoots length, but had no effect on the rest of morphological parameters evaluated. As well, ChitoPlant increased cardenolide content.  SilioPlant (0,01 g.L<sup>-1</sup>) did not affect biomass production and at the same time, increased in 3,6-fold and 6,9-fold digoxin and digitoxin content respectively. Elicitation with Methyl jasmonate resulted in decreased biomass production. Digoxin and digitoxin content was slight and significantly increased by Methyl jasmonate 80 and 100 &micro;M respectively. The best integral result was reached with 0,01 g.L<sup>-1</sup> of SilioPlant, which induced the highest net yields per culture flask (4,72 &micro;g of digoxin and 88,27 &micro;g of digitoxin). </p>     <p><b>Key words</b>: chitoplant, digitoxin, digoxin, methyl jasmonate, silioplant</p> <hr>    <p><b>Abreviaturas </b></p>     <p>6-BAP	6-Bencilaminopurina</p>     <p>ACN	Acetonitrilo</p>     <p>AIA	&Aacute;cido indol-3-ac&eacute;tico</p>     <p>ChP 	ChitoPlant&reg;</p>     <p>gMF	Gramos de masa fresca</p>     <p>gMS	Gramos de masa seca</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>HPLC 	Cromatograf&iacute;a L&iacute;quida Alta Resoluci&oacute;n (del ingl&eacute;s High-Performance Liquid Chromatography)</p>     <p>MJ	Jasmonato de metilo</p>     <p>MS	Sales inorg&aacute;nicas propuestas por Murashige y Skoog (1962)</p>     <p>SiP	SilioPlant&reg;</p>     <p><b>Introducci&oacute;n </b></p>     <p>Las plantas son consideradas una fuente valiosa para la producci&oacute;n de compuestos de inter&eacute;s farmac&eacute;utico (Fischer <i>et al.</i>, 2007). Entre ellas se destacan las pertenecientes al g&eacute;nero Digitalis, siendo <i>Digitalis purpurea</i> L. una de las dos &uacute;nicas especies de inter&eacute;s econ&oacute;mico de dicho g&eacute;nero como fuente de carden&oacute;lidos (Sales <i>et al.</i>, 2011). Estos compuestos muestran propiedades farmacodin&aacute;micas similares pero la digitoxina y la digoxina son los m&aacute;s relevantes para la industria farmac&eacute;utica (Hornberger <i>et al.</i>, 2000). En medicina, estos compuestos son f&aacute;rmacos valiosos en el tratamiento de la insuficiencia card&iacute;aca (Pi&ntilde;ol <i>et al.</i>, 2008), pero en los &uacute;ltimos a&ntilde;os se han descrito tambi&eacute;n sus efectos en el control del c&aacute;ncer de ri&ntilde;&oacute;n, de pr&oacute;stata y leucemia (Lewis, 2009).</p>     <p>El cultivo de plantas es hasta el momento la &uacute;nica fuente comercial para la producci&oacute;n de carden&oacute;lidos (Kuate <i>et al.</i>, 2008), pues la s&iacute;ntesis qu&iacute;mica de estos compuestos no es econ&oacute;micamente viable. </p>     <p>La variaci&oacute;n de las condiciones ambientales que ocurre durante el crecimiento de las plantas en el campo, provoca la fluctuaci&oacute;n y heterogeneidad de las sustancias activas y su concentraci&oacute;n en los extractos obtenidos a partir de ellas (Roca-P&eacute;rez <i>et al.</i>, 2004). Por las razones anteriormente expuestas, es prioritario el desarrollo de estrategias biotecnol&oacute;gicas, espec&iacute;ficamente el cultivo de tejidos, para la producci&oacute;n de estos compuestos activos (Vanisree y Tsay, 2007).</p>     <p>En consecuencia, varios m&eacute;todos de cultivo <i>in vitro</i> de Digitalis spp. han sido descritos en la literatura cient&iacute;fica. Tal es el caso del cultivo de suspensiones celulares (Kreis <i>et al.</i>, 1986), cultivos embriog&eacute;nicos (Lindemann y Luckner, 1997), cultivo de ra&iacute;ces (Yoshimatzu <i>et al.</i>, 1990) y cultivo de brotes (Erdei <i>et al.</i>, 1981; Hagimori <i>et al.</i>, 1983). Adem&aacute;s, el cultivo <i>in vitro</i> ha brindado una excelente oportunidad para el desarrollo de investigaciones bioqu&iacute;micas encaminadas al conocimiento de las rutas que rigen la bios&iacute;ntesis de los carden&oacute;lidos (Gavidia <i>et al.</i>, 2007).</p>     <p>No obstante, los bajos rendimientos de carden&oacute;lidos obtenidos en estas investigaciones han impedido su aplicaci&oacute;n a escala comercial. En este sentido han sido ensayadas diversas alternativas con el objetivo de incrementar la producci&oacute;n de carden&oacute;lidos en el g&eacute;nero Digitalis, tales como cambios en la composici&oacute;n nutricional de los medios de cultivo, la biotransformaci&oacute;n, la adici&oacute;n de precursores y la modificaci&oacute;n gen&eacute;tica (Hagimori <i>et al.</i>, 1983; Saito <i>et al.</i>, 1990; Gurel <i>et al.</i>, 2010). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En el caso espec&iacute;fico de <i>D. purpurea</i>, por su importancia en la industria farmac&eacute;utica, existe una demanda creciente de tecnolog&iacute;as de producci&oacute;n alternativas al cultivo en condiciones naturales. El cultivo <i>in vitro</i> de c&eacute;lulas y tejidos permitir&iacute;a contar con sistemas de producci&oacute;n definidos, en condiciones controladas, as&iacute; como obtener rendimientos constantes del metabolito de inter&eacute;s (Paek <i>et al.</i>, 2005; Vanisree y Tsay, 2007). </p>     <p>El empleo de elicitores bi&oacute;ticos y abi&oacute;ticos constituye una estrategia para estimular la s&iacute;ntesis de metabolitos secundarios de plantas cultivadas <i>in vitro</i> (Zhang y Memelink, 2009). La elicitaci&oacute;n se ha descrito, mayormente, en el cultivo de suspensiones celulares, en cambio existen muy pocos ejemplos de su aplicaci&oacute;n en brotes cultivados <i>in vitro</i> (Liu <i>et al.</i>, 2007; Orlita <i>et al.</i>, 2008; Coste <i>et al.</i>, 2011). </p>     <p>Hasta el momento, en la literatura consultada s&oacute;lo existen dos precedentes del empleo de elicitores, ambas en <i>Digitalis lanata</i> Erhn (Ghanem <i>et al.</i>, 2010; P&eacute;rez-Alonso <i>et al.</i>, 2012). En su investigaci&oacute;n, Ghanem <i>et al.</i> (2010) compararon el efecto de la adici&oacute;n de &aacute;cido salic&iacute;lico, extracto de levadura y cloruro de calcio en brotes de <i>Digitalis lanata</i> Ehrh. propagados en medio de cultivo semis&oacute;lido, obteniendo los mayores contenidos de carden&oacute;lidos con 200 mM de cloruro de calcio. Por su parte, en previas investigaciones, P&eacute;rez-Alonso <i>et al.</i> (2012) describieron el efecto de la adici&oacute;n de elicitores en brotes cultivados en SIT. El ChitoPlant&reg; a la vez que favoreci&oacute; la producci&oacute;n de masa fresca y seca por SIT, provoc&oacute; un incremento en 3,2 veces el contenido de lanat&oacute;sido C, principal carden&oacute;lido de esta especie, respecto al control sin elicitar. Adem&aacute;s, se estableci&oacute; una correlaci&oacute;n (r=0,893; p<0,01) entre marcadores de estr&eacute;s oxidativo y el contenido de carden&oacute;lidos.   </p>     <p>Teniendo en cuenta estos antecedentes se estudi&oacute; el efecto de la adici&oacute;n de elicitores bi&oacute;ticos y abi&oacute;ticos sobre el contenido de carden&oacute;lidos y la respuesta morfol&oacute;gica en brotes de <i>D. purpurea</i>. Hasta el momento, no existen precedentes del efecto de los elicitores en estudio en <i>D. purpurea</i>.  </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>     <p>En esta investigaci&oacute;n se utiliz&oacute; como material vegetal plantas <i>in vitro</i> obtenidas a partir de semillas de <i>Digitalis purpurea</i> L. var. Roter Berggold. Las semillas fueron adquiridas en la empresa Pharmasaat GmbH (Alemania). Estas fueron desinfectadas seg&uacute;n el protocolo propuesto por Erdei <i>et al.</i> (1981). Las mismas fueron colocadas para su germinaci&oacute;n en c&aacute;mara de crecimiento con un fotoper&iacute;odo de 16 h con l&aacute;mparas fluorescentes de luz blanca, con una intensidad de flujo de fotones fotosint&eacute;ticos de 40 &micro;mol.m<sup>-2</sup>.s<sup>-1</sup> a 27&plusmn;2 &#186;C de temperatura. </p>     <p>Se emple&oacute; el medio de cultivo compuesto por las sales MS (Murashige y Skoog, 1962) suplementadas con 1,0 mg.L<sup>-1</sup> de tiamina y 30 g.L<sup>-1</sup> de sacarosa. Se utilizaron frascos de policarbamato de 500 mL de capacidad a los cuales se a&ntilde;adieron 50 mL de medio de cultivo. Las pl&aacute;ntulas obtenidas crecieron hasta alcanzar una altura aproximada de 4,0 cm. Las hojas y ra&iacute;ces de estas fueron cortadas. Los brotes con una altura aproximada de 2,0 cm y en segundo subcultivo fueron transferidos a un medio de cultivo propuesto por Erdei <i>et al.</i> (1981) modificado compuesto por sales MS (100%) suplementado con 1,0 mg.L<sup>-1</sup> de tiamina; 100 mg.L<sup>-1</sup> de mio-inositol; 1,0 mg.L<sup>-1</sup> de 6-bencilaminopurina (6-BAP); 0,1 mg.L<sup>-1</sup> de &aacute;cido indol-3-ac&eacute;tico (AIA) y 30 g.L<sup>-1</sup> de sacarosa. Se utilizaron 40 explantes por tratamiento. </p>     <p>Se ensayaron tres elicitores: jasmonato de metilo (MJ) (Duchefa NV, Holanda) (60, 80 y 100 &micro;M); ChitoPlant&reg; (ChP&reg;) (Quitosana, Chipro GmbH, Bremen, Alemania) ((0,001; 0,01; 0,1 g.L<sup>-1</sup>) y SilioPlant&reg; (SiP&reg;) (di&oacute;xido de silicio al 35% (p/v), Chipro GmbH, Bremen, Alemania) (0,01; 0,1; 1,0 g.L<sup>-1</sup>).Los mismos fueron a&ntilde;adidos al medio de cultivo referido anteriormente. El ChP&reg; y el SiP&reg; fueron a&ntilde;adidos previo a la esterilizaci&oacute;n. Para el MJ se prepar&oacute; una soluci&oacute;n en etanol a 100 mM y se esteriliz&oacute; por filtraci&oacute;n con una membrana de filtraci&oacute;n ANALIPORE&reg; (OSI) de celulosa est&eacute;ril, con una porosidad de 0,22 &micro;m.</p>     <p>Los brotes se cultivaron en c&aacute;mara de crecimiento con un fotoperiodo de 16 h con l&aacute;mparas fluorescentes de luz blanca, con una intensidad de flujo de fotones fotosint&eacute;ticos de 40 &micro;mol.m<sup>-2</sup>.s<sup>-1</sup> y ocho horas de oscuridad, a 27&plusmn;2 &#186;C de temperatura.</p>     <p>A los 28 d&iacute;as de cultivo se realizaron las evaluaciones morfol&oacute;gicas referentes a la altura, n&uacute;mero de brotes por explante, masa fresca y masa seca por frasco utilizado. Se cuantificaron los contenidos de digoxina y digitoxina. Se calcul&oacute; la producci&oacute;n neta de carden&oacute;lidos (&micro;g de carden&oacute;lidos por frasco de cultivo) teniendo en cuenta la masa seca obtenida por frasco de cultivo.   </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El protocolo de extracci&oacute;n que se emple&oacute; para la determinaci&oacute;n de carden&oacute;lidos fue el propuesto por Wichtl <i>et al.</i> (1982) con las modificaciones descritas por P&eacute;rez-Alonso <i>et al.</i> (2009). La detecci&oacute;n de carden&oacute;lidos se realiz&oacute; mediante cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n (HPLC, Agilent 1100) equipado con un detector de arreglo de diodos y una columna Inertsil ODS-3 (150x4,6 mm, 5&micro;m). Se inyectaron 10 &micro;l de la soluci&oacute;n final. Como solvente fue utilizado una mezcla de acetonitrilo (ACN)/agua (25:75) con un flujo de 1.5 ml.min-1. El gradiente vari&oacute; de la siguiente forma: inicio (25% ACN), 4 min (25% ACN), 34 min (37% ACN), 45 min (50% ACN), a partir de 60 min (25% ACN) hasta 65 min que termina el an&aacute;lisis. Todas las determinaciones fueron realizadas a una temperatura de 40 &#186;C. Los carden&oacute;lidos fueron detectados a una longitud de onda de 220 nm. La digitoxina y la digoxina fueron identificados seg&uacute;n el tiempo de retenci&oacute;n y comparados con los est&aacute;ndares obtenidos de una fuente comercial (SIGMA). </p>     <p>Para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico se utiliz&oacute; el programa SPSS ver. 18,0, para el sistema operativo Windows. Para la elaboraci&oacute;n de ficheros de datos y gr&aacute;ficos se utiliz&oacute; el programa EXCEL del paquete Microsoft Office 2007. Para comprobar los supuestos de normalidad se aplicaron las pruebas de Kolmogorov-Smirnov para muestras grandes, de Shapiro-Wilk para muestras peque&ntilde;as y de Levene para determinar la homogeneidad de varianza. Se aplicaron an&aacute;lisis no param&eacute;tricos en todos los datos puesto que no cumplieron los supuestos de normalidad y homogeneidad de la varianza. Se realiz&oacute; la prueba de Kruskal-Wallis para p&lt;0,05 de significaci&oacute;n y las diferencias estad&iacute;sticas entre los tratamientos fueron determinadas mediante la prueba de Mann Whitney con la penalizaci&oacute;n de Bonferroni.  </p>     <p><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></p>     <p>A partir de los resultados obtenidos se determin&oacute; que la elicitaci&oacute;n es una estrategia que influy&oacute; en la producci&oacute;n de biomasa y en el contenido de carden&oacute;lidos. La adici&oacute;n de elicitores al medio de cultivo de multiplicaci&oacute;n, en dependencia de la concentraci&oacute;n aplicada, provoc&oacute; cambios en el crecimiento y el desarrollo de los brotes de <i>D. purpurea</i>. Por su parte, los an&aacute;lisis por HPLC del contenido de carden&oacute;lidos revelaron la presencia de compuestos bioactivos en brotes de <i>D. purpurea</i> cultivados en medio de cultivo semis&oacute;lido. Los elicitores indujeron cambios significativos en la s&iacute;ntesis de carden&oacute;lidos con respecto al cultivo sin elicitar, los cuales se describen a continuaci&oacute;n.</p>     <p><b>ChitoPlant&reg;</b></p>     <p>La adici&oacute;n de ChitoPlant&reg; en las concentraciones evaluadas produjo una disminuci&oacute;n significativa en la altura de los brotes con respecto al tratamiento control sin elicitar (<a href="#f1">figura 1</a>A). Sin embargo, no se observaron diferencias significativas en el n&uacute;mero de brotes por explante ni en la masa fresca por frasco respecto al control ni entre las concentraciones ensayadas para cada elicitor. Contradictoriamente, se observ&oacute; en la variable masa seca un incremento significativo al emplearse la mayor concentraci&oacute;n de ChP (0,1 g.L<sup>-1</sup>) (<a href="#f1">figura 1</a>B). Esto pudo deberse al incremento de lignina y fenoles que provoca la quitosana seg&uacute;n Vasconsuelo y Boland (2007). </p>     <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/biote/v16n1/v16n1a07f1.jpg"></a></p>     <p>La adici&oacute;n de ChP en cualquiera de las tres concentraciones ensayadas increment&oacute; los contenidos de digoxina y de digitoxina con respecto al control sin elicitar (<a href="#f2">figura 2</a>). Sin embargo, entre las concentraciones de ChP evaluadas no se observaron diferencias significativas para los contenidos de digoxina ni digitoxina. </p>     <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/biote/v16n1/v16n1a07f2.jpg"></a></p>     <p>Medias con letras no comunes para cada carden&oacute;lido difieren estad&iacute;sticamente seg&uacute;n prueba de Kruskal-Wallis/Mann-Whitney para p&lt;0,05 (n=4)</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El ChP contiene como ingrediente activo la quitosana, un derivado de la quitina, componente que se encuentra en la pared celular de hongos, en insectos y crust&aacute;ceos (Mathew y Sankar, 2012). La quitosana activa mecanismos de defensa en las plantas estrechamente relacionados con la inducci&oacute;n de resistencia sist&eacute;mica al ataque de microorganismos (Agrawal <i>et al.</i>, 2002). Sin embargo, su efecto en la inducci&oacute;n de metabolitos secundarios no ha sido ampliamente investigado, lo que dificulta la comparaci&oacute;n de resultados en otras especies. En el cultivo de &oacute;rganos, pocos resultados muestran el efecto del ChP en la producci&oacute;n de biomasa y s&iacute;ntesis de metabolitos secundarios. En el g&eacute;nero Digitalis solo un estudio previo en <i>D. lanata</i> (P&eacute;rez-Alonso <i>et al.</i>, 2012) muestra el efecto del ChP para la producci&oacute;n de biomasa y carden&oacute;lidos y se obtuvo un incremento significativo en lanat&oacute;sido C (316 &micro;g.gMs<sup>-1</sup>).  </p>     <p>Los oligosac&aacute;ridos como el ChP, han sido descritos como potentes mol&eacute;culas se&ntilde;ales que regulan el crecimiento y desarrollo de las plantas (Sudha y Ravishankar, 2002). Ait Barka <i>et al.</i> (2004) describieron que una concentraci&oacute;n de 1,75% (v/v) en el medio de cultivo induce un incremento en el desarrollo de los explantes en <i>Vitis vin&iacute;fera</i> L., pero una concentraci&oacute;n de 2,0% (v/v) tuvo un efecto negativo en el cultivo. De manera similar, Kim <i>et al.</i> (2005) observaron un incremento en la altura y la masa fresca de plantas de <i>Ocimum basilicum</i> L. (17 y 12% respectivamente) as&iacute; como en el contenido de fenoles y terpenos con concentraciones de quitosana hasta 1,0 g.L<sup>-1</sup>. Estos resultados muestran que la quitosana provoc&oacute; un incremento en la bios&iacute;ntesis de los isoprenoides, aspecto que aplicado a los resultados del presente trabajo, corrobora el aumento del contenido de los carden&oacute;lidos ante el ChP como respuesta de defensa de la planta.</p>     <p><b>SilioPlant&reg;</b></p>     <p>El aumento de las concentraciones de SilioPlant&reg; afect&oacute; el desarrollo de los brotes. El tratamiento donde se emple&oacute; la menor concentraci&oacute;n del SiP mostr&oacute; un comportamiento similar al control en las variables evaluadas, excepto para la altura que disminuy&oacute; con el incremento de las concentraciones ensayadas (<a href="#f3">figura 3</a>A). En cuanto al n&uacute;mero de brotes por explante, la mayor concentraci&oacute;n del SiP provoc&oacute; una disminuci&oacute;n con respecto a los tratamientos evaluados y fue la &uacute;nica que mostr&oacute; diferencias significativas (<a href="#f3">figura 3</a>B). Para las variables masa fresca (<a href="#f3">figura 3</a>C) y masa seca por frasco (<a href="#f3">figura 3</a>D) se observ&oacute; un detrimento en las concentraciones de 0,1 y 1,0 g.L<sup>-1</sup>.  </p>     <p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/biote/v16n1/v16n1a07f3.jpg"></a></p>      <p>El SiP indujo un incremento en el contenido de digoxina y digitoxina excepto en la mayor concentraci&oacute;n (1,0 g.L<sup>-1</sup>) que provoc&oacute; una disminuci&oacute;n en el contenido de digoxina sin diferencias significativas respecto al control sin elicitor (<a href="#f4">figura 4</a>). </p>     <p align="center"><a name="f4"><img src="img/revistas/biote/v16n1/v16n1a07f4.jpg"></a></p>      <p>Los mayores valores de digoxina (10,0 &micro;g.gMs<sup>-1</sup>) y digitoxina (187,8 &micro;g.gMs<sup>-1</sup>) se alcanzaron en el tratamiento con 0,01 g.L<sup>-1</sup> de SiP, lo que corresponde a incrementos de 3,6 y 6,9 veces en el contenido de digoxina y digitoxina respectivamente, en comparaci&oacute;n con el control.  Resultados similares fueron observados por P&eacute;rez-Alonso <i>et al.</i> (2012) quienes alcanzaron un incremento de 2,2 veces el contenido de lanat&oacute;sido C respecto al control con 0,01 g.L<sup>-1</sup> de SiP. </p>     <p>Es de destacar, que a pesar de que todos los tratamientos con SiP incrementaron el contenido de digitoxina en los brotes respecto al control, se observ&oacute; una disminuci&oacute;n de su contenido con concentraciones mayores que 0,01 g.L<sup>-1</sup>.</p>     <p>Existen pocos antecedentes sobre la utilizaci&oacute;n de este elicitor en el cultivo <i>in vitro</i>, aunque el efecto beneficioso del silicio en la nutrici&oacute;n en plantas ha sido estudiado en condiciones naturales (Epstein, 2001). El silicio es un elemento bioactivo con un efecto positivo en el crecimiento de las plantas, mejora las propiedades mec&aacute;nicas de los tejidos, reduce la transpiraci&oacute;n y adem&aacute;s incrementa la resistencia de las plantas frente a organismos pat&oacute;genos (Fauteux <i>et al.</i>, 2005; Hammerschmidt, 2011). Sin embargo, ninguna de las concentraciones ensayadas provoc&oacute; una mayor producci&oacute;n de biomasa que en el control sin elicitar.   </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En la actualidad se desconoce la naturaleza exacta de la interacci&oacute;n del silicio con las rutas bioqu&iacute;micas relacionadas con la resistencia en plantas y por consiguiente en la acumulaci&oacute;n de metabolitos secundarios asociados a esta. Al respecto, Fauteux <i>et al.</i> (2005) encontr&oacute; que el silicio act&uacute;a en mecanismos comunes para todas las especies de plantas as&iacute; como en aquellos relacionados con la expresi&oacute;n de genes. Bonilla (2008) refiere que el &oacute;xido de silicio se acumula en la pared celular e incrementa su impermeabilidad y resistencia al ataque de pat&oacute;genos, no solo por constituir una barrera f&iacute;sica, sino tambi&eacute;n por configurar compuestos silico-org&aacute;nicos que son muy estables frente a las enzimas de los pat&oacute;genos. </p>     <p>El efecto positivo del SiP sugiere que este elicitor puede estar asociado con la acumulaci&oacute;n de metabolitos secundarios relacionados con los mecanismos de defensa en plantas como los carden&oacute;lidos. Sin embargo, no existen ejemplos alentadores que contribuyan a dilucidar su acci&oacute;n en el incremento de carden&oacute;lidos.   </p>     <p><b>Jasmonato de metilo</b></p>     <p>El jasmonato de metilo provoc&oacute; un efecto negativo en todas las variables evaluadas independientemente de las concentraciones estudiadas con diferencias significativas respecto al control (<a href="#f5">figura 5</a>). Al respecto, Howe (2004) afirma que uno de los efectos m&aacute;s notables de los jasmonatos ex&oacute;genos es la inhibici&oacute;n del crecimiento y Crozier <i>et al.</i> (2000) lo describen como un retardador del crecimiento en diversas especies.</p>     <p align="center"><a name="f5"><img src="img/revistas/biote/v16n1/v16n1a07f5.jpg"></a></p>      <p>Adem&aacute;s, en los primeros d&iacute;as de cultivo en los tratamientos con MJ los &aacute;pices de los brotes ten&iacute;an una coloraci&oacute;n violeta rojo p&aacute;lido y a los 28 d&iacute;as las hojas mostraban una coloraci&oacute;n verde p&aacute;lido similar al color de plantas con clorosis. Siguiendo a Zacar&iacute;as y Lafuente (2008), esto podr&iacute;a atribuirse a que la aplicaci&oacute;n del MJ provoca una disminuci&oacute;n en la expresi&oacute;n de los genes involucrados en la fotos&iacute;ntesis y una reducci&oacute;n en el contenido de clorofila en las hojas de las plantas. </p>     <p>Los metabolismos primario y secundario comparten rutas y precursores, en los cuales la utilizaci&oacute;n de fuentes nutricionales disponibles como el carbono y el nitr&oacute;geno dependen en parte de la presencia de un grado de estr&eacute;s que afecten a las plantas (Tisserat y Vaughn, 2008). Este estr&eacute;s puede ser ocasionado por elicitores, los cuales pueden activar rutas metab&oacute;licas que dan origen a los metabolitos secundarios, por lo que la planta desv&iacute;a parte del material del metabolismo primario para estos fines. Por esta raz&oacute;n, las plantas bajo tratamiento con elicitores pueden mostrar cambios morfol&oacute;gicos como disminuci&oacute;n o detenci&oacute;n del crecimiento. Este efecto supresor en el metabolismo primario ha sido descrito para el &aacute;cido jasm&oacute;nico por Coste <i>et al.</i> (2011) en brotes de <i>Hypericum hirsutum</i> L. e <i>Hypericum maculatum</i> Crantz. De igual manera, Hu <i>et al.</i> (2011) informaron de la reducci&oacute;n de la biomasa por el efecto del MJ en el cultivo de suspensiones celulares de <i>Fagopyrum esculentum </i>L. </p>     <p>La adici&oacute;n de MJ en las concentraciones ensayadas indujo variaciones en el contenido de digoxina y digitoxina (<a href="#f6">figura 6</a>). La mayor concentraci&oacute;n (100&micro;M) provoc&oacute; un incremento en el contenido de ambos carden&oacute;lidos con diferencias significativas respecto al control. El incremento de la digitoxina fue m&aacute;s notable (37 &micro;g.gMs<sup>-1</sup>) y difiri&oacute; significativamente con el resto de las concentraciones evaluadas. Mientras, el mayor valor de digoxina se alcanz&oacute; en el tratamiento con 80&micro;M (9,4 &micro;g.gMs<sup>-1</sup>) con diferencias significativas respecto al resto de los tratamientos, que equivale a un aumento de 3,3 veces con respecto al control. Estos resultados indican que el MJ podr&iacute;a influir diferencialmente en las enzimas asociadas a la producci&oacute;n de carden&oacute;lidos. </p>     <p align="center"><a name="f6"><img src="img/revistas/biote/v16n1/v16n1a07f6.jpg"></a></p>      <p>El efecto de los jasmonatos en el incremento de un metabolito y en el detrimento de otro, ha sido observado por Coste <i>et al.</i> (2011) en brotes de <i>H. hirsutum</i>. La inducci&oacute;n de metabolitos secundarios es uno de los efectos del MJ com&uacute;nmente observado (Kim <i>et al.</i>, 2007; Hu <i>et al.</i>, 2011; Mathew y Sankar, 2012). Autores como Gundlach <i>et al.</i> (1992) demostraron que la inducci&oacute;n por el jasmonato no es espec&iacute;fica para un tipo de metabolito, sino que influye de manera general en un amplio espectro de sustancias de bajo peso molecular tales como flavonoides, antraquinonas y varias clases de alcaloides. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Por su parte, Kim <i>et al.</i> (2009) indujeron cambios en el contenido de ginsen&oacute;sidos en el cultivo de ra&iacute;ces de <i>Panax ginseng</i> C.A. Meyer, mediante la elicitaci&oacute;n con el MJ. </p>     <p>Haciendo un an&aacute;lisis del efecto de los elicitores en la producci&oacute;n neta por frasco de cultivo (<a href="#t1">tabla 1</a>), los mejores resultados se alcanzaron en el tratamiento con 0,01 g.L<sup>-1</sup>de SiP (4,72 &micro;g de digoxina y 88,27 &micro;g de digitoxina). El segundo mejor resultado se obtuvo en el tratamiento con 0,1 g.L<sup>-1</sup> de ChP, que alcanz&oacute; una producci&oacute;n neta por frasco de cultivo de 4,95 &micro;g de digoxina y 36,88 &micro;g de digitoxina. Esta variable ha sido utilizada con el objetivo de evaluar las potencialidades del m&eacute;todo desarrollado para la producci&oacute;n a nivel comercial. A su vez, ratifica la importancia de la producci&oacute;n de biomasa para obtener una mayor producci&oacute;n de carden&oacute;lidos en <i>D. purpurea</i>.  </p>     <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/biote/v16n1/v16n1a07t1.jpg"></a></p>      <p>Estos resultados muestran que el tipo y el contenido de los carden&oacute;lidos dependen de la concentraci&oacute;n y del elicitor utilizado en el cultivo de brotes de <i>D. purpurea</i>. Este aspecto ha sido se&ntilde;alado por autores como Ruiz-May <i>et al.</i> (2009) quienes describieron que el tipo de alcaloides y su acumulaci&oacute;n en el cultivo de ra&iacute;ces de <i>Catharanthus roseus</i> L. estuvieron relacionados con ambos factores. </p>     <p>La acumulaci&oacute;n de metabolitos secundarios en plantas es considerada como una respuesta de defensa al ataque de pat&oacute;genos, la cual es activada por elicitores que act&uacute;an como compuestos de se&ntilde;alizaci&oacute;n de las respuestas de defensa en plantas (Namdeo, 2007; Pawar <i>et al.</i>, 2011). En Digitalis se conoce que la s&iacute;ntesis de carden&oacute;lidos ocurre como un mecanismo de defensa de la planta ante el ataque de insectos (Wink, 2010). </p>     <p>Teniendo en cuenta las valoraciones realizadas por P&eacute;rez-Berm&uacute;dez <i>et al.</i> (2010) sobre los genes relacionados con la ruta biosint&eacute;tica de los carden&oacute;lidos, espec&iacute;ficamente el P5&beta;R2 cuya expresi&oacute;n fue independiente del MJ, es posible que el incremento de estos con el MJ se deba a la interacci&oacute;n sin&eacute;rgica entre el etileno y el jasmonato y no al efecto aislado del MJ. Para ambos se ha descrito su contribuci&oacute;n significativa a la resistencia contra herb&iacute;voros (Onkokesung <i>et al.</i>, 2010). Los mecanismos de defensa en plantas est&aacute;n interconectados por una compleja red de rutas de se&ntilde;alizaci&oacute;n de hormonas (Pieterse <i>et al.</i>, 2009; Mej&iacute;a-Teniente <i>et al.</i>, 2010). Estas rutas responden a condiciones de estr&eacute;s o a elicitores, que modulan la bios&iacute;ntesis de compuestos de defensa como un resultado combinado de las acciones m&uacute;ltiples de se&ntilde;alizaci&oacute;n (Zhao <i>et al.</i>, 2005). </p>     <p>Aunque se han considerado muchas hip&oacute;tesis sobre los mecanismos de acci&oacute;n de los elicitores, a&uacute;n es necesario el estudio de los mismos. Los elicitores, a una concentraci&oacute;n apropiada, pueden actuar como mol&eacute;culas de se&ntilde;alizaci&oacute;n, las cuales son percibidas por un receptor presente en la membrana plasm&aacute;tica y que inicia la se&ntilde;al de transducci&oacute;n (Vasconsuelo y Boland, 2007). De esta manera, involucra la expresi&oacute;n de genes y la activaci&oacute;n de rutas metab&oacute;licas implicadas en la bios&iacute;ntesis del compuesto deseado. Al respecto, Orlita <i>et al.</i> (2008) consideraron que debido al escaso conocimiento de las rutas de bios&iacute;ntesis de los metabolitos secundarios, el efecto de un elicitor en el cultivo de c&eacute;lulas o de tejidos no es predecible. Al respecto, Bhagwath y Hjortso (2000) utilizaron un dise&ntilde;o factorial donde incluyeron varios factores para la producci&oacute;n de metabolitos secundarios en el cultivo de ra&iacute;ces de Ambrosia artemissifolia L. y notaron que la mayor&iacute;a de los m&eacute;todos de elicitaci&oacute;n son emp&iacute;ricos. </p>     <p>En el caso espec&iacute;fico de las especies de Digitalis, hay limitada informaci&oacute;n acerca de la acumulaci&oacute;n de carden&oacute;lidos mediante el uso de elicitores en el cultivo <i>in vitro</i>. En la literatura cient&iacute;fica consultada solo existe una investigaci&oacute;n desarrollada en <i>D. lanata</i> (Ghanem <i>et al.</i> 2010), quienes describen el estudio de elicitores como el &aacute;cido salic&iacute;lico, el extracto de levadura y el cloruro de calcio. Este &uacute;ltimo elicitor increment&oacute; el contenido total de carden&oacute;lidos 2,9 veces comparado con las plantas no elicitadas. </p>     <p>Los carden&oacute;lidos est&aacute;n constituidos por una genina o aglicona que contiene el n&uacute;cleo esteroidal y una secuencia de mol&eacute;culas de az&uacute;cares generalmente raros que se producen durante el ciclo de las pentosas como las digitoxosas (Pi&ntilde;ol <i>et al.</i>, 2008). En Digitalis la serie m&aacute;s com&uacute;n es la A pero la de mayor importancia es la C, la diferencia entre sus geninas est&aacute; en el grupo OH que tiene la digoxina en el carbono 12 mientras que la digitoxina tiene un grupo hidr&oacute;geno, puede ser que fen&oacute;menos como la hidroxilaci&oacute;n se vean  afectados por elicitores. Se desconoce cu&aacute;les variaciones encontradas en las series A y C son determinadas gen&eacute;ticamente o cu&aacute;les pueden ser causadas por factores ambientales o externos (Y&uuml;cesan, 2011). </p>     <p>Teniendo en cuenta los procesos relacionados con la s&iacute;ntesis de metabolitos secundarios podemos especular sobre su efecto en algunos aspectos b&aacute;sicos aunque no existen evidencias que confirmen los posibles mecanismos en los que influyen directamente los elicitores.  Estas pueden estar relacionadas con afectaciones en el metabolismo primario que modulan la expresi&oacute;n de mol&eacute;culas del metabolismo primario involucrado en el transporte a vacuolas donde se almacenan dichos metabolitos, limiten o favorezcan precursores de la ruta del &aacute;cido meval&oacute;nico descrita como ruta de bios&iacute;ntesis de carden&oacute;lidos (Kreis y M&uuml;ller-Uri, 2013).  Por otra parte pueden alterar la localizaci&oacute;n o la solubilidad de las enzimas, activar aquellas espec&iacute;ficas que regulan la s&iacute;ntesis de digitoxina, en detrimento de las enzimas que rigen la s&iacute;ntesis de digoxina. Las acetiltransferasas y glucosiltransferasas (Kreis <i>et al.</i>, 1986; Kandzia <i>et al.</i>, 1998) juegan importantes roles en la ruta biosint&eacute;tica de los carden&oacute;lidos y podr&iacute;a especularse que el ChP y en mayor medida el SiP, promovieran la glucosilaci&oacute;n y la acetilaci&oacute;n provocando un incremento en el contenido de los carden&oacute;lidos, aunque se requiere de nuevos experimentos para probar esta hip&oacute;tesis. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Como estrategia para estimular la s&iacute;ntesis de metabolitos secundarios, la elicitaci&oacute;n ha tenido una marcada aplicaci&oacute;n comercial en los &uacute;ltimos a&ntilde;os (Savitha <i>et al.</i>, 2006). A esto se le adiciona, que podr&iacute;an permitir el estudio de genes relacionados con la bios&iacute;ntesis de carden&oacute;lidos mediante la evaluaci&oacute;n de la expresi&oacute;n de los mismos ante el efecto del elicitor. </p>     <p><b>Conclusiones</b></p>     <p>Se demostr&oacute; que la elicitaci&oacute;n es una estrategia viable para el incremento de carden&oacute;lidos en brotes de <i>D. purpurea</i> en medio de cultivo semis&oacute;lido. El SilioPlant&reg; a raz&oacute;n de 0,01 g.L<sup>-1</sup> permiti&oacute; incrementar en 3,6 y 6,9 veces el contenido de digoxina y digitoxina respectivamente. </p>     <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>     <!-- ref --><p>1 Agrawal, GK.; Rakwal, R., Tamogami, S., Yonekura, M., Kubo, A., Saji, H. 2002. Chitosan activates defense/stress response(s) in the leaves of Oryza sativa seedlings. Plant Physiology & Biochemistry. 40: 1061-1069.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0123-3475201400010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2 Ait Barka, E., Eullaffroy, P., Cl&eacute;ment, C., Vernet, G. 2004. Chitosan improves development, and protects Vitis vinifera L. against Botrytis cinerea. Plant Cell Report. 22: 608-614.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0123-3475201400010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3 Bhagwath, SG., Hjortso, MA. 2000. Statistical analysis of elicitation strategies for thiarubineA production in hairy root cultures of Ambrosia artemisiifolia. Journal of Biotechnology. 80: 159-167.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0123-3475201400010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>4 Bonilla, I. 2008. Introducci&oacute;n a la nutrici&oacute;n mineral de las plantas. Los elementos minerales. En: Azc&oacute;n-Bieto, J., Tal&oacute;n, M. Fundamentos de fisiolog&iacute;a vegetal. Mc Graw Hill Interamericana, Madrid, pp 103-121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0123-3475201400010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5 Coste, A.; Vlase, L., Halmagyi, A.; Deliu, C.; Coldea, G. 2011. Effects of plant growth regulators and elicitors on production of secondary metabolites in shoot cultures of Hypericum hirsutum and Hypericum maculatum. Plant Cell Tissue & Organ Culture. 106: 279-288.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0123-3475201400010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>6 Crozier, A., Kamiya, Y., Bishop, G., Yokota, T. 2000. Biosynthesis of hormones and elicitor molecules. En: Buchanan, B., Gruissem, W., Jones, R. (Eds) Biochemistry and molecular biology of plants. American Society of Plant Physiologists, Rockville, pp 850-929.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0123-3475201400010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>7 Epstein, E. 2001. Silicon in plants: facts vs concepts. En: Datnoff LE, Snyder GH, Kornd&ouml;fer GH (Eds) Silicon in agriculture. Elsevier, Amsterdam, pp 1-16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0123-3475201400010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8 Erdei, I.; Kiss, Z.; Maliga, P. 1981. Rapid clonal multiplication of <i>Digitalis lanata</i> in tissue culture. Plant Cell Report. 1: 34-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0123-3475201400010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>9 Fauteux, F.; R&eacute;mus-Borel, W., Menzies, JG., B&eacute;langer, RR. 2005. Silicon and plant disease resistance gainst pathogenic fungi. FEMS Microbiology Letter. 249: 1-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0123-3475201400010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10 Fischer, R.; Twyman, RM.; Hellwig, S.; Drossard, J.; Schillberg, S. 2007. Facing the future with pharmaceuticals from plants. Proceedings of the 11th IAPTC&B Congress, Beijing, China. Dordrecht: Springer Netherland. pp 13-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0123-3475201400010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11 Gavidia, I.; Tarr&iacute;o, R.; Rodr&iacute;guez-Trelles, F.; P&eacute;rez-Berm&uacute;dez, P.; Seitz, H. 2007. Plant progesterone 5&#946; -reductase is not homologous to the animal enzyme. Molecular evolutionary characterization of P5&#946;R from <i>Digitalis purpurea</i>. Phytochemistry. 68: 853-864.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0123-3475201400010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12 Ghanem, SA.; Aboul-Enein, AM.; El-Sawy, A.; Rady, MR.; Ibrahem, MM. 2010. <i>in vitro</i> propagation and cardiac glycosides content of <i>Digitalis lanata</i>. International Journal of Academic Research. 2: 349-356.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0123-3475201400010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>13 Gundlach, H., M&uuml;ller, M., Kutchan, T., Zenk, M. 1992. Jasmonic acid is a signal transducer in elicitor-induced plant cell cultures. Proceedings of the National Academic of Science. USA 89: 2389-2393.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0123-3475201400010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>14 Gurel, E.; Y&uuml;cesan, B.; Aglic, E.; Gurel, S.; Verma, SK.; Sokmen, M.; Sokmen, A. 2010. Regeneration and cardiotonic glycoside production in Digitalis davisiana Heywood (Alanya Foxglove). Plant Cell Tissue & Organ Culture. 104: 217-225.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0123-3475201400010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>15 Hagimori, M.; Matsumoto, T.; Obi, Y. 1983. Effects of mineral salts, initial pH and precursors on digitoxin formation by shoot-forming cultures of <i>Digitalis purpurea</i> L. Grown in liquid media. Agriculture and Biological Chemistry. 47: 565-571.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0123-3475201400010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16 Hammerschmidt, R. 2011. More on silicon-induced resistance. Physiological & Molecular Plant Pathology. 75: 81-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0123-3475201400010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17 Hornberger, M.; B&ouml;ttigheimer, U.; Hillier-Kaiser, A.; Kreis, W. 2000. Purification and characterisation of the cardenolide-specific &#91;beta&#93;-glucohydrolase CGH II from <i>Digitalis lanata</i> leaves. Plant Physiology & Biochemistry. 38: 929-936.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0123-3475201400010000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>18 Howe, G. 2004. The roles of hormones in defense against insects and disease. Jasmonates. En: Davies P (Ed). Plant hormones: Biosynthesis, Signal transduction, Action! Kluwer Academic Publishers. pp 610-634.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0123-3475201400010000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>19 Hu, Y-H.; Yu, Y-T., Piao, C-H., Liu, J-M., Yu, H-S. 2011. Methyl jasmonate- and salicylic acid-induced D-chiro-inositol production in suspension cultures of buckwheat (Fagopyrum esculentum). Plant Cell Tissue & Organ Culture. 106: 419-424.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0123-3475201400010000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>20 Kandzia, R.; Grimm, R.; Eckerskorn, C.; Lindemann, P.; Luckner, M. 1998. Purification and characterization of lanatoside 15-O-acetylesterase from <i>Digitalis lanata</i> Ehrh. Planta. 204: 383-389.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0123-3475201400010000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21 Kim, HJ., Chen, F., Wang, X.; Rajapakse, NC. 2005. Effect of chitosan on the biological properties of sweet basil (Ocimum basilicum L.). Journal of Agricultural & Food Chemistry. 53: 3696-3701.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0123-3475201400010000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>22 Kim, OT.; Bang, KH., Kim, YC.; Hyun, DY.; Kim, MY.; Cha, SW. 2009. Upregulation of ginsenoside and gene expression related to triterpene biosynthesis in ginseng hairy root cultures elicited by methyl jasmonate. Plant Cell Tissue & Organ Culture 98: 25-33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0123-3475201400010000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>23 Kim, OT.; Bang, KH., Shin, YS., Lee, MJ., Jung, SJ., Hyun, DY., Kim, YC., Seong, NS., Cha, SW., Hwang, B. 2007. Enhanced production of asiaticoside from hairy root cultures of Centella asiatica (L.) Urban elicited by methyl jasmonate. Plant Cell Report. 26: 1941-1949.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0123-3475201400010000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>24 Kreis, W.; May, U.; Reinhard, E. 1986. UDP-glucose:digitoxin 162-O-glucosyltransferase  from suspension-cultured <i>Digitalis lanata</i> cells. Plant Cell Report. 5: 442-445.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0123-3475201400010000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>25 Kreis, W.; M&uuml;ller-Uri, F.  2013.  Cardenolide aglycone formation in Digitalis. En: Bach, TJ.; Rohmer, M. (Eds) Isoprenoid synthesis in plants and microorganisms: new concepts and experimental approaches. Springer Science+Business Media New York. pp 425-438.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0123-3475201400010000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>26 Kuate, SP.; P&aacute;dua, RM.; Eisenbeiss, WF.; Kreis, W. 2008. Puri?cation and characterization of malonyl-coenzyme A: 21-hydroxypregn-ane 21-O-malonyltransferase (Dp21MaT) from leaves of <i>Digitalis purpurea</i> L. Phytochemistry. 69: 619-626.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0123-3475201400010000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>27 Lewis, JA. 2009. Molecule of the month. Digoxin blocks tumor growth through HIF-1 inhibition. Current Topic in Medicinal Chemistry. 9: 117&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0123-3475201400010000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28 Lindemann, P.; Luckner, M. 1997. Biosynthesis of pregnane derivatives in somatic embryos of <i>Digitalis lanata</i>. Phytochemistry. 46: 507-513.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0123-3475201400010000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>29 Liu, XN.; Zhang, XQ.; Zhang, SX.; Sun, JS. 2007. Regulation of metabolite production by precursors and elicitors in liquid cultures of Hypericum perforatum. Plant Cell Tissue & Organ Culture. 91: 1-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0123-3475201400010000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>30 Mathew, R.; Sankar, PD. 2012. Effect of methyl jasmonate and chitosan on growth characteristics of Ocimum basilicum L., Ocimum sanctum L. and Ocimum gratissimum L. cell suspension cultures. African Journal of Biotechnology. 11: 4759-4766.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0123-3475201400010000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>31 Mej&iacute;a-Teniente, L.; Torres-Pacheco, I.; Gonz&aacute;lez-Chavira, MM.; Ocampo-Vel&aacute;zquez, RV.; Herrera-Ruiz, G.; Chapa-Oliver, AM.; Guevara-Gonz&aacute;lez, RG. 2010. Use of elicitors as an approach for sustainable agriculture. African Journal of Biotechnology. 9: 9155-9162.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0123-3475201400010000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>32 Murashige, T.; Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum. 15: 473-497.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0123-3475201400010000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>33 Namdeo, AG. 2007. Plant cell elicitation for production of secondary metabolites: a review. Pharmacognosis Reviews. 1: 69-79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0123-3475201400010000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>34 Onkokesung, N.; Baldwin, IT., G&aacute;lis, I. 2010. The role of jasmonic acid and ethylene crosstalk in direct defense of Nicotiana attenuate plants against chewing herbivores. Plant Signaling & Behavior. 5: 1305-1307.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S0123-3475201400010000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>35 Orlita, A.; Sidwa-Gorycka, M.; Kumirska, J.; Malinski, E.; Siedlecka, E.; Gajdus, J., Lojkowska, E., Stepnowski, P. 2008. Identification of Ruta graveolens L. metabolites accumulated in the presence of abiotic elicitors. Biotechnology Progress. 24: 128-133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0123-3475201400010000700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>36 Paek, KY.; Chakrabarty, D.; Hahn, EJ. 2005. Application of bioreactor systems for large scale production of horticultural and medicinal plants. Plant Cell Tissue & Organ Culture. 81: 287-300.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0123-3475201400010000700036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>37 Pawar, KD., Yadav, AV., Shouche, YS.; Thengane, SR. 2011. Influence of endophytic fungal elicitation on production of inophyllum in suspension cultures of Calophyllum inophyllum L. Plant Cell Tissue & Organ Culture. 106: 345-352.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0123-3475201400010000700037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>38 P&eacute;rez-Alonso, N.; Capote, A.; Gerth, A.; Jim&eacute;nez, E. 2012. Increased cardenolides production by elicitation of <i>Digitalis lanata</i> shoots cultured in temporary immersion systems. Plant Cell Tissue & Organ Culture. 110: 153-162.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000170&pid=S0123-3475201400010000700038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>39 P&eacute;rez-Alonso, N.; Wilken, D.; Gerth, A.; Jahn, A.; Nitzsche, HM.; Kerns, G.; Capote, A.; Jim&eacute;nez, E. 2009. Cardiotonic glycosides from biomass of <i>Digitalis purpurea</i> L. cultured in temporary immersion systems. Plant Cell Tissue & Organ Culture. 99: 151-156.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000172&pid=S0123-3475201400010000700039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>40 P&eacute;rez-Berm&uacute;dez, P.; Moya Garc&iacute;a, A.; Tu&ntilde;&oacute;n, I.; Gavidia, I. 2010. <i>Digitalis purpurea</i> P5&#946;R2, encoding steroid 5&#946;-reductase, is a novel defense-related gene involved in cardenolide biosynthesis. New Phytologist. 185: 687-700.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000174&pid=S0123-3475201400010000700040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>41 Pieterse, CM., Leon-Reyes, A., Van der Ent, S.; Van Wees, SC. 2009. Networking by small-molecule hormones in plant immunity. Nature Chemical Biology. 5:308-316.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000176&pid=S0123-3475201400010000700041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>42 Pi&ntilde;ol, MT.; Palaz&oacute;n, J.; Cusid&oacute;, RM. 2008. Introducci&oacute;n al metabolismo secundario. En: Azc&oacute;n-Bieto, J.; Tal&oacute;n, M. (Eds). Fundamentos de fisiolog&iacute;a vegetal. McGraw Hill Interamericana, Madrid. pp 323-348.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000178&pid=S0123-3475201400010000700042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>43 Roca-P&eacute;rez, L.; Boluda, R.; Gavidia, I.; P&eacute;rez-Berm&uacute;dez, P. 2004. Seasonal cardenolide production and Dop5br gene expression in natural populations of Digitalis obscura. Phytochemistry. 65: 1869-1878.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000180&pid=S0123-3475201400010000700043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>44 Ruiz-May, E., Galaz-&Aacute;valos, RM., Loyola-Vargas, VM. 2009. Differential secretion and accumulation of terpene indole alkaloids in hairy roots of Catharanthus roseus treated with methyl jasmonate. Molecular Biotechnology. 41: 278-285.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000182&pid=S0123-3475201400010000700044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>45 Saito, K.; Yamazaki, M.; Shimomura, K.; Yoshimatsu, K.; Murakoshi, I. 1990. Genetic transformation of foxglove (<i>Digitalis purpurea</i>) by chimeric foreign genes and production of cardioactive glycosides. Plant Cell Report. 9: 121-124.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000184&pid=S0123-3475201400010000700045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>46 Sales, E.; M&uuml;ller-Uri, F.; Nebauer, SG.; Segura, J.; Kreis, W.; Arillaga, I. 2011. Digitalis. En: Kole, C. (Ed) Wild crop relatives: genomic and breeding resources, plantation and ornamental crops. Springer-Verlag Berlin Heidelberg. pp 73-112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000186&pid=S0123-3475201400010000700046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>47 Savitha, BC.; Timmaraju, R.; Bhagyalaksami, N.; Ravishankar, GA. 2006. Different biotic and abiotic elicitors influence betalain production in hairy root cultures of Beta vulgaris in shake flask and bioreactor. Process Biochemistry. 41: 50-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000188&pid=S0123-3475201400010000700047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>48 Sudha, G., Ravishankar, G. 2002. Involvement and interaction of various signaling compounds on the plant metabolic events during defense response, resistance to stress factors, formation of secondary metabolites and their molecular aspects. Plant Cell Tissue & Organ Culture. 71: 181-212.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000190&pid=S0123-3475201400010000700048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>49 Tisserat, B.; Vaughn, S. 2008. Growth, morphogenesis, and essential oil production in Mentha spicata L. plantlets <i>in vitro</i>. <i>in vitro</i> Cellular & Developmental Biology-Plant. 44: 40-50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000192&pid=S0123-3475201400010000700049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>50 Vanisree, M.; Tsay, H-S. 2007. Plant cell cultures: Production of biologically important secondary metabolites from medicinal plants of Taiwan. En: Kayser, O.; Quax, W. (Eds) Medicinal plant biotechnology. From basic research to industrial application. WILEY-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA, Weinheim. pp 267-285.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000194&pid=S0123-3475201400010000700050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>51 Vasconsuelo, A.; Boland, R. 2007. Molecular aspects of the early stages of elicitation of secondary metabolites in plants. Plant Science. 172: 681-875.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000196&pid=S0123-3475201400010000700051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>52 Wichtl, M.; Mangkudidjojo, M.; Wichtl-Bleier, W. 1982. Hochleistungs-?&uuml;ssigkeits-chromatographische analyse von digitalis-blattext-rakten. Journal Chromatography. 234: 503-508.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000198&pid=S0123-3475201400010000700052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>53 Wink, M. 2010. Introduction: biochemistry, physiology and ecological functions of secondary metabolites. En: Wink, M. (Ed) Biochemistry of plant secondary metabolism. Annual Plant Rev. 40: 1-19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000200&pid=S0123-3475201400010000700053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>54 Yoshimatzu, K.; Satake, M.; Shimomura, K.; Sawada, J.; Terao, T. 1990. Determination of cardenolides in hairy root cultures of <i>D. lanata</i> by enzyme-linked immunosorbent assay. Journal of Natural Products. 53: 1498-1502.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000202&pid=S0123-3475201400010000700054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>55 Y&uuml;cesan, B. 2011. <i>in vitro</i> propagation and cardiac glycoside production in endemic Digitalis L. species de Anatolia. Thesis submitted to the graduate school of natural and applied sciences of the Abant Izzet Baysal University, Turkey. p. 99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000204&pid=S0123-3475201400010000700055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>56 Zacar&iacute;as, L.; Lafuente, MT. 2008. Etileno, &aacute;cido absc&iacute;sico y otros reguladores del desarrollo. En: Azc&oacute;n-Bieto, J., Tal&oacute;n, M. Fundamentos de fisiolog&iacute;a vegetal. McGraw Hill Interamericana, Madrid. pp 445-465.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000206&pid=S0123-3475201400010000700056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>57 Zhang, H.; Memelink, J. 2009. Regulation of secondary metabolism by jasmonate hormones. En: Osbourn, AE.; Lanzotti, V. (Eds). Plant-derived Natural Products. &copy; Springer Science + Business Media, LLC. pp 181-194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000208&pid=S0123-3475201400010000700057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>58 Zhao, J.; Davis, LC.; Verporte, R. 2005. Elicitor signal transduction leading to production of plant secondary metabolites. Biotechnology Advances. 23: 283-333.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000210&pid=S0123-3475201400010000700058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p></font>     ]]></body><back>
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