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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de las condiciones de crecimiento y composición del medio de cultivo sobre la producción de bacteriocina de Enterococcus mundtii Tw56]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Enterococcus mundtii Tw56 is a bacteriocin-producing strain that was isolated from intestinal content of silverside (Odontesthes sp.). The aim of the present work was to determine physicochemical factors and culture medium composition for higher yield of viable cells and bacteriocin production. No changes were observed in the antimicrobial production when glucose was replaced by fructose or maltose in the MRS medium formulation. On the other hand, highest bacteriocin activity was obtained when meat extract was used as a sole nitrogen source. While the maximun biomass was achieved at 35 ºC, the optimal temperatures for bacteriocin production were observed at 25 and 30 ºC. The optimal initial pH for cell growth and bioactivity was 6.5, both parameters dropped when the experience started at pH 6.0 or 5.5. Biomass formation and bacteriocin production decreased in the presence of sodium chloride. The strain started producing the bacteriocin at the late exponential phase. The activity increased as a function of the cell mass and reached the maximun at the end of exponential phase (12 h). A decrease of antimicrobial activity was observed in the stationary phase (16 h), possibly due to degradation by proteolitic enzimes.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">      <p><a href="http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v16n2.47238" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v16n2.47238</a></p>       <p align="right">ART&Iacute;CULO  CORTO</p>     <p><font size="4"><b>Efecto de las condiciones de crecimiento y  composici&oacute;n del medio</b> <b>de cultivo sobre la producci&oacute;n de bacteriocina de </b><b><i>Enterococcus</i></b> <b><i>mundtii </i></b><b>Tw56</b></font></p>     <p><b><font size="3">Effect of growth conditions  and culture medium composition</font></b> <font size="3"><b>on bacteriocin production  by <i>Enterococcus  mundtii </i>Tw56</b></font></p>     <p><b><i>Marisol Vallejo</i></b><b><i><sup>1</sup></i></b><b><i>, Pablo Ledesma</i></b><b><i><sup>2</sup></i></b><b><i>, Luciano  Anselmino</i></b><b><i><sup>3</sup></i></b><b><i>, Emilio Marguet</i></b><b><i><sup>4</sup></i></b>    <br>   <sup>1</sup> Doctora en Biologia. Catedra de Biologia Celular y Molecular.  Facultad de Ciencias Naturales (Sede Trelew). Universidad Nacional de la  Patagonia. Argentina. <a href="mailto:soltrelew@gmail.com">soltrelew@gmail.com</a>    <br>   <sup>2</sup> Licenciado en Biologia. Catedra de Biologia Celular y  Molecular. Facultad de Ciencias Naturales (Sede Trelew). Universidad Nacional  de la Patagonia. Argentina. <a href="mailto:reuteriar@yahoo.com">reuteriar@yahoo.com</a>    <br>   <sup>3</sup> Estudiante de la Licenciatura en Ciencias Biologicas.  Facultad de Ciencias Naturales (Sede Trelew). Universidad Nacional de la  Patagonia. Argentina. <a href="mailto:patxlu@hotmail.com">patxlu@hotmail.com</a>    <br>   <sup>4</sup> Doctor en Bioquimica. Catedra de Biologia Celular y  Molecular. Facultad de Ciencias Naturales (Sede Trelew). Universidad Nacional  de la Patagonia.  Argentina. <a href="mailto:emarguet@yahoo.com.ar">emarguet@yahoo.com.ar</a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Recibido: </b>noviembre 18 de 2013 <b>Aprobado: </b>septiembre 18 de 2014</p> <hr>     <p><b>Resumen</b></p>     <p><i>Enterococcus mundtii </i>Tw56  es una cepa productora de bacteriocina que fue aislada del contenido intestinal  de pejerrey    (<i>Odontesthes sp</i>.).  El objetivo del presente trabajo fue determinar los factores fisicoqu&iacute;micos y  la composici&oacute;n del medio   de  cultivo para lograr un mayor rendimiento de c&eacute;lulas viables y producci&oacute;n de  bacteriocina. No se observaron cambios   en  la producci&oacute;n del antimicrobiano cuando la glucosa fue sustituida por fructosa  o maltosa en la formulaci&oacute;n del medio   MRS.  Por el contrario, la mayor actividad de las bacteriocinas se obtuvo cuando se  utiliz&oacute; el extracto de carne como fuente  &uacute;nica  de nitr&oacute;geno. Mientras que la m&aacute;xima biomasa se alcanz&oacute; a 35 &deg;C, las  temperaturas &oacute;ptimas para la producci&oacute;n de   bacteriocina  se observaron a 25 y 30 &deg;C. El pH inicial &oacute;ptimo para el crecimiento celular y  bioactividad fue 6,5, ambos   par&aacute;metros  disminuyeron cuando la experiencia comenz&oacute; a pH 6,0 o 5,5. La formaci&oacute;n de  biomasa y la producci&oacute;n de   bacteriocina  disminuyeron en presencia de cloruro de sodio. La cepa comenz&oacute; a producir  bacteriocina en la fase exponencial   tard&iacute;a.  La actividad aument&oacute; en funci&oacute;n de la masa celular y alcanz&oacute; el m&aacute;ximo al final  de la fase exponencial (12   h).  Una disminuci&oacute;n de la actividad antimicrobiana se observ&oacute; en la fase  estacionaria (16 h), posiblemente debido a la degradaci&oacute;n  por enzimas proteol&iacute;ticas.</p>     <p><b>Palabras clave: </b><i>Enterococcus  mundtii </i>Tw56, bacteriocina, factores  fisicoqu&iacute;micos, medio de cultivo.</p>     <p><b>Abstract</b></p>     <p><i>Enterococcus mundtii </i>Tw56 is a  bacteriocin-producing strain that was isolated from intestinal content of  silverside (<i>Odontesthes</i> <i>sp</i>.). The aim of the present work was to  determine physicochemical factors and culture medium composition for   higher yield of viable cells and  bacteriocin production. No changes were observed in the antimicrobial  production when   glucose was replaced by fructose or maltose in the MRS medium formulation. On the other hand, highest bacteriocin  activity   was obtained when meat extract was used  as a sole nitrogen source. While the maximun biomass was achieved at   35 &#186;C, the optimal temperatures for  bacteriocin production were observed at 25 and 30 &#186;C. The optimal initial pH  for cell   growth and bioactivity was 6.5, both  parameters dropped when the experience started at pH 6.0 or 5.5. Biomass  formation   and bacteriocin production decreased in  the presence of sodium chloride. The strain started producing the bacteriocin  at   the late exponential phase. The activity  increased as a function of the cell mass and reached the maximun at the end of   exponential phase (12 h). A decrease of  antimicrobial activity was observed in the stationary phase (16 h), possibly due to degradation  by proteolitic enzimes.</p>     <p><b>Key words</b>: <i>Enterococcus mundtii </i>Tw56, bacteriocin,  physicochemical factors, culture medium.</p> <hr>     <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>     <p>Las bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas (BAL) constituyen un grupo   bacteriano utilizado tradicionalmente en fermentaciones   industriales de alimentos de origen l&aacute;cteo, vegetal   o c&aacute;rnico (Cleveland <i>et al.</i>, 2001). Estos microorganismos   contribuyen al desarrollo de aroma, sabor y   textura de los productos fermentados. Sin embargo,   su efecto no se limita a brindar una calidad sensorial   determinada a los alimentos, sino que las BAL son   tambi&eacute;n responsables de su preservaci&oacute;n, evitando   el desarrollo de microorganismos contaminantes o   pat&oacute;genos (O&#39;Sullivan <i>et al.</i>, 2002). Esta propiedad   particular se debe a la producci&oacute;n de metabolitos con   actividad antimicrobiana inespec&iacute;fica como &aacute;cido l&aacute;ctico,  &aacute;cido ac&eacute;tico, per&oacute;xido de hidr&oacute;geno, diacetilo y   etanol. En forma adicional, algunas cepas de BAL tienen   la propiedad de sintetizar bacteriocinas, p&eacute;ptidos   de s&iacute;ntesis ribosomal que act&uacute;an en forma espec&iacute;fica   sobre la membrana de bacterias filogen&eacute;ticamente relacionadas (Dobson <i>et al.</i>, 2012).</p>     <p>Las bacteriocinas producidas por BAL est&aacute;n categorizadas   en 3 diferentes grupos: Clase I o lantibi&oacute;ticos,   peque&ntilde;os p&eacute;ptidos modificados luego de la traducci&oacute;n   que contienen amino&aacute;cidos inusuales como la   lantionina; Clase II, subdividida en las subclases IIa, IIb   y IIc, constituida por bacteriocinas que no sufren modificaciones   luego de su s&iacute;ntesis y Clase III, p&eacute;ptidos termosensibles (Klaenhammer, 1993; Nes <i>et al.</i>, 1996).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Durante los &uacute;ltimos a&ntilde;os se ha desarrollado un especial    inter&eacute;s por el estudio de bacteriocinas de la clase   IIa para su potencial uso en preservaci&oacute;n de alimentos   puesto que presentan actividad contra pat&oacute;genos de origen alimentario como <i>Listeria monocytogenes</i>, <i>Staphylococcus</i> <i>aureus</i>, <i>Bacillus cereus </i>y <i>Clostridium botulinum</i> (Gillor <i>et al</i>., 2008).</p>     <p>Dentro de las BAL, la familia <i>Enterococcus </i>exhibe  una    alta frecuencia de cepas productoras de bacteriocinas,   especialmente de la clase IIa. Su inclusi&oacute;n en procesos   fermentativos de alimentos no s&oacute;lo responde a esta   caracter&iacute;stica fisiol&oacute;gica, sino que adem&aacute;s este grupo   posee actividades enzim&aacute;ticas degradativas que conjuntamente   a la utilizaci&oacute;n de citrato, contribuyen al   desarrollo de sabores y aromas t&iacute;picos (Franz <i>et al</i>., 2007).</p>     <p>Su utilizaci&oacute;n en alimentaci&oacute;n humana y/o animal    resulta controversial puesto que algunas especies de   esta familia se encuentran relacionadas con enfermedades   nosocomiales como endocarditis, bacteriemia e   infecciones p&eacute;lvicas, abdominales y del sistema nervioso.   Sin embargo, las especies vinculadas a patolog&iacute;as   humanas quedan limitadas a <i>E. faecalis </i>y <i>E. faecium</i>  mientras que las restantes resultan agentes etiol&oacute;gicos infrecuentes (Sabia <i>et al</i>., 2008).</p>     <p>La exigencia de alimentos naturales impuesta por los    consumidores, ha inducido al estudio de bacteriocinas   y de bacterias productoras. La inclusi&oacute;n de antimicrobianos   naturales o de cepas bacteriocinog&eacute;nicas se   presenta como una alternativa viable para reemplazar   a los conservantes qu&iacute;micos (O&#39;Sullivan <i>et al</i>., 2002; Settanni <i>et al</i>., 2008).</p>     <p>La preservaci&oacute;n de alimentos, utilizando producci&oacute;n<i> in situ</i>, o la bacteriocina purificada o semipurificada,    requiere estudiar y definir la relaci&oacute;n entre las condiciones   fisicoqu&iacute;micas y el nivel de s&iacute;ntesis con el prop&oacute;sito   de optimizar la actividad antimicrobiana. La   producci&oacute;n de p&eacute;ptidos espec&iacute;ficos est&aacute; influenciada   por el pH, la temperatura, la composici&oacute;n del medio,   la densidad celular y la fase de crecimiento (Delgado  <i>et al</i>., 2005;  Aktypis <i>et  al</i>., 2007,  Todorov y Dicks,   2009, Kanmani <i>et  al</i>., 2011;  Metsoviti <i>et  al</i>., 2011). Algunos   autores describen una asociaci&oacute;n directa entre   la densidad celular y la producci&oacute;n de una determinada   bacteriocina, sin embargo esta relaci&oacute;n no siempre   se corresponde con el incremento de la s&iacute;ntesis del antimicrobiano (Avonts <i>et  al</i>., 2004,  Aktypis <i>et  al</i>., 2007).</p>     <p>En este estudio evaluamos la influencia de la composici&oacute;n    del medio de cultivo, la temperatura, el pH, la   concentraci&oacute;n de NaCl y la fase de crecimiento sobre   la producci&oacute;n de bacteriocina de la cepa <i>E. mundtii</i>     Tw56. Esta BAL fue aislada del contenido intestinal de   pejerrey (<i>Odontesthes sp</i>.)  y seleccionada posteriormente   sobre la base de su actividad espec&iacute;fica antilisteria (Marguet <i>et al</i>., 2011).</p>     <p><b><font size="3">Materiales y m&eacute;todos</font></b></p>     <p><b><i>Microorganismo e identificaci&oacute;n  fenot&iacute;pica</i></b></p>     <p>La cepa <i>Enterococcus mundtii </i>Tw56, aislada previamente   del contenido intestinal de pejerrey (<i>Odontesthes</i> <i>sp</i>.), se obtuvo de la colecci&oacute;n perteneciente al   Laboratorio de Biolog&iacute;a Celular y Molecular (Facultad   de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de la Patagonia).   La identificaci&oacute;n fenot&iacute;pica, a nivel de g&eacute;nero   y especie, se llev&oacute; a cabo seg&uacute;n las recomendaciones   de Manero y Blanch (1999) La cepa se reactiv&oacute; con   sucesivos cultivos en caldo y agar De Man, Rogosa   y Sharp (MRS, Biokar, Francia) y se conserv&oacute; en leche   descremada suplementada con glicerol al 10 %  a -30 &deg;C.</p>     <p><b><i>Identificaci&oacute;n genot&iacute;pica</i></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Luego de una incubaci&oacute;n a 35 &deg;C durante 12 h en   caldo MRS, la cepa se centrifug&oacute; a 12000 g a 4 &deg;C durante   5 min. y el ADN se extrajo utilizando un equipo   comercial de purificaci&oacute;n Wizard Genomics (Promega,   Madison, Wisconsin, EE.UU.), siguiendo las instrucciones del fabricante.</p>     <p>Mediante la reacci&oacute;n de PCR se amplific&oacute; el gen que    codifica el ARNr 16S, con un termociclador Mastercycler   Personal (Eppendorf, Hamburgo, Alemania),   usando los cebadores universales para procariotas 5&#039;- AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG- 3&#039; y 5&#039;- GGT TAC   CTT GTT ACG ACT T -  3&#039;, seg&uacute;n lo descrito por DeLong   (1992). Ambas hebras de los productos de PCR se secuenciaron   utilizando los servicios comerciales de Macrogen   Inc. (Se&uacute;l, Corea). Las secuencias obtenidas se   compararon con las depositadas en la base de datos   del NCBI (National  Center for Biotechnology Information)   utilizando el programa BLAST (Basic Local  Alignment Search Tool).</p>     <p><b><i>Ensayos antimicrobianos de los  sobrenadantes</i></b></p>     <p>  La actividad antibacteriana se determin&oacute; luego de   cultivar la cepa <i>E. mundtii </i>Tw56  seg&uacute;n los par&aacute;metros   establecidos en cada experiencia. Luego del per&iacute;odo   de incubaci&oacute;n, el cultivo se centrifug&oacute; a 8000 g a 4 &deg;C   durante 10 min. En todos los casos el sobrenadante   libre de c&eacute;lulas (SLC) se ajust&oacute; a pH 6,8 con NaOH   0,5 M (Anedra, Argentina) y se someti&oacute; a un calentamiento   de 100 &deg;C durante 5 min. Posteriormente, el   SLC se filtr&oacute; utilizando membranas Sartorius de 0,22 &mu;m de di&aacute;metro de poro (Sartorius, Alemania) y se almacen&oacute;   a -30 &deg;C hasta la realizaci&oacute;n de los ensayos. La determinaci&oacute;n cuantitativa de la actividad de los sobrenadantes se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en placa. Se colocaron 50 &mu;l de diluciones sucesivas del SLC en pocillos (6 mm de di&aacute;metro)  practicados en placas de agar Tripticasa Soja (Britania, Argentina), sembrados previamente con 50 &mu;l de un cultivo (0,5 de la escala Mc Farland) de <i>Listeria  innocua </i>ATCC 33090. Las placas se mantuvieron a 4-8 &deg;C durante 2 h y luego se incubaron a 30 &deg;C durante 24 h. La actividad se defini&oacute; como la rec&iacute;proca de la diluci&oacute;n m&aacute;s alta que exhibi&oacute; inhibici&oacute;n completa de la bacteria blanco en la placa inoculada y se expres&oacute; en unidades arbitrarias (AU) por mililitro de SLC. (Floriano <i>et al</i>., 1998).</p>     <p><b><i>Evaluaci&oacute;n de la poblaci&oacute;n bacteriana</i></b></p>     <p>La poblaci&oacute;n bacteriana de los cultivos se determin&oacute;    midiendo la densidad &oacute;ptica (DO) a 600 nm en un   espectrofot&oacute;metro Jenway 6400. La conversi&oacute;n a biomasa   celular, expresada en g/L, se realiz&oacute; de acuerdo   a la correlaci&oacute;n entre la DO y el peso celular seco (Delgado <i>et al</i>., 2005).</p>     <p><b><i>Fuentes de nitr&oacute;geno y carbono</i></b></p>     <p>Para determinar la influencia de las fuentes de nitr&oacute;geno    y carbono sobre la producci&oacute;n de bacteriocinas se   utiliz&oacute; la f&oacute;rmula del caldo MRS original introduciendo   las modificaciones correspondientes. En el caso de las   fuentes de nitr&oacute;geno se reemplazaron los 10 g/L de   pluripeptona y 10 g/L de extracto de carne que componen   originalmente la f&oacute;rmula del medio citado por   20 g/L de las siguientes fuentes proteicas: bactopeptona  &reg; (Difco), casamino&aacute;cidos&reg; (Difco), extracto de   carne (Biokar), peptona (Merck) y triptona&reg; (Merck).   En el caso de las fuentes de carbono, los 20 g/L de   glucosa del medio original se reemplazaron por igual   concentraci&oacute;n de los siguientes az&uacute;cares: fructosa   (Fluka), lactosa (Fluka), sacarosa (Mallinckrodt) y maltosa   (Fluka). Todas las experiencias se realizaron a 25&deg;C y con un pH inicial de 6,5.</p>     <p><b><i>Factores fisicoqu&iacute;micos</i></b></p>     <p>La influencia del pH inicial sobre la actividad de los    SLC de ensay&oacute; con valores de 6,5;  6,0 y 5,5 a 25 &deg;C.   Con el mismo prop&oacute;sito de determin&oacute; la actividad en   caldo MRS suplementado con NaCl en concentraciones   de 5, 10, 20, 40, y 60 g/L a 25 &deg;C.   La influencia de la temperatura sobre la producci&oacute;n de   bacteriocinas se determin&oacute; en caldo MRS comercial a 20, 25, 30, 35, 40 y 45 &deg;C.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Curva de crecimiento vs actividad</i></b></p>     <p>Se determin&oacute; la curva de crecimiento y la actividad   de la bacteriocina producida en las condiciones &oacute;ptimas   determinadas en los ensayos descritos, durante   un per&iacute;odo de 24 h. Se tomaron muestras en forma   as&eacute;ptica cada 2 h para determinar su densidad &oacute;ptica   (DO) a 600 nm y su actividad (UA) seg&uacute;n lo descrito anteriormente.</p>     <p><b><i>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</i></b></p>     <p>Todos los ensayos se realizaron por triplicado; los    promedios, desv&iacute;os est&aacute;ndar y an&aacute;lisis de la varianza   (ANOVA) se calcularon mediante el uso del programa   estad&iacute;stico HyperStat. El ANOVA se aplic&oacute; para establecer diferencias significativas (p&le;0,05).</p>     <p><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></p>     <p>La identificaci&oacute;n bioqu&iacute;mica de <i>E. mundtii </i>Tw56  se   confirm&oacute; por identificaci&oacute;n genot&iacute;pica mediante el secuenciamiento   del gen ARNr 16S y posterior comparaci&oacute;n   con las secuencias existentes en la base de datos   del GenBank. Las 1396 bases secuenciadas exhibieron   un 100% de homolog&iacute;a con la secuencia del gen ARNr 16S de la cepa <i>E. mundtii </i>ATCC  43186.</p>     <p>El efecto de la temperatura sobre la producci&oacute;n de    bacteriocina se estudi&oacute; en caldo MRS comercial en   un rango de 20 &deg;C a 45 &deg;C. Exceptuando el ensayo   a 45 &deg;C, temperatura donde no se detect&oacute; actividad,   en todos los otros casos la producci&oacute;n pudo ser demostrada   a partir de la fase logar&iacute;tmica y llegando al m&aacute;ximo al final de la misma.</p>     <p>La m&aacute;xima producci&oacute;n se logr&oacute; a 25 y 30 &deg;C (<a href="#tab1">tabla 1</a>) mientras que la m&aacute;xima poblaci&oacute;n se alcanz&oacute; a los   35 &deg;C, temperatura &oacute;ptima para el crecimiento de <i>E.</i> <i>mundtii</i>. Estos resultados demuestran que no necesariamente   existe asociaci&oacute;n entre el nivel de actividad antibi&oacute;tica y el crecimiento de la cepa (Delgado <i>et al</i>.,   2005).  Un dato relevante es que a 45 &deg;C no se detect&oacute;   producci&oacute;n  de bacteriocina, sin embargo la cepa logr&oacute;   altos  niveles poblacionales (1,91&plusmn;0,09 g/L), caracter&iacute;stica   de  muchas especies de enterococos. Este resultado   no  est&aacute; de acuerdo con los exhibidos en trabajos   previos  que muestran s&oacute;lo una disminuci&oacute;n marcada del  nivel de actividad a la temperatura citada. (Zendo <i>et al</i>., 2005;  Settanni <i>et al</i>., 2008; Kanmani <i>et  al</i>., 2011).</p>     <p align="center"><a name="tab1"></a><img src="img/revistas/biote/v16n2/v16n2a21tab1.jpg"></p>     <p>Se  realizaron, en forma adicional, ensayos a m&aacute;s bajas    temperaturas  y se detect&oacute; tanto crecimiento como actividad   hasta  8 &deg;C (datos no mostrados).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La  variaci&oacute;n de la actividad con respecto al pH inicial   del  medio de cultivo se ensay&oacute; en caldo MRS a 25 &deg;C   ajustando  el pH a 6,5; 6,0 y 5,5. Los mejores resultados   se  lograron cuando la experiencia se realiz&oacute; a partir de   un  pH inicial de 6,5; valor aproximado al pH original   del  medio (6,8). En los 2 restantes casos se obtuvieron valores  menores al obtenido a pH 6,5 (<a href="#tab1">tabla 1</a>).</p>     <p>Estos  datos coinciden con los publicados por otros    autores  y en consecuencia se podr&iacute;a afirmar que la   mayor  producci&oacute;n se logra partiendo de un medio de   cultivo  con valores de pH aproximados al &oacute;ptimo para    el  crecimiento de <i>E. mundtii </i>(Kanmani <i>et al</i>., 2001; Todorov   y  Dicks, 2009). Algunas experiencias realizadas   en  fermentadores a pH estable (6,5-7,0) no parecen   mostrar  resultados promisorios. En la mayor&iacute;a de los   casos  el descenso de pH parece estar vinculado a una   mayor  producci&oacute;n de antimicrobiano (Guerra y Pastrana, 2003;  Aktypis <i>et al</i>., 2007).</p>     <p>La  bibliograf&iacute;a exhibe resultados contradictorios con   respecto  al efecto producido por la adici&oacute;n de NaCl   a  los medios de cultivo sobre la actividad espec&iacute;fica.   Algunos  autores afirman que la presencia de peque&ntilde;as   concentraciones  de Na+ aumentar&iacute;a  la actividad   en  cepas de BAL productoras  de bacteriocinas (Neysens  <i>et al</i>., 2003;  Delgado <i>et al</i>., 2005). Sin embargo,   desde  el punto de vista fisiol&oacute;gico esta afirmaci&oacute;n no   presenta  argumentos aceptables; el Na+ es un cati&oacute;n   que  las BAL no  utilizan en sus reacciones bioqu&iacute;micas   (Devriese  y Pot, 1995). Su presencia en medios de cultivo implica  la necesidad de eliminarlo del citosol por   diversos  mecanismos de transporte que necesitan, en   todos  los casos, gasto de energ&iacute;a. Los resultados obtenidos   en  esta experiencia afirmar&iacute;an esta posici&oacute;n: en   todos  los casos donde fue adicionado NaCl se produjo   una  disminuci&oacute;n de la producci&oacute;n del antimicrobiano   y  a concentraciones superiores a 1 %, el descenso fue a&uacute;n  m&aacute;s marcado (<a href="#tab1">tabla 1</a>).</p>     <p>La  selecci&oacute;n de una adecuada fuente de carbono resulta    importante  para lograr una r&aacute;pida duplicaci&oacute;n   celular  y alcanzar una poblaci&oacute;n suficiente que pueda   sintetizar  altos niveles de bacteriocinas. La mayor actividad   se  logr&oacute; cuando se incluy&oacute; en la formulaci&oacute;n   fructosa  o maltosa, resultados comparables con la glucosa,   az&uacute;car  empleado en el medio original. La utilizaci&oacute;n   de  lactosa exhibi&oacute; una alta poblaci&oacute;n final pero   con  una marcada disminuci&oacute;n de la actividad, mientras   que  la inclusi&oacute;n de sacarosa en el medio de cultivo   mostr&oacute;,  no s&oacute;lo una baja producci&oacute;n de bacteriocinas   sino  tambi&eacute;n un bajo nivel poblacional final, fen&oacute;meno   que  indicar&iacute;a alguna dificultad en el transporte o en   el  metabolismo de este disac&aacute;rido (<a href="#tab2">tabla 2</a>). Estos resultados   coinciden  con los exhibidos en trabajos previos (Settanni <i>et al</i>., 2008; Todorov y Dicks, 2009).</p>     <p align="center"><a name="tab2"></a><img src="img/revistas/biote/v16n2/v16n2a21tab2.jpg"></p>     <p>Una  de las claves en la optimizaci&oacute;n de la producci&oacute;n   de  bacteriocinas constituye la elecci&oacute;n de la fuente de   nitr&oacute;geno.  En nuestra experiencia se reemplazaron de   la  f&oacute;rmula original del caldo MRS los 20 g/L correspondientes   a  sus 2 fuentes de N (pluripeptona y extracto   de  carne) por igual concentraci&oacute;n de una &uacute;nica fuente   y  manteniendo en forma constante la concentraci&oacute;n indicada  para el extracto de levadura (5g/L).</p>     <p>Los  mejores resultados como se puede observar en   la  <a href="#tab2">tabla 2</a> se obtuvieron cuando se utiliz&oacute; extracto de   carne  como fuente de N (40.960 UA/mL), duplicando   la  actividad obtenida en el control. El extracto de   carne  es uno de los derivados proteicos m&aacute;s costosos,   sin  embargo, analizando los resultados obtenidos   constituye,  en este caso, una buena elecci&oacute;n para la producci&oacute;n  de bacteriocinas.</p>     <p>Algunos  trabajos vinculados con la producci&oacute;n de    p&eacute;ptidos  con capacidad antibi&oacute;tica sugieren elevar la   concentraci&oacute;n  de fuentes de nitr&oacute;geno para obtener   niveles  m&aacute;s altos de actividad (Kanmani <i>et  al,</i>2011).   Sin  embargo, esto aumenta mucho el costo del medio   de  cultivo y adem&aacute;s las altas concentraciones de   derivados  proteicos act&uacute;an como amortiguadores del   pH  impidiendo la acidificaci&oacute;n del medio. Este efecto,   como  explicamos anteriormente en el caso de <i>E.</i><i>mundtii </i>Tw56,  disminuye la s&iacute;ntesis de bacteriocinas y   en  consecuencia no resulta recomendable.   En  la <a href="#fig1">figura 1</a> se puede observar la evoluci&oacute;n del crecimiento   de  la poblaci&oacute;n, expresada en DO relativa   y  la actividad antibi&oacute;tica en funci&oacute;n del tiempo. Para   esta  experiencia se cultiv&oacute; la cepa en estudio utilizando   en  la formulaci&oacute;n las mejores condiciones para la   producci&oacute;n  de bacteriocina: fructosa como fuente de   carbono,  extracto de carne como fuente de nitr&oacute;geno,   se  ajust&oacute; el pH a 6,5; no se adicion&oacute; NaCl y se incub&oacute;   a  25 &deg;C. La gr&aacute;fica nos muestra una fase lag corta   seguida  por una fase logar&iacute;tmica que lleg&oacute; al m&aacute;ximo   de  poblaci&oacute;n a las 12 h de incubaci&oacute;n. La actividad de   la  bacteriocina se detect&oacute; a partir de las 6 h de incubaci&oacute;n   y  lleg&oacute; a su m&aacute;ximo a las 12 h donde alcanz&oacute;   las  40.960 UA/mL. Luego de las 16 h se observ&oacute; una   disminuci&oacute;n  dr&aacute;stica de la actividad, fen&oacute;meno que   coincide  con lo descrito en anteriores trabajos (Todorov   y  Dicks, 2009; Kanmani <i>et al</i>., 2011). La mol&eacute;cula   de  bacteriocina es un p&eacute;ptido muy estable en un amplio   rango  de pH y temperatura, en consecuencia esta   disminuci&oacute;n  de la capacidad antibi&oacute;tica no deber&iacute;a atribuirse a  las condiciones fisicoqu&iacute;micas del medio   de cultivo. Algunos autores indican que la inestabilidad   se debe a la actividad enzim&aacute;tica de proteasas   intracelulares inespec&iacute;ficas que actuar&iacute;an degradando   el p&eacute;ptido sin embargo, esta afirmaci&oacute;n nunca ha sido   demostrada en forma fehaciente (Avonts <i>et al</i>., 2004; Aktypis <i>et al</i>., 2007).</p>     <p align="center"><a name="fig1"></a></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/biote/v16n2/v16n2a21fig1.jpg"></p>     <p><b>Conclusiones</b></p>     <p>La cepa <i>E. mundtii </i>Tw56, aislada del contenido intestinal  de pejerrey mostr&oacute; una alta actividad espec&iacute;fica contra <i>L. innocua </i>ATCC 33090. El estudio de las variables fisicoqu&iacute;micas y componentes del medio de cultivo permiti&oacute; alcanzar una alta expresi&oacute;n de la bacteriocina, comparable con los resultados publicados por otros autores. En este caso particular, la composici&oacute;n &oacute;ptima del medio de cultivo se logr&oacute; incluyendo extracto de carne como &uacute;nica fuente de nitr&oacute;geno y fructuosa como &uacute;nica fuente de carbono en la f&oacute;rmula del medio MRS. Sobre la base de esta f&oacute;rmula, se estableci&oacute; que las mejores condiciones para la producci&oacute;n de bacteriocina fueron a 25-30 &deg;C, con un pH inicial de 6,5; en ausencia de NaCl y luego de 12 h de incubaci&oacute;n. Estudios complementarios permitir&aacute;n determinar la posibilidad de la potencial utilizaci&oacute;n de la cepa<i>E. mundtii </i>Tw56 como biopreservante en el campo de la industria alimenticia, estableciendo como condici&oacute;n previa, determinar la ausencia de genes vinculados a factores de virulencia y resistencia a antibi&oacute;ticos para garantizar su inocuidad.</p>     <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>     <!-- ref --><p>1. Aktypis, A.; Tychowski. M.;  Kalantzopoulos. G.; Aggelis, G. 2007.    Studies on bacteriocin  (thermophilin T) production by <i>Streptococcus</i> <i>thermophilus </i>ACA-DC  0040 in batch and fed-batch fermentation modes. <i>Antonie van Leeuwenhoek</i>. 92:207-220.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0123-3475201400020002100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2. Avonts, L.; Van Uytven, E.; De Vuyst,  L. 2004. Cell growth and bacteriocin    production of probiotic <i>Lactobacillus </i>strains in  different   media. <i>Int. Dairy J. </i>14:947-955.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-3475201400020002100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3. Cleveland, J.; Montville, T.J.; Nes,  I.F.; Chikindas, M.L. 2001. Bacteriocins: safe, natural antimicrobials for food  preservation. <i>Int. J.</i> <i>Food Microbiol. </i>71:1-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-3475201400020002100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>4. Delgado, A.; Brito, D.; Peres, C.;  No&eacute;-Arroyo, F.; Garrido-Fern&aacute;ndez,    A. 2005. Bacteriocin production by <i>Lactobacillus  pentosus </i>B96 can be expressed as a function of  temperature and NaCl concentration. <i>Food Microbiol. </i>22:521-528.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-3475201400020002100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5. DeLong, E.F. 1992. Archaea in coastal  marine environments. <i>Proc.</i> <i>Natl. Acad. Sci USA</i>. 89: 5685-5689.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-3475201400020002100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6. Devriese, L. A.; Pot, B. 1995. The genus <i>Enterococcus </i>en The genera    of lactic acid bacteria. London, United  Kingdom, Wood and   Holzapfel ed. p 327-367.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-3475201400020002100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>7. Dobson, A.; Cotter, P.D.; Ross, R.P.;  Hill, C. 2012. Bacteriocin  production:   a probiotic trait? <i>Appl. Environ. </i><i>Microbiol</i>. 78:1-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0123-3475201400020002100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8. Floriano, B.; Ruiz-Barba, J.L.;  Jim&eacute;nez-D&iacute;az, R. 1998. Purification and   genetic characterization of Enterocin I  from <i>Enterococcus  faecium</i>  6T1a, a novel antilisterial  plasmid-encoded bacteriocin which does not belong to the pediocin  family of bacteriocins. <i>Appl. Environ. Microbiol</i>. 64: 4883-4890.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0123-3475201400020002100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>9. Franz, C. M. A. P.; van Belkum, M.J.;  Holzapfel, W.H.; Abriouel, H.;   G&aacute;lvez, A. 2007. Diversity of  enterococcal bacteriocins and   their grouping in a new classification  scheme. <i>FEMS  Microbiol.</i> <i>Rev. </i>31: 293-310.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-3475201400020002100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10. Gillor, O.; Etzion, A.; Riley, M.A.  2008. The dual role of  bacteriocins   as anti- and probiotics. <i>Appl. </i><i>Microbiol.  Biotechnol. </i>81: 591- 606.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-3475201400020002100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11. Guerra, N.P.; Pastrana, L. 2003. Influence of pH  drop on both nisin and pediocin production by <i>Lactococcus  lactis </i>and <i>Pediococcus</i> <i>acidilactici</i>. <i>Lett. Appl.  Microbiol. </i>37: 51-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0123-3475201400020002100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12. Kanmani, P.; Satishkumar, R.;  Yuvaraj, N.; Alagesan Paari, K.; Pattukumar,   V.; Venkatesan, A. 2011. The role of  environmental factors   and medium composition on bacteriocin  production by   an aquaculture probiotic <i>Enterococcus  faecium </i>MC13 isolated from fish intestine. <i>Korean J.  Chem. Eng. </i>28:860-866.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-3475201400020002100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>13. Klaenhammer, T.R. 1993 Genetics of  bacteriocins produced by lactic   acid bacteria. <i>FEMS  Microbiol. Rev. </i>12: 39&#150;86.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-3475201400020002100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>14. Manero, A.; Blanch, A.R. 1999.  Identification of <i>Enterococcus </i>spp.   with a biochemical key. <i>Appl.  Environ. Microbiol. </i>65: 4425- 4430.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0123-3475201400020002100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>15. Marguet, E.; Vallejo, M.; Sierralta  Chichisola, V.; Le&oacute;n Quispe, J.   2011. Actividad antagonista de bacterias  &aacute;cido l&aacute;cticas aisladas del medio marino contra cepas de  Listeria. <i>Acta Bioqu&iacute;m.</i><i>Cl&iacute;n. Latinoam. </i>45: 305-311.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0123-3475201400020002100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16. Metsoviti, M.; Paramithiotis, S.;  Drosinos, E.H.; Skandamis, P.N.;   Galiotou-Panayotou, M.; Papanikolaou, S.  2011. Biotechnological   valorization of low-cost sugar-based  media for bacteriocin production by <i>Leuconostoc  mesenteroides </i>E131. <i>New Biotech.</i> 28:  600-609.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0123-3475201400020002100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17.  Nes, IF; Diep, D.B.; Havarstein, L.S.; Brurberg, M.B.; Eijsink, V.; Holo, H. 1996. Biosynthesis of bacteriocins in  lactic acid bacteria. <i>Antonie</i> <i>van Leeuwenhoek. </i>70: 113&#150;128.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0123-3475201400020002100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>18. Neysens, P.; Messens, W.; De Vuyst, L.  2003. Effect of sodium  chloride on growth and bacteriocin production by <i>Lactobacillus</i> <i>amylovorus </i>DCE 471. <i>Int. J. Food  Microbiol. </i>88:29&#150;39.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0123-3475201400020002100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>19. O&#39;Sullivan, L.; Ross, R.P.; Hill, C.  2002. Potential of bacteriocin-producing   lactic acid bacteria for improvements in  food safety and quality. <i>Biochimie</i>. 84: 593-604.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0123-3475201400020002100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>20. Sabia, C.; Niederhausern, S.; Guerrieri,  E.; Messi, P.; Anacarso, I.;   Monicardi, G.; Bondi, M. 2008. Detection  of bacteriocin production   and virulence traits in  vancomycin-resistant enterococci of different sources. <i>J. Appl.  Microbiol. </i>104: 970-979.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0123-3475201400020002100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21. Settanni, L.; Valmorri, S.; Suzzi, G.;  Corsetti, A. 2008. The role of   environmental factors and medium  composition on bacteriocin like inhibitory substances (BLIS)  production by <i>Enterococcus</i><i>mundtii </i>strains. <i>Food  Microbiol</i>. 25: 722-728.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0123-3475201400020002100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>22. Todorov, S.D.; Dicks, L.M.T. 2009.  Effect of modified MRS medium   on production and purification of  antimicrobial peptide ST4SA produced by <i>Enterococcus mundtii</i>. <i>Anaerobe</i>. 15:65-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0123-3475201400020002100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>23. Zendo, T.; Eungruttanagorn, N.; Fujioka,  S.; Tashiro, Y.; Nomura, K.;   Sera, Y.; Kobayashi, G.; Nakayama, J.;  Ishizaki, A.; Sonomoto, K.; 2005. Identification and production  of a bacteriocin from <i>Enterococcus mundtii </i>QU 2 isolated from  soybean. <i>J. Appl. Microbiol.</i> 99:  1181&#150;1190.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0123-3475201400020002100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>  </font>      ]]></body><back>
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