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<article-id pub-id-type="doi">10.15446/rev.colomb.biote.v18n1.57717</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Desempeño del crecimiento y sobrevivencia de larvas de Oreochromis ssp. utilizando un probiótico en el alimento]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Growth performance and survival of Oreochromis ssp. larvae using a probiotic in the feed]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The efficiency of a bio-prepared with probiotic characteristics was evaluated for promoting growth and survival of red tilapia Oreochromis ssp during sexual inversion. Through four treatments, under a completely randomized design were seeded four larvae L-1 in aquariums of 20 L, to which they were delivered, for 45 days, with Hormone commercial food of 45% CP, plus the addition of bio -prepared composed for malt extract broth and a yeast of the genus Saccharomyces in concentrations: 104 (T1), 106 (T2), 108 CFU ml-1 (T3) and (T4) control without the addition of bio-prepared. At the beginning and end of the experiment the larvae were weighed (mg), measured (cm) and counted. The physical and chemical parameters monitored water remained within ranges considered normal for fish species. The highest values for the variables of larval growth were recorded in the T2 and T3; Final weight (Pf) (305.9 ± 113.2 and 326.1 ± 79.5mg), weight gain (Gp) (299.2 ± 113.2 and 319.4 ± 79.5mg) Final Length (Lf) (2.5 ± 0.3 and 2.5 ± 0.2cm), Gain length (Gl) (1.7 ± 0.3 and 1.7 ± 0.2cm) and specific growth rate (G) (12.5 ± 0.7 and 12.7 ± 0.5% / day), likewise, the highest values of survival (S) of the larvae were recorded in T3 (68.1 ± 6.8%) and T2 (59.4 ± 20.2%). Therefore the best results were presented in larvae of T2 and T3, to which were given the bio-prepared, showing that the larvae of red tilapia have better growth and survival with the implementation of a bio-prepared probiotic.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">      <p>DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v18n1.57717" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v18n1.57717</a></p>       <p align="right">ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</p>      <p align="center"><font size="4"><b>Desempe&ntilde;o del crecimiento y sobrevivencia de larvas de <i>Oreochromis ssp. </i>utilizando un probi&oacute;tico en el alimento</b></font></p>      <p align="center"><font size="3"><b>Growth performance and survival of <i>Oreochromis ssp.</i> larvae  using a probiotic in the feed</b></font></p>      <p> <b><i>Lara Mantilla C.H</i></b><Sup>*</Sup><b><i>, J. Velloj&iacute;n Furnieles</i></b><Sup>**</Sup><i><b>, D. Garc&iacute;a Per&eacute;z</b></i><Sup>***</Sup><i><b>, V. Pert&uacute;z Buelvas</b></i><Sup>****</Sup></p>      <p><sup>*</sup> (q.e.p.d) Ph.D., Grupo de investigaci&oacute;n de Biotecnolog&iacute;a (GRUBIODEQ). Departamento de Qu&iacute;mica. Universidad de C&oacute;rdoba.  C&oacute;rdoba. Colombia. E-mail: <a href="mailto:lara_mantilla_cecilia@hotmail.com">lara_mantilla_cecilia@hotmail.com</a>    <br>  <sup>**</sup> Profesional en Acuicultura. Grupo de investigaci&oacute;n de Biotecnolog&iacute;a (GRUBIODEQ). Programa de Acuicultura. Universidad de C&oacute;rdoba.  C&oacute;rdoba. Colombia. E-mail: <a href="mailto:jurleyvellojin14@hotmail.com">jurleyvellojin14@hotmail.com</a>    <br>  <sup>***</sup> Profesional en Acuicultura. Grupo de investigaci&oacute;n de Biotecnolog&iacute;a (GRUBIODEQ). Programa de Acuicultura. Universidad de C&oacute;rdoba.  C&oacute;rdoba. Colombia. E-mail: <a href="mailto:dianagarcia2709@hotmail.com">dianagarcia2709@hotmail.com</a>    <br>  <sup>****</sup> MSc. Centro de Investigaci&oacute;n Pisc&iacute;cola (CINPIC). Programa de Acuicultura. Universidad de C&oacute;rdoba.  C&oacute;rdoba. Colombia.  E-mail: <a href="mailto:vipertuz@hotmail.com">vipertuz@hotmail.com</a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Recibido: </b>diciembre 15 de 2015 <b> Aprobado: </b>mayo 16 de 2016</p>  <hr>      <p><b>Resumen</b></p>     <p> Se evalu&oacute; la eficiencia de un bio-preparado con caracter&iacute;sticas probi&oacute;ticas como promotor del crecimiento y sobrevivencia de la tilapia roja <i>Oreochromis</i> <i>ssp.</i> durante la inversi&oacute;n sexual. A trav&eacute;s de cuatro tratamientos, bajo un dise&ntilde;o completamente aleatorizado, fueron sembradas cuatro larvas L<Sup>-1</Sup> en acuarios de 20 L, a las cuales se les suministr&oacute;, durante 45 d&iacute;as, alimento comercial hormonado de 45% de PB, m&aacute;s la adici&oacute;n del bio-preparado compuesto por caldo extracto de malta y una levadura del g&eacute;nero <i>Saccharomyces</i> en concentraciones de: 10<Sup>4</Sup> (T1), 10<Sup>6</Sup> (T2), 10<Sup>8 </Sup>UFC ml<Sup>-1 </Sup>(T3) y un control (T4) sin la adici&oacute;n del bio-preparado. Al inicio y al final del experimento se pesaron (mg), midieron (cm) y contaron las larvas. Los par&aacute;metros f&iacute;sicos y qu&iacute;micos monitoreados del agua, se mantuvieron dentro de rangos considerados normales para la piscicultura de la especie. Los mayores valores para las variables de crecimiento de las larvas se registraron en el T2 y T3; Peso final (Pf) (305.9&plusmn;113.2 y 326.1 &plusmn;79.5mg), Ganancia en peso (Gp) (299.2&plusmn;113.2 y 319.4&plusmn;79.5mg) Longitud final (Lf) (2.5&plusmn;0.3 y 2.5&plusmn;0.2cm), Ganancia en longitud (Gl) (1.7&plusmn;0.3 y 1.7&plusmn;0.2cm) y Tasa especifica de crecimiento (G) (12.5&plusmn;0.7 y 12,7&plusmn;0.5%/d&iacute;a), as&iacute; mismo, los mayores valores de sobrevivencia (S) de las larvas se registraron en el T3 (68.1&plusmn;6.8%) y T2 (59.4&plusmn;20.2%). Por tanto los mejores resultados se presentaron en larvas de  T2 y T3, a los cu&aacute;les se les suministr&oacute; el bio-preparado, demostrando que las larvas de tilapia roja presentan mejor crecimiento y sobrevivencia con la implementaci&oacute;n de un bio-preparado probi&oacute;tico.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: c&iacute;clidos, probi&oacute;tico, omn&iacute;voro, <i>Saccharomyces sp.</i></p>  <hr>      <p><b>Abstract</b></p>     <p> The efficiency of a bio-prepared with probiotic characteristics was evaluated for promoting growth and survival of red tilapia <i>Oreochromis ssp</i> during sexual inversion. Through four treatments, under a completely randomized design were seeded four larvae L<Sup>-1</Sup> in aquariums of 20 L, to which they were delivered, for 45 days, with Hormone commercial food of 45% CP, plus the addition of bio -prepared composed for malt extract broth and a yeast of the genus Saccharomyces in concentrations: 104 (T1), 106 (T2), 108 CFU ml-1 (T3) and (T4) control without the addition of bio-prepared. At the beginning and end of the experiment the larvae were weighed (mg), measured (cm) and counted. The physical and chemical parameters monitored water remained within ranges considered normal for fish species. The highest values for the variables of larval growth were recorded in the T2 and T3; Final weight (Pf) (305.9 &plusmn; 113.2 and 326.1 &plusmn; 79.5mg), weight gain (Gp) (299.2 &plusmn; 113.2 and 319.4 &plusmn; 79.5mg) Final Length (Lf) (2.5 &plusmn; 0.3 and 2.5 &plusmn; 0.2cm), Gain length (Gl) (1.7 &plusmn; 0.3 and 1.7 &plusmn; 0.2cm) and specific growth rate (G) (12.5 &plusmn; 0.7 and 12.7 &plusmn; 0.5% / day), likewise, the highest values of survival (S) of the larvae were recorded in T3 (68.1 &plusmn; 6.8%) and T2 (59.4 &plusmn; 20.2%). Therefore the best results were presented in larvae of T2 and T3, to which were given the bio-prepared, showing that the larvae of red tilapia have better growth and survival with the implementation of a bio-prepared probiotic.</p>      <p><b>Key words: </b>cichlid, probiotic, omnivore, <i>Saccharomyces sp.</i> </p>   <hr>      <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>     <p> Las tilapias son consideradas actualmente las especies de mayor importancia en los sistemas industriales de producci&oacute;n en el mundo, por sus caracter&iacute;sticas favorables de adaptaci&oacute;n a un amplio rango de condiciones ambientales, habilidad para crecer en cautiverio con sistemas de alimentaci&oacute;n artificiales, f&aacute;cil reproducci&oacute;n, resistencia a enfermedades, tolerancia y desarrollo en condiciones de altas densidades (Agilar, 2010). Son clasificadas como omn&iacute;voro, por consumir diversidad de alimentos naturales, basados en algas y otros organismos acu&aacute;ticos microsc&oacute;pico ricos en prote&iacute;nas, minerales, l&iacute;pidos y vitaminas necesarios para su desarrollo (Sauceda <i>et al.,</i> 2009).</p>      <p>En los &uacute;ltimos a&ntilde;os se han realizado investigaciones orientadas a mejorar la producci&oacute;n de las tilapias, en aspectos relacionados con inversi&oacute;n sexual, nutrici&oacute;n, sanidad y gen&eacute;tica (Torres <i>et al.,</i> 2010), esto ha permitido mejorar los rendimientos en sistemas de producci&oacute;n intensivos (DANE, 2014), sin embargo el manejo de altas densidades de siembra desequilibran  y alteran la capacidad de resistencia y adaptaci&oacute;n fisiol&oacute;gica de los organismos, provocando estados de estr&eacute;s aprovechados por pat&oacute;genos oportunistas, desencadenando enfermedades que ocasionan perdida econ&oacute;micas (Jim&eacute;nez, 2010).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Esto es m&aacute;s evidente durante la inversi&oacute;n sexual, cuando las larvas de tilapia son m&aacute;s susceptibles a estos problemas, considerando que su flora intestinal es un ecosistema muy complejo que se encuentra en constante cambio desde el inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena, cuando las especies empiezan a filtrar diversas part&iacute;culas que se van adhiriendo al organismo formando una pel&iacute;cula protectora. La colonizaci&oacute;n de flora intestinal es un proceso gradual que est&aacute; influenciado por la presencia de diferentes enzimas digestivas y por la dieta ingerida, sufriendo varias colonizaciones antes del establecimiento de una poblaci&oacute;n "madura" capaz de proteger al hospedero de las agresiones de pat&oacute;genos. Por lo tanto el control de la alimentaci&oacute;n de las larvas empleando probi&oacute;ticos puede mejorar los procesos de digesti&oacute;n, inmunidad y  resistencia a enfermedades (Monroy <i>et al.,</i> 2012).</p>      <p>Los probi&oacute;ticos son microorganismos vivos que cuando se administra en cantidades adecuadas, confieren un beneficio al hospedero, modifican la comunidad microbiana relacionada con &eacute;l o con el ambiente donde &eacute;ste se desarrolla, a trav&eacute;s del mejor uso del alimento, aprovechando su valor nutricional, incrementando la respuesta inmune a las enfermedades y mejorado la calidad del ambiente. (Kesacordi-Watson <i>et al.,</i> 2008). Los probi&oacute;ticos en acuicultura son de gran importancia por que modifican y mejoran la microbiota intestinal, son fuente de energ&iacute;a y nutrientes, compiten con bacterias causante de enfermedades por sitio de adhesi&oacute;n y adem&aacute;s, inhiben la presencia de microorganismos pat&oacute;genos estimulando la respuesta inmune del sist&eacute;mica local, celular y humoral, aumentando la resistencia a infecciones de lactococosis, streptococosis, vibriosis y furunculosis y aportando mol&eacute;culas de importancia fisiol&oacute;gica para el hospedero, lo que permite obtener  un mejor crecimiento, maduraci&oacute;n del sistema digestivo, supervivencia y calidad larvaria (Tovar <i>et al.,</i> 2008).</p>      <p>Las levaduras del g&eacute;nero <i>Saccharomyces</i> son utilizadas como alimento suplementario para varios tipos de animales; contiene varios compuestos inmuno-estimulantes tales como &beta;-glucanos, &aacute;cidos nucleicos, oligosac&aacute;ridos mananos y otros compuestos celulares, convirti&eacute;ndolo en un g&eacute;nero con caracter&iacute;sticas probi&oacute;ticas que mejoran las condiciones de cultivo, disminuyendo la presencia de agentes pat&oacute;genos en los sistemas de producci&oacute;n, reduciendo la tasa de mortalidad, y estimulando la digesti&oacute;n y absorci&oacute;n de nutrientes (Hoseinifar <i>et al.,</i> 2011). El objetivo de estudio fue evaluar la eficiencia de un bio-preparado con caracter&iacute;sticas probi&oacute;ticas como promotor del crecimiento y sobrevivencia de la tilapia roja <i>Oreochromis ssp. </i>durante la inversi&oacute;n sexual.</p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p> <b>Localizaci&oacute;n. </b>La investigaci&oacute;n se realiz&oacute; en el laboratorio de Biotecnolog&iacute;a, GRUBIODEQ y en el Centro de Investigaci&oacute;n Pisc&iacute;cola CINPIC, (Universidad de C&oacute;rdoba), ubicados en el municipio de Monter&iacute;a, departamento de C&oacute;rdoba, Colombia. </p>      <p><b>Elaboraci&oacute;n del bio-preparado. </b>Se utiliz&oacute;caldo extracto de malta  yuna levadura nativa del g&eacute;nero <i>Sa</i><i>ccharomyces</i> con caracter&iacute;sticas probi&oacute;ticas. Esta fue aislada de novillos de raza criolla Romosinuano del hato de Corpoica Turipana - C&oacute;rdoba, Colombia y pertenece al banco de cepas del Laboratorio GRUBIODEQ. La levadura fue multiplicada a peque&ntilde;a escala hasta obtener concentraciones de 10<Sup>4</Sup>, 10<Sup>6</Sup> y 10<Sup>8 </Sup>UFC ml<Sup>-1</Sup> teniendo en cuenta las condiciones de crecimiento, pH, temperatura y ox&iacute;geno.</p>      <p><b>Material biol&oacute;gico. </b>En el Centro de Investigaci&oacute;n Pisc&iacute;cola CINPIC, fueron instalados 16 acuarios de 20 L equipados con sistemas de aireaci&oacute;n (aireadores y piedras difusoras) y filtros de esquina en los cuales se sembraron 4 larvas L<Sup>-1 </Sup> de tilapia roja reci&eacute;n eclosionadas con peso de 6.7&plusmn; 0.9 mg y longitud de 0.7&plusmn;0.1 cm (media&plusmn;STD), las cuales fueron alimentadas (por inmersi&oacute;n) seis veces al d&iacute;a durante 45 d&iacute;as de ensayo. </p>      <p><b>Dise&ntilde;o experimental. </b>Se evaluaron tres tratamientos con cuatro replicas, utilizando alimento comercial hormonado de 45% de prote&iacute;na bruta (PB) con adici&oacute;n del bio-preparado nativo con caracter&iacute;sticas probi&oacute;ticas a diferentes concentraciones; tratamiento 1 (T1), 10<Sup>4</Sup> UFC mL<Sup>-1</Sup>, tratamiento 2 (T2), 10<Sup>6</Sup> UFC mL<Sup>-1</Sup> y tratamiento 3 (T3), 10<Sup>8</Sup> UFC mL<Sup>-1</Sup>, adem&aacute;s se evalu&oacute; un tratamiento control (T4) con el mismo alimento sin adici&oacute;n del bio-preparado. </p>      <p><b>Procedimiento de recopilaci&oacute;n de datos </b></p>      <p> <b>Variables de crecimiento. </b>Se realizaron dos muestreos, al inicio y al final del ensayo, tomando el 25% de la poblaci&oacute;n de cada unidad experimental. Las larvas fueron contadas y pesadas (mg) en una balanza anal&iacute;tica Adventure OHAUS<Sup>&reg;</Sup>, medidas con la ayuda de un icti&oacute;metro al mil&iacute;metro m&aacute;s cercano. Con los valores promedio de peso y longitud se calcul&oacute;; peso final (Pf), ganancia en peso (Gp), longitud final (Lf), ganancia en longitud (Gl) y tasa especifica de crecimiento (G %/d&iacute;a). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Sobrevivencia y prueba de resistencia al estr&eacute;s. </b>Al inicio y al final del ensayo las larvas fueron contadas para estimar la sobrevivencia (S). Para la prueba de resistencia al estr&eacute;s, se tomaron 10 larvas por unidad experimental, se colocaron en papel absorbente por cuatro minutos y luego se devolvieron al agua, cinco minutos despu&eacute;s fueron contadas para establecer la sobrevivencia.</p>      <p><b>Par&aacute;metros f&iacute;sico-qu&iacute;micos. </b>La calidad del agua fue monitoreada, tomando registros diarios, de ox&iacute;geno disuelto, pH y temperatura, con ayuda de un Ox&iacute;metro YSI<Sup>&reg;</Sup> 550A y un pHmetro YSI<Sup>&reg;</Sup> Ph100. Mientras que semanalmente se midi&oacute; amonio no ionizado (NH<Sub>3</Sub>), con ayuda de un espectrofot&oacute;metro Espectronic<Sup>&reg;</Sup>, Genesys 5.</p>      <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p>      <p> Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar, todos las variables analizadas fueron expresadas como media &plusmn; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (Peso final, ganancia en peso, longitud total, ganancia en longitud, tasa de crecimiento espec&iacute;fico, sobrevivencia y prueba de resistencia al estr&eacute;s), se sometieron a pruebas de normalidad (test de Shapiro-Wilk) y homogeneidad de varianza (test de Bartlett), a las variables que cumplieron estos supuestos se les aplic&oacute; ANOVA a una v&iacute;a y prueba de rangos M&uacute;ltiple para expresar diferencias estad&iacute;sticas,  en todos los casos p&lt;0.05 fue utilizando como criterio estad&iacute;stico para establecer las diferencia significativa. Los datos fueron analizados con el programa Statgraphic plus for Windows (Statical Graphics Corp, 1996). </p>      <p><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></p>      <p> La temperatura promedio del agua del presente estudio (28 a 32 <i>&deg;C)</i> se encontr<i>&oacute;</i> ligeramente por debajo del rango reportado como adecuado para el cultivo de tilapia (Keller, 2007). Igualmente los valores de pH registrados (6.0 a 9.0) correspondieron al rango &oacute;ptimo para el cultivo de la especie; considerando que valores por debajo de 4.5 y por encima de 10.5 afectan significativamente la sobrevivencia (Gonz&aacute;lez <i>et al.,</i> 2010). Seg&uacute;n Bautista &amp; Ruiz, (2011) para cultivos de tilapia roja el ox&iacute;geno disuelto debe ser mayor de 5 mg L<Sup>-1</Sup>,<Sup> </Sup>esto sugiere que los registros obtenidos en el presente estudio (7.8 mg L<Sup>-1</Sup>) no incidieron en el desempe&ntilde;o del cultivo. Los valores promedio de amonio no ionizado (NH<Sub>3</Sub>) para cada tratamiento no sobre pasaron la concentraci&oacute;n de 0.2 mg L<Sup>-1</Sup>,  y no presentaron riesgo para los organismos seg&uacute;n lo indicado por Gonz&aacute;lez <i>et al. </i>(2010), (<a href="#tab1">tabla 1</a>).</p>      <p align="center"><a name="tab1"><img src="img/revistas/biote/v18n1/v18n1a10t1.jpg"></a></p>      <p>Los mayores valores para las variables de crecimiento: Pf (305.9&plusmn;113.2 y 326.1 &plusmn;79.5mg), Gp (299.2&plusmn;113.2 y 319.4&plusmn;79.5mg) Lf (2.5&plusmn;0.3 y 2.5&plusmn;0.2cm), Gl (1.7&plusmn;0.3 y 1.7&plusmn;0.2cm) y G (12.5&plusmn;0.7 y 12,7&plusmn;0.5%/d&iacute;a) se registraron en larvas de T2 y T3 (<a href="#tab2">tabla 2</a>) (<a href="#fig1">figura 1</a>), as&iacute; mismo, los valores m&aacute;s altos de sobrevivencia (S) se registraron en las larvas de T3 (68.1&plusmn;6.8%) y T2 (59.4&plusmn;20.2%); mientras que los menores valores de crecimiento y sobrevivencia se presentaron en las larvas de T1 y T4 (<a href="#fig2">figura 2</a>). Para la prueba de resistencia al estr&eacute;s, los valores m&aacute;s altos de sobrevivencia se registraron en los  tratamientos con la inclusi&oacute;n del bio-preparado: T1 (42.4&plusmn;5.0%), T2 (42.4&plusmn;5.0%), T3 (62.5&plusmn;9.6%); mientras que el menor valor se registr&oacute; en el T4 (<a href="#fig3">figura 3</a>).</p>      <p align="center"><a name="tab2"><img src="img/revistas/biote/v18n1/v18n1a10t2.jpg"></a></p>     <p align="center"><a name="fig1"><img src="img/revistas/biote/v18n1/v18n1a10f1.jpg"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="fig2"><img src="img/revistas/biote/v18n1/v18n1a10f2.jpg"></a></p>     <p align="center"><a name="fig3"><img src="img/revistas/biote/v18n1/v18n1a10f3.jpg"></a></p>      <p>Las tilapias alimentadas con la inclusi&oacute;n del bio-preparado con caracter&iacute;sticas probi&oacute;ticas en el alimento concentrado, presentaron mayor desempe&ntilde;o productivo y mayor sobrevivencia, comparado con el tratamiento control. Se observ&oacute; que existi&oacute; una relaci&oacute;n proporcional entre la concentraci&oacute;n de los microorganismos (10<Sup>4</Sup>, 10<Sup>6</Sup> y 10<Sup>8 </Sup>UFCmL<Sup>-1</Sup>) y el crecimiento de las larvas. Sin embargo, no se observ&oacute; diferencias significativas entre T2 y T3 (p&gt;0.05), indicando que los dos tratamientos son favorables como promotores de crecimiento en el inicio de la alimentaci&oacute;n ex&oacute;gena de larvas de tilapia roja. </p>      <p>Estos resultados coinciden con los reportados por Abdel-Tawab <i>et al.</i> (2008), para larvas de tilapia nil&oacute;tica (<i>O. niloticus</i>), utilizando niveles de inclusi&oacute;n 1 a 5 gr de levadura <i>S. cerevisiae</i> por Kg de dieta, tras un per&iacute;odo de 12 semanas de cultivo, sometidas a desaf&iacute;o sanitario in vitro con <i>Aeromona hydrophila, </i>donde se observ&oacute; mejores resultados en crecimiento, aprovechamiento del alimento y sus nutrientes.</p>      <p>Tambi&eacute;n coincide con lo observado por Lara-Flores <i>et </i><i>al.</i> (2010a), quienes para alevinos de tilapia nil&oacute;tica, evaluaron dos tipos de probi&oacute;ticos mezclados en el alimento  (<i>S. cerevisiae</i> y una mezcla de <i>Streptococcus </i><i>faecium </i>y<i> Lactobacillus acidophilus),</i> concluyendo que <i>S. cerevisiae </i>proporciona mejor desempe&ntilde;o en ganancia en peso, tasa de crecimiento espec&iacute;fico y mejor sobrevivencia despu&eacute;s de nueve semanas de cultivo. De igual forma Hoseinifar <i>et al. </i>(2011), evaluaron los efectos de la levadura inactiva de cerveza (<i>S. cerevi</i><i>siae</i>) sobre el crecimiento, respuesta fisiol&oacute;gica y microbiota intestinal de juveniles de Beluga (<i>Huso huso</i>) a niveles de inclusi&oacute;n de 1 y 2%, presentando mejores resultados en peso final, ganancia en peso, tasa espec&iacute;fica de crecimiento y factor de conversi&oacute;n alimenticio en la dieta suplementada con 2% tras un per&iacute;odo de seis semanas de cultivo.</p>      <p><b>Conclusi&oacute;n</b></p>      <p> Los resultados del presente estudio permiten concluir que concentraciones de 10<Sup>6</Sup> y 10<Sup>8</Sup> UFC ml<Sup>-1 </Sup>de bio-preparado con caracter&iacute;sticas probi&oacute;ticas puede influenciar positivamente en el desempe&ntilde;o productivo y la sobrevivencia de la tilapia roja durante la inversi&oacute;n sexual.</p>      <p><b>Agradecimientos </b></p>      <p> Dedicado a la memoria de la Dra. Cecilia Lara Mantilla, PhD., por su amistad, dedicaci&oacute;n, entrega y el legado que hoy nos deja. Grupo de investigaci&oacute;n de Biotecnolog&iacute;a  (GRUBIODEQ). Departamento de Qu&iacute;mica. Universidad de C&oacute;rdoba. C&oacute;rdoba. Colombia.</p>      <p>Agradecimiento especial al Jos&eacute; Alonso Espinoza, MSc. por su valioso aporte en esta investigaci&oacute;n.</p>  <hr>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>     <!-- ref --><p> Abdel-Tawwab, M., Abdel-Rahman, A., Ismael, N. (2011). Evaluation of comercial live bakers' yeast, (<i>Saccharomyces cerevisiae)</i> as a growth and inmunity promoter for fry Nile tilapia, (<i>Oreochro</i><i>mis niloticus</i>) challenged <i>in situ</i> with <i>Aeromonas hydrophila. </i><i>Aquaculture</i>, <i>280, </i>185-189.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389373&pid=S0123-3475201600010001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>Agilar, F. (2010). Modelos matem&aacute;ticos no lineales como herramienta para evaluar el crecimiento de Tilapia roja <i>(Oreochromis </i><i>ssp.)</i> y Tilapia nil&oacute;tica (<i>Oreochromis niloticus </i>var. chitralada)" alimentadas con dietas peletizadas o extruidas. Tesis de Magister, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute; D.C, Colombia.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389375&pid=S0123-3475201600010001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>Bautista, J., Ru&iacute;z, J. (2011). Calidad de agua para el cultivo de Tilapia en tanques de geomembrana. <i>Fuente</i>, <i>8</i>,  10 - 14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389377&pid=S0123-3475201600010001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>Gonz&aacute;lez, R., Romero, O., y Valdivi&eacute;, M. (2010). Evaluaci&oacute;n de la calidad del agua y su influencia en el cultivo de la tilapia. Recuperado de <a href="http://www.panoramaacuicola.com/articulos_y_entrevistas/2009/03/20/evaluacion_de_la_calidad_del_agua_y_su_influencia_en_el_cultivo_de_la_tilapia_.html" target="_blank">http://www.panoramaacuicola.com/articulos_y_entrevistas/2009/03/20/evaluacion_de_la_calidad_del_agua_y_su_influencia_en_el_cultivo_de_la_tilapia_.html</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389379&pid=S0123-3475201600010001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Hoseinifar, S., Mirvaghefi, A., Merrifield, D. (2011). The effect of dietary inactive brewer's yeast <i>S. cerevisiae. </i>Ellipsoideus on the growth, psycological responses and gut microbiota of juvenile beluga (<i>Huso huso</i>). <i>Aquacult</i>., <i>318</i>, 90- 94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389381&pid=S0123-3475201600010001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>Departamento Administrativo Nacional de Estad&iacute;stica (DANE). (2014). Cultivo de  Tilapia roja (<i>Oreochromis sp</i>) en estanques de tierra, fuente de prote&iacute;na animal de excelente calidad. Recuperado de <a href="http://docplayer.es/14621095-El-cultivo-de-la-tilapia-roja-orechromis-sp-en-estanques-de-tierra-fuente-de-proteina-animal-de-excelente-calidad.html" target="_blank">http://docplayer.es/14621095-El-cultivo-de-la-tilapia-roja-orechromis-sp-en-estanques-de-tierra-fuente-de-proteina-animal-de-excelente-calidad.html</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389383&pid=S0123-3475201600010001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Jimenez, A. (2010). Detecci&oacute;n de <i>Streptococcus agalactiae</i> por PCR en Tejidos de Tilapias rojas (<i>Oreochromis ssp</i>.) menores de 20g. Tesis de maestr&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute; D.C, Colombia.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389385&pid=S0123-3475201600010001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>Keller, Y. (2007). Qualidade da agua em viveiro de tilapias (<i>Ore</i><i>ochromis niloticus</i>): caracteriza&ccedil;&atilde;o diurna de vari&aacute;veis<i> f&iacute;sicas, </i><i>qu&iacute;micas </i>e biol&oacute;gicas. Disserta&ccedil;&atilde;o de Mestrado em aq&uuml;icultura e pesca. Instituto de pesca. S&atilde;o Paulo, Brasil.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389387&pid=S0123-3475201600010001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Kerguel&eacute;n, E. (2001). Influencia de la primera alimentaci&oacute;n en el desempe&ntilde;o de la larvicultura del bocachico (<i>Prochilodus magda</i><i>lenae</i>). Tesis de pregrado. Universidad de C&oacute;rdoba. C&oacute;rdoba, Colombia.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389389&pid=S0123-3475201600010001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Kesacordi-Watson, A., Kaspar, H., Lategan, M., Gibson, L. (2008). Probiotics in aquaculture: the need, principles and mechanisms of action and screening processes. <i>Aquacult.</i>, <i>274</i>, 1-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389391&pid=S0123-3475201600010001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Lara-Flores, M., Olivera-Castillo, L., Olvera-Novoa, M. (2010a). Effect of the inclusion of a bacterial mix (<i>Streptococcus faecium</i> and <i>Lactobacillus acidophilus</i>), and the yeast (<i>Saccharomyces cerevi</i><i>siae</i>) on growth, feed utilization and intestinal enzymatic activity of Nile tilapia (<i>Oreochromis niloticus</i>). <i>International Journal of </i><i>Fisheries and Aquaculture</i>, <i>2</i>(4), 93-101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389393&pid=S0123-3475201600010001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Monroy, C., Castro, T., Castro, J., Castro, G., Lara, R. (2012). Beneficios del uso de probi&oacute;ticos en la flora bacteriana intestinal de los organismos Acu&aacute;ticos. <i>Contacto S</i>, <i>85</i>, 11-18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389395&pid=S0123-3475201600010001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>Sauceda, R., Rend&oacute;n, P., Figueroa, E., Rend&oacute;n, A., L&oacute;pez, C. (2009). Modelo tecnol&oacute;gico de cultivo de Tilapia (<i>Oreochromis sp</i>). Recuperado de <a href="http://www.tilapiademexico.org/system/publicaciones/Modelo%20Tecnol%C3%B3gico%20de%20Tilapia%20en%20Jaulas.pdf" target="_blank">http://www.tilapiademexico.org/system/publicaciones/Modelo%20Tecnol%C3%B3gico%20de%20Tilapia%20en%20Jaulas.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389397&pid=S0123-3475201600010001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Torres, J., Munoz, J., Cardenas, H., Alvarez, L., Palacio, J. (2010). Caracterizaci&oacute;n de tilapia roja (<i>Oreochromis ssp.)</i> con marcadores moleculares RAPD. <i>Acta Agron&oacute;mica,  59 </i>(2), 236-246.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2389399&pid=S0123-3475201600010001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Tovar-Ramirez, D., Reyes-Becerril, M., Guzman-Villanueva, L., Gleavez-Lopez, V., Civere-Cerecedo, R. (2008). Probi&oacute;ticos en Acuicultura: Avances resientes del uso de le levaduras en peces marinos. 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<source><![CDATA[Aquaculture]]></source>
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<source><![CDATA[Modelos matemáticos no lineales como herramienta para evaluar el crecimiento de Tilapia roja (Oreochromis ssp.) y Tilapia nilótica (Oreochromis niloticus var. chitralada)" alimentadas con dietas peletizadas o extruidas]]></source>
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<collab>Departamento Administrativo Nacional de Estadística (DANE)</collab>
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