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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Prototipo de formulación a base de Rhodotorula mucilaginosa para el control de Botrytis cinerea en Rosas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Productive systems of cut roses for exportation, have important challenges due to the presence of various plant pathogens in such crops. Botrytis cinerea is one of the most important pathogen microorganism because of its persistence and number of alternative hosts plants. International markets are very demanding in terms of environmentally sustainable crop management, which has forced for the implementation of strategies for biological control of diseases. The phyllosphere yeast Rhodotorula mucilaginous (Lv20) with biocontrol potential against B. cinerea, was employed in this study in order to generate a solid prototype formulation to achieve both, the stability of its activity and cell viability over time. The use of the mix of synthetic and naturally occurring polymers allowed to maintain the viability of this strain for 90 days at 1,90x10(9) células.mL-1 at a 25 ° C in a liquid formulation. Likewise, the prototype formulation using mannitol as a nucleating agent in a granular solid formulation, allowed obtaining a cell viability of 1.2x10(8) células.gr-1 after 90 days of storage at 4 °C, maintaining a biocontrol activity equal to the fresh strain with or without formulation. These results allow us to suggest that the formulation prototypes using R. mucilaginous yeast, is a promising alternative for the control of B. cinerea in post-harvest management of roses.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Levaduras]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">      <p>DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v18n2.55826" target="_blank">http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v18n2.55826</a></p>        <p align="right">ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</p>       <p align="center"><font size="4"><b>Prototipo de formulaci&oacute;n a base de <i>Rhodotorula mucilaginosa</i> para el control de <i>Botrytis cinerea</i> en Rosas</b></font></p>      <p align="center"><font size="3"><b>Formulation prototype based on <i>Rhodotorula mucilaginosa</i> for the control of <i>Botrytis cinerea</i> in Roses</b></font></p>      <p><b><i>Jessica P. Bautista</i></b><Sup>*</Sup>,<b><i> Helber Barbosa</i></b><Sup>**</Sup>,<b><i> Daniel Uribe-V&eacute;lez</i></b><Sup>*1</Sup></p>       <p><sup>*</sup> Universidad Nacional de Colombia, Colombia. Instituto de Biotecnolog&iacute;a, correos electr&oacute;nicos:    <br> <a href="mailto:jessicabautista282@gmail.com">jessicabautista282@gmail.com</a>, <a href="mailto:duribev@unal.edu.co">duribev@unal.edu.co</a>    <br>  <Sup>1</Sup> Autor de correspondencia.    <br>  <sup>**</sup> Universidad Nacional de Colombia, Colombia. Facultad de Ciencias, Departamento de Farmacia, correo electr&oacute;nico:    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <a href="mailto:hdbarbosab@unal.edu.co">hdbarbosab@unal.edu.co</a></p>       <p><b>Recibido:</b> febrero 19 de 2016<b> Aprobado: </b>octubre 12 de 2016</p>     <hr>      <p><b>Resumen </b></p>      <p>Los sistemas productivos de Rosas de corte para exportaci&oacute;n poseen retos importantes debido a la presencia de diversos agentes fitopat&oacute;genos, siendo <i>Botrytis cinerea</i> uno de los m&aacute;s relevantes debido a su persistencia y n&uacute;mero de hospederos alternativos. Los mercados internacionales son muy exigentes en el manejo ambientalmente sostenible de los cultivos, por lo que se ha hecho presi&oacute;n para la implementaci&oacute;n de estrategias de control biol&oacute;gico de enfermedades. La levadura filosferica <i>Rhodotorula mucilaginosa</i> (Lv20) con potencial biocontrolador contra <i>B. cin&eacute;rea</i>, fue empleada en este estudio con el objeto de generar un prototipo de formulaci&oacute;n en base s&oacute;lida con el fin de lograr una estabilidad de la actividad y viabilidad celular a trav&eacute;s del tiempo. El empleo de mezclas de pol&iacute;meros sint&eacute;ticos y de origen natural permiti&oacute; mantener la viabilidad de esta cepa durante 90 d&iacute;as a unos niveles de 1,90x10<Sup>9</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup> a una temperatura de 25&deg;C en una formulaci&oacute;n l&iacute;quida. As&iacute; mismo, el prototipo de formulaci&oacute;n, empleando manitol como agente nucleador en una formulaci&oacute;n s&oacute;lida de tipo granulada,  logr&oacute; una viabilidad celular de 1.2x10<Sup>8</Sup> c&eacute;lulas.gr<Sup>-1</Sup> a los 90 d&iacute;as de almacenamiento a 4&deg;C, logrando mantener una actividad biocontroladora igual a la cepa fresca sin formular o reci&eacute;n formulada.  Estos resultados obtenidos permiten sugerir que los prototipos de formulaci&oacute;n empleando como principio activo la levadura <i>R. mucilaginosa</i>, son una alternativa promisoria para el control de <i>B. cinerea</i> en la post cosecha de rosas variedad v&eacute;ndela.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: Levaduras, moho gris, formulaci&oacute;n s&oacute;lida, biopolimeros, control biol&oacute;gico, postcosecha.</p>  <hr>      <p><b>Abstract </b></p>      <p>Productive systems of cut roses for exportation, have important challenges due to the presence of various plant pathogens in such crops. Botrytis cinerea is one of the most important pathogen microorganism because of its persistence and number of alternative hosts plants<i>.</i> International markets are very demanding in terms of environmentally sustainable crop management, which has forced for the implementation of strategies for biological control of diseases. The phyllosphere yeast <i>Rhodotorula mucilaginous</i> (Lv20) with biocontrol potential against <i>B. cinerea</i>, was employed in this study in order to generate a solid prototype formulation to achieve both, the stability of its activity and cell viability over time<i>. </i>The use of the mix of synthetic and naturally occurring polymers allowed to maintain the viability of this strain for 90 days at 1,90x10<Sup>9</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup> at a 25 &deg; C in a liquid formulation. Likewise, the prototype formulation using mannitol as a nucleating agent in a granular solid formulation, allowed obtaining a cell viability of 1.2x10<Sup>8</Sup> c&eacute;lulas.gr<Sup>-1</Sup> after 90 days of storage at 4 &deg;C, maintaining a biocontrol activity equal to the fresh strain with or without formulation. These results allow us to suggest that the formulation prototypes using <i>R. mucilaginous</i> yeast, is a promising alternative for the control of <i>B. cinerea</i> in post-harvest management of roses.</p>      <p><b>Key words</b>: Yeast, grey mold, solid formulation, biopolymers, biological control, postharvest.</p>  <hr>      <p><b>Introducci&oacute;n </b></p>      <p>Colombia es el segundo exportador de flores de corte a nivel mundial, siendo las rosas uno de los principales productos de su portafolio de exportaci&oacute;n. El mercado internacional de este tipo de productos enfrenta una serie de limitaciones de tipo fitosanitario, destac&aacute;ndose <i>Botrytis cinerea, </i>debido a su amplia distribuci&oacute;n y a los efectos devastadores que este agente fitopat&oacute;geno causa a sus cultivos hospederos (Asocolflores 2009; Dik &amp; Wubben, 2007). Hasta el momento, las estrategias de mitigaci&oacute;n de esta problem&aacute;tica se han centrado en el uso de compuestos agroqu&iacute;micos, particularmente fungicidas del grupo dicarboximidas, lo que ha generado el desarrollo de cepas de <i>B. cin&eacute;rea </i>resistentes a este tipo de compuestos (Asocolflores, 2008; Leroux, 2007; Elad <i>et al</i>., 2007; Shtienberg, 2007). Por otra parte, existe una percepci&oacute;n negativa del p&uacute;blico hacia los fungicidas qu&iacute;micos, ya que estos presentan una serie de riesgos toxicol&oacute;gicos sobre la salud humana y el medio ambiente (Wisniewsky <i>et al</i>., 2007).  Por tal motivo los productores de flores a nivel mundial han identificado otras estrategias ambientalmente sostenibles para la producci&oacute;n de flores sanas (Agricultura de las Am&eacute;ricas, 2009), estrategias que est&aacute;n siendo certificadas para Colombia desde 2008 a trav&eacute;s del sello Florverde<Sup>&reg;</Sup> (SCFv) (Asocolflores, 2008; Florverde, 2009; Globalgap, 2011).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Partiendo de la situaci&oacute;n arriba mencionada, se ha buscado el desarrollo de estrategias de control biol&oacute;gico de enfermedades a trav&eacute;s de diferentes tipos de microorganismos, como las levaduras filosf&eacute;ricas, las cuales adem&aacute;s de ser compatibles con el medio ambiente, reducen el riesgo de resistencia del pat&oacute;geno y pueden complementar la utilizaci&oacute;n de tratamientos qu&iacute;micos y culturales convencionales (Elad &amp; Stewart,<i> </i>2007). Por otra parte vale mencionar que las levaduras generalmente no producen micotoxinas alerg&eacute;nicas, tienen requerimientos nutricionales simples, creciendo r&aacute;pidamente en fermentadores con sustratos de bajo costo y son capaces de colonizar superficies secas durante largos per&iacute;odos de tiempo, caracter&iacute;sticas todas estas importantes para un control m&aacute;s sostenible de la enfermedad en cosecha y postcosecha (Chanchaichaovivat <i>et al</i>., 2008; Wisniewsky <i>et al</i>., 2007).</p>      <p>Varios prototipos de formulaci&oacute;n a base de bacterias (Wang <i>et al</i>., 2010) y levaduras (Droby <i>et al</i>., 2009; Abadias <i>et al</i>., 2003) han sido dise&ntilde;ados para el manejo de enfermedades de postcosecha. Incluso algunos biofungicidas han sido desarrollados comercialmente, como <i>Candida oleophila</i>, (Aspire<Sup>&reg;</Sup>) y <i>Cryptococcus albidus</i> (Yield plus<Sup>&reg;</Sup>), para el control biol&oacute;gico de agentes fitopat&oacute;genos de postcosecha como <i>Penicillium</i> sp. y <i>Botrytis</i> sp. en frutas, vegetales, ornamentales y plantas de tipo invernadero, los cuales compiten exitosamente por espacio y nutrientes y adem&aacute;s no causan ning&uacute;n efecto adverso a la salud humana (Janisiewicz &amp; Korsten, 2002; Drobby &amp; Lichter, 2007).</p>      <p>Uno de los retos para el desarrollo de un producto comercial a base de levaduras, es el desarrollo de una formulaci&oacute;n que confiera estabilidad al producto en t&eacute;rminos de viabilidad y actividad biocontroladora (Wisniewsky <i>et al</i>., 2007; Janisiewicz &amp; Korsten, 2002). Existen formulaciones liquidas y s&oacute;lidas (polvos humectables, granulos, liofilizados), las cuales poseen propiedades diferentes dependiendo de las caracter&iacute;sticas fisiol&oacute;gicas del principio activo. Las formulaciones en forma de gr&aacute;nulos, permiten la liberaci&oacute;n controlada y brindan una mayor protecci&oacute;n del principio activo a ambientes extremos, proporcionando una mayor persistencia en campo (Kinay &amp; Yildiz, 2008)</p>     <p>Teniendo en cuenta lo anterior, en este estudio se propone el desarrollo de un prototipo de formulaci&oacute;n s&oacute;lida a base c&eacute;lulas de la cepa Lv20 de <i>Rhodotorula mucilaginosa</i> previamente aislada de la filosfera de mora de castilla (Medina <i>et al</i>., 2009), seleccionada y evaluada en funci&oacute;n de su capacidad controladora del fitopat&oacute;geno <i>B. cinerea </i>en rosas de corte.</p>      <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>      <p><b>Aislamiento de levadura. </b>La levadura Lv20 (<i>R.mucilaginosa</i>) con potencial biocontrolador contra <i>B. cinerea</i>, fue aislada de la filosfera de plantas sanas de cultivos de mora de castilla <i>Rubus glaucus</i> del municipio de Granada del departamento de Cundinamarca, Colombia (Medina <i>et al</i>., 2009), pertenece a la colecci&oacute;n de microorganismos del Instituto de Biotecnolog&iacute;a de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Bogot&aacute;.</p>      <p><b>Producci&oacute;n de Biomasa. </b>La producci&oacute;n de la cepa, se realiz&oacute; en caldo Sabouraud dextrosa (CSD) (Difco<Sup>&reg;</Sup>), con pH ajustado a 5,6, en un volumen de 25 mL dispuesto en matraces erlenmeyer de 250 mL de capacidad, partiendo de un inoculo inicial de 1x10<Sup>6</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>, y se dejaron en agitaci&oacute;n a 150 rpm y 29 &deg;C por 48 h. Transcurrido ese tiempo se realiz&oacute; recuento en c&aacute;mara de Neubauer para la determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n final.</p>      <p><b>Selecci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de excipientes.</b> Con el objeto de identificar los pol&iacute;meros que confirieran estabilidad en t&eacute;rminos de viabilidad y pureza, se realiz&oacute; la selecci&oacute;n de cinco componentes polim&eacute;ricos, reportados en estudios previos. Tres son derivados de la celulosa como la hidroxipropil metil celulosa (P1) (HPMC), carboximetil celulosa (P2) (CMC) y metil celulosa (P3) (MC), uno derivado del alginato (P4) y un pol&iacute;mero soluble en agua como la polivinilpirrolidona (P5) (Bashan, 1986; Young <i>et al.,</i> 2006; Suvorova <i>et al.,</i> 1999; Fern&aacute;ndez <i>et al.,</i> 2009; S&aacute;nchez <i>et al.,</i> 2010; Hafeez <i>et al., </i>1991; Tittabutra <i>et al.,</i> 2007).</p>      <p>Despu&eacute;s de realizar la selecci&oacute;n de los pol&iacute;meros, se procedi&oacute; a determinar la viscosidad relativa a distintas concentraciones, con el fin de determinar cu&aacute;l podr&iacute;a ser la m&aacute;s adecuada.  Soluciones con concentraciones diferentes de cada pol&iacute;mero en estudio fueron preparadas por triplicado y se determin&oacute; el tiempo de desplazamiento o salida de 8 mL desde una pipeta de vidrio de 10mL de volumen total. Como tratamiento control se calcul&oacute; el tiempo de desplazamiento del agua durante el mismo procedimiento. Las tres mejores concentraciones para cada pol&iacute;mero en t&eacute;rminos de viscosidad, fueron seleccionadas con el fin de realizar las pruebas de compatibilidad con la cepa de levadura.</p>      <p>A partir de las pruebas de viscosidad se seleccionaron tres concentraciones por cada pol&iacute;mero (P1 y P4: 1.0%, 1.5%, y 2.0%; P2 y P3: 0.5%, 1.0%, 1.5% y P5: 1.0%, 5.0% y 10%), con el fin de determinar la compatibilidad inicial con la levadura, para su posterior formulaci&oacute;n. La biomasa microbiana obtenida luego de 48 h de crecimiento en caldo Sabouraud dextrosa (CSD), se recuper&oacute; por centrifugaci&oacute;n haciendo dos lavados con agua destilada est&eacute;ril (ADE). Luego, se prepar&oacute; una suspensi&oacute;n, a una concentraci&oacute;n de 1x10<Sup>9</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup> de principio activo, determinada por conteo en c&aacute;mara de Neubauer, y resuspendiendo la biomasa celular a la concentraci&oacute;n mencionada para cada pol&iacute;mero. Cada uno de los pol&iacute;meros se prepar&oacute; por triplicado, en tubos de microcentr&iacute;fuga de 1.5 mL, esta suspensi&oacute;n se incubo por 48 h a 25&deg;C. Pasado este tiempo, se procedi&oacute; a determinar el recuento de c&eacute;lulas viables en t&eacute;rminos de unidades formadoras de colonia (UFC) por mililitro, mediante la t&eacute;cnica de diluciones seriadas por microgota sembrando cuatro r&eacute;plicas de 20 &micro;L en agar PDA de cada una de las diluciones realizadas.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Evaluaci&oacute;n de mezclas de pol&iacute;meros. </b>Con el objeto de determinar el efecto de la mezcla de los mejores pol&iacute;meros seleccionados, sobre la viabilidad de las c&eacute;lulas de la levadura Lv20, se seleccionaron dos pol&iacute;meros, (pol&iacute;mero 1 (P1) &ndash; 1%- y pol&iacute;mero 5 (P5) -10%-), con el fin de hacer mezclas que permitieran dar una estabilidad a las cepas de levadura durante su formulaci&oacute;n. Las mezclas de los pol&iacute;meros fueron en proporciones de 50:50 y 25:75, en un volumen de 1mL dispuesto en tubos de microcentr&iacute;fuga de 1.5 mL y por triplicado. Igualmente, se determin&oacute; la viabilidad de las cepas con los pol&iacute;meros individuales. Se procedi&oacute; a realizar la estimaci&oacute;n de la viabilidad de las c&eacute;lulas, haciendo diluciones seriadas y la posterior siembra de gotas de 20 &micro;L en medio PDA, como se describi&oacute; anteriormente. Finalmente, se evalu&oacute; la viabilidad de las c&eacute;lulas a los 2, 10, 20, 60 y 90 d&iacute;as de incubaci&oacute;n a 25 &deg;C.</p>      <p><b>Desarrollo de prototipo de formulaci&oacute;n s&oacute;lida</b></p>      <p><b>Prueba de disoluci&oacute;n del n&uacute;cleo del prototipo de formulaci&oacute;n.</b> Una vez seleccionados los pol&iacute;meros que aportar&iacute;an caracter&iacute;sticas de estabilidad y miscibilidad al prototipo de formulaci&oacute;n granular, se seleccionaron 3 az&uacute;cares (sacarosa, dextrosa y manitol) para evaluar su capacidad como n&uacute;cleo dentro de la formulaci&oacute;n. Para lograr este objetivo se determin&oacute; la miscibilidad en agua de cada uno de estos az&uacute;cares pesando 250 mg, que se agregaron a 25 mL de agua destilada. Se tom&oacute; el tiempo en segundos, desde el momento en el que se agreg&oacute; el az&uacute;car hasta su completa disoluci&oacute;n, como control se emple&oacute; urea gracias a sus propiedades de r&aacute;pida disoluci&oacute;n. Posteriormente se realiz&oacute; el mismo procedimiento con los prototipos de formulaci&oacute;n con los 3 n&uacute;cleos distintos.</p>      <p><b>Desarrollo de la formulaci&oacute;n granulada</b>. Despu&eacute;s de obtener el crecimiento de biomasa, luego de su incubaci&oacute;n en CSD a 29&deg;C por 48 h, se procedi&oacute; a ajustar la concentraci&oacute;n celular a 1x10<Sup>9</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>, y se prepar&oacute; una suspensi&oacute;n, con la mezcla 50:50 de los pol&iacute;meros (P1 y P5) evaluados previamente. Posteriormente se pesaron 10 g de cada uno de los az&uacute;cares seleccionados y se agreg&oacute; el volumen de suspensi&oacute;n necesario para que cada az&uacute;car formara una masa h&uacute;meda con consistencia pastosa que permitiera su paso por un tamiz con un tama&ntilde;o de poro de 1 mm de di&aacute;metro, con el fin de formar gr&aacute;nulos. Posterior a esto, se seleccion&oacute; el prototipo de formulaci&oacute;n con la viabilidad m&aacute;s alta, y se midi&oacute; el porcentaje de humedad en el tiempo hasta el d&iacute;a 60, empleando la balanza analizadora de humedad OHAUS<Sup>&reg;</Sup> MB 45.</p>      <p>La estabilidad de cada prototipo de formulaci&oacute;n se evalu&oacute; en t&eacute;rminos de la viabilidad de las levaduras en funci&oacute;n del tiempo, por medio de recuento en gota en medio PDA, descrito antes. Este par&aacute;metro se midi&oacute; en el primer d&iacute;a de elaboraci&oacute;n, lo cual equivale a la concentraci&oacute;n inicial del prototipo de formulaci&oacute;n y posteriormente a los 15, 30, 60 y 90 d&iacute;as de almacenamiento a 4 y 25 &deg;C para la cepa Lv20.</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n de actividad biocontroladora <i>in vivo </i>en rosas variedad Vendela tipo exportaci&oacute;n. </b>Para esta fase se evaluaron en t&eacute;rminos de la actividad biocontroladora dos prototipos de formulaci&oacute;n almacenados durante 100 d&iacute;as a 4&deg;C<U>+</U>1 y 25&deg;C<U>+</U>1. Para estos prototipos se emple&oacute; la cepa Lv20 como principio activo, con los pol&iacute;meros P1 (1%):P5 (10%), en una proporci&oacute;n de (50:50) respectivamente, y manitol como az&uacute;car para formar el n&uacute;cleo del granulo de formulaci&oacute;n. Como controles de la actividad biocontroladora de la formulaci&oacute;n, se emple&oacute; una suspensi&oacute;n celular de la cepa Lv20 fresca y otra suspensi&oacute;n reci&eacute;n formulada con &uacute;nicamente 10 d&iacute;as de almacenamiento a 4 &deg;C. As&iacute; mismo, se emple&oacute; un control de enfermedad (testigo absoluto), en el cual &uacute;nicamente se aplic&oacute; el hongo <i>B. cinerea</i>, y otro donde &uacute;nicamente se inocul&oacute; ADE (testigo relativo), con el objeto de determinar el nivel de enfermedad provocada por la infestaci&oacute;n natural de <i>B. cinerea</i>. Todos los prototipos de formulaci&oacute;n se disolvieron en ADE para una concentraci&oacute;n de principio activo 1x10<Sup>6</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>.</p>      <p>De cada una de las suspensiones preparadas, se aplicaron 5 mL por flor por todo el per&iacute;metro de la flor, empleando un atomizador de jardiner&iacute;a. Cada tratamiento consisti&oacute; en tres r&eacute;plicas de 5 rosas cada una, las cuales fueron puestas en recipientes pl&aacute;sticos con 1L de capacidad, previamente preparados con 900 mL de agua con hipoclorito al 0,1%, los cuales fueron dispuestos en anaqueles cubiertos con una cortina pl&aacute;stica para favorecer las condiciones de humedad. Los anaqueles se encontraban en un cuarto con regulaci&oacute;n de fotoperiodo de 12:12 horas luz - oscuridad a temperatura ambiente de 20<U>+</U>2&deg;C.</p>      <p>Una vez aplicados los tratamientos, y pasadas 24 horas, se inocul&oacute; por el per&iacute;metro de la flor, aplicando 5 mL de una suspensi&oacute;n de conidias del hongo <i>B. cinerea </i>en agua destilada est&eacute;ril, a una concentraci&oacute;n de 1x10<Sup>4</Sup> conidias.mL<Sup>-1</Sup>. El control de enfermedad consisti&oacute; en la aplicaci&oacute;n de las esporas de <i>B. cinerea </i>&uacute;nicamente, posteriormente se cubri&oacute; cada flor con una bolsa pl&aacute;stica con el fin de generar condiciones de alta humedad y de esta forma favorecer la infecci&oacute;n del agente fitopat&oacute;geno. Todos los tratamientos se almacenaron bajo las mismas condiciones durante 5 d&iacute;as.</p>      <p>El efecto del prototipo de formulaci&oacute;n sobre el desarrollo de la enfermedad de <i>B. cinerea,</i> se evalu&oacute; mediante la determinaci&oacute;n de la severidad de la enfermedad, a los 5 d&iacute;as de inoculaci&oacute;n del agente fitopat&oacute;geno. La severidad de los s&iacute;ntomas fue determinada como una medida del estado de desarrollo de la enfermedad en cada flor, aplicando la escala de severidad descrita a continuaci&oacute;n. Nivel 0 (flor completamente sana sin infecci&oacute;n), Nivel 1 (da&ntilde;o del 0.1 al 25.0% del &aacute;rea de la flor infectada), Nivel 2 (da&ntilde;o del 25.1 al 50.0% del &aacute;rea de la flor infectada), Nivel 3 (da&ntilde;o del 50.1 al 75.0% del &aacute;rea de la flor infectada) y Nivel 4 (da&ntilde;o del 75.1 al 100% del &aacute;rea de la flor infectada) (<a href="#f1">figura 1</a>).</p>      <p align="center"><a name="f1"><img src="img/revistas/biote/v18n2/v18n2a03f1.jpg"></a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El &iacute;ndice de severidad fue calculado mediante la f&oacute;rmula desarrollada por Dick <i>et al</i>. (1999): </p>      <p align="center"><a name="ec1"><img src="img/revistas/biote/v18n2/v18n2a03ec1.jpg"></a></p>       <p>De donde:</p>     <p>IS = &Iacute;ndice de Severidad    <br>  n0 = N&uacute;mero de flores afectadas en el Nivel 0 de severidad    <br>  n1 = N&uacute;mero de flores afectadas en el Nivel 1 de severidad    <br>  n2 = N&uacute;mero de flores afectadas en el Nivel 2 de severidad    <br>  n3 = N&uacute;mero de flores afectadas en el Nivel 3 de severidad    <br>  n4 = N&uacute;mero de flores afectadas en el Nivel 4 de severidad.</p>      <p>Trascurridos los 5 d&iacute;as de incubaci&oacute;n se realiz&oacute; un an&aacute;lisis destructivo para determinar el porcentaje de p&eacute;talos con lesiones en los 10 p&eacute;talos m&aacute;s externos de cada flor, siguiendo la escala de severidad descrita por Medina <i>et al.</i>, (2009) y empleando el &iacute;ndice (IS) descrito arriba. Por cada flor de las tres r&eacute;plicas, se hizo la lectura de 10 p&eacute;talos para un total de 150 p&eacute;talos por tratamiento.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico.</b> El an&aacute;lisis estad&iacute;stico se realiz&oacute; con el programa SPSS (Statistical Program for the Social Sciences) versi&oacute;n 11.5. Se emple&oacute; la tabla de ANOVA para el an&aacute;lisis de homogeneidad de varianzas y se realiz&oacute; una prueba de comparaciones m&uacute;ltiples de Tukey con un intervalo de confianza del 95% y un (P &lt; 0.05).</p>      <p><b>Resultados</b></p>      <p><b><i>Viabilidad de la cepa Lv20 con excipientes seleccionados en prototipos de formulaci&oacute;n l&iacute;quida</i></b></p>      <p>Los cinco pol&iacute;meros seleccionados se evaluaron en t&eacute;rminos de viscosidad a diferentes concentraciones (0.25%, 0.50%, 1.0%, 1.5%, 2.0%, 5.0% y 10%), descartando aquellas concentraciones cuyo tiempo de desplazamiento de 8 mL de soluci&oacute;n, a trav&eacute;s de una pipeta de 10 mL superaba los 60 s, por considerar que estos valores representaba viscosidades superiores a las recomendadas para una formulaci&oacute;n l&iacute;quida (Barbosa, 2014 comunicaci&oacute;n personal). Con las concentraciones seleccionadas para cada pol&iacute;mero (1.0, 1.5 y 2.0% para P1 y P4; de 0.5, 1.0 y 1.5% para P2; 0.5 y 1.0% para P3; y de 1.0, 5.0 y 10.0% para P5), se procedi&oacute; a la determinaci&oacute;n de la compatibilidad de los pol&iacute;meros con las levaduras seleccionadas.</p>      <p>Al t&eacute;rmino de 48 h de incubaci&oacute;n de la suspensi&oacute;n de la levadura en cada una de los pol&iacute;meros seleccionados, a sus respectivas concentraciones, se determin&oacute; el efecto sobre la viabilidad celular. Los resultados indican que el control con ADE se encontraba con un recuento de c&eacute;lulas viables del orden de 6,0x10<Sup>8</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>, disminuyendo la poblaci&oacute;n en relaci&oacute;n al inoculo inicial (1,0x10<Sup>9</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>). Por otra parte, los tratamientos con los pol&iacute;meros mostraron valores superiores estad&iacute;sticamente significativos (P<U>&lt;</U>0.05) en relaci&oacute;n a los resultados con ADE, con un recuento celular entre 2,7x10<Sup>9</Sup> y 1.20x10<Sup>10</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>, para las diferentes concentraciones evaluadas de los pol&iacute;meros 1, 2 y 4. El pol&iacute;mero 3, present&oacute; valores a&uacute;n m&aacute;s altos (P <U>&lt;</U> 0.05) de 2,2x10<Sup>10</Sup> y 5,5x10<Sup>10 </Sup>c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>, para la concentraci&oacute;n de 0,5% y 1,0% respectivamente, mostrando incrementos en m&aacute;s de 10 veces en el recuento celular en relaci&oacute;n al punto de partida del prototipo de formulaci&oacute;n (<a href="#f2">figura 2</a>). Estos resultados indican que los microorganismos incubados en presencia de los pol&iacute;meros org&aacute;nicos a base de polisac&aacute;ridos, mantuvieron e incluso incrementaron la viabilidad celular durante el periodo de incubaci&oacute;n, contrario a la disminuci&oacute;n encontrada en el control de agua, lo cual sugiere que dichos pol&iacute;meros pueden ser empleados como sustrato nutricional por la cepa de<i> R. mucilaginosa</i> Lv20 (<a href="#f1">figura 1</a>). Por otra parte, el tratamiento con el pol&iacute;mero 5 present&oacute; concentraciones de 2,87x10<Sup>8</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>, estad&iacute;sticamente similares al control con ADE.</p>      <p align="center"><a name="f2"><img src="img/revistas/biote/v18n2/v18n2a03f2.jpg"></a></p>       <p><b><i>Viabilidad de cepas de levadura con mezcla de pol&iacute;meros</i></b></p>      <p>Los resultados de la viabilidad a las 48 h, permitieron seleccionar el pol&iacute;mero 1 ya que no afecta la viabilidad celular a las 48 h de incubaci&oacute;n y por el contrario incrementa el recuento celular y el pol&iacute;mero 5 ya que si bien disminuye la viabilidad celular, puede aportar una mayor cobertura en la formulaci&oacute;n final. Con el objeto de determinar el potencial de estos pol&iacute;meros solos y en mezcla entre ellos, a una proporci&oacute;n de 50:50 y 25:50 (P1:P5), se decidi&oacute; evaluar la viabilidad celular contra el tiempo de dichos prototipos de formulaci&oacute;n.  Los tratamientos a la concentraciones de P1 al 1% y las mezclas de este con P5 (50:50 y 25:75) muestran una gran estabilidad a trav&eacute;s del tiempo, terminando con concentraciones estad&iacute;sticamente similares a la concentraci&oacute;n inicial (1,00x10<Sup>9</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>). Estas concentraciones son superiores al tratamiento control con ADE, que present&oacute; una ca&iacute;da constante en la viabilidad celular desde el segundo d&iacute;a de incubaci&oacute;n hasta el d&iacute;a 90 cuando la concentraci&oacute;n cae a 1,47x10<Sup>6</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>. Por otra parte, los tratamientos a base de P5, muestran una ca&iacute;da en la viabilidad celular de alrededor de 10 veces en las tres concentraciones evaluadas. Es importante anotar que el tratamiento con el pol&iacute;mero 5 al 1%, se contamin&oacute; despu&eacute;s del d&iacute;a 20 de evaluaci&oacute;n, por lo que fue descartado del an&aacute;lisis (<a href="#t1">tabla 1</a>). Sin embargo, las viabilidades en los prototipos de formulaci&oacute;n a base de P5 restantes, mostraron un incremento hacia el d&iacute;a 20 y 60 de evaluaci&oacute;n, para luego volver a caer, terminando con los valores de viabilidad m&aacute;s bajo con 2,60x10<Sup>8 </Sup>y 6,60x10<Sup>8</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup> para las concentraciones de 5% y 10% respectivamente (<a href="#t1">tabla 1</a>).</p>      <p align="center"><a name="t1"><img src="img/revistas/biote/v18n2/v18n2a03t1.jpg"></a></p>       <p><b><i>Desarrollo de prototipos de formulaci&oacute;n s&oacute;lida</i></b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Prueba de disoluci&oacute;n del prototipo de formulaci&oacute;n con el n&uacute;cleo de granulaci&oacute;n</b></p>      <p>Con el objeto de desarrollar un prototipo de formulaci&oacute;n granulado se seleccionaron tres az&uacute;cares (sacarosa, dextrosa y manitol), que permitiera desarrollar un n&uacute;cleo de formulaci&oacute;n. Para este prop&oacute;sito se midi&oacute; el tiempo (en segundos) de la disoluci&oacute;n en agua de los az&uacute;cares seleccionados, empleando como control la urea, por su r&aacute;pida disoluci&oacute;n, que en este caso fue de 9,7 segundos. Los tiempos de disoluci&oacute;n encontrados fueron de 35,6, 16.1 y 23,4 segundos para la sacarosa, manitol y dextrosa respectivamente. Con estos resultados se llev&oacute; a cabo el prototipo de formulaci&oacute;n granulada, empleando el principio activo previamente suspendido en los pol&iacute;meros (mezcla P1:P5 50:50) y se realiz&oacute; nuevamente la prueba de disoluci&oacute;n, encontrando que los tiempos se incrementaron casi al doble, con 60,1, 30,1 y 44,7 para sacarosa, manitol y dextrosa respectivamente. Esta evaluaci&oacute;n se tom&oacute; con el fin de asociar el tiempo, con la capacidad de disgregaci&oacute;n del s&oacute;lido antes y despu&eacute;s de la formulaci&oacute;n, determinando as&iacute; caracter&iacute;sticas esenciales de un producto s&oacute;lido para la aplicaci&oacute;n en campo.</p>      <p><b>Determinaci&oacute;n de la viabilidad celular <b> en los prototipos granulados</b></b></p>      <p>De acuerdo a los resultados obtenidos en t&eacute;rminos de la disoluci&oacute;n de los prototipos de formulaci&oacute;n, se evalu&oacute; la viabilidad celular del principio activo con los tres agentes de nucleaci&oacute;n contra el tiempo.  La <a href="#t2">tabla 2</a> indica que los prototipos a base de dextrosa y sacarosa redujeron considerablemente la viabilidad celular de la cepa.  Con el prototipo de formulaci&oacute;n a base de dextrosa, la cepa Lv20 tuvo una concentraci&oacute;n inicial de 4,1x10<Sup>9</Sup> c&eacute;lulas.g<Sup>-1</Sup>, mientras la evaluaci&oacute;n hasta el d&iacute;a 60, mostr&oacute; una concentraci&oacute;n de 5,3x10<Sup>4 </Sup>c&eacute;lulas.g<Sup>-1 </Sup>y de 6,2x10<Sup>3 </Sup>c&eacute;lulas.g<Sup>-1 </Sup>en el almacenamiento a 4 &deg;C y 25 &deg;C respectivamente. Debido a que estos recuentos no corresponden a valores que puedan tener actividad biocontroladora, se decidi&oacute; suspender la evaluaci&oacute;n de la viabilidad de estos prototipos. En la evaluaci&oacute;n con el prototipo de formulaci&oacute;n a base de sacarosa, se tuvo una concentraci&oacute;n inicial de 6,3x10<Sup>9</Sup> c&eacute;lulas.g<Sup>-1 </Sup>y a los 90 d&iacute;as de evaluaci&oacute;n esta concentraci&oacute;n bajo a 5,40x10<Sup>5</Sup> y 3,07x10<Sup>4</Sup> c&eacute;lulas.g<Sup>-1 </Sup>para la temperatura de almacenamiento de 4&deg;C y 25&deg;C, respectivamente (<a href="#t2">tabla 2</a>).</p>      <p align="center"><a name="t2"><img src="img/revistas/biote/v18n2/v18n2a03t2.jpg"></a></p>       <p>El prototipo de formulaci&oacute;n a base de Manitol, inicio con una concentraci&oacute;n celular de 4,2x10<Sup>9</Sup> c&eacute;lulas.g<Sup>-1</Sup> y fue evaluado hasta el d&iacute;a 90, mostrando viabilidades del orden de 1,2x10<Sup>8</Sup> c&eacute;lulas.g<Sup>-1</Sup> y 4,8x10<Sup>7</Sup> c&eacute;lulas.g<Sup>-1</Sup> a 4 <Sup>o</Sup>C y 25 &deg;C respectivamente a los 90 d&iacute;as de almacenamiento. Por otra parte los porcentajes de humedad variaron entre prototipos de formulaci&oacute;n y temperatura de almacenamiento ya que a 4 &deg;C presentaron humedades cercanas al 14% mientras que a 25 <Sup>o</Sup>C la humedad present&oacute; rangos entre 14 y 1,2% (<a href="#t3">tabla 3</a>).</p>      <p align="center"><a name="t3"><img src="img/revistas/biote/v18n2/v18n2a03t3.jpg"></a></p>       <p><b>Evaluaci&oacute;n de actividad biocontroladora <i>in vivo </i>en rosas variedad vendela tipo exportaci&oacute;n </b></p>      <p>Los resultados de la evaluaci&oacute;n de viabilidad y pureza, permitieron seleccionar los prototipos de formulaci&oacute;n basados en las mezclas de P1:P5 (50:50) como agente para resuspender el principio activo, y manitol como agente nucleador almacenados tanto a 4 &deg;C y 25 &deg;C, con el objeto de evaluar el potencial biocontrolador de los prototipos de formulaci&oacute;n. Las condiciones del ensayo fueron altamente conducentes de enfermedad, ya que se emple&oacute; la infestaci&oacute;n natural, m&aacute;s una infestaci&oacute;n artificial de <i>B. cinerea</i> (10.000 prop&aacute;gulos por unidad experimental), lo que condujo a que el porcentaje de incidencia del ensayo fuera del 100% para todos los tratamientos. Por tal motivo se decidi&oacute; estimar el potencial biocontrolador de los prototipos de formulaci&oacute;n a trav&eacute;s del &iacute;ndice de severidad por flor y por p&eacute;talo para los 10 p&eacute;talos m&aacute;s externos de cada flor.</p>      <p>Al realizar la lectura del &iacute;ndice de severidad del d&iacute;a 5 en la flor completa, los resultados muestran que el control positivo de enfermedad present&oacute; un promedio en el &iacute;ndice de severidad de 3.1. Este tratamiento no mostr&oacute; diferencias significativas con el tratamiento de la formulaci&oacute;n a 25 &deg;C, que obtuvo un nivel de severidad de 3.0. Por otra parte, la formulaci&oacute;n con 100 d&iacute;as de almacenamiento a 4 &deg;C, mostr&oacute; un promedio en el &iacute;ndice de severidad de 2.0, mientras que la formulaci&oacute;n nueva con solo 10 d&iacute;as de almacenamiento obtuvo un nivel de 2.2, estas dos &uacute;ltimas no tuvieron diferencias estad&iacute;sticas entre s&iacute;, ni con la levadura sin formular, que present&oacute; un nivel de 2.5 en la escala de severidad y diferencias significativas (P &lt; 0.05) con los dem&aacute;s tratamientos (<a href="#f3">figura 3</a>).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f3"><img src="img/revistas/biote/v18n2/v18n2a03f3.jpg"></a></p>       <p>En cuanto al porcentaje de p&eacute;talos infectados por flor evaluado en los diez p&eacute;talos m&aacute;s externos (<a href="#f4">figura 4</a>), merece mencionar que las rosas inoculadas presentaron en promedio el 86,6% de p&eacute;talos infectados, indicando un alto nivel de virulencia de la cepa de <i>B. cinerea</i> empleada, bajo las condiciones analizadas. Por otra parte, el control negativo mostr&oacute; un porcentaje de p&eacute;talos infectados del 14,6%, indicando que ese era el nivel de infestaci&oacute;n con el que ven&iacute;an las flores del invernadero comercial. En relaci&oacute;n a los tratamientos, llama la atenci&oacute;n que la formulaci&oacute;n almacenada a 25&deg;C tuvo un porcentaje de infecci&oacute;n del 74,6%, el cual es estad&iacute;sticamente similar al control de enfermedad, indicando ausencia de actividad biocontroladora. La levadura sin formulaci&oacute;n present&oacute; un valor de porcentaje de infecci&oacute;n del 70%, mientras que la f&oacute;rmula almacenada por 100 d&iacute;as a 4&deg;C un valor de 47,0% y la formulaci&oacute;n nueva con solo 10 d&iacute;as de almacenamiento obtuvo un promedio de 48,7% (<a href="#f4">figura 4</a>).</p>      <p align="center"><a name="f4"><img src="img/revistas/biote/v18n2/v18n2a03f4.jpg"></a></p>      <p>Luego de analizar el porcentaje de infecci&oacute;n de los 10 p&eacute;talos m&aacute;s externos de cada flor, se procedi&oacute; a analizar la severidad en cada uno de dichos p&eacute;talos. El nivel de severidad para el control positivo, estuvo en un promedio de nivel 1.8, el control negativo de 0,26, mostrando diferencias estad&iacute;sticas (p &lt; 0.05) con los dem&aacute;s tratamientos. La levadura sin formular tuvo un nivel de 1.36, la f&oacute;rmula de 100 d&iacute;as de almacenamiento a 4&deg;C un nivel de 1, la formulaci&oacute;n nueva obtuvo un nivel de 1.12 sin diferencias entre si y la formulaci&oacute;n almacenada a 25&deg;C, obtuvo un nivel de severidad de 1.43, sin presentar diferencias con el control del pat&oacute;geno (<a href="#f5">figura 5</a>).</p>      <p align="center"><a name="f5"><img src="img/revistas/biote/v18n2/v18n2a03f5.jpg"></a></p>       <p><b>Discusi&oacute;n </b></p>      <p>En este trabajo se parti&oacute; de un aislamiento de levadura filosf&eacute;rica previamente aislada y evaluada por su potencial biocontrolador (Medina <i>et al</i>., 2009), para el desarrollo de un prototipo de formulaci&oacute;n granulado. Otros trabajos han desarrollado formulados granulados a base de levaduras filosf&eacute;ricas, empleando veh&iacute;culos como talco o kaolin para el control de agentes fitopat&oacute;genos de postcosecha (Kinai &amp; Yildiz, 2008). Sin embargo, el uso de pol&iacute;meros en formulados s&oacute;lidos han sido empleados en combinaci&oacute;n con bacterias (Bashan <i>et al</i>., 2002), pero su uso en levaduras como principio activo ha sido muy limitado (Pati&ntilde;o-Vera <i>et al</i>., 2005).</p>      <p>La primera fase de este estudio consisti&oacute; en identificar la compatibilidad de 5 pol&iacute;meros diferentes con la cepa de <i>R. mucilaginosa</i> Lv20. Los cuatro pol&iacute;meros org&aacute;nicos a base de polisac&aacute;ridos evaluados, no &uacute;nicamente son compatibles con dicho aislamiento, sino que en la cepa se present&oacute; un incremento en biomasa celular, con diferencias estad&iacute;sticamente significativas (P&lt;0.05), al menos cuando son incubadas durante 48 horas a 25&deg;C. El incremento en biomasa mencionado si bien es aparentemente atractivo para efectos de mantener la viabilidad celular de los microorganismos, tambi&eacute;n puede ser contraproducente para la formulaci&oacute;n.  En este sentido Pati&ntilde;o-Vera <i>et al. </i>(2005), reportaron la ca&iacute;da dram&aacute;tica en viabilidad (4-5 &oacute;rdenes de magnitud en un mes), cuando la concentraci&oacute;n inicial de un formulado, a base de la cepa BMH129 de <i>Rhodotorula minuta</i>, se prepar&oacute; en el orden de 10<Sup>10</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>, en comparaci&oacute;n a 10<Sup>9</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup>, donde pierde alrededor de 2 &oacute;rdenes de magnitud en seis meses de almacenamiento. Situaci&oacute;n similar ha sido reportada en formulaciones con <i>Pichia anolama</i> (Melin <i>et al</i>., 2007), donde los autores sugieren que el efecto negativo sobre la viabilidad celular, reside en la acumulaci&oacute;n de metabolitos t&oacute;xicos producidos por la biomasa celular.</p>      <p>Estos resultados preliminares nos llevaron a la siguiente fase del estudio, la cual consisti&oacute; en la evaluaci&oacute;n de mezclas de pol&iacute;meros, de tal forma que pudi&eacute;semos obtener los beneficios de poblaciones altas en el formulado a base de pol&iacute;meros org&aacute;nicos, pero controladas al mezclarlo con el pol&iacute;mero sint&eacute;tico 5 (PVP). Este &uacute;ltimo pol&iacute;mero mantiene la viabilidad celular estable, pero adem&aacute;s le confiere otro tipo de propiedades al prototipo de formulaci&oacute;n, como un mejor recubrimiento, gracias a la formaci&oacute;n de una pel&iacute;cula sobre la superficie del p&eacute;talo, con lo cual se busca mejorar la actividad de las levaduras (Paau, 1998; Lloyd, 1983).</p>      <p>Los resultados obtenidos en t&eacute;rminos de viabilidad en las formulaciones l&iacute;quidas empleando &uacute;nicamente los pol&iacute;meros 1 y 5 con sus mezclas, mostraron que los tratamientos que lograron una mayor estabilidad hasta 90 d&iacute;as de almacenamiento a 25&deg;C con la cepa Lv20, fueron el pol&iacute;mero 1 al 1% y las mezclas 50-50 y 25-75 entre los pol&iacute;meros 1 (1%) y 5 (10%) respectivamente (P &lt; 0.05). Algunos estudios han reportado el uso de biopol&iacute;meros para la formulaci&oacute;n de inoculantes bacterianos esporulados (<i>Bacillus</i> sp.) y no esporulados (<i>Azospirillium</i> y <i>Azotobacter</i>), con resultados de viabilidad superiores a 3.5x10<Sup>7</Sup> c&eacute;lulas.mL<Sup>-1</Sup> luego de m&aacute;s de un a&ntilde;o de almacenamiento a 30 &deg;C (Amalraj <i>et al</i>., 2013). Incluso se han reportado pol&iacute;meros para el desarrollo de bioinoculantes a base de bacterias, donde mezclas entre distintos pol&iacute;meros sint&eacute;ticos han permitido obtener niveles de supervivencia prolongados en microorganismos como<i> Bradyrhizobium elkanii </i>(Denardin &amp; Freire, 2000). En el caso de las levaduras se ha evaluado el uso de az&uacute;cares (e.i trehalosa) (Li <i>et al</i>., 2008), polialcoles (e.i glicerol), incluso algunos polisac&aacute;ridos como goma de xantana y alginato de sodio (Pati&ntilde;o-Vera <i>et al</i>., 2005; Kinay &amp; Yildiz, 2008), o se ha manipulado la actividad de agua para conferirle mayor estabilidad a las cepas durante el almacenamiento (Schilder <i>et al</i>., 2011; Teixido <i>et al</i>., 1998), entre otras estrategias para la estabilizaci&oacute;n de las formulaciones.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Una vez identificadas las mezclas m&aacute;s adecuadas para conferir estabilidad al prototipo de formulaci&oacute;n, se busc&oacute; determinar el az&uacute;car que sirviera tanto como agente preservativo para evitar contaminaci&oacute;n microbiana, as&iacute; como dispersante al momento de disolver la formulaci&oacute;n en agua (Burges &amp; Jones, 1998).  De los tres az&uacute;cares evaluados, se escogi&oacute; el manitol como base del prototipo, debido a que la viabilidad encontrada fue m&aacute;s alta que la encontrada con los otros dos n&uacute;cleos (sacarosa y glucosa). Es bien sabido que algunos az&uacute;cares (e.i trehalosa, lactosa), utilizados para formulaciones, pueden generar un efecto protector, evitando la desnaturalizaci&oacute;n de prote&iacute;nas, durante procesos de secado o deshidrataci&oacute;n (Li <i>et al</i>., 2008), o incluso cuando son empleadas en formulaciones l&iacute;quidas (Abadias <i>et al</i>., 2003; Melin <i>et al</i>., 2011). El efecto de dichos az&uacute;cares sobre la tolerancia a las distintas condiciones de almacenamiento, puede variar dependiendo del tipo de microorganismo (Melin <i>et al</i>., 2011). En este sentido, Melin <i>et al</i>.  (2007), reportan que el empleo de sacarosa o trehalosa como crioprotector en un proceso de liofilizaci&oacute;n, no mostraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas en la viabilidad celular despu&eacute;s de 6 meses de almacenamiento en varias formulaciones de <i>P. anomala</i>. Sin embargo, en este estudio los prototipos de formulaci&oacute;n con sacarosa generaron un detrimento de la viabilidad celular bajo las condiciones evaluadas. Las diferencias del efecto de la sacarosa sobre la viabilidad celular de <i>Rhodotorula o Pichia</i> puede ser debido a diferencias por la fisiolog&iacute;a de los microorganismos o en el procedimiento realizado, estudios posteriores deben ser desarrollados para poder sacar conclusiones al respecto.</p>      <p>No se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas en la viabilidad celular entre temperaturas de almacenamiento a 4 y 25&deg;C,  entre el d&iacute;a 1 y el 15 y entre el d&iacute;a 60 y 90 de incubaci&oacute;n para el prototipo de formulaci&oacute;n con manitol. Sin embargo, los resultados muestran una tendencia en la que a menor temperatura mayor viabilidad. Distintos estudios han demostrado que el almacenamiento a bajas temperaturas puede generar una estabilidad mayor a las c&eacute;lulas, debido a que estas disminuyen su metabolismo, previniendo as&iacute; la producci&oacute;n de metabolitos t&oacute;xicos (Melin <i>et al</i>., 2006; Kinay &amp; Yildiz, 2008). En un estudio previo, donde se almacenan formulaciones l&iacute;quidas a base de <i>P. an&oacute;mala</i> a 10&deg;C, 20&deg;C y 30&deg;C durante 12 meses, se logra evidenciar que el porcentaje de viabilidad en el almacenamiento a 10&deg;C es un 30% superior al encontrado en el almacenamiento a 30&deg;C, confirmando que la viabilidad celular permanece m&aacute;s estable a bajas temperaturas (Melin <i>et al</i>., 2007). Ca&ntilde;amas <i>et al.</i> (2011) reportan un prototipo de formulaci&oacute;n a base de <i>Candida sake</i>, para el control de <i>B. cinerea</i> en uvas, donde el prototipo almacenado a 4 &deg;C logra reducir la incidencia de enfermedad en un 50%, confirmando que el almacenamiento a bajas temperaturas proporciona a las c&eacute;lulas una mayor estabilidad y nivel de control que los que se pueden obtener con un almacenamiento a temperaturas elevadas (Ca&ntilde;amas <i>et. al</i>., 2011).</p>      <p>Los porcentajes de humedad reportados en este trabajo, variaron de acuerdo al tiempo y la temperatura de almacenamiento. Los prototipos de formulaci&oacute;n a base de la cepa Lv20 mostraron porcentajes cercanos al 14% en 4&deg;C y cercanos al 1% en la temperatura de 25 &deg;C, los cuales son significativamente diferentes entre s&iacute; (P &lt; 0.05).  El porcentaje de humedad de una formulaci&oacute;n comercial solida es una caracter&iacute;stica cr&iacute;tica, debido a que altos porcentajes de humedad, pueden generar compactaci&oacute;n e inconvenientes en la manipulaci&oacute;n, as&iacute; como tambi&eacute;n contaminaci&oacute;n por otros microorganismos ajenos al sistema (Burges, 1998). Incluso la respuesta fisiol&oacute;gica al contenido de humedad puede variar entre aislamientos microbianos, siendo posiblemente una fuente importante de la variaci&oacute;n en viabilidad encontrada bajo diferentes prototipos de formulaci&oacute;n (Burges, 1998). As&iacute; mismo, porcentajes bajos de humedad, pueden afectar la viabilidad celular a expensas de una reducci&oacute;n en t&eacute;rminos de actividad de agua, a niveles por debajo de los necesarios para mantener la viabilidad celular (Grant, 2004). Dadas las diferencias encontradas en t&eacute;rminos de los porcentajes de humedad de los prototipos de formulaci&oacute;n almacenados a 4&deg;C y 25&deg;C, muy posiblemente las diferencias encontradas en la viabilidad celular, est&eacute;n determinadas no &uacute;nicamente por efecto de la temperatura, como se explic&oacute; arriba, sino debido al bajo contenido de agua disponible en la formulaci&oacute;n, lo cual pudo afectar la viabilidad celular. Estudios posteriores se deben llevar a cabo para determinar el peso de cada una de estas variables en el deterioro de la viabilidad celular de las levaduras bajo estudio.</p>      <p>La eficacia en el control a base de levaduras var&iacute;a de acuerdo al patosistema estudiado y los diferentes tratamientos empleados para el dise&ntilde;o de los prototipos de formulaci&oacute;n. La aplicaci&oacute;n de <i>C. guillermondii</i> y <i>P. an&oacute;mala</i> para el control de una infestaci&oacute;n natural (mayoritariamente a base de <i>B. cinerea</i>)<i>, </i>causante de la enfermedad de pudrici&oacute;n del tomate, mostraron una disminuci&oacute;n cercana al 50% en t&eacute;rminos de incidencia y severidad en comparaci&oacute;n al control sin aplicar (Zong <i>et al</i>., 2010). De forma similar, prototipos de <i>C. sake</i> formulados con diferentes concentraciones de trehalosa y almacenada por 4 meses a 4&deg;C, mostraron una reducci&oacute;n en incidencia en manzanas inoculadas con una poblaci&oacute;n de 10<Sup>4</Sup> conidias.mL<Sup>-1</Sup> de <i>P. expansum</i>, entre 56% y 70%, similar a las c&eacute;lulas frescas sin formular (Abadias <i>et al</i>., 2003). En otro estudio, el efecto combinado de <i>C. laurentii </i>y<i> R. glutinis</i> tambi&eacute;n result&oacute; en el m&aacute;s alto nivel de eficacia de control biol&oacute;gico contra <i>P. expansum,</i> reduciendo los &iacute;ndices de la enfermedad a 45 y 56%, respectivamente, en comparaci&oacute;n con 94 y 81% en el control no tratado (Li <i>et al</i>., 2008). En este trabajo se logr&oacute; la disminuci&oacute;n de los s&iacute;ntomas de la enfermedad en un 39% en <i>Rosas</i> sp. cv Vendela, en relaci&oacute;n al control de enfermedad que mostro un porcentaje de p&eacute;talos infectados de 86%, con un prototipo de formulaci&oacute;n a base de la cepa Lv20 almacenada a 4&deg;C durante 100 d&iacute;as, logrando niveles de control similares a la cepa reci&eacute;n formulada.</p>      <p><b>Conclusi&oacute;n</b></p>      <p>El prototipo de formulaci&oacute;n a base de <i>R. mucilaginosa</i> Lv20, resuspendida en una mezcla de P1:P5 (50:50) y empleando manitol como agente nucleador en una formulaci&oacute;n granulada, mantuvo una viabilidad suficiente a los 100 d&iacute;as de almacenamiento a 4<Sup>o</Sup>C para mostrar actividad biocontroladora contra <i>B. cinerea</i> en rosas de corte. Es necesario realizar estudios de almacenamiento m&aacute;s prolongados, sin embargo el prototipo de formulaci&oacute;n aqu&iacute; dise&ntilde;ado es promisorio para el manejo de la enfermedad del moho gris en rosas de corte tipo exportaci&oacute;n, especialmente si se emplea dentro del ciclo de cultivo, como una estrategia de rotaci&oacute;n de productos de s&iacute;ntesis qu&iacute;mica.</p>      <p><b>Agradecimientos</b></p>      <p>Los autores agradecen al Departamento Administrativo de Ciencia Tecnolog&iacute;a e Innovaci&oacute;n Colciencias por su apoyo financiero a trav&eacute;s del Contrato RC: #387 &ndash; 2011, para el desarrollo de la presente investigaci&oacute;n.</p>  <hr>      <p><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></p>      <!-- ref --><p>Abadias, M., Teixido, N., Usall, J. &amp; Vi&ntilde;as, I. (2003). 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Disponible en <a href="http://www.cecodes.org.co/descargas/casos_sostenibilidad/casosind/Asocolflores.pdf" target="_blank">http://www.cecodes.org.co/descargas/casos_sostenibilidad/casosind/Asocolflores.pdf</a>  Consultado el: 29 oct 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410918&pid=S0123-3475201600020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Bashan, Y., Hernandez, J-P., Leyva, LA., &amp;  Bacilio, M. (2002). 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Formulation of mycoinisecticides. In Burgues, H.D. Formulation of microbial pesticides: beneficial microorganisms, nematodes and seed treatments. <i>Kluwer academic publishers</i>. Norwell. MA. USA. pp131-185.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410923&pid=S0123-3475201600020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Burges, H.D. &amp; Jones. (1998). Formulations of bacteria, viruses and protozoa to control insects. In Burgues, H.D. Formulation of microbial pesticides: beneficial microorganisms, nematodes and seed treatments. <i>Kluwer academic publishers</i>. Norwell. MA. 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<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Elad, Y., &amp; Stewart, A. (2007). Microbial control of <i>Botrytis</i> spp. In Ed. Elad, Y.; Williamson, B.; Tudzynski, P.; Delen, N. <i>Botrytis: biology, pathology and control</i>. Springer Netherlands. pp. 223-241.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410941&pid=S0123-3475201600020000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Fern&aacute;ndez, P. I., RohrII, T. G., de OliveiraII, P. J., XavierIII, G. R. N., &amp; Gouv&ecirc;a Rumjanek I. (2009). Polymers as carriers for rhizobial inoculant formulations.<i> Pesquisa Agropecu&aacute;ria Brasileira, 44</i> (9),1184-1190.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410943&pid=S0123-3475201600020000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Florverde. Florverde&reg;. En l&iacute;nea. (2009). Disponible en: <a href="http://www.florverde.org/" target="_blank">http://www.florverde.org/</a>. Consultado: 2 enero de 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410945&pid=S0123-3475201600020000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>GLOBALGAP. GLOBALG.A.P - Principal - Globalgap. En l&iacute;nea. (2011). Disponible en: <a href="http://www.globalgap.org/cms/front_content.php?client=1&amp;changelang=3&amp;parent=&amp;subid=&amp;idcat=9" target="_blank">http://www.globalgap.org/cms/front_content.php?client=1&amp;changelang=3&amp;parent=&amp;subid=&amp;idcat=9</a>. Consultado: 2 enero de 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410947&pid=S0123-3475201600020000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Grant, W.D. (2004). Life at low water activity. <i>Philosophical Transactions of The Royal Society B Biological Sciences</i>, <i>359</i>, 1249-1267.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410949&pid=S0123-3475201600020000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
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<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Lloyd, J. M. (1983). Use of microorganisms in conjunction with seeds. Patente Neozelandeza N&deg;. NZ194466.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410961&pid=S0123-3475201600020000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Medina, C., Cristancho, D., &amp; Uribe-V&eacute;lez, D. (2009). Respuesta fisiol&oacute;gica y capacidad antagonista de aislamientos filosf&eacute;ricos de levaduras obtenidos en cultivos de mora (<i>Rubus glaucus</i>). <i>Acta Biol&oacute;gica Colombiana, 14</i> (3), 181-196.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410963&pid=S0123-3475201600020000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Melin, P., Schn&uuml;rer, J., &amp; H&aring;kansson, S. (2011). Formulation and stabilisation of the biocontrol yeast <i>Pichia anomala</i>. <i>Antonie van Leeuwenhoek, 99</i>(1), 107-112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410965&pid=S0123-3475201600020000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Melin, P., H&aring;kansson, T.H., &amp; Schn&uuml;rer, J. (2007). Optimizagtion and comparison of liquid and dry formulations of the biocontrol yeast <i>Pichia anomala</i> J121. <i>Journal of Applied Microbiology and Biotechnology</i>, <i>73</i>, 1008-1016.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410967&pid=S0123-3475201600020000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Melin, P., H&aring;kansson, S., Eberhard, T.H., &amp; Schn&uuml;rer, J. (2006). Survival of the biocontrol yeast <i>Pichia anomala</i> after long term storage in liquid formulations at different temperatures, assessed by flow cytometry. <i>Journal of Applied Microbiology,100</i>, 264-271.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410969&pid=S0123-3475201600020000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Pati&ntilde;o-Vera, M., Jimenez, B., Balderas, K., Allende, R., Carrillo, A., &amp; Galindo, E. (2005). Pilot-scale production and liquid formulation of <i>Rhodotorula minuta</i>, a potential biocontrol of mango anthracnose<i>. Journal of Applied Microbiology,99</i>, 540-550.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410971&pid=S0123-3475201600020000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Paau, A.S. (1998). Formulation of beneficial organisms applied to soil. In <i>Formulation of microbial pesticides: beneficial microorganisms, nematodes and seed treatments</i>. Springer Netherlands. pp. 235-254.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410973&pid=S0123-3475201600020000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>S&aacute;nchez, R., Damas, R., Dom&iacute;nguez, P., Cerezo, P., Salcedo, I., Aguzzi, C., &amp; Viseras, C. (2010). Uso de la Hidroxi Propil Metil Celulosa (HPMC) en liberacio&#769;n modificada de fa&#769;rmacos. Farmaespa&ntilde;a Ind. Pp 48-51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410975&pid=S0123-3475201600020000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Schilder, D.A., Janisiewicz, W.J., &amp; Kurtzman, C.P. (2011). Agriculturally important yeast: biological control of field and postharvest diseases using yeast antagonists and yeast as pathogens of plants. In Ed Kurtzman, C.P. &amp; Fell, J.W. <i>The yeast a taxonomic study</i>. Elsevier. Pp. 45-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410977&pid=S0123-3475201600020000300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Shtienberg, D. (2007). Rational management of Botrytis-incited diseases: Integration of control measures and use of warning systems. In Ed. Elad, Y.; Williamson, B.; Tudzynski, P.; Delen, N. <i>Botrytis: Biology, pathology and control</i>. Springer Netherlands. pp. 335-347.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410979&pid=S0123-3475201600020000300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Suvorova, A. I., Tjukova, I. S., &amp;  Trufanova, E. I. (1999).  Thermodynamic and Diffusion Properties of Biodegradable Systems Based on Starch and Cellulose Derivatives. <i>Journal of Environmental Polymer Degradation, 7</i>(1), 35-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410981&pid=S0123-3475201600020000300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Teixido, N., Vi&ntilde;as, I., Usall, J., &amp; Magan, N. (1998). Improving ecological fitness and environmental stress tolerance of the biocontrol yeast Candida sake by manipulation of intracellular sugar alcohol and sugar content. <i>Mycological Research, 102</i>, 1409-1417.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410983&pid=S0123-3475201600020000300038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Tittabutra, P. W., Payakaponga, N., Teaumroonga, P. W, Singletonb, &amp; Boonkerda, N. (2007). Growth, survival and field performance of bradyrhizobial liquid inoculant formulations with polymeric additives. <i>Science Asia, 33</i>, 69-77.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410985&pid=S0123-3475201600020000300039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Wang, Y., Xu, Z., Zhu, P., Liu, Y., Zhang, Z., Mastuda, Y., Toyoda, H., &amp; Xu, L. (2010). Postharvest biological control of melon pathogens using <i>Bacillus subtilis</i> exwb1. <i>Journal of Plant Pathology, 92</i>(3), 645-652.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410987&pid=S0123-3475201600020000300040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Wisniewsky, M., Wilson, Ch., Droby, S., Chalutz, E., El Ghaouth, A., &amp; Stevens, C. (2007).  Postharvest biocontrol: new concepts and applications. In Biological Control a global perspective. Eds Vincent, C., Goettel, M.S., &amp; Lazarovits, G. <i>CAB International</i>. Pp 262-273.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410989&pid=S0123-3475201600020000300041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Young, C., Rekha, P.D., Lai, W.A., &amp; Arun, A.B. (2006). Encapsulation of plant growth-promoting bacteria in alginate beads enriched with humic acid. <i>Biotechnology and Bioengineering, 95</i>, 76-83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410991&pid=S0123-3475201600020000300042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>Zong, Y., Liu, J., Li, B., Qin, G., &amp; Tian, S. (2010). Effects of yeast antagonists in combination with hot water treatment on postharvest diseases of tomato fruit. <i>Biological Control, 54</i>, 316-321.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2410993&pid=S0123-3475201600020000300043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>  </font>      ]]></body><back>
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