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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ANÁLISIS DEL EFECTO DE DOS CULTIVARES TRANSGÉNICOS, ALGODÓN Y MAÍZ, SOBRE LA PRINCIPAL FAUNA BENÉFICA EN EL ESPINAL (TOLIMA)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[ANALYSIS OF THE INFLUENCE ON THE MAIN BENEFICIAL FAUNA BY TWO TRANSGENIC CULTIVARS, COTTON AND CORN, AT EL ESPINAL (TOLIMA)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[SUMMARY During three years, field observations and laboratory studies were carried out in order to evaluate, in a general manner, the effect, direct or indirect, that cotton and maize Bt cultivars could have on the natural enemies of the two main insect pests of these plants, Heliothis virescens and Spodoptera frugiperda. Predator and parasitoid populations were analyzed, with the expected result: the Bt toxins, Cry1Ac and Cry1Ab incorporated, respectively, in the cotton cultivar Bollgard® and the maize hybrid Yieldgard® do not exercise a direct effect on the populations of the studied beneficial fauna. The decrease of their populations in commercial fields of both transgenic and conventional varieties is attributed to a decrease of prey and hosts, due to insecticidal applications against pests not controlled by the toxins and the control of H. virescens and S. frugiperda by the cotton and maize Bt cultivars, respectively. It was concluded, that if the tendency of decrease of certain beneficial insects continues also in the conventional fields or "refuge fields", the coccinellid predator Cycloneda, and the parasitoids Cardiochiles and Meteorus should be considered endangered species, further more if in the future the second generation of transgenic cultivars will be implemented in the study area.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Enemigos naturales]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">     <p align=right style='text-aling:right'><b>Ciencias Agropecuarias y biol&oacute;gicas-Art&iacute;culo de Reflexi&oacute;n</b></font></p>     <p align="center"><b>AN&Aacute;LISIS DEL EFECTO DE DOS CULTIVARES TRANSG&Eacute;NICOS, ALGOD&Oacute;N Y MA&Iacute;Z, SOBRE LA PRINCIPAL FAUNA BEN&Eacute;FICA EN EL ESPINAL (TOLIMA)</b></font></p>     <p align="center"><b>ANALYSIS OF THE INFLUENCE ON THE MAIN BENEFICIAL FAUNA BY TWO TRANSGENIC CULTIVARS, COTTON AND CORN, AT EL ESPINAL (TOLIMA)</b></font></p>     <p><b>Ingeborg Zenner de Polan&iacute;a<sup>1</sup></b> <b>Guillermo &Aacute;lvarez Alcar&aacute;z <sup>2</sup>.</b></p>     <p><sup>1</sup> I.A., Ph.D. Docente-Investigador, Facultad de Ingenier&iacute;a Agron&oacute;mica, Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales U.D.C.A. Direcci&oacute;n para correspondencia: Calle 222 No. 55-37.   Bogot&aacute;, D.C. Correo electr&oacute;nico:<a href="mailto:izenner@udca.edu.co">izenner@udca.edu.co</a> </p>     <p><sup>2</sup> I.A. Asistente T&eacute;cnico particular. Correo electr&oacute;nico:<a href="mailto:aguillea42@hotmail.%0d%0acom">aguillea42@hotmail.com</a></p>     <p>Rev. U.D.C.A Act.   Div. Cient. 11 (1): 133-142, 2008 </p> <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>Durante tres a&ntilde;os, se realizaron colectas y observaciones de campo y de laboratorio, con el   fin de evaluar, de manera general, el efecto directo o indirecto que podr&iacute;an   tener los cultivares Bt, algodonero y ma&iacute;z, sobre los enemigos naturales de las   principales plagas de estos dos cultivos: el <i>Heliothis virescens</i> y el <i>Spodoptera   frugiperda</i>. Se analizaron las poblaciones tanto de depredadores como de   parasitoides, con el resultado esperado: las toxinas de <i>Bt</i>, el Cry1Ac y   el Cry1Ab, incorporado respectivamente en el algodonero Bollgard&reg; y el hibrido   de ma&iacute;z Yieldgard&reg;, no ejercen efecto directo sobre las poblaciones de los   insectos ben&eacute;ficos estudiados. La disminuci&oacute;n de sus poblaciones, ya sea en los   lotes comerciales sembradas con cultivos <i>Bt</i> como en los convencionales,   se atribuye a la merma de presas y de hu&eacute;spedes a causa de aplicaciones de   insecticidas contra insectos plagas no controladas con los cultivares   transformados y al control del <i>H. virescens</i> y <i>S. frugiperda</i> por   las toxinas respectivas, incorporadas al algodonero y ma&iacute;z. Se concluye que, si   esta tendencia de disminuci&oacute;n de determinadas especies de insectos ben&eacute;ficos   contin&uacute;a tambi&eacute;n en los lotes convencionales o &quot;refugios&quot;, el   depredador coccin&eacute;lido <i>Cycloneda</i> y los parasitoides <i>Cardiochiles</i> y <i>Meteorus</i>, se deben considerar especies en peligro de v&iacute;a de extinci&oacute;n,   m&aacute;s a&uacute;n si en el futuro se implementar&aacute; el empleo de la segunda generaci&oacute;n de   cultivares transg&eacute;nicos.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Palabras clave: Enemigos naturales, escasez presas, ausencia hu&eacute;spedes, efecto   insecticidas, toxinas <i>Bt</i>.</p> <hr>     <p><b>SUMMARY</b> </p>     <p>During three years, field observations and laboratory   studies were carried out in order to evaluate, in a general manner, the effect,   direct or indirect, that cotton and maize <i>Bt</i> cultivars could have on the   natural enemies of the two main insect pests of these plants, <i>Heliothis   virescens</i> and <i>Spodoptera frugiperda</i>. Predator and parasitoid   populations were analyzed, with the expected result: the <i>Bt</i> toxins,   Cry1Ac and Cry1Ab incorporated, respectively, in the cotton cultivar Bollgard&reg;   and the maize hybrid Yieldgard&reg; do not exercise a direct effect on the   populations of the studied beneficial fauna. The decrease of their populations   in commercial fields of both transgenic and conventional varieties is   attributed to a decrease of prey and hosts, due to insecticidal applications   against pests not controlled by the toxins and the control of <i>H. virescens</i> and <i>S. frugiperda</i> by the cotton and maize <i>Bt</i> cultivars,   respectively. It was concluded, that if the tendency of decrease of certain   beneficial insects continues also in the conventional fields or &quot;refuge   fields&quot;, the coccinellid predator <i>Cycloneda</i>, and the parasitoids <i>Cardiochiles</i> and <i>Meteorus</i> should be considered endangered species, further more if in   the future the second generation of transgenic cultivars will be implemented in   the study area. </p>     <p>Key words: Natural enemies, prey scarcity, host   absence, insecticidal effect, <i>Bt</i> toxins. </p> <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>Una de las principales inquietudes acerca del efecto de la implementaci&oacute;n de los cultivos transg&eacute;nicos   en el tr&oacute;pico y subtr&oacute;pico, donde se encuentra la mayor biodiversidad de fauna   ben&eacute;fica, corresponde a la posible consecuencia negativa que estos cultivares   puedan ejercer sobre los enemigos naturales de los fit&oacute;fagos y, por ende, sobre   el fr&aacute;gil equilibrio actualmente existente en los ecosistemas naturales y los   agroecosistemas.</p>     <p>Las siembras de algod&oacute;n transg&eacute;nico, se han incrementado de una manera dr&aacute;stica e   insospechada. En el a&ntilde;o 2000, en China, se sembraron 1.000.000ha y, en el 2002,   India cultiv&oacute; 10.000.000ha (Tabashnik <i>et al.</i> 2006). James (2004) citado por   Ram&iacute;rez-Romero <i>et al.</i> (2007) menciona que a nivel mundial, en el 2004, se   sembraron aproximadamente 81 millones de hect&aacute;reas de algod&oacute;n y ma&iacute;z   transg&eacute;nico, de los cuales, un 23% correspond&iacute;a a ma&iacute;z gen&eacute;ticamente   modificado. Estos incrementos del &aacute;rea de los cultivares transg&eacute;nicos hacen   especialmente necesario determinar su impacto sobre aquellas especies de   insectos contra las cuales las toxinas <i>Bt</i> incorporadas no ejercen   te&oacute;ricamente un efecto (Andow & Hilbeck, 2004).</p>     <p>Entre los insectos ben&eacute;ficos, los depredadores, de manera indirecta, pueden estar, en   teor&iacute;a expuestos a la acci&oacute;n de la toxina del <i>Bacillus thuringiensis</i> (<i>Bt</i>),   al alimentarse de larvas de lepid&oacute;pteros, plagas que sobreviven a la acci&oacute;n de   la toxina, expresada en las plantas transg&eacute;nicas. Sin embargo, un estudio   realizado por Naranjo (2005) durante seis a&ntilde;os, para evaluar el efecto de   algodonero <i>Bt</i> (Cry1Ac) sobre la abundancia de artr&oacute;podos depredadores,   enemigos naturales de plagas que afectan el follaje, encontr&oacute; que, en la   mayor&iacute;a de los casos, una reducci&oacute;n de las poblaciones de los ben&eacute;ficos se   debi&oacute; a la disminuci&oacute;n de las poblaciones de sus presas. En cambio, Pilcher et   al. (2005), al realizar estudios a gran escala en lotes sembrados con ma&iacute;z   transg&eacute;nico, para determinar el posible efecto sobre la abundancia de   depredadores generalistas, entre las cuales figuraban los coccin&eacute;lidos   (Coleoptera) <i>Coleomegilla maculata</i>, <i>Cycloneda munda</i> y el   antoc&oacute;rido (Heteroptera) <i>Orius incidiosus</i>, no encontraron diferencias   significativas en la abundancia de estas especies, entre ma&iacute;z <i>Bt</i> y ma&iacute;z   convencional.</p>     <p>Los parasitoides, como las diversas especies de <i>Trichogramma</i> (Hymenoptera:   Trichogrammatidae) que parasitan los huevos de las plagas y emergen de &eacute;stos,   no ser&iacute;an afectados, ya que sus larvas se alimentan del embri&oacute;n de su hu&eacute;sped.   Sin embargo, aquellos que atacan a los huevos y emergen de las larvas, no   tendr&iacute;an la misma suerte, pues las larvas neonatas, las cuales son las m&aacute;s afectadas   por la toxina no sobreviven y mueren junto con el parasitoide. Parasitoides de   larvas, normalmente espec&iacute;ficos, carecer&aacute;n de hu&eacute;spedes, si &eacute;stos son afectados   por la toxina <i>Bt</i>, disminuyendo, por lo tanto, considerablemente sus   poblaciones y su efecto sobre las plagas objetivo en siembras no transg&eacute;nicas.   Sisterson & Tabashnik (2005), simulando el efecto de cultivos transformados   sobre parasitoides espec&iacute;ficos, determinaron que la probabilidad de una p&eacute;rdida   del parasitoide aumenta a medida que el porcentaje del &aacute;rea sembrada con   cultivares <i>Bt</i> y la rotaci&oacute;n, entre cultivos <i>Bt</i> y no <i>Bt</i>,   aumenta.</p>     <p>Seguimientos a poblaciones de insectos no objetivo de control por la prote&iacute;na Cry1Ab en   lotes de ma&iacute;z transg&eacute;nico revelaron, en general, la ausencia de diferencias estad&iacute;sticamente   significativas entre las poblaciones presentes en lotes transg&eacute;nicos y   convencionales de ma&iacute;z (ICA, 2007; Daly & Buntin, 2005).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Durante los a&ntilde;os 70´s hasta comienzos de los 90´s, <i>H. virescens</i> fue la plaga m&aacute;s   importante del cultivo del algodonero, no solamente en Colombia, sino en todas   las &aacute;reas cultivadas con esta especie vegetalindustrial en Am&eacute;rica. Fue el   insecto responsable del mayor desastre econ&oacute;mico del cultivo en muchas zonas   del mundo, debido a sus altos niveles de resistencia a todos los insecticidas   utilizados para su control, es decir, a su capacidad para evolucionar a   poblaciones resistentes muy r&aacute;pidamente (Alcar&aacute;z <i>et al.</i> 1990) Sin embargo, a   finales de los 90´s, este bellotero fue perdiendo importancia y su aparici&oacute;n se   torn&oacute; espor&aacute;dica y en bajas poblaciones, lo cual redujo, notoriamente, las   aplicaciones para su control, llegando, incluso, a no reportar su presencia en   algunas zonas de Colombia durante una o m&aacute;s temporadas, lo cual favoreci&oacute;   enormemente el auge de sus enemigos naturales (Alcar&aacute;z <i>et al.</i> 1990). En este   contexto, los mismos autores reportaron m&aacute;s de diez enemigos naturales de <i>H.   virescens</i>, entre los cuales se destacan los parasitoides himen&oacute;pteros <i>Trichogramma</i> spp. y <i>Cardiochiles nigriceps</i> Viereck y los depredadores del Orden   Coleoptera, familia Coccinellidae, <i>Coleomegilla maculata</i> (DeGeer) y <i>Cycloneda   sanguinea</i> L., y el Anthocoridae (Heteroptera) <i>Geocoris punctipes</i> Say.</p>     <p>Pero esta plaga ha exhibido una muy alta susceptibilidad a la toxina del cultivar   transg&eacute;nico sembrado en el pa&iacute;s, ya que en el campo se llegan a detectar   posturas pero, posteriormente, no se encuentran las larvas ni sus da&ntilde;os.</p>     <p>Si con la plaga anterior el algodonero transg&eacute;nico ha justificado su costo y su adopci&oacute;n,   con el cogollero del ma&iacute;z <i>Spodoptera frugiperda</i> (J.E.Smith), la   apreciaci&oacute;n es todo lo contrario, ya que las poblaciones del mismo, desde que   se iniciaron las siembras de estas variedades, se han incrementado a niveles y   da&ntilde;os tan altos y econ&oacute;micos, que algunos t&eacute;cnicos y agricultores piensan que   es in&uacute;til sembrarlas, ya que su control, bastante dif&iacute;cil y costoso, ha   aumentado los costos de manejo de plagas, a niveles insostenibles. Adem&aacute;s, no   solamente esta especie ha multiplicado sus poblaciones, ya que el gusano   rosquilla, <i>S. sunia</i> Guen&eacute;e y el gusano mantequilla <i>S. ornithogalli</i> (Guen&eacute;e), tambi&eacute;n han incrementado su presencia en el cultivo.</p>     <p>Pero, lo m&aacute;s importante de esta situaci&oacute;n, la ausencia de control de <i>Spodoptera</i>,   ha llevado a la resurgencia o posicionamiento de otras plagas, tales como   &aacute;fidos (<i>Aphis gossypii</i> Glover), mosca blanca (<i>Bemisia</i> sp.),   &aacute;caros (<i>Tetranychus</i> spp.) y chinches (<i>Dysdercus</i> spp.), como   consecuencia de las aplicaciones muy tempranas de insecticidas que se deben   realizar para el control de la plaga. Estas aspersiones de agroqu&iacute;micos   influyen de manera muy negativa sobre la fauna ben&eacute;fica, especialmente   coccinelidos y parasitoides, como el <i>Chelonus</i>, que ayudar&iacute;an no   solamente a su control, sino tambi&eacute;n al de las otras plagas</p>     <p>El espacio dejado por unas plagas es ocupado por otras, de tal manera que los insectos   chupadores, como los &aacute;fidos, la mosca blanca y las chinches y los &aacute;caros, cada   vez son m&aacute;s notorios y sus poblaciones aumentan con cada temporada y en   especial, los dos primeros, lo cual ha hecho necesario recurrir a su control   con insecticidas convencionales, generalmente muy costosos y a los cuales estos   insectos desarrollan r&aacute;pidamente resistencia. Esto, fuera de indicar, hasta   cierto punto, la ausencia de poblaciones adecuadas de enemigos naturales de   estas plagas secundarias, empeora a&uacute;n m&aacute;s la situaci&oacute;n ya precaria de la fauna   ben&eacute;fica.</p>     <p>Los resultados de la presente investigaci&oacute;n reflejan un an&aacute;lisis cr&iacute;tico de evaluaciones   y colectas en campo y en laboratorio acerca del efecto sobre insectos   ben&eacute;ficos, aparente o supuesto, directo e indirecto, de la siembra de   cultivares transg&eacute;nicos de algod&oacute;n y ma&iacute;z en la zona agr&iacute;cola del municipio de   El Espinal (Tolima).</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p>Durante los a&ntilde;os 2005, 2006 y 2007, en el &aacute;rea rural del municipio de El Espinal   (Tolima), situado en 4&deg; 09&rsquo; latitud norte y 74&deg; 53&rsquo; longitud oeste, a 431msnm,   temperatura que oscila entre 26 y 29&deg;C y una precipitaci&oacute;n anual promedia de 1766,4mm,   se realizaron observaciones y recolecciones peri&oacute;dicas en el cultivar de   algod&oacute;n transg&eacute;nico Bollgard1&reg;, en lotes convencionales sembrados como   refugios y en hospederos alternos de las plagas <i>H. virescens</i> y <i>S.   frugiperda</i>. A partir del segundo semestre del a&ntilde;o 2006, se incluyeron para   este fin, lotes sembrados con ma&iacute;z transg&eacute;nico Yieldgard&reg; y parcelas de ma&iacute;z   convencional.</p>     <p>Se compararon las poblaciones de los principales insectos ben&eacute;ficos, observados en   ambos lotes, recorriendo &eacute;stos mensualmente durante dos horas, en los primeros   60 d&iacute;as de edad de los cultivos. Durante este tiempo, se recolectaron posturas   y larvas de diversos instares, material que se llev&oacute; al laboratorio de   Biotecnolog&iacute;a Agr&iacute;cola de la Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales   U.D.C.A, para la observaci&oacute;n de la posible emergencia de parasitoides. Las   condiciones de laboratorio correspond&iacute;an a una temperatura promedia de   24,9&deg;C y una humedad relativa de 70%. Los estados inmaduros fueron   criados, ya sea sobre dieta artificial espec&iacute;fica, para los dos insectos   involucrados en el estudio, importada de Southland Products INC., Estados   Unidos o sobre hojas del cultivar Bollgard&reg;, en el caso de <i>S. frugiperda</i>.</p>     <p>Reconocimientos previos al inicio de las inspecciones de campo revelaron poblaciones muy bajas   de enemigos naturales, tanto en los cultivos transg&eacute;nicos como en los   convencionales. Por esta raz&oacute;n, para las observaciones de campo en ambos   cultivares, se establecieron tres niveles sencillos: ausencia, escasez y   presencia de adultos de las diversas especies ben&eacute;ficas. Como ocasional o   escasa, se estableci&oacute; de uno a 15 individuos encontrados y, un n&uacute;mero mayor de   15, fue considerado como &quot;presente&quot;. Las determinaciones, se   realizaron contabilizando los adultos obtenidos por colecta directa para los   depredadores y colecta con jama para los parasitoides himen&oacute;pteros. Para   parasitoides, en el laboratorio, un porcentaje de parasitismo entre el 1 y 5%,   se tom&oacute; como ocasional y mayor del 5%, como &quot;presente&quot;. Este   porcentaje, se calcul&oacute; para los parasitoides de los huevos y para las larvas de <i>H. virescens</i> y de <i>S. frugiperda</i>. Con el fin de evaluar el   porcentaje de parasitismo ejercido por el parasitoide de huevos del bellotero, <i>Trichogramma</i> spp., se determin&oacute; su emergencia durante tres temporadas algodoneras de un   total de 90 huevos, 30 por cosecha. Para el c&aacute;lculo del porcentaje de   parasitismo por el parasitoide huevo-larva <i>Chelonus insularis</i> Cresson   del cogollero, se escogieron al azar 70 larvas neonatas, procedentes de 25   posturas recolectadas sobre algod&oacute;n transg&eacute;nico.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para la interpretaci&oacute;n de los resultados, se utiliz&oacute; estad&iacute;stica descriptiva, expresada   en los tres grados de presencia para adultos y en porcentajes de parasitismo   para las evaluaciones realizadas en el laboratorio.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>Parasitoides de huevos</b></p>     <p><i>Trichogramma</i> spp. (Hymenoptera:   Trichogrammatidae), uno de los insumos naturales, producido y liberado con   &eacute;xito contra <i>H. virescens</i>, no solamente en el Tolima, sino en todas las   zonas algodoneras del pa&iacute;s, en los a&ntilde;os 80 (Amaya Navarro, s.f.), solamente se   encontr&oacute;, de manera ocasional, en refugios sembrados con algod&oacute;n convencional.   En lotes de Bollgard&reg;, de los pocos huevos encontrados, no emergi&oacute; parasitoide   alguno (<a href= "#t1">tabla 1</a>). Esta inexistencia no es atribuible al   efecto directo del cultivo transg&eacute;nico, sino a la escasez de posturas del   bellotero y, ante todo, a la no liberaci&oacute;n masiva del insecto ben&eacute;fico en los   lotes convencionales. Las bajas poblaciones de <i>H. virescens</i> y las pocas   posturas en los refugios durante los primeros 60 d&iacute;as de germinado el   algodonero, aunque permiten la existencia espor&aacute;dica del parasitoide,   determinaron, durante las &uacute;ltimas tres temporadas, solamente un promedio de   2,35% de parasitismo. Adem&aacute;s, se visualiza la posibilidad de que la pr&aacute;ctica   inexistencia natural de este parasitoide de huevos, se puede deber a la   ausencia de otros hu&eacute;spedes, como por ejemplo de <i>Alabama argillacea</i> H&uuml;bner (Lepidoptera: Noctuidae), plaga susceptible al Cry1Ac y tambi&eacute;n a las   frecuentes aplicaciones contra <i>S. frugiperda</i> (<a href= "#t2">tabla 2</a>),   no afectado por la toxina.</p>     <p><a name="t1"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v11n1/v11n1a16t1.jpg"></p>     <p><a name="t2"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v11n1/v11n1a16t2.jpg"></p>     <p>Fernandes (2003) cri&oacute; a <i>T. atopovirilia</i> (Oatman & Platner) en posturas de <i>S.   frugiperda</i> procedentes de larvas alimentadas con follaje de MON810, en   comparaci&oacute;n con aquellas procedentes de ma&iacute;z convencional, encontrando que la   calidad nutricional de ambos tipos de huevos aparentemente fue igual, es decir,   no observ&oacute; efecto alguno sobre el parasitismo por el Cry1Ab. Este resultado   sugiere que liberaciones de <i>T. atopovirilia</i> podr&iacute;an contribuir al manejo   del cogollero del ma&iacute;z en cultivares transg&eacute;nicos.</p>     <p>ICA (2007), al comparar la captura de artr&oacute;podos en lotes de ma&iacute;z Yieldgard y en   parcelas convencionales en el departamento del Tolima, no observ&oacute; entre los   cultivares diferencia significativa de las poblaciones de <i>Trichogramma</i> sp.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Telenomus remus</i> Nixon (Hymenoptera: Scelionidae) es considerado uno de los parasitoides de   huevos m&aacute;s eficientes del <i>S. frugiperda</i>. Fue criado masivamente y   liberado en el Tolima en a&ntilde;os anteriores y, en la actualidad, se puede   conseguir, en forma comercial, en el departamento del Meta. Este controlador   natural es considerado nativo de Sarawak y Nueva Guinea, de donde se introdujo   primero a Israel, para el manejo de <i>S. littoralis</i> (Boisduval) y luego a   Trinidad y Tobago, para el control de <i>S. frugiperda</i> (Wojcik <i>et al.</i>   1976). A Colombia lleg&oacute; posteriormente procedente de Venezuela.</p>     <p>En este trabajo, la observaci&oacute;n en el laboratorio de m&aacute;s de 50 posturas del cogollero,   cada una con m&aacute;s de 100 huevos, colectadas tanto en algod&oacute;n transg&eacute;nico como en   algod&oacute;n convencional y en ambos tipos de ma&iacute;z, dio como resultado su ausencia   total (<a href= "#t1">tabla 1</a>) en el &aacute;rea de El Espinal. Esta desaparici&oacute;n   tampoco pudo ser ocasionada por la siembras de los dos organismos,   gen&eacute;ticamente modificados, ya que la especie fue igualmente inexistente en los   cultivares convencionales. Se asume que la falta de liberaciones es la causante   de la carencia de este parasitoide, no nativo, el cual probablemente no se   adapt&oacute; a nuestras condiciones agroclim&aacute;ticas. Igualmente, se podr&iacute;a atribuir su   ausencia a los tratamientos tempranos con insecticidas. Una especie de <i>Telenomus</i> s&iacute; fue recolectada utilizando el jameo por ICA (2007), en dos parcelas   sembradas con Yieldgard y su isoh&iacute;brido de ma&iacute;z convencional.</p>     <p><i>C. insularis</i> (Hymenoptera: Braconidae), un parasitoide huevo-larva, es uno de los enemigos   naturales de <i>S. frugiperda</i> criado con m&aacute;s frecuencia de larvas   procedentes del cogollero, en el departamento del Tolima. De las 70 larvas   neonatos, alimentadas con follaje del cultivar Bollgard, se sigui&oacute; el   desarrollo a 63. El progreso inicial fue normal, pero durante el III instar, se   comenz&oacute; a observar un comportamiento anormal. Todas las larvas lograron entrar   al cuarto instar al cabo de cuatro d&iacute;as en promedio. Luego, sin embargo,   dejaron de alimentarse, se encog&iacute;an y constru&iacute;an un tipo de celda, como para   iniciar una la transformaci&oacute;n prematura en pupa. Inicialmente, se pensaba en un   posible efecto de la toxina del <i>Bt</i>, pero al cabo de los 14 d&iacute;as de   eclosi&oacute;n de los huevos, se constat&oacute; que estaban parasitadas por <i>C. insularis</i>.   El porcentaje de parasitismo fue del 90,47%; las larvas no parasitadas   siguieron su desarrollo normal, llegando hasta la emergencia de los adultos.</p>     <p>Los primeros adultos del parasitoide emergieron a los 27 d&iacute;as del inicio de las   observaciones, lo cual coincide con datos obtenidos por Medina <i>et al.</i> (1988),   quienes indican que el ciclo del <i>C. insularis</i> corresponde a 29,05 d&iacute;as   de huevo a la emergencia del adulto. Un 83,60% de los parasitoides alcanz&oacute; el   estado adulto, lo cual indica que la alimentaci&oacute;n de las larvas ya parasitadas   de <i>S. frugiperda</i>, con tejido fresco de algod&oacute;n transg&eacute;nico, cotiledones   y hojas terminales, no tuvo efecto negativo sobre el desarrollo normal del   parasitoide.</p>     <p>El estudio realizado por ICA (2007) al evaluar la presencia de artr&oacute;podos, entre ellos la   de <i>Chelonus</i> sp., en parcelas sembradas con el h&iacute;brido transg&eacute;nico de   ma&iacute;z y su isoh&iacute;brido convencional, dio como resultado una recolecci&oacute;n por jameo   de un escaso n&uacute;mero del parasitoide y la ausencia de diferencia significativa   entre los dos lotes. Esta baja poblaci&oacute;n encontrada, se debi&oacute; probablemente a   la escasez de posturas de <i>S. frugiperda</i>en el ma&iacute;z transg&eacute;nico y al   muestreo solamente durante los primeros 60 d&iacute;as del cultivo.</p>     <p><i>Chelonus insularis</i> es uno de los parasitoides m&aacute;s eficientes del cogollero del ma&iacute;z y se encuentra   distribuido desde el norte de la Argentina hasta el sur de Estados Unidos   (Ashley, 1983; Cruz <i>et al.</i> 1991; Fern&aacute;ndez & Clavijo, 1984). La ausencia de   un efecto negativo de la toxina del <i>Bt</i> incorporada al algodonero, del   cual se alimenta su hu&eacute;sped el cogollero del ma&iacute;z, sobre el desarrollo del   parasitoide es positivo, pero se debe, primordialmente, a la dosis subletal en   el follaje, la cual no ocasiona la muerte de la plaga. Si la mortalidad de la   plaga hubiese sida alta, lo mismo hubiera ocurrido con el insecto ben&eacute;fico. El   cultivar Yieldgard que s&iacute; controla satisfactoriamente a las larvas neonatos del   cogollero representa, por lo tanto, un peligro eminente para <i>C. insularis</i>.</p>     <p>La ausencia del efecto de una formulaci&oacute;n comercial del <i>Bacillus thuringiensis</i> , la cual conten&iacute;a las toxinas Cry1Aa, Cry1Ab, Cry1Ac, Cry2A y Cry2B (Lui &   Tabashnik, 1997), sobre <i>C. insularis</i> fue encontrada por Zenner <i>et al.</i>   (2006); la sola presencia en el Bollgard del Cry1Ac, toxina que no controla   satisfactoriamente a las larvas del <i>S. frugiperda</i> (Zenner de Polan&iacute;a et   al. 2005), hace que el desarrollo del enemigo natural sea normal.</p>     <p><b>Parasitoides de larvas</b></p>     <p>La avispita roja, <i>Cardiochiles nigriceps</i> Viereck (Hymenoptera: Braconidae)   es considerada uno de los enemigos naturales m&aacute;s importantes de <i>H. virescens</i> en las Am&eacute;ricas. Aunque una larva parasitada se alcanza a alimentar hasta   llegar al quinto instar, solamente consume un 30% de lo que consume una larva   no parasitada (Alcar&aacute;z <i>et al.</i> 1990). Este parasitoide &uacute;nicamente se logr&oacute; criar   a partir de larvas de Heliothis recolectadas sobre plantas de pega-pega, <i>Desmodium</i> en el C.I. Nataima (CORPOICA, El Espinal), en los a&ntilde;os 2005 y 2007. Procedentes   del C.I. Nataima, en noviembre de 2005, se criaron en el laboratorio 121 larvas   de segundo y tercer instar, observ&aacute;ndose un 99,7% de parasitismo; en el a&ntilde;o   2007, el parasitismo en larvas recolectadas bajo las mismas condiciones   anteriores disminuy&oacute; considerablemente y solo alcanz&oacute; un 28,3%.</p>     <p>La ausencia del parasitoide en larvas sobrevivientes que se desarrollaron sobre el   Bollgard&reg; y simult&aacute;neamente en larvas en los refugios, no es atribuible al   efecto del Cry1Ac del <i>Bt</i>; se asume que se debe a la pr&aacute;ctica ausencia de   la plaga en los &uacute;ltimos a&ntilde;os, al efecto negativo sobre el <i>Heliothis</i> del cultivar   transg&eacute;nico y a las aplicaciones de insecticidas (<a href= "#t2">tabla 2</a>),   tanto en el transg&eacute;nico como en los refugios contra otras plagas que afectan al   algodonero, principalmente el cogollero, &aacute;fidos, mosca blanca y picudo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Otro parasitoide de <i>S. frugiperda</i></b></p>     <p>ICA  (2007), entre sus conteos, tuvo en cuenta una especie de <i>Cotesia</i> (Hymenoptera: Braconidae). La especie m&aacute;s abundante en nuestro medio, <i>Cotesia   marginiventris</i> (Cresson), es un endoparasitoide de larvas de primero y   segundo instar de <i>S. frugiperda</i> (Ashley <i>et al.</i> 1982). Las capturas de   adultos del parasitoide registrados por ICA (2007) muestran, como en los otros   casos de parasitoides, la ausencia de una diferencia significativa del n&uacute;mero   de adultos colectados por jameo en las parcelas con y sin plantas transg&eacute;nicas.   Un estudio realizado por Ram&iacute;rez-Romero <i>et al.</i> (2007), quienes evaluaron el   efecto del Cry1Ab, al exponer al parasitoide a la prote&iacute;na purificada y a   larvas del cogollero alimentadas con ma&iacute;z transg&eacute;nico, mostr&oacute;, en general, que   la cualidad como hu&eacute;sped del parasitoide de larvas de <i>S. frugiperda</i>, se   redujo considerablemente. Esta cualidad fue expresada como peso y tama&ntilde;o de las   larvas, debido a los efectos delet&eacute;reos de la prote&iacute;na sobre la supervivencia,   peso y tiempo de desarrollo dentro de los seis d&iacute;as de exposici&oacute;n del cogollero   del ma&iacute;z.</p>     <p><b>Depredadores</b></p>     <p>Los depredadores m&aacute;s abundantes registrados en a&ntilde;os anteriores a 1990, en el   Departamento del Tolima, fueron: los coccinellidos (Coleoptera) <i>Coleomegilla   maculata</i> (DeGeer) y <i>Cycloneda sanguinea</i> L., tanto en el algodonero   como en el ma&iacute;z, consumiendo las larvas y los adultos de plagas,   preferiblemente &aacute;fidos y, adem&aacute;s, larvas peque&ntilde;as de todo tipo de lepid&oacute;pteros   de la familia Noctuidae. Igualmente, en el algodonero, era frecuente encontrar   a <i>Geocoris punctipes</i> Say (Hemiptera: Lygaeidae), aliment&aacute;ndose de huevos   y larvas peque&ntilde;as de <i>Heliothis</i> (Posada & Garc&iacute;a, 1976; Alcar&aacute;z <i>et   al.</i> 1990).</p>     <p>Como se puede observar en la <a href= "#t1">tabla 1</a>, tanto en el algodonero como en   ma&iacute;z, la poblaci&oacute;n de <i>Cycloneda</i>, se considera escasa, lo cual se puede   atribuir a la ausencia de sus presas, por lo menos, en los cultivares   transg&eacute;nicos. Los &aacute;fidos que podr&iacute;an suplir esta deficiencia en el algodonero   son controlados qu&iacute;micamente, con productos que tambi&eacute;n afecta a los   depredadores, ante todo los neonicotinoides (<a href= "#t2">tabla 2</a>). En los   refugios tambi&eacute;n se aplican insecticidas, lo cual puede explicar las bajas   poblaciones. Se considera que la ausencia total de <i>Geocoris</i> en algod&oacute;n <i>Bt</i> es atribuible a la desaparici&oacute;n o escasez de huevos y larvas peque&ntilde;as de   Heliothine.</p>     <p>Referente  a <i>Coleomegilla</i>, en el algodonero, esta ocurriendo un fen&oacute;meno muy   especial. Las colectas en campo durante este estudio mostraron poblaciones altas   a pesar de las aplicaciones tempranas de insecticidas, como fosforados,   carbamatos, piretroides y otros (<a href="#t2">Tabla 2</a>). La presencia del   depredador es muy notoria, al punto que se podr&iacute;a pensar que &eacute;ste ha   desarrollado tolerancia a estos grupos qu&iacute;micos. Es posible encontrarlo, tanto   en estado larval como en estado adulto, despu&eacute;s de cualquier aplicaci&oacute;n, en   algod&oacute;n <i>Bt</i>, como en el cultivar convencional. Adem&aacute;s, se sospecha que   esta &quot;resistencia&quot; le ha servido para &quot;disminuir&quot;, por competencia,   a <i>Cycloneda</i>, el cual, en el mismo contexto, casi que ha desaparecido.</p>     <p>En el  ma&iacute;z, ocurre lo contrario, adultos de <i>Coleomegilla</i>, solamente se   detectan en forma ocasional, debido a la ausencia de presas. Esto, coincide con   el estudio realizado por ICA (2007), el cual muestra un n&uacute;mero insignificante,   estad&iacute;sticamente igual, de <i>Coleomegilla</i> sp., en parcelas de Yieldgard y   su isoh&iacute;brido convencional de ma&iacute;z en la misma zona de estudio.</p>     <p>Resultados similares fueron encontrados por Torres & Ruberson (2005), quienes   evaluaron los contrastes entre las poblaciones de depredadores en lotes   transg&eacute;nicos y no transg&eacute;nicos de algod&oacute;n durante tres temporadas. Mencionan   una mayor abundancia de <i>C. maculata</i> en algod&oacute;n <i>Bt</i> durante dos temporadas   y lo opuesto para otro coccin&eacute;lido, el <i>Hippodamia convergens</i> Gu&eacute;rin-   Meneville, no existente en el Tolima. Atribuyen los cambios en abundancia de   los coccin&eacute;llidos entre el algodonero <i>Bt</i> y no <i>Bt</i>, ante todo al   uso de insecticidas. Adem&aacute;s, encontraron que el algodonero convencional   favorece las poblaciones de <i>Geocoris uliginosus</i> (Say), en comparaci&oacute;n   con el algod&oacute;n <i>Bt</i>.</p>     <p>Hagerty <i>et al</i>.(2005) incluyeron para sus evaluaciones sobre artr&oacute;podos depredadores al   algodonero Bollgard II. Obtuvieron como resultado que las poblaciones de los   depredadores, incluyendo <i>Geocoris</i>, <i>Orius</i>, <i>Nabis</i> (Heteroptera) y coccin&eacute;lidos (Coleoptera), entre otros, fueron consistentemente   tan o m&aacute;s altos en lotes de Algod&oacute;n <i>Bt</i> y <i>Bt</i> II. Este hecho lo   atribuyeron los autores a que todos estos depredadores importantes en estos   sistemas agr&iacute;colas son generalistas y no solamente dependen de presas   compuestas por poblaciones de insectos plagas controladas por las toxinas   incluidas en Bollgard y Bollgard II.</p>     <p>En nuestros casos, se asume que el papel que podr&iacute;an jugar los depredadores en los   cultivares transg&eacute;nicos y no transg&eacute;nicos, tanto de algod&oacute;n como de ma&iacute;z, se ve   truncado por la escasez de presas, debido a las aplicaciones de insecticidas   qu&iacute;micos contra insectos plagas no controladas por las toxinas del <i>B.   thuringiensis</i>. Sisterson <i>et al.</i> (2007) afirman al respecto que, la primera   generaci&oacute;n de plantas gen&eacute;ticamente modificadas, que poseen una sola toxina <i>Bt</i>,   causan poco o ning&uacute;n da&ntilde;o a los artr&oacute;podos ben&eacute;ficos, pero cultivares de plantas   transg&eacute;nicas con m&uacute;ltiples toxinas <i>Bt</i> y toxinas novedosas, s&iacute; podr&iacute;an   ser da&ntilde;inos a estos enemigos naturales.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>CONCLUSIONES</b></p>     <p>La  pr&aacute;ctica ausencia de los enemigos naturales, tanto depredadores como   parasitoides en los cultivares transg&eacute;nicos de algodonero y de ma&iacute;z, no se   puede atribuir a las toxinas Cry1Ac y Cry1Ab, presentes, respectivamente, en   las dos especies vegetales. Los dos parasitoides de huevos, <i>Trichogramma</i> y <i>Telenomus</i> no pueden ser afectados por las toxinas, pero s&iacute; por   aplicaciones de insecticidas. Igualmente, la escasez general de los   parasitoides de larvas de <i>H. virescens</i> y de <i>S. frugiperda</i>, se   puede atribuir a estas aplicaciones contra las plagas no afectadas por la   toxina en el algodonero transg&eacute;nico y, adem&aacute;s, a la ausencia de una disponibilidad   de larvas aptas para ser parasitadas.</p>     <p>Por el  momento, persiste la necesidad de las aplicaciones tan tempranas para el   control de <i>Spodoptera</i>, debido a la poca o ninguna acci&oacute;n del algodonero <i>Bt</i> sobre la plaga, lo cual seguir&aacute; influyendo negativamente sobre la presencia de   hospederos o presas de los enemigos naturales.</p>     <p>La  presencia, solamente ocasional de los dos coccin&eacute;lidos depredadores en ma&iacute;z <i>Bt</i>,   se puede interpretar como la ausencia de un n&uacute;mero adecuado de presas, tanto en   el cultivo transg&eacute;nico como en el convencional. La posibilidad de que <i>Coleomegilla</i> haya adquirido tolerancia a los insecticidas qu&iacute;micos, abre otra puerta para su   empleo como controlador biol&oacute;gico, ante todo en &eacute;pocas tempranas del   algodonero. Sin embargo, <i>Cycloneda</i> se podr&iacute;a convertir a la larga en   organismo en v&iacute;a de extinci&oacute;n, por lo menos a nivel local. Esta misma   preocupaci&oacute;n, se debe tener respecto a los parasitoides <i>Cardiochiles</i> y <i>Meteorus</i>.</p>     <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>ALCAR&Aacute;Z, H.;   CARDONA, C.; REND&Oacute;N, F.; REVELO, R.; HERRERA, M.; &Aacute;LVAREZ, A.; SIABATO, A. 1990.   Entomolog&iacute;a. En: &Aacute;lvarez A., G. B&aacute;ses t&eacute;cnicas para el cultivo del algod&oacute;n en   Colombia. 4ª ed. Federaci&oacute;n Nacional de Algodoneros. Editora Guadalupe Ltda. Bogot&aacute;.   p. 383-541.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0123-4226200800010001600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>AMAYA   NAVARRO, M. s.f. El <i>Trichogramma</i> spp. Producci&oacute;n, uso y manejo en   Colombia. Impresos T&eacute;cnicos Litogr&aacute;ficos, Buga (Colombia). 184p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-4226200800010001600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ANDOW, D.A.;   HILBECK, A. 2004. Science based risk assessment   for nontarget effects of transgenic crops. Bioscience. 54: 637-649. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-4226200800010001600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ASHLEY, T.R. 1983. Growth pattern alterations in fall   armyworm, <i>Spodoptera frugiperda</i> larvae after parasitization by Apanteles   marginiventris, Campoletis grioti, <i>Chelonus insularis</i>, and Eiphosoma   vitticole. The Florida Entomologist  66 (   2): 260-266. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-4226200800010001600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ASHLEY, T.R.; WADILL, V.H.; MITCHEL, E.R. 1982. Impact   of native parasites on the fall armyworm, <i>Spodoptera frugiperda</i> (Lepidoptera: Noctuidae) in South Florida and release of the exotic parasite,   <i>Eiphisoma vitticole</i> (Hymenoptera: Ichneumonidae). Environ. Entomol. 4   ( 4): 833-837. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-4226200800010001600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>CRUZ, I.; REZENDE,   M.A.A.; DELLA LUCIA, T.M.C. 1991. Biolog&iacute;a de <i>Chelonus</i> (<i>Chelonus</i>) <i>insularis</i> (Cresson, 1865), parasit&oacute;ide de ovo/lagarta de <i>Spodoptera   frugiperda</i>. En: Memorias Congreso Brasilero de Entomolog&iacute;a. Recife. Sociedade   Entomol&oacute;gica do Brasil. 264 p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0123-4226200800010001600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>DALY, T.; BUNTIN, G.D. 2005: Effect of <i>Bacillus   thuringiensis</i> transgenic corn for for lepidopteran control on nontarget   arthropods. Environ. Entomol. 34 ( 5) 1292-1301. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-4226200800010001600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>FERNANDES, O.D. 2003. Effect of genetically modified   corn (MON810) on <i>Spodoptera frugiperda</i> (J.E.Smith, 1997) and on egg   parasitoid <i>Trichogramma</i> spp. Tesis de Doctorado, Escola Superior de   AgriculturaLuiz de Queiroz. Disponible desde Internet en: <a href="http://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/11/11146/tde-12052003-141132/pt-br.php" target="_blank"> http://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/11/11146/tde-12052003-141132/pt-br.php</a> (con acceso   27/10/07).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-4226200800010001600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>FERN&Aacute;NDEZ   B., R.; CLAVIJO A., S. 1984. Efecto de dos insecticidas (uno qu&iacute;mico y otro   biol&oacute;gico) sobre el parasitismo observado en larvas de <i>Spodoptera frugiperda</i> (S.) provenientes de parcelas experimentales de ma&iacute;z. Rev. Fac. Agronom&iacute;a ( Maracay,   Venezuela). 13 ( 1-4): 101-109. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-4226200800010001600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>HAGERTY, A.M.;   KILPATRICK, A.L.; TURNIPSEED, S.G.; SULLIVAN, M.J.; BRIDGES, W.C. 2005. Predaceous arthropods and Lepidopteran pests on   conventional, Bollgard and Bollgard II cotton under untreated and disrupted   conditions. Environ.   Entomol. 34 ( 1): 105-114. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-4226200800010001600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>INSTITUTO   COLOMBIANO AGROPECUARIO, ICA. 2007. Resultados de la evaluaci&oacute;n del efecto de   la tecnolog&iacute;a Yieldgard&reg; sobre poblaciones de artr&oacute;podos en el cultivo del ma&iacute;z   en las subregiones del Caribe h&uacute;medo colombiano y Alto Magdalena. Subgerencia   de Protecci&oacute;n y Regulaci&oacute;n Agr&iacute;cola. 41p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-4226200800010001600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>LIU, Y.B.;   TABASHNIK, B.E. 1997. Experimental   evidence that refuges delay insect adaption to <i>Bacillus thuringiensis</i> . Proc.   Royal Soc. London B. 264: 605-610. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-4226200800010001600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>MEDINA &nbsp;T., M.C.; D&Iacute;AZ C., P.; LUQUE Z., J.E.; SIABATTO P.A. 1988. Ciclo   de vida y descripci&oacute;n de <i>Chelonus insularis</i> Cresson (Hymenoptera:   Braconidae), par&aacute;sito de <i>Spodoptera</i> spp. Rev. Col. Entomol. 14 ( 1): 13-21. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0123-4226200800010001600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>NARANJO, S.E. 2005. Long term assessment of the effect   of transgenic <i>Bt</i> cotton on the abundance of nontarget arthropod natural   enemies. Environ. 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Instituto Colombiano Agropecuario ICA, Bogot&aacute;, Bolet&iacute;n   T&eacute;cnico No. 41. 90p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-4226200800010001600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>RAM&Iacute;REZ-ROMERO,   R.; BERNAL, J.S.; CHAUFAUX, J.; KAISER, L. 2007. Impact assessment of <i>Bt</i>maize on a moth parasite, <i>Cotesia   marginiventris</i> (Hymenoptera: Braconidae), via host exposure to purified   Cry1Ab protein or <i>Bt</i>-plants. Crop Protection. 26: 953-962. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-4226200800010001600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>SISTERSON, M.S.; CARRI&Eacute;RE, Y.; DENNEHY, T.J.; TABASHNIK,   B.E. 2007. Nontarget effects of transgenic insecticidal crops: implications of   source- sink population dynamics. Environ. Entomol. 36 ( 1): 121-127. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-4226200800010001600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>SISTERSON, M.S.; TABASHNIK, B.E. 2005. Simulated   effects of transgenic <i>Bt</i> crops on specialist parasitoids of target pests.   Environ. Entomol. 34 ( 4): 733-742. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-4226200800010001600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>TABASHNIK, B.E.; BIGGS, R.W.; FABRICK, J.A.; GASSMANN,   A.J.; DENNCHY, T.J.; CARRIERE, Y.; MORIN, S. 2006. High-level resistance to   <i>Bacillus thuringiensis</i> toxin Cry1Ac and cadherin genotype in pink bollworm. J.   Econ. Entomol. 99 ( 6): 2125- 2131. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-4226200800010001600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>TORRES, J.B.; RUBERSON, J.R. 2005. Canopy- and   ground-dwelling predatory arthropods in commercial <i>Bt</i> and non-<i>Bt</i> cotton fields: patterns and mechanisms. Environ. Entomol. 34 ( 5): 1242-1256. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0123-4226200800010001600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>WOJCIK, B.; WHITCOMB, W.H.; HABEXK, D.H. 1976. Host   range testing of <i>Telenomus remus</i> (Hymenoptera: Scelionidae). The Florida   Entomol. 59 ( 2): 195-198. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-4226200800010001600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ZENNER, I.; &Aacute;LVAREZ, A.; BARRETO, S. 2006. Influence   of parasitism by <i>Chelonus insularis</i> Cresson (Hymenoptera: Braconidae) on   the susceptibility of <i>Spodoptera frugiperda</i> (J.E. Smith) (Lepidoptera:   Noctuidae) to insecticides. Neotropical Entomol. (Brasil). 35 ( 6): 818-822. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-4226200800010001600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ZENNER DE   POLAN&Iacute;A, I.; &Aacute;LVAREZ R., J.A.; MEJ&Iacute;A C., R.; BAYONA R., M.A. 2005. Influencia   de la toxina Cry1Ac del <i>Bacillus thuringiensis</i> sobre el desarrollo del   cogollero del ma&iacute;z, <i>Spodoptera frugiperda</i> (J.E. Smith). Rev. U.D.C.A   Act. & Div. Cient. 8 ( 2): 129-139. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-4226200800010001600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>ZENNER DE   POLAN&Iacute;A, I.; BORRERO-FONSECA, F. 1992. Resistencia del cogollero del ma&iacute;z, <i>Spodoptera   frugiperda</i> a algunos insecticidas y su manejo. En: Memorias Seminario Internacional   sobre los cultivos de sorgo y ma&iacute;z, sus principales plagas y enfermedades. Instituto   Colombiano Agropecuario, ICA. Edit. Produmedios. p. 35-41. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-4226200800010001600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>Recibido:   Noviembre 26 de 2007 Aceptado: Abril 29 de 2008</p>      ]]></body><back>
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