¹ Microbióloga Agrícola y Veterinaria. Estudiante de Maestría de Ciencias Biológicas de la Universidad de Los Andes, Laboratorio de Ecología Microbiana y de Alimentos, LEMA.

² Microbióloga M.Sc. Profesora asociada, Directora del Laboratorio de Ecología Microbiana y de Alimentos, LEMA, Universidad de Los Andes. Correo electrónico:mvanegas@uniandes.edu.co.

³ Microbióloga. Laboratorio de Ecología Microbiana y de Alimentos, LEMA, Universidad de Los Andes. Carrera 1 N° 18A 10J-209. Bogotá-Cundinamarca, Colombia. Correo electrónico:ja.ossa907@uniandes.edu.co

Rev. U.D.C.A Act. & Div. Cient. 13 (1): 97-104, 2010

Palabras clave: Melaza de caña, sustrato, bacterias ácido lácticas.

Due the importance of lactic acid bacteria (LAB) in Colombia and worldwide, it has been necessary to optimize the culture conditions using different kind of substrates to increase growth. In this research, cane molasses was exploited as an indicator substrate to determinate Lactobacillus plantarum growth. Different conditions and variables that affect the microbial development were evaluated L. plantarum; (WS417) was used as a control strain, inoculating diverse sterile molasses concentrations at different pH values, temperature and agitation. The strain growth was evaluated by traditional microbiology, direct bacteria count, seeded in MRS agar plates. Relationships between biomass and effectiveness of different culture conditions were estimated by factorial variance analysis, showing the results as optimal growth conditions the content of 20% cane molasses, 30±1°C for 24 hours, pH 5,2±0,1, and 100rpm with counts of 43x10⁹UFC/mL. It was concluded that cane molasses could be employed as growth substrate for Lactobacillus sp.

Key words: Cane Molasses, substrate, lactic acid bacteria.

Los Lactobacillus spp. son bacterias ácido lácticas (BAL) que se caracterizan por los diferentes usos e importancia a nivel industrial y, en ocasiones, utilizadas como fermentadores de alimentos cárnicos, lácteos y vegetales, además del uso en biopreservación, para incrementar la vida útil de los productos o como potencial probiótico en la industria. Desde el siglo pasado estos microorganismos han demostrado múltiples efectos positivas en la salud de animales y del hombre (Silveira et al. 2003; Cabeza, 2006; Vásquez et al. 2009; Gálvez et al. 2007; Castellano et al. 2008; Fiorentini et al. 2001).

Los probióticos tienen diferentes efectos en el ser humano, es así que modifican la microflora intestinal, influyen directa e indirectamente en el estado de la salud, a través de producción de vitaminas y ácidos grasos de cadena corta, colaboran con la degradación de sustancias alimenticias no digeridas, estimulan la respuesta inmune y dan protección frente a microorganismos enteropatógenos (Lee & Salminen, 1995; Holzapfel, 2001).

Según, Vargas et al. (2004), cerca del 65% de los alimentos que participan en el mercado mundial son productos con probióticos y los Lactobacillus son una de las bacterias más empleados en el mercado nacional. Las cepas mundiales consideradas como probióticos y utilizadas como ingredientes del producto, son las siguientes: L. acidophilus, L. bulgaricus, L. lactis, L. casei, L. plantarum, L. rhamnosus, L. reuteri, L. paracesei, L. fermentum, L. helveticus, Bifidobacterium, B. adolescentis, B. angulatum, B. bifidum, B. breve, B. catenulatum, B. dentium, B. infantis, B. longum, B. pseudocatenulatum, B. infantis, L. acidophilus NCFM (Rhodia, EE.UU.)L. acidophilus NCFB 1748.L. acidophilus LA1 (al cual se lo renombró como L. johnsonii LJ1 -comercializado por Nestlé, Suiza). L. casei Shirota(Yakult, Japón).L. casei CRL431 (Chr. Hansen, EE.UU.). L. fermentum RC-14 (Urex, Canadá). L. casei DN114 (Danone, Francia).L. crispatus CTV05 (Gynelogix, EE.UU.).L. reuteri MM53 (BioGaia, Suecia). L. rhamnosus GG (Valio, Finlandia). L. rhamnosus GR-1 (Urex, Canadá).L. plantarum; 299V (producto de Probi, Suecia) (Shah & Lankaputhra, 2002; Mantello, 2007).

En Colombia, las bacterias que se manejan para productos probióticos son cepas importadas de países europeos y Japón, lo que implica costos de adquisición. Adicionalmente, si las empresas comercializadoras de alimentos fermentados (95%) del mercado nacional, trabajaran con la búsqueda de cultivos y condiciones que proporcionen la obtención de mayores densidades del microorganismo (>10⁷ UFC/g), generaría un mayor impacto en el desarrollo de estas bacterias, a partir de un medio no láctico para ampliar sus aplicaciones a otros alimentos (Vargas et al. 2004), ya sea para consumo humano o animal, biopreservación, probióticos, entre otros, con la correspondiente reducción de costos para los consumidores, lo cual seria un gran aporte a la industria nacional en la producción de bacterias ácido lácticas.

El mercado de alimentos que aprovecha BAL continua creciendo mundialmente y en Colombia es necesario contar con sistemas de producción, de métodos y de medios de cultivos adecuados para dicho objetivo; se genera la búsqueda de condiciones y factores que permitan la producción de BAL, como una necesidad de la industria colombiana, para así poder producir microorganismos iniciadores de alimentos fermentados como cárnicos, yogures, quesos, entre otros, sino, también para ser utilizados como ingredientes o aditivos prebióticos, para aumentar los beneficios del cliente por consumo de dichos productos y, de esta manera dotarles de un valor agregado.

Estudios anteriores muestran que el MRS (Man, Rogosa y Sharpe) es un medio de cultivo adecuado para la recuperación de Lactobacillus sp. en condiciones de laboratori, y su costo se hace elevado para el uso industrial en grandes cantidades (Vargas et al. 2004). En la industria se han evaluado diferentes sustratos para el crecimiento de BAL, como el medio de cultivo agar leche y leche descremada, que favorece el aislamiento de Lactobacillus sp. (Cogan et al. 1997; Simova et al. 2002). Poca es la información disponible de sustratos utilizados para el cultivo de bacterias ácido lácticas, a nivel industrial, pero tradicionalmente, se ha utilizado la miel o melaza "blackstrap", que es un líquido denso, viscoso de color oscuro y que contiene sales y otros compuestos solubles en álcali; es un producto final de la fabricación o refinación de la sacarosa, glucosa y fructosa procedente de la caña de azúcar; además, contienen sustancias no fermentables y melanoidinas (a base de nitrógeno), derivados a partir de la condensación del azúcar y aminocompuestos (Honig, 1974; Swan & Karalazos, 1990). Este subproducto es comúnmente destinado para la producción de alimentos concentrados de animales y como suplemento alimenticio para el hombre, a pesar que, en la actualidad su costo depende de otros factores, como el tema de biocombustibles, por ejemplo. Ello hace necesario analizar las condiciones que suministra el sustrato a estos microorganismos (Leeson & Summers, 2000; ICONTEC, 1994).

Es así, como se debe explorar alternativas con otras materias primas, como la melaza de caña, que contiene componentes esenciales que favorecen el crecimiento de las BAL y proporcionan alternativas de relación costo-beneficio, a nivel de producción y de rentabilidad, incrementando la proliferación del microorganismo rápidamente, valiéndose de sustratos disponibles para su uso; aunque pueden existir otros sustratos más económicos, un primer acercamiento a evaluar las condiciones favorables para el incremento de L. plantarum en melaza de caña puede generar nuevas iniciativas de alcance para producción (Vargas et al. 2004; Ortiz et al. 2008).

El objetivo principal de este estudio fue evaluar las condiciones óptimas, bajo las circunstancias de la investigación actual, de crecimiento de L. plantarum en melaza de caña, como sustrato.

Conservación de la cepa: La cepa de Lactobacillus plantarum WS417, donada por el Instituto Zentralinstitut für Emährungs und Lebensmittelforschung (Ziel), de la Universidad München, Freising (Alemania), fue sembrada en agar Man Rogosa y Sharpe (MRS) (Sharlau, España) e incubada a 30°C±0,1, por 48 horas sin agitación y en aerobiosis. La cepa fue conservada en tubos inclinados de MRS a 4±1°C y en caldo MRS, con 30% de glicerol a -80°C.

Evaluación del crecimiento microbiano a diferentes concentraciones de sustrato: Según el protocolo con modificaciones de Ortiz et al. (2008), se utilizó un Erlenmeyer de 250mL con 50mL de melaza estéril a diferentes concentraciones (5%, 10%, 20%, 25% y 30% p/v) pH 5,2+/-0,1, los cuales, fueron inoculados con 1mL de un cultivo overnight de L. plantarum WS417 e incubados a 30±1°C a 100rpm, durante 24 horas. La concentración inicial del inoculo en los erlenmeyer fue de 102 UFC/mL. Para cada ensayo, el crecimiento fue determinada realizando recuentos de Unidades Formadoras de Colonia (UFC) en superficie, a las 48 horas.

Evaluación del crecimiento a diferentes pH: Para cada concentración de melaza (20% y 25%, 30%, p/v), se ajustó el pH de los erlenmeyer a 5,2±0,1, 6,0±0,1 con KOH y HCl al 40%, los cuales, fueron inoculados con 1mL de un cultivo overnight de L. plantarum WS417 (10² UFC/mL) en cada tratamiento. Se incubaron a 30±1°C a 100rpm durante 24 horas y se determinó el crecimiento, por medio de recuentos en placa.

Evaluación del crecimiento a diferentes temperaturas: El crecimiento fue evaluado mediante recuentos celulares en placa, sometiendo los tratamientos (diferentes concentraciones de sustrato a diferentes pH), a temperaturas de 25±1°C, 30±1°C y 35±1°C, por 24 horas, en agitación constante (100rpm)

Crecimiento en diferentes concentraciones de sustrato: Respecto al crecimiento evaluado con diferentes concentraciones, se observó que el crecimiento de L. plantarum fue de 109 en 20% y 25% y se obtuvo recuentos más bajos de 10⁶ y 10⁷, con las demás concentraciones (5%, 10%, 30%). Se debe tener en cuenta que la concentración inicial del inoculo estaba en 10² UFC/mL. Los recuentos finales de los tratamientos al ser incubados presentaban exponentes de 10⁹, lo que indica, que se incrementaba siete unidades el crecimiento bacteriano, en 24 horas, inoculando la melaza de caña al 20% y 25% (Tabla 1, Figura 1 y Figura 2).

Lo anterior puede ser atribuido a la transformación de la sacarosa a monómeros de azúcar (glucosa y fructosa) por la enzima invertasa, que puede disminuir su actividad a concentraciones altas de sustrato, a determinadas temperaturas y pH, permitiendo el aumento de la velocidad de crecimiento (Kazuhiko & Kozo, 1995). En contraste, se obtuvo que a bajas concentraciones de melaza (5%, 10%) hay una deficiencia de carbono, que se refleja en la disminución de los recuentos (Ortiz et al. 2008).

Crecimiento a diferentes pH. Se demostró que empleando un pH de 4,5±0,1 y 6,0±0,1, los recuentos se disminuían respecto a un pH inicial de 5,2±1 (pH inicial de la melaza), entre una o dos unidades logarítmicas, dependiendo de la concentración del sustrato. La agitación demostró mejorar el crecimiento bacteriano respecto a tratamientos que se evaluaron sin exponer los erlenmeyer en shaker termostatado (Ortiz et al. 2008)

Por otro lado, se midió el pH final de los Erlenmeyer inoculadas de los diferentes tratamientos y se observó una disminución de, aproximadamente, una unidad en el rango de acidez, presentando valores del pH final en 4±0,1, cuando se trabajaba con pH inicial de 5,0±0,1, lo cual, evidenció la actividad metabólica de la bacteria.

Las bacterias ácido lácticas crecen adecuadamente bajo condiciones microaerófilicas con cantidades de oxígeno, entre un 2 y 10%; además, en pH, donde los medios son ligeramente ácidos, en un rango de 4,5 a 6,4, bajo condiciones de temperatura entre 30 y 40°C. Cuando un medio de cultivo alcanza la alcalinidad o neutralidad, el crecimiento de las bacterias tiende a disminuir (Ortiz et al. 2008).

Por otro lado, la agitación incrementó la velocidad de transferencia de nutrientes del medio a las células, mejoró la homogenización de nutrientes y aumentó la velocidad de transferencia de productos metabólicos de las células hacia el medio. Se registró un aumento en el recuento de tres unidades logarítmicas, cuando los tratamientos eran sometidos a agitación constante (10⁹), respecto a los que no recibieron el tratamiento (10⁶).

Crecimiento a diferentes temperaturas: En placa para la determinación del crecimiento en los diferentes tratamientos mostraron que a temperaturas de 25±1°C y 35±1°C, los recuentos de las BAL fueron menores que a 30±1°C, en cualquiera de las condiciones evaluadas. El consumo de los sustratos de la melaza, como son azúcares, fósforo, nitratos, se consumen más rápido a temperaturas altas, pero se evidencia incremento de los recuentos a temperaturas menores (30±1°C) (Ortiz et al. 2008).

Por lo anterior, se podría afirmar que se lleva a cabo el proceso conocido como inversión de la sacarosa; la presencia de esta enzima depende de las concentraciones de glucosa, de la temperatura de 30±1°C, donde se evidencia mayor actividad de la enzima invertasa (Ortiz et al. 2008), que está directamente relacionada con la actividad metabólica, debido a que la enzima se encuentra cerca de la superficie de la célula y puede actuar mejor a estas condiciones (Zech & Gorish, 1995).

Análisis estadístico: En promedio, el crecimiento de L. plantarum evaluado con melaza de caña al 20% fue mayor que en la del 5% y 10%. Además, se evidenció que no existe diferencia estadísticamente significativa (p >0,05) en el recuento promedio, evaluado con las concentraciones de melaza del 20 y 30%. Por lo tanto, se seleccionó la concentración de melaza de caña del 20% (p/v), que permite la reducción de costos y el crecimiento óptimo del microorganismo (Ortiz et al. 2008). El tratamiento al 20%, 30±1°C de incubación durante 24 horas, rango de pH de 5,2±0,1 y 100rpm, obtuvo un recuento de 43x10⁹UFC/mL.

Se observó una relación entre el aumento de la concentración de melaza con el recuento, por su valor beta positivo; sin embargo, la variación no es estadísticamente significativa por un valor p=0,082, resultado que concuerda con estudios previos, según Ortiz et al. (2008), en donde han utilizado esta concentración para el incremento de levaduras, ya que en sustratos del 30% o más, la cantidad de sólidos disueltos contribuyen con el estrés osmótico de las células en cultivo.

Por otro lado, para los microorganismos, el crecimiento es la respuesta principal a las condiciones fisico-químicas del medio en el que se encuentran, de tal forma que el crecimiento es el resultado, tanto de la replicación como de los cambios, en el tamaño de la célula microbiana, debido a la extracción de los nutrientes proveídos por el medio y, posteriormente, convertidos en compuestos biológicos, usados para la producción de energía y para la síntesis o la formación de productos. Cuando se transfiere el inoculo al medio de fermentación, los microorganismos toman los nutrientes necesarios para su metabolismo y los transforman en biomasa, aunque este proceso puede durar de minutos a horas. Se debe tener en cuenta que diversos factores, como la temperatura, el pH y la concentración de sustrato, afectan significativamente los patrones de crecimiento y la formación de productos asociados con el metabolismo del microorganismo, por eso, es necesario que el sustrato a evaluar sea uno de los factores determinantes al realizar un estudio comparativo de diferentes condiciones.

Se concluye, que esta investigación permitió evaluar algunos aspectos relacionados con las condiciones óptimas de crecimiento de L. plantarum, en las condiciones del estudio, utilizando un subproducto de la industria azucarera, la melaza de caña, con la cual, se logró incrementar el desarrollo microbiano de bacterias ácido lácticas, a partir de medios no lácticos. Los resultados hallados indican que el tratamiento que permitió el máximo crecimiento del microorganismo e incrementó los recuentos siete unidades logarítmicas a las 24 horas fue empleando sustrato al 20%. Se recomienda la melaza de caña, como sustrato, para realizar más investigaciones a nivel de laboratorio y, posteriormente, poseer herramientas de acercamiento a planta piloto, para lograr proponer este sustrato, como un medio de trabajo pertinente, que optimice la propagación de las bacterias ácido lácticas a nivel industrial.

Los autores agradecen al Comité de Investigación de la Facultad de Ciencias Biológicas y al Laboratorio de Ecología Microbiana y de Alimentos LEMA, de la Universidad de Los Andes, Bogotá, Colombia, por el apoyo y financiación para la realización de esta investigación. Conflictos de intereses:El manuscrito fue preparado y revisado con la participación de todos los autores, quienes declaramos que no existe ningún conflicto de intereses que ponga en riesgo la validez de los resultados presentados. Financiación: Este estudio fue financiado por la Universidad de Los Andes, Comité de Investigación de la Facultad de Ciencias Biológicas, Laboratorio de Ecología Microbiana y de Alimentos LEMA.

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Recibido: Marzo 26 de 2009; Aceptado: Marzo 8 de 2010