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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[CRECIMIENTO Y EFICIENCIA FOTOQUÍMICA DEL FOTOSISTEMA II EN PLANTAS DE FRESA (Fragaria sp.) AFECTADAS POR LA CALIDAD DE LA LUZ:: IMPLICACIONES AGRONÓMICAS]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[GROWTH AND PHOTOCHEMICAL EFFICIENCY OF PHOTOSYSTEM II IN STRAWBERRY PLANTS (Fragaria sp.) AFFECTED BY THE LIGHT QUALITY: AGRONOMIC IMPLICATIONS]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Photomorphogenesis is any change in form or function of an organism occurring in response to changes in the light environment. Light quality is mainly sensed by the presence of different light receptors specific for different wavelengths. The influence of light quality on the growth and photochemical efficiency of photosystem II (PSII) in strawberry plants (Fragaria sp., cv. Chandler) was examined in a factorial set up, under greenhouse in Tunja / Colombia. Plants grew under diverse light qualities (yellow, green, blue, red, transparent, and control without colored cover) provided by polypropylene filter films. Determinations of minimum (F0), maximum (Fm), variable (Fv), and terminal (Ft) fluorescence and maximum photochemical efficiency (Fv/Fm) of dark-adapted leaves were done 32 weeks after the transplant. Related to growth, control plants recorded highest dry matter and specific leaf weight. Plants growing under the red filter developed highest leaf area. The green film reduced the growth. The color films changed the dry matter partitioning patterns in the plants organs, specially the green filter. Filtered light affected the chlorophyll fluorescence variables, related to control plants. Regards to control plants, Fv , Fm and Ft were higher in plants growing under all covers. While F0 was higher under the transparent and yellow films, Fv /Fm was lower under these covers. The results were discussed in relation to possible implications for appropriate agronomic practices.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">     <p align=right style='text-aling:right'><b>CIENCIAS AGROPECUARIAS - Art&iacute;culo Cient&iacute;fico</b></p>     <p align="center"><b>CRECIMIENTO Y EFICIENCIA FOTOQU&Iacute;MICA DEL FOTOSISTEMA II EN PLANTAS DE FRESA (<i>Fragaria</i> sp.) AFECTADAS POR LA CALIDAD DE LA LUZ: IMPLICACIONES AGRON&Oacute;MICAS</b></p>     <p align="center"><b>GROWTH AND PHOTOCHEMICAL EFFICIENCY OF PHOTOSYSTEM II IN STRAWBERRY PLANTS (<i>Fragaria</i> sp.) AFFECTED BY THE LIGHT QUALITY: AGRONOMIC IMPLICATIONS</b></p>     <p><b>F&aacute;nor Casierra-Posada<sup>1</sup>; Jaime E. Pe&ntilde;a-Olmos<sup>2</sup>; Christian Ulrichs<sup>3</sup></b></p>     <p><sup>1</sup>Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia (UPTC), Facultad de Ciencias Agropecuarias, Grupo de Investigaci&oacute;n Ecofisiolog&iacute;a Vegetal. Avenida Central del Norte, Tunja, Colombia. Correo electr&oacute;nico:<a href="mailto:fanor.casierra@uptc.edu.co">fanor.casierra@uptc.edu.co</a></p>     <p><sup>2</sup>Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia (UPTC), Facultad de Ciencias Agropecuarias, Grupo de Investigaci&oacute;n Ecofisiolog&iacute;a Vegetal. Avenida Central del Norte, Tunja, Colombia.</p>     <p><sup>3</sup>Humboldt-Universität zu Berlin, Faculty for Agriculture and Horticulture, Division Urban Plant Ecophysiology, Lentzeallee 55/57, 14195 Berlin, Germany.</p>     <p>Rev. U.D.C.A Act. &amp; Div. Cient. 14(2): 43 - 53, 2011</p> <hr>      <p><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Fotomorfog&eacute;nesis es cualquier cambio de forma o de funci&oacute;n en un organismo, que sucede en respuesta a las modificaciones en la luz ambiental. La calidad de la luz, se capta mediante receptores espec&iacute;ficos para las diferentes longitudes de onda. En un ensayo factorial, se evalu&oacute; la influencia de la calidad de la luz sobre el crecimiento y la eficiencia fotoqu&iacute;mica del fotosistema II (PSII) en plantas de fresa (<i>Fragaria</i> sp., cv. Chandler), bajo invernadero, en Tunja, Colombia. Las plantas crecieron bajo diferente calidad de luz (amarilla, verde, azul, roja, transparente y el control sin cobertura), proporcionada por pel&iacute;culas filtro de polipropileno. Se realizaron determinaciones de florescencia m&iacute;nima (F<sub>0</sub>), m&aacute;xima (F<sub>m</sub>), variable (F<sub>v</sub>), terminal (F<sub>t</sub>) y la eficiencia fotoqu&iacute;mica m&aacute;xima (F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub>), en hojas adaptadas a la oscuridad, 32 semanas luego del trasplante. En relaci&oacute;n con el crecimiento, las plantas control registraron los valores m&aacute;s altos de materia seca por planta y de peso espec&iacute;fico de las hojas. Las plantas bajo el filtro rojo desarrollaron la mayor &aacute;rea foliar, mientras que el filtro verde redujo el crecimiento. Las pel&iacute;culas de color modificaron el patr&oacute;n de asignaci&oacute;n de materia seca en los &oacute;rganos de las plantas, especialmente, el filtro de color verde. La luz filtrada afect&oacute; todos los par&aacute;metros de la fluorescencia de la clorofila. En relaci&oacute;n con las plantas control F<sub>v</sub> , F<sub>m</sub> y F<sub>t</sub> fueron mayores en las plantas que crecieron bajo todas las coberturas. Mientras que F<sub>0</sub> fue mayor bajo las coberturas amarilla y transparente, F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub> fue menor bajo esas pel&iacute;culas filtro. Los resultados se discuten en relaci&oacute;n con sus posibles implicaciones sobre pr&aacute;cticas agron&oacute;micas apropiadas.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> Fotomorfog&eacute;nesis, material seca, partici&oacute;n de biomasa, luz coloreada, F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub>, fluorescencia m&iacute;nima, fluorescencia m&aacute;xima.</p> <hr>     <p><b>SUMMARY</b></p>     <p>Photomorphogenesis is any change in form or function of an organism occurring in response to changes in the light environment. Light quality is mainly sensed by the presence of different light receptors specific for different wavelengths. The influence of light quality on the growth and photochemical efficiency of photosystem II (PSII) in strawberry plants (<i>Fragaria</i> sp., cv. Chandler) was examined in a factorial set up, under greenhouse in Tunja / Colombia. Plants grew under diverse light qualities (yellow, green, blue, red, transparent, and control without colored cover) provided by polypropylene filter films. Determinations of minimum (F<sub>0</sub>), maximum (F<sub>m</sub>), variable (F<sub>v</sub>), and terminal (F<sub>t</sub>) fluorescence and maximum photochemical efficiency (F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub>) of dark-adapted leaves were done 32 weeks after the transplant. Related to growth, control plants recorded highest dry matter and specific leaf weight. Plants growing under the red filter developed highest leaf area. The green film reduced the growth. The color films changed the dry matter partitioning patterns in the plants organs, specially the green filter. Filtered light affected the chlorophyll fluorescence variables, related to control plants. Regards to control plants, F<sub>v</sub> , F<sub>m</sub> and F<sub>t</sub> were higher in plants growing under all covers. While F<sub>0</sub> was higher under the transparent and yellow films, F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub> was lower under these covers. The results were discussed in relation to possible implications for appropriate agronomic practices.</p>     <p><b>Key words:</b> Photomorphogenesis, dry matter, biomass partitioning, colored light, F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub>, minimal fluorescence, maximal fluorescence.</p> <hr>     <p><b>INTRODUCCION</b></p>     <p>Los vegetales poseen mecanismos fotoselectivos sofisticados para capturar la energ&iacute;a lum&iacute;nica, necesaria para la fotos&iacute;ntesis (Jiao <i>et al.</i> 2007). La intensidad y la calidad de la luz son factores determinantes en el crecimiento y desarrollo de los vegetales (Fukuda <i>et al.</i> 2008). Los cambios en la calidad de la luz afectan considerablemente muchos par&aacute;metros anat&oacute;micos, fisiol&oacute;gicos, morfol&oacute;gicos y bioqu&iacute;micos en las plantas (Haliapas <i>et al.</i> 2008).</p>     <p>La fotomorfog&eacute;nesis involucra tres grupos importantes de fotorreceptores transductores de informaci&oacute;n: los fitocromos, los receptores de la luz azul y los fotorreceptores de luz UV-B (Jiao <i>et al.</i> 2007), aunque tambi&eacute;n se ha reportado la presencia de un compuesto a base de zeaxantina como receptor de luz verde (Folta &amp; Maruhnich, 2007). El rango m&aacute;ximo de absorci&oacute;n de la forma Pr del fitocromo asemeja el de las clorofilas (rojo); sin embargo, la forma Pfr absorbe a longitudes de onda m&aacute;s largas (rojo lejano) (Mathews, 2010). Junto con los fitocromos, se encuentran otros receptores de la luz azul, como los criptocromos y las fototropinas (Strasser <i>et al.</i> 2010). Los fotorreceptores UV-B est&aacute;n tambi&eacute;n implicados en algunas respuestas fotomorfog&eacute;nicas controladas por las fototropinas. En la &uacute;ltima d&eacute;cada, se caracteriz&oacute; un fotorreceptor de luz azul denominado ‘zeitlupe' (Imaizumi et al. 2003).</p>     <p>El efecto de la calidad de la luz ha sido motivo de investigaci&oacute;n, con el objeto de sacar provecho del efecto fotomorfog&eacute;nico inducido en los vegetales por las diferentes longitudes de onda de la luz incidente (Shahak <i>et al.</i> 2008; Casierra-Posada &amp; Rojas, 2009). En las &uacute;ltimas tres d&eacute;cadas, el efecto de la calidad de luz sobre algunas hortalizas y frutales se ha estudiado con la utilizaci&oacute;n de l&aacute;minas coloreadas sobre el suelo (mulch pl&aacute;stico), las cuales, reflejan la luz de diferentes longitudes de onda, que cambian el microclima alrededor de las plantas (Decoteau, 2008). Algunas caracter&iacute;sticas de las plantas, como la tasa de crecimiento, el desarrollo de &oacute;rganos vegetativos y reproductivos, la biomasa total y la distribuci&oacute;n de foto-asimilados, fueron afectadas por calidad de la luz, particularmente, por la relaci&oacute;n r/fr (red/ far red) (Bradburne <i>et al.</i> 1989). En estudios de campo, bajo riego, la calidad de frutas de fresa en los cultivares Chandler y Sweet Charlie, en t&eacute;rminos de concentraci&oacute;n de compuestos arom&aacute;ticos, fue superior cuando el suelo se cubri&oacute; con pl&aacute;stico rojo, en comparaci&oacute;n con pl&aacute;stico de color negro (Loughrin &amp; Kasperbauer, 2002). Estos autores concluyeron que las bandas de luz en los rangos rojo y rojo lejano reflejadas desde el pl&aacute;stico rojo, posiblemente, actuaron a trav&eacute;s de los sistemas de fitocromos, modificando la expresi&oacute;n de algunos genes. En consecuencia, aumentaron las concentraciones de compuestos arom&aacute;ticos en frutos de fresa.</p>     <p>Miranda &amp; Williams (2007) evaluaron la eficiencia fotoqu&iacute;mica del fotosistema II (PSII) <i>in vitro</i> en hojas de fresa y encontraron un incremento de este par&aacute;metro, en un rango de 0,64, bajo luz blanca, a 0,80, bajo luz amarilla. Adem&aacute;s, las hojas desarrolladas bajo luz azul fueron similares al control con luz blanca en muchos par&aacute;metros relacionados con la fluorescencia de la clorofila, con excepci&oacute;n del nivel inicial de la fluorescencia. Por su parte, Casierra-Posada &amp; Pe&ntilde;a- Olmos (2011) expusieron plantas de fresa a coberturas pl&aacute;sticas de diversos colores y hallaron que las diferentes calidades de luz influyeron sobre el contenido de clorofila. Adem&aacute;s, la concentraci&oacute;n de clorofila <i>a</i> fue mayor en hojas desarrolladas bajo luz de color verde y rojo, seguida de la encontrada en plantas expuestas a la cobertura de color azul, transparente y amarilla.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Asumiendo que las diferentes bandas del espectro de radiaci&oacute;n pueden influenciar el transporte de electrones y los dem&aacute;s par&aacute;metros relacionados con la fluorescencia de la clorofila en plantas de fresa, se evalu&oacute; el efecto de la calidad espectral de la luz sobre la eficiencia fotoqu&iacute;mica del fotosistema II, bajo condiciones de invernadero en el tr&oacute;pico alto.</p>     <p><b>MATERIALES Y METODOS</b></p>     <p>El ensayo, se desarroll&oacute; en la ciudad de Tunja, Departamento de Boyac&aacute;, en Colombia (5&deg;33&rsquo;16.25" N 73&deg;21&rsquo;9.14"O; 2.691 msnm), bajo condiciones de invernadero de vidrio transparente, en el cual, diez plantas por tratamiento se sometieron a la exposici&oacute;n de la radiaci&oacute;n solar, filtrada a trav&eacute;s de pel&iacute;culas de polipropileno de colores rojo, amarillo, azul y transparente, de un grosor de 15&micro;. Las plantas control, se desarrollaron dentro del invernadero, sin ning&uacute;n tipo de cobertura de polipropileno. La radiaci&oacute;n fotosint&eacute;ticamente activa (PAR) y la disminuci&oacute;n de la luz (opacidad) registrada bajo las coberturas, se muestra en la <a href= "#t1">tabla 1</a>. De igual manera, la transmitancia de los diferentes materiales utilizados en el ensayo, se presentan en la <a href= "#F1">figura 1</a>. A pesar que el vidrio es trasl&uacute;cido, este tipo de invernadero ofrec&iacute;a a las plantas condiciones de alto sombreamiento (<a href= "#t1">tabla 1</a>). Como material vegetal inicial, se tomaron estolones (importadas desde Chile) de fresa cultivar ´Chandler´, que se expusieron previamente a una temperatura de 4&plusmn;1&deg;C, durante tres semanas, con la intenci&oacute;n de romper la dormancia de las yemas y lograr una brotaci&oacute;n r&aacute;pida y uniforme; posteriormente, los estolones se colocaron en una soluci&oacute;n nutritiva, con la siguiente composici&oacute;n en mg L<sup>-1</sup>: nitr&oacute;geno n&iacute;trico, 40,3; nitr&oacute;geno amoniacal, 4,0; f&oacute;sforo, 20,4; potasio, 50,6; calcio, 28,8; magnesio, 11,4; azufre, 1,0; hierro, 1,12; manganeso, 0,112; cobre, 0,012; zinc, 0,0264; boro, 0,106; molibdeno, 0,0012 y cobalto, 0,00036. Estas concentraciones corresponden a dosis utilizadas frecuentemente para cultivos hidrop&oacute;nicos. Se realizaron dos aplicaciones con base en Captan, para prevenir la aparici&oacute;n de problemas fitopatol&oacute;gicos, especialmente <i>Mycosphaerella Fragaria</i>e.</p>     <p><a name="t1"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v14n2/v14n2a05t1.jpg"></p>     <p><a name="f1"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v14n2/v14n2a05f1.jpg"></p>     <p>A las 32 semanas del trasplante, se midi&oacute; la fluorescencia de la clorofila en hojas completamente expandidas del tercio medio de la corona, con un pulso act&iacute;nico de luz de 25&micro;mol m<sup>-2</sup> s<sup>-1</sup>, mediante el uso de un fluor&oacute;metro Junior-PAM (Walz GmbH, Effeltrich, Germany). Previo a las mediciones, las hojas se expusieron a la oscuridad con pinzas de exclusi&oacute;n de luz. Se realizaron las siguientes mediciones: fluorescencia m&iacute;nima (F<sub>0</sub>) y fluorescencia m&aacute;xima (F<sub>m</sub>). Con el uso de estos par&aacute;metros, se calcul&oacute; la eficiencia fotoqu&iacute;mica del PSII: F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub> = (F<sub>m</sub>-F<sub>0</sub>)/F<sub>m</sub>, y la fluorescencia variable: F<sub>v</sub> = F<sub>m</sub>-F<sub>0</sub>. Estas f&oacute;rmulas fueron calculadas para el an&aacute;lisis cuantitativo de la reacci&oacute;n de producci&oacute;n de fluorescencia, acorde con la curva llamada "cin&eacute;tica de Kautsky" (Gonz&aacute;lez <i>et al.</i> 2008).</p>     <p>Se emple&oacute; un dise&ntilde;o en bloques al azar, teniendo el color de la cobertura como factor de bloque. Cada tratamiento constaba de diez plantas y se tom&oacute; una planta como replicaci&oacute;n. En cada planta, se dispuso de una hoja, para un total de 10 mediciones por tratamiento. Los datos obtenidos, se sometieron a un an&aacute;lisis cl&aacute;sico de variancia (P&lt;0,05) y a la prueba de separaci&oacute;n de promedios de Tukey, mediante la aplicaci&oacute;n PASW (Predictive Analytics Software) versi&oacute;n 18.0.0 (30-07-2009; IBM Corporation, Somers - USA).</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSION</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las pel&iacute;culas de polipropileno, llamadas com&uacute;nmente, papel celof&aacute;n, son bastante selectivas en cuanto a las longitudes de onda que absorben y, por consecuencia, las que transmiten. Efectivamente, el polipropileno azul transfiere mayormente longitudes de onda entre los 440 y 520nm, que corresponden al espectro de color azul y verde. La pel&iacute;cula de color rojo transmite, en muy poca cantidad luz azul, pero en mayor cantidad, por encima de 610nm, donde se encuentra parte del espectro del rojo y rojo lejano. La pel&iacute;cula de color verde emite en mayor cantidad de longitudes de onda que se encuentran en el espectro del color verde y el color amarillo (510-540 nm). Por su parte, el polipropileno de color amarillo transmite las longitudes de onda superiores a 530nm, que corresponden al espectro en el rango de los colores verde, amarillo, naranja, rojo y rojo lejano. En cambio, bajo el papel transparente no se produce una selecci&oacute;n del espectro y se transmite, en igual medida, todas las longitudes, entre los 400 y 700nm. Llama la atenci&oacute;n, que acorde con la figura 1, el rango m&aacute;ximo de transmitancia de la cobertura de color amarillo se encuentra muy cercano al valor registrado para la cobertura transparente, por tanto, muchas de las variables analizadas presentan tendencias similares en plantas colocadas bajo estas dos coberturas, en especial, los valores de F<sub>0</sub>, F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub> y F<sub>t</sub>.</p>     <p><u>Crecimiento vegetal:</u> Se registr&oacute; diferencia estad&iacute;sticamente significativa en el peso seco total por planta, el &aacute;rea foliar, el peso espec&iacute;fico de las hojas (peso seco por &aacute;rea foliar) y la relaci&oacute;n ra&iacute;z:v&aacute;stago (P&lt;0,01) (<a href= "#t2">tabla 2</a>). En cuanto al primer par&aacute;metro, las plantas que crecieron bajo las coberturas de colores amarillo, azul y verde fueron estad&iacute;sticamente diferentes a las del control y presentaron valores de peso seco 14,52; 45,89 y 84,40%, respectivamente, por debajo del control. El &aacute;rea foliar mostr&oacute; valores estad&iacute;sticamente diferentes entre el control y las plantas colocadas bajo las coberturas amarilla, azul, roja y verde. Las tres primeras coberturas, respectivamente, presentaron valores de &aacute;rea foliar 47,37; 45,83 y 76,11%, superiores a los valores del control, mientras que la cobertura de color verde mostr&oacute; un &aacute;rea foliar, 33,94%, por debajo. El valor del peso espec&iacute;fico de las hojas, se redujo en las plantas expuestas a las coberturas de colores amarillo, azul, rojo y verde, cuyo valor promedio, respectivamente, fue 28,75; 41,09; 31,89 y 47,19%, inferior al encontrado en las del control sin cobertura. Por &uacute;ltimo, el valor promedio de la relaci&oacute;n ra&iacute;z:v&aacute;stago s&oacute;lo fue estad&iacute;sticamente diferente entre las plantas expuestas a la cobertura verde y las que crecieron sin cobertura; las primeras presentaron un valor 92,88% superior a la segundas, en cuanto a esta relaci&oacute;n alom&eacute;trica (<a href= "#t2">tabla 2</a>).</p>     <p><a name="t2"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v14n2/v14n2a05t2.jpg"></p>     <p>De manera usual, el incremento del &aacute;rea foliar es una estrategia para aumentar la superficie fotosint&eacute;ticamente activa, as&iacute; se mejora la eficiencia en los procesos de captaci&oacute;n de energ&iacute;a, con el fin de garantizar la producci&oacute;n con intensidades lum&iacute;nicas bajas (Valladares &amp; Niinemets, 2008); sin embargo, en el caso de la cobertura de color verde, no ocurri&oacute; as&iacute;. A pesar que esta cobertura present&oacute; el mayor grado de opacidad, con lo cual se deber&iacute;a haber incrementado el &aacute;rea foliar, sucedi&oacute; lo contrario, lo que permite deducir que, m&aacute;s que el sombreado causado por la cobertura, el &aacute;rea foliar fue afectada por el color.</p>     <p>Como consecuencia de la luz filtrada a trav&eacute;s de los filmes de color, se apreciaron modificaciones morfoanat&oacute;micas en las plantas expuestas a las diferentes coberturas (<a href= "#f2">figura 2</a>). En el an&aacute;lisis estad&iacute;stico de la asignaci&oacute;n de masa seca a los diferentes &oacute;rganos en los que se seccion&oacute; la planta, se advirtieron diferencias altamente significativas en todos los casos (P&lt;0,01). Se observ&oacute; que el menor porcentaje de acumulaci&oacute;n de masa seca (AMS) en la ra&iacute;z, se present&oacute; en plantas expuestas a las coberturas amarilla y azul, mientras que la cobertura verde, registr&oacute; el mayor valor. En la corona, se asign&oacute; menor cantidad de masa seca bajo la cobertura amarilla y en las plantas control y el mayor valor, se encontr&oacute; bajo las coberturas azul y verde. Las plantas control mostraron la menor AMS en las hojas y la mayor se present&oacute; en plantas colocadas bajo las coberturas de colores azul y verde. La cobertura de color rojo indujo la menor AMS en los estolones, mientras que el mayor porcentaje se present&oacute; bajo el color verde. La cobertura transparente redujo la AMS en las flores y la de color verde, la aument&oacute;. En cuanto a los frutos, se registr&oacute; la menor AMS con la exposici&oacute;n de las plantas al color verde y, por el contrario, bajo la cobertura de color amarillo, se registr&oacute; la mayor AMS.</p>     <p><a name="f2"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v14n2/v14n2a05f2.jpg"></p>     <p>Las variaciones de la relaci&oacute;n ra&iacute;z:v&aacute;stago (<a href= "#t2">tabla 2</a>) son el resultado de la interacci&oacute;n de la calidad de la luz y el sombreado proporcionadas por las coberturas, debido a que existen par&aacute;metros anat&oacute;micos, morfol&oacute;gicos y fisiol&oacute;gicos de mayor o menor plasticidad, ante la variaci&oacute;n de la calidad de luz (Terashima <i>et al.</i> 2005). Adem&aacute;s, la teor&iacute;a de la partici&oacute;n &oacute;ptima supone que las plantas responden a las variaciones en la disponibilidad de recursos, mediante la partici&oacute;n preferencial de recursos entre los distintos &oacute;rganos, de forma de optimizar as&iacute; la captura de los mismos y maximizar, consecuentemente, la tasa de crecimiento (Hirose, 1987).</p>     <p>As&iacute;, el an&aacute;lisis de los patrones de asignaci&oacute;n de biomasa resulta ser la mejor herramienta disponible para la investigaci&oacute;n de las funciones prioritarias de las plantas (Weiner, 2004). Se asume que los organismos disponen de una cantidad limitada de recursos que deben ser divididos entre las principales funciones, gener&aacute;ndose as&iacute; relaciones de compromiso (tradeoffs), entre las mismas. Dado que los destinos son mutuamente excluyentes, los recursos destinados a una funci&oacute;n o estructura, no est&aacute;n disponibles para otra (Reekie &amp; Bazzaz, 1987). En el presente estudio, la modificaci&oacute;n m&aacute;s llamativa se hall&oacute; en plantas colocadas bajo la cobertura de color verde, lo cual, pudo ser la consecuencia del sombreado causado por el polipropileno, pero tambi&eacute;n, se debe considerar que este material transmiti&oacute; en mayor cantidad en un rango muy limitado del espectro (colores verde y amarillo: 510-540nm). Adem&aacute;s, su trasmisi&oacute;n en los rangos del azul y del rojo estuvo alrededor de 20 – 30% (<a href= "#f1">figura 1</a>). Este aspecto pudo limitar la captura de fotones, puesto que en estas franjas, se encuentra la mayor actividad de absorci&oacute;n de las clorofilas (Manrique, 2003). Tambi&eacute;n, es conocido que el desempe&ntilde;o fotosint&eacute;tico depende de caracter&iacute;sticas bioqu&iacute;micas y fitoqu&iacute;micas, como la actividad de la enzima Rubisco y otras enzimas del ciclo C3, el contenido de clorofila <i>a</i>, y la eficiencia de los fotosistemas I y II y, en consecuencia, la disponibilidad de los productos ATP y NADPH (Chen et al. 1999). Por lo tanto, en el presente estudio, las plantas colocadas bajo la cobertura de color verde presentaron la menor AMS total en la planta, menor &aacute;rea foliar, menor peso espec&iacute;fico de las hojas, en relaci&oacute;n con los dem&aacute;s tratamientos, pero el mayor valor de la relaci&oacute;n ra&iacute;z:v&aacute;stago.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Estos resultados indican que ser&iacute;an necesarios m&aacute;s estudios bajo diferentes intensidades de luz y de bandas de color espec&iacute;ficas. En comunidades vegetales en campo, la distribuci&oacute;n de luz no es uniforme, ya que presenta menor intensidad en la parte baja del perfil de las plantas. Adem&aacute;s, existen diferentes bandas de luz dentro del perfil vegetal con variaciones desde la parte superior hasta la inferior, por tanto, es posible que las hojas inferiores reflejen m&aacute;s luz en el rango del verde que afecta la estructura y la funci&oacute;n de las hojas vecinas. En este caso, los resultados reportados en el presente estudio tienen implicaciones agron&oacute;micas en relaci&oacute;n de las densidades apropiadas de plantas.</p>     <p>Con vista en la importancia del cultivo de fresa y otros cultivos, en el departamento de Boyac&aacute; y otras ecozonas similares de Colombia, se deben iniciar investigaciones estrat&eacute;gicas agron&oacute;micas, apoyadas en estudios eco-fisiol&oacute;gicos, los cuales, ser&iacute;an de gran importancia para el desarrollo agr&iacute;cola nacional.</p>     <p><u>Fluorescencia de la clorofila <i>a</i>:</u> El an&aacute;lisis de variancia arroj&oacute; diferencias altamente significativas para la Fo entre los tratamientos (P&lt;0,01) (<a href= "#t3">tabla 3</a>). Adem&aacute;s, se registr&oacute; un coeficiente de variaci&oacute;n de 28,91%. La diferencia se expres&oacute;, b&aacute;sicamente, entre las plantas que se desarrollaron bajo la cobertura amarilla y las plantas control sin cobertura, en donde la primera indujo un valor de Fo 89,32% mayor que en las plantas control.</p>     <p><a name="t3"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v14n2/v14n2a05t3.jpg"></p>     <p>Adem&aacute;s, se apreci&oacute; un aumento en el valor promedio de F<sub>0</sub> en plantas expuestas a las coberturas transparente y amarilla. Como ya se hab&iacute;a mencionado, la cobertura amarilla presenta su m&aacute;xima transmitancia muy cercana al valor registrado para la cobertura transparente, por sobre los 530nm, por tanto, las respuestas morfo-fisiol&oacute;gicas que se pudieran producir en las plantas, por parte del espectro en el rango del verde al rojo, ser&iacute;an id&eacute;nticas en las plantas, bajo estas dos coberturas. Gonçalves <i>et al.</i> (2001) notaron que bajo plena iluminaci&oacute;n, en relaci&oacute;n con plantas sombreadas, el valor de F<sub>0</sub> se reduce en <i>Swietenia macrophylla</i>, mientras que esta medida no se altera en <i>Dipteryx odorata</i>, bajo las mismas condiciones, lo cual, implica diferencias gen&eacute;ticas.</p>     <p>Este primer nivel (F<sub>0</sub>) es un indicativo de la plena actividad de los centros de reacci&oacute;n en la clorofila y pigmentos asociados. Refleja la p&eacute;rdida de una parte de la energ&iacute;a absorbida por las mol&eacute;culas-antena antes que &eacute;stas hayan podido transferir la energ&iacute;a de excitaci&oacute;n hacia los centros de reacci&oacute;n (Briantais <i>et al.</i> 1986). Este nivel corresponde a un estado, donde todos los aceptores primarios de electrones del PSII (Quinona A) est&aacute;n oxidados (con carga energ&eacute;tica positiva y falta de electrones), por tanto, es independiente de los procesos fotoqu&iacute;micos. El incremento en la F<sub>0</sub> y la reducci&oacute;n del valor de la relaci&oacute;n F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub>, representan alteraciones a nivel de los centros de reacci&oacute;n del fotosistema II, reducci&oacute;n tanto en la capacidad fotosint&eacute;tica reducida como en la eficiencia fotoqu&iacute;mica (Willits &amp; Peet, 2001), da&ntilde;os colaterales o deterioro en la maquinaria fotosint&eacute;tica de la hojas y, en consecuencia, reducida fijaci&oacute;n de CO<sub>2</sub> (Percival &amp; Henderson, 2003). De hecho, en un estudio realizado por Casierra-Posada &amp; Pe&ntilde;a- Olmos (2011), bajo las mismas caracter&iacute;sticas y condiciones, se encontr&oacute; que bajo las coberturas amarilla y transparente, el contenido de clorofila total fue bajo, en comparaci&oacute;n con las coberturas de los dem&aacute;s colores, mientras que la relaci&oacute;n carotenos / clorofila total fue alta, con lo cual, se pude inferir, que la alta cantidad de los carotenos podr&iacute;a tener una funci&oacute;n protectora, puesto que estos compuestos (carotenos y xantofilas) presentan en las plantas una funci&oacute;n doble, como pigmentos accesorios en la captaci&oacute;n de energ&iacute;a lum&iacute;nica y como mol&eacute;culas capaces de disipar la energ&iacute;a de excitaci&oacute;n excedente en forma de calor, evitando da&ntilde;os importantes, llamados <i>fitoinhibci&oacute;n</i> (Manrique, 2003; Demmig-Adams &amp; Adams, 1992).</p>     <p>El valor registrado para la F<sub>v</sub> mostr&oacute; diferencias altamente significativas (P&lt;0,01), entre el control y las plantas expuestas a las dem&aacute;s coberturas, con excepci&oacute;n de la cobertura transparente, con un coeficiente de variaci&oacute;n de 17,20%. Las plantas colocadas bajo las coberturas amarilla, azul, roja y verde presentaron valores de F<sub>v</sub> , 35,68; 46,23; 40,09 y 45,13% m&aacute;s elevados que las plantas que crecieron sin cobertura (<a href= "#t3">tabla 3</a>).</p>     <p>La respuesta m&aacute;s importante de la planta, en el caso de la fluorescencia determinada en hojas adaptadas a la oscuridad, es la F<sub>v</sub> (Vieira <i>et al.</i> 2010). Mientras mayor es el valor de la F<sub>v</sub> mayor ser&aacute; la capacidad del PSII para realizar la fotoqu&iacute;mica primaria y, en consecuencia, mayor ser&aacute; la capacidad de asimilar de CO<sub>2</sub>, en los procesos bioqu&iacute;micos de la fotos&iacute;ntesis (Baker &amp; Rosenqvist, 2004), lo cual, no se vio reflejado en los resultados del presente trabajo, puesto que el valor de F<sub>v</sub>, en todos los tratamientos, fue superior al de las plantas control sin cobertura; no obstante, estas &uacute;ltimas presentaron mayor producci&oacute;n de peso seco total, acorde con la tabla 2, lo que pudo ser la consecuencia de una mayor capacidad de disipaci&oacute;n de la energ&iacute;a capturada, por el PSII, en forma de calor (Non-photochemical quenching).</p>     <p>Alternativamente, con menos &aacute;rea foliar por planta, pero con hojas m&aacute;s pesadas (peso espec&iacute;fico alto, debido a mayor cantidad de componentes fotosint&eacute;ticos y bioqu&iacute;micos por unidad de &aacute;rea foliar (<a href= "#t2">tabla 2</a>), la producci&oacute;n superior de biomasa en plantas control fue posible, debido a una mayor tasa de fijaci&oacute;n de CO<sub>2</sub> por unidad de &aacute;rea foliar. Tambi&eacute;n, es posible que la densidad estom&aacute;tica (n&uacute;mero por &aacute;rea foliar) y, como resultante, la conductancia foliar de difusi&oacute;n de CO<sub>2</sub>, hayan sido mayores en plantas sin cobertura. Es conocido que la tasa de fotos&iacute;ntesis es positivamente asociada con la conductancia estom&aacute;tica, como por ejemplo, en el cultivo de yuca (El-Sharkawy, 2007). Factores relacionados con la anatom&iacute;a foliar, caracter&iacute;sticas estom&aacute;ticas y fisiol&oacute;gicas, como la tasa de fotos&iacute;ntesis y bioqu&iacute;micas, como cantidad y actividad de enzimas afectadas por la intensidad y calidad de luz, merecen m&aacute;s estudios en el futuro cercano.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las lecturas registradas para la F<sub>m</sub> mostraron que hubo diferencia altamente significativa (P&lt;0,01), entre las plantas control y las aquellas expuestas a las dem&aacute;s coberturas, con excepci&oacute;n de las que crecieron bajo la cobertura transparente. Adicionalmente, se hall&oacute; un coeficiente de variaci&oacute;n de 14,95%. Las plantas que se desarrollaron bajo las coberturas amarilla, azul, roja y verde presentaron valores de F<sub>m</sub> 49,96; 39,09; 37,50 y 38,36% m&aacute;s elevados, que las plantas control sin cobertura (<a href= "#t3">tabla 3</a>).</p>     <p>Se debe considerar que en este estudio, se utiliz&oacute; un pulso act&iacute;nico de luz 25&micro;mol m<sup>-2</sup> s<sup>-1</sup>, con miras a lograr el valor de F<sub>m</sub>, por tanto, al aumentar la cantidad de luz, tiene lugar una conversi&oacute;n progresiva de violaxantina en zeaxantina y un incremento en la concentraci&oacute;n relativa de las formas deepoxidadas del ciclo de las xantofilas, frente a las m&aacute;s epoxidadas; por ende, existe un incremento gradual del estado de deepoxidaci&oacute;n (DPS) del ciclo de las xantofilas, que se correlaciona con la disminuci&oacute;n de la eficiencia fotoqu&iacute;mica del PSII, medida mediante fluorescencia de la clorofila <i>a</i> (Manrique, 2003). El valor de F<sub>m</sub> fue superior en todos los tratamientos, en relaci&oacute;n con el obtenido en las plantas control, lo que ser&iacute;a un &iacute;ndice de disipaci&oacute;n de la energ&iacute;a capturada, en forma de florescencia, lo que impact&oacute; negativamente la producci&oacute;n de masa seca, mostrada en la <a href= "#t2">tabla 2</a>. Este resultado, se puede corroborar con el reporte de Casierra-Posada <i>et al.</i> (2011), quienes utilizaron la informaci&oacute;n colectada en el presente estudio, para realizar un an&aacute;lisis del crecimiento en las plantas y encontraron que la tasa de asimilaci&oacute;n neta (TAN: la tasa de producci&oacute;n de biomasa total por &aacute;rea foliar) se redujo en las plantas expuestas a todas las coberturas de color, en relaci&oacute;n con las plantas control, con excepci&oacute;n de la cobertura transparente. Estos hallazgos muestran que la tasa de fotos&iacute;ntesis neta basada en &aacute;rea foliar (P<sub>N</sub>) fue afectada negativamente por las diferentes coberturas de color.</p>     <p>El ciclo de las xantofilas es un proceso flexible, que responde a las condiciones lum&iacute;nicas, como fluctuaciones diurnas, insolaciones puntuales o transiciones sol-sombra o los llamados <i>´sunflecks´</i>, dentro del perfil vegetal (Demmig-Adams &amp; Adams, 1992). En el ambiente natural, los vegetales est&aacute;n sometidos a la acci&oacute;n de estos y otros factores ambientales, que modulan su respuesta en conjunto; sin embargo, las diferentes especies responden de forma muy diferente a las fluctuaciones. Estas diferencias fisiol&oacute;gicas entre especies son las que contribuyen, de forma definitiva, a las diferencias funcionales y adaptivas entre ecosistemas (Manrique, 2003).</p>     <p>Se apreci&oacute; diferencia altamente significativa en los valores registrados para la eficiencia fotoqu&iacute;mica del PSII (F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub>) (P&lt;0,01), con un coeficiente de variaci&oacute;n de 9,28%. Esta diferencia se manifest&oacute; en especial, en el valor registrado en las plantas control sin cobertura y las que crecieron bajo la cobertura transparente, las cuales, exhibieron un valor de F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub> 16,57% menor que las plantas del tratamiento control (<a href= "#f3">figura 3</a>).</p>     <p>F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub> se correlaciona bien con el rendimiento cu&aacute;ntico fotosint&eacute;tico, medido como la producci&oacute;n de O<sub>2</sub> o el consumo de CO<sub>2</sub> a bajas irradiancias. Una reducci&oacute;n en F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub> puede ser generada por una reducci&oacute;n en F<sub>m</sub> y/o por un incremento en F<sub>0</sub>, como sucedi&oacute; en el presente trabajo, en el cual, la reducci&oacute;n en el valor de F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub> en las plantas expuestas a las coberturas amarilla y transparente, con respecto a las plantas control, se debi&oacute; al aumento en el valor de F<sub>0</sub>, y no a la reducci&oacute;n del valor de F<sub>m</sub>. Valores de F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub> en el rango de 0,78 a 0,85, se asocian con plantas sanas y no estresadas (Percival, 2004). La reducci&oacute;n en el valor de la relaci&oacute;n F<sub>v</sub> / F<sub>m</sub> encontrado en el presente estudio en plantas que crecieron bajo las coberturas de colores amarillo y transparente, posiblemente, se atribuya a un estado alto de reducci&oacute;n del primer receptor de electrones (el pool de Q<sub>A</sub>), que conlleva a una variaci&oacute;n en la tasa de transporte de electrones (Baker &amp; Rosenqvist, 2004). Por otro lado, los valores de la relaci&oacute;n F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub> encontrados en plantas expuestas a las coberturas de color azul, rojo y verde, posiblemente, se encuentren relacionados con la eficiencia de los mecanismos fotoprotectores, que pueden modular la probabilidad de fotoda&ntilde;o, mediante ajustes morfol&oacute;gicos, cambios en el tama&ntilde;o de la antena y activaci&oacute;n de rutas alternas de transporte de electrones (Niyogi, 1999).</p>     <p><a name="f3"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v14n2/v14n2a05f3.jpg"></p>     <p>Por &uacute;ltimo, se encontr&oacute; diferencia estad&iacute;sticamente significativa en las mediciones de F<sub>t</sub> (P&lt;0,01). Las plantas expuestas a todas las coberturas presentaron valores de F<sub>t</sub> superiores a las plantas control (<a href= "#t3">tabla 3</a>). Al respecto, Bacarin &amp; Mosquim (2002), mencionan que el aumento del valor de este par&aacute;metro, normalmente viene acompa&ntilde;ado de un incremento en la tasa de fotos&iacute;ntesis neta (P<sub>N</sub>), como resultante de mayor asimilaci&oacute;n de CO<sub>2</sub>, con utilizaci&oacute;n de ATP y de NADPH en la fase bioqu&iacute;mica, los cuales, se produjeron en la fase fotoqu&iacute;mica; sin embargo, por el contrario al reporte de estos autores, en este estudio, los valores registrados para el peso seco total en plantas, bajo todas las coberturas, disminuy&oacute; (<a href= "#t2">tabla 2</a>) y se puede interpretar como una reducci&oacute;n en la tasa de asimilaci&oacute;n, lo cual, fue corroborado por Casierra- Posada <i>et al.</i> (2011) quienes, con las mismas plantas del presente estudio, hallaron que la tasa de asimilaci&oacute;n neta se redujo en las plantas expuestas a todas las coberturas de color, en relaci&oacute;n con las del control, excepto en aquellas bajo la cobertura transparente.</p>     <p><u>Conflicto de intereses:</u>El manuscrito fue preparado y revisado con la participaci&oacute;n de todos los autores, quienes declaramos que no existe ning&uacute;n conflicto de intereses que ponga en riesgo la validez de los resultados presentados. <u>Financiaci&oacute;n:</u> Este estudio se desarroll&oacute; con el apoyo de la Direcci&oacute;n de Investigaciones (DIN) de la Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia (UPTC), en el programa J&oacute;venes Investigadores UPTC, con el soporte del grupo de investigaci&oacute;n Ecofisiolog&iacute;a Vegetal, adscrito al programa de Ingenier&iacute;a Agron&oacute;mica de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la UPTC.</p>     <p><b>BIBLIOGRAFIA</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>1. BACARIN, M.A.; MOSQUIM, P.R. 2002. Cin&eacute;tica de emissão de fluorescência das clorofilas de dois gen&oacute;tipos de feijoeiro. Ciência e Agrotecnologia, Lavras. 26(4):705-710.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0123-4226201100020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2. BAKER, N.R.; ROSENQVIST, E. 2004. Applications of chlorophyll fluorescence can improve crop production strategies: an examination of future possibilities. J. Exp. Bot. 55(403):1607-1621.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0123-4226201100020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3. BRADBURNE, J.A.; KASPERBAUER, M.J.; MATHIS, J.N. 1989. Reflected Far-Red light effects on cholorophyll and light-harvesting chlorophyll protein (LHCII) contents under field conditions. Plant Physiol. 91(3):800-803.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0123-4226201100020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>4. BRIANTAIS, J.M.; VERNOTTE, C.; KRAUSE, G.H.; WEIS, E. 1986. Chlorophyll fluorescence of higher plant chloroplasts and leaves. In: Govindjee, J.A.; Fork, D.C., Eds. Light emission by plants and photosynthetic bacteria. Academic Press, New York. p.539-577.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-4226201100020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5. CASIERRA-POSADA, F.; ROJAS B., J.F. 2009. Efecto de la exposici&oacute;n del semillero a coberturas de colores sobre el desarrollo y productividad del br&oacute;coli (<i>Brassica oleracea</i> var. italica). Agr. Col. 27(1):49-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-4226201100020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>6. CASIERRA-POSADA, F.; PE&Ntilde;A-OLMOS, J.E. 2011. Contenido de pigmentos en hojas de fresa (<i>Fragaria</i> sp) expuestas a diferente calidad espectral. Agr. Col. (en prensa).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0123-4226201100020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>7. CASIERRA-POSADA, F.; PE&Ntilde;A-OLMOS, J.E.; ULRICHS, C. 2011. An&aacute;lisis b&aacute;sico del crecimiento en plantas de fresa (<i>Fragaria</i> sp.) expuestas a diferente calidad de luz. Agr. Col. (en prensa).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-4226201100020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8. CHEN, K.; HU, G.; KEUTGEN, K. 1999. Effects of NaCl and CO<sub>2</sub> enrichment on pepino (<i>Solanum muricatum</i> Ait) II. Leaf photosynthetic properties and gas exchange. Sci. Hort. 81:43-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-4226201100020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>9. DECOTEAU, D.R. 2008. The emergence and early development of colored reflective plastic mulch technology in agriculture. En: Stevens, C.; Khan, V.A. (eds). Recent advances in agriculture. Research Signpost. Kerala, India. p.1-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-4226201100020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10. DEMMIG-ADAMS, B.; ADAMS, III W.W. 1992. Photochemical and other responses of plants to high light stress. Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 43:599-626.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0123-4226201100020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>11. EL-SHARKAWY, M.A. 2007. Physiological characteristics of cassava tolerance to prolonged drought in the tropics: Implications for breeding cultivars adapted to seasonally dry and semiarid environments. Braz. J. Plant Physiol. 19(4):257-286.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-4226201100020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12. F OLTA, K.M.; MARUHNICH, S.A. 2007. Green light: a signal to slow down or stop. J. Exp. Bot. 58:3099-3111.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-4226201100020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>13. F UKUDA, N.; FUJITAN, M.; OHTA, Y.; SASE, S.; NISHIMURA, S.; EZURA, H. 2008. Directional blue light irradiation triggers epidermal cell elongation of abaxial side resulting in inhibition of leaf epinasty in geranium under red light condition. Sci. Hort. 115:176-182.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-4226201100020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>14. GONÇALVES, J.F. de C.; MARENCO, R.A.; VIEIRA, G. 2001. Concentration of photosynthetic pigments and chlorophyll fluorescence of Mahogany and Tonka bean under two light environments. Rev. Bras. Fisiol. Veg. 13(2):149-157.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-4226201100020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>15. GONZ&Aacute;LEZ M., S.; PERALES V, H.; SALCEDO A., M.O. 2008. La fluorescencia de la clorofila <i>a</i> como herramienta en la investigaci&oacute;n de efectos t&oacute;xicos en el aparato fotosint&eacute;tico de plantas y algas. Rev. Educaci&oacute;n Bioqu&iacute;mica. 27(4):119-129.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-4226201100020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>16. HALIAPAS, S.; YUPSANIS, T.A.; SYROS, T.D.; KOFIDIS, G.; ECONOMOU, A.S. 2008. Petunia x hybrida during transition to flowering as affected by light intensity and quality treatments. Acta Physiol. Plant. 30:807-815.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-4226201100020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17. HIROSE, T. 1987. A vegetative plant growth model: adaptive significance of phenotypic plasticity in matter partitioning. Functional Ecol. 1:195-202.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0123-4226201100020000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>18. IMAIZUMI, T.; TRAN, H.G.; SWARTZ, T.E.; BRIGGS, W.R.; KAY, S.A. 2003. FKF1 is essential for photoperiodicspecific light signalling in Arabidopsis. Nature. 426:302- 306.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0123-4226201100020000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>19. JIAO, Y.; LAU, O.S.; DENG, X.W. 2007. Light-regulated transcriptional networks in higher plants. Nat. Rev. Genet. 8:217-230.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0123-4226201100020000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>20. LOUGHRIN, J.H.; KASPERBAUER, M.J. 2002. Aroma of fresh strawberries is enhanced by ripening over red versus black mulch. J. Agric. Food Chem. 50:161-165.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0123-4226201100020000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>21. MANRIQUE, E. 2003. Los pigmentos fotosint&eacute;ticos, algo m&aacute;s que la captaci&oacute;n de luz. Ecosistemas 12(1). Disponible desde internet en: http://rua.ua.es/dspace/ bitstream/10045/8958/1/ECO_12%281%29_08.pdf. (con acceso 22/07/2011).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0123-4226201100020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>22. MIRANDA, J.H.; WILLIAMS, R. 2007. Developmental influence of <i>in vitro</i> light quality and carbon dioxide on photochemical efficiency of PS II of strawberry leaves (<i>Fragaria</i> x ananassa). J. Appl. Hort. 9(1):13-16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0123-4226201100020000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>23. MATHEWS, S. 2010. Evolutionary studies illuminate the structural–functional model of plant phytochromes. The Plant Cell. 22:4-16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0123-4226201100020000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>24. NIYOGI, K.K. 1999. Photoprotection revisited: Genetic and molecular approaches. Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Molec. Bio. 50:333-359.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0123-4226201100020000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>25. PERCIVAL, G.C. 2004. Evaluation of physiological tests as predictors of young tree establishment and growth. J. Arboric. 30(2):80-92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0123-4226201100020000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>26. PERCIVAL, G.C.; HENDERSON, A. 2003. An assessment of the freezing tolerance of urban trees using chlorophyll fluorescence. J. Hortic. Sci. Biotech. 78(2):254-260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0123-4226201100020000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>27. REEKIE, E.G.; BAZZAZ, F.A. 1987. Reproductive effort in plants: effect of reproduction on vegetative activity. Am. Naturalist. 129:907-919.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0123-4226201100020000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>28. SHAHAK, Y.; GAL, E.; OFFIR, Y.; BEN-YAKIR, D. 2008. Photoselective Shade Netting Integrated with Greenhouse Technologies for Improved Performance of Vegetable and Ornamental Crops. Acta Hort. 797:75-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0123-4226201100020000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>29. STRASSER, B.; S&Aacute;NCHEZ-LAMAS, M.; YANOVSKY, M.J.; CASAL, J.J.; CERD&Aacute;N, P.D. 2010. <i>Arabidopsis thaliana</i> life without phytochromes. Proc. Nal. Acad. Sci. U.S.A. 107:4776-4781.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0123-4226201100020000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>30. TERASHIMA, I.; HANDA, Y.T.; TAZOE, Y.; VYAS, P.; YANO, S. 2005. Irradiance and phenotype: comparative ecodevelopment of sun and shade leaves in relation to photosynthetic CO<sub>2</sub> diffusion. J. Exp. Bot. Phenothypic Plasticity and the Changing Environm. Special Issue. 57(2):343-354.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0123-4226201100020000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>31. VALLADARES, F.; NIINEMETS, Ü. 2008. Shade Tolerance, a Key Plant Feature of Complex Nature and Consequences. Ann. Rev. Ecol. Evolution and Systematics. 39:237-257.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0123-4226201100020000500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>32. VIEIRA, D.A. de P.; PORTES, T. de A.; STACCIARINISERAPHIN, E; TEIXEIRA, J.B. 2010. Fluorescência e teores de clorofilas em abacaxizeiro cv. p&eacute;rola submetido a diferentes concentrações de sulfato de amônio. Rev. Bras. Frutic. 32(2):360-368.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0123-4226201100020000500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>33. WEINER, J. 2004. Allocation, plasticity and allometry in plants. Perspectives in Plant Ecol., Evol. and Systematics. 6(4):207-215.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0123-4226201100020000500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>34. WILLITS, D.H.; PEET, M.M. 2001. Using chlorophyll fluorescence to model leaf photosynthesis in greenhouse pepper and tomato. Acta Hortic. 507:311315.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0123-4226201100020000500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>Recibido: Julio 24 de 2011; Aceptado: Noviembre 2 de 2011</p> </font>      ]]></body><back>
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<source><![CDATA[Ciência e Agrotecnologia, Lavras]]></source>
<year>2002</year>
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<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
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