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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EFECTO DEL CHOQUE TÉRMICO SOBRE LA EFICIENCIA EN LA TRIPLOIDIZACIÓN Y LA SOBREVIVENCIA DE LARVAS DE Rhamdia quelen]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[EFFECT OF THERMALSHOCK ON TRIPLOIDIZATION EFFICIENCY AND SURVIVAL OF LARVAE OF Rhamdia quelen]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Triploidy enables improvements in fish farming since it avoids sexual maturity, controls overpopulation and increases the developmental stability. Because of its sterility, the fish harvest may be delayed, attaining fishes with greater weight and age. The aim of this study was to evaluate the effect of thermal shock on the efficiency of triploidization and the survival of Rhamdia quelen larvae. Two females and three males sexually mature were used, induced with carp pituitary extract. The eggs were inseminated and seven minutes postfertilization, submitted to thermal shock with three temperatures: 34, 36 and 38°C during two and five minutes, respectively; then incubated until hatching. Temperature, oxygen, hatching rates and survival were recorded. Larval ploidy was evaluated by staining organizing nucleolus regions (NOR) with silver nitrate. The hatching rate was similar in the control and the treatments, being of two minutes, while hatching percentage o was lower (p <0.05) in the five minutes treatments. The survival rate was higher than 91% in all treatments, without statistical difference between them. The percentages of triploidy by heat shock treatments, not including the control, ranged between 78.8 and 96.6%, without significant difference between them (p&gt; 0.05). It was concluded that meiotic thermal shock with the three temperatures and duration within 2 to 5 minutes can induce triploid in Rhamdia quelen.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Desarrollo embrionario]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">     <p align=right><b>CIENCIAS AGROPECUARIAS - Art&iacute;culo Cient&iacute;fico</b></p>     <p align="center"><b>EFECTO DEL CHOQUE T&Eacute;RMICO  SOBRE LA EFICIENCIA EN LA TRIPLOIDIZACI&Oacute;N Y LA SOBREVIVENCIA DE LARVAS DE <i>Rhamdia quelen</i></b></p>     <p align="center"><b>EFFECT OF THERMALSHOCK ON TRIPLOIDIZATION EFFICIENCY AND SURVIVAL OF LARVAE OF <i>Rhamdia quelen</i></b></p>     <p><b>Liliana Cardona<sup>1</sup>, Martha Olivera<sup>2</sup>, M&oacute;nica Botero<sup>3</sup>,  Ariel Tarazona<sup>4</sup></b></p>     <p><sup>1</sup> Zoot. M.Sc. Facultad  de Ciencias Agropecuarias, Dpto. Producci&oacute;n  Animal, grupo BIOGEM, Universidad Nacional de Colombia,  Sede  Medell&iacute;n, Colombia.  Calle 56A # 63-20  Bloque  50  Of 316,  Medell&iacute;n, Antioquia, <a href="mailto:lmcardonb@unal.edu.co"> lmcardonb@unal.edu.co</a></p>     <p><sup>2</sup> DMV,  Dra. Sci. Agr. Grupo  de Investigaci&oacute;n  BIOGENESIS/Universidad de Antioquia-Universidad Nacional de Colombia. Carrera 75 # 65-87 Bloque 46-202,  Medell&iacute;n Antioquia, <a href="mailto:syngamia@gmail.com"> syngamia@gmail.com</a></p>     <p><sup>3</sup> Zoot. Ph.D. GRICA/Universidad de Antioquia, Colombia.  Carrera 75 # 65-87,  Medell&iacute;n, Antioquia, <a href="mailto:vicedecanaturafca@gmail.com"> vicedecanaturafca@gmail.com</a></p>     <p><sup>4</sup> Zoot. M.Sc, c.PhD. Facultad  de Ciencias Agropecuarias, Dpto. Producci&oacute;n  Animal, Universidad Nacional de Colombia,  Sede Medell&iacute;n, Colombia.  Calle 56A# 63-20 Bloque 50 Of 316, Medell&iacute;n, Antioquia. <a href="mailto:amtarazonam@unal.edu.co"> amtarazonam@unal.edu.co</a></p>     <p> Rev. U.D.C.A Act. &amp; Div. Cient. 15(2): 409 - 417, 2012</p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>RESUMEN</b></p>     <p>La triploid&iacute;a permite  mejoras  en el cultivo de peces,  ya que se evita la madurez  sexual, controla  la superpoblaci&oacute;n y aumenta  la estabilidad en el desarrollo. Debido a su esterilidad, se pueden  retrasar  las cosechas, logrando  peces  de mayor peso y edad.  El objetivo del estudio  fue evaluar el efecto del choque  t&eacute;rmico  sobre  la eficiencia en la triploidizaci&oacute;n y la sobrevivencia de larvas de <i>Rhamdia quelen. </i>Se emplearon dos  hembras y tres machos sexualmente maduros, inducidos con  extracto  de hip&oacute;fisis de carpa.  Las ovas fueron inseminadas y siete minutos posfertilizaci&oacute;n, sometidas a choque  t&eacute;rmico,  con  tres  temperaturas: 34,  36  y 38&deg;C  y dos tiempos:  2 y 5 minutos.  Posteriormente, fueron  incubadas hasta el momento de la eclosi&oacute;n. Se registraron:  temperatura, ox&iacute;geno y porcentajes de eclosi&oacute;n y de sobrevivencia. Se evalu&oacute; la ploid&iacute;a de las larvas, mediante  tinci&oacute;n con nitrato de plata de las regiones organizadoras de nucl&eacute;olo (RON). El porcentaje  de eclosi&oacute;n fue igual en el control y en los TTOs de  2  minutos;  todos  los TTOs  de  5  minutos  presentaron menor  porcentaje  de  eclosi&oacute;n  (p&lt;  0.05).  El porcentaje  de sobrevivencia fue mayor  al 91% en todos  los tratamientos, sin diferencia estad&iacute;stica entre  ellos. Los porcentajes de triploid&iacute;a para los tratamientos con choque  t&eacute;rmico,  sin incluir el control, oscilaron entre 78,8 y 96,6%, sin observarse  diferencia significativa entre ellos (p&gt;0.05). Se concluye, que el choque  t&eacute;rmico  mei&oacute;tico,  con  las tres  temperaturas y con una duraci&oacute;n  de 2 y 5 minutos,  induce  la triploid&iacute;a en <i>Rhamdia quelen</i>.</p>     <p><b>  Palabras clave:</b> Desarrollo embrionario, meiosis, regi&oacute;n organizadora de nucl&eacute;olo, triploide.</p> <hr>     <p><b>SUMMARY</b></p>     <p>  Triploidy  enables   improvements  in  fish  farming   since   it avoids sexual maturity, controls  overpopulation and increases the developmental  stability. Because  of its sterility, the fish harvest may be delayed, attaining  fishes with greater  weight and  age. The  aim  of this study  was to  evaluate  the  effect of thermal  shock  on the efficiency of triploidization and  the survival  of <i>Rhamdia quelen </i>larvae. Two females  and  three males sexually mature  were used, induced with carp pituitary extract. The eggs were inseminated and seven minutes  postfertilization, submitted to thermal shock with three temperatures: 34, 36 and 38&deg;C during two and five minutes,  respectively; then  incubated until hatching.  Temperature, oxygen, hatching  rates and survival were recorded.  Larval ploidy was evaluated  by staining  organizing  nucleolus  regions  (NOR) with silver nitrate. The hatching  rate was similar in the control and the treatments, being of two minutes,  while hatching  percentage o was lower (p &lt;0.05) in the five minutes  treatments.  The  survival rate  was higher  than  91% in all treatments,  without statistical difference between them.  The percentages of triploidy by heat shock treatments, not including the control, ranged between 78.8 and 96.6%, without significant  difference  between  them  (p&gt;  0.05).  It was concluded that meiotic thermal shock  with the three temperatures and duration  within 2 to 5 minutes  can induce triploid in <i>Rhamdia quelen</i>.</p>     <p><b>  Key words:</b> Embryo development, meiosis,  nucleolus  organizer region, triploid.</p> <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>Algunas caracter&iacute;sticas de los peces,  como  la fecundaci&oacute;n externa, la alta fecundidad, el control de la diferenciaci&oacute;n sexual y un intervalo generacional relativamente  corto (Tabata,  2008), los convierten en ejemplares  deseables para la manipulaci&oacute;n  sexual y cromos&oacute;mica (Thorgaard,  1983).  La biotecnolog&iacute;a  ha hecho  muchos aportes  en diferentes  ciencias y disciplinas, entre ellas, la acuicultura  (Pineda <i>et al</i>. 2004); un  avance  importante ha  sido  la obtenci&oacute;n de  individuos poliploides,  con  una  variaci&oacute;n cuantitativa  del conjunto  de cromosomas (D&iacute;az &amp; Neira, 2005), la cual, ha permitido mejoras en la producci&oacute;n de especies  de cultivo, ya que se evita la madurez  sexual (Piferrer <i>et al</i>. 2009; D&iacute;az &amp; Neira, 2005), se  controla  la superpoblaci&oacute;n y aumenta la estabilidad  en el desarrollo (Piferrer <i>et al</i>. 2009); dada  la condici&oacute;n  de esterilidad, se  pueden  retrasar  las cosechas, logrando  peces  de mayor peso  y edad  (D&iacute;az &amp; Neira, 2005).  Adicionalmente, pueden  servir para programas de repoblamiento sin que exista competencia reproductiva con las especies  nativas (Piferrer <i>et al</i>. 2009). Algunos de los cambios  y consecuencias de  la  tecnolog&iacute;a  fueron  citados  por  Benfey (1999),  dentro de los que se destacan una disminuci&oacute;n  en la relaci&oacute;n &aacute;rea/ volumen de c&eacute;lulas de tejidos y de &oacute;rganos, puesto que estas poseen  un mayor contenido de material gen&eacute;tico,  que conlleva a que se afecten fen&oacute;menos de comunicaci&oacute;n celular y transporte, a trav&eacute;s de membranas. Aunque la biotecnolog&iacute;a  para la obtenci&oacute;n de individuos triploides se ha implementado desde  1943 en diversas familias de peces  (Hulata, 2001), a&uacute;n es poco  conocido c&oacute;mo  se origina y se mantiene  esta condici&oacute;n  de triploid&iacute;a (Benfey, 1999) y surgen  en ellos una serie de  cambios  que  no  han  permitido  mejorar  el uso  de estas biotecnolog&iacute;as y entender el comportamiento y las respuestas fisiol&oacute;gicas de los organismos al medio. Se cree que pueden  existir otras alteraciones  que involucran la forma de la c&eacute;lula, la fluidez de la  membrana celular y la s&iacute;ntesis  de &aacute;cidos  nucleicos,  cuando  se utilizan choques de temperatura, para inhibir la expulsi&oacute;n del segundo cuerpo  polar (Hildebrandt,  2002). Estos choques han sido uno de los m&eacute;todos m&aacute;s empleados para la obtenci&oacute;n de triploides a gran escala (Piferrer <i>et al</i>. 2009;  D&iacute;az &amp; Neira, 2005;  Thorgaard, 1983; Pineda <i>et al</i>. 2004).</p>     <p><i>Rhamdia quelen</i> (Quoy &amp; Gaimard, 1824) (Pisces: Heptapteridae) es un pez perteneciente al orden Siluriforme, que ha demostrado buena resistencia  a la manipulaci&oacute;n (Rodr&iacute;guez,  2007)  y es de f&aacute;cil adaptaci&oacute;n y reproducci&oacute;n, bajo condiciones de laboratorio, por lo que se ha convertido en un modelo para realizar investigaciones  en diferentes &aacute;reas,  dentro de las cuales,  la biotecnolog&iacute;a  aplicada es un campo  de impacto productivo en Colombia y adaptable a las especies  de  producci&oacute;n m&aacute;s utilizadas (Pineda <i>et al. </i>2004) o en aquellas que  se  consideran promisorias  para  el desarrollo  pisc&iacute;cola del pa&iacute;s. El objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto del choque  t&eacute;rmico  sobre  la eficiencia en la triploidizaci&oacute;n y la sobrevivencia de larvas de <i>Rh. quelen.</i></p>     <p><b>MATERIALES  Y M&Eacute;TODOS</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><u>Animales:</u>  Se  emplearon  dos   hembras  de  0,1219   y  de 0,1776kg   y tres  machos  de  0,0977;   0,081   y 0,1099kg, sexualmente maduros, seleccionados seg&uacute;n  las caracter&iacute;sticas descritas  por Varela et al (1982).  Los animales  fueron obtenidos de  ejemplares   en  cautiverio,  mantenidos en  la Estaci&oacute;n Pisc&iacute;cola San Jos&eacute;  del Nus, ubicada  en el municipio de San Roque (Antioquia); la temperatura promedio  del agua  fue de 24&deg;C.  Los animales  fueron transportados hasta  el laboratorio, donde permanecieron en acuarios  durante  un periodo de adaptaci&oacute;n de 20 d&iacute;as.</p>     <p><u>Obtenci&oacute;n  de  gametos:</u> Para  la inducci&oacute;n  de  la reproducci&oacute;n,  se utiliz&oacute; extracto  de hip&oacute;fisis de carpa  (EHC, Stoller Fisheries,  USA), usando el protocolo  propuesto por Woynarovich &amp; Horvath (1983), con las modificaciones  descritas  a continuaci&oacute;n. Para  las hembras, se aplicaron  dos  dosis  de 0,5 y 5,0mg/kg de peso  vivo, con  intervalo de doce  horas, entre la primera  y la segunda dosis. Los machos fueron inducidos  con una dosis &uacute;nica de 3,5mg/kg, la cual, se aplic&oacute; simult&aacute;neamente con  la segunda dosis  de  la hembra.  Los animales fueron previamente anestesiados con Quinaldine&reg;   200&mu;L/3L de agua  y se emplearon los protocolos  de manipulaci&oacute;n de menor estr&eacute;s para los animales. Los gametos, se  obtuvieron por extrusi&oacute;n manual en direcci&oacute;n cr&aacute;neo-caudal y se mezclaron  para formar un grupo de oocitos y un grupo de semen;  de este  &uacute;ltimo, se tom&oacute;  una muestra de 0,5mL, para evaluar par&aacute;metros esperm&aacute;ticos y asegurar la calidad del  mismo;  dentro  de  &eacute;stos,  se  tuvo en  cuenta  movilidad (Ara&uacute;jo <i>et al</i>. 2003),  tiempo  de activaci&oacute;n  y concentraci&oacute;n esperm&aacute;tica (Cruz-Casallas <i>et al</i>. 2005).</p>     <p><u>Choque t&eacute;rmico mei&oacute;tico:</u> Las ovas fueron inseminadas para permitir  la fertilizaci&oacute;n; posteriormente, se  hidrataron  con agua  declorada a 25&deg;C; se  deposit&oacute;  una  muestra de  2mL para cada  tratamiento en incubadoras; 7 minutos  posfertilizaci&oacute;n y se sometieron a choque  t&eacute;rmico.  Los tratamientos de  choque  t&eacute;rmico  evaluados  fueron  a  tres  temperaturas: 34,  36  y 38&deg;C, cada  una  con  dos  tiempos:  2 y 5 minutos (34-2, 34-5, 36-2, 36-5, 38-2, 38-5); para lo cual, todas  las incubadoras fueron sumergidas, simult&aacute;neamente, en ba&ntilde;os  termost&aacute;ticos, durante  tiempos  y temperaturas respectivas mencionadas. El grupo  control consisti&oacute;  en ovas inseminadas, a una temperatura de 25&deg;C y no se les hizo choque  t&eacute;rmico. Cada  tratamiento, incluyendo  el control,  tuvo cuatro r&eacute;plicas, excepto los de 38&deg;C, que se hicieron por duplicado, debido  al n&uacute;mero  de ovocitos disponibles.  Una vez finalizado el choque  t&eacute;rmico,  las ovas de cada  r&eacute;plica fueron distribuidas  de manera  aleatoria  en incubadoras de acr&iacute;lico tipo californiana, con agua  a 25&deg;C y se mantuvieron  all&iacute; hasta  el momento de la eclosi&oacute;n. Durante este tiempo, se registraron  los siguientes  par&aacute;metros de calidad de agua: temperatura y ox&iacute;geno, evaluados mediante  un ox&iacute;metro Orion 3 Star DO y pH con un pHmetro  marca  WTW.</p>     <p><u>Evaluaci&oacute;n del porcentaje  de eclosi&oacute;n  y sobrevivencia:</u> Para determinar los porcentajes de eclosi&oacute;n (a) y de sobrevivencia (b), se utilizaron las siguientes  f&oacute;rmulas:</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v15n2/v15n2a19ecu1.jpg"></p>     <p>Las larvas vivas fueron separadas por r&eacute;plicas en frascos  de vidrio, con 2L de agua, previamente  declorada y mantenidas a 25&deg;C.<br/>     <p>  <u>Evaluaci&oacute;n del porcentaje  de triploid&iacute;a</u>: Nueve d&iacute;as despu&eacute;s de la eclosi&oacute;n,  se tom&oacute;  al azar una muestra de poslarvas de cada  r&eacute;plica, de  acuerdo  al n&uacute;mero  de  sobrevivientes  a la fecha y se anestesiaron con Quinaldine&reg;,  en una proporci&oacute;n  de 50&mu;L/0,25 litros de agua. Se obtuvieron suspensiones celulares individuales de  cada  larva, empleando el protocolo reportado por Vozzi <i>et al. </i>(2003), utilizando citrato de sodio al 0,7%, como  soluci&oacute;n hipot&oacute;nica,  en vez de cloruro de potasio. Posteriormente, se trataron  con soluci&oacute;n  de metanol:  &aacute;cido ac&eacute;tico 3:1 y se adicion&oacute; &aacute;cido ac&eacute;tico al 50%, durante  3 minutos.  Se realiz&oacute; goteo en placas portaobjetos, incluyendo los restos de los animales,  los cuales,  se maceraron. Las placas se secaron sobre una plancha  t&eacute;rmica a 60&deg;C.</p>     <p>  Para facilitar la observaci&oacute;n de n&uacute;cleos interf&aacute;sicos, cada placa fue coloreada durante  10 minutos,  con tinci&oacute;n de Giemsa al 5%, preparada en fresco y llevadas a la plancha  t&eacute;rmica. Se realiz&oacute; tinci&oacute;n con nitrato de plata de las regiones organizadoras de nucl&eacute;olo (RON), seg&uacute;n  el protocolo  descrito por Alonso <i>et al</i>. (2000).  La observaci&oacute;n  de  los n&uacute;cleos  interf&aacute;sicos  con  la expresi&oacute;n  de  las regiones  organizadoras de nucl&eacute;olo, se hizo en un microscopio  &oacute;ptico marca Leica (40X  - 100X). Se contabiliz&oacute; un n&uacute;mero m&iacute;nimo de 50 n&uacute;cleos por placa y se determin&oacute;, en cada  n&uacute;cleo observado, el n&uacute;mero  de regiones organizadoras de nucl&eacute;olo expresadas. Un individuo se consider&oacute;  triploide, si presentaba al menos  un n&uacute;cleo con 3 RONes.</p>     <p><u>An&aacute;lisis estad&iacute;stico:</u>  Se us&oacute; un dise&ntilde;o  de clasificaci&oacute;n experimental completamente aleatorizado  efecto fijo balanceado en arreglo factorial 3 x 2, con una adici&oacute;n  correspondiente al control; se realiz&oacute; an&aacute;lisis suplementado con ANOVAS de tipo unidimensional y pruebas  de contraste de Tukey, con un error tipo I del 5%. Las variables, el porcentaje  de eclosi&oacute;n y de sobrevivencia, se transformaron con base en la funci&oacute;n arco seno.  Se aplic&oacute; an&aacute;lisis descriptivo exploratorio de tipo unidimensional, con el objetivo de hallar promedio,  desviaci&oacute;n t&iacute;pica y coeficiente  de variaci&oacute;n, para  cada  una  de las variables de inter&eacute;s; para los an&aacute;lisis, se emple&oacute; el programa SAS versi&oacute;n 8.2.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El promedio  de  temperatura registrado  en  el experimento  fue de 25&plusmn;0,9&deg;C; el valor m&iacute;nimo de ox&iacute;geno disuelto en las diferentes  r&eacute;plicas fue de 4,8 mg/L y el mayor de 6,1mg/L; los valores de pH oscilaron entre 7,13 &plusmn; 0,20 y 7,22 &plusmn; 0,10. Respecto  a los par&aacute;metros f&iacute;sico-qu&iacute;micos del agua y su posible influencia en los resultados  obtenidos para las variables reproductivas  evaluadas  en  los diferentes  tratamientos durante el tiempo  de incubaci&oacute;n  y eclosi&oacute;n,  estuvieron dentro de los rangos  permisibles y recomendados para especies  de aguas  c&aacute;lidas (Rold&aacute;n, 1992), lo que es apoyado  por los valores encontrados, dado que no hubo diferencia significativa entre tratamientos.     <p>  <u>Eclosi&oacute;n</u>: El mayor  porcentaje  de eclosi&oacute;n  se obtuvo  en el tratamiento control a una temperatura de 25&deg;C con un valor de 43,5 &plusmn; 3,3% sin choque  t&eacute;rmico.  El valor m&iacute;nimo correspondiente a 15,8  &plusmn; 10,4% fue obtenido  en el tratamiento 36-5.  En general,  se observa  que  los menores porcentajes de eclosi&oacute;n se presentan cuando  el tiempo  de duraci&oacute;n  del choque  t&eacute;rmico  es mayor  (5 minutos). En la <a href="#f1">Figura 1A</a>, se presentan los  resultados   obtenidos para  el porcentaje   de eclosi&oacute;n de ovas, sometidas a choque  t&eacute;rmico mei&oacute;tico.</p>     <p>El porcentaje   de  eclosi&oacute;n  present&oacute; diferencia  significativa  (p&lt;  0,05) entre el control y los tratamientos 34-5, 38-5 y 36-  5; los resultados  de los tratamientos con tiempos  de choque  t&eacute;rmico de 2 minutos,  no presentaron diferencia significativa (p&gt;0,05) (<a href="#f1">Figura 1A</a>). La <a href="#t1">tabla 1</a> muestra los promedios, las desviaciones  t&iacute;picas,  los coeficientes  de variaci&oacute;n y la diferencia  estad&iacute;stica  de los porcentajes de eclosi&oacute;n,  luego  de someter  las ovas a los diferentes tratamientos.</p>     <p><a name="t1"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v15n2/v15n2a19t1.jpg"></p>     <p><a name="f1"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v15n2/v15n2a19f1.jpg"></p>     <p>  En cuanto  a los tratamientos, se podr&iacute;a decir que el tiempo del  choque   t&eacute;rmico   tiene  un  efecto  delet&eacute;reo   para  este par&aacute;metro. Se observa  una  marcada tendencia de obtener  menores porcentajes de  eclosi&oacute;n  con  los tratamientos de choque  de 5 minutos,  al oscilar entre 15,8 a 17,8% (<a href="#t1">Tabla 1</a>), siendo &eacute;stos los m&aacute;s bajos.</p>     <p>  Las c&eacute;lulas en los distintos organismos tienen diferentes respuestas cuando  existe incremento en el estr&eacute;s,  causado por una elevaci&oacute;n de la temperatura, que depende de la duraci&oacute;n que  esta  permanezca alta (Arvelo, 2002).  Cuando  es  leve, como  en el caso  del choque  con duraci&oacute;n  de dos minutos,  se podr&iacute;a  aseverar,  aunque  no fue demostrado en este  trabajo, que se presenta  una superproducci&oacute;n de prote&iacute;nas  de choque t&eacute;rmico (Hsp), que permiten  que se desarrolle la termo tolerancia, previniendo la apoptosis al desencadenar mecanismos protectores contra la oxidaci&oacute;n, como  los reportados por Fleury <i>et al. </i>(2002). Si se presenta  una situaci&oacute;n de estr&eacute;s  m&aacute;s  intenso,  como  ocurri&oacute;  con  el choque  de cinco minutos,  se puede  generar  necrosis  celular (Arvelo, 2002),  fen&oacute;meno que se ve reflejado en las bajas tasas  de eclosi&oacute;n, en ovas sometidas a este tratamiento.</p>     <p><u>Sobrevivencia:</u>  El porcentaje  de  sobrevivencia  fue alto,  superando  el 91% en todos  los tratamientos, siendo  muy homog&eacute;neos los resultados, de acuerdo  a lo observado  en la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (<a href="#f1">Figura 1B</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>No se encontraron diferencias  significativas entre  los tratamientos  34-2,  34-5,  36-2,  36-5,  38-2,  38-5  (p&gt;0,05).  Los valores expresados en  promedio&plusmn;desviaci&oacute;n est&aacute;ndar y el coeficiente  de variaci&oacute;n para  los tratamientos y sin choque t&eacute;rmico,  fueron 97,9 &plusmn; 2,6 (c.v=2,6), 91,5 &plusmn; 8,8 (c.v=9,6), 96,6  &plusmn; 4,3  (c.v=4,4), 94,1  &plusmn; 5,1  (c.v=5,5), 92,0  &plusmn; 0,0 (c.v=0,0), 98,8  &plusmn; 1,0 (c.v=1,1), 97,9  &plusmn; 1,7 (c.v=1,7), respectivamente.</p>     <p>Vozzi <i>et al. </i>(2003) encontraron, en el momento de la eclosi&oacute;n, el mayor porcentaje  de sobrevivencia, correspondiente a 33,40%, cuando  se sometieron ovas de <i>Rh. quelen </i>a choque t&eacute;rmico,  a 36&deg;C, durante  5 minutos,  5 minutos  posfertilizaci&oacute;n; valor inferior a los reportados en el presente  estudio. La misma  especie,  sometida  a choques t&eacute;rmicos  fr&iacute;os, para obtenci&oacute;n de triploides, exhibi&oacute; 65,4&plusmn;3,1% de sobrevivencia (Soller <i>et al. </i>2007).</p>     <p>  Despu&eacute;s  de  la eclosi&oacute;n,  no  se  observaron  diferencias  significativas en la sobrevivencia de larvas entre  los tratamientos. Lo anterior conduce a suponer  que no existe efecto del choque  t&eacute;rmico en las larvas, luego de la eclosi&oacute;n y durante  la reabsorci&oacute;n de saco  vitelino. Es posible que ello sea mediado por una familia de prote&iacute;nas  de choque  t&eacute;rmico (Hsp); mol&eacute;culas  encargadas de la respuesta celular al estr&eacute;s,  que se sintetizan en forma constitutiva e inducible, una vez sobreviene aquel y act&uacute;an  como  chaperonas moleculares asociadas  con  ensamble y plegamiento de otras  prote&iacute;nas  (Hartl,  1996). Se ha reportado que algunas  de las prote&iacute;nas  de este tipo  persisten  en  las c&eacute;lulas,  cuando  desaparece el factor causante del estr&eacute;s (Dubeau <i>et al</i>. 1998).</p>     <p>  Chippari <i>et  al. </i>(1999)  reportaron  que  el rango  de  confort para <i>Rh. quelen</i>, en el periodo de larvicultura, es de 21-30&deg;C, valores de temperatura que abarcan la mantenida durante  el experimento,  por  lo tanto,  las condiciones de  temperatura  en las que se desarrollaron  las larvas no habr&iacute;an sido las causantes  de su muerte.</p>     <p><u>Ploid&iacute;a:</u> Para determinar la distribuci&oacute;n de las regiones  organizadoras de nucl&eacute;olo en n&uacute;cleos  interf&aacute;sicos de suspensiones celulares, se realiz&oacute; un Anova, encontr&aacute;ndose diferencia significativa (p&lt;0,05) en el an&aacute;lisis de la variable n&uacute;mero  de n&uacute;cleos interf&aacute;sicos, con 1 RON; entre el control respecto  al tratamiento 36-2  y al 38-2; el tratamiento 38-5  respecto  al 38-2 y tratamiento 34-2 respecto  al 38-2. El mayor n&uacute;mero  de n&uacute;cleos  con 1 RON, se present&oacute; en el control,  mientras  que  el menor  se observ&oacute;  en el 38-2.  La menor  desviaci&oacute;n est&aacute;ndar encontrada para la expresi&oacute;n de una Regi&oacute;n Organizadora  de  Nucl&eacute;olo,  se  evidenci&oacute;  en  el tratamiento 38-5 (<a href="#t1">Tabla 1</a>).</p>     <p>  Para  la variable n&uacute;mero  de  n&uacute;cleos  con  2 RON, no  hubo diferencia significativa (p&gt;0,05). De manera  general,  se observa  que  el n&uacute;mero  de  n&uacute;cleos  con  2 RON fue mayor  al encontrado con  1 RON (<a href="#t1">Tabla 1</a>). Dado  que  las Regiones Organizadoras de  Nucl&eacute;olo  son  requeridas  por  las c&eacute;lulas som&aacute;ticas para  la construcci&oacute;n de  los ribosomas, posiblemente,  como respuesta de la c&eacute;lula a los choques de temperatura,  se aumentar&iacute;a la capacidad de s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas, principalmente, las de choque  t&eacute;rmico,  que  se ve reflejado en el n&uacute;mero  de  estas  estructuras presentes en el n&uacute;cleo, como mecanismo para evitar la muerte  celular.</p>     <p>  En los n&uacute;cleos  interf&aacute;sicos  de  individuos considerados triploides de los diferentes tratamientos, los cuales,  exhibieron  3 RON, se  encontraron diferencias  significativas (p&lt;0,05). Hubo diferencia entre el tratamiento 36-5 y los dem&aacute;s;  en el tratamiento 38-2 con respecto  al 38-5,  al control y al 34-2; en el tratamiento 34-5, 36-2, 34-2 y 34-5 respecto  al control.</p>     <p>  La frecuencia  de presentaci&oacute;n de 3 RON fue inferior que la de 1 y 2 RON (<a href="#t1">Tabla 1</a>). </p>     <p> Las  frecuencias   mostradas  anteriormente corresponden a individuos diploides y triploides, siendo estos &uacute;ltimos los que exhibieron hasta 3 RON, por lo tanto, en todos los tratamientos, se present&oacute; poliploid&iacute;a.</p>     <p>  En cuanto  a la distribuci&oacute;n de las regiones  organizadoras de nucl&eacute;olo  en n&uacute;cleos  interf&aacute;sicos  de suspensiones celulares, donde  se encontraron diferencias a las temperaturas y tiempos  de  choque  t&eacute;rmico  respecto  a 1 RON o dos  RONes, se podr&iacute;a deber  a que las variaciones  de RONes se pueden  incrementar por recombinaci&oacute;n hom&oacute;loga desigual  dentro del ribosoma  del gen, tal como  lo sugieren  Schmickel <i>et al. </i>(1985) y que es altamente dependiente de la actividad celular y que dependen de los dep&oacute;sitos en los centros  fibrilares o en la segregaci&oacute;n de los nucl&eacute;olos durante  la interfase en las RONes durante  la mitosis (Hern&aacute;ndez <i>et al</i>. 1980).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  La <a href="#f2">figura 2</a> muestra la expresi&oacute;n  de RONes en n&uacute;cleos  interf&aacute;sicos de poslarvas diploides y triploides de <i>Rh. quelen</i>. </p>     <p> Los  porcentajes  de  triploid&iacute;a  para   los  tratamientos  con choque  t&eacute;rmico,  sin incluir el control,  oscilaron  entre  78,8 y  96,6%,  sin  observarse  diferencia  significativa entre  ellos (p&gt;0,05), siendo menor  para el tratamiento 34-2 y el mayor para 36-5. Con respecto  al tratamiento sin choque  t&eacute;rmico, se hallaron valores de 13,7% de triploides, observ&aacute;ndose diferencia estad&iacute;stica  (p&lt;0,05), con respecto  a los dem&aacute;s  tratamientos (<a href="#t1">Tabla 1</a>); adicionalmente, se observa  una amplia desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (<a href="#f1">Figura 1C</a>).</p>     <p><a name="f2"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v15n2/v15n2a19f2.jpg"></p>     <p>  La eficiencia en la triploidizaci&oacute;n encontrada en el presente  estudio,  no es un par&aacute;metro definitivo a la hora de escoger  una  temperatura y un tiempo  de choque  t&eacute;rmico  para  obtener individuos triploides en esta especie,  ya que se deben  tener en cuenta  otros factores,  como  las tasas  de eclosi&oacute;n y la sobrevivencia,  que son afectados por los procedimientos realizados. Lincoln &amp; Bye (1984) reportaron  para trucha arco iris (<i>Oncorhynchus mykiss</i>)  que,  en  la medida  en  que  se aumenta la temperatura para  choque  t&eacute;rmico,  se aumenta el n&uacute;mero  de triploides,  hasta  cierto punto,  pero  se afecta negativamente el porcentaje  de sobrevivencia en la fase de ojos visibles y, a&uacute;n m&aacute;s, el de ves&iacute;cula reabsorbida.</p>     <p>  Soller <i>et al. </i>(2007) realizaron inducci&oacute;n  de triploid&iacute;a en <i>Rh. quelen </i>con choque  t&eacute;rmico  fr&iacute;o; el mayor porcentaje  de triploides obtenido  fue 97,9% con tratamiento a una temperatura de 4&deg;C, durante  20 minutos;  valor muy cercano al obtenido al hacerlo  a 36&deg;C, 5 minutos  (96,6%), en este  trabajo. Con la realizaci&oacute;n de choque  t&eacute;rmico c&aacute;lido a 36&deg;C, durante  cinco minutos,  5 minutos  posteriores a la fertilizaci&oacute;n, Vozzi <i>et al. </i>(2003),  para  la misma  especie,  obtuvieron  74,8% de triploides; un dato inferior al encontrado en este trabajo, variando  &uacute;nicamente el momento del choque. Aunque  en el trabajo de Vozzi no evaluaron exactamente 7 minutos,  como  tiempo posfertilizaci&oacute;n para hacer el choque, es posible que entre este tiempo y 5 minutos no existan diferencias y lo que realmente  determin&oacute;  un inferior porcentaje  de triploid&iacute;a fue el  procedimiento o las herramientas utilizadas, para  que  la distribuci&oacute;n del calor fuera uniforme en las unidades  experimentales  y se manifestara  el verdadero efecto de la temperatura y el tiempo. Se puede hipotetizar que las diferencias existentes  pueden  ser originadas  por los contrastes presentes, entre la <i>Rh. quelen </i>procedente de las lagunas marginales, en  la provincia de Corrientes, en Argentina y la procedente de la cuenca la Vega, en el municipio de San Roque, en Colombia y las  condiciones ambientales en las que  se encuentran y, es por ello, que se hace  necesario la estandarizaci&oacute;n de los procedimientos, para la obtenci&oacute;n de individuos poliploides, para cada poblaci&oacute;n  en particular.</p>     <p>  El 100% de individuos triploides se ha obtenido  en <i>Salmo salar</i>,  por  medio  de  choque   t&eacute;rmico  (Benfey &amp; Sutterlin,  1984);  en <i>Rh.  quelen </i>este  mismo  porcentaje  se  ha  alcanzado, realizando un choque  de presi&oacute;n (Huergo &amp; Zaniboni- Filho, 2006), lo que conlleva a resultados  m&aacute;s consistentes, pero  presenta   la desventaja  de  requerir  equipos  costosos (Maxime, 2008). En Colombia, la obtenci&oacute;n de triploides de <i>Rh. quelen </i>en porcentajes superiores  al 90% es un gran logro, ya que  se tienen  pocos  reportes,  hasta  el momento, y la estandarizaci&oacute;n de ese procedimiento es importante para cuando se quieran  utilizar dichos  individuos como  modelos  experimentales o se quieran  aprovechar  sus ventajas de esterilidad; adem&aacute;s, servir&iacute;a para  promover  a los productores acu&iacute;colas  del pa&iacute;s a utilizar este  tipo de biotecnolog&iacute;as, que son de gran importancia, para obtener  ventajas productivas y son econ&oacute;micas.</p>     <p>  En el grupo en que no se realiz&oacute; choque  t&eacute;rmico, se hall&oacute; un porcentaje  de triploides equivalente al 13,7%, lo que conlleva suponer  varias posibilidades:  primero,  que de manera  natural, en una peque&ntilde;a proporci&oacute;n,  se haya presentado una falla en la extrusi&oacute;n del cuerpo  polar despu&eacute;s de fertilizar los huevos (Tiwary <i>et al. </i>2004); o se dio el proceso  de fertilizaci&oacute;n normal, pero los huevos  posiblemente por estr&eacute;s  mec&aacute;nico generado en la manipulaci&oacute;n;  o por agentes  qu&iacute;micos, se encontraban en un estado  no reducido  2n (Borin <i>et al</i>. 2002).</p>     <p>  Phillips <i>et  al. </i>(1986)  propusieron el m&eacute;todo  de  identificaci&oacute;n  de  individuos triploides  por  medio  de  la observaci&oacute;n  de regiones  organizadoras de nucl&eacute;olo te&ntilde;idas con plata, en n&uacute;cleos  interf&aacute;sicos,  en diferentes  especies  de salm&oacute;nidos, incluyendo  la trucha  arco  iris; sin embargo, sugiri&oacute; que  la t&eacute;cnica  solamente deb&iacute;a ser usada  en el caso  &uacute;nico de que la  especie  expresara  un  cromosoma con  una  regi&oacute;n  organizadora  de  nucl&eacute;olo  por  genoma haploide.  Zharskaya  &amp; Zatsepina (2007) plantearon  que dentro del cariotipo existen unos cromosomas espec&iacute;ficos, en los cuales, se encuentra el conjunto  de regiones  organizadoras de nucl&eacute;olo  y de ADNr y el n&uacute;mero  presente  de cromosomas de este  tipo, est&aacute;  directamente relacionado  con  el n&uacute;mero  de  nucl&eacute;olos  en  la interfase,  que puede  ser alterado  como  respuesta celular al choque  t&eacute;rmico. En <i>Rh. quelen </i>se ha reportado que en cada cromosoma submetac&eacute;ntrico del par n&uacute;mero  20 se encuentran ubicadas  las RONes (Moraes <i>et al</i>. 2007); sin embargo, existen otros  autores  que  las han  reportado en pares  acroc&eacute;ntricos (Fenocchio <i>et al</i>. 2003) y subteloc&eacute;ntricos (Stivari <i>et al</i>. 2004), en una frecuencia mucho  menor;  Moraes <i>et al.</i>  (2007)  afirman  que  la variaci&oacute;n en  la ubicaci&oacute;n  de  las regiones organizadoras de nucl&eacute;olo asociadas a cromosomas es  debido  a  rearreglos  cromos&oacute;micos; no  obstante, estas variaciones  no  alteran  su n&uacute;mero  y, por ello, no  limitan la utilizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica para la identificaci&oacute;n de la ploid&iacute;a en la especie.</p>     <p>  El choque  t&eacute;rmico  mei&oacute;tico  con  las temperaturas 34, 36 y  38&deg;C  y con una duraci&oacute;n  de 2 y 5 minutos  permite obtener  individuos triploides en <i>Rhamdia quelen</i>;  sin embargo, es importante considerar  que  existe un  efecto  marcado en  el tiempo  de duraci&oacute;n  del choque, que disminuye los porcentajes  de  eclosi&oacute;n,  por  lo tanto,  es  deseable  usar  el menor  tiempo para el choque  de temperatura con el que se puedan  obtener triploides, observ&aacute;ndose que el tratamiento 38-2 si bien no arroj&oacute; los mayores  porcentajes de triplod&iacute;a es el que mejor se comporta en cuanto  a tasas  de eclosi&oacute;n y sobrevivencia.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  Este trabajo es el primero que se reporta en el pa&iacute;s en cuanto  a obtenci&oacute;n de triploides en una especie nativa, lo que es importante, dado que teni&eacute;ndose un referente para su producci&oacute;n,  se  pueden  emplear  estos  ejemplares  como  modelos experimentales para estudios  en otras  &aacute;reas  o para aprovechar  su condici&oacute;n  de esterilidad  y no madurez  sexual, que favorece mayores  ganancias de peso  en etapas  espec&iacute;ficas de crecimiento  y, adem&aacute;s, servir&iacute;a para promover  a los productores acu&iacute;colas  del pa&iacute;s a utilizar este  tipo de biotecnolog&iacute;as altamente importantes para  diversificar producto, ya que permitir&iacute;a ampliar el mercado del filete en ciertas especies y son de bajo costo.</p>     <p>  <b>Agradecimientos: </b>A Colciencias y a la Universidad Nacional Sede  Medell&iacute;n, por financiar el programa de J&oacute;venes  Investigadores  2008-2009, en el marco  del convenio  especial  de cooperaci&oacute;n No 209. Al laboratorio de Larvicultura de peces  y producci&oacute;n de alimento  vivo (Larpeali), de la Facultad  de Ciencias Agrarias de la Universidad de Antioquia. <u>Conflicto</u> <u>de intereses</u>:  El manuscrito fue preparado y revisado con la participaci&oacute;n  de todos  los autores,  quienes  declaramos que no existe ning&uacute;n conflicto de intereses  que ponga  en riesgo la validez de los resultados  presentados.</p>     <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>1.    ALONSO, M.; TABATA,  Y.; RIGOLINO, M.; TSUKAMOTO, R. 2000.  Effect of induced  triploidy on  fin regeneration  of juvenile rainbow trout, <i>Oncorhynchus mykiss. </i>J. Exp. Zool .(Brasil). 287:493-502.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0123-4226201200020001900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  2.    ARVELO, F. 2002.  Mitocondria y apoptosis. Acta Cient.  Ven. 53:297-306.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0123-4226201200020001900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   3.    ARA&Uacute;JO, H.; CORDERO, W.; RUGELES, C.; ATENCIO, V.  2003. Evaluaci&oacute;n de las caracter&iacute;sticas seminales  de Blanquillo <i>Sorubim cuspicaudus </i>inducido  con ovaprim&reg;. Rev. Col. Cienc. Pec. 16 (suplemento):78p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-4226201200020001900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   4.    BENFEY,  T. 1999.  The physiology and  behavior of triploid fishes. Rev. Fish. Sci. (Inglaterra). 7(1):39-67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-4226201200020001900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   5.    BENFEY, T.; SUTTERLIN, A. 1984.  Triploidy induced  by heat  shock  and  hydrostatic  pressure  in landlocked Atlantic salmon  (<i>Salmo salar </i>L.). Aquacult (EE.UU).  42:359-367.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-4226201200020001900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   6.    BORIN, L.; MARTINS, I.; OLIVEIRA, C. 2002.  A natural triploid  in <i>Trichomycterus davisi </i>(Siluriformes, Trichomycteridae):   mitotic  and  meiotic  characterization by chromosome banding  and  synaptonemal complex analyses. Genetica (EE.UU). 115:253-258.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-4226201200020001900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   7.    CHIPPARI, A.; GOMES, L.; BALDISSEROTTO, B. 1999.  Lethal temperature for silver catfish, <i>Rhamdia quelen</i>, fingerlings. J. Appl. Aquac. (Brasil). 9(4):11-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-4226201200020001900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   8.    CRUZ-CASALLAS,   P.E.;  LOMBO-RODR&Iacute;GUEZ, D.A.; VELASCO-SANTAMAR&Iacute;A,    Y.M.  2005.   Milt quality and spermatozoa morphology of captive <i>Brycon siebenthalae </i>(Eigenmann)  broodstock. Aquacult. 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Thermal shock of salmon  in vivo induces  the heat  shock  protein  hsp  70  and  confers  protection  against osmotic  shock. Aquacult. 168:311-323.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-4226201200020001900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   11.  FENOCCHIO, A.S.; BERTOLLO, L.A.C.; TAKAHASHI, C.S.; DIAS, A.L.; SWAR&Ccedil;A, A.C. 2003.  Cytogenetic studies  and  correlated  considerations on  Rhamdiinae  relationships   (Pisces,  Siluroidei,  Pimelodidae). 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Nature. 381:571-580.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-4226201200020001900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   14.  HERN&Aacute;NDEZ, D.; HUBERT, J.; BOURGEOIS, C. 1980.  Ultrastructural  localization of Ag-NOR stained  proteins  in the  nucleolus  during  the  cell cycle and  in other  nucleolar  structures.  Chromosoma  (Inglaterra). 79: 42-362.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-4226201200020001900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   15.  HILDEBRANDT, B.; WUST, P.; ALHERS, O.; DIEING, A.; SREENIVASA, G.; KERNER, T.; FELIX, R.; RIESS, H.  2002.  The cellular and molecular basis of hyperthermia. Crit. Rev. Oncol. Hematol. (EE.UU). 43:33-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0123-4226201200020001900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   16.  HUERGO, G.; ZANIBONI, E. 2006. Triploidy induction in Jundi&aacute;<i>Rhamdiaquelen </i>through hydrostatic pressure shock. J. Appl. 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Fish  Farmer  (EE.UU). 7:30-  32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0123-4226201200020001900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   19.  MAXIME, V. 2008. The physiology of triploid fish: current knowledge  and  comparisons with diploid fish. Fish Fisheries (Inglaterra). 9:67-78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0123-4226201200020001900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   20.  MORAES, V.; CEREALI,  S.; FROEHLICH, O.; DIAS, A.  2007. Cytogenetic characterization of <i>Rhamdia quelen </i>(Siluriformes, Heptapteridae) from the Bodoquena Plateau, MatoGrosso do Sul, Brazil. Genetics Mol. Res. (Brasil).6(3):627-633.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0123-4226201200020001900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   21. PHILLIPS, R.; ZAJICEK, J.; IHSSEN, P.; JOHNSON,  O.  1986.  Application of silver staining to the identification of triploid fish cells. 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PINEDA, H.; JARAMILLO,  J.;  ECHEVERRI, M.; OLIVERA, A. 2004. Triploid&iacute;a en trucha arcoiris (<i>Oncorhynchus mykiss</i>): posibilidades  en Colombia.  Rev. Col. Cienc. Pec. 17(1):45-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0123-4226201200020001900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   24.  RODR&Iacute;GUEZ, M. 2007.  Fichas de especies.  Acuicultura Uruguay.  Disponible  desde  Internet  en:  <a href="http://www.dinara.gub.uy/fichas%20de%20especies/bagre%20negro.htm"target="_blank">http://www.dinara.gub.uy/fichas%20de%20especies/bagre%20negro.htm</a> (con acceso  14/08/07).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0123-4226201200020001900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  25.  ROLD&Aacute;N, G. 1992.  Fundamentos de Limnolog&iacute;a Neotroropical.  Edit. Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n.  529p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0123-4226201200020001900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   26.  SCHMICKEL, R.; GONZALEZ, I.; ERICKSON, J. 1985.  Nucleolus organizing genes  on chromosome 21: recombination and  non-disjunction. Ann. N.Y.  Acad. Sci. 450:121-131.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0123-4226201200020001900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   27.  SOLLER, F.; GUIMAR&Atilde;ES, R.; OROZCO, R.; SILVA, A.  2007.  Triploidy induction by cold shock in the South American  catfish, <i>Rhamdia  quelen </i>(Siluriformes) (Quoy&amp;Gaimard,    1824).   Aquacult.   272S1:S110- S114.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0123-4226201200020001900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   28.  STIVARI,  M.; MARTINS-SANTOS, I. 2004.   Karyotype diversity in two populations  of <i>Rhamdia quelen </i>(Pisces, Heptapteridade). Cytologia (Jap&oacute;n).  69:25-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0123-4226201200020001900028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  29.  TABATA, Y. 2008.  Biotecnolog&iacute;as  aplicadas  a truticultura. Rev. Col. Cienc. Pec. 21:455-522.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0123-4226201200020001900029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  30.  THORGAARD,  G.  1983.  Chromosome set  manipulation and sex control. En: Hoard, W.S.; Randall, D.J.; Donaldson, E.M. (eds). Fish Physiology. Acad. Press. New York. p.405-434.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0123-4226201200020001900030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   31.  TIWARY,  B.;  KIRUBAGARAN,  R.;  RAY,  A. 2004.   The biology of triploid fish. Rev. Fish Biol. Fisheries (ReinoUnido).14:391-402.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0123-4226201200020001900031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   32.  VARELA, Z.; FISCHER, K.; FABIANO, G. 1982.  Reproducci&oacute;n   artificial de  bagre  negro <i>Rhamdia sapo</i>. Project reports.  Montevideo. 34p.  Disponible desde  Internet       en:   <a href="http://www.fao.org/docrep/field/003/AC568S/AC568S01.htm"target="_blank">http://www.fao.org/docrep/field/003/AC568S/AC568S01.htm</a> (con acceso  15/08/2007).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0123-4226201200020001900032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   33.  VOZZI, A.; S&Aacute;NCHEZ,  S.; PERMINGEAT, E. 2003. Inducci&oacute;n de triploid&iacute;a en <i>Rhamdia quelen </i>(PISCES, PIMELODIDAE). Bol. Inst. Pesca, S&atilde;o Paulo. 29(1):87-  94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0123-4226201200020001900033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   34.  WOYNAROVICH, E.; HORV&Aacute;TH, L. 1983. A propaga&ccedil;&atilde;o artificial de peixes de &aacute;guas  tropicais.  Brasilia: FAO/ CODEVASF/CNPq. 220p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0123-4226201200020001900034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   35.  ZHARSKAYA, O.; ZATSEPINA, O. 2007.  The dynamics and mechanisms of nucleolar  reorganization  during mitosis. Cell Tissue Biol. (EE.UU). 1(4):277-292.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0123-4226201200020001900035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>   Recibido: Enero 12 de 2012  Aceptado: Octubre  26 de 2012</p> </font>      ]]></body><back>
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<label>1.</label><nlm-citation citation-type="journal">
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of induced triploidy on fin regeneration of juvenile rainbow trout, Oncorhynchus mykiss]]></article-title>
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<volume>287</volume>
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