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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[INDUCCIÓN IN VITRO DE LA REACCIÓN ACROSÓMICA CON HEPARINA EN SEMEN CONGELADO DE TOROS BRAHMAN Y GYR]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The aim of this study was to value the in vitro induction by heparin of acrosome reaction in frozen semen from <0.05), however AP made an exception, indicating that the Brahman type presented a lower percentage of defects than the Gyr type (p&gt;0.05). No correlation was observed between semen quality assessment (MPIR, AS, AP, AT and RA) and the non-return rate of the bulls (p<0.05). The results indicate that RA technique can be used as complementary test in the seminal routine assessment of frozen bovine semen; however, alone it is no effective in predicting the fertilizing potential of cryopreserved semen.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">     <p align=right><b>CIENCIAS AGROPECUARIAS - Art&iacute;culo Cient&iacute;fico</b></p>     <p align="center"><b>INDUCCI&Oacute;N <i>IN VITRO </i>DE LA REACCI&Oacute;N ACROS&Oacute;MICA CON HEPARINA EN SEMEN  CONGELADO DE TOROS BRAHMAN Y GYR</b></p>     <p align="center"><b>IN VITRO INDUCTION wITH HEPARIN OF ACROSOME REACTION IN FROZEN BRAHMAN AND GYR BULLS  SEMEN</b></p>     <p><b>Jos&eacute;  Montes<sup>1</sup>, Mar&iacute;a Torres<sup>2</sup>, Clara Rugeles<sup>3</sup>, Roberto Almanza<sup>4</sup>, Jos&eacute;  Guimar&atilde;es<sup>5</sup></b></p>     <p><sup>1</sup>MVZ, estudiante de  maestr&iacute;a,   Universidad  Federal  de  Vi&ccedil;osa,  Brasil,  <a href="mailto:zecave@live.com"> zecave@live.com</a></p>     <p><sup>2</sup>MVZ, estudiante de  maestr&iacute;a, Universidad  de  C&oacute;rdoba,   Colombia,  <a href="mailto:torresmariaelena2@hotmail.com"> torresmariaelena2@hotmail.com</a></p>     <p><sup>3</sup>MVZ, M.Sc.  Profesora  Universidad  de  C&oacute;rdoba, Facultad  de  Medicina Veterinaria  y Zootecnia,  Colombia,  <a href="mailto:crugelespint@yahoo.es"> crugelespint@yahoo.es</a></p>     <p><sup>4</sup>MVZ,  profesional  particular,  Colombia</p>     <p><sup>5</sup>MV, Ph.D. Profesor Universidad Federal de Vicosa, Brasil, <a href="mailto:jdguima@ufv.br"> jdguima@ufv.br</a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Rev. U.D.C.A Act. &amp; Div. Cient. 15(2): 431 - 436, 2012</p> <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>El objetivo de este trabajo fue evaluar la respuesta del semen  congelado-descongelado  de  toros   Brahman   y  Gyr  a  la inducci&oacute;n  de la reacci&oacute;n  acros&oacute;mica <i>in vitro </i>con  heparina  y su  uso  como  prueba  complementaria, para  predecir  la fertilidad   del   semen    congelado-descongelado.   Fueron usados siete toros cebu&iacute;nos (4 Brahman y 3 Gyr), sexualmente maduros.  En  la  evaluaci&oacute;n   seminal   posdescongelaci&oacute;n, se  evalu&oacute; la Motilidad Progresiva  Individual R&aacute;pida (MPIR), Anormalidades  Primarias  (AP), Anormalidades  Secundarias (AS), Anormalidades  Totales (AT) y porcentaje  de inducci&oacute;n  de la Reacci&oacute;n Acros&oacute;mica (RA). La RA fue determinada sobre extendidos   con   eosina-nigrosina,  mediante    microscop&iacute;a  &oacute;ptica a 100X. No hubo diferencia entre las dosis seminales  de ambas razas para la MPIR, morfolog&iacute;a  esperm&aacute;tica y RA (p &gt; 0.05), con excepci&oacute;n  de las AP, donde  la raza Brahman  evidenci&oacute; menor porcentaje  de defectos  que la raza Gyr (p &lt;  0.05). El valor obtenido  para las Tasas de No Retorno (TNR) fue de 79,4&plusmn;1,4%; sin embargo, no se observ&oacute;  asociaci&oacute;n entre la evaluaci&oacute;n  de calidad seminal (MPIR, AP, AS, y RA) con  las TNR de los toros  (p&lt;0.05). Los resultados  de este estudio indican que la t&eacute;cnica de inducci&oacute;n  de RA puede  ser empleada como una prueba complementaria en la evaluaci&oacute;n de rutina del semen congelado bovino; no obstante, de forma aislada no es eficaz en predecir  el potencial  fecundante del semen criopreservado.</p>     <p><b>  Palabras clave:</b> Acrosoma, inductor,  capacitaci&oacute;n, fertilidad.</p> <hr>     <p><b>SUMMARY</b></p>     <p>  The  aim  of this  study  was to  value the <i>in  vitro </i>induction by  heparin   of  acrosome  reaction   in  frozen  semen   from &lt;0.05),  however   AP  made   an exception,  indicating  that  the  Brahman   type  presented a lower percentage of defects  than the Gyr type (p&gt;0.05). No correlation was observed between semen  quality assessment (MPIR, AS, AP, AT and RA) and the non-return  rate of the bulls (p&lt;0.05). The results indicate that RA technique can be used as  complementary test  in the  seminal  routine  assessment of frozen bovine semen;  however, alone  it is no effective in predicting the fertilizing potential of cryopreserved  semen.</p>     <p><b>  Key words:</b> Acrosome, inductor, capacitation, fertility.</p> <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>El  an&aacute;lisis   de   calidad   seminal   representa  una   valiosa herramienta  para  evaluar  el  potencial  fecundante  de  los machos de diferentes especies  y complementa la valoraci&oacute;n f&iacute;sica del animal (Bissonnette <i>et al</i>. 2009). En programas de inseminaci&oacute;n artificial, como  en los programas de selecci&oacute;n y  de   mejoramiento  gen&eacute;tico   de   los   reproductores,  la identificaci&oacute;n de los toros f&eacute;rtiles es fundamental y, por ello, se aplican distintos m&eacute;todos, que sugieren  correlaci&oacute;n  positiva con  el criterio de  fertilidad del  semen   (Ax &amp; Lenz, 1986; Bissonnette <i>et  al</i>.  2009).  Tradicionalmente,  la  movilidad, la concentraci&oacute;n y la morfolog&iacute;a  esperm&aacute;tica han  sido los par&aacute;metros m&aacute;s usados  dentro de la evaluaci&oacute;n de la calidad seminal  (Sutkeviciene <i>et  al. </i>2009);  sin  embargo, el valor predictivo de la fertilidad es limitado, debido a la complejidad  del espermatozoide y del proceso  de fecundaci&oacute;n (Costa <i>et al</i>. 2010).</p>     <p>  La    constante   b&uacute;squeda   de    una    prueba     altamente correlacionada  con  la  fertilidad  de  los  reproductores, ha permitido   tener   a  disposici&oacute;n   distintas   alternativas   para medir  la calidad  seminal,  a pesar  que  no  exista una  &uacute;nica t&eacute;cnica  capaz  de  predecir,  con  gran  precisi&oacute;n,  la fertilidad de un toro (Rodr&iacute;guez-Mart&iacute;nez <i>et al. </i>1997). Las t&eacute;cnicas  de laboratorio,  para confirmar la calidad esperm&aacute;tica, incluyen par&aacute;metros relacionados con  la integridad  de  estructuras, como  el acrosoma, la membrana celular,  la mitocondria, el   DNA  gen&oacute;mico  y  par&aacute;metros   din&aacute;micos,  como    la movilidad   hiperactivada,    as&iacute;   como   la  interacci&oacute;n   entre el espermatozoide y el ovocito  (Bissonnette <i>et  al. </i>2009). La  variabilidad  en  los  resultados   puede  estar  relacionada  con  los diversos factores  que  intervienen  en el proceso  de fecundaci&oacute;n (Hammerstedt <i>et al. </i>1990), como  es el caso de la capacitaci&oacute;n esperm&aacute;tica y la reacci&oacute;n  acros&oacute;mica (RA). Durante  la capacitaci&oacute;n esperm&aacute;tica, los espermatozoides son activados  por mol&eacute;culas  del aparato  reproductivo  de la hembra,  adquiriendo  un  batido  del flagelo m&aacute;s  vigoroso  y una mayor amplitud  de desplazamiento lateral de la cabeza (Yanagimachi,   1994;   Olivera <i>et  al. </i>2006).   Despu&eacute;s   del proceso  de capacitaci&oacute;n, el espermatozoide llega a la zona pel&uacute;cida y experimenta  la RA, caracterizada por la exocitosis de las enzimas  hidrol&iacute;ticas contenidas en el acrosoma, que facilitan la penetraci&oacute;n del  ov&oacute;cito  por  el espermatozoide (Parrish <i>et al. </i>1988; Yanagimachi, 1994).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  Estos  eventos  son  desencadenados <i>in  vitro</i>,  mediante   la adici&oacute;n de agentes  capacitantes, como  la heparina  (Yang <i>et al. </i>1993),  que producen efectos  qu&iacute;micos,  desestabilizando y  potencializando    el   espermatozoide,  la   fusi&oacute;n   de   las membrana y la  RA (Miller <i>et  al. </i>1990;  Risopatr&oacute;n <i>et  al</i>.  2005).   La  heparina   es   un   glicosaminoglucano  (GAGs) presente  en el fluido oviductal, que estimula  la capacitaci&oacute;n esperm&aacute;tica y, a  medida   que  se  acerca   la  ovulaci&oacute;n,  su concentraci&oacute;n aumenta. Adem&aacute;s de inducir la capacitaci&oacute;n de  los  espermatozoides, la  heparina   mejora  las  tasas   de fecundaci&oacute;n <i>in vitro </i>en bovinos (Gliedt <i>et al. </i>1996;  M&eacute;ndez <i>et al</i>. 2003).  Seg&uacute;n  Ax &amp; Lenz (1986), los espermatozoides de  toros  con  alto  &iacute;ndice  de  fertilidad  tienen  m&aacute;s  RA en respuesta  a  sustancias, como   la  heparina,   debido  a  que poseen  m&aacute;s afinidad a los GAGs. Considerando la RA como  prerrequisito  para  una  normal  fecundaci&oacute;n, la eficacia  del n&uacute;mero  de espermatozoides que  sufren RA, se espera  que influencie el potencial  fecundante de un reproductor (Birck <i>et  al. </i>2010).   Whitfield &amp;  Parkinson   (1995)  destacan  la  importancia  de establecer la relaci&oacute;n entre la RA <i>in vitro </i>de los espermatozoides de semen descongelado con la fertilidad y el  uso  de  agentes  inductores, como  la heparina  y c&oacute;mo  se  puede   aplicar  para  observar  alteraciones   estructurales de los espermatozoides y como  prueba  de fertilidad de los reproductores. En respuesta al aumento de la demanda en programas de mejoramiento de empresas ganaderas por la correcta  identificaci&oacute;n de toros f&eacute;rtiles (Birck <i>et al. </i>2010), se hacen  necesarias pruebas  complementarias de  evaluaci&oacute;n seminal, que permitan  mejorar la eficiencia reproductiva.</p>     <p>  Este  estudio  tuvo  como  objetivo  evaluar  la respuesta del semen   congelado-descongelado  a  la  inducci&oacute;n  de  la  RA con heparina  y su uso como  prueba  complementaria, para predecir la fertilidad del semen  congelado-descongelado.</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p>El estudio  fue realizado en el laboratorio  de  Reproducci&oacute;n Animal de la Facultad  de Medicina Veterinaria  y Zootecnia, de  la  Universidad  de  C&oacute;rdoba,   localizado  en  Ci&eacute;naga  de Oro, C&oacute;rdoba,  Colombia, con una temperatura promedio  de  29&deg;C, 80% de humedad relativa, precipitaci&oacute;n anual de 1200 mm, posici&oacute;n geogr&aacute;fica  determinada entre los 8&deg;45'27" de latitud Norte y 75&deg;53'24" de longitud Oeste.  Fueron  usados  siete  toros  cebu&iacute;nos   (4  Brahman   y 3  Gyr), sexualmente maduros. En la evaluaci&oacute;n  seminal  posdescongelaci&oacute;n, se evalu&oacute; la movilidad progresiva  individual r&aacute;pida  (MPIR) y el porcentaje  de  anormalidades mayores  (AP), menores (AS) y totales  (AT). Para  la  evaluaci&oacute;n  de  MIRP, se  colocaron  20&mu;L de semen  sobre  un portaobjetos y se cubri&oacute; con una  laminilla,  para   posterior   observaci&oacute;n   en  el  microscopio,  con   objetivo   de   40X.   La   morfolog&iacute;a   esperm&aacute;tica  fue evaluada  sobre  un extendido  en portaobjeto, a partir de la mezcla de 20&mu;L de semen  y 20&mu;L de eosina.  Para ello, se contaron 200  espermatozoides en  el microscopio, con  un objetivo  de  100X,  anotando las  diferentes  anormalidades encontradas.  Para   el  proceso   de   inducci&oacute;n   de   RA,  se aplic&oacute;p la metodolog&iacute;a propuesta por Whitfield &amp; Parkinson (1992). El semen  fue descongelado  a 37&deg;C en ba&ntilde;o  mar&iacute;a, vertido en  un  tubo  c&oacute;nico  de  15mL  y centrifugado a 320 gravedades (g), durante  10 minutos;  luego, el sobrenadante se  descart&oacute;   y los  espermatozoides se  resuspendieron en  5mL  de  soluci&oacute;n  TALP y, nuevamente, se  centrifug&oacute;  por  10  minutos,  a 320g.  El sobrenadante fue descartado y al precipitado,  se le adicionaron  0,5mL de soluci&oacute;n TALP. Para obtener  una  concentraci&oacute;n final de  espermatozoides 20  x  10<sup>6</sup>/mL,  se realiz&oacute; una diluci&oacute;n 1:40 de la soluci&oacute;n  anterior  con  agua  destilada  y se  contaron los espermatozoides en c&aacute;mara  de  Neubauer. La soluci&oacute;n  obtenida  (Spz + TALP) fue repartida  en cuatro  viales de 1mL cada  uno, agregando  10&mu;g   de   heparina/vial   a   dos   viales,  mientras   que   los  restantes, sin  heparina,   se  consideraron como   controles.</p>     <p> Inmediatamente, todos  los tubos  fueron  incubados a 37&deg;C  durante  una  hora  y cumplido  este  per&iacute;odo,  se adicionaron  50&mu;L de formalina 10%, a cada  una  de las muestras. Para la lectura,  se realizaron extendidos  en portaobjetos, a partir de la mezcla de 20&mu;L de la soluci&oacute;n  anterior,  con  20&mu;L de eosina-nigrosina. La respuesta a la inducci&oacute;n  de  la RA, se valor&oacute; en microscop&iacute;a  de luz, con objetivo de 100x, teniendo  en cuenta  la diferencia de los porcentajes obtenidos de las muestras  incubadas con  heparina  y las muestras control  y expresando los resultados, de acuerdo  a una escala  de 0 a  100%. En el an&aacute;lisis estad&iacute;stico fue usado el programa SAEG-  9.1 (UFV, 2007), siendo obtenidas las medias y la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar para  todas   las  variables  y fueron  realizados  las pruebas  de  Lilliefors y Cochran  y Bartlett  para  verificar la normalidad  de los datos y la homogeneidad de las varianzas, respectivamente, no  siendo  necesaria  la conversi&oacute;n  de  los datos de ning&uacute;n par&aacute;metro estudiado. El an&aacute;lisis de varianza fue realizado para  verificar el efecto entre  raza, toro y dosis de heparina  y cuando  mostraron efecto  significativo por el test F, se realiz&oacute; la comparaci&oacute;n de medias  por la prueba  de Tukey, con  5% de probabilidad  de error. Para el an&aacute;lisis de las tasas  de  no retorno  (TNR), los datos  fueron  agrupados en tablas  de contingencia y, posteriormente, evaluados  por el an&aacute;lisis de Chi-cuadrado, con probabilidad de 5% de error.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p>Los valores medios  obtenidos de  MPIR, AP y AT  para  los toros de raza Brahman  y Gyr usados  en este estudio  fueron  77,1 &plusmn; 2,5%, 0,42 &plusmn; 0,6% y 17,1 &plusmn; 3,5%, respectivamente (<a href="#t1">Tabla 1</a>). Estos  resultados, se muestran satisfactorios  para las caracter&iacute;sticas seminales  posdescongelaci&oacute;n, divulgadas por la Society for Theriogenology  (Chenoweth <i>et al. </i>1993) y el Colegio Brasileiro de Reprodu&ccedil;&atilde;o Animal (Henry &amp; Neves,  1998),   siendo   animales   maduros  sexualmente y  usados  rutinariamente como  reproductores, aptos para congelaci&oacute;n de  semen.  En  el  an&aacute;lisis  de  los  datos,   no  se  observ&oacute; diferencias  estad&iacute;sticas entre  las dosis seminales  de ambas razas para estas  caracter&iacute;sticas (p&gt;0.05), con excepci&oacute;n  de las AP, donde  la raza Brahman  present&oacute; menor  porcentaje  de defectos  que la raza Gyr (p&lt;0.05). Palmieri <i>et al. </i>(2004) usaron semen fresco de toros criollos Romosinuano y Coste&ntilde;o  con  cuernos  y no  hallaron  diferencias  estad&iacute;sticas para  la MPIR y las AT, entre  ambas razas (p&gt;0.05). Siqueira <i>et al</i>. (2007), evaluando  la calidad seminal del semen  congelado- descongelado de toros Nelore, encontraron valores menores para MPIR (53,38 &plusmn; 11,9%), y superiores  en AP de 12,48  &plusmn;  5,7% y AT de 17,44 &plusmn; 6,08% comparados con los resultados  de este estudio. Estos autores  resaltan que los resultados  de evaluaciones  macrosc&oacute;picas dependen de  varios factores,  como  el medio  utilizado para  diluir el semen, las tasas  de diluci&oacute;n, la temperatura y el tiempo  de realizaci&oacute;n, durante  la evaluaci&oacute;n. Sumado a lo anterior, es necesario considerar  que el espermatozoide es una c&eacute;lula compleja, que envuelve factores  bioqu&iacute;micos  y morfol&oacute;gicos  y que se puede  tornar no  funcional,  cuando   alguno  de  ellos  es  afectado.   Por  lo anterior,  para  realizar un  diagn&oacute;stico  de  la funcionalidad  e integridad  del espermatozoide es necesaria  la combinaci&oacute;n de varios factores en un an&aacute;lisis multifactorial (Melo &amp; Henry,  1999), a pesar de que la evaluaci&oacute;n convencional  contempla caracter&iacute;sticas m&aacute;s  f&aacute;ciles de evaluar, como  la movilidad, la morfolog&iacute;a y la concentraci&oacute;n esperm&aacute;tica.</p>     <p><a name="t1"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v15n2/v15n2a21t1.jpg"></p>     <p> La inducci&oacute;n  de RA, como  t&eacute;cnica <i>in vitro </i>de evaluaci&oacute;n de calidad  seminal,  contribuye  a  los  ex&aacute;menes tradicionales,  al   considerar   caracter&iacute;sticas  morfol&oacute;gicas   y  funcionales de  los  espermatozoides  (Obando   &amp;  Holgu&iacute;n,  2003).   En este estudio,  la respuesta a la inducci&oacute;n  de la RA en toros Brahman   y  Gyr,  usando  concentraci&oacute;n  de   heparina   de  10&mu;g, fue elevada (p&lt;0.05), al considerar  la diferencia con las muestras que  fueron  incubadas sin heparina  (control), mostrando  el  efecto   del  inductor   utilizado.  El  resultado  obtenido   de  porcentaje   de  RA, se  muestra inferior a  los observados por Palmieri <i>et al</i>. (2004) y Whitfield &amp; Parkinson (1995) (<a href="#t1">Tabla 1</a>). Estos resultados, se pueden  deber a que en los procedimientos utilizados por estos autores,  las muestras fueron  incubadas  con   heparina,   durante   un  per&iacute;odo   de seis  horas,  ya que  de  acuerdo   con  Parrish <i>et  al. </i>(1988), un  mayor  tiempo  de  incubaci&oacute;n   de  los  espermatozoides   con  heparina,  incrementa la tasa  de fecundaci&oacute;n. Obando  &amp; Holgu&iacute;n (2003), al trabajar  con toros  de raza Brahman  y Sanmartinero, al igual que  Siqueira <i>et al</i>. (2007) con  toros de  raza  Nelore,  reportan  resultados   inferiores  de  32,8%  y  9,85%, respectivamente, valores bajos que se pueden  deber que no se utiliz&oacute; ning&uacute;n inductor. Costa <i>et al. </i>(2010), usaron heparina   y  lisofosfaditilcolina,  como   inductores   de   RA, como  par&aacute;metro para  estimar  la producci&oacute;n <i>in vitro </i>(PIV) de embriones Nelore y observaron  que  los tratamientos en los  que  usaron  heparina  mostraron mayor  porcentaje   de espermatozoides vivos reaccionados que  los  tratamientos con   lisofosfatidilcolina   y  control,   demostrando  ser   un eficiente inductor  de RA (P&lt;0.01). En un estudio  realizado por Januskauskas <i>et al. </i>(2000), la heparina  fue comparada con otro GAG, el &aacute;cido hialur&oacute;nico, para evaluar el potencial fecundante  de  semen   congelado-descongelado  de  toros Sueco Rojo y Blanco, observando que la heparina increment&oacute; la frecuencia  de capacitaci&oacute;n y RA en los espermatozoides, mientras  que  el &aacute;cido  hialur&oacute;nico  no  tuvo  ning&uacute;n  efecto capacitante.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> En la <a href="#t2">tabla 2</a>, se observan los valores obtenidos para las TNR, los cuales,  fueron de 79,4  &plusmn; 1,4% y 72,6  &plusmn; 8,9%, para  las razas Brahman  y Gyr, respectivamente, sin hallar diferencia entre las medias para ambas razas (p&gt;0.05). En el an&aacute;lisis de correlaciones no se encontr&oacute; una asociaci&oacute;n  entre la MPIR y las TNR, al igual que la asociaci&oacute;n  entre el %RA y TNR; entre las  AT  y las TNR, se  observ&oacute;  correlaci&oacute;n  negativa  (-0,29; p &gt; 0,05). Freneau (2011) destaca la morfolog&iacute;a esperm&aacute;tica como  factor  rutinario  m&aacute;s  importante en  la evaluaci&oacute;n  de un  toro,  por su relaci&oacute;n  con  la fertilidad, adem&aacute;s de  estar relacionada  con  los  procesos de  pubertad y de  madurez  sexual, lo que no coincide  con nuestros  resultados, debido a la variabilidad de factores que influyen en la fertilidad. Los valores de TNR de los toros Brahman  y Gyr de este estudio fueron superiores  a los obtenidos por Whitfield &amp; Parkinson (1992), quienes reportan  valores entre 62,1 y 76,1% de TNR, a los 90 d&iacute;as, utilizando semen  congelado-descongelado de toros Holstein; as&iacute; mismo Siqueira <i>et al</i>. (2007) encontraron  63,8% &plusmn; 13,7 de tasa de gestaci&oacute;n con toros Nelore criados a campo.</p>     <p><a name="t2"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v15n2/v15n2a21t2.jpg"></p>     <p> Correa <i>et  al</i>.  (1997)  demuestran que  no  existe  diferencia entre  la MPIR de semen  congelado-descongelado de toros  con  alta  y baja  fertilidad, similar a  los  resultados   de  este estudio,   donde   no  se  hall&oacute;  correlaci&oacute;n   entre  los  valores de MPIR y TNR. Siqueira <i>et al. </i>(2007)  hallaron  correlaci&oacute;n negativa   (-,22)  con   semen   de  toros   Nelore,  verificando que  las  muestras de  semen   de  motilidad  m&aacute;s  alta  post- descongelaci&oacute;n no fueron las relacionadas con las tasas  de pre&ntilde;ez m&aacute;s altas; ello se puede  dar a da&ntilde;os  en estructuras, como el acrosoma, lo que puede representar la infertilidad de espermatozoides  con  alta motilidad  esperm&aacute;tica, posterior a la congelaci&oacute;n. La correlaci&oacute;n  negativa entre  las AT y las TNR obtenida  (0,29; p&gt;0,05), es similar a la observada  por Siqueira <i>et al. </i>(2007) (-0,11), quienes  trabajaron  con  toros Nelore.  De  igual  forma,  Correa <i>et  al</i>.  (1997),  evaluando  semen  congelado-descongelado de toros Holstein, hallaron asociaci&oacute;n  entre el porcentaje de espermatozoides normales  y la fertilidad (0,59)./     <p>  La asociaci&oacute;n   observada   entre  el porcentaje   de  RA y las TNR de los toros  estudiados, no fue significativa (p&gt;0.05), contrario  a los hallazgos  de  Whitfield &amp; Parkinson  (1992), quienes   trabajando  con   toros   de  raza  Holstein  hallaron una  correlaci&oacute;n   de  0,81  (p&lt;0.01).  Posteriormente, estos mismos  autores,  usando ion&oacute;foro de calcio (A23187), como  inductor,  encontraron nuevamente asociaci&oacute;n   entre  la RA y las TNR (r=0.86; p&lt;0.01) (Whitfield &amp; Parkinson,  1995). Los resultados obtenidos en este  estudio,  se pueden  deber a que la tasa de gestaci&oacute;n depende m&aacute;s  de la influencia de otras  variables externas  y algunas  poco  controlables, como  el  ambiente,  manejo   reproductivo,   alimentaci&oacute;n,  estado  sanitario,  reproductivo  y fisiol&oacute;gico  de  las  hembras, que de  la  reacci&oacute;n  del  acrosoma de  los  espermatozoides del macho  cebu&iacute;no  en tr&oacute;pico  bajo.  Es de anotar  que  aunque  no se evidenci&oacute; asociaci&oacute;n  entre  las TNR y los porcentajes de  inducci&oacute;n  de  RA en  los toros  Brahman   y Gyr de  este estudio,  se observa  que  la heparina  se comporta como  un excelente  inductor,   permitiendo   respaldar   las  pruebas   de uso  rutinario  en  los  laboratorios  de  evaluaci&oacute;n  de  semen congelado-descongelado.  Seg&uacute;n   Salvador <i>et  al. </i>(2001), existe la posibilidad que los estudios  que eval&uacute;an el potencial de fecundaci&oacute;n de los espermatozoides, como  la inducci&oacute;n  de  RA, sean   ex&aacute;menes  complementarios  a  las  pruebas androl&oacute;gicas de  rutina,  principalmente, en  la selecci&oacute;n  de toros superiores  o sometidos a altos desaf&iacute;os de cruzamiento  en campo.</p>   Es as&iacute;, como los resultados  del presente  estudio demuestran que la t&eacute;cnica <i>in vitro </i>de inducci&oacute;n  de reacci&oacute;n  acros&oacute;mica con   heparina   puede   ser   empleada  como   una   prueba  complementaria  en   la  evaluaci&oacute;n   de   rutina   del  semen congelado   bovino;   sin   embargo,  de   forma   aislada   no es  eficaz  en  predecir  el  potencial  fecundante del  semen criopreservado.</p>     <p>  <b>Agradecimientos. </b>Con    gran    estimaci&oacute;n,   los   autores  manifiestan  los agradecimientos a la facultad  de  Medicina Veterinaria y Zootecnia  de la Universidad de C&oacute;rdoba  y a la firma  comercial  Abastecedora. <u>Conflictos  de  intereses</u>:  El manuscrito fue preparado y revisado con la participaci&oacute;n  de todos  los autores,  quienes  declaramos que no existe ning&uacute;n conflicto de intereses  que ponga  en riesgo la validez de los resultados  presentados.</p>     <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>1.    AX,  R.L.; LENZ, R.W. 1986.   Glycosaminoglycans  as probes  to monitor  differences  in fertility of bulls. J. Dairy Sci. 70(7):1477-1486.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000040&pid=S0123-4226201200020002100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  2.    BIRCK,  A.;   CHRISTENSEN,   P.;   LABOURIAU, R.; PEDERSEN, J.;  BORCHERSEN, S.  2010.  In vitro induction  of the  acrosome reaction  in bull sperm and  the  relationship  to field fertility using  low-dose inseminations. Theriogenology  73:1180-1191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000042&pid=S0123-4226201200020002100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  3.    BISSONNETTE,   N.;   LE'   VESQUE-SERGERIE, J.P.; THIBAULT,   C.;    BOISSONNEAULT,    G.    2009. Spermatozoal transcriptome profiling for bull sperm motility: a potential  tool to evaluate  semen  quality. Reproduction 138:65-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000044&pid=S0123-4226201200020002100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  4.    CHENOWETH,    P.J.;     HOPKINS,    F.M.;    SPITZER, J.C.;   LARSEN, R.E.  1993.   Guidelines   for  using the  bull  breeding   soundness evaluation  form.  In: Theriogenology  Handbook. p.B-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000046&pid=S0123-4226201200020002100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  5.    CORREA, J.R.; PACE, M.; ZAVOS, P. 1997. Relationships among frozen-thawed sperm characteristics assessed via  the  routine  semen   analysis,  sperm   functional tests and fertility of bulls in an artificial insemination  program. Theriogenology.  48:721-731.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000048&pid=S0123-4226201200020002100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   6.    COSTA, M.Z.; OLIVEIRA, L.Z.; RESENDE, M.V.; LUCIO, A.C.; PERINI, A.P.; MIGUEL,  M.C.V.;  LIMA, V.F.M.H.  2010.  Induction of the acrosome reaction  test to in vitro estimate  embryo  production in Nelore  cattle. Arq. Bras. Med. Vet. Zootec. 62 (4):771-777.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000050&pid=S0123-4226201200020002100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   7.    FRENEAU,   G.E.    2011.    Aspectos    da    morfologia esperm&aacute;tica em  touros.  Rev. Bras.  Reprod.  Anim.  35, (2):160-170.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000052&pid=S0123-4226201200020002100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   8.    GLIEDT, D.W;  ROSENKRANS, C.F;  RORIE, R.W.Jr.; RAKES, J.M.  1996.   Effects  of  oocyte  maturation length,  sperm   capacitation  time,  and  heparin  on bovine  embryo  development. J Dairy Sci.  79:532-  535.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S0123-4226201200020002100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   9.    HAMMERSTEDT, R.H.;  GRAHAM, J.K.;  NOLAN, J.P.  1990.  Cryopreservation of mammalian sperm:  What we ask them to survive. J. Androl. 11:73-88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S0123-4226201200020002100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   10.  HENRY, M.; NEVES, J. Eds. 1998.  Manual para  exame androl&oacute;gico  e avalia&ccedil;&atilde;o de s&ecirc;men  animal. 2.ed. Belo Horizonte: Col&eacute;gio Brasileiro de Reprodu&ccedil;&atilde;o Animal.   49p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0123-4226201200020002100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   11.  JANUSKAUSKAS,   A.;  GIL,  J.;   SOÂ¨DERQUIST,    L.; RODRIGUEZ-MARTINEZ, H.   2000.    Relationship between  sperm  response to glycosami-noglycans in vitro and non-return  rates  of Swedish dairy AI bulls. Reprod Dom Anim. 35 (5):207-212.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0123-4226201200020002100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   12.  MELO, M.; HENRY,  M. 1999.   Teste  hiposm&oacute;tico  na avalia&ccedil;&atilde;o  de  s&ecirc;men   eq&uuml;ino.  Arq. Bras.  Med.  Vet. Zootec. 51(1):71-78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0123-4226201200020002100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   13.  M&Eacute;NDEZ, J.JR.;  BURNS, P.; DE LA TORRE-SANCHEZ,  J.; SEIDEL, G.JR. 2003. Effect of heparin on cleavage rates and embryo production with four bovine sperm preparation  protocols.   Theriogenology.   60(2):331-  340.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0123-4226201200020002100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   14   MILLER, D.; WINER, M.; AX, R. 1990.  Heparin-binding  proteins    from   seminal   plasma    bind   to   bovine spermatozoa and modulate  capacitation by heparin. Biol.Reprod. 42:899-915.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0123-4226201200020002100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   15.  OBANDO,  H.;  HOLGU&Iacute;N, N.  2003.   Inducci&oacute;n  de  la reacci&oacute;n   acros&oacute;mica  in  vitro,  como   prueba   de fertilidad del semen  bovino. ICA Informa. 30(1):42-46.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0123-4226201200020002100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   16.  OLIVERA, M.; RUIZ, T.; TARAZONA,  A.; GIRALDO C.  2006. El espermatozoide, desde la eyaculaci&oacute;n hasta  la fertilizaci&oacute;n. Rev Col Cienc. Pec. 19(4):426-436.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-4226201200020002100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   17.  PALMIERI, A.; SU&Aacute;REZ, D.; GONZ&Aacute;LEZ, M.; ESPITIA, A.  2004.    Variables   seminales    en   toros   criollos colombianos Coste&ntilde;o  con cuernos  y Romosinuano. MVZ C&oacute;rdoba.  9(1):381-385.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-4226201200020002100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   18.  PARRISH, J.; SUSKO-PARRISH, J.; WINER, M.; FIRST, N. 1988.  Capacitation  of bovine sperm  by heparin. Biol. Reprod. 38:1171-1180.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-4226201200020002100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   19.  RISOPATR&Oacute;N,     J.;     CATAL&Aacute;N,     S.;     SEP&Uacute;LVEDA, N.;   S&Aacute;NCHEZ,  R.   2005.    Efecto   de   diferentes concentraciones de  heparina  sobre  la capacitaci&oacute;n esperm&aacute;tica in vitro en canino. Rev. Cient. Vet. FCV- LUZ, 16:6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-4226201200020002100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   20.  RODR&Iacute;GUEZ-MART&Iacute;NEZ,  H.;  LARSSON, B.;  ZHANG, B.R.; S&Ouml;DERQUIST, L. 1997.  In vitro assessment of viability and  fertilizing capacity  of bull spermatozoa. J. Reprod. Develop. 43:1-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-4226201200020002100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   21.  SALVADOR,  D.; ANDRADE,  V.; VALE FILHO, V.  2001.  Potencial   das   prote&iacute;nas   do   plasma   seminal   ou ligadas &agrave; membrana esperm&aacute;tica como indicador da fertilidade de touros. 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