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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[COMPOSICIÓN QUÍMICA Y EVALUACIÓN DE LA ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE DEL ACEITE ESENCIAL FOLIAR DE Eucalyptus camaldulensis DE NORTE DE SANTANDER (COLOMBIA)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The essential leaf oil (AE) of the species Eucalyptus camaldulensis collected in the department of Norte de Santander (Colombia), was studied in order to characterize its chemical composition and determine their antioxidant activity. The extraction of AE was performed by steam, and the identification of the main components are made by Gas Chromatography High Resolution coupled to mass spectrometry to determine the chemical composition variability in climatic conditions given that the region presents. The AE has mixtures of mono-and sesquiterpenes, being 1,8-cineole the component with the highest concentration with 81.0%, followed by &#945;-pinene with 5.26%. Entrapment capacity ABTS radical cation and radical DPPH+ to determine the antioxidant activity of the AE two methods were used. Percent inhibition (% Inh) with DPPH radical methodology did not exceed 10% in trials against radical ABTS+ was observed that only reaches sufficient values to very high concentrations (>250ppm)]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">     <p align="right"> <b> CIENCIAS EXACTAS Y NATURALES-Art&iacute;culo Cient&iacute;fico </b></p>     <p align="center"><b>COMPOSICI&Oacute;N QU&Iacute;MICA Y EVALUACI&Oacute;N DE LA ACTIVIDAD ANTIOXIDANTE DEL ACEITE  ESENCIAL FOLIAR  DE <i>Eucalyptus camaldulensis </i>DE NORTE DE SANTANDER (COLOMBIA)</b></p>     <p align="center"><b>CHEMICAL COMPOSITION AND EVALUATION OF ANTIOXIDANT ACTIVITY OF LEAF ESSENTIAL OIL <i>Eucalyptus camaldulensis </i>FROM NORTE DE SANTANDER (COLOMBIA)</b></p>     <p><b>Clemente  Granados<sup>1</sup>, Gilmar G. Santaf&eacute;<sup>2</sup>,  Diofanor Acevedo<sup>3</sup></b></p>     <p><sup>1</sup> Ingeniero de Alimentos. M.Sc. Universidad de Cartagena, Facultad  de Ingenier&iacute;a, Programa Ingenier&iacute;a de Alimentos. Campus Piedra de Bol&iacute;var, Cartagena - Bol&iacute;var, Colombia, e-mail: <a href="mailto:clementecondeg@gmail.com">clementecondeg@gmail.com</a></p>     <p><sup>2</sup> Licenciado en Qu&iacute;mica y Biolog&iacute;a, Ph.D. Ciencias Qu&iacute;micas,  Universidad de C&oacute;rdoba,  Facultad de Ciencias B&aacute;sicas, e-mail: <a href="mailto:gsantafe@corrreo.unicordoba.edu.co">gsantafe@corrreo.unicordoba.edu.co</a></p>     <p><sup>3</sup> Ingeniero de Alimentos. Ph.D. Universidad de Cartagena, Facultad  de Ingenier&iacute;a, Programa Ingenier&iacute;a de Alimentos. Campus  Piedra de Bol&iacute;var, Cartagena -Bol&iacute;var, Colombia, e-mail: <a href="mailto:diofanor3000@gmail.com">diofanor3000@gmail.com.</a></p>     <p>Rev. U.D.C.A Act. &amp; Div. Cient. 18(1): 235-240, Enero-Junio, 2015</p> <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El aceite esencial (AE) foliar de la especie <i>Eucalyptus camaldulensis</i>, recolectada en el departamento de Norte de Santander (Colombia), fue estudiado con el fin de caracterizar su composici&oacute;n qu&iacute;mica y determinar su actividad antioxidante.  La extracci&oacute;n  del AE, se realiz&oacute; por arrastre  con  vapor y la identificaci&oacute;n de los componentes mayoritarios,  se hizo por Cromatograf&iacute;a  de Gases  de Alta Resoluci&oacute;n  acoplada a espectrometr&iacute;a de masas, para establecer su variabilidad en la composici&oacute;n qu&iacute;mica,  dada  las condiciones clim&aacute;ticas  que presenta  la regi&oacute;n. El AE posee  mezclas de mono  y de sesquiterpenos, siendo el 1,8-cineol, el componente con mayor concentraci&oacute;n, con un 81,0%, seguido del &alpha;-pineno, con un 5,26%. Para precisar  la actividad antioxidante  de los AE, se usaron  dos m&eacute;todos: capacidad de atrapamiento del cati&oacute;n radical ABTS<sup>+</sup> y del radical DPPH. El porcentaje  de inhibici&oacute;n (%Inh), con  la metodolog&iacute;a del radical DPPH, no super&oacute;  el 10% y, en los ensayos  frente al radical ABTS<sup>+</sup>,  se observ&oacute; que s&oacute;lo alcanza valores suficientes  a muy altas concentraciones (&gt;250ppm).</p>     <p><b>Palabras   clave:</b>  ABTS<sup>+</sup> radical,  componentes  arom&aacute;ticos, DPPH, eucalipto  rojo, propiedades antioxidantes,  terpenos, terpenoides.</p> <hr>     <p><b>SUMMARY</b></p>     <p>The   essential   leaf  oil  (AE)  of  the   species <i>Eucalyptus camaldulensis </i>collected   in  the  department  of  Norte  de Santander (Colombia),  was studied  in order  to characterize  its  chemical  composition and  determine   their  antioxidant activity. The  extraction   of  AE was  performed   by  steam,  and  the  identification  of the  main  components are  made  by  Gas Chromatography High Resolution  coupled  to mass  spectrometry   to   determine    the   chemical    composition variability in climatic conditions given that the region presents. The  AE has  mixtures  of mono-and  sesquiterpenes,  being 1,8-cineole  the  component with the  highest  concentration with 81.0%,  followed by &alpha;-pinene  with 5.26%.  Entrapment capacity ABTS radical cation and radical DPPH+ to determine  the  antioxidant  activity of the  AE two methods were used. Percent inhibition (% Inh) with DPPH radical methodology did not exceed 10% in trials against radical ABTS<sup>+</sup> was observed that only reaches  sufficient values to very high concentrations (&gt;250ppm)</p>     <p><b>Key words:</b> Radical ABTS<sup>+</sup>, aromatics, DPPH, red eucalyptus,  antioxidant, terpenes, terpenoids.</p> <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>Para Ali <i>et al. </i>(2011),  el eucalipto  es un &aacute;rbol de la familia Myrtaceae, que incluye 140 g&eacute;neros  y unas 3.800 especies  y subespecies, distribuidas en las regiones  tropicales y subtropicales. El eucalipto es uno de los g&eacute;neros  m&aacute;s importantes y ampliamente plantados en el mundo. Se trata de un gran &aacute;rbol de hoja perenne, nativo de Australia y Tasmania  e introducido,  con  &eacute;xito, en  todo  el mundo  (Bachir &amp; Benali, 2012; Tyagi &amp; Malik, 2011; Elaissi <i>et al. </i>2012; Shahwar <i>et al.</i> 2012).  En Colombia,  se han experimentado varias especies  de  eucaliptos,  siendo  las principales <i>E. camaldulensis,  E. teresticornis,  E. citriodora, E. globulus </i>y <i>E. grandis </i>(Ospina <i>et al. </i>2006)</p>     <p>Las especies  de  eucaliptos  son  bien  conocidas como  una fuente rica en aceites  esenciales  (AE) que, por lo general,  se obtienen  por medio  de  vapor o de  hidrodestilaci&oacute;n  (Singh <i>et al</i>. 2012; Marzough <i>et al</i>. 2011). De acuerdo  con Tyagi &amp; Malik, (2011), la composici&oacute;n qu&iacute;mica y los efectos  biol&oacute;gicos de los AE, incluyendo sus propiedades antimicrobianas y potenciales aplicaciones  en productos alimenticios, han sido revisadas por diferentes autores  (Bakkali <i>et al. </i>2008).</p>     <p>Los AE son compuestos vol&aacute;tiles, naturales  y complejos, caracterizados por un fuerte olor y son formados por las plantas arom&aacute;ticas, como  metabolitos secundarios. Pueden  ser sintetizados por todos los &oacute;rganos  de la planta, es decir, brotes, flores, hojas, tallos, ramas,  semillas, frutas, ra&iacute;ces, madera  o corteza, siendo almacenados en las c&eacute;lulas secretoras, cavidades,  canales,  c&eacute;lulas epid&eacute;rmicas  o tricomas  glandulares  (Bakkali <i>et al. </i>2008).</p>     <p>La composici&oacute;n qu&iacute;mica de los AE vol&aacute;tiles aislados, a partir de  plantas  arom&aacute;ticas depende, en  gran  medida,  del tipo de  planta,  de la ubicaci&oacute;n  geogr&aacute;fica,  de la temporada de recolecci&oacute;n  y del m&eacute;todo  de  extracci&oacute;n,  entre  otras  variables  (Esen <i>et al. </i>2007).  Para Zeng <i>et al. </i>(2012),  los AE se componen,  principalmente, de  terpenos, de  terpenoides y de algunos  otros  componentes arom&aacute;ticos y alif&aacute;ticos, que suelen tener un fuerte olor y bajo peso molecular.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El presente  estudio  evalu&oacute; la capacidad antioxidante  del AE foliar del eucalipto <i>E. camaldulensis</i>, mediante  la utilizaci&oacute;n de los ensayos  ABTS<sup>+</sup> y de DPPH (2, 2-difeniL-1picrilhidracilo).</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p><b>Selecci&oacute;n de la materia prima vegetal. </b>La especie  conocida com&uacute;nmente como  eucalipto  rojo (<i>E. camaldulensis) </i>fue  recolectada en  el municipio  de  Pamplona, vereda  Los Animes, en la carretera  que conduce a Bucaramanga km 3. Las muestras tomadas pertenecen al material foliar de &aacute;rboles adultos,  de preferencia  hojas  enteras  y verdes.  Las hojas fueron recolectadas en la &uacute;ltima semana de junio, &eacute;poca  normalmente de invierno.</p>     <p><b>Extracci&oacute;n del AE. </b>Para  la extracci&oacute;n  del AE, se aplic&oacute; la t&eacute;cnica  modificada  empleada por Stashenko <i>et al. </i>(2004). La obtenci&oacute;n del AE, se realiz&oacute; por destilaci&oacute;n  con arrastre de vapor, utilizando, para ello, un equipo de hidrodestilaci&oacute;n, equipado  con  manto  de calentamiento para  bal&oacute;n  de 5L y trampa  de destilaci&oacute;n tipo DeanStark.  Se tomaron  400g del material  vegetal,  previamente  identificado,  seleccionado y pesado, que fueron introducidos en el bal&oacute;n y se le adicion&oacute; 1L de  agua;  el tiempo  de  extracci&oacute;n  fue de  dos  horas.  El AE colectado en la trampa  de destilaci&oacute;n,  se separ&oacute;  por decantaci&oacute;n y se midi&oacute; con jeringa de 2mL, para establecer el rendimiento  obtenido,  que se calcul&oacute; mediante  la Ecuaci&oacute;n 1. El aceite  fue deshidratado con  Na<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> anhidro  y almacenado en viales sellados  a 4&deg;C hasta  su an&aacute;lisis, como  lo sugiri&oacute; Elaissi <i>et al </i>(2011).</p>     <p align="center"><i>%Rendimiento= ((mL de aceite esencial)/peso en gramos del material vegetal)x100</i></p>      <p><b>Determinaci&oacute;n  de las propiedades f&iacute;sicas.</b> Al AE obtenido,  se le determin&oacute;  la densidad  relativa a 20&deg;C, con picn&oacute;metro de  2mL; rotaci&oacute;n  &oacute;ptica,  en  polar&iacute;metro;  &iacute;ndice de  refracci&oacute;n, en refract&oacute;metro ABBE; punto  de ebullici&oacute;n, en tubo de Thiele y solubilidad, en etanol.  Para este  &uacute;ltimo, se emplearon  soluciones  etan&oacute;licas  de 20,  40,  60 y 80% v/v. De cada una de estas  soluciones, se tomaron  100&micro;L y, a cada una, se le agregaron, lentamente, vol&uacute;menes  de 2&micro;L del AE, hasta  que la soluci&oacute;n se torn&oacute; turbia (punto de saturaci&oacute;n).</p>     <p><b>An&aacute;lisis de los componentes mayoritarios del AE.</b> Se realiz&oacute; por cromatograf&iacute;a de gases  de alta resoluci&oacute;n  (CGAR). El  equipo  utilizado fue un  cromat&oacute;grafo HP6890A serie II, en  interfase,  con  un  detector  selectivo  de  masas  HP5973 Network, conectado en l&iacute;nea con un sistema  HP-MS ChemStation y la base  de datos  NIST-2005. Se tomaron  30&micro;L de cada AE y se disolvieron en 1mL de diclorometano; de esta soluci&oacute;n,  se  toma  1,0&micro;L y se  inyecta  a modo  split (10:1). Los espectros de masas  (EM), se obtuvieron  por ionizaci&oacute;n electr&oacute;nica  con barrido autom&aacute;tico. De acuerdo  con Adams (2005), cada  EM fue comparado con  los est&aacute;ndares de  la base  de datos  y los reportados en la literatura, para obtener  los &iacute;ndices de Kovats (IK), relativos a los patrones de alcanos  C8-C32, se realiz&oacute; el an&aacute;lisis en un cromat&oacute;grafo HP 6890A serie II, con detector  FID, a 250&deg;C.  Para la identificaci&oacute;n y la cuantificaci&oacute;n  de los componentes de cada  AE, se emple&oacute;  el criterio cromatogr&aacute;fico (IK experimental y te&oacute;rico) y el criterio espectral  (EM). La composici&oacute;n porcentual  por CG-FID de cada componente, se analiz&oacute; por el m&eacute;todo  de normalizaci&oacute;n de &aacute;reas (Stashenko <i>et al. </i>2010).</p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n  de  la actividad antioxidante  del AE. </b>Se aplicaron  dos  m&eacute;todos: capacidad de atrapamiento del cati&oacute;n radical ABTS<sup>+</sup> y del radical DPPH. De forma exploratoria, se realizaron ensayos  preliminares,  a una  concentraci&oacute;n entre 1 y 100ppm para cada muestra de AE y, de acuerdo  con los resultados  obtenidos, se  evalu&oacute;  la capacidad antioxidante,  a concentraciones entre 100 y 300ppm. Para ambos  m&eacute;todos (ABTS y DPPH), se usaron como est&aacute;ndar Trolox y &aacute;cido asc&oacute;rbico, cuya capacidad antioxidante se calcul&oacute; a las mismas condiciones de trabajo de las muestras. Los resultados, se  expresaron  como  capacidad antioxidante  equivalente  al Trolox (TEAC; &micro;mol de Trolox/gramos  de sustancia  evaluada) y capacidad antioxidante  equivalente  al &aacute;cido asc&oacute;rbico (AAEAC; &micro;mol de &aacute;cido asc&oacute;rbico/gramos de sustancia  evaluada).</p>     <p><b>M&eacute;todo del radical DPPH. </b>Se sigui&oacute; la metodolog&iacute;a descrita por Goupy <i>et al. </i>(1999), con modificaciones seg&uacute;n  Prior <i>et al</i>. (2005). El radical DPPH se disolvi&oacute; en metanol,  para preparar una soluci&oacute;n saturada de &eacute;ste (80mg en 5mL), la cual, se almacen&oacute; por 24 horas, resguardada de la luz. Transcurrido este tiempo y, a partir de esta soluci&oacute;n inicial, se prepar&oacute;  una soluci&oacute;n diluida con metanol,  hasta una absorbancia de 0,300  &plusmn; 0,05 a 517nm.</p>     <p>La absorbancia se midi&oacute; empleando un espectrofot&oacute;metro G&eacute;nesis 20 Thermospectronic modelo 4001/4 y se calcul&oacute; el porcentaje  de inhibici&oacute;n (%Inh), usando la Ecuaci&oacute;n 2.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v18n1/v18n1a27ecu2.jpg"></p>     <p><b>M&eacute;todo del radical ABTS</b>+<b>. </b>Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo  desarrollado por Re <i>et al. </i>(1999), seg&uacute;n  modificaciones de Prior <i>et al</i>. (2005), mediante  espectroscop&iacute;a VIS a 734nm.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>Rendimiento  del aceite  esencial  y propiedades f&iacute;sicas: </b>En la <a href="#t1">tabla 1</a>, se muestra el rendimiento  obtenido en la extracci&oacute;n del aceite esencial  (AE) foliar y las propiedades f&iacute;sicas, medidas para el eucalipto rojo analizado. All&iacute; se puede observar que el rendimiento  del AE foliar del <i>E. camaldulensis </i>obtenido en esta investigaci&oacute;n es menor  al reportado por Y&aacute;&ntilde;ez Rueda &amp; Cuadro Mogoll&oacute;n (2012), para el <i>E. globulus </i>de 4%, a partir de hojas secas. Gilles <i>et al. </i>(2010) reportan rendimientos entre 2,13  y 3,12% (w/w), para diferentes  especies  de <i>Eucalyptus</i>. Barra <i>et al. </i>(2010)  obtuvieron  rendimientos entre  0,2-0,5% de  AE del <i>E. camaldulensis </i>Dehnh,  valores menores a los aqu&iacute; obtenidos. Granados <i>et al. </i>(2012) reportan  rendimientos entre 1,2 y 0,6%, para el <i>M. molis </i>y <i>C. moritzianus</i>, respectivamente,  mientras  que  Siramon  &amp; Ohtani  (2007)  reportan rendimientos entre 0,83 y 1,63 para el <i>E. camaldulensis. </i>Lo anterior,  confirma  lo manifestado por algunos  autores  (Gilles <i>et al. </i>2010;  Siramon  &amp; Ohtani,  2007),  quienes  afirman que el clima, el genotipo,  el origen geogr&aacute;fico del crecimiento,  las precipitaciones, el r&eacute;gimen  de la cosecha y el procedimiento de extracci&oacute;n afectan significativamente el contenido de aceite esencial total de las plantas.</p>     <p><a name="t1"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v18n1/v18n1a27t1.jpg"></p>     <p><b>Componentes vol&aacute;tiles mayoritarios del AE. </b>Del perfil cromatogr&aacute;fico  del AE del eucalipto <i>E. camaldulensis</i>, obtenido  por CGAR-FID, se obtuvieron tres componentes mayoritarios comunes a los monoterpenos: 1,8-cineol,  limoneno  y pineno.  El promedio  de los an&aacute;lisis de los AE de las muestras foliares mostr&oacute;  que el AE posee  mezclas de mono  y de sesquiterpenos, siendo el 1,8-cineol, el componente con mayor concentraci&oacute;n, seguido  del &alpha;-pineno,  limoneno,  &alpha;-copaeno y Guaiol. Seg&uacute;n Ben <i>et al. </i>(2012), los monoterpenos son los principales componentes de los AE de eucalipto. Otros estudios realizados a diferentes especies  de eucalipto ratifican lo encontrado en esta investigaci&oacute;n (<a href="#t2">Tabla 2</a>).</p>     <p><a name="t2"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v18n1/v18n1a27t2.jpg"></p>     <p>Singh <i>et al</i>. (2012),  en sus  estudios  con <i>E. citriodora</i>,  hallaron que  el aceite,  en  general,  era  de  naturaleza  monoterpenoide, con  monoterpenos que  constitu&iacute;an  un  94,35% del aceite.  Este  AE conten&iacute;a  hidrocarburos monoterpenos (4,49%), monoterpenoides oxigenados  (89,86%),  hidrocarburos de  sesquiterpeno (3,58%),  sesquiterpenos oxigenados (0,86%) y otros compuestos no terpenoides (0,41%). El principal constituyente del aceite era citronelal (60,66%), seguido de <i>&beta;</i>-citronelol (12,58%) y el isopulegol (8,19%). Adem&aacute;s, tambi&eacute;n  estaban presentes cantidades significativas de <i>&beta;</i>-cariofileno (2,91%), <i>p</i>-mentano-3, 8-diol (2,87%), acetato  de citronelilo (2,38%) y 1,8-cineol (1,83%)</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Elaissi <i>et al. </i>(2012), luego de trabajar con ocho especies  de eucalipto,  obtuvieron que el contenido de 1-8 cineol variaba entre  45-70%,  el limoneno  entre  0,4&plusmn; 0,2  - 4,40&plusmn;0,3% y el &alpha;-pineno  entre  1,0&plusmn;0,7 - 17,6&plusmn;7,5%; pero  no reportan  presencia  de limoneno  ni guaiol.</p>     <p>Barra <i>et al. </i>(2010),  en su estudio  con  el <i>E. camaldulensis </i>Dehnh, reportan  haber encontrado 37 compuestos, los cuales,  representan, al menos, el 97%, siendo  los principales: p-cimeno  (27,8 - 42,7%); 1,8-cineol  (4,1 a 39,5%); beta-felandreno (3,9- 23,8%); espatulenol (2,1 a 15,5%) y criptone (3,2 a 10,2%).</p>     <p>Sefidkon <i>et al. </i>(2008) estudiaron  el efecto  del m&eacute;todo  y el tiempo de destilaci&oacute;n en el rendimiento  del aceite esencial y la composici&oacute;n de los gl&oacute;bulos del <i>E. dealbata. </i>Ellos reportaron que con el tiempo, la destilaci&oacute;n da lugar a un aumento en el rendimiento  y una reducci&oacute;n del contenido de cineol.</p>     <p>Todo lo anterior confirma lo expresado por Fadel <i>et al. </i>(1999), quienes  expresaron  que  el &eacute;ter monoterpenoide 1,8-cineol, componente t&iacute;pico del aceite de eucalipto,  sobre  todo en el <i>E. globulus</i>,  var&iacute;a ampliamente. Las variaciones  en  los ingredientes  qu&iacute;micos  del AE de <i>E. camaldulensis </i>produce  aceites  con  propiedades qu&iacute;micas  diferentes,  por  lo tanto,  los resultados  aqu&iacute; reportados de densidad  espec&iacute;fica, &iacute;ndice de refracci&oacute;n a 20&deg;C y rotaci&oacute;n  &oacute;ptica a 20&deg;C, se presentan s&oacute;lo a manera  de informaci&oacute;n.</p>     <p>El IK<sub>Te&oacute;rico</sub> y el IK<sub>Exp</sub> corresponden a los datos  calculados  por CGAR-FID en columna  HP-5 y, al final, se muestra la concentraci&oacute;n  relativa, promedio  de extracciones  realizadas por triplicado.</p>     <p>El aceite posee  una moderada cantidad  de dos aldeh&iacute;dos no conocidos, cuminal y phellandral (1,4-4,7%). El aceite esencial fue evaluado en su actividad antif&uacute;ngica presentando actividad a bajas dosis. La actividad antioxidante ensayada  por el test DPPH fue positiva</p>     <p><b>Evaluaci&oacute;n de la actividad antioxidante  del AE: Resultados frente al radical DPPH. </b>En la <a href="#t3">tabla 3</a>, se observa el porcentaje  de inhibici&oacute;n (%Inh), con la metodolog&iacute;a del radical DPPH, en ning&uacute;n caso  super&oacute;  el 10% y se consideran altos los valores superiores  al 30% (Granados <i>et al</i>. 2012). Se podr&iacute;a decir que en las muestras evaluadas  no se encuentran presentes compuestos que  puedan  estabilizar al DPPH, lo cual, puede  explicar la baja actividad mostrada frente a este radical (Granados <i>et al</i>. 2012). Resultados  similares obtuvieron Granados <i>et al</i>. (2012),  en su estudio  con <i>Calycolpus moritzianus </i>y <i>Minthostachys mollis</i>,  del Norte de Santander, donde  el %Inh con el m&eacute;todo  del radical DPPH, en ning&uacute;n caso super&oacute;  el 15%.</p>     <p><a name="t3"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v18n1/v18n1a27t3.jpg"></p>     <p>Trabajos anteriores  han estudiado la composici&oacute;n qu&iacute;mica y la actividad antioxidante  del AE de algunas  especies  de eucalipto. Barra <i>et al. </i>(2010), en sus investigaciones con AE de partes a&eacute;reas  de <i>E. camaldulensis</i>, hallaron que la actividad antioxidante,  evaluada por DPPH, mostr&oacute;  valores entre 0,5 y 5,8mmol/L.  Estos  valores son  diferentes  a los encontrados en  esta  investigaci&oacute;n,  porque  las composiciones qu&iacute;micas de  los eucaliptos  son  diferentes  y var&iacute;an en funci&oacute;n  de los diversos or&iacute;genes  y muestran una fuerte fluctuaci&oacute;n durante  la fase vegetativa, lo cual, puede explicar que, en especies  de eucalipto de otras regiones,  s&iacute; se presenta  una buena  capacidad antioxidante frente al radical DPPH.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Evaluaci&oacute;n de la actividad antioxidante  del AE: Resultados frente al radical cati&oacute;nico  ABTS<sup>+</sup></b>. Al realizar el ensayo frente al radical ABTS<sup>+</sup>, se observ&oacute; que el %Inh a 100ppm estuvo muy bajo y solamente alcanza valores suficientes a muy altas concentraciones. En la <a href="#t4">tabla 4</a>, se puede  observar que en ninguno de los casos  supera el 40%. Lo anterior confirma que las actividades antioxidantes del p-cimeno,  &alpha;-terpineno y 1,8-cineol son muy pobres  (Siramon &amp; Ohtani, 2007).</p>     <p><a name="t4"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v18n1/v18n1a27t4.jpg"></p>     <p>Se puede  concluir que el AE del Eucalyptus camaldulensis posee  mezclas  de mono  y sesquiterpenos, siendo  el 1,8-cineol, el componente con mayor concentraci&oacute;n, con un 81%, seguido  del &alpha;-pineno,  con  un  5,26%.  La actividad  antioxidante,  se obtiene a muy altas concentraciones (&gt;300ppm).</p>     <p><u>Conflicto de intereses:</u>  El manuscrito fue preparado y revisado  con la participaci&oacute;n  de todos  los autores,  quienes  declaramos  que  no  existe ning&uacute;n  conflicto de  intereses,  que ponga  en riesgo la validez de los resultados  presentados.</p>     <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>1.   ADAMS, R. 2005. Identification of essential oil components by gas chromatography/mass spectroscopy. Allured Publishing Corporation:  Carol Stream  (USA). 469p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0123-4226201500010002700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2.   ALI, N.; AHMED, G.; ALI SHAH, S.; SHAH, I.; GHIAS, M.; KHAN, I. 2011.  Acute toxicity, brine shrimp cytotoxicity and relaxant activity of fruits of <i>Callistemon citrinus </i>Curtis. BMC Complement Altern Med. 11:99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0123-4226201500010002700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>3.   BACHIR, R.G.; BENALI, M. 2012.  Antibacterial activity of the essential  oils from the leaves of <i>Eucalyptus globulus </i>against <i>Escherichia  coli </i>and <i>Staphylococcus aureus</i>. Asian Pacific J. Trop. Biomed. 2(9):739-742.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0123-4226201500010002700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>4.   BAKKALI,  F.;  AVERBECK,  S.;  AVERBECK,  D.;  IDAO- MAR, M. 2008.  Biological effects of essential oils - A review. Food Chem. Toxicol. 46:446-475.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0123-4226201500010002700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>5.   BARRA, A.; CORONEO,  V.;  DESSI,  S.;  CABRAS, P.; ANGIONI, A. 2010.  Chemical  variability, antifungal and antioxidant activity of <i>Eucalyptus camaldulensis </i>essential   oil  from  Sardinia.  Nat.  Prod.  Commun. (United States). 5(2):329-335.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0123-4226201500010002700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6.   BEN, J.;  HAOUEL, S.;  BOUAZIZ, M.; KHOUJA,  M.L. 2012.  Seasonal  variations in chemical  composition and fumigant activity of five Eucalyptus essential oils against three moth  pests  of stored  dates  in Tunisia. J. Stored Prod. Res. (United States).48:61-67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-4226201500010002700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>7.   ELAISSI, A.; SALAH, B.; MABROUK,  S.;  CHEMLI, R.; HARZALLAH-SKHIRI, F. 2011.  Antibacterial activity and chemical  composition of 20 Eucalyptus species  essential oils. Food Chem, 129:1427-1434.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-4226201500010002700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>8.   ELAISSI, A.; ROUIS, Z.; SALEM, N.A.B.; MABROUK, S.; SALEM, Y.B.; SALAH, K.B.H.; AOUNI, M.; FARHAT, F.; CHEMLI, R.; HARZALLAH-SKHIRI, F.; KHOUJA, M.L. 2012.  Chemical  composition of 8 eucalyptus  species essential oils and the evaluation of their antibacterial,  antifungal  and  antiviral activities.  BMC Compl. Alter. Med. 12:81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0123-4226201500010002700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>9.   ESEN, G.; AZAZ, A.D.; KURKCUOGLU, M.; CAN BASER, K.H.; TINMAZ, A. 2007.  Essential oil and antimicrobial activity of wild and cultivated <i>Origanum vulgare </i>L. subsp. <i>hirtum </i>(Link) Ietswaart from the Marmara region, Turkey. Flavour Fragr. J.; 22:371-376.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-4226201500010002700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>10. FADEL, H.;  MARX,  F.;  EL-SAWY,  A.; EL-GHORAB, A. 1999. Effect of extraction techniques on the chemical composition and  antioxidant  activity of <i>Eucalyptus camaldulensis </i>var. <i>brevirostris </i>leaf oils. Z Lebensm.  Unters. Forsch.  A. 208:212-216.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-4226201500010002700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11. GILLES, M.; ZHAO, J.;  AN, M.; AGBOOLA,  S.  2010. Chemical  composition and  antimicrobial  properties of  essential   oils  of  three   Australian   Eucalyptus species.  Food Chem. 119:731-737.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-4226201500010002700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12. GOUPY,   P.;  HUGUES,  M.;  BOIVIN, P.;  AMIOT, M.J. 1999.  Antioxidant composition and activity of barley (<i>Hordeum  vulgare</i>) and malt extracts and of isolated phenolic compounds. J. Sci. Food Agri. 79(12):1625-1634.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0123-4226201500010002700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>13. GRANADOS,  C.;   Y&Aacute;&Ntilde;EZ, X.;  SANTAF&Eacute;,  G.   2012. Evaluaci&oacute;n  de  la  actividad  antioxidante  del  aceite esencial    foliar   de <i>Calycolpus   moritzianus </i>y <i>Minthostachys  mollis, </i>de   Norte   de   Santander. Bistua: Rev. Fac.  Cienc. B&aacute;s. (Colombia).  10(1):12-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-4226201500010002700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>14. MARZOUG, H.N.B.;  ROMDHANE, M.;  LEBRIHI, A.; MATHIEU, F.;   COUDERC,  F.;   ABDERRABA, M.; KHOUJA,  M.L.; BOUAJILA, J.  2011. <i>Eucalyptus oleosa </i>Essential  Oils: Chemical  Composition   and Antimicrobial  and  Antioxidant Activities of the  Oils from  Different Plant  Parts  (Stems,  Leaves,  Flowers and Fruits). Molecules, 16(2):1695-1709.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-4226201500010002700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>15. OSPINA P.,  C.M.; HERN&Aacute;NDEZ R.,  R.J.;  RODAS  P., C.A.; URREGO, J.B.; RIA&Ntilde;O H., N.M.; ARISTIZABAL V.,  F.A.; GODOY  B.,  J.A.; OSORIO  L., O.I.  2006.  Gu&iacute;as  silviculturales  para   el  manejo   de  especies  forestales  con miras a la producci&oacute;n de madera  en la zona andina colombiana. El Eucalipto, <i>Eucalyptus grandis </i>W. Hill ex Maiden. Cenicaf&eacute;. 52p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-4226201500010002700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16. PRIOR, R.; WU, X.; SCHAICH, K. 2005.  Standardized Methods for the determination of antioxidant capacity and  phenolics   in  foods  and  dietary  supplements. J.  Agric. Food  Chem.  (United States).  53(8):3101-3113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-4226201500010002700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>17. RE, R.; PELLEGRINI, N.; PROTEGGENTE, A.; PANNALA, A.; YANG,  M.; RICE-EVANS,  C.  1999.  Antioxidant activity applying  an  improved  ABTS radical  cation decolorization  assay.  Free  Radical  Biol.  Medicine. (United States).  26(9-10):1231-1237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-4226201500010002700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>18. SEFIDKON, F.;  BAHMANZADEGAN, A.; ASSAREH, M. 2008.   Effect  of  distillation  methods  and   harvesting times  on  the  essential  oil and  cineole  content  of <i>Eucalyptus dealbata. </i>Chem.  Nat.  Compounds. 44(2):250-253.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-4226201500010002700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>19. SIRAMON, P.; OHTANI, Y. 2007. Antioxidative and antiradical activities of <i>Eucalyptus camaldulensis </i>leaf oils from Thailand. J. Wood Sci. 53:498-504.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0123-4226201500010002700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>20. SHAHWAR, D.; RAZA,  M.A.; BUKHARI,  S.;  BUKHARI, G. 2012.  Ferric  reducing  antioxidant  power  of essential oils extracted  from Eucalyptus  and Curcuma  species.  Asian Pacific J. Trop. Biomed. Supplement. 2(3):S1633-S1636.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0123-4226201500010002700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21. SINGH, H.P.; KAUR, S.; NEGI, K.; KUMARI, S.; SAINI, V.; BATISH, D.R.; KOHLI, R.K. 2012.  Assessment of <i>in vitro </i>antioxidant activity of essential oil of <i>Eucalyptus citriodora </i>(lemon-scented   Eucalypt;    Myrtaceae) and  its major constituents. LWT - Food  Sci. Techn. (UnitedStates).  48(2):237-241.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0123-4226201500010002700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>22. STASHENKO, E.E.;  JARAMILLO,  B.;  MART&Iacute;NEZ,  J.R. 2004.   Analysis  of  volatile  secondary   metabolites from  Colombian <i>Xylopia  aromatica </i>(Lamarck)  by different extraction and headspace methods and gas chromatography. J. Chromatogr. A. 1025:105-113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0123-4226201500010002700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>23. STASHENKO, E.E.; MART&Iacute;NEZ, J.R.; RU&Iacute;Z, C.A.; ARIAS, G.;  DUR&Aacute;N, C.;  SALGAR, W.;  CALA, M.  2010. <i>Lippia origanoides </i>chemotype differentiation based  on  essential  oil GC-MS and  principal  component analysis. J. Sep. Sci. (Germany). 33(1):93-103.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0123-4226201500010002700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>24. TYAGI,  A.K.; MALIK,  A. 2011.   Antimicrobial  potential and  chemical  composition of <i>Eucalyptus globulus </i>oil in liquid and vapour phase  against  food spoilage microorganisms. Food Chem. 126:228-235.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0123-4226201500010002700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>25. Y&Aacute;&Ntilde;EZ RUEDA,  X.; CUADRO MOGOLL&Oacute;N, O.F.  2012. Composici&oacute;n qu&iacute;mica y actividad antibacteriana del aceite  esencial  de  las  especies <i>Eucalyptus globulus </i>y <i>E.  camaldulensis </i>de  tres  zonas  de  Pamplona  (Colombia).  Bistua:  Rev. Fac.  Ciencias  B&aacute;sicas. 10(1):52-61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0123-4226201500010002700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>26. ZENG, W.; ZHANG, Z.; GAO, H.; JIA, L.R.; HE, Q. 2012. Chemical Composition,  Antioxidant, and Antimicrobial Activities of Essential Oil from Pine Needle (<i>Cedrus deodara</i>). J. Food Sci. 77(7):824-829.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0123-4226201500010002700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>Recibido: Febrero 6 de 2014 Aceptado: Abril 7 de 2015</p> </font>       ]]></body><back>
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