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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[INCREMENTO EN LA VIDA ÚTIL POST COSECHA DEL AGUACATE (Persea americana) UTILIZANDO RECUBRIMIENTOS A BASE DE GOMA GELANA]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[POST-HARVEST SHELF-LIFE INCREASE OF AVOCADOS (Persea americana) USING GELLAN GUM BASED COATING]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Avocado is one of the fruits of economic importance in Colombia. However, it presents losses mainly during the post-harvest period. The aim of this research was to evaluate the effect of an edible coating based on high acyl (HAG) and low acyl gellan (LAG) on post-harvest avocado quality (Persea americana cv. "Hass") stored during nine weeks. A factorial design 2³ was employed for the biofilm preparation, where the factors were concentrations of HAG (0.30 and 0.60% w/v), LAG (0.30 and 0.60% w/v) and glycerol (GLY v/v). As antimicrobial aqueous extract of lemon balm (Melissa officinalis L) was used. Properties such as firmness, moisture loss, pH, total soluble solids (TSS) during storage were evaluated. Finally, for the microbiological shelf life estimation the Hinshelwood Monod equation was applied previous data modeling using the Baranyi and Roberts model. The results indicated that the application of edible coatings based on gellan gum containing low concentrations of glycerol reduces the loss of firmness, moisture, soluble solids and prevent large changes in pH, maintaining the quality of avocado and extend its shelf life.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">     <p align="right"><b>CIENCIAS AGRARIAS-Art&iacute;culo Cient&iacute;fico</b></p>     <p align="center"><b>INCREMENTO EN LA VIDA &Uacute;TIL POST COSECHA DEL AGUACATE (<i>Persea americana</i>) UTILIZANDO RECUBRIMIENTOS A BASE  DE GOMA GELANA</b></p>     <p align="center"><b>POST-HARVEST SHELF-LIFE  INCREASE OF AVOCADOS (<i>Persea americana</i>) USING  GELLAN GUM  BASED COATING</b></p>     <p><b>Rafael Gonz&aacute;lez Cuello<sup>1</sup>, Jaime  P&eacute;rez Mendoza<sup>2</sup>, V&iacute;ctor Gelvez Ord&oacute;&ntilde;ez<sup>3</sup></b></p>     <p><sup>1</sup> Ph.D. Ingenier&iacute;a de Alimentos, Docente  Asistente. Universidad de Cartagena, Avenida del Consulado  Calle 30 No. 48-152, Cartagena-Bol&iacute;var, Colombia, e-mail: <a href="mailto:rgonzalezc1@unicartagena.edu.co">rgonzalezc1@unicartagena.edu.co</a></p>     <p><sup>2</sup> MSc. Ingenier&iacute;a de Alimentos, Docente  Asociado. Universidad de Cartagena, Avenida del Consulado  Calle 30 No. 48-152,  Cartagena-Bol&iacute;var,  Colombia,  e-mail: <a href="mailto:jperezm@unicartagena.edu.co">jperezm@unicartagena.edu.co</a></p>    <p><sup>3</sup> Ph.D. Ingenier&iacute;a de Alimentos, Docente.  Universidad de Pamplona, Colombia,  e-mail: <a href="mailto:vmgelvez@unipamplona.edu.co">vmgelvez@unipamplona.edu.co</a></p>     <p>Rev. U.D.CA Act. &amp; Div. Cient. 20(1): 101-110, Enero-Junio, 2017</p> <hr>     <p><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El aguacate es uno  de los frutos de importancia  econ&oacute;mica en Colombia que presenta  p&eacute;rdidas  en post  cosecha. El objetivo de esta investigaci&oacute;n fue evaluar el efecto de un recubrimiento  comestible a base  de  gelana  de  alto (GAA)  y bajo acilo (GBA), sobre la calidad post cosecha del aguacate (<i>Persea americana </i>cv. "Hass"),  almacenado durante  nueve  semanas. Para  la elaboraci&oacute;n  de  los recubrimientos, se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o  factorial 2<sup>3</sup>,  donde  los factores  fueron  las concentraciones de  GAA (0,30  y 0,60%  p/v), GBA (0,30  y  0,60% p/v) y glicerol (GLI) (8,0 y 12% v/v); como  agente  antimicrobiano,  se utiliz&oacute; extracto acuoso de Toronjil (<i>Melissa officinalis </i>L), por ser un aditivo natural. Se evaluaron propiedades,  como  la firmeza, la p&eacute;rdida de humedad, el pH y los s&oacute;lidos solubles totales (SST), durante  almacenamiento. Finalmente, para la estimaci&oacute;n del periodo de vida &uacute;til, se emple&oacute; la ecuaci&oacute;n  de Monod Hinshelwood,  previo modelado de los datos, con ayuda de la ecuaci&oacute;n  de Baranyi y Roberts. Los resultados  indicaron que la aplicaci&oacute;n de recubrimientos comestibles de goma  gelana,  conteniendo bajas concentraciones de glicerol, disminuye significativamente  (P&lt;0,05) la p&eacute;rdida de firmeza, de humedad, de s&oacute;lidos solubles y evitan grandes modificaciones  del pH, manteniendo la calidad del aguacate, alargando la vida &uacute;til.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> Conservaci&oacute;n,  extracto de toronjil, heteropolisac&aacute;ridos, <i>Persea americana</i>, revestimientos  comestibles.</p> <hr>     <p><b>SUMMARY</b></p>     <p>Avocado  is  one  of  the  fruits  of  economic  importance  in Colombia. However, it presents  losses mainly during the  post-harvest period.  The aim of this research  was to evaluate the effect of an edible coating  based  on high acyl (HAG) and low acyl  gellan  (LAG) on  post-harvest   avocado  quality  (<i>Persea americana cv. "</i>Hass") stored  during nine weeks. A factorial design 2<sup>3</sup> was employed for the biofilm preparation, where the factors were concentrations of HAG (0.30 and 0.60% w/v), LAG (0.30 and 0.60% w/v) and glycerol (GLY v/v). As antimicrobial aqueous extract  of lemon  balm  (<i>Melissa  officinalis  L</i>) was used.  Properties  such  as  firmness,  moisture  loss,  pH,  total soluble  solids  (TSS) during  storage  were evaluated.  Finally, for the microbiological  shelf life estimation  the Hinshelwood Monod equation  was applied  previous  data  modeling  using the Baranyi and Roberts model. The results indicated that the application of edible coatings based on gellan gum containing  low  concentrations of glycerol reduces  the loss of firmness, moisture,  soluble  solids  and  prevent  large  changes in pH, maintaining the quality of avocado and extend its shelf life.</p>     <p><b>   Key words:</b> Avocado, lemon balm, gellan gum, edible coating, post-harvest  shelf life.</p>   <hr>     <p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>El empacado de matrices  alimentarias  se ha enfocado, principalmente, en  el desarrollo  de  pel&iacute;culas  o recubrimientos biodegradables, elaboradas a partir de polisac&aacute;ridos  de origen vegetal (Seydim &amp; Sarikus, 2006) y microbiano,  ya que los consumidores, actualmente, demandan una disminuci&oacute;n  en el uso de aditivos qu&iacute;micos,  sobre las matrices  alimentarias.</p>     <p>   Los materiales  empleados para  la producci&oacute;n de  recubrimientos,  usualmente, son  prote&iacute;nas,  polisac&aacute;ridos  y l&iacute;pidos  (Persin <i>et al. </i>2011; Rodr&iacute;guez &amp; Schobitz, 2009; Gonz&aacute;lez <i>et al. </i>2015).  Investigaciones  previas han  mostrado que  varios polisac&aacute;ridos,  usados  como  agentes  espesantes o estabilizantes,  pueden  tambi&eacute;n  ser utilizados para  la formaci&oacute;n  de recubrimientos (Gonz&aacute;lez <i>et al. </i>2016).</p>     <p>   La goma  gelana  es  un  heteropolisac&aacute;rido lineal ani&oacute;nico, producido   por   la  bacteria <i>Sphingomonas  paucimobilis </i>y  consiste  en  unidades   de  repetici&oacute;n  de  un  tetrasac&aacute;rido (1,3-&beta;-D-glucosa;  1,4-&beta;-D-&aacute;cido  glucur&oacute;nico;  1,4  &beta;-D glucosa;  and  1,4-&alpha;-L-ramnosa). La gelana  nativa es conocida  como  gelana  de alto acilo, debido  a que presenta  un grupo acetato (C6) y un grupo glicerato (C2), en su residuo de glucosa. Cuando  la gelana de alto acilo es sometida  a un fuerte tratamiento con &aacute;lcali a elevadas temperaturas, se obtiene la gelana de bajo acilo. Esta diferencia estructural  hace posible obtener  geles de diferentes texturas (Buldo <i>et al. </i>2016).</p>     <p>   La capacidad de las pel&iacute;culas y de los recubrimientos para retener humedad, aromas  y transporte de solutos, puede ser mejorada, mediante  la inclusi&oacute;n  de aditivos, como  antioxidantes,  antimicrobianos, colorantes,  saborizantes, nutrientes y  especies,  en la formulaci&oacute;n  (Pranoto <i>et al. </i>2005).  La influencia  de  los aditivos depender&aacute; de  su  concentraci&oacute;n, estructura qu&iacute;mica, grado de dispersi&oacute;n en el recubrimiento, as&iacute; como  su grado  de interacci&oacute;n  con el pol&iacute;mero.  A pesar de  los  progresos realizados  en el &aacute;rea  de  conservaci&oacute;n de frutas y verduras, m&aacute;s de un cuarto  de las frutas y vegetales cosechados se echan a perder, debido a su deterioro durante  el almacenamiento (Maftoonazad &amp; Ramaswamy,  2005).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   El aguacate (<i>Persea americana </i>Mill) es la quinta fruta tropical de mayor relevancia en el mundo, en t&eacute;rminos  de volumen y de &aacute;rea  cultivada. Colombia,  al producir  m&aacute;s  de 40 mil toneladas/a&ntilde;o de  aguacate hace  que  esta  fruta  tenga gran potencial para exportaci&oacute;n;  sin embargo, como  consecuencia  de una elevada demanda interna y una ausencia de adecuadas pr&aacute;cticas agr&iacute;colas, hacen dif&iacute;cil el acceso  de esta fruta a mercados internacionales (Yabrudy, 2012).</p>     <p>  El aguacate (<i>Persea americana </i>cv<i>. </i>"Hass") es una fruta con un excelente sabor  y textura, que tiene un papel importante en la nutrici&oacute;n humana, por su contenido en &aacute;cidos,  como  el oleico, palm&iacute;tico, linoleico, palmitoleico y este&aacute;rico,  aparte de vitaminas, como  la A, B, C, E, K y de un elevado contenido en fibra (Bill <i>et al. </i>2014). Todo esto le confiere a la fruta efectos saludables, en la prevenci&oacute;n del c&aacute;ncer y enfermedades cardiovasculares (Awad &amp; Fink, 2000; Plaza <i>et al. </i>2009). Infortunadamente, la vida &uacute;til del aguacate est&aacute; condicionada por muchos factores, entre los cuales, es importante destacar el crecimiento  de hongos  (Elez <i>et al. </i>2005), ya que las p&eacute;rdidas  post-cosecha por antracnosis pueden  llegar a ser del  80%, si no  se emplean  las medidas  adecuadas (Bosse <i>et al</i>. 2013). En tal sentido,  el uso de extractos  acuosos vegetales  han sido utilizados, con el fin de incrementar la vida &uacute;til de matrices alimentarias (Gonz&aacute;lez <i>et al. </i>2015). <i>M. officinalis</i>, tambi&eacute;n  conocida  como  b&aacute;lsamo  de lim&oacute;n, b&aacute;lsamo  com&uacute;n  o b&aacute;lsamo  dulce,  es una  hierba perenne, de olor a lim&oacute;n, que pertenece a la familia de la Lamiaceae y, a la cual, numerosos estudios  le atribuyen una variada actividad biol&oacute;gica (Shakeri <i>et al. </i>2016).</p>     <p>   La vida &uacute;til del aguacate resulta ser de tres a cuatro semanas, cuando  es almacenado en condiciones de humedad y temperaturas  adecuadas. Varias t&eacute;cnicas han sido utilizadas, con el fin de extender  la vida &uacute;til del aguacate, aunque  algunas pueden  presentar  inconvenientes; por ejemplo,  la refrigeraci&oacute;n, si bien retrasa  la maduraci&oacute;n y prolonga  la vida &uacute;til, el fr&iacute;o prolongado conlleva a una  descomposici&oacute;n y da&ntilde;o  del fruto (Ma <i>et al. </i>2017).</p>     <p>   En los aguacates, se  ha  estudiado la estabilidad  oxidativa  (Aguil&oacute; <i>et al. </i>2014),  la vida &uacute;til post  cosecha (Maftoonazad  &amp; Ramaswamy,  2005),  la inducci&oacute;n  de resistencia  contra  la antracnosis por aplicaci&oacute;n combinada de aceite de tomillo y recubrimientos comestibles (Bill <i>et al</i>. 2014).  Recientemente,  se  evalu&oacute;  la actividad  antag&oacute;nica de  diversos  aislados bacterianos, obtenidos de m&uacute;ltiples fuentes contra bacterias  fitopat&oacute;genas, aisladas de plantas de aguacate (Dunlap <i>et al.</i>  2016); sin embargo, hasta  la fecha, no ha sido reportado el uso de mezclas binarias de gelana de alto y bajo acilo sobre aguacates. Por tal motivo, el objetivo de la presente  investigaci&oacute;n fue evaluar el efecto de un recubrimiento comestible binario, sobre  la calidad pos cosecha del aguacate (<i>P. americana</i>).</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p><b>Materiales. </b>45 frutos de tama&ntilde;o uniforme de <i>P. americana cv. </i>"Hass" fueron obtenidos en el mercado local de la ciudad de Cartagena D.T. y C. (Colombia). Se seleccionaron, teniendo en cuenta  su tama&ntilde;o, el estado  de madurez,  la ausencia visual de deterioro ocasionado por microorganismos y da&ntilde;os  en la piel. Los frutos fueron desinfectados con una soluci&oacute;n de hipoclorito de sodio (0,2g/L) por 5 min y secados a temperatura ambiente  (Gonz&aacute;lez <i>et al. </i>2005) y luego divididos en dos lotes. El primer lote constituy&oacute;  el grupo  control, que se almacen&oacute; sin recubrimiento y, el segundo fue sometido  a los diferentes tratamientos de recubrimientos con gelana.</p>     <p>   <b>Preparaci&oacute;n  de  las  biopel&iacute;culas. </b>Para  la  obtenci&oacute;n  de biopel&iacute;culas,  un  dise&ntilde;o  factorial 2<sup>3</sup> fue utilizado, donde  los factores  fueron las concentraciones de gelana  de alto acilo (GAA), (0,3 y 0,6% p/p) y bajo acilo (GBA), (0,3 y 0,6% p/p) y plastificante (8,0 y 12% v/v), (Tabla 1). Los pol&iacute;meros  fueron disueltos  en agua  destilada,  con  ayuda  de una  plancha  de calentamiento, bajo agitaci&oacute;n constante; luego, se incorpor&oacute; glicerol (GLI), como  agente  plastificante.  La soluci&oacute;n  resultante fue sometida  a calentamiento 90&deg;C/10 minutos;  subsiguientemente, la temperatura fue disminuida, hasta alcanzar  30&deg;C, con el fin de adicionar  el extracto  acuoso de toronjil, obtenido  mediante el procedimiento descrito por Herrera &amp; Garc&iacute;a (2006). Cada fruta fue pesada  en una balanza anal&iacute;tica antes  de ser recubierta.  Los aguacates fueron sumergidos en la soluci&oacute;n del recubrimiento durante  1 min, a 20&deg;C; posteriormente, las frutas tratadas fueron secadas, para fijar el recubrimiento en la superficie de la fruta y, finalmente, las frutas  fueron  almacenadas junto  con  las muestras control durante  nueve  semanas. Los siguientes  an&aacute;lisis  fueron  llevados a cabo  para evaluar los cambios  en la calidad de las muestras cada  dos  d&iacute;as,  durante  el periodo  de  almacenamiento (nueve semanas).</p>     <p>La p&eacute;rdida de humedad fue estimada con ayuda de una balanza anal&iacute;tica. El contenido de s&oacute;lidos solubles totales (SST) fue determinado con un refract&oacute;metro (Fischer, Extech Model 2132,  Boston,  EEUU). La firmeza fue medida  mediante  un  texturometro   (Shimadzu  modelo  EZ-Test  EZ-S,  Tokyo, Jap&oacute;n).  Las muestras fueron  sometidas a test  de punci&oacute;n, a velocidad constante 40mm/mm, utilizando una geometr&iacute;a de punta &micro; de 5mm de di&aacute;metro. Curvas de fuerza deformaci&oacute;n fueron realizadas, con el fin de obtener la pendiente (N/mm) de la zona lineal que representa la firmeza. Al menos diez determinaciones fueron llevadas a cabo en cada fruta, reportando los promedios aritm&eacute;ticos. Los valores de pH fueron obtenidos usando un pH metro (Thompson Bante Instrument, Shanghai, China). Una maceraci&oacute;n fue realizada con una muestra de aguacate en agua destilada (1:10 p/v), previa agitaci&oacute;n durante 10 min.</p>     <p><a name="t1"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v20n1/v20n1a12t1.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Estimaci&oacute;n  de  la vida &uacute;til microbiol&oacute;gica del  aguacate.</b> La estimaci&oacute;n de la vida &uacute;til fue llevada a cabo,  tanto  para las  muestras control  como  para  las recubiertas, realizando varias cin&eacute;ticas  de crecimiento, a distintas temperaturas (10- 25&deg;C), utilizando como  microorganismos indicadores,  los mohos  y las levaduras  en general,  sin considerar  un g&eacute;nero  en particular. Los datos  obtenidos fueron modelados matem&aacute;ticamente, utilizando la ecuaci&oacute;n  de  Baranyi y Roberts   (1994) (Ecuaci&oacute;n  1), por medio  del programa de c&oacute;mputo = DMFit 2.0:</p>      <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v20n1/v20n1a12ecu1.jpg"></p>   Donde:  y(t) es la concentraci&oacute;n celular o el di&aacute;metro  de las colonias;  y0 es la concentraci&oacute;n o di&aacute;metro  inicial; &micro;m&aacute;x es  la velocidad espec&iacute;fica de crecimiento  (1 <i>h</i> ); m es un par&aacute;metro  de curvatura  para caracterizar  la transici&oacute;n  de la fase exponencial;  Ñµ es un par&aacute;metro de curvatura  para  caracterizar la transici&oacute;n a la fase exponencial  y ho es un par&aacute;metro adimensional que  cuantifica  el estado  fisiol&oacute;gico inicial de las c&eacute;lulas.  Una vez obtenidos los par&aacute;metros cin&eacute;ticos  de crecimiento  microbiano,  se procedi&oacute; a estimar la vida &uacute;til microbiol&oacute;gica,  utilizando la ecuaci&oacute;n  de Monod-Hinshelwood (ecuaci&oacute;n  2):</p>      <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v20n1/v20n1a12ecu2.jpg"></p>     <p>   Donde: ts es el tiempo necesario para que se desarrolle la alteraci&oacute;n en el alimento; Ns (ufc/g) es el valor correspondiente a la poblaci&oacute;n  de seguridad  (valor m&aacute;ximo permisible antes  de considerarse alterado  el producto);  No (ufc/g) es el valor correspondiente a la poblaci&oacute;n  inicial presente  en el producto, que es estimado  mediante  recuento del microorganismo por siembra en placa profunda  al inicio de la cin&eacute;tica microbiana;  Td es el tiempo  de duplicaci&oacute;n  promedio,  obtenido  de  las  cin&eacute;ticas  microbianas a las diferentes  temperaturas (10 - 25&deg;C). Es importante mencionar que Td es el cociente  de In2 y la velocidad espec&iacute;fica de crecimiento  microbiano  y esta &uacute;ltima corresponde a la pendiente de la fase logar&iacute;tmica de crecimiento del microorganismo.</p>     <p><b>An&aacute;lisis  de  datos.</b> Los datos  obtenidos fueron  analizados mediante   an&aacute;lisis  normal  de  varianza  (ANOVA  un  factor), empleando la prueba de Tukey, con un nivel de confianza del 95%, utilizando el programa de  computo SPSS  (Statistical Package  for the Social Sciences  Inc. Chicago,  IL, USA) versi&oacute;n 17.0 para Windows.</p>     <p><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>P&eacute;rdida de humedad.</b> En la <a href="#f1">figura 1</a>, se presentan los cambios en la humedad del aguacate en funci&oacute;n del tiempo  de almacenamiento, en  donde  se  puede  apreciar  que  el porcentaje de p&eacute;rdida de humedad en las muestras control (sin recubrimiento)   fue  significativamente   (P&lt;0,05) mayor  en comparaci&oacute;n a las muestras recubiertas. En las frutas control, la p&eacute;rdida de humedad promedio  fue aproximadamente de  9,66  durante  las nueve  semanas de  almacenamiento,  mientras  que  las  frutas  recubiertas con  la proporci&oacute;n  0,6GBA/0,6GAA/8,0GLI  presentaron la  menor   p&eacute;rdida  de peso,  con 1,10%, durante  el mismo  periodo.  Las frutas que fueron recubiertas utilizando una proporci&oacute;n  del 12% (v/v) de GLI, independientemente de las concentraciones de gelana utilizadas, presentaron valores de p&eacute;rdida  de humedad entre 3,58 y 4,55%; por el contrario,  las frutas recubiertas con menores concentraciones de GLI (8,0% v/v), sin importar las proporciones de  gelana,  presentaron menores porcentajes de p&eacute;rdida de humedad (1,10 - 1,91%). Estos resultados  son similares a los reportados por Jeong <i>et al. </i>(2003), en frutas tratadas  con  mezclas  de  cera  y metil ciclopropeno, donde  encontraron valores entre  1,90  y 5,4,  dependiendo de  las concentraciones de cera utilizadas. Igualmente,  Saucedo <i>et al</i>. (2009) reportaron  valores de p&eacute;rdida de humedad cercanos al 5,0%, despu&eacute;s de seis semanas de almacenamiento, en  aguacates recubiertos con  cera  candelilla,  conteniendo &aacute;cido el&aacute;gico. Los menores valores de p&eacute;rdida de humedad obtenidos en las frutas recubiertas pueden  ser atribuidos  a las propiedades de barrera  para  la difusi&oacute;n de gases  de las estomas, organelos  que regulan el proceso  de transpiraci&oacute;n, adem&aacute;s del intercambio  de gases,  entre  la fruta y el medio ambiente  (Salunke <i>et al. </i>1991).</p>     <p><a name="f1"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v20n1/v20n1a12f1.jpg"></p>     <p>  El mecanismo de p&eacute;rdida de humedad en frutas y en vegetales tambi&eacute;n puede ser ocasionado por la diferencia en el gradiente de presi&oacute;n de vapor de agua,  entre la parte interna y externa del fruto, por lo cual, los recubrimientos ayudan a reducir la p&eacute;rdida de humedad, debido a la formaci&oacute;n  de una pel&iacute;cula en la superficie de la fruta. El espesor  de la pel&iacute;cula, as&iacute;  como  la permeabilidad  del recubrimiento son  aspectos importantes, ya que afectan la velocidad de transferencia de masa  y, por tanto,  deber&aacute;n  estudiarse en un futuro.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Contenido  de s&oacute;lidos solubles totales  (SST).</b> En la <a href="#f2">figura 2</a>, se puede observar el incremento significativo (P&lt;0,05) en la concentraci&oacute;n de SST, en las muestras con recubrimiento, durante  las 9 semanas de almacenamiento, alcanzando concentraciones finales, entre 1,76 y 3,54&deg;Brix; es importante aclarar que todos  los frutos presentaron concentraciones iguales (1,21 - 1,22 Brix) al inicio del almacenamiento (tiempo  cero).  El contenido de  s&oacute;lidos  fue en  promedio  mayor en aguacates sin recubrimiento (3,02&deg; Brix), en comparaci&oacute;n con  las  muestras  con  recubrimiento;   posiblemente,  este comportamiento es relacionado  al proceso  de maduraci&oacute;n acelerado de las frutas control y la correspondiente p&eacute;rdida de peso  en la misma  (P&lt;0,05) (<a href="#f1">Figura 1</a>); en este caso,  los componentes vol&aacute;tiles y aquellos  solubles en agua,  pueden  ser  liberados  al entorno,   durante  la deshidrataci&oacute;n de  las muestras (Saucedo <i>et al. </i>2009).</p>     <p><a name="f2"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v20n1/v20n1a12f2.jpg"></p>     <p>     <p>   El comportamiento de las muestras recubiertas presenta  dos tendencias con respecto  el contenido de GLI: los recubrimientos con 8,0% (v/v) mostraron concentraciones de SST, de 1,47 a 1,71&deg;Brix, mientras  que los recubrimientos con una mayor concentraci&oacute;n de plastificante (12%v/v) presentaron mayores valores, entre 2,20  y 2,59&deg;Brix. Este comportamiento coloca en evidencia un mayor efecto de las concentraciones de plastificante en comparaci&oacute;n a las proporciones de GAA y GBA.</p>     <p><b>Valores de pH.</b> Los valores de pH se incrementaron durante  el periodo  de estudio,  para todas  las muestras de aguacate analizadas  (<a href="#f3">Figura 3</a>), debido  al consumo de mol&eacute;culas  org&aacute;nicas en los ciclos metab&oacute;licos, que proporcionan la energ&iacute;a que el fruto requiere; adem&aacute;s, algunos  &aacute;cidos org&aacute;nicos  participan  como  precursores de sustancias vol&aacute;tiles (Park <i>et al. </i>2006). La muestra que present&oacute; los valores m&aacute;s elevados de pH fue la de sin recubrimiento (7,38), mientras  que con la  muestra recubierta  de  0,3GBA/0,3GAA/8,0GLI, se  obtuvieron los menos  valores de pH (6,40). Estos resultados  son comparables con  los obtenidos por M&aacute;rquez <i>et al. </i>(2014), quienes  reportaron  incrementos en los valores de pH, desde  6,42 hasta  6,63, en muestras de aguacate (<i>Persea americana </i>Mill. cv. "Hass<i>"</i>), almacenados durante  21 d&iacute;as. Igualmente, Gonz&aacute;lez <i>et al. </i>(2005) encontraron un incremento de pH de  muestras de  papaya  tratada  con  recubrimientos, como  una consecuencia natural del proceso  de maduraci&oacute;n.</p>     <p><a name="f3"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v20n1/v20n1a12f3.jpg"></p>     <p>Es interesante mencionar que en algunas muestras de aguacate  recubiertas con distintas  proporciones de GAA y GBA, no  se  presentaron diferencias  significativas  (P&lt;0,05); sin embargo, al variar las concentraciones de GLI en los recubrimientos,  s&iacute; se apreciaron  diferencias  (P&lt;0,05), es decir, los recubrimientos que  conten&iacute;an 8,0%(v/v) de GLI presentaron niveles de pH, entre 6,40  y 6,66,  al finalizar el tiempo de  almacenamiento (9 semanas), mientras  que  aguacates con recubrimiento conteniendo mayor concentraci&oacute;n de GLI (12% v/v) mostraron mayores  valores de pH (7,01  - 7,11); este  comportamiento se  aprecia  claramente al observar  la <a href="#f3">figura 3</a>. </p>       <p><b>Firmeza.</b> En la primera semana, se presentaron las mayores  resistencias  a la penetraci&oacute;n, con valores de firmeza de 74,3 Newton (N), para  los frutos sin recubrimiento y entre  73,7 y 75,8  N, para frutos con recubrimiento. Los aguacates recubiertos  y sin recubrir presentaron una disminuci&oacute;n  en los valores de  firmeza, hasta  7,6  N y 3,5  N, respectivamente, despu&eacute;s de la 9 semana de almacenamiento; sin embargo, la aplicaci&oacute;n de los recubrimientos mostr&oacute;  un efecto ben&eacute;fico en la retenci&oacute;n  de la firmeza, ya que las frutas recubiertas lograban  tener  valores de resistencia,  entre  20,1  y 45,7  N, despu&eacute;s  de seis semanas de almacenamiento; por el contrario, las frutas sin recubrimiento, solo lograban  tener valores de resistencia  de 13,6  N. En la <a href="#f4">figura 4</a>, nuevamente se aprecia la mayor incidencia de las concentraciones de GLI en comparaci&oacute;n a las proporciones de GBA y GAA. Este efecto  es marcado despu&eacute;s de la segunda y hasta  la s&eacute;ptima  semana  de almacenamiento; durante  este tiempo, se aprecian diferencias significativas (P&lt;0,05), en los valores de firmeza, obtenidos en muestras de aguacate con recubrimientos conteniendo  GLI, en distintas proporciones (8,0 y 12%v/v). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><a name="f4"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v20n1/v20n1a12f4.jpg"></p>      <p>   Jeong <i>et al. </i>(2003)  encontraron que  frutas  sin recubrir  se ablandan  y maduran completamente dentro de 7 d&iacute;as de almacenamiento, a 20&deg;C. En contraste, frutas recubiertas con cera y metil ciplopropeno presentan, aproximadamente, una retenci&oacute;n  de la tercera  parte de la firmeza despu&eacute;s de siete d&iacute;as de almacenamiento, a 20&deg;C. La retenci&oacute;n  de la firmeza puede  ser explicada  por la degradaci&oacute;n de la protop&eacute;ctina insoluble  a compuestos m&aacute;s  solubles,  como  el &aacute;cido  p&eacute;ctico. Durante  la maduraci&oacute;n de la fruta ocurre  una despolimerizaci&oacute;n de las sustancias p&eacute;cticas,  con un incremento en la actividad enzim&aacute;tica (pectinesterasa y poligalacturonasa) (Salunke <i>et al. </i>1991; Maftoonazad &amp; Ramaswamy,  2005).</p>     <p><b>Vida &uacute;til Microbiol&oacute;gica.</b> La vida &uacute;til microbiol&oacute;gica  de un producto alimenticio,  se puede  estimar  obteniendo los par&aacute;metros cin&eacute;ticos  de crecimiento  microbiano,  extra&iacute;dos de la fase logar&iacute;tmica, previo modelado de los datos,  utilizando la  ecuaci&oacute;n  de  Baranyi &amp; Roberts  (1994).  Los valores obtenidos  en  la estimaci&oacute;n de  la vida &uacute;til microbiol&oacute;gica,  se muestran en  la <a href="#t2">tabla  2</a>,  en  donde  se  puede  apreciar  que, el mayor  tiempo  de vida &uacute;til (52,2  d&iacute;as), se encontr&oacute; en el aguacate recubierto  con 0,6% (p/v), de GAA; 0,6% (p/v), de   GBA y 8,0% (v/v), de GLI, seguida  por las combinaciones de  0,3% (p/v), de GAA; 0,6% (p/v), de GBA y 8,0%(v/v), de GLI con 49,9 d&iacute;as.</p>     <p><a name="t2"></a></p>    <p align="center"><img src="img/revistas/rudca/v20n1/v20n1a12t2.jpg"></p>      <p>   En t&eacute;rminos  generales, las mayores  vidas &uacute;tiles (46,4 - 52,2 d&iacute;as), se encontraron en frutos, en los cuales, el recubrimiento conten&iacute;a  bajas concentraciones de GLI (8,0 % v/v); por el contrario, la menor vida &uacute;til, se registr&oacute; en frutos sin recubrimiento (control), con 35,8 d&iacute;as, seguida por las frutas, en las que el recubrimiento ten&iacute;a 12% (v/v) de GLI, con vidas &uacute;til, entre 38,3 y 42,7 d&iacute;as. Estos resultados  confirman  el mayor efecto que presentan las concentraciones de GLI sobre  los par&aacute;metros estudiados (SST, pH, firmeza, p&eacute;rdida de humedad y vida &uacute;til), en comparaci&oacute;n a las proporciones de GBA y GAA.</p>     <p>   Es importante destacar que  el aumento en  la vida &uacute;til de los aguacates puede  ser atribuido  al efecto  antimicrobiano ejercido por el extracto acuoso de toronjil, que limita el crecimiento  de  microorganismos en la superficie  de  la matriz alimentaria; este efecto, se debe a los compuestos presentes en las hojas de toronjil (Montes, 2009; Acevedo <i>et al. </i>2013).</p>     <p>   Compuestos extra&iacute;dos de materiales vegetales inhiben el crecimiento  de  microorganismos pat&oacute;genos y la germinaci&oacute;n  de esporas, porque  afectan  los sitios activos de las enzimas y el metabolismo celular (Arrebola <i>et al. </i>2010). La presencia  de anillos fen&oacute;licos y de grupos hidroxilos de los fenoles presentan  actividad antimicrobiana (Bagamboula <i>et al. </i>2004).</p>     <p>   Los recubrimientos, dependiendo  del  principio  activo  que contengan, pueden   inhibir  la  actividad  enzim&aacute;tica  de  las poligalacturonasas,  pectatoliasas  y celulasas   (Atkinson <i>et al. </i>2012),  las cuales,  est&aacute;n  involucradas  en  el proceso  de maduraci&oacute;n. Ghaouth <i>et  al. </i>(1991)  reportaron  que  el uso de  recubrimientos comestibles ocasiona leves cambios  en la  apariencia  de  las manzanas; estos  autores  argumentan que dichos  cambios,  se deben  a una modificaci&oacute;n  en la atm&oacute;sfera creada  en el fruto, con altos niveles de CO<sub>2</sub> y bajas concentraciones de O<sub>2</sub>, conllevando  a una disminuci&oacute;n  del proceso  de maduraci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   La presencia  de grupos  acilo y el consecuente impedimento est&eacute;rico  que  ocasionan en la agregaci&oacute;n de las cadenas polim&eacute;ricas  de  goma  gelana,  no  incide en  ninguna  de  las caracter&iacute;sticas (SST, pH, firmeza, p&eacute;rdida de humedad y vida &uacute;til), evaluadas  en el presente  estudio;  por el contrario,  las concentraciones de GLI, s&iacute; ocasionan modificaciones en las mencionadas  caracter&iacute;sticas. Este  comportamiento puede  ser generado por la disminuci&oacute;n  de las fuerzas intermoleculares en las cadenas del pol&iacute;mero, que causa una mayor movilidad molecular,  incrementando la permeabilidad  al agua. Igualmente,  los plastificantes  incrementan el volumen libre, por ende,  existe m&aacute;s  espacio  para  la migraci&oacute;n  de las mol&eacute;culas  de agua.  Los plastificantes  hidrof&iacute;licos tipo GLI son compatibles con los materiales  polim&eacute;ricos que originan las biopel&iacute;culas,  aumentando la capacidad de  sorci&oacute;n  de  mol&eacute;culas polares,  como  el agua,  otra raz&oacute;n para incrementar los  valores de  permeabilidad. Adem&aacute;s,  los grupos  polares (-OH), junto a las cadenas de plastificante, se cree que desarrollan enlaces pol&iacute;mero-plastificante, reemplazando las interacciones pol&iacute;mero-pol&iacute;mero en las pel&iacute;culas de polim&eacute;ricas (Yang &amp; Paulson, 2000). </p>     <p>  La aplicaci&oacute;n de recubrimientos comestibles de goma  gelana y extracto de toronjil, conteniendo bajas concentraciones de glicerol disminuyen  la p&eacute;rdida  de firmeza, de humedad, de s&oacute;lidos solubles y evitan grandes  modificaciones del pH, manteniendo la calidad del aguacate, al extender la vida &uacute;til, comparada con las frutas control. Estos resultados  sugieren  la posibilidad de utilizar recubrimientos indistintos de goma  gelana de alto y bajo acilo, a bajas concentraciones de glicerol, como  una alternativa para  ser empleadas en la conservaci&oacute;n de frutas.</p>     <p><u>Conflictos de intereses:</u>  El manuscrito fue preparado y revisado  con la participaci&oacute;n  de todos  los autores,  quienes  declaramos  que no existe conflicto de intereses  que ponga  en riesgo la validez de los resultados  presentados. <u>Financiaci&oacute;n:</u> Esta  investigaci&oacute;n  fue llevada a cabo  en la Universidad de Cartagena.</p>     <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>1.   ACEVEDO,  D.;  NAVARRO,  M.; MONTERO, M. 2013.  Composici&oacute;n  Qu&iacute;mica  del  Aceite  Esencial  de  las  Hojas de Toronjil (<i>Melissa officinalis </i>L<i>.). </i>Inf. Tecnol.  24(4):49-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755086&pid=S0123-4226201700010001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   2.   AGUIL&Oacute;, A.; OMS, O.;  MART&Iacute;N, B.; SOLIVA, F. 2014.  Impact of pulsed light treatments on quality characteristics and  oxidative stability of fresh-cut  avocado.  LWT - Food Sci. Technol. 59:320-326.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755088&pid=S0123-4226201700010001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   3.   ARREBOLA, E.;  SIVAKUMAR,  D.;  BACIGALUPO, R.; KORTSEN, L. 2010.  Combined  application  of antagonist <i>Bacillus amyloliquefaciens </i>and essential oils for the control of peach  postharvest diseases. Crop Prot. 29:369-377.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755090&pid=S0123-4226201700010001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   4.     ATKINSON,  R.;  SUTHERLAND, P.;  JOHNSTON,   S.; GUNASEELAN, K.; HALLETT, I.; MITRA, D.; BRUMMELL, D.; SCHRODER, R.; JOHNSTON,  J.; SCHAFFER, R. 2012.  Down-regulation  of polygalacturonase  alters firmness,  tensile strength  and water loss in apple  (<i>Malus  domestica</i>)  fruit. BMC Plant  Biol. 12:129.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755092&pid=S0123-4226201700010001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   5.   AWAD,  A.; FINK, C. 2000.  Phytosterols  as  anticancer dietary  components: evidence  and  mechanism of action. J. Nutr. 130(9):2127-2130.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755094&pid=S0123-4226201700010001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   6.   BAGAMBOULA, C.; UYTTENDAELE, M.; DEBEVERE, J.   2004.  Inhibitory effect of thyme  and  basil essential oil, carvacol, thymol, estragol, linalool and p-cymene  towards <i>Shigella  sonnei </i>and <i>S. flexneri. </i>Food Microbiol. 21:33-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755096&pid=S0123-4226201700010001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   7.   BARANYI, J.; ROBERTS, T. 1994.  A dynamic  approach to predicting  bacterial  growth in food.  International J. Food Microbiol. 23(3-4):277-294.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755098&pid=S0123-4226201700010001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   8.   BILL, M.; SIVAKUMAR, D.; KORSTEN, L.; THOMPSON, K. 2014.  The  efficacy of combined application  of edible coatings  and  thyme  oil in inducing  resistance components in avocado  (<i>Persea americana </i>Mill.) against   anthracnose  during   post-harvest   storage.  Crop Prot. 64:159-167.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755100&pid=S0123-4226201700010001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   9.   BOSSE, R.; BOWER, J.; BERTLING, I. 2013.  Systemic resistance inducers  applied  preharvest  for <i>Colletotrichum  gloeosporioides </i>control  in avocados. Acta Hort. 1007:153-160.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755102&pid=S0123-4226201700010001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   10. BULDO, P.; BENFELDT, C.; CAREY, J.; FOLKENBERG, M.; JENSEN, B.; SIEUWERTS, S.; VLACHVEI, K.; IPSEN, R. 2016.  Interactions  of milk proteins with low and  high acyl gellan: Effect on  microstructure and textural properties  of acidified milk. Food  Hydrocol. 60: 225-231.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755104&pid=S0123-4226201700010001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   11. DUNLAP, C.; LUESCHOWA, S.;  CARRILLO,  D.; ROONEY, A. 2016.  Screening  of bacteria  for antagonistic activity against  phytopathogens of avocados. Plant Gene.   En  prensa:   <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.plgene.2016.11.004" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.plgene.2016.11.004</a>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755106&pid=S0123-4226201700010001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   12. ELEZ, M.P.; SOLIVA, R.C.; GORINSTEIN, S.; MART&Iacute;N- BELLOSO, O.  2005.  Natural  antioxidants  preserve the  lipid oxidative stability of minimally processed avocado  puree. J. Food Sci. 70(5):S325-S329.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755107&pid=S0123-4226201700010001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   13. GHAOUTH, E.; ARUL, J.; PONNAMPALAM, R. 1991. Use of chitosan  coating  to reduce  water loss and  maintain  quality of cucumber and  bell pepper  fruits. J. Food Proc. 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GONZ&Aacute;LEZ-AGUILAR,   G.A.;  MONROY-GARC&Iacute;A,   I.N.; GOYCOOLEA-VALENCIA,   F.;   D&Iacute;AZ-CINCO, M.E.; AYALA ZAVALA, J.F. 2005.  Cubiertas comestibles de quitosano. Una alternativa para prevenir el deterioro microbiano y conservar  la calidad de papaya  fresca cortada.  In: Proceedings of the Simposium  Nuevas tecnolog&iacute;as de  conservaci&oacute;n y envasado   de  frutas y hortalizas Vegetales frescos  cortados. La Habana,  Cuba. p.121-133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755113&pid=S0123-4226201700010001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   16. GONZ&Aacute;LEZ, R.; CASTRO, B.; CARO, Y.  2015.  Obtenci&oacute;n de biopel&iacute;culas  binarias  activas y su efecto  en la vida &uacute;til microbiol&oacute;gica  del camar&oacute;n blanco  (<i>Penaeus  vannamei</i>). Inf. Tecnol. 26(5):3-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755115&pid=S0123-4226201700010001200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   17. GONZ&Aacute;LEZ R.; PATERNINA,  L.; CARRILLO,  A. 2016.  Biopel&iacute;culas terciarias: fuerza de ruptura y efecto sobre la vida &uacute;til de cortes  de tilapia negra  (<i>Oreochromis niloticus</i>).  Inf. 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M&Aacute;RQUEZ, C.; YEPES, D.; S&Aacute;NCHEZ, L.; OSORIO, J.  2014. Cambios f&iacute;sico-qu&iacute;micos del aguacate (<i>Persea americana </i>Mill. cv. "Hass") en poscosecha para dos municipios de Antioquia. Temas  Agrarios. 19(1):32-47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755126&pid=S0123-4226201700010001200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   23. MONTES, R.T. 2009.  Diversidad de compuestos qu&iacute;micos producidos por las plantas contra hongos  fitopat&oacute;genos: revisi&oacute;n. Rev. Mex. 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<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   25. PERSIN, Z.; STANA, K.; FOSTER,  T.;  VAN  DAM, J.; BOERIU, C.; NAVARD, P. 2011.  Challenges  and opportunities  in polysaccharides research  and technology: The EPNOE views for the  next decade in the areas  of materials,  food and  health  care.  Carb. Polym. 84(1):22-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755132&pid=S0123-4226201700010001200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   26. PLAZA,  L.; S&Aacute;NCHEZ. M.; DE PASCUAL, T.;  DE ANCOS, B.; CANO, M. 2009.  Fatty acids,  sterols,  and antioxidant activity in minimally processed avocados  during refrigerated  storage.  J. Agricul. Food  Chem. 57(8):3204-3209.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755134&pid=S0123-4226201700010001200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  27. PRANOTO, Y.;  RAKSHIT, S.;  SALOKHE, V.  2005.  Enhancing  antimicrobial  activity of chitosan   films by incorporating  garlic oil, potassium sorbate  and nisin. LWT- Food Sci. Technol. 38:859-865.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755136&pid=S0123-4226201700010001200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   28. RODR&Iacute;GUEZ, R.; SCHOBITZ, R.E. 2009  Pel&iacute;cula antimicrobiana  a base  de prote&iacute;na  de suero  l&aacute;cteo,  incorporada con  bacterias  l&aacute;cticas  como  controlador de <i>Listeria monocytogenes</i>, aplicada  sobre  salm&oacute;n  ahumado. Biotecnol.  Sec.  Agrop. Agroind. 7(2):49-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755138&pid=S0123-4226201700010001200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   29. SALUNKE, D.; BOUN, H.; REDDY, N. 1991. Storage processing  and  nutritional  quality of fruits and  vegetables. Boston, MA. USA, CRC Press Inc. p.156-161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755140&pid=S0123-4226201700010001200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   30. SAUCEDO, S.; ROJAS, R.; AGUILERA, A.; SAENZ, G.; DE LA GARZA, E.; JASSO, D.; AGUILAR, C. 2009. Edible film based  on candelilla wax to improve the shelf life and  quality of avocado.  Food  Res. Int. 42:511-515.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755142&pid=S0123-4226201700010001200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   31. SHAKERI, A.; SAHEBKAR, A.; JAVADI, B. 2016.  Melissa officinalis L. - A review of its traditional uses,  phytochemistry and pharmacology. J. Ethnoph.  188:204-228.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755144&pid=S0123-4226201700010001200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   32. SEYDIM,  A.; SARIKUS, G. 2006.  Antimicrobial activity of whey protein based  edible films incorporated with oregano, rosemary  and  garlic  essential  oils.  Food Res. Int. 39:639-644.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755146&pid=S0123-4226201700010001200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   33. YANG,  L.; PAULSON,  A. 2000.  Mechanical  and  water vapor barrier properties  of edible gellan films. Food Res. Int. 33(7):563-570.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755148&pid=S0123-4226201700010001200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   34. YABRUDY, J.  2012.  El Aguacate  en Colombia:  Estudio de caso de los Montes de Mar&iacute;a, en el Caribe colombiano.  Banco  de  la Rep&uacute;blica  - Cartagena. 171:6-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3755150&pid=S0123-4226201700010001200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Recibido: Diciembre 15 de 2016  Aceptado: Abril 24 de 2017</p>     <p>     <p align="center"><a rel="license" href="http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/"><img alt="Licencia Creative Commons" style="border-width:0" src="https://i.creativecommons.org/l/by-nc/4.0/88x31.png" /></a><br /><span xmlns:dct="http://purl.org/dc/terms/" href="http://purl.org/dc/dcmitype/Text" property="dct:title" rel="dct:type">Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgaci&oacute;n Cient&iacute;fica </span> por <a xmlns:cc="http://creativecommons.org/ns#" href="http://www.udca.edu.co/revista-actualidad-divulgacion-cientifica-edicion-actual/" property="cc:attributionName" rel="cc:attributionURL">Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales </a> se distribuye bajo una <a rel="license" href="http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/">Licencia Creative Commons Atribuci&oacute;n-NoComercial 4.0 Internacional</a>. </font>      ]]></body><back>
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