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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización molecular de cepas toxigénicas de Staphylococci aisladas de operarios de plantas de alimentos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. To use Randomly Amplified Polymorphic DNA (RAPD) to compare molecularly enterotoxigenic Staphylococci strains isolated from people working in food processing plants. Materials and methods. 31 Staphylococci enterotoxigenic isolates were used for extraction and quantification of DNA, followed by a general amplification cycle with the HLWL-74 and arbitrary oligonucleotides with visualization of the RAPD products by agarose gel electrophoresis. Results. The two oligonucleotides used generated 1 to 15 bands, two mayor lineages divided in three clusters (A, B, and C). The arbitrary oligonucleotide generated 10 polymorphic bands (66.66%), the HLWL-74 oligonucleotide generated 13 polymorphic bands (86.66%). Each oligonucleotide generated a different type of grouping with respect to each of the strains analyzed. This shows a high diversity between the human isolates of Staphylococci. Conclusion. A high molecular diversity was present amongst throat, nose and hands isolates from the same person, and among the analyzed isolates; this demonstrates a high molecular diversity in Staphylococci enterotoxigenic isolates.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <FONT FACE="VERDANA" SIZE="2">     <P ALIGN="CENTER">ART&Iacute;CULO ORIGINAL</P>     <P ALIGN="CENTER"><FONT SIZE="4">Caracterizaci&oacute;n molecular de cepas toxig&eacute;nicas de <I>Staphylococci</I> aisladas de operarios de plantas de alimentos</FONT></P>     <P ALIGN="CENTER"><FONT SIZE="3">Molecular characterization of toxigenic <I>Staphylococci </I>strains isolated from food handlers</FONT></P>     <P ALIGN="CENTER">MAR&Iacute;A CONSUELO VANEGAS,</P>     <P ALIGN="CENTER">AIDA JULIANA MART&Iacute;NEZ,</P>     <P ALIGN="CENTER">MAYRA VIVIANA MEDRANO</P>     <P>Laboratorio de Ecolog&iacute;a Microbiana y de Alimentos, Universidad de Los Andes, Bogot&aacute;, D. C., Colombia.</P>     <P>Fecha de recepci&oacute;n: 19/05/2006; fecha de aceptaci&oacute;n; 10/07/2006</P>      <P><B>Resumen</B></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><B>Objetivo. </B>Utilizar la t&eacute;cnica de amplificaci&oacute;n aleatoria de ADN polim&oacute;rfico ( <I>random amplification of polymorphic</I> DNA, RAPD para caracterizar molecularmente cepas de <I>Staphylococci</I> productoras de toxinas, aisladas de operarios de plantas de producci&oacute;n de alimentos. <B>Materiales y m&eacute;todos. </B>Se utilizaron 31 aislamientos enterotoxig&eacute;nicos de <I>Staphylococci</I> para la extracci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de ADN. Posteriormente, se realiz&oacute; un ciclo general de amplificaci&oacute;n utilizando los oligonucle&oacute;tidos HLWL-74 y arbitrario, seguido por la visualizaci&oacute;n de los productos de RAPD por electroforesis en gel de agarosa. <B>Resultados. </B>Para los dos oligonucle&oacute;tidos utilizados, se observaron de 1 a 15 bandas, dos linajes, divididos en tres conglomerados (A, B y C). El oligonucle&oacute;tido arbitrario gener&oacute; 10 bandas polim&oacute;rficas (66,66%) y el oligonucle&oacute;tido HLWL-74 arroj&oacute; 13 bandas altamente polim&oacute;rficas (86,66%). Cada oligonucle&oacute;tido mostr&oacute; un agrupamiento diferente de cada una de las cepas, lo cual muestra una alta diversidad de aislamientos de <I>Staphylococci</I> presentes en humanos. <B>Conclusiones. </B>Se present&oacute; una alta diversidad molecular en cuanto a aislamientos de garganta, nariz y manos de un mismo individuo, as&iacute; como en todos los aislamientos analizados, lo cual demuestra que las cepas enterotoxig&eacute;nicas de <I>Staphylococci</I> encontradas en los operarios analizados tienen una alta diversidad molecular. </P>     <P><B>Palabras clave: </B><I>Staphylococci</I>, RAPD, operarios, polimorfismos, toxinas.</P>     <P><B>Abstract</B></P>     <P>Objective. To use Randomly Amplified Polymorphic DNA (RAPD) to compare molecularly enterotoxigenic <I>Staphylococci</I> strains isolated from people working in food processing plants. <B>Materials and methods. </B>31 <I>Staphylococci</I> enterotoxigenic isolates were used for extraction and quantification of DNA, followed by a general amplification cycle with the HLWL-74 and arbitrary oligonucleotides with visualization of the RAPD products by agarose gel electrophoresis. <B>Results. </B>The two oligonucleotides used generated 1 to 15 bands, two mayor lineages divided in three clusters (A, B, and C). The arbitrary oligonucleotide generated 10 polymorphic bands (66.66%), the HLWL-74 oligonucleotide generated 13 polymorphic bands (86.66%). Each oligonucleotide generated a different type of grouping with respect to each of the strains analyzed. This shows a high diversity between the human isolates of <I>Staphylococci</I>. <B>Conclusion. </B>A high molecular diversity was present amongst throat, nose and hands isolates from the same person, and among the analyzed isolates; this demonstrates a high molecular diversity in <I>Staphylococci</I> enterotoxigenic isolates. <B>Key words: </B><I>Staphylococci</I>, RAPD, food handlers, polymorphisms, toxins.</P>     <P>Fecha de recepci&oacute;n: 19/05/2006; fecha de aceptaci&oacute;n; 10/07/2006</P>     <P><B>INTRODUCCI&Oacute;N</B></P>     <P>Diferentes especies de <I>Staphylococci</I>, tales como <I>S. aureus, S. intermedius, S. epidermidis, S. hyicus y S. warneri</I>, pueden producir enterotoxinas (1). La intoxicaci&oacute;n por S. aureus se ha considerado, a nivel mundial y en Colombia, como la segunda causa de enfermedades transmitidas por alimentos (ETA), despu&eacute;s de <I>Campylobacter o Salmonella</I> (2-5). Esta intoxicaci&oacute;n alimentaria se desarrolla pocas horas despu&eacute;s del consumo de alimentos o bebidas contaminadas con una o m&aacute;s de las toxinas de <I>Staphylococci</I> preformadas. La intoxicaci&oacute;n causa gastroenteritis con s&iacute;ntomas como n&aacute;useas, v&oacute;mito, dolor abdominal, con diarrea o sin ella, de recuperaci&oacute;n relativamente r&aacute;pida que var&iacute;a entre 1 a 3 d&iacute;as, y de baja mortalidad (6).</P>     <P>Por lo anterior, en la mayor&iacute;a de los pa&iacute;ses las personas no reportan la intoxicaci&oacute;n, lo cual dificulta la obtenci&oacute;n de datos epidemiol&oacute;gicos confiables de la incidencia de la misma (7). Adem&aacute;s, en pa&iacute;ses como Estados Unidos se ha estimado una incidencia anual de 185.000 casos con 1.750 hospitalizaciones (8). En el sector econ&oacute;mico y en el industrial es una de las m&aacute;s importantes a nivel mundial, con costos de $1,5 billones (2, 6, 8). Las toxinas preformadas de <I>Staphylococci</I> son prote&iacute;nas sencillas, codificadas en islas de patogenicidad, las cuales han sido designadas, de acuerdo con su antigenicidad, desde toxinas de <I>Staphylococci</I> preformadas tipo A a O. La mayor&iacute;a se han considerado como superant&iacute;genos y pueden ser producidas por S. aureus o por otras especies en alimentos ricos en prote&iacute;nas y grasas como jamones, quesos, s&aacute;ndwiches, etc. (6, 8).</P>     <P>Los alimentos pueden contaminarse por manejo inadecuado o malas condiciones de producci&oacute;n y almacenamiento, o ambas. La causa m&aacute;s frecuente de contaminaci&oacute;n es por los operarios que preparan y sirven los alimentos (manipuladores de alimentos) (3), debido a que <I>S. aureus</I> forma parte de la flora usual de la nasofaringe y piel sin causar necesariamente enfermedad en humanos (9).</P>     <P>Diferentes estudios epidemiol&oacute;gicos de <I>S. aureus</I> aislado de alimentos, humanos y de animales se han basado en t&eacute;cnicas fenot&iacute;picas como biotipificaci&oacute;n, tipificaci&oacute;n por bacteri&oacute;fagos, pruebas de sensibilidad o resistencia a antibi&oacute;ticos. Igualmente, otros autores han realizado estudios moleculares de diferentes cepas de <I>Staphylococci</I> utilizando t&eacute;cnicas como electroforesis en campo pulsado ( <I>pulsed field gel electrophoresis</I>, PFGE), relacionando los aislamientos ya sea de humanos o animales con el origen del brote y estableciendo agrupaciones genot&iacute;picas, con el fin de caracterizar las bacterias. Los RAPD han sido utilizado extensamente para diferenciar aislamientos de <I>Staphylococci</I> (10) a nivel mundial.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Sin embargo, en Colombia no existen datos sobre la variabilidad genot&iacute;pica de las cepas enterotoxig&eacute;nicas de <I>Staphylococci</I> (11), y no hay informaci&oacute;n de este m&eacute;todo en nuestro medio con respecto a los aislamientos de <I>Staphylococci</I> provenientes de humanos.</P>     <P>El objetivo del presente trabajo es la utilizaci&oacute;n de dos oligonucle&oacute;tidos (HLWL-74 y arbitrario) mediante la amplificaci&oacute;n aleatoria de AND polim&oacute;rfico (RAPD) para determinar diferencias genot&iacute;picas entre las cepas de <I>Staphylococci</I> productoras de toxinas, aisladas de personas que trabajan en manipulaci&oacute;n de alimentos, lo anterior con el fin de tener un tamizaje inicial en el conocimiento molecular de las cepas que est&aacute;n circulando en nuestro medio para que, en un futuro, sean caracterizadas molecularmente con t&eacute;cnicas m&aacute;s precisas. Los resultados de este trabajo son de gran importancia porque es el primer estudio en nuestro medio en el que se caracterizan molecularmente cepas toxig&eacute;nicas de <I>Staphylococci</I>, lo cual permite determinar la diversidad de las mismas y, a su vez, los resultados pueden ser utilizados para relacionar cepas causantes de brotes de intoxicaci&oacute;n alimentaria y cepas de humanos.</P>     <P><B>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</B></P>     <P>Aislamientos bacterianos</P>     <P>Se estudiaron 31 aislamientos de <I>Staphylococci</I>, de operarios de alimentos de diferentes plantas de producci&oacute;n de alimentos; 16 aisladas de nariz, 4 de manos y 11 de garganta. Los 31 aislamientos se caracterizaron toxig&eacute;nicamente en un estudio anterior para la producci&oacute;n de toxinas seA, seB, seC y seD (<A HREF="#tabla1">tabla 1</A>). Las bacterias se conservaron a -70°C hasta su an&aacute;lisis.</P>      <P ALIGN="CENTER"><A NAME="tabla1"></A><IMG SRC="/img/revistas/inf/v10n3/3a03t1.gif"></P>     <P><B>Extracci&oacute;n, cuantificaci&oacute;n y preservaci&oacute;n de ADN</B>     <P>Se realizaron cultivos en BHI (Oxoid) a 37°C por 18 horas y la extracci&oacute;n de ADN bacteriano se realiz&oacute; a partir de 1 ml del cultivo. Se utiliz&oacute; el estuche para aislamiento de ADN procari&oacute;tico ( ProDNA 2003, Corporaci&oacute;n Corpogen) y se siguieron las instrucciones del fabricante. El ADN extra&iacute;do se reconstituy&oacute; en 50 µl de soluci&oacute;n de resuspensi&oacute;n del estuche. Posteriormente, se cuantific&oacute; el ADN en el espectro-fot&oacute;metro ( Biomate 3, Thermospectronic, Rochester NY, USA) y se tomaron lecturas a 260, 280 y 320 nm para estimar la pureza y cantidad del ADN. Una vez establecida la cantidad de ADN y ajustado a concentraci&oacute;n de 20 ng/ul, se conserv&oacute; a -20°C hasta su an&aacute;lisis.</P>     <P><B>Condiciones de RAPD</B></P>     <P>La t&eacute;cnica fue aplicada para los 31 aislamientos. Se utilizaron dos oligonucle&oacute;tidos sintetizados por <I>Promega Corporation</I> de 10 pares de bases HLWL-74 (5'-ACG TAT CTG C-3') (12, 13, 14) y arbitrario de 10 pb (5'-GAG CTC GTG T-3') reportado por la Unidad de Servicio de &Aacute;cidos Nucleicos y Prote&iacute;nas de la <I>University of British Columbia</I> como est&aacute;ndar para reacciones de RAPD (3). El ciclo general con el cual se trabaj&oacute; fue estandarizado en el laboratorio, con base en protocolos previamente reportados en la literatura (15-18). Se llev&oacute; a cabo una denaturaci&oacute;n inicial, 94°C: 5 minutos, seguida por 30 ciclos de 94°C por 30 segundos, 37°C por 45 segundos, 72°C por 1 minuto y un ciclo final de 72°C por 5 minutos. Los ciclos de amplificaci&oacute;n se llevaron a cabo en un termociclador Gene CyclerTM (Bio-Rad Laboratories, Inc., United States of America).</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Se trabaj&oacute; un volumen final de 25 µl que conten&iacute;a 0,1 U/µl Taq polimerasa ( TucanTaq; Corporaci&oacute;n Corpogen); 3 mM MgCl2, 0,2 mM de cada dNTP ( Promega Corporation), 1,5 µM de iniciador y 105 ng de ADN. Cada reacci&oacute;n se realiz&oacute; dos veces para cada aislamiento y cada oligonucle&oacute;tido.</P>     <P>La visualizaci&oacute;n de los productos de amplificaci&oacute;n se hizo en geles de agarosa ( Bio-Rad Labora-tories, Inc., United States of America) al 0,7% preparados en tamp&oacute;n TBE 1X, se corrieron en c&aacute;maras Wide Mini y Wide Sub Cell GT ( <I>Bio-Rad Laboratories, Inc. United States of America</I>). Los geles se ti&ntilde;eron con bromuro de etidio, 10 mg/ml por 45 minutos. Todas las reacciones se prepararon con un control negativo (agua libre de nucleasa) y con marcador de peso molecular de ADN de fago digerido con EcoRI+ HindIII ( <I>Promega Corporation</I>). Los productos se visualizaron en Chemi-Doc XRS system ( <I>Bio-Rad Laboratories</I>). </P>     <P>Los datos se analizaron con el programa <I>Quantity One Chemi-Doc XRS system ( Bio-Rad Laboratories</I>).</P>     <P>Para cada oligonucle&oacute;tido se construy&oacute; una matriz binaria (1 = banda presente, 0 = banda ausente) teniendo en cuenta solamente las bandas m&aacute;s fuertes y de mayor resoluci&oacute;n. Finalmente, se construy&oacute; un dendrograma empleando el programa SYN-TAX 2000, con la herramienta de agrupaci&oacute;n jer&aacute;rquica algoritmo UPGMA y el coeficiente de correlaci&oacute;n de Jaccard para cada oligonucle&oacute;tido.</P>     <P><B>RESULTADOS</B></P>     <P>Los dos oligonucle&oacute;tidos generaron un n&uacute;mero de bandas considerables. Para la determinaci&oacute;n de la variabilidad gen&eacute;tica s&oacute;lo se tuvieron en cuenta aquellas bandas que ten&iacute;an mayor intensidad. El perfil de bandeo mostr&oacute; un rango de 1 a 15 bandas (<A HREF="#figura1">figura 1</A> y <A HREF="#figura2">figura 2</A>). El oligonucle&oacute;tido arbitrario gener&oacute; 10 bandas polim&oacute;rficas (66,66%) y el oligonucle&oacute;tido HLWL-74 gener&oacute; 13 bandas, lo cual determin&oacute; mayor polimorfismo (86,66%) entre las cepas. No se detectaron productos de amplificaci&oacute;n en los controles negativos.</P>      <P ALIGN="CENTER"><A NAME="figura1"></A><IMG SRC="/img/revistas/inf/v10n3/3a03i1.jpg"></P>      <P ALIGN="CENTER"><A NAME="figura2"></A><IMG SRC="/img/revistas/inf/v10n3/3a03i2.jpg"></P>     <P>Los dendrogramas, construidos para cada oligonucle&oacute;tido por medio del programa SYN-TAX, mostraron dos linajes (I, II), agrupados en tres grupos mayores (A-C) o seis subtipos (tipo1 a tipo 6) (<A HREF="#figura3">figuras 3</A> y <A HREF="#figura4">figura 4</A>).</P>      <P ALIGN="CENTER"><A NAME="figura3"></A><IMG SRC="/img/revistas/inf/v10n3/3a03i3.jpg"></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER"><A NAME="figura4"></A><IMG SRC="/img/revistas/inf/v10n3/3a03i4.jpg"></P>     <P>Los operarios portadores de cepas toxig&eacute;nicas seA se agruparon en los dos linajes para los dos oligonucle&oacute;tidos (HLWL-74 y arbitrario) (<A HREF="#figura3">figuras 3</A> y <A HREF="#figura4">figura 4</A>). Con el oligonucle&oacute;tido HLWL-74, tres de cinco aislamientos (11N4, 11N1, 11N3) seA del operario 2 (tabla 2) se agruparon en el linaje I, grupo A y en el linaje II conglomerado C para el oligonucle&oacute;tido arbitrario, al comparar los aislamientos de garganta del mismo operario 2 (11G1, 11G2, 11G3, 11G4 y 11G5) (<A HREF="#tabla1">tabla 1</A>) , se observ&oacute; que se agruparon en los linaje I y II grupo C para los oligonucle&oacute;tidos arbitrario y HLWL-74. Con respecto a los dem&aacute;s aislamientos de nariz, se observ&oacute; que, al utilizar los dos oligonucle&oacute;tidos, estas cepas estuvieron agrupadas en los dos linajes.</P>     <P>Se observ&oacute; que solamente los aislamientos del operario 3 (16N4, 16N5) (<A HREF="#tabla1">tabla 1</A>), el cual no era portador de cepas toxig&eacute;nicas, se agruparon en el conglomerado C al utilizar los dos oligonucle&oacute;tidos, hecho que no se observ&oacute; con los otros aislamientos.</P>     <P>En cuanto a los aislamientos de garganta del operario 6 (25G1, 25G2, 25G3 y 25G4) (<A HREF="#tabla1">tabla 1</A>), portador de enterotoxina seA, se observ&oacute; que estuvieron agrupados bajo el linaje II, conglomerado C, al utilizar el oligonucle&oacute;tido HLWL-74, y bajo el linaje I conglomerado A, con el oligonucle&oacute;tido arbitrario. Los aislamientos de garganta (10G2 y 14G1) correspondientes a los individuos 8 y 9 (<A HREF="#tabla1">tabla 1</A>) se agruparon en el linaje II, conglomerado C al utilizar los dos oligonucle&oacute;tidos; los aislamientos restantes se agruparon en los dos linajes. Los aislamientos de manos (10M1 y 06M2) (<A HREF="#tabla1">tabla 1</A>) estuvieron agrupados bajo el linaje I, conglomerado B, con un porcentaje de disimilitud de 63% con respecto a los dem&aacute;s aislamientos con el oligonucle&oacute;tido arbitrario y, en el linaje I, conglomerado A, con un porcentaje de disimilitud de 77% con el oligonucle&oacute;tido HLWL-74.</P>     <P>Los principales reservorios de <I>Staphylococi</I> son los canales de la nasofaringe y la piel. Constantemente, las empresas procesadoras de alimentos experimentan problemas asociados con el elevado n&uacute;mero de contaminaci&oacute;n a causa de este microorganismo, el cual puede generar gastroenteritis en los consumidores de estos alimentos originados por la producci&oacute;n de enterotoxinas termoestables (6, 19).  Para fines de control espec&iacute;fico de este microorganismo, es importante el conocimiento del origen de la contaminaci&oacute;n. Las t&eacute;cnicas moleculares como RAPD se han utilizado en otros estudios con el fin de demostrar la fuente de contaminaci&oacute;n y las rutas por las cuales el microorganismo es transmitido al alimento (20). De igual forma, la genotipificaci&oacute;n de <I>Staphylococci</I> se ha convertido, seg&uacute;n otros autores, en parte de sistemas de inspecci&oacute;n, para el estudio de brotes y la relaci&oacute;n entre cepas, ya que al igual que en Colombia la intoxicaci&oacute;n por este pat&oacute;geno no se reporta y no se conoce la relaci&oacute;n que existe entre los aislamientos de humanos, principales reservorios de <I>Staphylococci</I> (19, 20). Por esta raz&oacute;n, estudiamos 31 aislamientos de <I>Staphylococci</I> obtenidos de operarios manipuladores de alimentos con el fin de determinar las relaciones entre estos mediante la t&eacute;cnica de RAPD. Esta t&eacute;cnica, junto con la electroforesis en campo pulsado (PFGE), y el polimorfismo de longitud de fragmentos amplificados ( amplified fragment length polymorphism AFLP), entre otras, se ha utilizado en otros estudios de genotipificaci&oacute;n de <I>Staphylococci</I> en los cuales se ha reportado que esta t&eacute;cnica, aunque con menor poder discriminatorio que la t&eacute;cnica de PFGE, ha mostrado una buena sensibilidad y reproducibilidad, adem&aacute;s de ser menos costosa (6, 10).</P>     <P>Los perfiles moleculares obtenidos utilizando los dos oligonucle&oacute;tidos generaron bandas altamente reproducibles. Cada oligonucle&oacute;tido mostr&oacute; un agrupamiento para cada una de las cepas, lo cual demuestra una alta diversidad gen&eacute;tica entre los aislamientos de <I>Staphylococci</I> que forman parte de la flora usual en humanos. Los resultados indican que hubo un mayor porcentaje de polimorfismos (86,66%) con el oligonucle&oacute;tido HLWL-74 que con el oligonucle&oacute;tido arbitrario (66,66%). Por lo tanto, se sugiere para futuros estudios con RAPD utilizar el oligonucle&oacute;tido HLWL-74. Los resultados de la caracterizaci&oacute;n molecular de los aislamientos indican que un individuo puede ser portador de varios tipos de aislamientos diferentes; por ejemplo, las cepas de nariz de un mismo individuo productoras de toxina estuvieron agrupadas bajo el mismo conglomerado y presentaron patrones particulares de bandeo, al igual que los aislamientos de garganta no productores de toxina de este mismo individuo fueron agrupadas en un solo conglomerado. As&iacute; mismo, los aislamientos de garganta productores de toxina seA provenientes del individuo VI se agruparon bajo un mismo conglomerado, mientras que los dem&aacute;s aislamientos no se agruparon en un conglomerado exclusivo. Las cepas de manos se agruparon bajo el linaje I para ambos oligonucle&oacute;tidos con un porcentaje mayor a 60% de disimilitud.</P>     <P>Estos resultados sugieren que puede haber flujo gen&eacute;tico entre cepas de un mismo individuo, lo cual es muy importante, ya que estas cepas pueden generar diferentes tipos de brotes los cuales no est&aacute;n reportados epidemiol&oacute;gicamente en nuestro pa&iacute;s.</P>     <P>En conclusi&oacute;n, este estudio es un primer acercamiento a la tipificaci&oacute;n molecular de cepas de <I>Staphylococci</I> en humanos. La presencia de cepas aisladas de garganta, nariz y manos con diferentes tipos moleculares en un mismo individuo revela diversa informaci&oacute;n gen&eacute;tica que, eventualmente, puede dar origen a nuevas variantes de estas cepas debido al flujo gen&eacute;tico. Estas diferencias moleculares pueden reflejar caracter&iacute;sticas fisiol&oacute;gicas y ecol&oacute;gicas que pueden conferir ventajas adaptativas, las cuales finalmente podr&iacute;an traducirse en cepas productoras de enterotoxinas m&aacute;s resistentes a las condiciones ambientales.</P>     <P>La presencia de enterotoxina seA en algunos aislamientos revela que las personas saludables son un reservorio de cepas enterotoxig&eacute;nicas, lo cual puede ser un riesgo de salud p&uacute;blica, ya que estas cepas pueden pasar a los alimentos contamin&aacute;ndolos y generando brotes que, en la actualidad, son desconocidos por la ausencia de reportes epidemiol&oacute;gicos.</P>     <P>Para futuros estudios, se recomienda determinar la relaci&oacute;n entre cepas provenientes de humanos y de alimentos implicados en brotes con el fin de establecer relaciones gen&eacute;ticas m&aacute;s espec&iacute;ficas, lo cual ser&aacute; muy &uacute;til para estudiar la epidemiolog&iacute;a de intoxicaciones estafiloc&oacute;cicas en Colombia. Adem&aacute;s, se recomienda continuar con la implementaci&oacute;n de programas de salud ocupacional en las industrias con el prop&oacute;sito de tener especial inter&eacute;s en las personas que manipulan alimentos y, de esta forma, asegurar la inocuidad de los alimentos.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><B>Conflicto de intereses</B></P>     <P>Declaramos que la investigaci&oacute;n a partir de la cual se origin&oacute; este art&iacute;culo no tiene ning&uacute;n tipo de conflicto de inter&eacute;s.</P>     <P><B>Correspondencia: </B>Mar&iacute;a Consuelo Vanegas, Laboratorio de Ecolog&iacute;a Microbiana y de Alimentos, LEMA, Carrera 1 Nº 18A-10, J209, Bogot&aacute;, D. C. Colombia. Tel&eacute;fono: 339-4949, extensiones 2784/2792.</P>     <P><B>REFERENCIAS</B></P>     <!-- ref --><P>1. Escartin FE. Microbiolog&iacute;a e inocuidad de los alimentos. Universidad Aut&oacute;noma de Quer&eacute;taro; 2000. p. 322.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0123-9392200600030000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>2. Fueyo JM, Mart&iacute;n MC, Gonz&aacute;lez-Hevia MA, Mendoza MC. Enterotoxin production and DNA fingerprinting in <I>Staphylococcus aureus</I> isolated from human and food samples. Relations between genetic types and enterotoxins. Int J Food Microbiol 2001;67:139-45.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0123-9392200600030000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>3. Berrada H, Soriano JM, Ma&ntilde;es J, Pico Y. Real-time quantitative PCR of <I>Staphylococcus aureus</I> and application in restaurant meals. J Food Prot 2006;69:106-11.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0123-9392200600030000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>4. Inghan SC, Engel RA, Fanslau MA, Shoeller EL, Searls G, Buege DR, Zhu J. Fate of <I>Staphylococcus aureus</I> on vacuum-packaged ready-toeat meat products stored at 21°. J Food Prot 2005;68:1911-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0123-9392200600030000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>5. Bennett RW. <I>Staphylococcal enterotoxin</I> and its rapid identification in foods by enzyme-linked immunosorbent assay-based methodology. J Food Prot. 2005:1264-70.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0123-9392200600030000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>6. Mart&iacute;n MC, Fueyo JM, Gonz&aacute;lez-Hevia MA, Mendoza MC. Genetic procedures for identification of entertotoxigenic strains of <I>Staphylococcus aureus</I> from three poisoning outbreaks. Int J Food Microbiol 2004;94:279-86.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0123-9392200600030000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>7. Smyth DS, Keneddy J, Twohig J, Miajlovic H, Bolton D, Smyth CJ. <I>Staphylococcus aureus</I> isolates from Irish domestic refrigerators possess novel enterotoxin and enterotoxin-like genes and are clonal in nature. J Food Prot 2006;3:508-15.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0123-9392200600030000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>8. Pinto B, Chenoll E, Aznar R. Identification and typing of food-borne <I>Staphylococcus aureus</I> by PCR–based tecniques. Syst Appl Microbiol 2005;28:340-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0123-9392200600030000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>9. Fueyo J, Fueyo M, Mendoza C, &Aacute;lvarez MA, Mart&iacute;n MC. Relationships between toxin gene content and genetic background in nasal carried isolates of <I>Staphylococcus aureus</I> from Asturias, Spain. FEMS Microbiology Letters 2005;243:447-54.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0123-9392200600030000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>10. Reinoso E, Bettera S, Frigerio C, DiRenzo M, Calzolari A, Bogni C. RAPD-PCR analysis of <I>Staphylococcus aureus</I> strains isolated from bovine and human hosts. Microbiolo Res 2004;159:245-55.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0123-9392200600030000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>11. Perdomo AM. Estimaci&oacute;n de la incidencia de las enfermedades transmitidas por alimentos (ETA) en el periodo 1992-2003 (trabajo de grado). Bogot&aacute;: Pontificia Universidad Javeriana; 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0123-9392200600030000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>12. Lawrence L, Gilmour A. Characterization of <I>Listeria monocytogenes</I> isolated from poultry products and from the poultry-processing environment by random amplification of polymorphic ADN and multilocus enzyme electrophoresis. Int J Food Microbiol 1991;12: 14-70.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0123-9392200600030000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>13. Inoue S, Katagiri K, Terae M, Maruyama T. RAPD and actA genertyping of <I>Listeria monocytogenes</I> isolates from human listeriosis, the intestinal content of cows and beef. Microbiol Immunol 2001;45:127-33.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-9392200600030000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>14. Nucleic Acid Protein Service Unit, University of British Columbia (Canada). Consultado en abril de 2006, <A HREF="http://www.michaelsmith.ubc.ca/services/NAPS/Primer_Sets" TARGET="_BLANK">http://www.michaelsmith.ubc.ca/services/NAPS/Primer_Sets</A>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-9392200600030000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>15. Inoue S, Katagiri K, Terao M, Maruyama T. RAPD and actA genetyping of <I>Listeria monocytogenes</I> isolates from human listeriosis, the intestinal content of cows and beef. Microbiol Immunol 2001; 45: 127-33.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-9392200600030000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>16. Yoshida T, Takeuchi M, Sato M, Hirai K. Typing <I>Listeria monocytogenes</I> by Random Amplified Polymorphic DNA (RAPD) fingerprinting. J Vet Med Sci 1999;61:857-60.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-9392200600030000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>17. McPherson MJ, Moller SG. PCR: The basics. United Kingdom: BIOS Scientific Publishers Limited; 2000. p. 257-528.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0123-9392200600030000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>18. Lawrence LM, Harvey J, Gilmour A. Development of a random polymorphic ADN typing method for <I>Listeria monocytogenes</I>. Appl Environ Microbiol 1993;59:3117-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-9392200600030000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>19. Boerma JA, Clemens R, Brightwell G. Evaluation of molecular methods to determine enterotoxigenic status and molecular genotype of bovine, ovine, human and food isolates of <I>Staphylococcus aureus</I>. Int J Food Microbiol 2006;107:192-201.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-9392200600030000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>20. El-Huneidi W, Bdour S, Mahasneh A. Detection of enterotoxin genes seg, seh, sei, and sej and of a novel aroA genotype in Jordanian clinical isolates of <I>Staphylococcus aureus</I>. Diag Microbiol Infect Dis 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-9392200600030000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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