ARTICULO ORIGINAL
1 Grupo de Microbiología Molecular, Escuela de Microbiología, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia.
Facultad Nacional de Salud Pública, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia.
Fecha de recibido: 18/03/2008; Fecha de aceptación: 30/05/2008
Una alternativa de mejoramiento de las estrategias para el control de la tuberculosis, la ofrecen los métodos para la diferenciación de cepas de M. tuberculosis. La literatura evidencia que la técnica RFLP del segmento de inserción IS6110 está ampliamente estandarizada a nivel internacional y ha demostrado ser un buen instrumento para orientar estrategias locales de control.
Mediante una revisión exhaustiva de la literatura, el presente estudio pretende establecer si esta técnica molecular puede contribuir al diseño y refinamiento de estrategias para el control de la tuberculosis en Colombia.
En esta revisión se analizaron los resultados de los estudios publicados entre 1993 y 2008, realizados con la técnica en países en desarrollo, incluida Colombia. Los resultados sugieren que en el contexto colombiano esta técnica puede ofrecer información útil para los directores del programa de control de tuberculosis y, por tanto, debe seguir siendo realizada. Para establecer la periodicidad, las poblaciones blanco y otras condiciones óptimas para la realización de la técnica, se necesitan estudios de investigación operativa que incluyan análisis de costo-efectividad y costo-utilidad.
Palabras clave: Mycobacterium tuberculosis, RFLP-IS6110, control de tuberculosis, Colombia.
Abstract
Molecular biology methods offer an alternative for improving tuberculosis control strategies through M. tuberculosis strain typing techniques. The international literature shows that RFLP of the insertion element IS6110 is widely standardized internationally and has proved to be a useful tool to guide local tuberculosis control strategies.
By means of a thorough literature review, this study aimed to determine if this molecular based method could be useful for the design and refinement of tuberculosis control strategies in Colombia. Results from epidemiologic studies published between 1995 and 2008 which used this technique in developing countries, including Colombia, were analyzed.
Our results suggest that in the Colombian context this molecular technique can provide useful information for tuberculosis program control directors and therefore it should continue to be performed. However, to establish periodicity, target populations and other aspects related to optimal conditions for accurate RFLP performance, must await further evidence from operational research studies including cost effectiveness and cost utility analyses.
Key words: Mycobacterium tuberculosis, RFLP- IS6110, tuberculosis control, Colombia.
La Organización Mundial de la Salud (OMS) estima que un tercio de la población mundial está infectada con Mycobacterium tuberculosis, agente causal de la tuberculosis1. El mecanismo de transmisión más importante de M. tuberculosis es la vía aérea. La transmisión ocurre a través de partículas líquidas de 1 a 5 µm, diseminadas en el aire cuando un individuo con tuberculosis y baciloscopia positiva tose, habla o estornuda. A pesar de que estas partículas pueden contener uno o varios bacilos, sólo las formadas por condensación de otras de mayor tamaño, son las realmente infecciosas2.
Una vez ocurre la infección, sólo 10% de las personas desarrollan la enfermedad en alguna época de su vida1. Sin embargo, en el 2006 el número de casos nuevos de tuberculosis notificados a la OMS, fue de 9,2 millones (139 por 100.000 habitantes) y, a pesar de que existen medicamentos para tratar efectivamente la enfermedad, la cifra estimada de muertes correspondió a 1,7 millones3.
En Colombia, el perfil epidemiológico de la tuberculosis ubica la enfermedad como un problema prioritario para la salud pública del país: en el 2007, se reportaron 8.186 casos de tuberculosis 4 y en el 2008, con corte a la semana epidemiológica 20, se han reportado 2.322 casos nuevos de tuberculosis pulmonar 5. La tasa de incidencia estimada por la OMS es de 45 casos por 100.000 habitantes3, cifra que difiere de las tasas reportadas por las secretarías locales de salud: 75,9 en la Guajira, 56,8 en el Quindío, 50 en el Meta, 42,5 en Risaralda y 40 en El Valle6. Por otro lado, otras regiones presentan tasas de incidencia por debajo de la estimada por la OMS: 35 en Tolima, 30,8 en Norte de Santander, 30 en Antioquia, 25,9 en Santander, 19 en Caldas, 9,7 en Bolívar, 32 a 37 en Barranquilla, 25,7 en Santa Marta, 16 a 17 en Cartagena y 14,5 en Bogotá6.
Lo anterior indica que, en Colombia, sigue transmitiéndose esta enfermedad y que, en realidad, las tasas reportadas serían mayores, teniendo en cuenta que en el país ha disminuido la búsqueda de los pacientes sintomáticos respiratorios7 y existen deficiencias en el seguimiento de los pacientes para la búsqueda de contactos6. Lo anterior agrava más el problema del retraso en el diagnóstico e inicio del tratamiento oportuno8, situación que se está presentando debido a la descentralización de los programas de salud pública, que ha dificultado la instauración de los procesos técnicos para el control de la tuberculosis.
Además, la estructura del actual sistema general de seguridad en salud ha conducido a una falta de coordinación entre los diferentes estamentos del sistema de salud que han ido en deterioro del control efectivo de la tuberculosis. En Colombia existen unas guías y un esquema de tratamiento para el control de la tuberculosis, pero su puesta en marcha es compleja y su eficacia real muy limitada para lograr una captación temprana de los casos bacilíferos y, por tanto, transmisores de M. tuberculosis9-11. Un individuo bacilífero infecta entre 10 y 15 personas por año; de ahí la importancia de detectarlos oportunamente para brindarles el tratamiento adecuado, cuyos objetivos son la curación del enfermo de tuberculosis y cortar la cadena de transmisión de M. tuberculosis12.
Para el programa de control de la tuberculosis13, sería de utilidad conocer en qué medida se está logrando impactar la transmisión. Esto implicaría conocer la proporción de los casos que se presentan entre los convivientes (contactos) y cuántos de estos casos se deben a la transmisión reciente por el caso índice o son producto de una reactivación endógena. Con la microbiología tradicional de las micobacterias basada en cultivo y microscopía14, no es posible diferenciar la enfermedad de tuberculosis por transmisión reciente de una patología por reactivación de una infección latente. Esta información es importante para identificar los contextos en que no se está logrando cortar la cadena de transmisión de M. tuberculosis en una determinada población15,16. Una alternativa promisoria para identificar esta circunstancia surge de la biología molecular con el desarrollo de métodos para la diferenciación de cepas de M. tuberculosis. Entre estos métodos está el análisis del polimorfismo de longitud de los fragmentos de restricción (restriction fragment length polymorphism, RFLP) que usa como sitios blanco las secuencias de inserción IS611017.
Se han descrito tres áreas principales de investigación aplicando y estandarizando la técnica:
1) estudio de la transmisión de M. tuberculosis en las comunidades más susceptibles,
2) transmisión del bacilo en hospitales y
]]> 3) tuberculosis asociada a la coinfección con el VIH18.Sin embargo, si bien la técnica ha sido internacionalmente validada y estandarizada 17, los países en los que se ha demostrado su utilidad han sido principalmente naciones industrializadas19-23 con situaciones específicas habitualmente muy diferentes a las colombianas que, además, pueden afectar el grado de aplicabilidad de la técnica en nuestro país. Lo anterior reclama un análisis cuidadoso de la utilidad de este tipo de tecnologías para proponer intervenciones en enfermedades de interés en salud pública. Por esta razón, el objetivo de este trabajo fue determinar en qué medida puede contribuir el estudio de los RFLP del IS6110 como apoyo a los programas de control de la tuberculosis en Colombia.
Huellas generadas con el RFLP del IS6110
Al comparar las huellas del RFLP con la información epidemiológica, se puede diferenciar la tuberculosis producida por una infección reciente de la debida a una reactivación endógena con base en dos premisas que se ilustran en la tabla 1.tabla 1a.
Es así como:
1) se espera que los aislamientos de pacientes con tuberculosis sin relación epidemiológica presenten una amplia variabilidad en sus genotipos, porque se estima que provienen de infecciones antiguas adquiridas con cepas diferentes;
]]> 2) se espera que los genotipos de aislamientos de pacientes con alguna relación epidemiológica sean idénticos o similares (variación en una sola banda) por ser el resultado de una transmisión reciente de M. tuberculosis (24,25).Los aislamientos de pacientes (dos o más) que presentan patrones de RFLP idénticos o similares se agrupan en un mismo grupo clonal, conocido en la literatura anglosajona como cluster (conglomerado)26. El porcentaje de agrupamiento es definido por varios autores con base en la proporción de aislamientos que presentan 100% de similitud con otro(s)27. Sin embargo, se han reportado situaciones de pacientes con nexos epidemiológicos comprobados que presentan similitudes de 70% o mayores28 y de 90% o mayores29, con pequeñas diferencias en sus patrones de RFLP, por ejemplo, la presencia o ausencia de una banda30-35. Lo anterior sugiere que el criterio para definir el nivel de similitud aceptado para la conformación de un conglomerado puede variar en la medida que exista mayor conocimiento de las poblaciones bacterianas en los contextos específicos.
Ventajas y limitaciones de la técnica de RFLP del IS6110
La principal ventaja de este método es que cuenta con un protocolo estandarizado internacionalmente17, lo cual facilita la comparación de los datos producidos en laboratorios a través del mundo.
La técnica implica:
1) cultivo abundante de M. tuberculosis (aproximadamente, 4 a 8 semanas);
2) extracción y purificación del ADN del cultivo positivo;
3) digestión con la enzima de restricción PvuII la cual ha sido recomendada porque corta la secuencia IS6110 una sola vez;
4) electroforesis, incluyendo en cada gel la cepa de referencia de M. tuberculosis;
5) transferencia del ADN a una membrana de nitrocelulosa (Southern Blot);
]]> 6) hibridación con sonda (de 246 pares de bases) complementaria al IS6110 y marcada con peroxidasa para detección por quimioluminiscencia, y7) análisis del grado de similitud de los patrones obtenidos17.
Una de las limitaciones de la técnica está dada por el número de copias del IS6110; una relación clonal entre cepas de M. tuberculosis no puede ser inferida cuando las cepas poseen copias únicas o un bajo número (menor de 5) de copias del marcador IS6110.
Frente a esta situación, las cepas presentan un grado limitado de polimorfismo y el método no se considera discriminador36-38. Por esta razón, es aconsejable utilizar métodos complementarios con otros marcadores, como el spoligotyping que utiliza el locus DR39, el MIRU o ambos, que permite categorizar el número y el tamaño de las secuencias VNTR40. Otra desventaja importante de la técnica es que utiliza ADN genómico, y requiere cultivos abundantes del M. tuberculosis y largos períodos de preparación antes de arrojar resultados. Este requisito técnico también limita la aplicabilidad de la técnica pues está restringida a muestras fácilmente cultivables36-38.
En cuanto a las ventajas y limitaciones del método ya descritas, existen publicaciones en las que se describen aspectos prácticos de la aplicación de la técnica de RFLP del IS6110 en países con bajo desarrollo tecnológico, los cuales fueron tenidos en cuenta para el análisis del presente estudio.
Materiales y métodos
Búsqueda bibliográfica.Adoptando algunas recomendaciones de la metodología descrita para la realización de revisiones sistemáticas, se realizó una búsqueda bibliográfica exhaustiva de los estudios realizados con el RFLP del IS6110 y que fueron publicados entre 1995 y 2008 inclusive (tabla 2, tabla 2a). Se utilizaron diferentes bases de datos electrónicas y se definieron varias palabras clave y combinaciones de ellas. La búsqueda electrónica arrojó un total de 697 estudios y, previa remoción de los artículos duplicados, se incluyeron en el estudio 343.
]]>
Además, se realizó una búsqueda de las publicaciones con estadísticas y análisis epidemiológicos de la situación de la tuberculosis a nivel mundial y nacional, para identificar los niveles de necesidad del diseño de nuevas estrategias de apoyo a los programas de control. De manera similar, se buscaron y recopilaron las guías y recomendaciones para el control de la tuberculosis nacionales e internacionales (tabla 2, tabla 2a).
Recopilación del material. Todo el material encontrado en las búsquedas bibliográficas se recopiló en documentos escritos en carpetas, en archivo formato PDF o contenido en Word, versión 2003, como artículos en texto completo y resúmenes. A través del proceso de búsqueda y revisión bibliográfica, se diseñaron y construyeron dos bases de datos en Access, versión 2003. Los datos que se tuvieron en cuenta para la elaboración de las tablas en Access, se presentan en la tabla 3, tabla 3a.
La primera base de datos contiene las publicaciones en las cuales se usaba la técnica de interés, y la segunda, la literatura con estadísticas e indicadores epidemiológicos, además de guías y recomendaciones. Luego de cada búsqueda se revisaron las referencias de interés citadas en las publicaciones recopiladas y se identificó su disponibilidad en las bases de datos para identificar y agregar artículos faltantes.
Se encontraron 343 publicaciones que usaban la técnica y se clasificaron, así: 264 artículos originales, 38 artículos de revisión, una revisión sistemática, 28 resúmenes y 13 publicaciones se encontraron clasificadas como tipo A. En este grupo A se ubicaron: las actualizaciones, las comunicaciones cortas, las discusiones y los artículos de opinión (perspectivas). Toda la literatura recopilada se clasificó, además, según el año de publicación, separándolas por tipo de publicación. Con respecto a las estadísticas, guías y recomendaciones, 38 publicaciones también se clasificaron por año y se separaron por tipo de publicación.
Literatura seleccionada para el análisis. Para la selección de la literatura se elaboraron unos criterios de inclusión, teniendo en cuenta los parámetros que se muestran en la tabla 4, tabla 4a. Cabe aclarar que, con respecto a las tasas de tuberculosis y el tipo de población, para la selección de la literatura se tuvo en cuenta el cumplimiento de los dos o uno de estos criterios.
]]>
Guías y materiales para el análisis crítico. Para la realización de una lectura y un análisis crítico de la literatura seleccionada, se elaboró una guía (tabla 5, tabla 5a) teniendo en cuenta aspectos relevantes que deben ser revisados para determinar la calidad y utilidad de las publicaciones41,42.
]]>
Resultados y discusión del análisis crítico
De las 343 publicaciones con el uso de la técnica, sólo 14,3% (49 artículos) cumplieron con los criterios de inclusión descritos en la tabla 4, tabla 4a. La gran mayoría de las investigaciones que referían el uso de RFLP del IS6110 se realizaron en poblaciones de países desarrollados. Se encontró que todas las investigaciones seleccionadas cumplieron los ítems 1 y 2 (tabla 3, tabla 3a) en cuanto a claridad de la pregunta de investigación, objetivos e hipótesis de trabajo. Además, los estudios analizados aplicaron la técnica siguiendo las recomendaciones descritas en el protocolo estandarizado internacionalmente17, lo cual facilitó el análisis del tercer punto. Así mismo, el personal que desarrolló los estudios cuenta con trayectoria de trabajo en el tema; esto se deduce por las publicaciones realizadas por estos investigadores y sus colaboradores. Por otro lado, las credenciales que aparecen en las publicaciones indican que el personal involucrado en el desarrollo de los estudios tenía conocimientos básicos sobre biología molecular y epidemiología, importantes para un buen análisis de los resultados.
De acuerdo con el uso de la técnica, la mayoría de los estudios se realizaron para conocer las dinámicas de transmisión de M. tuberculosis en una determinada población (39 de los de los 49 artículos). Los hallazgos recopilados en la tabla 6, tabla 6a además de mostrar los patrones de RFLP, muestran la importancia de aproximarse a establecer el porcentaje de casos que ocurren como consecuencia de transmisión reciente, esclareciendo así el comportamiento de la epidemiología de la tuberculosis y el contraste con el antiguo supuesto de que la mayor parte de los casos resultan de reactivaciones endógenas26,43. El porcentaje de agrupamiento fue definido por la mayoría de los investigadores como aquellos aislamientos que presentan total similitud27,34,44-60. Sin embargo, en otros estudios, los autores definieron como criterio de agrupamiento los aislamientos que presentan porcentajes diferentes y superiores a 60% (tabla 6)61-65, tabla 6a.
Adaptado de: Mandell GL, Bennett JE, Dolin R. Enfermedades Infecciosas, principios y prácticas. 5ª edición, Vol I. Editorial Médica Panamericana; 2000. p. 211.
También se reportaron pacientes con nexos epidemiológicos comprobados con la ausencia o presencia de una banda adicional72,74. Los porcentajes de agrupamiento han sido empleados para estimar el grado de transmisión activa en una población45,50-52,58,64,71,75,78,79y parecen tener más importancia en poblaciones de alto riesgo como la de los hoteles80,81 y los hospitales31,50,52,76 donde existe mayor probabilidad de que individuos susceptibles se infecten con M. tuberculosis y desarrollen la enfermedad rápidamente tras adquirir la infección con el bacilo.
Lo anterior ha sido posible gracias a la descripción y aplicación de técnicas moleculares como RFLP del IS6110, que facilitan la diferenciación entre las reactivaciones endógenas y los casos que resultan de una transmisión activa del bacilo82. Estas técnicas cobran mayor utilidad aún en la descripción y el análisis de datos provenientes de focos epidémicos. Por ejemplo, P. Godfrey y colaboradores encontraron que, a pesar de que la terapia antituberculosa curaba el 86% de los casos nuevos de tuberculosis en Sudáfrica, el 67% de 371 aislamientos del bacilo procedentes de una comunidad de mineros estaban agrupados, lo que sugería que esa proporción de los casos adquirió la enfermedad por transmisión reciente, específicamente por reinfección51.
En Colombia, se han publicado seis estudios con el uso del RFLP del IS6110. Cuatro estudios se realizaron en regiones particulares: Quindío79, Guaviare75, Buenaventura54 y Bogotá61.
]]> Otro estudio multicéntrico se realizó en 14 regiones de Colombia64 y un sexto estudio se hizo en un área del Caribe colombiano63. El hecho de haber encontrado reiteradamente elevado el porcentaje de aislamientos de M. tuberculosis en grupos clonales, 74%, 60% y 81% (tabla 6, tabla 6a), en los estudios realizados en Quindío79, Guaviare75 y el multicéntrico64, respectivamente, permite afirmar que las herramientas del programa de control no están siendo efectivas, pues se demuestra que existe una diseminación activa del bacilo y, por tanto, no se está logrando cortar la cadena de transmisión.Por otro lado, en el estudio realizado en Bogotá, el bajo porcentaje de agrupamiento (26%, tabla 6, tabla 6a) sugiere que la mayoría de los casos de tuberculosis en la ciudad se están presentando como consecuencia de una reactivación endógena de infecciones adquiridas con cepas distintas y no son atribuibles a una transmisión activa de M. tuberculosis61. Sin embargo, esta situación podría haberse presentando debido a la disminución de la búsqueda de sintomáticos respiratorios7 y las deficiencias en el seguimiento de los pacientes para la búsqueda de contactos6. En el caso de Buenaventura, el estudio molecular de un aparente brote permitió identificar la causa del mismo entre las fallas administrativas del programa local de control de tuberculosis54. Por esta razón, para medir el progreso de las medidas de control de tuberculosis en Colombia, particularmente respecto al impacto sobre la transmisión, la realización periódica de estudios con técnicas moleculares como el análisis RFLP del IS6110 sería de gran utilidad.
El uso de esta técnica puede servir, no sólo para identificar prioridades para los programas locales de control, sino también, para explicar las dinámicas de transmisión a escala global, como ocurrió en Brasil, donde Suffys y colaboradores encontraron que 15% de 219 cepas brasileñas compartían patrones RFLP idénticos con aislamientos de otros países, como Argentina, Zambia, Sudáfrica e India, entre otros65. Investigaciones como éstas demuestran la gran utilidad que tiene la epidemiología molecular para la vigilancia epidemiológica de enfermedades transmisibles en un mundo globalizado. Cabe aclarar que Roscani y colaboradores sugieren, para la realización de este tipo de estudios, velar por obtener tamaños de muestra adecuados, porque en el estudio mencionado anteriormente el tamaño de la muestra limitó mucho la extrapolación de los hallazgos, lo cual afecta su validez externa48.
Por otro lado, para mejorar el control de la tuberculosis en Colombia, sería útil disponer de esta técnica para emprender investigaciones que, además de identificar la proporción de casos debido a transmisión activa35,60, permitan caracterizar brotes para controlarlos rápida y eficazmente, y evitar dar respuestas inadecuadas que pueden hacer más daño que bien. Esto lo sugieren las experiencias de países como Argentina78,80, Brasil83, Cuba52 y México53, donde los hallazgos de genotipificación micobacteriana, relacionados con los datos epidemiológicos, permitieron confirmar la presencia de brotes e identificar casos primarios en instituciones y lugares donde se presentan factores de riesgo para la transmisión de M. tuberculosis.
El uso del RFLP del IS6110 también ha permitido identificar situaciones en los cuales la transmisión reciente progresa rápidamente a enfermedad tuberculosa, lo cual afecta a cualquier persona sin importar su edad, sexo o estado de coinfección con el VIH47,49. Estas situaciones requieren cambios inmediatos con reestructuración de las estrategias de control.
En otros casos, también se han encontrado asociaciones de la tuberculosis con factores de riesgo específicos. En Brasil, por ejemplo, Ferrazoli y colaboradores sugirieron que la proporción de casos por transmisión reciente (tabla 6, tabla 6a) podía ser mayor en los individuos positivos para VIH (38%)74. Además, en Argentina, Alito y colaboradores encontraron que 11 aislamientos que compartieron patrones de RFLP idénticos, fueron positivos por VIH y compartieron el mismo perfil de resistencia a medicamentos antituberculosos31. Estas investigaciones demuestran la utilidad que tiene la técnica de RFLP para dilucidar los problemas que puede traer consigo la coinfección VIH/M. tuberculosis, como es la transmisión de cepas multirresistentes. En Colombia, Castiblanco y Ribón, mediante métodos microbiológicos y epidemiológicos convencionales, hallaron que en 65 de 149 casos de coinfección VIH/M. tuberculosis no se identificó la posible fuente de infección y que en cuatro casos el posible foco de transmisión fue hospitalario84. En estos casos, en los cuales no es posible identificar las fuentes de infección con métodos convencionales, los estudios que utilizan métodos moleculares, tienen un gran valor epidemiológico pues la identificación de las fuentes de infección permite enfocar las estrategias de control en puntos clave. Lo anterior es posible porque se espera que los aislamientos de pacientes infectados por una fuente común tengan huellas idénticas, mientras que los aislamientos que provienen de fuentes diferentes exhiben patrones distintos26. Además, con la identificación de estas fuentes de infección se podrían mejorar los puntos de partida para las investigaciones de contactos, uno de los cuatro pilares fundamentales para el control de la tuberculosis.
Otro factor que cada vez amenaza más el control de la tuberculosis es el fenómeno de multirresistencia a los medicamentos antituberculosos, habitualmente consecuencia de tratamientos interrumpidos. Entre otras causas de este fenómeno están el deterioro de los programas de control de la tuberculosis y la transmisión inicial de cepas resistentes85) Se ha encontrado diseminación de patrones de multirresistencia en Argentina71, Brasil44,74, Honduras77, México34, Perú72 y Venezuela59.
En Colombia, Miranda y colaboradores, encontraron cepas multirresistentes (6,7%) aisladas de pacientes con tratamiento previo63. Por otra parte, Laserson y colaboradores, con el uso del RFLP del IS6110, evidenciaron que en Buenaventura se están transmitiendo cepas multirresistentes, particularmente cepas pertenecientes al genotipo Beijing, que está relacionado con la cepa resistente W54 y se reconoce como uno de los genotipos más virulentos descritos86.
En conjunto, estos estudios demuestran la gran utilidad que puede tener la información generada con las huellas RFLP para establecer si se están transmitiendo cepas multirresistentes, o por el contrario, si la presencia de este fenómeno puede atribuirse a fallas en el tratamiento73 o a coinfecciones con VIH, como ocurrió en el estudio realizado por de Moura y colaboradores44.
En países en desarrollo se ha sugerido la realización de estudios para caracterizar cepas multirresistentes87, lo cual es de gran importancia para el control de la tuberculosis, debido a que los casos con tuberculosis multirresistente no responden a los esquemas de medicamentos convencionales y la transmisión de una cepa de este tipo comúnmente lleva a aumentar, no sólo las cifras de morbilidad sino también de mortalidad por tuberculosis. En Colombia, sería de mucha utilidad evaluar aislamientos con diversos patrones de susceptibilidad a medicamentos antitubercu-losos para determinar el problema de tuberculosis multirresistente mediante una estrategia de vigilancia detallada que permita conocer si existe diseminación de cepas resistentes a uno o varios medicamentos.
]]> Otra área en la que se realizaron investigaciones con el uso del RFLP del IS6110 fue la de detección de contaminación cruzada en los laboratorios76,88,89. Situación que, como en Cuba88 y Uruguay89, puede conllevar a la presencia de falsos positivos por la contaminación cruzada de las muestras durante los procedimientos microbiológicos. Varela y colaboradores89 encontraron que tres cepas aisladas de pacientes diferentes sin ninguna relación epidemiológica, tuvieron el mismo patrón RFLP y, debido a que fueron procesadas el mismo día, por el mismo profesional y en la misma cabina de bioseguridad, se confirmó la sospecha de contaminación.Esta situación podría presentarse en Colombia, por lo que sería de gran utilidad realizar este tipo de estudios con el fin de evaluar la calidad de los procedimientos técnicos descritos en el programa de control de la tuberculosis. Sin embargo, en países en desarrollo como Colombia, donde la tuberculosis es una enfermedad de interés en salud pública y los recursos son escasos, la aplicación de esta técnica requiere mayor eficiencia en el estudio requerido para su estandarización.
Este estudio concluye que sí es conveniente seguir utilizando la técnica de RFLP del IS6110 para mejorar y evaluar el control de la tuberculosis en Colombia. No obstante, no se anticipa que el uso de esta técnica produzca avances significativos en el control de la tuberculosis, si antes no se obtiene un buen nivel de interacción entre los investigadores que están en capacidad de realizar la técnica y los funcionarios encargados de los programas de control.
Finalmente, se ha descrito que el costo aproximado de la técnica es de US$ 1,579 a US$ 5,090 por muestra y, si se consideran las utilidades de su aplicación, valdría la pena la inversión. Sin embargo, existe la necesidad de realizar estudios de costo-efectividad que permitan determinar si los beneficios potenciales justifican los costos de la realización de investigaciones en las que se aplica esta técnica.
En un ámbito de recursos limitados, este tipo de estudios ofrecen criterios económicos que facilitan la toma de decisiones para la distribución de recursos destinados a las actividades de control de esta patología, entre otras. Además, sería importante realizar estudios de comparación de técnicas moleculares, teniendo en cuenta que, en los países en vías de desarrollo como Colombia, se ha hecho uso de técnicas
27,31,51,58,59,62,66,67,69,87 como spoligotyping , MIRU-VNTR58 y DRE-PCR 35,49,65,89, para tipificar los aislamientos que presentan un bajo número de copias del marcador IS6110.
Correspondencia: Doris Amanda Rosero, Grupo de Microbiología Molecular, Escuela de Microbiología, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia. roserodoris@hotmail.com
Referencias
1. World Health Organization. Nota descriptiva OMS N°104. Revisada en marzo de 2007. Internet. Disponible en: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs104/es es/print.html. Fecha de consulta: 3 de junio de 2008. [ Links ]
2. Bermejo MC, Clavera I, Michel FJ, Marín B. Epidemiología de la tuberculosis. An Sist Sanit Navar. 2007;30(Supl.2):7-19. [ Links ]
3. World Health Organization. Global tuberculosis control: surveillance, planning, financing. WHO report 2008. WHO/ HTM/TB/2008.393. [ Links ]
4. Instituto Nacional de Salud, Subdirección de Vigilancia y Control en Salud Pública, Sistema de Vigilancia en Salud Pública - SIVIGILA. Casos totales en la semana epidemiológica 52 y acumulados del año. Internet. Disponible en: www.ins.gov.co. Fecha de consulta: 3 de junio de 2008. [ Links ]
5. Instituto Nacional de Salud, Subdirección de Vigilancia y Control en Salud Pública, Sistema de Vigilancia en Salud Pública - SIVIGILA. Casos totales en la semana epidemiológica 20 y acumulados del año 2008. [Internet]. Disponible en: www.ins.gov.co Fecha de consulta: 3 de junio de 2008. [ Links ]
6. Hernández C, Perilla S. Es preocupante y alto el nivel de tuberculosis que se padece en Colombia. Publicado: 4 de mayo de 2008. Internet. Disponible en: http://www.eltiempo.com/salud/noticias/ARTICULO-PRINTER_FRIENDLY-PRINTER_FRIENDLY-4139776.html. Fecha de consulta: 3 de junio de 2008. [ Links ]
7. Henao S, Sierra C, Sánchez E, Rodríguez A. Búsqueda de tuberculosis en pacientes sintomáticos respiratorios en cuatro hospitales de Bogotá D.C. Rev Salud Pública. 2007;9:408-19. [ Links ]
8. Cáceres F, Orozco L. Demora en el diagnóstico de tuberculosis pulmonar en una región de Colombia. Rev Salud Pública. 2008;10:94-104. [ Links ]
9. Arbeláez M, Beatriz M, Franco A, Restrepo R, Hincapié D, Blas E. Tuberculosis control and manager competition in Colombia. Int J Health Plann Mgmt. 2004;19:S25-43. [ Links ]
10. Carvajal R, Cabrera G, Mateus J. Efectos de la reforma en salud en las acciones de control de tuberculosis en el Valle del Cauca, Colombia. Biomédica. 2004;24(Supl.):138-48. [ Links ]
11. Carvajal R, Cabrera G, Mosquera J. Percepciones de los efectos de la implementación del Sistema General de Seguridad Social en Salud sobre las acciones de control de tuberculosis en el Valle del Cauca, Colombia. Colomb Med. 2004;35:179-84. [ Links ]
12. Robledo J, Tabón A. Fundamentos básicos de medicina. Microbiología de las infecciones humanas. Medellín: Corporación para Investigaciones Biológicas; 2007. p. 179-188. [ Links ]
13. Galvis V, Bustamante M, Sarmiento C. Guía de atención de la tuberculosis pulmonar y extrapulmonar. Ministerio de Salud. Dirección General de Promoción y Prevención, 2000. [ Links ]
14. Garzón M, Naranjo N, Sierra C, Llerena C, Orjuela D. Bacteriología del Mycobacterium tuberculosis y de micobacterias no tuberculosas. Manual de Procedimientos. Bogotá: Instituto Nacional de Salud; 2001. [ Links ]
15. Caminero JA, Pena MJ, Campos-Herrero I, et al. Exogenous reinfection with tuberculosis on a european island with a moderate incidence of disease. Am J Resp Crit Care Med. 2001;163:717-20. [ Links ]
16. Nguyen LN, Gilbert GL, Marks GB. Molecular epidemiology of tuberculosis and recent developments in understanding the epidemiology of tuberculosis. Respirology. 2004;9:313-9. [ Links ]
17. Van Embden J, Cave M, Crawford J, et al. Strain identification of Mycobaterium tuberculosis by DNA fingerprinting: Recommendations for a standardized methodology. J Clin Microbiol. 1993;31:406-9. [ Links ]
18. Cohn L. The use of restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis for epidemiological studies of tuberculosis in developing countries. Int J Tuber Lung Dis. 1998;2:16-26. [ Links ]
19. López A, Lezcano M, Vitoria M, et al. Genotyping of Mycobacterium tuberculosis over two periods: a changing scenario for tuberculosis transmission. Int J Tuberc Lung Dis. 2007;11:1080-6. [ Links ]
20. Small PM, Hopewell PC, Singh SP, et al. The epidemiology of tuberculosis in San Francisco a population-based study using conventional and molecular methods. N Engl J Med. 1994;330:1703-9. [ Links ]
21. Drobniewski F, Gibson A, Ruddy M. Evaluation and utilization as a public health tool of a national molecular epidemiological tuberculosis outbreak Database within the United Kingdom from 1997 to 2001. J Clin Microbiol. 2003;41:1861-8. [ Links ]
22. Glynn JR, Yates MD, Crampin AC, et al. DNA fingerprint changes in tuberculosis: reinfection, evolution, or laboratory error? J Infect Dis. 2004;190:1158-66. [ Links ]
23. Alland D, Kalkut GE, Moss AR, et al. Transmission of tuberculosis in New York City. An analysis by DNA fingerprinting and conventional epidemiologic methods. N Engl J Med. 1994;330:1710-16. [ Links ]
24. Van Soolingen D, Hermans P. Epidemiology of tuberculosis by DNA fingerprinting. Eur Respir J. 1995;8(Suppl.20):649s-56s. [ Links ]
25. Van Soolingen D, Hermans P, de Hass P, Soll D, van Embden J. Ocurrence and stability of insertion sequences in Mycobacterium tuberculosis complex strains: evaluation of an insertion sequence-dependent DNA polymorphism as a tool in the epidemiology of tuberculosis. J Clin Microbiol. 1991;29:2578-86. [ Links ]
26. Glynn J, Bauer J, de Boer A, et al. Interpreting DNA fingerprint clusters of Mycobacterium tuberculosis. Int J Tuberc Lung Dis. 1999;3:1055-60. [ Links ]
27. Morcillo N, Zumarraga M, Imperiale B, et al. Tuberculosis transmission of predominant genotypes of Mycobacterium tuberculosis in Northern suburbs of Buenos Aires city region. Rev Argent Microbiol. 2007;39:145-50. [ Links ]
28. Richardson M, van Lill S W, van der Spuy GD, et al. Historic and recent events contribute to the disease dynamics of Beijinglike Mycobacterium tuberculosis isolates in a high incidence region. Int J Tuberc Lung Dis. 2002;6:1001-11. [ Links ]
29. Niemann S, Gerdes S, Ritcher E, Thielen H, Uden H, Diel R. Stability of IS6110 restriction fragment length polymorphism patterns of Mycobacterium tuberculosis strains in actual chains of transmission. J Clin Microbiol. 2000;38:2563-7. [ Links ]
30. Yeh R, Ponce A, Agasino C, et al. Stability of Mycobacterium tuberculosis DNA genotypes. J Infect Dis. 1998;177:1107-11. [ Links ]
31. Alito A, Morcillo N, Scipioni S, et al. The IS6110 restriction fragment length polymorphism in particular multidrugresistant Mycobacterium tuberculosis strains may evolve too fast for reliable use in outbreak investigation. J Clin Microbiol. 1999;37:788-91. [ Links ]
32. Cave M, Eisenach K, Templeton G, Salfinger M, Mazurek G, Bates J. Stability of DNA fingerprint pattern produced with IS6110 in strains of Mycobacterium tuberculosis. J Clin Microbiol. 1994;32:262-6. [ Links ]
33. Soini H, Pan X, Teeter L, Musser JM, Graviss EA. Transmission dynamics and molecular characterization of Mycobacterium tuberculosis isolates with low copy numbers of IS6110. J Clin Microbiol. 2001;39:217-21. [ Links ]
34. Yang Z, Rendon A, Flores A, et al. A clinic-based molecular epidemiologic study of tuberculosis in Monterrey, Mexico. Int J Tuberc Lung Dis. 2001;5:313-20. [ Links ]
35. Montoro E, Valdivia J, Cardoso S. Molecular fingerprinting of Mycobacterium tuberculosis isolates obtained in Havana, Cuba, by IS6110 restriction fragment length polymorphism analysis and by the double- repetitive-element PCR method. J Clin Microbiol. 1998;36:3099-102. [ Links ]
36. Kremer K, van Soolingen D, Frothingham R, et al. Comparasion of methods based on different molecular epidemiological markers for typing of Mycobacterium tuberculosis complex strains: interlaboratoty study of discriminatory power and reproducibility. J Clin Microbiol. 1999;37:2607-18. [ Links ]
37. Burgos M, Méndez J, Ribon W. Molecular epidemiology of tuberculosis: methodology and applications. Biomédica. 2004;24:188-201. [ Links ]
38. Barnes P, Cave M. Molecular epidemiology of tuberculosis. N Engl J Med. 2003;349:1149-56. [ Links ]
39. Kamerbeek J, Schouls L, Kolk A, et al. Simultaneous detection and strain differentiation of Mycobacterium tuberculosis for diagnosis and epidemiology. J Clin Microbiol. 1997;35:907-14. [ Links ]
40. Frothingham R, Meeker W. Genetic diversity in the Mycobacterium tuberculosis complex based on variable number tandem repeats. Microbiol. 1998;144:1189-96. [ Links ]
41. Manterola C, Pineda V, Vial M, Losada H. Revisión crítica de la literatura para artículos de terapia. Rev Chilena de Cirugía. 2004;56:604-9. [ Links ]
42. Gómez M, Danglot C, Velásquez L. Bases para la revisión crítica de artículos médicos. Rev Mexicana de Padiatría. 2001;68:152-9. [ Links ]
43. Iñigo J, Arce A, Chávez F, Palenque E, Burgoa M. Patrones de transmisión de la tuberculosis en un área sanitaria de Madrid. Rev Esp Salud Pública. 2003;77:541-51. [ Links ]
44. de Moura A, Gonçalves L, Izquierdo P, et al. Evaluation and genotyping of multidrug-resistant cases of tuberculosis in southern Brazil. Microbial Drug Resistance. 2006;12:186-91. [ Links ]
45. Palmero D, Ritacco V, Ambroggi M, et al. Tuberculosis multirresistente en pacientes con SIDA a comienzos del milenio. Med (Buenos Aires). 2006;66:399-404. [ Links ]
46. Capcha L, Urbina M, Vásquez L, et al. Perfiles genéticos (IS6110) y patrones de resistencia en aislamientos de M. tuberculosis de pacientes con tuberculosis pulmonar. Lima Sur, Perú. Rev Peru Med Exp Salud Pública. 2005;22:4-11. [ Links ]
47. Borges M, Izquierdo P, Gonçalves L, et al. Molecular analysis of Mycobacterium tuberculosis strains from an outpatient clinic in Porto Alegre, (RS). J Bras Pneumol. 2004;30:448-54. [ Links ]
48. Roscani A, Nogueira G, Barrison M, et al. IS6110 restriction fragment length polymorphism of Mycobacterium tuberculosis Isolated from patients with pulmonary tuberculosis in Campinas, Brazil. Evidence of intercontinental distribution of strains. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2003;98:655-8. [ Links ]
49. Dias I, Cardoso M, Araújo D, Suffys PN. Drug Resistance and genotypes of strains of Mycobacterium tuberculosis isolated from human immunodeficiency virusinfected and noninfected tuberculosis patients in Bauru, São Paulo, Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2002;97:1147-52. [ Links ]
50. Díaz R, Gómez RI, García N, Valdivia JA and van Soolingen D. Molecular epidemiological study on transmission of tuberculosis in a hospital for mentally handicapped patients in Havana, Cuba. J Hosp Infect. 2001;49:30-6. [ Links ]
51. Godfrey P, Sonnenberg P, Shearer S, et al. Tuberculosis control and molecular epidemiology in a South African gold-mining community. Lancet. 2000;356:1066-71. [ Links ]
52. Gómez R, Díaz R, García N y Valdivia J. Estudio epidemiológico-molecular de un brote de tuberculosis en el hospital psiquiátrico de la Habana. Rev Cubana Hig Epidemiol. 2000;38:201-9. [ Links ]
53. García M, Palacios M, Ponce A, et al. The role of core groups in transmitting Mycobacterium tuberculosis in a high prevalence community in Southern Mexico. Int J Tuberc Lung Dis. 2000;4:12-17. [ Links ]
54. Laserson K, Osorio L, Sheppard J, et al. Clinical and programmatic mismanagement rather than community outbreak as the cause of chronic, drug-resistant tuberculosis in Buenaventura, Colombia, 1998. Int J Tuberc Lung Dis. 2000;4:673-83. [ Links ]
55. Burger M, Raskin S, Brockelt S, Amthor B, Geiss H, Haas W. DNA fingerprinting of Mycobacterium tuberculosis complex culture isolates collected in Brazil and spotted onto filter paper. J Clin Microbiol. 1998;36:573-76. [ Links ]
56. Escalante P, Ramaswamy S, Sanabria H, et al. Genotypic characterization of drug-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates from Peru. Tuberc Lung Dis. 1998;79:111-18. [ Links ]
57. Wilkinson D, Pillay M, Lumbard C, et al. Molecular epidemiology and transmission dynamics of Mycobacterium tuberculosis in rural Africa. Trop Med Int Health. 1997;2:747-53. [ Links ]
58. Oliveira L, Huard R, Boechat N, et al. Discovery of a novel Mycobacterium tuberculosis lineage that is a major cause of tuberculosis in Rio de Janeiro, Brazil. J Clin Microbiol. 2007;45:3891-902. [ Links ]
59. Aristimuño L, Armengol R, Cebollada A, et al. Molecular characterization of Mycobacterium tuberculosis isolates in the First National Survey of Anti-tuberculosis Drug Resistance from Venezuela. BMC Microbiology. 2006;6:90-102. [ Links ]
60. Díaz R, Gómez R, Restrepo E, et al. Transmission of tuberculosis in Havana, Cuba: a molecular epidemiological study by IS6110 restriction fragment length polymorphism typing. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2001;96:437-43. [ Links ]
61. Hernández J, Murcia M, de la Hoz F. Epidemiología molecular de la tuberculosis en Bogotá en aislados clínicos obtenidos durante 11 Años. Rev Salud Pública. 2008;10:126-36. [ Links ]
62. Chihota V, Apers L, Mungofa S, et al. Predominance of a single genotype of Mycobacterium tuberculosis in regions of Southern Africa. Int J Tuber Lung Dis. 2007;11:311-8. [ Links ]
63. Miranda J, Ríos R, Clavijo A, Cachón C, Mattar S. Estudio preliminar de la susceptibilidad antimicrobiana y variabilidad genética de Mycobacterium tuberculosis en un área del Caribe colombiano. Colomb Med. 2006;37:275-86. [ Links ]
64. Gomez J, Leon C, Guerrero M, Rigouts L, Portaels F. IS6110 fingerprinting of sensitive and resistant strains (1991-1992) of Mycobacterium Tuberculosis in Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2002;97:1005-8. [ Links ]
65. Suffys PN, Ivens ME, Rossetti ML. Usefulness of IS6110restriction fragment length polymorphism typing of Brazilian strains of Mycobacterium tuberculosis and comparison with an international fingerprint database. Res Microbiol. 2000;151:343-51. [ Links ]
66. Malaspina A, Cavalcanti H, Clarice L, et al. Usefulness of Mycobacterium tuberculosis molecular typing in a tuberculosis low-endemic agro-industrial setting of Brazil. Jpn J Infect Dis. 2008;61:231-3. [ Links ]
67. Candia N, Lopez B, Zozio T, et al. First insight into Mycobacterium tuberculosis genetic diversity in Paraguay. BMC Microbiology. 2007;7:75-85. [ Links ]
68. Guimaràes H, Malaspina A, Fiùza F, Fujimura C. Tuberculosis in a Psychiatric Hospital in the state of Goiás, Brazil. J Bras Pneumol. 2006;32:566-72. [ Links ]
69. Borsuk S, Dellagostin M, de Góes S, et al. Molecular characterization of Mycobacterium tuberculosis isolates in a region of Brazil with a high incidence of tuberculosis. Microbes and Infection. 2005;7:1338-44. [ Links ]
70. Ramaswamy S, Dou S, Rendon A, Yang Z, Cave MD, Graviss E. Genotypic analysis of multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates from Monterrey, Mexico. J Med Microbiol. 2004;53:107-13. [ Links ]
71. Palmero D, Ritacco V, Ambroggi M, et al. Multidrug-resistant tuberculosis in HIV-negative patients, Buenos Aires, Argentina. Emerg Infect Dis. 2003;9:965-9. [ Links ]
72. Baldeviano C, Quispe N, Bonilla C, et al. Perfiles genéticos (RFLP-IS6110) y resistencia a drogas en aislamientos de M. tuberculosis de pacientes internados en un hospital referencial del Callao, Perú. Rev Peru Med Exp Salud Pública, 2003;20:72-7. [ Links ]
73. Agapito J, Baldeviano C, Espinoza J, Accinelli R. Caracterización de las mutaciones en el Gen rpo asociadas a la resistencia a rifampicina y tipificación molecular mediante RFLP (IS6110) en cepas de M. tuberculosis de pacientes con tuberculosis pulmonar. Enferm Tórax. 2003;46:9-24. [ Links ]
74. Ferrazoli L, Palaci M, Marques L, et al. Transmission of tuberculosis in an endemic urban setting in Brazil. Int J Tuberc Lung Dis. 2000;4:18-25. [ Links ]
75. Henao G, de la Hoz F, León CI, Ribón W, Guerrero MI. Epidemiología clásica y molecular de la tuberculosis en Guaviare 1997-1998. Inf Quinc Epidem Nac. 1999;4:85-91 [ Links ]
76. Ritacco V, Di Lonardo M, Reniero A, et al. Nosocomial spread of human immunodeficiency virus-related multidrug-resistant tuberculosis in Buenos Aires. J Infect Dis. 1997;176:637-42. [ Links ]
77. Pineda L, Ferrera A, Alvarado C, Hoffner S. Drug-resistant Mycobacterium tuberculosis and atypical mycobacteria isolated from patients with suspected pulmonary tuberculosis in Honduras. Chest. 1997;111:148-53. [ Links ]
78. Morcillo N, Alito A, Romano M, et al. Multidrug resistant tuberculosis outbreak in Buenos Aires. DNA fingerprinting analysis of isolates. Med (B Aires). 1996;56:45-7. [ Links ]
79. Gómez J, Rigouts L, Villegas L, Portaels F. Análisis de polimorfismos de los fragmentos de restricción (RFLP) y epidemiología de la tuberculosis. Bol Ofic San Panam. 1995;119:1-10. [ Links ]
80. Ruano S, Palmero D, Ritacco V, Ambroggi M, Cusmano L. Brote de tuberculosis multirresistente en trabajadores sexuales travestis. Rev Arg Med Res. 2005;1:27-33. [ Links ]
81. Palmero D, Ritacco V, Ruano S, et al. Multidrug-resistant tuberculosis outbreak among transvestite sex workers, Buenos Aires, Argentina. Int J Tuber Lung Dis. 2005;9:1168-70. [ Links ]
82. Van Rie A, Warren R, Richardson M, et al. Exogenous reinfection as a cause of recurrent tuberculosis after curative treatment. N Engl J Med. 1999;341:1174-9. [ Links ]
83. Ivens M, Fandinho F, Werneck A, et al. DNA fingerprinting of Mycobacterium tuberculosis from patients with and without AIDS in Rio de Janeiro. Braz J Med Biol Res. 1998;31:369-72. [ Links ]
84. Castiblanco C, Ribón W. Coinfección de tuberculosis en pacientes con VIH/SIDA: un análisis según las fuentes de información en Colombia. Infectio. 2006;10:232-42. [ Links ]
85. Martín F. El problema actual de la tuberculosis. Gac Méd Caracas. 2005;113:316-22. [ Links ]
86. European concerted action on new generation genetic markers and techniques for the epidemiology and control of tuberculosis. Beijing/W genotype Mycobacterium tuberculosis and drug resistance. Emerg Infect Dis. 2006;2:736-43 [ Links ]
87. Escalante P, Ramaswamy S, Sanabria H, et al. Genotypic characterization of drug-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates from Peru. Tuberc Lung Dis. 1998;79:111-8. [ Links ]
88. Díaz R, Crespo F, Herrera S, Sevy-Court J, Marrero A, van Soolingen D. Laboratory cross-contamination of Mycobacterium Tuberculosis during preparation of smears. The Internet Journal of Third World Medicine. 2005;2(2). [ Links ]
89. Varela G, Carvajales S, Gadea P, et al. Comparative molecular study of Mycobacterium tuberculosis strains, in times of antimicrobial drug resistance. Rev Argent Microbiol. 2005;37:11-5. [ Links ]
90. Martín T, Azòcar L. Genotipificación de Mycobacterium tuberculosis y susceptibilidad a drogas. Gac Méd Caracas. 1998;106:515-22. [ Links ] ]]>