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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Concordancia entre ELISA e IFI para la determinación de anticuerpos tipo IgG contra Toxoplasma gondii]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Objective. To measure the degree of correlation between the indirect fluorescence antibody test (IFAT) and the ELISA techniques used for the detection of anti-Toxoplasma gondii IgG antibodies in humans. Materials and methods. We conducted a comparative study of two diagnostic techniques for the detection of anti-T. gondii IgG, using 243 human serum samples, collected during the years 2000-2006, from the serum collection of the Laboratorio de Parasitología- Red Nacional de Laboratorios of the Instituto Nacional de Salud. Results. The percentage of reactivity for anti-T.gondii IgG was 54% (131 sera) by the IFAT technique and 56.3% (137 sera) by the ELISA technique, while 46% (112 sera) of the samples were negative by IFAT and 44% (106 sera) by ELISA. The kappa value was 0.916 (95%CI: 0.866 - 0.976), which reflects an almost perfect agreement between the two techniques. Conclusions. The kappa index shows an almost perfect agreement between ELISA and IFAT. This will help the departmental public health laboratories of the country to comply with the determination of IgG anti-T.gondii as a diagnostic tool during prenatal care, if they do not have the infrastructure needed for the IFAT, bearing in mind that ELISA is based on the degree of affinity of antibodies for a specific antigen and does not measure the actual antibody level in a serum sample, as does the IFAT technique.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">ART&Iacute;CULO ORIGINAL      <p><font size="4">    <center><b>Concordancia entre ELISA e IFI para la determinaci&oacute;n de anticuerpos tipo IgG contra <i>Toxoplasma gondii</i></b></center></font></p>     <p><font size="3">    <center><b>Concordance between ELISA and IFA, for IgG antibodies detection against <i>Toxoplasma gondii</i></b></center></font></p>     <p>    <center><b>Liliana Jazm&iacute;n Cort&eacute;s1, Lorena Mancera1</b></center></p>     <p>1 Grupo de Parasitolog&iacute;a, Red Nacional de Laboratorios, Instituto Nacional de Salud, Bogot&aacute;, D.C., Colombia</p>     <p>Recibido: 11/07/2008; Aceptado: 20/04/2009</p> <hr size="1">     <p><b>Resumen</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Objetivo.</b> Medir el grado de concordancia entre las t&eacute;cnicas de inmunofluorescencia indirecta y de ELISA, empleadas para la detecci&oacute;n de anticuerpos IgG anti-<i>Toxoplasma gondii</i> en humanos.</p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos.</b> Se llev&oacute; a cabo un estudio descriptivo comparativo de dos t&eacute;cnicas diagn&oacute;sticas para la detecci&oacute;n de anticuerpos IgG anti-T. gondii, en 243 sueros humanos del banco de muestras del Laboratorio de Parasitolog&iacute;a-Red Nacional de Laboratorios del Instituto Nacional de Salud, recolectados durante los a&ntilde;os 2000 a 2006.</p>     <p><b>Resultados.</b> El porcentaje de reactividad para la detecci&oacute;n de anticuerpos IgG anti-T. gondii fue de 54% (131 sueros) por la t&eacute;cnica IFI y de 56,3% (137 sueros) por la t&eacute;cnica ELISA; adem&aacute;s, el 46% (112 sueros) de las muestras fueron negativas por la t&eacute;cnica IFI y el 44% (106 sueros) negativas fueron por la t&eacute;cnica ELISA. El valor del &iacute;ndice kappa fue de 0,916 (IC95% 0,866-0,976), el cual refleja una concordancia casi absoluta entre las dos t&eacute;cnicas.</p>     <p><b>Conclusiones.</b> El &iacute;ndice kappa muestra una concordancia casi absoluta entre las t&eacute;cnicas, IFI y ELISA, lo cual hace que los laboratorios departamentales de salud p&uacute;blica del pa&iacute;s puedan cumplir con la determinaci&oacute;n de anticuerpos IgG anti-T. gondii como prueba diagn&oacute;stica en el control prenatal, cuando no se cuente con la infraestructura necesaria para la t&eacute;cnica de IFI, teniendo en cuenta que la de ELISA est&aacute; fundamentada en el grado de afinidad de anticuerpos por un ant&iacute;geno determinado y no mide el nivel real de &eacute;stos en una muestra de suero, como s&iacute; lo hace la t&eacute;cnica de IFI.</p>     <p><b>Palabras clave:</b> <i>Toxoplasma gondii</i>, ELISA, inmunofluorescencia indirecta, humanos, toxoplasmosis, anticuerpos.</p> <hr size="1">     <p><b>Abstract</b></p>     <p><b>Objective.</b> To measure the degree of correlation between the indirect fluorescence antibody test (IFAT) and the ELISA techniques used for the detection of anti-<i>Toxoplasma gondii</i> IgG antibodies in humans.</p>     <p><b>Materials and methods.</b> We conducted a comparative study of two diagnostic techniques for the detection of anti-T. gondii IgG, using 243 human serum samples, collected during the years 2000-2006, from the serum collection of the Laboratorio de Parasitolog&iacute;a- Red Nacional de Laboratorios of the Instituto Nacional de Salud.</p>     <p><b>Results.</b> The percentage of reactivity for anti-T.gondii IgG was 54% (131 sera) by the IFAT technique and 56.3% (137 sera) by the ELISA technique, while 46% (112 sera) of the samples were negative by IFAT and 44% (106 sera) by ELISA. The kappa value was 0.916 (95%CI: 0.866 – 0.976), which reflects an almost perfect agreement between the two techniques.</p>     <p><b>Conclusions.</b> The kappa index shows an almost perfect agreement between ELISA and IFAT. This will help the departmental public health laboratories of the country to comply with the determination of IgG anti-T.gondii as a diagnostic tool during prenatal care, if they do not have the infrastructure needed for the IFAT, bearing in mind that ELISA is based on the degree of affinity of antibodies for a specific antigen and does not measure the actual antibody level in a serum sample, as does the IFAT technique.</p> <b>Keywords:</b> <i>Toxoplasma gondii</i>, ELISA, IFAT, human, toxoplasmosis, antibodies.</b></p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Introducci&oacute;n</b>     <p>La toxoplasmosis es una zoonosis de amplia distribuci&oacute;n mundial (<sup>1</sup>), producida por el protozoario <i>Toxoplasma gondii</i>, cuya frecuencia de presentaci&oacute;n var&iacute;a mucho seg&uacute;n las zonas geogr&aacute;ficas, el nivel socioecon&oacute;mico y los h&aacute;bitos alimenticios de la poblaci&oacute;n; es una enfermedad benigna o asintom&aacute;tica cuando afecta a ni&ntilde;os o adultos, pero cuando afecta a personas inmunosuprimidas, los riesgos pueden ser graves (toxoplasmosis cerebral) y cuando afecta al feto se pueden presentar desde partos prematuros, s&iacute;ndrome visceral o coriorretinitis hasta serias consecuencias en el desarrollo neurol&oacute;gico (calcificaciones, hidrocefalia o microcefalia) (<sup>2</sup>). La toxoplasmosis cong&eacute;nita es una de las causas principales de lesiones oculares y malformaciones cong&eacute;nitas; es la segunda causa de ceguera cong&eacute;nita en Colombia (<sup>3</sup>). Adem&aacute;s, es una de las enfermedades que reporta altos &iacute;ndices de morbimortalidad, lo cual ha motivado a muchos investigadores a realizar estudios inmunol&oacute;gicos encaminados hacia el diagn&oacute;stico temprano de este evento, mediante el desarrollo de t&eacute;cnicas basadas en la determinaci&oacute;n de anticuerpos espec&iacute;ficos contra <i>T. gondii</i> (<sup>4, 5</sup>).</p>     <p>Hasta la fecha, la prueba serol&oacute;gica m&aacute;s utilizada ha sido la de tinci&oacute;n, que Sabin y Feldman desarrollaron en 1948, y que a t&iacute;tulos de 1:128 se considera indicadora de toxoplasmosis activa. Esta prueba, que utiliza par&aacute;sitos vivos y un factor s&eacute;rico (que nunca fue bien conocido) al que se llam&oacute; factor accesorio, fue ventajosamente sustituida por la inmunofluorescencia indirecta (IFI), dise&ntilde;ada por Goldman en 1962 y modificada por Fletcher en 1965 (<sup>6</sup>). La t&eacute;cnica de inmunofluorescencia indirecta, adem&aacute;s de poseer id&eacute;ntica sensibilidad y especificidad, al no utilizar un factor accesorio ni par&aacute;sitos vivos, es menos peligrosa y m&aacute;s accesible. Asimismo, en virtud de la coloraci&oacute;n resultante del efecto fluorescente, su lectura es menos subjetiva que la de Sabin y Feldman (<sup>7</sup>).</p>     <p>La introducci&oacute;n de nuevas t&eacute;cnicas ha ampliado las perspectivas de diagn&oacute;stico de esta enfermedad parasitaria. Actualmente, la determinaci&oacute;n de anticuerpos espec&iacute;ficos se lleva a cabo por diferentes t&eacute;cnicas con diferentes niveles de sensibilidad (<sup>8, 9</sup>) y que han suplido el m&eacute;todo de referencia utilizado para la determinaci&oacute;n de anticuerpos IgG contra <i>T. gondii</i>; entre las m&aacute;s empleadas est&aacute;n la de inmunofluorescencia indirecta, ELISA (enzyme–linked immunosorbent assay), hemaglutinaci&oacute;n indirecta y fijaci&oacute;n de complemento.</p>     <p>Una de las finalidades de la Red Nacional de Laboratorios, en cabeza del Instituto Nacional de Salud, es promover programas de control de calidad para los laboratorios departamentales de salud p&uacute;blica del pa&iacute;s, que permitan la eficiencia y calidad de los procesos y el fortalecimiento de la vigilancia en los eventos de inter&eacute;s en salud p&uacute;blica, como la toxoplasmosis, cuyo diagn&oacute;stico debe basarse en la suma de hallazgos cl&iacute;nicos y de laboratorio, mediante m&eacute;todos directos que demuestren la presencia del par&aacute;sito o m&eacute;todos indirectos que detecten anticuerpos espec&iacute;ficos (<sup>2,10,11</sup>).</p>     <p>Los m&eacute;todos indirectos son los m&aacute;s usados por los laboratorios, por lo que se adelant&oacute; el presente trabajo para determinar la concordancia entre las t&eacute;cnicas de inmunofluorescencia indirecta y ELISA, empleadas para la detecci&oacute;n de anticuerpos IgG anti-T. gondii en humanos (12).</b></p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>     <p>Se realiz&oacute; un estudio de tipo descriptivo comparativo mediante una evaluaci&oacute;n de concordancia de consistencia entre las t&eacute;cnicas de inmunofluorescencia indirecta y ELISA. La muestra estuvo constituida por 243 sueros humanos almacenados en la seroteca del Laboratorio de Parasitolog&iacute;a-Red Nacional de Laboratorios del Instituto Nacional de Salud, provenientes de pacientes que asistieron al instituto durante los a&ntilde;os 2000 a 2006, para el diagn&oacute;stico de toxoplasmosis, por la t&eacute;cnica de inmunofluorescencia indirecta.</p>     <p>Estas muestras se encontraban almacenadas a -20&ordm;C, debidamente rotuladas y selladas para evitar la contaminaci&oacute;n. Adem&aacute;s, se cuenta con alarmas en los congeladores para detectar en forma oportuna cualquier alteraci&oacute;n en la cadena de fr&iacute;o que pueda ocasionar la desnaturalizaci&oacute;n de las prote&iacute;nas. De esta manera, se asegur&oacute; la calidad de las muestras para su posterior an&aacute;lisis por la t&eacute;cnica ELISA para la determinaci&oacute;n de anticuerpos IgG contra <i>T. gondii</i>.</p>     <p>Los sueros se dividieron en dos grupos, constituidos de la siguiente forma:</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Grupo 1:</b> muestras positivas con diferentes t&iacute;tulos de anticuerpos: (1/16, 1/32, 1/64, 1/128, 1/256, 1/512, 1/1.024, 1/2.048, 1/4.096, 1/16.382).</p>     <p><b>Grupo 2:</b> muestras negativas previamente clasificadas por la t&eacute;cnica de inmunofluorescencia indirecta para la determinaci&oacute;n de anticuerpos anti-T. gondii tipo IgG.</p>     <p>Se tuvieron en cuenta los siguientes criterios de exclusi&oacute;n para las muestras:</p>     <p>sueros contaminados o que no se encontraran en buenas condiciones de almacenamiento, como viales abiertos, con presencia de turbidez o que hubiesen sido descongelados previamente. etc.;</p>       <p>viales con cantidades inferiores a 100 &micro;l;</p>      <p>viales con identificaci&oacute;n inadecuada, y</p>      <p>viales que hab&iacute;an sido utilizados como sueros controles (positivos y negativos) para la t&eacute;cnica de inmunofluorescencia indirecta.</p>     <p><b>An&aacute;lisis de datos</b></p>     <p>El grado de concordancia entre las dos t&eacute;cnicas empleadas se midi&oacute; con la prueba de kappa de concordancia (<sup>13</sup>). Los datos del estudio se analizaron con los programas estad&iacute;sticos Epi-Info, versi&oacute;n 6.0, y SPSS, versi&oacute;n 13.0. Para el an&aacute;lisis de resultados, se definieron las siguientes variables.</p>     <p><b><i>Muestras positivas</i></b>. Se consideraron como sueros positivos por la t&eacute;cnica de inmunofluorescencia  indirecta, t&iacute;tulos mayores o iguales a 1/16, y por la t&eacute;cnica de ELISA, t&iacute;tulos mayores o iguales a 10 UI/ml.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><i>Muestras negativas</i></b>. Se consideraron sueros negativos los t&iacute;tulos por debajo de dichos valores.</p>     <p><b><i>Muestras dudosas</i></b>. Para la t&eacute;cnica ELISA se consideran sueros dudosos aqu&eacute;llos cuyos resultados se encontraban en el rango entre 9 y menos de 10 UI/ml (<sup>14</sup>).</p>     <p><b><i>Inmunofluorescencia indirecta</i></b>. Desarrollada en el Instituto Nacional de Salud, esta t&eacute;cnica determina anticuerpos anti-T. gondii tipo IgG presentes en el suero del paciente. El principio de este procedimiento se basa en el uso de l&aacute;minas portaobjetos con &aacute;reas circulares con trofozo&iacute;tos de <i>T. gondii</i> previamente fijados y listos para la identificaci&oacute;n de inmunoglobulinas espec&iacute;ficas contenidas en las muestras examinadas.</p>     <p>Los anticuerpos de la clase IgG presentes en el suero del paciente, se adhieren a la pared del par&aacute;sito, donde se detectan por medio de una anti-IgG humana marcada con isotiocianato de fluoresce&iacute;na. La reacci&oacute;n se lee al microscopio de fluorescencia y se determina el t&iacute;tulo en la &uacute;ltima diluci&oacute;n del suero, en la cual se ve fluorescencia en toda la periferia de los taquizo&iacute;tos, aunque sea poco intensa; &eacute;sta ser&iacute;a una reacci&oacute;n positiva a esta diluci&oacute;n. Se considera no reactiva cuando el par&aacute;sito se observa completamente rojo o si la fluorescencia se ve localizada en uno de los extremos de los par&aacute;sitos, lo que se llama fluorescencia polar (<sup>14</sup>).</p>     <p><b><i>T&eacute;cnica ELISA</i></b>. A cada muestra de suero se le determin&oacute; la presencia o la ausencia de anticuerpos por la t&eacute;cnica ELISA, por medio de reactivos comerciales marca BioElisa TOXO IgG.</p>     <p>Es una prueba para la detecci&oacute;n cualitativa y cuantitativa de anticuerpos IgG contra <i>T. gondii</i>. Se a&ntilde;aden muestras diluidas a los pozos de una microplaca recubierta de ant&iacute;genos de toxoplasma y se incuban. Si la muestra presenta anticuerpos anti-T. gondii, &eacute;stos se combinan con los ant&iacute;genos fijados al pozo. A continuaci&oacute;n, se lavan los pozos para eliminar la muestra residual y se a&ntilde;aden anticuerpos anti-IgG humana, marcados con una enzima (conjugado).</p>     <p>El conjugado se fija a las IgG anti-T. gondii que se han unido a los ant&iacute;genos del pozo durante la primera incubaci&oacute;n; despu&eacute;s de un nuevo lavado para eliminar el material que no se ha unido, se a&ntilde;ade una soluci&oacute;n de sustrato enzim&aacute;tico que contiene crom&oacute;geno. Esta soluci&oacute;n desarrolla un color azul si la muestra contiene IgG anti-T. gondii. El color azul cambia a amarillo despu&eacute;s de detener la reacci&oacute;n con &aacute;cido sulf&uacute;rico. La intensidad del color es proporcional a la cantidad de IgG anti-T. gondii presente en la muestra (<sup>14</sup>).</p>     <p><b>Resultados</b></p>     <p>De los 243 sueros previamente analizados por la t&eacute;cnica de inmunofluorescencia indirecta, el 54% (131 sueros) correspondi&oacute; a muestras positivas y el 46% (112 sueros) a muestras negativas. Estos mismos sueros, analizados por la t&eacute;cnica ELISA para la determinaci&oacute;n de anticuerpos contra <i>T. gondii</i> de la clase IgG; el resultado fue de 56% (137 sueros) de muestras positivas y 44% (106 sueros) de muestras negativas. No se obtuvieron resultados dudosos.     <p>Del total de sueros analizados, 129 sueros (53%) presentaron resultados positivos por  ambas pruebas, 104 sueros (42,7%) presentaron resultados negativos por las dos t&eacute;cnicas y 10 sueros (7,19%) resultaron positivos en al menos una de las dos pruebas. Adem&aacute;s, 131 sueros (53,9%) fueron positivos por la t&eacute;cnica de IFI, 137 sueros (56,3%) fueron positivos por la t&eacute;cnica de ELISA, 112 sueros (46%) fueron negativos por la t&eacute;cnica de inmunofluorescencia indirecta y 106 sueros (43,6%) arrojaron resultados negativos por la t&eacute;cnica ELISA.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La <a href="#tabla1">tabla 1</a> muestra los resultados concordantes y discordantes, tanto positivos como negativos, obtenidos por las dos t&eacute;cnicas (IFI y ELISA). Se obtuvieron 131 sueros positivos y 112 sueros negativos por la t&eacute;cnica de IFI y 137 sueros positivos y 106 sueros negativos por la t&eacute;cnica ELISA. Adem&aacute;s, 8 muestras que fueron negativas por IFI, fueron positivas por la t&eacute;cnica de ELISA, y 2 muestras que fueron positivas por IFI, fueron negativas por la t&eacute;cnica de ELISA.</p>     <p>    <center><a name="tabla1"><img src="img/revistas/inf/v13n2/2a02t1.gif"></a></center></p>     <p>La <a href="#tabla2">tabla 2</a> muestra la concordancia de los resultados obtenidos por las dos t&eacute;cnicas (IFI y ELISA). Del 100% de las muestras procesadas (243), el porcentaje obtenido de los resultados concordantes en positividad y negatividad al comparar las dos t&eacute;cnicas fue de 53% y 42,7%, respectivamente, y el 4% corresponde a los resultados discordantes obtenidos al comparar las t&eacute;cnicas de IFI y ELISA.</p>     <p>    <center><a name="tabla2"><img src="img/revistas/inf/v13n2/2a02t2.gif"></a></center></p>     <p>La <a href="#tabla3">tabla 3</a> muestra la concordancia total al comparar las dos t&eacute;cnicas de diagn&oacute;stico. El porcentaje de concordancia de los resultados positivos y negativos de las dos t&eacute;cnicas fue de 94,1% y 98,1%, respectivamente, y el porcentaje de concordancia total obtenido fue de 95,8%.</p>     <p>    <center><a name="tabla3"><img src="img/revistas/inf/v13n2/2a02t3.gif"></a></center></p>     <p>Como hallazgos relevantes para el presente estudio, se encontr&oacute; que el coeficiente de kappa de concordancia entre la pruebe de ELISA y la inmunofluorescencia indirecta fue de 0,916 (IC95% 0,866 - 0,967) (<sup>13</sup>).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Discusi&oacute;n</b></p>     <p>En este estudio se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de concordancia entre una prueba comercial ELISA, que utiliza ant&iacute;geno inactivado de <i>T. gondii</i>, y la prueba de inmunofluorescencia indirecta, que emplea como ant&iacute;geno trofozo&iacute;tos de <i>T. gondii</i> previamente inactivados, desarrollada por el Laboratorio de Parasitolog&iacute;a-Red Nacional de Laboratorios del INS.</p>     <p> Entre los par&aacute;metros calculados para establecer la concordancia entre las dos pruebas antes mencionadas, se encuentra el &iacute;ndice kappa (<sup>11, 15</sup>), que indica el grado de acuerdo existente por encima del esperado al azar descrito por Landis y Koch; se encontr&oacute; que el coeficiente de kappa de concordancia obtenido entre las pruebas de inmunofluorescencia indirecta y ELISA fue de 0,916 (IC95% 0,866 - 0,967), valor que, seg&uacute;n los m&aacute;rgenes para estimar el grado de acuerdo en funci&oacute;n del &iacute;ndice kappa descrito por Landis y Koch, se interpreta como un grado de acuerdo casi absoluto (<sup>16</sup>).</p>     <p>El m&eacute;todo de referencia para la determinaci&oacute;n de anticuerpos IgG anti-T. gondii es la t&eacute;cnica de inmunofluorescencia indirecta. Sin embargo, en el presente estudio no se tom&oacute; esta prueba como m&eacute;todo de referencia, solamente se quer&iacute;a establecer el grado de concordancia entre las dos t&eacute;cnicas (IFI y ELISA), por lo que es una evaluaci&oacute;n de concordancia de consistencia.</p>     <p>El porcentaje de concordancia de los resultados positivos y negativos de las dos t&eacute;cnicas fue de 94,1% y 98,1%, respectivamente, y el porcentaje de concordancia total obtenido fue de 95,8%, lo que indica que entre las dos t&eacute;cnicas comparadas existe un excelente &iacute;ndice de concordancia (kappa=0,916), que es un valor de concordancia muy bueno, ya que corrige la concordancia debida solamente a la intervenci&oacute;n del azar e incluye el c&aacute;lculo de la concordancia esperada, que incorpora los valores marginales de cada prueba.(<sup>13, 15</sup>)</p>     <p>El porcentaje de muestras discordantes en este estudio comparativo se pudo deber a reacciones cruzadas, tales como factor reumatoideo y anticuerpos antinucleares, entre otras. Sin embargo, no se tienen pruebas exactas de estas interferencias, por lo que se sugiere volver a procesar estas muestras por un tercer m&eacute;todo diagn&oacute;stico(<sup>17</sup>).</p>     <p>Es importante tener presente que no es posible establecer una relaci&oacute;n directa entre los t&iacute;tulos de anticuerpos tipo IgG contra <i>T. gondii</i> presentes en una muestra y determinados por el m&eacute;todo de inmunofluorescencia indirecta, y los t&iacute;tulos que se encuentran en esa misma muestra y determinados por la t&eacute;cnica ELISA, ya que esta &uacute;ltima determina los anticuerpos presentes en el suero, pero no sus niveles. Dichos anticuerpos est&aacute;n en funci&oacute;n de la afinidad y la concentraci&oacute;n, de tal forma que una muestra que contenga anticuerpos de alta afinidad en baja concentraci&oacute;n, puede presentar la misma densidad &oacute;ptica que una muestra con anticuerpos de baja afinidad pero con alta concentraci&oacute;n (<sup>18</sup>), por lo que la t&eacute;cnica ELISA indirecta no proporciona informaci&oacute;n cuantitativa como s&iacute; ocurre con la t&eacute;cnica de IFI, en la que es posible determinar los t&iacute;tulos de anticuerpos presentes en una muestra ya que se hacen diluciones seriadas de la misma (<sup>19</sup>).</p>     <p>Los resultados obtenidos permitir&aacute;n que los laboratorios departamentales de salud p&uacute;blica del pa&iacute;s puedan cumplir con la determinaci&oacute;n de anticuerpos IgG anti-T. gondii como prueba diagn&oacute;stica en el control prenatal, cuando no se cuente con la infraestructura necesaria para la t&eacute;cnica de IFI, teniendo en cuenta que la de ELISA est&aacute; fundamentada en el grado de afinidad de anticuerpos por un ant&iacute;geno determinado y no mide su concentraci&oacute;n real en una muestra de suero, como lo hace la t&eacute;cnica de inmunofluorescencia indirecta.</p>     <p>Cabe mencionar que las publicaciones que fueron marco de referencia para esta investigaci&oacute;n est&aacute;n encaminadas a la evaluaci&oacute;n de una t&eacute;cnica diferente (hemaglutinaci&oacute;n indirecta Vs. IFI) y, adem&aacute;s, en sueros de animales.  Por tal raz&oacute;n, existen pocas herramientas para la discusi&oacute;n de investigaciones similares en sueros humanos (<sup>53, 20</sup>).</p>     <p>El presente trabajo contribuy&oacute; en el fortalecimiento de los estudios ya realizados, con base en an&aacute;lisis comparativos entre dos t&eacute;cnicas diagn&oacute;sticas y, de igual forma, en el desempe&ntilde;o de los profesionales en el &aacute;mbito.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Correspondencia:</b> Liliana Jazm&iacute;n Cort&eacute;s, Grupo de Parasitolog&iacute;a, Instituto Nacional de Salud, Avenida calle 26 N&ordm; 51-20, Zona6, CAN, Bogot&aacute;, D.C., Colombia Tel&eacute;fono: (+571) 220 7700 <a href="mailto:jcortes@ins.gov.co">jcortes@ins.gov.co</a></p>     <p><b>Referencias</b></p>     <!-- ref --><p>1. Braselli A. Toxoplasmosis. Infectio. Consultado en 10/07/2008 Disponible en: <a href="http://www.infecto.edu.uy/revisiontemas/tema3/toxotema.htm" target="_blank">http://www.infecto.edu.uy/revisiontemas/tema3/toxotema.htm</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-9392200900020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. G&oacute;mez JE, Ruiz B, Silva P, Beltr&aacute;n S, Cort&eacute;s J, Montoya J, <i>et al</i>. Gu&iacute;a de pr&aacute;ctica cl&iacute;nica para toxoplasmosis durante el embarazo y toxoplasmosis cong&eacute;nita en Colombia. Infectio. 2007;11:1-13.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-9392200900020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. G&oacute;mez J. Vientos favorables para un mejor control de la toxoplasmosis en Colombia, Infectio. 2007;11:103&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-9392200900020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Germani C, Pacheco F. Comparaçao entre os testes de inmuno-fluorescencia indirecta e hemaglutinaçao indirecta para detecçao e anticorpos anti <i>Toxoplasma gondii</i> em soros de su&iacute;nos. Acta Scientiae Veterinariae. 2002;30:185-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-9392200900020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Ishizuka M, Angelino J, Souza J. Toxoplasmose su&iacute;na II. Estudo comparativo das provas de imunofluorescencia indireta e hemaglutinaçao para avaliaçao de anticorpos anti-toxoplasma em soros su&iacute;nos. Bol Oficina Sanit Panam. 1986;100:524-30.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-9392200900020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Casta&ntilde;o J, G&oacute;mez J, Duque A. Toxoplasmosis ocular en el Quind&iacute;o: caracter&iacute;sticas cl&iacute;nicas. Biom&eacute;dica. 1991;1:121.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0123-9392200900020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Antunes M, Duarte R, Laureantino V, Coutinho G, Gomes H, Reis A. Standarization of enzyme–linked immunosorbent assay ELISA to detect anti-<i>Toxoplasma gondii</i> IgM antibodies, and comparison with the immunofluorescence technique. Rev Soc Bras Med Trop. 1999;32:661-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0123-9392200900020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Silva N, Chaplin E, M&eacute;ndez L, Araujo F. Determinaçao de anticorpos toxopl&aacute;smicos em soros de su&iacute;nos abatidos em matadouros, na regiao do Alto Taquari, RS, Brasil. Arq Fac Vet. 1981;9:33-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0123-9392200900020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. S&uacute;arez F, Andrade H, Galisteo A, Miguel O. Concordancia de la pruebas de ELISA y hemaglutinaci&oacute;n indirecta en el diagn&oacute;stico de la toxoplasmosis porcina. Rev Inv Vet Per&uacute;. 2002;13:84-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-9392200900020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Huerta S, Ch&aacute;vez A, Casas E, Falc&oacute;n N, Raymundo F. Concordancia entre las pruebas de hemaglutinaci&oacute;n indirecta e inmunofluorescencia indirecta para determinar la prevalencia de <i>Toxoplasma gondii</i> en ovinos. Rev Investig Vet Per&uacute;. 2006;17:178-83.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-9392200900020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Camargo A, Silva A, Marrocos H, Rosenail J, Olivera L, Falcao R. Estudio comparativo entre diferentes m&eacute;todos para diagn&oacute;stico de toxoplasmosis humana. Newslab. 1998;28:121-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-9392200900020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Camargo M, Ferreira A, Rocca A, Belem Z. Um test pr&aacute;tico para a sorologia da toxoplasmose: o teste de hemaglutinaçao. Estudo comparativo com os testes de imunofluorescencia e imunoenzim&aacute;tico de captura de Ig M. Ver Brasileira Patol Clin. 1986;22:196-201.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-9392200900020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Molinero L. Medidas de concordancia para variables cuantitativas. Asociaci&oacute;n de la Sociedad Espa&ntilde;ola de Hipertensi&oacute;n; 2001. Consultado 10/07/2008. Disponible en: <a href="http://www.seh-lelha.org/concor2.htm" target="_blank">www.seh-lelha. org/concor2.htm</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-9392200900020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Santacruz M, Cort&eacute;s L. Manual de toxoplasmosis. Bogot&aacute; D.C.: Instituto Nacional de Salud; 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0123-9392200900020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Romero T, Berm&uacute;dez M, Dosil P, Montiel M. Estudio comparativo entre los m&eacute;todos de hemaglutinaci&oacute;n e inmunoan&aacute;lisis enzim&aacute;tico en el diagn&oacute;stico de la toxoplasmosis. Kasmera. 1995;23:69-88.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-9392200900020000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Fern&aacute;ndez S, P&eacute;rtega S. Asociaci&oacute;n de variables cualitativas: test de chi-cuadrado. La Coru&ntilde;a: Unidad de Epidemiolog&iacute;a Cl&iacute;nica y Bioestad&iacute;stica: Complejo Hospitalario Juan Canalejo; 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-9392200900020000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Enciso C, Montilla M, Santacruz M, Nicholls R, Rodr&iacute;guez A, Mercado M. Comparaci&oacute;n de la prueba de inmunofluorescencia indirecta, un inmunoensayo y la prueba comercial Chagatek para la detecci&oacute;n de anticuerpos anti-Trypanosoma cruzi. Biom&eacute;dica. 2004;24:104-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-9392200900020000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Venkatesan P, Wakelin D. ELISAs for parasitologists: or lies, damned lies and ELISAs. Parasitol Today. 1993;9:229-32.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-9392200900020000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Germani C, Pacheco A. Comparaçao entre os testes de inmuno-fluorescencia indirecta e hemaglutinaçao indirecta para detecçao e anticorpos anti <i>Toxoplasma gondii</i> em soros de su&iacute;nos. Acta Scientiae Veterinariae. 2002;30:185-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-9392200900020000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Su&aacute;rez F, Andrade H, Galisteo A. Evaluaci&oacute;n serol&oacute;gica de <i>Toxoplasma gondii</i> en suinos mediante la prueba de ELISA. Rev Investig Vet Per&uacute;. 1999;10:11-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0123-9392200900020000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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