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<publisher-name><![CDATA[Asociación Colombiana de Infectología.]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Detección de metabolitos secundarios en Ambrosia peruviana Willd y determinación de la actividad antibacteriana y antihelmíntica]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Secondary metabolite detection in Ambrosia peruviana Willd and determination of antibacterial and antihelmintic activity]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Ambrosia peruviana has been reported as an anti-infective and anti-parasitic plant in the ethno-pharmacological environment. Given the high rates of bacterial and parasitic resistance against commercial drugs recorded, we performed the preliminary phytochemical screening following Sanabria´s method and biological tests against clinical bacterial isolates, dog parasites, and Artemia salina. Cytotoxicity tests in Artemia salina were carried out by exposing adults to extracts of varied concentrations. The antibacterial activity was performed using the disk diffusion method and CIM. Toxocara canis nematodes were kept in Ringer´s lactate supplemented with 10% RPMI and 1X ATM. The embryo generation percentage of eggs released into the culture medium was evaluated adding ethanol and aqueous extracts of dried A. peruviana. The tests of A. peruviana against helminths were performed by immersing adults in a medium supplemented with dried ethanol extract (at various concentrations) and fractions rich in alkaloids. Phytochemical screening allowed preliminary identification of alkaloids, cardiotonic glucosides, quinones, flavonoids, carbohydrates, tannins and saponins. The LC50 for dry ethanol extract was 64.2µg/ml, while for the aqueous extract was 840.4µg/ml. The extracts did not show antibacterial activity. T. canis adults showed motility decrease against dried extracts, not so in alkaloid fraction where they died after a 4h exposure. The use of extracts from A. peruviana over Toxocara canis eggs caused a decrease in the percentage of embryo generation, which did not depend on the extract observed but on the concentration used.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p>    <center>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</center></p>      <p><font size="4">    <center><b>Detecci&oacute;n de metabolitos secundarios en <i>Ambrosia peruviana Willd</i> y determinaci&oacute;n de la actividad antibacteriana y antihelm&iacute;ntica</b></center></font></p>      <p>Secondary metabolite detection in <i>Ambrosia peruviana Willd</i> and determination of antibacterial and antihelmintic activity</p>      <p>Mar&iacute;a del Pilar Guauque<sup>1</sup>, Jhon Carlos Casta&ntilde;o<sup>2</sup>, Milton G&oacute;mez<sup>1</sup></p>      <p>1 Departamento de Qu&iacute;mica, Facultad de Ciencias B&aacute;sicas y   Tecnolog&iacute;as, Universidad del Quind&iacute;o, Armenia, Colombia</p>        <p>2 Departamento de Medicina, Facultad Ciencias de la Salud, Universidad del   Quind&iacute;o, Armenia, Colombia </p>        <p>Recibido: 16/04/2010; Aceptado: 30/08/2010</p>  <hr size=1>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resumen</b> </p>      <p>En el conocimiento etnofarmacol&oacute;gico, <i>Ambrosia peruviana</i> es conocida como una planta antiinfecciosa y antihelm&iacute;ntica. Dados los altos &iacute;ndices de resistencia bacteriana y parasitaria, se realiz&oacute; la tamizaci&oacute;n fitoqu&iacute;mica preliminar siguiendo la metodolog&iacute;a de Sanabria, y ensayos biol&oacute;gicos frente a aislamientos cl&iacute;nicos bacterianos, par&aacute;sitos caninos y <i>Artemia salina</i>.</p>        <p>Los ensayos de citotoxicidad en A. salina se realizaron por exposici&oacute;n de los adultos a concentraciones variables de los extractos. La actividad antibacteriana se realiz&oacute; por los m&eacute;todos de difusi&oacute;n en disco y concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima (CIM).</p>        <p>Se determin&oacute; el porcentaje de huevos que ten&iacute;an el embri&oacute;n del par&aacute;sito, en el medio de cultivo se mantuvieron en lactato de Ringer con suplemento al 10% de RPMI y 1X ATM. Se determin&oacute; el porcentaje de huevos con embri&oacute;n, o fecundados, liberados en el medio de cultivo con adici&oacute;n de extracto etan&oacute;lico y acuoso secos de <i>A. peruviana</i>. Los ensayos de la especie vegetal frente a helmintos se realizaron al sumergir los adultos en medio con suplemento de extracto etan&oacute;lico seco (usando diferentes concentraciones) y con fracciones ricas en alcaloides.</p>        <p>Se identific&oacute; la presencia de alcaloides, gluc&oacute;sidos cardiot&oacute;nicos, quinonas, flavonoides, carbohidratos, taninos y saponinas. La concentraci&oacute;n letal media para el extracto etan&oacute;lico seco fue 64,2 &micro;g/ml, mientras que para el extracto acuoso fue de 840,4 &micro;g/ml. Los extractos no presentaron actividad antibacteriana. Los ejemplares adultos de <i>T. canis</i> presentaron disminuci&oacute;n de la motilidad frente a extractos secos, mientras que en la fracci&oacute;n de alcaloides murieron luego de 4 horas de exposici&oacute;n. Los extractos de <i>A. peruviana</i> sobre huevos de <i>T. canis</i> permitieron una disminuci&oacute;n en el porcentaje de huevos con embri&oacute;n que no depend&iacute;a del extracto observado sino de la concentraci&oacute;n empleada.</p>        <p><b>Palabras clave</b>: <i>Ambrosia peruviana</i>, antibacteriano, antiparasitario, <i>Artemia salina</i>, <i>Toxocara canis</i>. </p>  <hr size=1>      <p><b>Abstract</b> </p>      <p><i>Ambrosia peruviana</i> has been reported as an anti-infective and anti-parasitic plant in the ethno-pharmacological environment. Given the high rates of bacterial and parasitic resistance against commercial drugs recorded, we performed the preliminary phytochemical screening following Sanabria&acute;s method and biological tests against clinical bacterial isolates, dog parasites, and <i>Artemia salina</i>. </p>      <p>Cytotoxicity tests in <i>Artemia salina</i> were   carried out by exposing adults to extracts of varied concentrations. The antibacterial activity was performed using the disk diffusion method and CIM. <i>Toxocara canis</i> nematodes were kept in Ringer&acute;s lactate supplemented with 10% RPMI and 1X ATM. The embryo generation percentage of eggs released into the culture medium was evaluated adding ethanol and aqueous extracts of dried <i>A. peruviana</i>. The tests of <i>A. peruviana</i> against helminths were performed by immersing adults in a medium supplemented with dried ethanol extract (at various concentrations) and fractions rich in alkaloids.</p>        <p>Phytochemical screening allowed preliminary identification of alkaloids, cardiotonic glucosides, quinones, flavonoids, carbohydrates, tannins and saponins. The LC50 for dry ethanol extract was 64.2&micro;g/ml, while for the aqueous extract was 840.4&micro;g/ml. The extracts did not show antibacterial activity. <i>T. canis</i> adults showed motility decrease against dried extracts, not so in alkaloid fraction where they died after a 4h exposure. The use of extracts from <i>A. peruviana</i> over <i>Toxocara canis</i> eggs caused a decrease in the percentage of embryo generation, which did not depend on the extract observed but on the concentration used. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Key Words:</b> <i>Ambrosia peruviana</i>, antibacterial agents, antiparasitic, <i>Artemia   salina</i>, <i>Toxocara canis</i>.</p>    <hr size=1>      <p><b>Introducci&oacute;n</b> </p>      <p>Dado el conocimiento etnofarmacol&oacute;gico de nuestro pa&iacute;s y la riqueza bot&aacute;nica de la regi&oacute;n, se estudi&oacute; la especie <i>Ambrosia peruviana Willd</i> (Asteraceae) por su uso en la Amazonia como antihelm&iacute;ntica. En el &aacute;mbito cient&iacute;fico, la especie vegetal tambi&eacute;n es conocida como <i>Ambrosia cumanensis Kunth</i>, <i>Ambrosia eliator</i> y <i>Ambrosia paniculata</i> <sup>(1)</sup>.</p> 	     <p>De esta forma, el conocimiento etnofarmacol&oacute;gico de la especie ha motivado investigaciones tendientes a corroborar o a refutar las hip&oacute;tesis generadas a partir del uso popular de <i>A. peruviana</i> con fines terap&eacute;uticos. Por ejemplo, Sol&iacute;s y colaboradores reportaron que la infusi&oacute;n (liofilizada) del fruto fresco de <i>A. peruviana</i> no hab&iacute;a mostrado actividad antimicrobiana a una concentraci&oacute;n de 100 &micro;g/ml contra <i>Escherichia coli</i> ATCC 9637, <i>Staphylococcus aureus</i> ATCC 6538, <i>Klebsiella pneumoniae</i> ATCC 10031, <i>Mycobacterium smegmatis</i> ATCC 607, <i>Pseudomonas aeruginosa</i> ATCC 27853 y <i>Candida albicans</i> ATCC 10231, en una evaluaci&oacute;n <i>in vitro</i> sobre placas de agar <sup>(2)</sup>. De igual forma, Mel&eacute;ndez y Capriles reportaron que <i>A. peruviana</i> no pose&iacute;a actividad contra <i>E. coli</i> y <i>S. aureus</i> <sup>(3)</sup>.</p> 	     <p>Por otra parte, se ha comprobado la acci&oacute;n citot&oacute;xica de los extractos alcoh&oacute;licos de algunas especies de Ambrosia. La especie mejor estudiada ha sido A. mar&iacute;tima, dada su propiedad moluscocida, demostr&aacute;ndose adem&aacute;s que posee actividad antibacteriana. Las propiedades medicinales de la especie han sido investigadas ampliamente y se han propuesto las lactonas sesquiterp&eacute;nicas como las principales responsables de su acci&oacute;n terap&eacute;utica. De acuerdo con los resultados obtenidos, el uso de la planta no presenta contraindicaciones <sup>(4)</sup>.</p>        <p>Teniendo en cuenta que los metabolitos secundarios son los principales responsables de la acci&oacute;n terap&eacute;utica de las especies vegetales, es importante el estudio de su composici&oacute;n y distribuci&oacute;n en la planta. Se reporta la presencia de alcaloides, taninos, gluc&oacute;sidos cardiot&oacute;nicos,   cumarinas, auronas, esteroides y saponinas en las hojas de <i>A. peruviana</i> <sup>(5)</sup>. En 1966, Joseph-Nathan propuso la peruvinina, una sesquiterpenlactona de tipo seudoguayan&oacute;lido, como uno de los componentes principales de la especie <sup>(6,7)</sup>. De igual forma, Gwendolyn, en 1987, present&oacute; nuevas estructuras correspondientes a un diol-sesquiterpeno y cuatro seudoguayan&oacute;lidos presentes en <i>A. peruviana</i>, con la respectiva nomenclatura como sigue: alloaromadendrane-4T, 10U-diol, psilostachyins C y B, ambrosina y damsina <sup>(8)</sup>.</p>        <p>Con estos antecedentes decidimos realizar la tamizaci&oacute;n fitoqu&iacute;mica preliminar de <i>A. peruviana</i> y evaluar su respuesta frente al crust&aacute;ceo <i>Artemia salina</i>; a las bacterias Gram positivas <i>S. aureus</i> y S. pyogenes; a las bacterias Gram negativas <i>P. aeruginosa</i>, <i>E. cloacae</i>, <i>P. vulgaris</i>, <i>E. coli</i> y <i>E. coli</i> DH5&alpha;, y al nematodo <i>Toxocara canis</i>.</p>        <p><b>Metodolog&iacute;a</b> </p>      <p><b>Tamizaci&oacute;n fitoqu&iacute;mica</b>.</p>      <p>Se recolectaron 4,0 kg de hojas de <i>A. peruviana</i>, en el municipio de Armenia, Quind&iacute;o (1.550 msnm). El material vegetal fue secado a 37&ordm;C en estufa de aire circulante. La identificaci&oacute;n taxon&oacute;mica se llev&oacute; a cabo en el Herbario Nacional, Universidad Nacional, sede Bogot&aacute; (N&deg;COL 520349). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La tamizaci&oacute;n fitoqu&iacute;mica se llev&oacute; a cabo por desengrase en extractor soxhlet con &eacute;ter de petr&oacute;leo, seguido de percolaci&oacute;n en etanol al 94,4% y posterior maceraci&oacute;n en agua destilada en ebullici&oacute;n. Los extractos etan&oacute;lico y acuoso se llevaron a sequedad con rotaevaporador a 37&ordm;C y, posteriormente, se sometieron a pruebas de identificaci&oacute;n para metabolitos secundarios <sup>(9-10)</sup>. El fraccionamiento preliminar del extracto etan&oacute;lico seco de la especie <sup>(9)</sup>, permiti&oacute; obtener fracciones ricas en alcaloides que luego fueron ensayadas sobre nematodos y bacterias.</p>        <p><b>Dosis letal media</b>. Los crust&aacute;ceos adultos (20 a 30 por ensayo) se expusieron a concentraciones de 1.000, 750, 500, 250, 100, 50 y 25 &micro;g/ml del extracto etan&oacute;lico y acuoso secos, con control negativo y control con DMSO al 4% para los extractos insolubles en agua. Se determin&oacute; la letalidad del experimento por medida de la cantidad de individuos muertos a las 24 horas con tres repeticiones para cada concentraci&oacute;n <sup>(11)</sup>. Los datos se analizaron con el m&eacute;todo Probit, usando el paquete estad&iacute;stico Statgraphics, y se determin&oacute; la concentraci&oacute;n letal media de los extractos. </p>      <p><b>Efecto antibacteriano.</b> Con el objetivo de conocer si exist&iacute;a respuesta antibacteriana de <i>A. peruviana</i> sobre distintas cepas, se sometieron a ensayo las bacterias Gram positivas <i>S. aureus</i> y <i>S. pyogenes</i>, y las Gram negativas <i>P. aeruginosa</i>, <i>E. cloacae</i>, <i>P. vulgaris</i>, <i>E. coli</i> y <i>E. coli</i> DH5&alpha;, frente a extractos de <i>A. peruviana</i> etan&oacute;lico y acuoso (1 mg/ml). </p>      <p>Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima (CIM) en caldo nutritivo LB, con tubos control que conten&iacute;an extracto (etan&oacute;lico o acuoso), en las concentraciones evaluadas, con caldo nutritivo y tubos control con la cepa creciendo en caldo nutritivo LB. La respuesta esperada era la ausencia de turbidez.</p>        <p>La corroboraci&oacute;n de los resultados encontrados por CIM, se llev&oacute; a cabo siguiendo los m&eacute;todos b&aacute;sicos para el estudio de la sensibilidad a los antimicrobianos de la Sociedad Espa&ntilde;ola de Enfermedades Infecciosas y Microbiolog&iacute;a Cl&iacute;nica <sup>(12)</sup>; para la concentraci&oacute;n de 1 mg/ml, se us&oacute; un control positivo de cafalotina para las bacterias Gram positivas y uno de ciprofloxacina para las Gram negativas. La respuesta esperada se manifest&oacute; por presencia de un halo de inhibici&oacute;n.</p>        <p><b>Efecto antihelm&iacute;ntico.</b> La recolecci&oacute;n y la obtenci&oacute;n de los huevos y adultos de nematodos de <i>T. canis</i> se hicieron mediante la disecci&oacute;n del intestino delgado de perros sacrificados con sobredosis de anest&eacute;sicos en la Central de Zoonosis de Armenia. Los par&aacute;sitos adultos as&iacute; extra&iacute;dos se lavaron tres veces con lactato de Ringer y PBS, bajo campana de flujo laminar. El mantenimiento de <i>T. canis</i> se hizo en lactato de Ringer con suplemento al 10% de RPMI y 1X ATM (100 unidades de penicilina, 0,1 mg de estreptomicina y 0,25 &micro;g de anfotericina por ml). </p>      <p>Los adultos de <i>T. canis</i> fueron sumergidos en medio con suplemento de extracto etan&oacute;lico seco a 50, 25, 10, 5 y 1 mg/ml, de extracto acuoso a 10 mg/ml y en fracciones ricas en alcaloides a 900 &micro;g/ml. El uso de fracciones de alcaloides cobra importancia dado que los alcaloides de tipo &beta;-carbolina son usados como nematicidas y poseen baja citotoxicidad <sup>(13)</sup>. La inmovilidad de los par&aacute;sitos y su nueva suspensi&oacute;n en medio de cultivo (30 minutos) permitieron observar la muerte de los nematodos.</p>        <p>Los productos de excreci&oacute;n y secreci&oacute;n se recolectaron para el almacenamiento de huevos y medici&oacute;n, en placa de cultivo est&eacute;ril, del porcentaje de huevos fecundados en medio con extractos etan&oacute;lico y acuoso secos de <i>A. peruviana</i>, despu&eacute;s de seis d&iacute;as de incubaci&oacute;n a 37&ordm;C y tres repeticiones para 1.000, 500 y 100 &micro;g/ml. Se us&oacute; un control negativo de medio de cultivo, un control positivo con albendazol comercial a 1 mg/ml y uno de DMSO al 5%. Los datos se recolectaron por observaci&oacute;n del desarrollo larvario con microscopio de luz invertida y se procesaron por ajuste a un modelo estad&iacute;stico lineal general que relacionaba el porcentaje de huevos no fecundados con dos factores de pron&oacute;stico (extracto y concentraci&oacute;n) y an&aacute;lisis de varianza, usando el paquete estad&iacute;stico Statgraphics.</p>        <p><b>Resultados</b> </p>      <p><b>Tamizaci&oacute;n fitoqu&iacute;mica.</b> Mediante la tamizaci&oacute;n fitoqu&iacute;mica de <i>A. peruviana</i>, se determin&oacute; que la especie posee alcaloides, flavonoides, quinonas, taninos, saponinas, cumarinas, lactonas terp&eacute;nicas, gluc&oacute;sidos cardiot&oacute;nicos y carbohidratos. No posee cumarinas vol&aacute;tiles, leucoantocianidinas, nafto ni antraquinonas (<a href="#tabla1">tabla 1</a>). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="tabla1"><img src="img/revistas/inf/v14n3/3a05t1.gif"></a></center></p>     <p>Siguiendo el fraccionamiento preliminar planteado por Sanabria, se logr&oacute; la separaci&oacute;n de las fases de alcaloides y acuosa. Debido a que el procedimiento de extracci&oacute;n de la fase de alcaloides es espec&iacute;fico para estos metabolitos, s&oacute;lo se someti&oacute; a las pruebas de identificaci&oacute;n de alcaloides, lo cual dio como resultado la presencia abundante (+++) del metabolito en los tres ensayos (Dragendorff, Mayer y Bouchardart) <sup>(9)</sup>.</p>        <p><b>Dosis letal media.</b> El porcentaje de mortalidad se obtuvo con la f&oacute;rmula de Abbot, que permite hacer la correcci&oacute;n de la mortalidad respecto al blanco con DMSO 4%. Los datos se analizaron con Statgraphics, que muestra los resultados del ajuste de un modelo de regresi&oacute;n tipo Probit para describir la relaci&oacute;n entre el porcentaje de mortalidad y la variable independiente concentraci&oacute;n. De este an&aacute;lisis se obtuvo un valor de concentraci&oacute;n letal media de 64,2 &micro;g/ml para el extracto etan&oacute;lico y CL50 de 840,46 &micro;g/ml para el extracto acuoso de <i>A. peruviana</i> (<a href="#figura1">figuras 1</a>a y <a href="#figura1">1b</a>). </p>      <p>    <center><a name="figura1"><img src="img/revistas/inf/v14n3/3a05g1.jpg"></a></center></p>     <p><b>Efecto antibacteriano.</b> Los resultados obtenidos en el ensayo de difusi&oacute;n con disco fueron negativos en todos los casos evaluados (<a href="#tabla2">tabla 2</a>). </p>      <p>    <center><a name="tabla2"><img src="img/revistas/inf/v14n3/3a05t2.gif"></a></center></p>      <p>En el caso del ensayo CIM para las mismas concentraciones (1 mg/ml), se evalu&oacute; la presencia de turbidez por comparaci&oacute;n entre el control negativo, el tubo de ensayo que conten&iacute;a el extracto junto con el caldo nutritivo y, finalmente, la prueba que conten&iacute;a el extracto, el caldo nutritivo y la cepa. En todos los casos evaluados, los resultados fueron negativos.</p>        ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Efecto antihelm&iacute;ntico.</b> Se observ&oacute; una disminuci&oacute;n de la motilidad de los adultos de <i>T. canis</i> frente al extracto etan&oacute;lico seco de <i>A. peruviana</i>, en las concentraciones de 25, 10, 5 y 1 mg/ml. Sin embargo, el uso de 50 mg/ml del mismo extracto y de fracciones ricas en alcaloides (900 &micro;g/ml), produjo la inmovilidad completa de los nematodos adultos de <i>T. canis</i> (<a href="#tabla3">tabla 3</a>). </p>      <p>    <center><a name="tabla3"><img src="img/revistas/inf/v14n3/3a05t3.gif"></a></center></p>      <p>Este resultado se comprob&oacute; al suspender nuevamente los nematodos en medio de lactato de Ringer con suplemento al 10% de RPMI y 1X ATM durante 30 minutos, sin recuperaci&oacute;n de su actividad motriz.</p>        <p>Para la medici&oacute;n del porcentaje de huevos con embri&oacute;n, o fecundados, de <i>T. canis</i> frente a los extractos secos etan&oacute;lico y acuoso de <i>A. peruviana</i>, se hizo un an&aacute;lisis de varianza cuyo valor de p fue de 0,0009. Esto indica que existe una relaci&oacute;n estad&iacute;sticamente significativa entre el porcentaje de huevos sin embri&oacute;n y las variables estudiadas (extracto, concentraci&oacute;n) al 99% de nivel de confianza. Esto se traduce en una relaci&oacute;n entre la disminuci&oacute;n del porcentaje de huevos sin embri&oacute;n de <i>T. canis</i> y la exposici&oacute;n a los diferentes extractos de <i>A. peruviana</i>.</p>        <p>Asimismo, se evalu&oacute; la contribuci&oacute;n de cada una de las variables a la explicaci&oacute;n del modelo y su efecto sobre el porcentaje de huevos sin embri&oacute;n, usando la metodolog&iacute;a de suma de cuadrados. Los valores de p para la variable extracto (0,8310) y para la interacci&oacute;n extracto-concentraci&oacute;n (0,5262) son superiores al umbral (0,1), lo que indica que no son estad&iacute;sticamente significativas al 90% de nivel de confianza; por lo tanto, no existe una real diferencia entre los extractos aplicados etan&oacute;lico y acuoso o el efecto de la interacci&oacute;n, con respecto a la disminuci&oacute;n del porcentaje de huevos sin embri&oacute;n frente al control (<a href="#figura2">figura 2</a>). El valor de p de la concentraci&oacute;n demuestra un nivel de significancia alto (&lt;0,05) que indica relevancia del factor sobre el resultado esperado. Se concluye que el factor determinante en la disminuci&oacute;n del porcentaje de huevos sin embri&oacute;n de <i>T. canis</i> es la concentraci&oacute;n del extracto, sea etan&oacute;lico o acuoso, de <i>A. peruviana</i> (<a href="#figura3">figura 3</a>).</p>      <p>    <center><a name="figura2"><img src="img/revistas/inf/v14n3/3a05g2.jpg"></a></center></p> </p>      <p>    <center><a name="figura3"><img src="img/revistas/inf/v14n3/3a05g3.jpg"></a></center></p></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las convenciones usadas en las figuras son como siguen: 1, para extracto etan&oacute;lico, y 2, para extracto acuoso de la especie vegetal. Los valores 100, 500 y 1.000 son las concentraciones en &micro;g/ml del extracto etan&oacute;lico de <i>A. peruviana</i> sobre huevos de <i>T. canis</i>. El valor arbitrario 2.000 se usa para observar los datos de huevos fecundados en DMSO 4%, mientras que 3.000 es el blanco con formol al 1% y 4.000 es el control con albendazol comercial a 1 mg/ml.</p>        <p>Como se puede observar en el gr&aacute;fico de interacci&oacute;n (<a href="#figura3">figura 3</a>), no hay diferencia estad&iacute;sticamente significativa entre las variables extracto etan&oacute;lico y acuoso, mientras que, para la variable concentraci&oacute;n (100, 500 y 1.000 &micro;g/ml), s&iacute; existe dicha diferencia. Es muy importante observar que el porcentaje de huevos sin embri&oacute;n en la variable 100 &micro;g/ml se superpone al resultado observado con el antiparasitario comercial (albendazol) y que para las concentraciones m&aacute;s altas el resultado es mejor. Se concluye que la disminuci&oacute;n del porcentaje de huevos sin embri&oacute;n se debe a la concentraci&oacute;n empleada en el an&aacute;lisis y no al extracto usado para tal fin.</p>        <p><b>Discusi&oacute;n</b> </p>      <p>La tamizaci&oacute;n fitoqu&iacute;mica concuerda con lo reportado previamente, especialmente en lo que se refiere a alcaloides, gluc&oacute;sidos cardiot&oacute;nicos, taninos y saponinas <sup>(5)</sup>. Sobresale la presencia de lactonas sesquiterp&eacute;nicas, lo que est&aacute; de acuerdo con trabajos reportados previamente. Estos compuestos han sido ampliamente identificados y elucidados como componentes importantes de <i>A. peruviana</i> <sup>(4,6,8)</sup>.</p>        <p>En ensayos adicionales se comprob&oacute; la presencia de alcaloides mediante la prueba modificada de Draggendorf, con lectura a las 24 horas de asperjada la placa, en algunas de las fracciones obtenidas por eluci&oacute;n de una columna cromatogr&aacute;fica con CH2Cl2 (no se presentan los datos), debido a que los resultados arrojados en las pruebas biol&oacute;gicas de este tipo de metabolitos fueron satisfactorias y podr&iacute;a pensarse en su aislamiento, purificaci&oacute;n y posterior caracterizaci&oacute;n espectrosc&oacute;pica. Este resultado pone de manifiesto las caracter&iacute;sticas poco polares de los alcaloides presentes en <i>A. peruviana</i> debido, posiblemente, a la presencia de sustituyentes electro-atrayentes (grupo carbonilo) que disminuyen el pH b&aacute;sico del nitr&oacute;geno y lo hacen casi neutro o la presencia de cadenas carbonadas de gran tama&ntilde;o, como en el caso de los alcaloides esteroides <sup>(14)</sup>.</p>        <p>Debido a que se registra una concentraci&oacute;n diez veces superior de CL50 en el extracto acuoso, con respecto al mismo par&aacute;metro evaluado para el extracto etan&oacute;lico de A.peruviana sobre <i>Artemia salina</i>, se proponen los metabolitos no comunes a los dos extractos evaluados (alcaloides y saponinas) como principales responsables de la actividad citot&oacute;xica de <i>A. peruviana</i>.</p> 	     <p>Se conoce la actividad moluscicida de saponinas purificadas provenientes de Catunaregam nilotica activas sobre Biomphalaria glabrata, con CL<sub>50</sub> de 3 y 26 ppm, dependiendo de la saponina ensayada <sup>(15)</sup>. Asimismo, se conocen m&uacute;ltiples reportes de la actividad citot&oacute;xica de los alcaloides; Sarker y colaboradores aislaron alcaloides de tipo indol de <i>Centaurea cyanus</i>(Asteraceae),   con gran actividad sobre <i>Artemia salina</i> (CL50 de 21 y 14 &micro;g/ml, seg&uacute;n el alcaloide empleado) <sup>(16)</sup>.</p>        <p>Los ensayos de actividad antibacteriana por los dos m&eacute;todos empleados permitieron confirmar que la especie es inactiva frente a diferentes cepas ensayadas <sup>(2,3)</sup>.</p>        <p>La fracci&oacute;n que contiene alcaloides presenta el mejor comportamiento frente a los par&aacute;sitos adultos. Es conocido que alcaloides como la Spiganthina de tipo rianodina pueden interaccionar con el canal Ca+2, al unir rianodina en lugar de glutamato para formar una uni&oacute;n irreversible que permite la contracci&oacute;n sostenida de los m&uacute;sculos esquel&eacute;ticos y la par&aacute;lisis caracter&iacute;stica <sup>(17,18)</sup>. De igual manera, los alcaloides de tipo &beta;-carbolina son nematocidas y poseen baja citotoxicidad, lo que los constituye en posibles f&aacute;rmacos <sup>(13)</sup>.</p>        <p>En el caso de los huevos de <i>T. canis</i>, la disminuci&oacute;n del porcentaje de huevos sin embri&oacute;n se debe a la concentraci&oacute;n empleada en el an&aacute;lisis y no al extracto usado para tal fin. Por ello se propone, como hip&oacute;tesis para futuros trabajos, que los metabolitos secundarios comunes a los dos extractos son los responsables de la actividad antiparasitaria. Estos metabolitos secundarios son flavonoides, lactonas y quinonas. Esto podr&iacute;a concordar con lo reportado para el caso de los flavonoides y catequinas que tienen actividad frente a formas amastigotes de <i>T. cruzi</i> <sup>(19)</sup> y con otros reportes tales, como el publicado por Barrau (2005), en el que se estudian los 3-flavandioles glucosilados presentes en esparceta (<i>Onobrychis viciifolia Scop</i>), que son capaces de inhibir las migraci&oacute;n de larvas de <i>Haemonchus contortus</i> <sup>(20)</sup>.</p>        ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Asimismo, las mol&eacute;culas del tipo de las quinonas, como la atovacuona, parecen actuar interfiriendo selectivamente el transporte electr&oacute;nico mitocondrial por inhibici&oacute;n del citocromo C, que hace parte del complejo respiratorio III en protozoos sensibles <sup>(21)</sup>, mientras que se han encontrado quinonas (fumiquinonas) provenientes de <i>Aspergillus fumigatus</i>, con actividad nematocida <sup>(22)</sup>. De igual forma, la actividad nematot&oacute;xica de la bacteria <i>Bacillus nematocida</i> sp., descubierta en 2005 por Huang y colaboradores, se explica porque posee cantidades apreciables de menaquinonas (una forma de vitamina K) <sup>(23)</sup>.</p>        <p>De igual forma, las lactonas han sido usadas por a&ntilde;os como antiparasitarios comerciales (ivomec y otros). Es el caso de las lactonas macroc&iacute;clicas de tipo avermectina. Se sabe que su principal acci&oacute;n se ejerce sobre los canales de flujo de i&oacute;n Cl- de las c&eacute;lulas musculares que quedan indefinidamente abiertos y provocan un cambio en la membrana y su correspondiente fallo en la neurotransmisi&oacute;n. Fruto de ello, el nematodo se paraliza y muere o es expulsado del intestino <sup>(24)</sup>. Sin embargo, se debe tener presente que la sobredosificaci&oacute;n del f&aacute;rmaco ha permitido la generaci&oacute;n de cepas resistentes, lo que ha motivado el creciente inter&eacute;s en mol&eacute;culas con mecanismos de acci&oacute;n alternativos y, por tanto, la b&uacute;squeda de metabolitos secundarios en plantas conocidas dentro del saber etnofarmacol&oacute;gico por su actividad antiparasitaria, como la que se ha presentado en este trabajo.</p>     <p><b>Agradecimientos</b> </p>      <p>A la Universidad del Quind&iacute;o, al programa de Qu&iacute;mica y al Centro de Investigaciones Biom&eacute;dicas.</p>        <p><b>Correspondencia:</b> Jhon Carlos Casta&ntilde;o. Grupo Inmunolog&iacute;a Molecular, Facultad Ciencias de la Salud, Universidad del Quind&iacute;o, Carrera 15 Calle 12 Norte, Armenia, Colombia. Tel&eacute;fono: +(57)67460168. <a href="mailto:jhoncarlos@uniquindio.edu.co">jhoncarlos@uniquindio.edu.co</a> </p>      <p><b>Referencias</b> </p>      <!-- ref --><p>1. Missouri Botanical Garden. <i>Ambrosia peruviana Willd</i>. - Herbarium Specimen. Tropicos.org updates. Fecha de consulta: 14 de noviembre de 2007. Disponible en: <a href="http://www.tropicos.org/NameSynonyms.aspx?nameid=2704452" target="_blank">http://www.tropicos.org/NameSynonyms.aspx?nameid=2704452</a>.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-9392201000030000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Solis P, Vasquez Y, Ayala H, Gupta M, 2002. Informe de validaci&oacute;n de algunas plantas TRAMIL. Informe TRAMIL. Centro de Investigaciones Farmacogn&oacute;sticas de la Flora Panamena CIFLORPAN, Facultad de Farmacai. Universidad de Panam&aacute;, Panam&aacute;, Panam&aacute;.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0123-9392201000030000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Mel&eacute;ndez PA, Capriles VA. Antibacterial properties of tropical plants from Puerto Rico. Phytomedicine. 2006;13:272-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0123-9392201000030000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Instituto Interamericano de Cooperaci&oacute;n para la Agricultura (IICA).Plantas medicinales y otras especies utiles: Diagnostico situacional sobre producci&oacute;n, industrializaci&oacute;n y comercializaci&oacute;n de plantas medicinales y otras especies &uacute;tiles. Managua, Octubre del 2005.Fecha de consulta: 27 de abril de 2007. Disponible en: <a href="http://www.iica.int.ni/%20Estudios_PDF/Plant_Medic.pdf" target="_blank">http://www.iica.int.ni/Estudios_PDF/Plant_Medic.pdf</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0123-9392201000030000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Torres H , Mendoza F, Hernandez J. Estudio preliminar en bioactividad y comportamiento agron&oacute;mico de diez especies silvestres de Plantas medicinales y de uso Biopesticida para su Aplicabilidad en el sector Rural de Daule, Provincia del Guayas. Proyecto Semillas. CICYT - FIMCP. ESPOL. Guayaquil, 2005.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-9392201000030000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Romo J, Joseph-Nathan P, Romo A, &Aacute;lvarez C. The structure of peruvinin, a pseudoguaianolide isolated from <i>Ambrosia peruviana Willd</i>. Tetrahedron. 1967;23:529-34. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-9392201000030000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Joseph-Nathan P, Romo J. Isolation and structure of peruvin. Tetrahedron. 1966;22:1723-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-9392201000030000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Gwendolyn G, Basil A. Sesquiterpene lactones of some Ambrosia species. Phytochemistry. 1969;8:877-81. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-9392201000030000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Sanabri, A. An&aacute;lisis fitoqu&iacute;mico preliminar. Metodolog&iacute;a y su aplicaci&oacute;n en la evaluaci&oacute;n de 40 plantas de la familia Compositae. Bogota: Facultad de Ciencias. Departamento de Farmacia. Universidad Nacional; 1983. p. 42, 56, 73, 75Dom&iacute;nguez XA. M&eacute;todos de investigaci&oacute;n fitoqu&iacute;mica. M&eacute;xico, D.F: Limusa; 1973.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-9392201000030000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Bilbao MR. An&aacute;lisis fitoqu&iacute;mico preliminar. Armenia: Universidad del Quind&iacute;o; 1997.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0123-9392201000030000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Osorio J. An&aacute;lisis del procedimiento para la determinaci&oacute;n de la DL50 (dosis letal media) a trav&eacute;s del m&eacute;todo de probit en un bioensayo. Fecha de consulta: 17 de noviembre de 2007. Disponible en: <a href="http://www.monografias.com/trabajos14/dosis-letal/dosis-letal.shtml?monosearch;" target="_blank">http://www.monografias.com/trabajos14/dosis-letal/dosis-letal.shtml?monosearch;</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-9392201000030000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12 Garcia J, Canton R, Garcia J, G&oacute;mez -Lus, Mart&iacute;nez L, Rodr&iacute;guez-Avial, Vila J. M&eacute;todos B&aacute;sicos para el estudio de la sensibilidad a los antimicrobianos 2000. Fecha de consulta: 23 de octubre de 2007. Disponible en: <a href="http://www.seimc.org/documentos/protocolos/microbiologia/cap11.htm" target="_blank">http://www.seimc.org/documentos/protocolos/microbiologia/cap11.htm</a> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-9392201000030000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Satou T, Horiuchi A, Akao N, Koike K, Fujita K, Nikaido T. <i>Toxocara canis</i>: Search for a potential drug amongst ß-carboline alkaloids -<i>in vitro</i> and mouse studies. Exp Parasitol. 2005; 110: 134-9. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-9392201000030000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Arango GJ. Alcaloides y compuestos nitrogenados. Medell&iacute;n, Colombia: Universidad de Antioquia; 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-9392201000030000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Lemmich E, Cornett C, Furu P, J&oslash;rstian C, Knudsen A, Olsen C, et al. Molluscicidal saponins from Catunaregam nilotica. Phytochemistry. 1995;39:63-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-9392201000030000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Sarker S, Laird A, Nahar L, Kumarasamy Y, Jaspars M. Indole alkaloids from the seeds of Centaurea cyanus (Asteraceae). Phytochemistry. 2001;57:1273-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0123-9392201000030000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Assis LM, Bevilaqua CML, Morais SM, Vieira LS, Costa CTC, Souza JAL. Ovicidal and larvicidal activity <i>in vitro</i> of Spigelia anthelmia Linn. extracts on <i>Haemonchus contortus</i>. Vet Parasitol. 2003;117:43-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0123-9392201000030000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Kim YK, Valdivia HH, Maryon EB, Anderson P, Coronado R. High molecular weight proteins in nematode C. elegans bind (3H) ryanodine and form a large conductance channel. Biophys J. 1992;63:1379-84. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0123-9392201000030000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Paveto C, Guida MC, Esteva MI, Martino V, Coussio J, Flawia MM, et al. Anti-Trypanosoma cruzi activity of green tea (Camellia sinensis) catechins, Antimicrob Agents Chemother. 2004;48:69-74. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0123-9392201000030000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Barrau E, Fabre N, Fouraste I, Hoste H. Effect of bioactive compounds from Sainfoin (Onobrychis viciifolia Scop.) on the <i>in vitro</i> larval migration of <i>Haemonchus contortus</i>: Role of tannins and flavonol glycosides. 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