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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Determinación de la actividad antifúngica de extractos de Lantana camara frente a Candida spp]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad del Quindío Centro de Investigaciones Biomédicas Grupo de Estudio en Parasitología y Micología Molecular]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: The aim of this study was to determine if Lantana camara extracts show antifungal activity against six Candida spp. species and one human isolate from primary origin. Methods: We extracted the total ethanol extracts by the percolation method and a chromatographic fractionation was carried out using solvents of different polarities. Functional groups were characterized by infrared spectroscopy. The antifungal activity was evaluated against six species of Candida spp. (C. albicans, C. dublinienses, C. krusei, C. guilliermondii, C. tropicalis, C. parapsilosis and a primary isolate of C. albicans). The growth inhibition test was performed in human serum and by observing growth curves at an absorbance of 600 nm. Results: Infrared spectroscopy confirmed the presence of flavonoids in the leaves and the stem of L. camara. A fraction from the stem inhibited C. dublinensis growth and another inhibited C. albicans and C. guillermondii growth. One fraction from the leaf inhibited C. krusei. Conclusions: Chromatographic fractions obtained from the stem and leaves of L. camara contained flavonoids with antifungal effect.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Candida albicans]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[extractos vegetales]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>    <center>ARTICULO ORIGINAL</center></p>     <p><font size="4">    <center><b>Determinaci&oacute;n de la actividad antif&uacute;ngica de extractos de Lantana camara frente a Candida spp</b></center></font></p>      <p><font size="3">    <center><b>Determination of antifungal activity of extracts of Lantana camara against Candida spp</b></center></font></p>      <p>    <center>Ana Karina Pardo<sup>1,2</sup>, Jhon Jairo Arenas<sup>1,2</sup>, Milton G&oacute;mez<sup>1</sup>, Fabiana Mar&iacute;a Lora<sup>2</sup>, Jorge Enrique G&oacute;mez<sup>2</sup></center></p>      <p><sup>1</sup>Grupo de B&uacute;squeda de Principios Bioactivos, Programa de Qu&iacute;mica, Universidad del Quind&iacute;o, Armenia, Colombia</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><sup>2</sup>Grupo de Estudio en Parasitolog&iacute;a y Micolog&iacute;a Molecular, Centro de Investigaciones Biom&eacute;dicas, Universidad del Quind&iacute;o, Armenia, Colombia</p>      <p>Recibido: 22/08/2010; Aceptado: 09/11/2011</p>  <hr size="1">      <p><b>Resumen</b></p>      <p><b>Objetivo. </b>El objetivo del trabajo fue determinar si los extractos de la planta <i>Lantana camara </i>presentan actividad antif&uacute;ngica frente a seis especies de <i>Candida </i>spp y un aislamiento humano de origen primario.</p>       <p><b>Materiales. </b>Se obtuvieron los extractos etan&oacute;licos totales por el m&eacute;todo de percolaci&oacute;n y se hizo fraccionamiento cromatogr&aacute;fico con eluyentes de diferente polaridad. Se caracterizaron los grupos funcionales mediante espectroscop&iacute;a infrarroja. La actividad antif&uacute;ngica se evalu&oacute; frente a seis especies de <i>C</i><i>&aacute;</i><i>ndida </i>spp. (<i>C. albicans</i>, <i>C. dubliniensis</i>, <i>C. krusei</i>, <i>C. guillermondii</i>, <i>C. tropicalis</i>, <i>C. parapsilosis </i>y un aislamiento primario de <i>C. albicans</i>). La prueba de inhibici&oacute;n del crecimiento se hizo con un ensayo en suero humano, observando con absorbancia a 600 nm las curvas de crecimiento relacionadas.</p>       <p><b>Resultados. </b>El an&aacute;lisis por espectroscop<b>&iacute;</b>a infrarroja demostr&oacute; la presencia de flavonoides en los tallos y en las hojas de <i>L. camara</i>. Se encontr&oacute; una fracci<b>&oacute;</b>n de tallo que inhibi&oacute; el crecimiento de <i>C. dublinensis </i>y <i>C. albicans</i>, tanto para la cepa de referencia como para el aislamiento primario, y otra que inhibi&oacute; <i>C. guillermondii</i>. Una fracci&oacute;n de hojas inhibi&oacute; <i>C. krusei.</i></p>      <p><b>Conclusiones. </b>Se encontraron fracciones con presencia de flavonoides y con efecto antif&uacute;ngico en el tallo y en las hojas de <i>L. camara.</i></p>      <p><b>Palabras clave: </b><i>Candida albicans</i>, extractos vegetales, anitif&uacute;ngico, <i>Lantana camara.</i></p>  <hr size="1">      <p><b>Abstract</b></p>      <p><b>Introduction: </b>The aim of this study was to determine if Lantana camara extracts show antifungal activity against six <i>Candida </i>spp. species and one human isolate from primary origin.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Methods: </b>We extracted the total ethanol extracts by the percolation method and a chromatographic fractionation was carried out using solvents of different polarities. Functional groups were characterized by infrared spectroscopy. The antifungal activity was evaluated against six species of <i>Candida </i>spp. (<i>C. albicans, C. dublinienses, C. krusei, C. guilliermondii, C. tropicalis, C. parapsilosis </i>and a primary isolate of <i>C. albicans</i>). The growth inhibition test was performed in human serum and by observing growth curves at an absorbance of 600 nm.</p>       <p><b>Results: </b>Infrared spectroscopy confirmed the presence of flavonoids in the leaves and the stem of <i>L. camara</i>. A fraction from the stem inhibited <i>C.</i> <i>dublinensis </i>growth and another inhibited <i>C. albicans </i>and <i>C. guillermondii </i>growth. One fraction from the leaf inhibited <i>C. krusei.</i></p>      <p><b>Conclusions: </b>Chromatographic fractions obtained from the stem and leaves of <i>L. camara </i>contained flavonoids with antifungal effect.</p>       <p><b>Key words: </b><i>Candida albicans</i>, plant extracts, anitifungal, <i>Lantana camara</i></p>  <hr size="1">      <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p><i>Candida albicans </i>es el hongo aislado con mayor frecuencia de las muestras cl&iacute;nicas en Colombia <sup>(1,2)</sup>. A pesar de que la sensibilidad a los antif&uacute;ngicos -principalmente, al fluconazol- es alta para <i>C. albicans</i>, las especies que no son <i>C. albicans</i> est&aacute;n aumentando significativamente y muchas de ellas presentan baja sensibilidad a los antif&uacute;ngicos utilizados tradicionalmente, especialmente las especies <i>C. krusei </i>y <i>C. glabrata </i><sup>(3)</sup>. En un estudio llevado a cabo en el Instituto Nacional de Cancerolog&iacute;a entre 2002 y 2004, se demostr&oacute; que 82 % de los aislamientos eran sensibles al fluconazol, 4 % eran sensibles seg&uacute;n la dosis y 14 % eran resistentes <sup>(4)</sup>. De esta manera, es prioritaria la b&uacute;squeda de nuevos antif&uacute;ngicos.</p>       <p>Una estrategia para identificar nuevos compuestos con propiedades antif&uacute;ngicas es el an&aacute;lisis de los compuestos derivados de los productos metab&oacute;licos de las plantas <sup>(5)</sup>. Los compuestos esenciales para la supervivencia de los organismos vegetales, son los metab&oacute;licos primarios: pero, adem&aacute;s de la ruta del metabolismo primario, las plantas pueden seguir otras rutas metab&oacute;licas que llevan a la formaci&oacute;n de compuestos usualmente caracter&iacute;sticos <sup>(5)</sup>. Estas rutas constituyen el metabolismo secundario y sus productos se denominan metabolitos secundarios.</p>       <p>La bios&iacute;ntesis de los metabolitos secundarios suele estar restringida a estados espec&iacute;ficos del desarrollo, respectivamente del organismo y de c&eacute;lulas especializadas, y a periodos de estr&eacute;s causados por la deficiencia de nutrientes o por el ataque de microorganismos <sup>(5)</sup>. Muchos metabolitos secundarios est&aacute;n implicados en relaciones ecol&oacute;gicas, es decir, en la relaci&oacute;n de la planta productora con otros organismos de su &aacute;mbito natural. Ejemplo de ellos son los pigmentos de las flores que atraen a los insectos polinizadores y los compuestos que inhiben el crecimiento de otros organismos (sustancias alelop&aacute;ticas) o que protegen a la planta de infecciones (fitoalexinas) o de depredadores (disuasorios nutritivos).</p>       <p>El metabolismo primario proporciona un n&uacute;mero de peque&ntilde;as mol&eacute;culas, entre las que cabe destacar el &aacute;cido shik&iacute;mico, el acetato y los amino&aacute;cidos, los cuales constituyen los materiales de partida para las rutas m&aacute;s importantes del metabolismo secundario <sup>(5)</sup>.</p>       <p>Para el hombre, el metabolismo secundario vegetal es una fuente importante de principios activos de medicamentos y de otros valiosos productos qu&iacute;micos. Este trabajo tuvo como prop&oacute;sito analizar metabolitos segundarios de la planta <i>Lantana camara </i>(nombre vulgar: venturosa, bandera de Espa&ntilde;a), una planta muy com&uacute;n, de f&aacute;cil acceso, perteneciente a la familia Verbenaceae y en la cual se han identificado sesquiterpenoides <sup>(6)</sup>, los cuales han demostrado actividad antif&uacute;ngica <sup>(7)</sup>, por lo cual nos interesamos en determinar este tipo de actividad antimicrobiana en los metabolitos de esta planta.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p><b><i>Recolecci&oacute;n y selecci&oacute;n del material vegetal</i></b></p>     <p>La recolecci&oacute;n de la planta <i>L. camara </i>(<a href="#figura1">figura 1</a>) se hizo en los alrededores del laboratorio de poscosecha de la Universidad del Quind&iacute;o, donde se encuentra en gran abundancia. Se decidi&oacute; recolectarla despu&eacute;s de las 6 p.m., pues a esta hora no se ven afectados los metabolitos secundarios. Posteriormente, se seleccionaron el tallo y las hojas, a los cuales se les practicaron los an&aacute;lisis fitoqu&iacute;micos.</p>      <p>    <center><a name="figura1"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a05i1.jpg "></a></center></p>       <p><b><i>Secado, molienda y tamizaci&oacute;n del material vegetal</i></b></p>      <p>Una vez seleccionado el material, se envolvi&oacute; en papel peri&oacute;dico y se puso a secar en el horno a una temperatura de 40 0C durante una semana, haci&eacute;ndole seguimiento todos los d&iacute;as y cambiando el papel para evitar la posible formaci&oacute;n de hongos. Posteriormente, se moli&oacute; el material vegetal y se tamiz&oacute; hasta obtener part&iacute;culas de un tama&ntilde;o homog&eacute;neo.</p>       <p><b><i>Obtenci&oacute;n de los extractos totales y</i> <i>fracciones cromatogr&aacute;ficas</i></b></p>      <p>Se pesaron 350 g del material de tallos y 850 g del material de hojas. Se obtuvieron los extractos etan&oacute;licos de cada una de las partes de la planta por medio del m&eacute;todo de percolaci&oacute;n, utilizando percoladores de un litro para los tallos y de dos litros para las hojas, y usando como solvente etanol al 96 %. Este paso fue rectificado previamente, por medio de un equipo de destilaci&oacute;n fraccionada acoplado a un recirculador de agua. La percolaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo hasta el agotamiento total del material, lo cual dur&oacute; un mes para los tallos y dos meses para las hojas.</p>       <p>El extracto obtenido se iba concentrando mediante un rotaevaporador, recuperando el etanol para recircularlo a la extracci&oacute;n. El extracto concentrado se sec&oacute; en c&aacute;psula de porcelana por medio de ba&ntilde;o de Mar&iacute;a. Una vez obtenido el extracto seco, se hizo partici&oacute;n con diclorometano y agua destilada, para separar los carbohidratos presentes. La fase org&aacute;nica (diclorometano) se evapor&oacute; hasta eliminar el solvente; el residuo obtenido se pes&oacute; para, posteriormente, montar la cromatograf&iacute;a en columna.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para la obtenci&oacute;n de las fracciones cromatogr&aacute;ficas, se prepar&oacute; una columna con 50 g de s&iacute;lica gel 60 (0,06 a 0,2 mm) y luego se pesaron 5g de extracto, tanto de hojas como de tallos, y 5 g de s&iacute;lica gel 60 (0,063-0,200 mm) para capa delgada, lo cual fue adicionado a la columna. Posteriormente, se inici&oacute; su eluci&oacute;n con diclorometano.</p>       <p>Las fracciones se recolectaron en viales y se hizo seguimiento de las mismas por medio de cromatograf&iacute;a en capa delgada, visualizando de esta manera si presentaban un perfil similar para reunirlas y observar si el eluyente a&uacute;n estaba separando los compuestos. De lo contrario, se cambiaba de polaridad. Se utilizaron diferentes eluyentes con grados variables de polaridad, para tallos y hojas.</p>       <p>Los grupos funcionales de algunas de las fracciones cromatogr&aacute;ficas se caracterizaron mediante espectroscop&iacute;a infrarroja.</p>       <p><b><i>Obtenci&oacute;n del extracto etan&oacute;lico para las marchas fitoqu&iacute;micas</i></b></p>      <p>Los extractos etan&oacute;licos se obtuvieron seg&uacute;n la metodolog&iacute;a expuesta por Sanabria <sup>(5)</sup>. Se analizaron los alcaloides a partir del extracto etan&oacute;lico, an&aacute;lisis de esteroides y tripertenoides libres, de naftoquinonas y antraquinonas, de saponinas y de taninos. Para cada una de las reacciones, tanto de las hojas como de los tallos, los resultados se valoraron de manera semicuantitativa en cruces, de acuerdo con la apreciaci&oacute;n subjetiva del evaluador de la intensidad del color y relativa a un control sin extractos, as&iacute;:</p>      <p>&bull; +: presencia escasa del metabolito secundario;</p>      <p>&bull; ++: presencia moderada del metabolito secundario;</p>      <p>&bull; +++: presencia abundante del metabolito secundario, y</p>      <p>&bull; -: ausencia del metabolito secundario.</p>       <p><b><i>Aislamientos de Candida spp.</i></b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para la evaluaci&oacute;n de la actividad antif&uacute;ngica, se utilizaron aislamientos de referencia de <i>Candida</i> spp.de seis especies diferentes: <i>C. albicans</i> IP121580 - ATCC28516, <i>C. tropicalis </i>M 0500391, <i>C. parapsilosis </i>M 0500396, <i>C. krusei </i>ATCC6258, <i>C. dubliniensis </i>M 0500378, <i>C. guillermondi </i>3483 y un aislamiento de <i>C. albicans </i>obtenido de una paciente con vaginitis. Los aislamientos se cultivaron en agar Sabouraud con suplemento de cloramfenicol a 37 0C durante 48 horas. Posteriormente, se tom&oacute; una colonia de cada especie de <i>Candida </i>con un asa de aluminio est&eacute;ril y se adicionaron a tubos tipo <i>Eppendorf</i>, que conten&iacute;an 1 ml de PBS 1X est&eacute;ril pH 7,4. Despu&eacute;s, se compar&oacute; cada tubo con la escala de McFarland,desde el tubo 1 con 0 colonias, hasta el tubo  n&uacute;mero cinco, que conten&iacute;a 1.500 millones de c&eacute;lulas por mililitro.</p>      <p><b><i>Evaluaci&oacute;n de la actividad antif&uacute;ngica</i></b></p>      <p>Inicialmente, se hizo una tamizaci&oacute;n para observar si las fracciones cromatogr&aacute;ficas presentaban un efecto inhibitorio frente a las especies de <i>Candida </i>spp<i>. </i>Se seleccionaron doce fracciones cromatogr&aacute;ficas de diferentes polaridades, de hojas y de tallos.</p>       <p>La tamizaci&oacute;n inicial se llev&oacute; a cabo en placas de 96 pocillos, usando tres concentraciones diferentes de las fracciones diluidas en dimetilsulf&oacute;xido (DSMO) en concentraciones de 100, 250 y 500 &mu;g/ml. A cada pocillo se le adicionaron 100 &mu;l de medio Sabouraud con suplemento de cloramfenicol previamente est&eacute;ril, 50 &mu;l de fracci&oacute;n y 50 &mu;l de cada una de las especies de <i>Candida.</i> Luego, se incub&oacute; a 37 0C y se observ&oacute; a las 24 horas. El control negativo fue el medio solo con DSMO.</p>       <p>La lectura se hizo de manera visual, se consider&oacute; crecimiento donde hab&iacute;a turbidez del medio y sin crecimiento si el medio permanec&iacute;a claro. Las fracciones en las que no se observ&oacute; crecimiento de las levaduras se seleccionaron para un nuevo ensayo, utilizando suero humano como medio de crecimiento de las especies de <i>Candida </i>spp. A cada tubo de ensayo se le adicionaron 200 &mu;l de suero humano y 100 &mu;l de <i>Candida </i>spp. que conten&iacute;an 1 x 106 levaduras, y se llev&oacute; a cabo la incubaci&oacute;n durante una hora. Despu&eacute;s se adicionaron 100 &mu;l de cada fracci&oacute;n cromatogr&aacute;fica diluida en DSMO y se ley&oacute; la absorbancia en un espectrofot&oacute;metro a 600 nm de cada uno de los tubos, luego de 24 horas de incubaci&oacute;n. Este procedimiento se hizo por triplicado. A mayor crecimiento de la levadura, se observaba aumento de la absorbancia.</p>       <p>Se tomaron dos controles, el control negativo para crecimiento que conten&iacute;a suero humano, <i>Candida </i>spp. y fluconazol (Laboratorio La Sant&eacute;, Bogot&aacute;, lote 0909) en igual concentraci&oacute;n que las fracciones ensayadas (500, 250 y 100 &mu;g/ml). El control positivo de crecimiento s&oacute;lo conten&iacute;a suero y las diferentes especies de <i>Candida</i>.</p>       <p>Con las lecturas de las absorbancias se efectu&oacute; el an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) con modelos lineales generalizados, por medio del programa <i>Statgraphics Centurion </i>XV&reg;.</p>       <p><b>Resultados</b></p>      <p><b><i>An&aacute;lisis fitoqu&iacute;mico preliminar</i></b></p>      <p>El an&aacute;lisis fitoqu&iacute;mico preliminar de los extractos etan&oacute;licos de las hojas y de los tallos de la especie <i>L. camara</i>, demostr&oacute; la existencia de una gran variedad de metabolitos secundarios (<a href="#tabla1">tabla 1</a>), lo que justific&oacute; el fraccionamiento cromatogr&aacute;fico.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="tabla1"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a05t1.gif"></a></center></p>      <p>Los tallos de la planta se fraccionaron usando inicialmente el diclorometano como eluyente. En los siete viales recolectados de las primeras fracciones procedentes de la columna, se notaron diferencias en las tonalidades luego de correrlas sobre una placa de s&iacute;lice. Posteriormente, se realiz&oacute; cromatograf&iacute;a en capa delgada usan do como fase m&oacute;vil diclorometano y, luego, se asperj&oacute; con vainillina-etanol de en &aacute;cido ortofosf&oacute;rico. Se observ&oacute; la presencia de sesquiterpenlactonas (manchas de color violeta).</p>       <p><b><i>Fraccionamiento del extracto etan&oacute;lico de</i></b> <b><i>las hojas</i></b></p>      <p>El procedimiento para fraccionar el extracto entero de las hojas fue similar al de los tallos. En los extractos de hojas, la prueba de Shinoda fue negativa y la prueba de tricloruro f&eacute;rrico fue positiva.</p>       <p><b><i>An&aacute;lisis por espectroscop&iacute;a infrarroja</i></b></p>      <p>Se seleccionaron las fracciones de tallos y hojas con resultados positivos para las pruebas qu&iacute;micas de flavonoides y se practic&oacute; espectroscop&iacute;a infrarroja en la cual se observ&oacute; un pico a 3.118,35 cm-1 (grupo funcional OH) y otro a 1.630,66 cm-1 (grupo funcional de vibraci&oacute;n de alargamiento C=C). Estos dos picos son caracter&iacute;sticos de los flavonoides y confirmaron los hallazgos de las pruebas qu&iacute;micas.</p>       <p><b><i>Evaluaci&oacute;n de la actividad anti-Candida</i></b></p>      <p>Se evalu&oacute; la actividad antif&uacute;ngica de los extractos obtenidos en el fraccionamiento cromatogr&aacute;fico (<a href="#tabla2">tabla 2</a>). De las 12 fracciones seleccionadas, nueve presentaron alguna actividad anti<i>Candida </i>en la tamizaci&oacute;n inicial y luego se llevaron al ensayo por absorbancia de acuerdo con la especie a la que mostraron alguna actividad.</p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="tabla2"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a05t2.gif"></a></center></p>      <p>Para <i>C. albicans</i>, en el ensayo por absorbancia en suero humano, la fracci&oacute;n 1 de tallos no present&oacute; ninguna actividad en la concentraci&oacute;n de 500 &mu;g/ml para la cepa de referencia de <i>C. albicans</i> (<a href="#figura2">figura 2</a>), ni tampoco para la especie <i>C. guillermondii</i> (<a href="#figura3">figura 3</a>), pero inhibi&oacute; el crecimiento de <i>C. dublinienses </i>(<a href="#figura4">figura 4</a>) en la concentraci&oacute;n de 250 &mu;g/ml. La fracci&oacute;n 2 de los tallos present&oacute; buena actividad frente a la cepa de referencia de <i>C. albicans </i>(<a href="#figura1">figura 1</a>), pero menor frente al aislamiento humano de origen primario (<a href="#figura5">figura 5</a>), y gran inhibici&oacute;n para <i>C. guillermondii </i>(<a href="#figura3">figura 3</a>). La fracci&oacute;n 3 tuvo efecto sobre la cepa de referencia de <i>C. albicans </i>(<a href="#figura2">figura 2</a>) y <i>C. guillermondii</i> (<a href="#figura3">figura 3</a>), pero no sobre el aislamiento primario de <i>C. albicans </i>(<a href="#figura5">figura 5</a>). Para la especie <i>C. parapsilosis</i> (<a href="#figura6">figura 6</a>), ninguna fracci&oacute;n tuvo efecto significativo e, incluso, la fracci&oacute;n 2 llev&oacute; a un <i>tropicalis </i>tampoco se encontr&oacute; inhibici&oacute;n de las fracciones ensayadas; por el contrario, la fracci&oacute;n 8 aument&oacute; su crecimiento (<a href="#figura7">figura 7</a>). Para <i>C.</i> <i>krusei </i>s&oacute;lo la fracci&oacute;n 6 de las hojas tuvo efecto inhibidor significativo (<a href="#figura8">figura 8</a>).</p>      <p>    <center><a name="figura2"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a05i2.jpg "></a></center></p>      <p>    <center><a name="figura3"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a05i3.jpg "></a></center></p>      <p>    <center><a name="figura4"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a05i4.jpg "></a></center></p>      <p>    <center><a name="figura5"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a05i5.jpg "></a></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="figura6"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a05i6.jpg "></a></center></p>      <p>    <center><a name="figura7"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a05i7.jpg "></a></center></p>      <p>    <center><a name="figura8"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a05i8.jpg "></a></center></p>      <p>En s&iacute;ntesis, las fracciones m&aacute;s interesantes con actividad antif&uacute;ngica fueron las fracciones del tallo: la fracci&oacute;n 1 que inhibi&oacute; el crecimiento de <i>C. dublinensis</i>, la fracci&oacute;n 2 que mostr&oacute; resultados constantes de inhibici&oacute;n para <i>C. albicans</i>, tanto para la cepa de referencia como para el aislamiento primario, y para <i>C. guillermondii</i>, y la fracci&oacute;n 6 que inhibi&oacute; <i>C. krusei</i>.</p>      <p><b>Discusi&oacute;n</b></p>      <p><i>Lantana camara </i>es una especie poco estudiada fitoqu&iacute;micamente. En uno de los estudios se encontr&oacute; que conten&iacute;a dos nuevos triterpenoides: los &aacute;cidos camar<b>&iacute;</b>lico y el camarac &iacute;nico <sup>(6)</sup>. Esto es similar a nuestros resultados, ya que tambi&eacute;n se encontraron triterpenoides.</p>      <p>En otros estudios revisados, se reporta la actividad  antipal&uacute;dica de los extractos acuosos crudos de tres especies de plantas <i>L. camara</i>, junto a otras plantas usadas en la medicina tradicional venezolana para tratar la malaria o la fiebre <sup>(8)</sup>. En este estudio se utilizaron ratones suizos albinos inoculados con <i>Plasmodium berghei</i>, a los cuales les administraron oralmente los extractos. Los resultados mostraron que el extracto de <i>Lantana</i>, en una dosis de 500 mg/kg/d&iacute;a, ten&iacute;a actividad antipal&uacute;dica, disminuyendo los niveles de par&aacute;sitos, pero sin mejorar la supervivencia de los ratones <sup>(8)</sup>. En este mismo estudio venezolano, se determin&oacute; la actividad antioxidante de los metabolitos secundarios vol&aacute;tiles de tres plantas de la familia Verbenaceae (<i>Lippia alba</i>, <i>Aloysiatriphylla</i> y <i>Lantana camara) </i>y se obtuvieron sus aceites por diferentes t&eacute;cnicas de extracci&oacute;n. El aceite esencial de <i>L. camara </i>fue de tipo sesquiterpenoide; m&aacute;s de 60 % de la mezcla lo representan hidrocarburos sesquiterp&eacute;nicos y sus an&aacute;logos oxigenados. Los aceites esenciales de las tres plantas de la familia Verbenaceae mostraron un efecto protector antioxidante <i>in vitro</i>, siendo el aceite de <i>L. camara </i>el m&aacute;s activo de todos, seguido del aceite de <i>L. alba </i><sup>(8)</sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los sesquiterpenoides han demostrado actividad antif&uacute;ngica, la cual se ha relacionado con su grupo <i>&alpha;</i>-metileno-<i>&gamma;</i>-lactona, la cual es aumentada por un grupo aceptor de Michaelle que lo hace m&aacute;s liposoluble y le permite pasar a trav&eacute;s de la pared de la levadura <sup>(7)</sup>.</p>      <p>El n&uacute;mero de especies de plantas conocidas oscila entre 250.000 y 500.000 <sup>(9,10)</sup>. Esta riqueza es un recurso que no se aprovecha totalmente, a pesar de que su uso en el tratamiento de diversas enfermedades es ancestral. Dicha costumbre se ha conservado hasta nuestros d&iacute;as, principalmente en poblaciones rurales, lo que ha permitido acumular un amplio conocimiento etno- farmacol&oacute;gico, punto importante de partida en las investigaciones dirigidas a la b&uacute;squeda de productos naturales con actividad biol&oacute;gica <sup>(11-14)</sup>. En otros estudios tambi&eacute;n se reporta la actividad antif&uacute;ngica  de metabolitos contra <i>Candida </i>spp., a partir de extractos de hojas y de aceites, y a partir de estos se han elaborado fitof&aacute;rmacos <sup>(9,11)</sup>.</p>      <p>En este trabajo se obtuvieron fracciones de flavonoides con actividad antif&uacute;ngica contra <i>C. al</i><i> bicans</i>, <i>C. dublinensis </i>y <i>C. guillermondi</i>. Algunas fracciones tuvieron un efecto contrario y lograron, incluso, aumentar el crecimiento de algunas especies de <i>Candida</i>. Esto resalta la necesidad de obtener compuestos muy purificados y discriminar los efectos de cada uno. Tambi&eacute;n, vale la pena anotar la diferenciaci&oacute;n de los efectos de cada compuesto para cada especie, lo cual sugiere que no se tratan de efectos generales sobre levaduras. La comprensi&oacute;n de los mecanismos de acci&oacute;n de estos compuestos sobre cada especie, podr&iacute;a utilizarse para entender las diferencias metab&oacute;licas entre estas especies del g&eacute;nero. Las fracciones obtenidas ameritan estudios adicionales de toxicidad <i>in vitro </i>e <i>in vivo</i>, y continuar su an&aacute;lisis.</p>      <p>En conclusi&oacute;n, en el presente estudio se identificaron fracciones del tallo de <i>L. camara </i>con potencial antif&uacute;ngico, que ameritan ser evaluadas en un modelo animal y, posteriormente, en humanos.</p>      <p>Correspondencia: Jorge G&oacute;mez-Mar&iacute;n, GEPAMOL, Centro de Investigaciones Biom&eacute;dicas, Universidad del Quind&iacute;o, Avenida Bol&iacute;var 12N, Armenia, Colombia. Direcci&oacute;n electr&oacute;nica: <a href="mailto:gepamol2@uniquindio.edu.co">gepamol2@uniquindio.edu.co</a></p>      <p><b>Referencias</b></p>      <!-- ref --><p>1. Cort&eacute;s JA, Leal AL, &Aacute;lvarez CA. Frecuencia de aislamientos mic&oacute;ticos en hospitales de tercero y cuarto nivel en Bogot&aacute; 2001-2002. Infectio. 2003;7:110.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0123-9392201100040000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Salas N, Ram&iacute;rez JF, Ruiz B, Torres E, Jaramillo LN, G&oacute;mez JE. Prevalencia de microorganismos asociados a infecciones vaginales en 230 mujeres gestantes y no gestantes sintom&aacute;ticas del centro de salud La Milagrosa en el municipio de Armenia. Revista Colombinana de Ginecolog&iacute;a y Obstetricia. 2009;60:135-42&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0123-9392201100040000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Torres N. M&eacute;todos para la detecci&oacute;n de resistencia a los antimic&oacute;ticos. Infectio<i>. </i>2005;9:188-96.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0123-9392201100040000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Rivas J, Cort&eacute;s JA, Cuervo SI, Vanegas EP, Paredes MC, Berm&uacute;dez D. Resistencia al fluconazol en aislamientos cl&iacute;nicos de <i>Candida</i> en un centro de referencia de pacientes con c&aacute;ncer, Bogot&aacute;, Colombia. Revista Peruana de Enfermedades Infecciosas y Tropicales. 2004;3:21.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0123-9392201100040000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Sanabria A. An&aacute;lisis fitoquimico preliminar (tesis). Bogota: Universidad Nacional de Colombia; 1983. p. 64-74.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0123-9392201100040000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Begum S, Zehra SQ, Siddiqui BS, Fayyaz S, Ramzan M. Pentacyclic triterpenoids from the aerial parts of <i>Lantana camara </i>and their nematicidal activity. Chem Biodivers. 2008;5:1856-66.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0123-9392201100040000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Barrero AF, Oltra JE, &Aacute;lvarez M, Raslan DS, Sa&uacute;de DA, Akssira M. New sources and antifungal activity of sesquiterpene lactones. Fitoterapia. 2000;71:60-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0123-9392201100040000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Carrillo RT, D&iacute;az A. Actividad antimal&aacute;rica de extractos acuosos de <i>Lantana camara </i>L. <i>Verbena Littoralis L</i>. y <i>Heliotropium indicum L. </i>en ratones infectados con <i>Plasmodium berghei</i>. Revista de la Facultad de Farmacia. 2006;48:14-20.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0123-9392201100040000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Fransworth NR, Akerele O, Bingel AS, Soejarto DD, Guo Z. Medicinal plants in therapy. Bull World Health Org. 1995;63:965-81.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0123-9392201100040000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Verpoorte R. Exploration of nature&acute;s chemodiversity: The role of secondary metabolites as leads in drug development. Drug Disc Today.1998;3:232-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0123-9392201100040000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Cowan MM. Plant products as antimicrobial agents. Clin Microbiol Rev. 1999;12:564-82.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0123-9392201100040000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. V&aacute;squez J, Arganoza M, BorkovD, Vaishampayan J, Akins R. <i>In vitro</i> susceptibilities of <i>Candida </i>and <i>Aspergillus </i>species to <i>Melaleuca alternifolia</i> (tea tree oil). Rev Iberoam Micol. 2000;17:60-3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0123-9392201100040000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Miyazawa M, Okuno Y, Nakamura S, Kosaka H. Antimutagenic activity of flavonoids from <i>Pogostemoncablin</i>. J Agric Food Chem. 2000;48:642-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0123-9392201100040000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Rangel D, Garc&iacute;a I, Velasco J, Buitrago D, Velazco E. Actividad antimicrobiana de los extractos etan&oacute;lico, acet&oacute;nico y acuoso de <i>Baccharis</i> <i>nitida </i>(Ruiz et Pavon) Pers. Revista de la Facultad de Farmacia. 2001;42:43-6&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0123-9392201100040000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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