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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ELFA IgG anti-Toxoplasma y PCR anidada para el diagnóstico de toxoplasmosis en mujeres gestantes de Sincelejo, Colombia]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[ELFA anti-Toxoplasma IgG and nested PCR for the diagnosis of toxoplasmosis in pregnant women from Sincelejo, Colombia]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Sucre, Sincelejo Grupo de Investigaciones Biomédicas ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Toxoplasmosis is a worldwide disease caused by the protozoan parasite Toxoplasma gondii, which can produce serious damage in immune compromised patients and congenitally infected newborns. Serological screening for T. gondii infection is not currently included in the routine prenatal control for pregnant women in the department of Sucre; moreover, techniques used for diagnosis of congenital toxoplasmosis do not show enough sensitivity in the detection of active cases of toxoplasmosis in order to offer opportune treatment and to reduce the consequences of this infection in the newborn. Objective: To detect DNA of Toxoplasma gondii by nested PCR assay in peripheral blood samples of seronegative pregnant women from Sincelejo, Sucre. Materials and methods: Nested PCR assay was done using DNA extracted from peripheral blood samples of 100 seronegative pregnant women by Elfa anti-Toxoplasma IgG assay from the city of Sincelejo, throughout a 17 month period. Results: T. gondii DNA was detected in 12 of the 100 pregnant women included in this study. It was possible to follow 7 of them, and only 4 showed high titles of IgG antibodies obtaining an overall seroconversion of 57,1% in positive pregnant women by the PCR assay. Conclusions: These results demonstrate the utility of a PCR test to detect Toxoplasma gondii DNA in peripheral blood samples of seronegative pregnant women by ELFA anti-Toxoplasma IgG test. This research also confirms the importance of combining serological tests with molecular techniques to improve the diagnosis of Toxoplasma gondii infection.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>    <center>ARTICULO ORIGINAL</center></p>     <p><font size="4">    <center><b>ELFA IgG anti-Toxoplasma y PCR anidada para el diagn&oacute;stico de toxoplasmosis en mujeres gestantes de Sincelejo, Colombia</b></center></font></p>      <p><font size="3">    <center><b>ELFA anti-Toxoplasma IgG and nested PCR for the diagnosis of toxoplasmosis in pregnant women from Sincelejo, Colombia</b></center></font></p>      <p>    <center>Pedro Jos&eacute; Blanco<sup>1</sup>, Yulenis Margarita Assia<sup>1</sup>, Yina Margarita Montero<sup>1</sup>, Kelly Estela Orozco<sup>1</sup></center></p>  <sup>1</sup>Grupo de Investigaciones Biom&eacute;dicas, Universidad de Sucre, Sincelejo, Colombia</p>      <p>Recibido: 06/09/2011; Aceptado: 09/11/2011</p>  <hr size="1">       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resumen</b></p>     <p><b>Introducci&oacute;n. </b>La vigilancia serol&oacute;gica de la toxoplasmosis no se incluye com&uacute;nmente en el control prenatal de las mujeres gestantes del departamento de Sucre; adem&aacute;s, las t&eacute;cnicas usadas para el diagn&oacute;stico de la toxoplasmosis cong&eacute;nita no tienen suficiente sensibilidad para detectar los casos activos con el fin de instaurar un tratamiento oportuno y, as&iacute;, reducir las secuelas en el reci&eacute;n nacido. El objetivo de este trabajo fue utilizar la amplificaci&oacute;n de ADN de <i>T. gondii </i>mediante la t&eacute;cnica de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) anidada en muestras de sangre de mujeres gestantes seronegativas de Sincelejo, para detectar la presencia del par&aacute;sito.</p>       <p><b>Materiales y m&eacute;todos. </b>La PCR anidada se realiz&oacute; durante un per&iacute;odo de 17 meses a partir del ADN extra&iacute;do de las muestras de sangre de 100 mujeres gestantes de Sincelejo, seronegativas por la prueba ELFA (<i>Enzyme-Linked Fluorescent Assay</i>) IgG ant-<i>Toxoplasma</i>.</p>       <p><b>Resultados. </b>Se detect&oacute; ADN de <i>T. gondii </i>en 12 de las 100 mujeres gestantes incluidas en el estudio. Fue posible contactar para seguimiento a siete de ellas; en cuatro se detectaron t&iacute;tulos de anticuerpos IgG, que correspond&iacute;an a la seroconversi&oacute;n de mujeres gestantes positivas por PCR.</p>       <p><b>Conclusiones</b>. La utilidad de la t&eacute;cnica de PCR en la detecci&oacute;n de ADN de <i>T. gondii </i>en muestras de sangre perif&eacute;rica de mujeres gestantes con resultados negativos por la prueba ELFA IgG anti-<i>Toxoplasma</i>. Esta investigaci&oacute;n demuestra la importancia de combinar las pruebas serol&oacute;gicas con t&eacute;cnicas moleculares para mejorar el diagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n por <i>T. gondii.</i></p>      <p><b>Palabras clave: </b><i>Toxoplasma gondii</i>, PCR anidada, seronegativa, embarazada, Sincelejo.</p>  <hr size="1">       <p><b>Abstract</b></p>      <p><b>Introduction: </b>Toxoplasmosis is a worldwide disease caused by the protozoan parasite <i>Toxoplasma gondii</i>, which can produce serious damage in immune compromised patients and congenitally infected newborns. Serological screening for <i>T. gondii </i>infection is not currently included in the routine prenatal control for pregnant women in the department of Sucre; moreover, techniques used for diagnosis of congenital toxoplasmosis do not show enough sensitivity in the detection of active cases of toxoplasmosis in order to offer opportune treatment and to reduce the consequences of this infection in the newborn.</p>       <p><b>Objective: </b>To detect DNA of <i>Toxoplasma gondii by </i>nested PCR assay in peripheral blood samples of seronegative pregnant women from Sincelejo, Sucre.</p>       <p><b>Materials and methods: </b>Nested PCR assay was done using DNA extracted from peripheral blood samples of 100 seronegative pregnant women by Elfa anti-Toxoplasma IgG assay from the city of Sincelejo, throughout a 17 month period.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Results: </b><i>T. gondii </i>DNA was detected in 12 of the 100 pregnant women included in this study. It was possible to follow 7 of them, and only 4 showed high titles of IgG antibodies obtaining an overall seroconversion of 57,1% in positive pregnant women by the PCR assay.</p>       <p><b>Conclusions</b>: These results demonstrate the utility of a PCR test to detect <i>Toxoplasma gondii </i>DNA in peripheral blood samples of seronegative pregnant women by ELFA anti-<i>Toxoplasma </i>IgG test<i>. </i>This research also confirms the importance of combining serological tests with molecular techniques to improve the diagnosis of <i>Toxoplasma gondii </i>infection.</p>       <p><b>Key words: </b><i>Toxoplasma gondii</i>, nested PCR, seronegative, pregnant, Sincelejo.</p>  <hr size="1">     <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>      <p><i>Toxoplasma gondii </i>es un protozoario que se comporta como par&aacute;sito intracelular obligado <sup>(1,2)</sup>; sus hu&eacute;spedes definitivos son los gatos, y los intermediarios son los humanos, mam&iacute;feros, aves y peces <sup>(3,4)</sup>. Este protozoo es el agente causal de la toxoplasmosis, enfermedad parasitaria que en los adultos cursa casi siempre asintom&aacute;tica <sup>(5)</sup>; sin embargo, los casos m&aacute;s graves se presentan en personas con depresi&oacute;n inmunitaria y en reci&eacute;n nacidos que han adquirido la infecci&oacute;n cong&eacute;nitamente <sup>(6,7,8)</sup>.</p>       <p>La toxoplasmosis cong&eacute;nita se debe a una infecci&oacute;n aguda, generalmente asintom&aacute;tica. Cuando es adquirida por primera vez durante el embarazo, puede transmitirse al feto, ocasion&aacute;ndole problemas de salud que pueden presentarse al nacer o desarrollarse en etapas tard&iacute;as de la vida <sup>(6,9)</sup>. Cuando la madre se infecta en el &uacute;ltimo trimestre del embarazo, existe un riesgo de transmisi&oacute;n del 65 %; esta cifra disminuye a 30-54 % cuando la infecci&oacute;n fue adquirida en el segundo trimestre y a 10-15 % si lo fue en el primer trimestre <sup>(10)</sup>.</p>       <p>En aquellos casos en los que la infecci&oacute;n se produce al principio del embarazo, se desarrolla la enfermedad en la vida intrauterina y puede ocasionar abortos, encefalomielitis, macrocefalia, hidrocefalia, trastornos oculares y retraso psicomotriz <sup>(7,11,12)</sup>; si la infecci&oacute;n es adquirida durante el segundo o tercer trimestre, se pueden presentar lesiones graves pero con manifestaciones tard&iacute;as, como epilepsia, retardo en el desarrollo neuros&iacute;quico, retinocoroiditis y calcificaciones cerebrales <sup>(6,7)</sup>. Teniendo en cuenta las consecuencias de la enfermedad, se considera indispensable hacer un seguimiento de las mujeres en gestaci&oacute;n no s&oacute;lo en sus primeros meses, sino durante todo el embarazo <sup>(13)</sup>.</p>       <p>En Colombia, el Estudio Nacional de Salud de 1980 report&oacute; que 47 % de la poblaci&oacute;n general hab&iacute;a tenido contacto con el par&aacute;sito, evidenciado por la detecci&oacute;n de anticuerpos IgG anti- <i>Toxoplasma</i>; en la Regi&oacute;n Caribe se reportaron los t&iacute;tulos m&aacute;s altos del pa&iacute;s <sup>(14,15)</sup>. La infecci&oacute;n por <i>T. gondii </i>se presenta en 1 a 2 % de la poblaci&oacute;n de mujeres embarazadas, las cuales transmitir&aacute;n la enfermedad al feto en el 50 % de los casos; de &eacute;stos, 90 % corresponder&iacute;a a infecci&oacute;n asintom&aacute;tica en reci&eacute;n nacidos.</p>       <p>La toxoplasmosis cong&eacute;nita en el pa&iacute;s es a&uacute;n un problema de salud p&uacute;blica importante; se calcula que cada a&ntilde;o aparecen de 2 a 10 casos de infecci&oacute;n cong&eacute;nita por cada 1.000 reci&eacute;n nacidos <sup>(13)</sup>; sin embargo, ni el Ministerio de la Protecci&oacute;n Social, ente encargado de la vigilancia y control de la enfermedad, ni los comit&eacute;s reguladores de salud han autorizado o incluido el programa de control prenatal en los planes obligatorios de salud, que permita detectar oportunamente los casos de toxoplasmosis cong&eacute;nita y se disminuyan las secuelas de la enfermedad mediante un tratamiento cl&iacute;nico. Por ello, en ausencia de intervenci&oacute;n terap&eacute;utica, cada a&ntilde;o nacen entre 800 y 3.000 ni&ntilde;os infectados <sup>(15)</sup>.</p>       <p>En el primer estudio multic&eacute;ntrico neonatal sobre toxoplasmosis realizado del 2009 al 2010 en Barranquilla, Bogot&aacute;, Florencia, Armenia, Riohacha, C&uacute;cuta y Bucaramanga, se diagnosticaron 218 ni&ntilde;os con infecci&oacute;n cong&eacute;nita -sintom&aacute;ticos y asintom&aacute;ticos- con una letalidad del 25 % en los ni&ntilde;os sin tratamiento cl&iacute;nico <sup>(16)</sup>.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En Sincelejo se ha reportado 2 % de seroconversi&oacute;n en mujeres embarazadas <sup>(17)</sup>, hecho que evidencia la necesidad de implementar los programas de prevenci&oacute;n y control de las gestantes seropositivas y, a&uacute;n m&aacute;s, en las seronegativas debido al alto riesgo de infecci&oacute;n que &eacute;stas pueden presentar al no haber tenido contacto con el par&aacute;sito, lo que las hace m&aacute;s propensas a adquirir la enfermedad en cualquier etapa de la gestaci&oacute;n.</p>       <p>El seguimiento serol&oacute;gico de la infecci&oacute;n por <i>T.</i> <i>gondii </i>no se incluye com&uacute;nmente en el control prenatal de las mujeres gestantes del departamento de Sucre; adem&aacute;s, las t&eacute;cnicas utilizadas en el diagn&oacute;stico de la toxoplasmosis cong&eacute;nita no son lo suficientemente sensibles para detectar los casos activos de toxoplasmosis con miras a implementar un tratamiento oportuno con el fin de reducir las secuelas en el reci&eacute;n nacido. Por esta raz&oacute;n, el objetivo del presente estudio fue evaluar la t&eacute;cnica de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) anidada en muestras de sangre perif&eacute;rica de 100 mujeres gestantes de Sincelejo, seronegativas por la t&eacute;cnica ELFA (<i>Enzyme-</i> <i>Linked Fluorescent Assay</i>) IgG anti-<i>Toxoplasma</i>, con el fin de determinar casos de infecci&oacute;n.</p>       <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b></p>      <p>El estudio se llev&oacute; a cabo en el municipio de Sincelejo, departamento de Sucre, localizado a 9&deg; 18&quot; latitud norte y 75&deg; 23&quot; longitud oeste, con un clima de bosque seco y una altura de 213 metros sobre el nivel del mar.</p>       <p>Se incluyeron en el estudio 100 mujeres gestantes seronegativas para la prueba de IgG anti- <i>Toxoplasma </i>mediante ELFA, realizada en tres laboratorios cl&iacute;nicos especializados de Sincelejo, en un per&iacute;odo de 17 meses. Todas las mujeres gestantes incluidas en el estudio firmaron el consentimiento informado.</p>       <p><i>Detecci&oacute;n molecular del par&aacute;sito</i><b><i>. </i></b>A partir de las muestras de sangre seronegativas para la prueba de IgG anti-<i>Toxoplasma, </i>se hizo la extracci&oacute;n de ADN total utilizando el protocolo de concentraciones moderadas de sales <sup>(18)</sup>.</p>       <p>El ADN del par&aacute;sito se detect&oacute; mediante PCR anidada con el fin de aumentar la especificidad y la sensibilidad de la t&eacute;cnica, para lo cual se utilizaron dos pares de cebadores que amplifican una regi&oacute;n del gen B1 de <i>T. gondii. </i>El proceso de amplificaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo en dos etapas. La primera fase consisti&oacute; en la amplificaci&oacute;n de un fragmento de 193 pb utilizando los iniciadores Toxo N1 y Toxo C1, y la segunda ronda se llev&oacute; a cabo mediante la amplificaci&oacute;n de un fragmento de 96 pb con los iniciadores Toxo N2 y Toxo C2.</p>       <p>Para evitar resultados falsos negativos se emple&oacute;, como control interno positivo, ADN de la cepa RH de <i>T. gondii </i>y ADN de una muestra de sangre cebada con cepa RH de <i>T. gondii </i>positiva por PCR; el control interno negativo consisti&oacute; en ADN obtenido de una muestra de sangre de una paciente seronegativa, que no amplifica con los iniciadores usados en la PCR anidada y un volumen de agua filtrada est&eacute;ril, que indica posibles contaminaciones.</p>       <p><b><i>Visualizaci&oacute;n de los productos de PCR</i></b></p>      <p>Los productos de PCR se separaron mediante electroforesis en gel de agarosa al 2,5 % en soluci&oacute;n tamp&oacute;n al 0,5 % de tris-&aacute;cido b&oacute;rico-EDTA (TBE) a 80 voltios durante 90 minutos y se visualizaron en un transiluminador de luz ultravioleta (UV Transilluminator&reg;, UVP), te&ntilde;idos previamente con 0,5 &mu;g/ml de bromuro de etidio.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En cada electroforesis se utilizaron un control positivo, un control negativo y un marcador de peso molecular 100 pb (CIB Corpogen), con el fin de determinar el tama&ntilde;o de los fragmentos amplificados.</p>       <p>La PCR anidada se consider&oacute; positiva cuando el fragmento de amplificaci&oacute;n correspond&iacute;a a un peso de 96 pb.</p>       <p><b><i>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</i></b></p>      <p>Para el an&aacute;lisis de los datos, las variables obtenidas en la encuesta se relacionaron en una base de datos, en forma individual y en relaci&oacute;n con la infecci&oacute;n. En primer lugar, se determinaron las frecuencias de cada una de las variables y luego se relacionaron con la presencia de la infecci&oacute;n por medio del an&aacute;lisis estad&iacute;stico: prueba de ji al cuadrado y prueba P, utilizando el <i>software</i> EpiInfo, versi&oacute;n 3.3.2, del 9 de febrero de 2005 y Excel&reg; 2003 de Microsoft.</p>       <p><b>Resultados</b></p>      <p>De las 100 muestras de sangre perif&eacute;rica de mujeres gestantes seronegativas procesadas mediante PCR anidada y analizados los productos obtenidos en los geles de agarosa, fue posible detectar la presencia del par&aacute;sito por identificaci&oacute;n del fragmento de ADN de 96 pb de <i>T. gondii </i>en 12 muestras, de pacientes en un rango de edad de gestaci&oacute;n entre el primero y segundo trimestre. Esto equivale a una frecuencia de detecci&oacute;n del 12 %. Al ser analizadas por duplicado, estas muestras siempre fueron positivas, y los controles negativos siempre fueron negativos (<a href="#figura1">figura 1</a>).</p>      <p>    <center><a name="figura1"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a07i1.jpg "></a></center></p>       <p><b><i>Determinaci&oacute;n de seroconversi&oacute;n por prueba ELFA IgG en mujeres gestantes positivas por PCR anidada</i></b></p>      <p>De las 12 mujeres gestantes positivas por PCR anidada, s&oacute;lo fue posible localizar siete de ellas para tomar una nueva muestra de sangre perif&eacute;rica a los dos meses; a estas muestras se les practic&oacute; nuevamente la prueba IgG anti-<i>Toxoplasma</i> mediante la t&eacute;cnica ELFA con el fin de determinar seroconversi&oacute;n, y PCR anidada para verificar si a&uacute;n era posible detectar el par&aacute;sito en sangre (<a href="#figura2">figura 2</a>). De las siete muestras, cuatro resultaron positivas por la prueba ELFA, y se detect&oacute; ADN del par&aacute;sito en sangre en cinco de las siete muestras analizadas nuevamente por PCR anidada (<a href="#tabla1">tabla 1</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="figura2"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a07i2.jpg "></a></center></p>      <p>    <center><a name="tabla1"><img src="img/revistas/inf/v15n4/4a07t1.gif"></a></center></p>       <p>Las mujeres gestantes con seroconversi&oacute;n determinada por t&iacute;tulos de IgG fueron remitidas para manejo cl&iacute;nico, con el fin de diagnosticar infecci&oacute;n aguda mediante la prueba IgM anti-<i>Toxoplasma </i>y suministrar el tratamiento espec&iacute;fico para disminuir las secuelas de la infecci&oacute;n en el ni&ntilde;o.</p>       <p><b>Discusi&oacute;n</b></p>      <p>Los resultados del presente estudio demuestran la importancia del seguimiento serol&oacute;gico de las mujeres durante el embarazo, especialmente en las mujeres gestantes seronegativas debido a que podr&iacute;an adquirir la infecci&oacute;n por <i>T. gondii </i>en cualquier etapa de la gestaci&oacute;n. El estudio demostr&oacute; que, por PCR anidada, hab&iacute;a sido posible detectar infecci&oacute;n reciente en 12 de 100 mujeres gestantes con prueba ELFA IgG negativa durante el primero y segundo trimestre de gestaci&oacute;n, per&iacute;odos durante los cuales las manifestaciones cl&iacute;nicas en el ni&ntilde;o son m&aacute;s graves una vez el par&aacute;sito atraviesa la placenta <sup>(19,20,21)</sup>. Estos resultados aportaron informaci&oacute;n valiosa que permiti&oacute; suministrar tratamiento oportuno a las mujeres gestantes para disminuir las secuelas en los reci&eacute;n nacidos.</p>       <p>Los resultados positivos por PCR anidada en muestras negativas por ELFA IgG demostraron la presencia de par&aacute;sitos en sangre, lo que in dica que se est&aacute; frente a una infecci&oacute;n reciente en la cual, posiblemente, no se ha producido una respuesta inmunitaria humoral secundaria anti-<i>Toxoplasma </i><sup>(22)</sup>; es recomendable, entonces, evaluar los t&iacute;tulos de IgG anti-<i>Toxoplasma</i>, cuatro semanas m&aacute;s tarde para determinar si hay seroconversi&oacute;n en las mujeres gestantes. Seg&uacute;n estos resultados, se demuestra la utilidad de la prueba de PCR en el diagn&oacute;stico temprano de la toxoplasmosis cong&eacute;nita.</p>       <p>En este estudio se logr&oacute; detectar t&iacute;tulos de anticuerpos IgG anti-<i>Toxoplasma </i>en cuatro de las siete mujeres gestantes positivas por la t&eacute;cnica de PCR. La seroconversi&oacute;n encontrada mediante la t&eacute;cnica ELFA IgG en las mujeres gestantes de este estudio, demuestra la exposici&oacute;n de la poblaci&oacute;n a <i>T. gondii </i>en el departamento; en este sentido, se plantea la necesidad de instituir programas de prevenci&oacute;n y seguimiento serol&oacute;gico peri&oacute;dico en las mujeres gestantes para evitar la primoinfecci&oacute;n durante el embarazo y disminuir la prevalencia e incidencia de la enfermedad <sup>(11,20,23)</sup>.</p>       <p>Los resultados positivos por PCR anidada en mujeres gestantes que no presentaron seroconversi&oacute;n, podr&iacute;an explicarse por una baja respuesta de anticuerpos debido a factores gen&eacute;ticos o a la inmunosupresi&oacute;n parcial que sufren las embarazadas <sup>(22)</sup>; por lo tanto, es probable que los bajos niveles de anticuerpos no sean detectables por el m&eacute;todo empleado. Esto sugiere la necesidad de una segunda prueba de IgG con un estuche de otra marca o prueba de referencia y una prueba de detecci&oacute;n de anticuerpos de tipo IgM anti-<i>Toxoplasma</i>; adem&aacute;s, al emplear controles negativos, como el ADN obtenido de una muestra de sangre de una paciente seronegativa que no amplifica con los iniciadores usados en la PCR anidada y un volumen de agua filtrada est&eacute;ril, podr&iacute;a descartarse una posible contaminaci&oacute;n durante el proceso de extracci&oacute;n de ADN.</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Despu&eacute;s de confirmar la seroconversi&oacute;n en las mujeres gestantes, se practic&oacute; nuevamente una PCR anidada para evaluar la detecci&oacute;n de ADN del par&aacute;sito en sangre. Los resultados positivos por ELFA y negativos por PCR demuestran que el per&iacute;odo de circulaci&oacute;n de <i>T. gondii </i>en sangre es muy corto, debido a que despu&eacute;s de la fase aguda el par&aacute;sito se enquista en diferentes &oacute;rganos, particularmente en retina, m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, miocardio, tejido linf&aacute;tico, placenta y, m&aacute;s frecuentemente, en el sistema nervioso central <sup>(10)</sup>. Adem&aacute;s, los resultados negativos por PCR no excluyen una infecci&oacute;n reciente por <i>T. gondii</i> debido a posibles variaciones en la manipulaci&oacute;n durante el proceso de extracci&oacute;n de ADN; tambi&eacute;n, es probable que despu&eacute;s de extraer el ADN persistan agentes inhibidores que influyan en los resultados de la PCR.</p>       <p>Seg&uacute;n los resultados obtenidos en este estudio, se demostr&oacute; la utilidad de la t&eacute;cnica de PCR anidada en muestras de sangre para el diagn&oacute;stico temprano de casos de toxoplasmosis cong&eacute;nita <sup>(24)</sup>, evidenciado por la obtenci&oacute;n de 12 resultados positivos por PCR en mujeres gestantes seronegativas por la t&eacute;cnica ELFA. Este hecho refleja la gran sensibilidad y especificidad de la PCR que es capaz de detectar ADN del par&aacute;sito en peque&ntilde;as cantidades <sup>(25)</sup>. La gran sensibilidad de la PCR tambi&eacute;n se explica por el empleo de cebadores dirigidos a la amplificaci&oacute;n de un segmento del gen <i>B1 </i>que se repite 35 veces en el genoma del par&aacute;sito <sup>(26)</sup>.</p>       <p>Este estudio demuestra la importancia que podr&iacute;a tener la combinaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de PCR con las pruebas serol&oacute;gicas para establecer el diagn&oacute;stico temprano de los casos de toxoplasmosis cong&eacute;nita, y la posibilidad de incluirlas como herramientas diagn&oacute;sticas en los programas de vigilancia epidemiol&oacute;gica de la toxoplasmosis en el pa&iacute;s.</p>       <p><b>Agradecimientos</b></p>      <p>Al Laboratorio de Investigaciones Biom&eacute;dicas de la Universidad de Sucre; al Laboratorio Cl&iacute;nico Especializado Yamina Cumplido, Sincelejo; al Laboratorio Cl&iacute;nico Especializado Ford Ltda., Sincelejo; al grupo GEPAMOL de la Universidad del Quind&iacute;o, y a V&iacute;ctor G&oacute;mez del grupo GIEPI de la Universidad de Antioquia.</p>      <p>Correspondencia: Pedro Jos&eacute; Blanco, Grupo de Investigaciones Biom&eacute;dicas, Universidad de Sucre, Carrera 14 N&deg; 16B-32, Apartado a&eacute;reo 406, Sincelejo, Colombia. Tel&eacute;fono: (095) 282-0830; fax: (095) 281-8130. Direcci&oacute;n electr&oacute;nica: <a href="mailto:pblancot@gmail.com">pblancot@gmail.com</a></p>       <!-- ref --><p><b>Referencias</b>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0123-9392201100040000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. El-On J, Peiser J. Toxoplasma and toxoplasmosis. Harefuah. 2003;142: 48-55, 77.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-9392201100040000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Ospina S. Toxoplasmosis. En: Londo&ntilde;o M, editor. Cl&iacute;nica y complicaciones de las parasitosis. Medell&iacute;n: Universidad de Antioquia; 1993. p. 591-611.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0123-9392201100040000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Hide G, Gerwash O, Morley E, Williams R, Hughes J, Thomasson D, <i>et al. </i>Does vertical transmission contribute to the prevalence of toxoplasmosis? Parasitologia. 2007;49:223-26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-9392201100040000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Botero D, Restrepo M. Toxoplasmosis. En: Botero D, Restrepo M. Parasitosis humanas. Cuarta edici&oacute;n. Medell&iacute;n: Corporaci&oacute;n para Investigaciones Biol&oacute;gicas; 2003. p. 262-79.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0123-9392201100040000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Rodr&iacute;guez M, Rodr&iacute;guez D, Ginorio D, Mart&iacute;nez R, Casanova P, Fraga J, <i>et al</i>. Primoinfecci&oacute;n por <i>Toxoplasma gondii </i>durante el embarazo. Revista Panamericana de Infectolog&iacute;a. 2006;8:43-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-9392201100040000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Mart&iacute;n I. Toxoplasmosis cong&eacute;nita: una mirada al problema. Revista Biom&eacute;dica. 2004;15:181-90.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0123-9392201100040000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Colombo F, Vidal J, Augusto C, Penalva D, Hernandez A, Bonasser- Filho F, <i>et al. </i>Diagnosis of cerebral toxoplasmosis in AIDS patients in Brazil: Importance of molecular and immunological methods using peripheral blood samples<b>. </b>J Clin Microbiol. 2005;43:5044-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-9392201100040000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. G&oacute;mez-Mar&iacute;n J, Gonz&aacute;lez M, Montoya M, Giraldo A, Casta&ntilde;o J. A newborn screening programme for congenital toxoplasmosis in the setting of a country with less income. Arch Dis Child. 2007;92:88.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0123-9392201100040000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Mart&iacute;n I, Garc&iacute;a S. Toxoplasmosis en el hombre. Bioqu&iacute;mica. 2003;28:19-27.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-9392201100040000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. De Miguel J, Cavero A, Montero J, Toxoplasmosis: principales problemas materno-fetal. Actualidad Obst&eacute;trico Ginecol&oacute;gica. 2002;14:45-51.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0123-9392201100040000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Klaren V, Kijlstra A. Toxoplasmosis: An overview with emphasis on ocular involvement. Ocular Immunol Inflam. 2002;10:1-26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0123-9392201100040000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. G&oacute;mez J. Gu&iacute;a de pr&aacute;ctica cl&iacute;nica para toxoplasmosis durante el embarazo y toxoplasmosis cong&eacute;nita en Colombia. Infectio. 2007;11:129-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0123-9392201100040000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Juliao O, Corredor A, Moreno G. Toxoplasmosis en Colombia, Bogot&aacute;: Instituto Nacional de Salud; 1988.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0123-9392201100040000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. G&oacute;mez J, Pi&ntilde;&oacute;n J. Virulencia en <i>Toxoplasma gondii: </i>las presentaciones cl&iacute;nicas inusuales en la Amazonia pueden poner en evidencia factores de virulencia. Rev Salud P&uacute;blica (Bogot&aacute;). 2001; 3(Supl.1):35-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0123-9392201100040000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. G&oacute;mez-Marin J, De la Torre A, Angel-Muller A, Rubio J, Arenas J, <i>et</i> <i>al. </i>First Colombian Multicentric Newborn Screening for Congenital Toxoplasmosis. PLoS Negl Trop Dis. 2011;5:1-10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-9392201100040000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Machado N, Manrique E, Ruiz B, Blanco P. Alta frecuencia de seroconversi&oacute;n toxopl&aacute;smica en gestantes de Sincelejo, Sucre. Infectio. 2004;8:263-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0123-9392201100040000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Katovich C, Fern&aacute;ndez M, Gao X, Middleton D, Ng J, Noreen H, <i>et al.</i> HLA class I and II DNA based typing sequence specific oligonucleotide probe typing. Technical Manual/Reference Protocols. Version 1.1. Seattle, USA. Thirteenth International Histocompatibility Workshop; 1998. p. 4-11.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-9392201100040000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Carrada T. Toxoplasmosis: parasitosis reemergente del nuevo milenio. Revista Mexicana de Patolog&iacute;a Cl&iacute;nica. 2005;52:151-62.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-9392201100040000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Rosso F, Agudelo A, Isaza A, Montoya J. Toxoplasmosis cong&eacute;nita: aspectos cl&iacute;nicos y epidemiol&oacute;gicos de la infecci&oacute;n durante el embarazo. Colombia M&eacute;dica. 2007;38:316-37.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0123-9392201100040000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Nimri L, Peloux H, Elkhatib L. Detection of <i>Toxoplasma gondii </i>DNA and specific antibodies in high risk pregnant women. Am J Trop Med Hyg. 2004;71:831-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-9392201100040000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Kompalic-Cristo A, Frotta C, Su&aacute;rez-Mutis M, Fernandes O, Britto C. Evaluation of a real-time PCR assay based on the repetitive B1 gene for the detection of <i>Toxoplasma gondii </i>in human peripheral blood. Parasitol Res. 2007;101:619-25.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-9392201100040000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Mombro M, Perathoner C, Leone A, Buttafuoco V, Zotti C, Lievre M, <i>et al</i>. Congenital toxoplasmosis: Assessment of risk to newborns in confirmed and uncertain maternal infection. Eur J Pediatr. 2003;162:703-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-9392201100040000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Mattos C, Meira C, Ferreira A, Frederico F, Hiramoto R, Almeida G, <i>et al. </i>Contribution of laboratory methods in diagnosing clinically suspected ocular toxoplasmosis in Brazilian patients. Diagn Microbiol Infect Dis. 2011;70:362-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-9392201100040000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Ponce N, G&oacute;mez J. Estandarizaci&oacute;n y validaci&oacute;n cl&iacute;nica de la prueba de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) para el diagn&oacute;stico de toxoplasmosis cerebral en pacientes infectados por el VIH. Infectio. 2003;7:8-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-9392201100040000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Jones C, Okhravi N, Adamson P, Tasker S, Lightman S. Comparison of PCR detection methods for B1, P30, and 18S rDNA genes of <i>T. gondii </i>in aqueous humor. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2000;41:634-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0123-9392201100040000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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