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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización del gen mecA de Staphylococcus aureus resistentes a meticilina aislados de tres grupos poblacionales de la ciudad de Medellín]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) is involved in nosocomial infections, representing an important cause of morbidity and mortality. The rapid identification and molecular classification of resistance, such as the SSCmec complex, is essential to understanding the epidemiology of infection. Objective: To phenotypically characterize methicillin resistance and to genotype the SSCmec complex in S. aureus isolates collected from a cohort of patients from Medellín, Colombia. Materials and Methods: Cefoxtin resistance was evaluated in 41 S. aureus isolates, using the Kirby-Bauer method and determining the minimal bactericidal concentration of oxacillin. To confirm the presence of the mecA gene, conventional PCR was performed. The classification of the SSCmec complex was carried out by multiple PCR, amplifying 6 different loci in this gene. Results: Methicillin resistance and the presence of the mecA gene were confirmed in all isolates. A total of 17 were classified as SSCmec I, one as SSCmec II, and 21 SSCmec IV (only two isolates were not classified). Conclusions: Using this method, it was possible to classify 95% of the studied isolates, with a higher prevalence of SSCmec I and IV. The implementation of this technique allows the characterization of MRSA isolates and an appropriate management of the information by the members of the Hospital Infection Committee. Altogether, this method may have a positive impact on the treatment of patients with MRSA infections.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>ORIGINAL </p>     <p><font size="4"><b>Caracterizaci&oacute;n del gen mecA de </b><b><i>Staphylococcus aureus </i></b><b>resistentes a meticilina aislados de tres grupos poblacionales de la ciudad de Medell&iacute;n </b></font></p>     <p><b>Marcela Sanchez <sup>a</sup>, Orville Hern&aacute;ndez <sup>a,b,*</sup>, Luz Astrid Velasquez <sup>a</sup>, Dora Rivas <sup>c</sup>, Alejandra Mar&iacute;n <sup>c</sup>, Leonel Andr&eacute;s Gonz&aacute;lez <sup>d</sup>y Clara Duque <sup>a</sup></b></p>     <p><sup>a</sup> <i>Grupo de Investigaci&oacute;n en Biociencias, Facultad de Ciencias de la Salud, Instituci&oacute;n Universitaria Colegio Mayor de Antioquia, Antioquia, Colombia </i></p>     <p><sup>b</sup> <i>Unidad de Biolog&iacute;a Celular y Molecular, Corporaci&oacute;n Para Investigaciones Biol&oacute;gicas (CIB), Medell&iacute;n, Colombia </i></p>     <p><sup>c</sup> <i>Especializaci&oacute;n en Microbiolog&iacute;a, Cl&iacute;nica Instituci&oacute;n Universitaria Colegio Mayor de Antioquia, Hospital General de Medell&iacute;n, Colombia </i></p>     <p><sup>d</sup> <i>Din&aacute;mica IPS, laboratorio de biolog&iacute;a molecular y citometr&iacute;a, Medell&iacute;n, Colombia </i></p>     <p>Recibido el 21 de febrero de 2013; aceptado el 6 de septiembre de 2013 </p> <hr size="1">     <p><b>Resumen </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Introducci&oacute;n: Staphylococcus aureus </i>resistente a la meticilina (SARM) es responsable de infecciones intrahospitalarias, las que constituyen una importante causa de morbilidad y mortalidad en nuestro medio, por lo cual la r&aacute;pida identificaci&oacute;n y tipificaci&oacute;n molecular de la resistencia como el complejo SSCmec es esencial para entender la epidemiolog&iacute;a de la infecci&oacute;n. </p>     <p><i>Objetivo: </i>Caracterizar fenot&iacute;picamente la resistencia a meticilina y genot&iacute;picamente el casete cromosomal SSCmec en cepas de <i>S. aureus </i>aislados de individuos de la ciudad de Medell&iacute;n mediante PCR m&uacute;ltiple. </p>     <p><i>Materiales y m&eacute;todos: </i>A 41 aislamientos (hospitalarios y de la comunidad) de <i>S. aureus </i>se les estableci&oacute; la resistencia a cefoxitin mediante la t&eacute;cnica de Kirby-Bauer y la concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima para oxacilina. Mediante PCR convencional se les confirm&oacute; la presencia del gen mecA. Para la tipificaci&oacute;n del complejo SSCmec se utiliz&oacute; PCR m&uacute;ltiple para amplificar 6 loci diferentes de este gen. </p>     <p><i>Resultados: </i>A todos los aislamientos se les confirm&oacute; resistencia a meticilina y la presencia del gen mecA, de los cuales 17 fueron clasificados como SSC mec I, 1 como SSC mec II, 21 como SSC mecIV; dos aislamientos no fue posible clasificarlos. </p>     <p><i>Conclusiones: </i>Con el uso de esta t&eacute;cnica clasificamos el 95% de los aislamientos del estudio, encontrando una mayor prevalencia de los SSCmec I y IV. La implementaci&oacute;n de esta t&eacute;cnica permite una f&aacute;cil caracterizaci&oacute;n de los aislamientos SARM y un apropiado manejo de la informaci&oacute;n de los integrantes de los comit&eacute;s de infecciones hospitalarios, lo cual podr&iacute;a impactar positivamente en el tratamiento a los pacientes y el control de enfermedades infecciosas intrahospitalarias. </p>     <p>&copy; 2013 ACIN. Publicado por Elsevier Espa&ntilde;a, S.L. Todos los derechos reservados. </p>     <p><b>PALABRAS CLAVE </b><i>S. aureus </i>; Resistencia a la meticilina; Gen MecA; SSC mec; Reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa; Infecciones asociadas a la atenci&oacute;n en salud</p> <hr size="1">     <p><font size="3"><b>Characterization of mecA gene of methicillin-resistant </b><b><i>Staphylococcus aureus </i></b><b>Isolated from three population groups in Medell&iacute;n </b></font></p>     <p><b>ABSTRACT </b></p>     <p><i>Introduction: </i>Methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>(MRSA) is involved in nosocomial infections, representing an important cause of morbidity and mortality. The rapid identification and molecular classification of resistance, such as the SSCmec complex, is essential to understanding the epidemiology of infection. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Objective: </i>To phenotypically characterize methicillin resistance and to genotype the SSCmec complex in <i>S. aureus </i>isolates collected from a cohort of patients from Medell&iacute;n, Colombia. </p>     <p><i>Materials and Methods: </i>Cefoxtin resistance was evaluated in 41 <i>S. aureus </i>isolates, using the Kirby-Bauer method and determining the minimal bactericidal concentration of oxacillin. To confirm the presence of the mecA gene, conventional PCR was performed. The classification of the SSCmec complex was carried out by multiple PCR, amplifying 6 different loci in this gene. </p>     <p><i>Results: </i>Methicillin resistance and the presence of the mecA gene were confirmed in all isolates. A total of 17 were classified as SSCmec I, one as SSCmec II, and 21 SSCmec IV (only two isolates were not classified). </p>     <p><i>Conclusions: </i>Using this method, it was possible to classify 95% of the studied isolates, with a higher prevalence of SSCmec I and IV. The implementation of this technique allows the characterization of MRSA isolates and an appropriate management of the information by the members of the Hospital Infection Committee. Altogether, this method may have a positive impact on the treatment of patients with MRSA infections. </p>     <p>&copy; 2013 ACIN. Published by Elsevier Espa&ntilde;a, S.L. All rights reserved. </p>     <p><b>KEYWORDS: </b><i>S. aureus; </i>Methicillin resistance; MecA Gen; SSC mec; Multiple polymerase chain reaction; Health care associated Infections </p> <hr size="1">     <p><b>Introducci&oacute;n </b></p>     <p>Las enfermedades infecciosas constituyen una causa muy importante de morbilidad y mortalidad a nivel mundial, por lo que se espera que el tratamiento adecuado en el momento oportuno para dichas entidades genere un impacto positivo en la salud p&uacute;blica de la mayor&iacute;a de los pa&iacute;ses <sup>1</sup>, especialmente en pa&iacute;ses subdesarrollados como Colombia. Sin embargo, el tratamiento convencional puede no ser el adecuado cuando se deben combatir microorganismos que han desarrollado mecanismos de resistencia a los antibi&oacute;ticos de primera l&iacute;nea de elecci&oacute;n <sup>2,3</sup>. Este ha sido un problema que se ha incrementado en los &uacute;ltimos a&ntilde;os, afectando de forma negativa el tratamiento de los pacientes, aumentando los costos hospitalarios y los esfuerzos invertidos para lograr la remisi&oacute;n de los pacientes infectados <sup>2,4</sup>. </p>     <p><i>Staphylococcus aureus </i>es un pat&oacute;geno oportunista responsable de una gran cantidad de infecciones tanto en humanos como en animales <sup>5,6</sup>. Los seres humanos son un reservorio natural de este microorganismo y, aunque la colonizaci&oacute;n asintom&aacute;tica es m&aacute;s com&uacute;n que la infecci&oacute;n <sup>7</sup>, este microorganismo puede encontrarse, causando desde infecciones menores en la piel hasta infecciones en heridas quir&uacute;rgicas, neumon&iacute;a y otro tipo de infecciones que pueden comprometer la vida del paciente <sup>8</sup>. </p>     <p>En 1960 se report&oacute; por primera vez en Europa una cepa de <i>S. aureus </i>resistente a la meticilina (SARM); posteriormente en Estados Unidos, en 1968, se report&oacute; una cepa con iguales caracter&iacute;sticas <sup>9,10</sup>. SARM es una causa importante de infecciones asociadas al cuidado de la salud en todo el mundo; sin embargo, desde su primer aislamiento <sup>11</sup> se ha observado un incremento en la prevalencia de estas cepas en la comunidad, lo cual facilita la transmisi&oacute;n end&eacute;mica y zoon&oacute;tica de estas cepas <sup>9,12</sup>. Actualmente la resistencia a la meticilina es un hallazgo frecuente y representa un problema importante de salud p&uacute;blica a nivel mundial <sup>5,8-10,13,14</sup>. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El gen MecA, responsable de la resistencia a la meticilina en <i>S. aureus </i>, no es end&oacute;geno y se encuentra integrado al cromosoma bacteriano, pudiendo ser detectado mediante reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) <sup>15,16</sup>. El producto de expresi&oacute;n de este gen es una prote&iacute;na de uni&oacute;n a la penicilina de 78 kDa, con baja afinidad por los antibi&oacute;ticos beta-lact&aacute;micos, llamada PBP2&acute; o PBP2a <sup>7,10,17</sup>. Este gen se encuentra dentro de un elemento cromosomal m&oacute;vil heterog&eacute;neo conocido como &quot; <i>Staphylococcal cassette chromosome mec </i>&quot; (SSCmec) <sup>17,18</sup>. Los aislamientos que poseen este elemento gen&eacute;tico presentan una disminuci&oacute;n en la afinidad a meticilina, lo cual genera la resistencia bacteriana <sup>7</sup>, por lo cual han sido utilizados en diversos estudios para caracterizar la resistencia a B-lact&aacute;micos <sup>7,17</sup>. </p>     <p>Este elemento gen&eacute;tico tambi&eacute;n ha sido encontrado en otras especies de <i>Staphylococcus </i>y se cree que las especies coagulasa negativas constituyen un reservorio para la adquisici&oacute;n de SSCmec <sup>19</sup>. Diferentes tipos de SSCmec han sido reconocidos y mediante el uso de t&eacute;cnicas de tipificaci&oacute;n molecular se ha logrado su caracterizaci&oacute;n, lo cual ha facilitado los an&aacute;lisis epidemiol&oacute;gicos de la distribuci&oacute;n de <i>S. aureus </i>resistente a meticilina <sup>20</sup>. </p>     <p>Empleando t&eacute;cnicas moleculares para la identificaci&oacute;n del gen mecA, se ha reportado en muchos pa&iacute;ses la presencia de diferentes aislamientos SARM, tipificando el casete cromosomal SSCmec con fines epidemiol&oacute;gicos. En un estudio realizado entre 2006 y 2008 en 32 hospitales en Colombia, Ecuador, Per&uacute; y Venezuela, Reyes et al. obtuvieron 1.570 aislamientos de <i>S. aureus </i>, de los cuales 651 (41%) fueron SARM, siendo m&aacute;s predominante el SSCmec IV <sup>21</sup>. En Colombia, Alvarez et al. (2006) reportaron 2 casos de pacientes infectados con <i>S. aureus </i>resistente a la meticilina (SARM), al cual se le demostr&oacute; mediante la t&eacute;cnica de PCR la presencia del gen mecA <sup>22</sup>. En otro estudio realizado en 5 hospitales de Bogot&aacute; (Colombia), Alvarez et al. demostraron que, de 250 aislamientos SARM causantes de infecciones asociadas al cuidado de la salud, el 10,4% eran adquiridos en la comunidad (CA-SARM) <sup>23</sup>. </p>     <p>Los aislamientos SARM han sido tambi&eacute;n aislados de ni&ntilde;os; Escobar et al. reportaron la presencia de un nuevo clon de SARM (tipo t1635 ACME-negativo) gen&eacute;ticamente no relacionado con el clon USA300, el cual fue asociado a infecciones en ni&ntilde;os en Colombia <sup>24</sup>. En otro estudio, Jim&eacute;nez et al. obtuvieron 60 aislamientos SARM y SASM de pacientes pedi&aacute;tricos entre 0 y 14 a&ntilde;os; identificaron genes que codifican factores de virulencia y tipificaron el SSCmec de los aislamientos SARM, en los cuales encontraron SSCmec tipo IVc en el 60% de los paciente, tipo I en el 30%, tipo IVa en el 7% y tipo V en el 3% de los pacientes <sup>25</sup>. </p>     <p>En un estudio realizado por Jim&eacute;nez et al., en Medell&iacute;n (Colombia), de 538 aislamientos SARM, 306 (58,7%) fueron clasificados como SSCmec tipo IV, seguido por 174 SSCmec tipo I (33,4%), adicionalmente demostraron un incremento en la prevalencia del SSCmec tipo IVc del 50,0% al 68,2% entre 2008 y 2010, lo cual demuestra que este tipo de SSCmec es predominante en los hospitales de Medell&iacute;n <sup>26</sup>. </p>     <p>En este trabajo se clasificaron 39 de 41 aislamientos SARM procedentes de 3 diferentes grupos poblacionales de la ciudad de Medell&iacute;n, utilizando una PCR m&uacute;ltiple para realizar la tipificaci&oacute;n del complejo SSCmec, m&eacute;todo eficiente y de f&aacute;cil utilizaci&oacute;n para la identificaci&oacute;n del tipo estructural de los elementos mec en aislamientos SARM. </p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos </b></p>     <p><b>Tipo de estudio, poblaci&oacute;n y muestra </b></p>     <p>Este fue un estudio de tipo descriptivo prospectivo; en el cual se evaluaron 41 aislamientos de SARM procedentes de pacientes de tres diferentes grupos poblacionales de la ciudad de Medell&iacute;n en el a&ntilde;o 2010. Tres aislamientos fueron obtenidos de pacientes ambulatorios VIH positivo, 4 aislamientos de individuos de la poblaci&oacute;n general; para ambos grupos los aislamientos fueron obtenidos de portadores nasales y 34 aislamientos obtenidos de pacientes hospitalizados en el Hospital General de Medell&iacute;n. Los aislamientos fueron obtenidos de diferentes muestras cl&iacute;nicas, as&iacute;: secreciones el 50%, sangre el 25%, orina el 8%, l&iacute;quido peritoneal 6%, hueso 6%, herida quir&uacute;rgica 5%. </p>     <p>Criterios de inclusi&oacute;n: aislamientos de SARM confirmados procedentes de tres grupos poblacionales; pacientes ambulatorios VIH positivo, individuos de la poblaci&oacute;n general y pacientes hospitalizados en el Hospital General de Medell&iacute;n recuperados en el 2010. Cada aislamiento corresponde a un paciente diferente Criterios de exclusi&oacute;n: aislamientos de SASM procedentes de tres grupos poblacionales; pacientes ambulatorios VIH positivo, individuos de la poblaci&oacute;n general y pacientes hospitalizados en el Hospital General de Medell&iacute;n recuperados en el 2010. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Recolecci&oacute;n de las muestras y aislamiento de cepas bacterianas </b></p>     <p>Todos los pacientes aceptaron participar del estudio y diligenciaron un formato &uacute;nico de informaci&oacute;n. Las muestras obtenidas de los pacientes fueron transportadas en el medio stuart y posteriormente cultivadas en agar sangre de carnero y en agar cromog&eacute;nico Chromid MRSA de BioM&eacute;rieux con una siembra por agotamiento, en una atm&oacute;sfera de 5 al 10% de CO <sub>2</sub> a 37&deg;C, durante 24 a 48 horas; las colonias compatibles con cocos Gram positivos se confirmaron mediante coloraci&oacute;n de GRAM, prueba de la catalasa y prueba de la coagulasa. Adicionalmente se utiliz&oacute; el m&eacute;todo comercial semi-automatizado API Staph de BioM&eacute;rieux, para clasificarlo como <i>S. aureus. </i>Todos los aislamientos se conservaron en caldo BHI glicerol al 30% en ultra congelaci&oacute;n. </p>     <p><b>Determinaci&oacute;n del patr&oacute;n de susceptibilidad </b></p>     <p>A las colonias aisladas de <i>S. aureus </i>se les realiz&oacute; antibiogramas por la t&eacute;cnica de Kirby-Bauer, en agar Mueller-Hinton utilizando los sensidiscos gentamicina, clindamicina, eritromicina, trimetoprimsulfametoxasol, cefoxitin y tetraciclina. Adicionalmente se realiz&oacute; el test de difusi&oacute;n en disco (D test) para detectar resistencia inducible a clindamicina. </p>     <p>En las pruebas de sensibilidad realizadas a los aislamientos procedentes de pacientes VIH y los de poblaci&oacute;n general se observ&oacute; una sensibilidad para eritromicina y tetraciclina del 66,6% y de 100% para gentamicina y clindamicina. En los aislamientos correspondientes a pacientes hospitalizados el perfil de sensibilidad fue: clindamicina 67% y 100% para gentamicina, eritromicina, trimetoprimsulfa y ciprofloxacina. Los halos de inhibici&oacute;n se midieron a las 24 horas de incubaci&oacute;n, siguiendo las normas estandarizadas por el CLSI (Clinical and Laboratory Standars Institute) <sup>27</sup>. En los aislamientos resistentes a cefoxitin, se determin&oacute; la concentraci&oacute;n inhibitoria m&iacute;nima para oxacilina confirmando la resistencia a meticilina en todas las cepas, la metodolog&iacute;a empleada fue la del Sistema VITEK &reg; 2 compac bioM&eacute;rieux. Como control interno para la validaci&oacute;n de las pruebas de identificaci&oacute;n y de sensibilidad antimicrobiana se utilizaron cepas de referencia ATCC (American Type Culture) de <i>S. aureus </i>resistente a meticilina (ATCC 43300) y sensible a meticilina (ATCC 29213). </p>     <p><b>Obtenci&oacute;n de ADN bacteriano e identificaci&oacute;n de la presencia del gen mecA </b></p>     <p>Los aislamientos identificados como <i>S. aureus </i>resistentes a meticilina se les someti&oacute; a un protocolo de extracci&oacute;n de ADN gen&oacute;mico utilizando el juego de reactivos comercial de Promega Wizard &reg; Genomic DNA Purification Kit (cat A1120) siguiendo las instrucciones del fabricante (<a href="http://www.promega.com/tbs/tm050/tm050.pdf" target="_blank">http://www.promega.com/tbs/tm050/tm050.pdf</a>). </p>     <p>A partir del ADN bacteriano obtenido por el m&eacute;todo previamente descrito, se amplific&oacute; mediante PCR convencional un fragmento correspondiente al gen MecA, utilizando los iniciadores reportados por Jaffe et al. (2000) <sup>28</sup>. Como controles positivos se utilizaron secuencias 16S RNAr espec&iacute;fico de <i>Staphylococcus </i>y 16S RNAr de bacterias <sup>28</sup>. La secuencia de los iniciadores y el tama&ntilde;o fragmento que se obtuvo se especifican en la <a href="#tabla1">tabla 1</a>. </p>     <p>    <center> <a name="tabla1"><img src="img/revistas/inf/v17n2/v17n2a04t1.gif"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las condiciones de PCR utilizadas en este estudio fueron las siguientes: desnaturalizaci&oacute;n inicial a 95&ordm;C durante 5 minutos, 35 ciclos de 95&ordm;C durante 1 minuto, 57&ordm;C por 1 minuto y 70&ordm;C por 45 segundos; y una elongaci&oacute;n final de 10 minutos a 70&ordm;C. La reacci&oacute;n se realiz&oacute; en un volumen 50 &mu;l as&iacute;: Buffer de reacci&oacute;n 1X, MgCl 2 2,5 uM, dNTP&acute;s 200 uM, cada iniciador a concentraci&oacute;n final entre 200 nM y 800 nM como fue reportado por Oliveira y Lencastre (2002) <sup>20</sup>. 1,5 U de polimerasa (Biolasa BIOTAQ™ PCR Kit), 33 &mu;l de H <sub>2</sub> O y 100 ng de ADN templado en las muestras obtenidas como se describi&oacute; previamente. </p>     <p><b>Reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa m&uacute;ltiple para la clasificaci&oacute;n del tipo de SSCmec </b></p>     <p>La PCR m&uacute;ltiple para la tipificaci&oacute;n del complejo SSCmec incluy&oacute; la amplificaci&oacute;n de 6 loci diferentes (A hasta F) descritos por Oliveira y Lencastre (2002) <sup>20</sup>. Se incluy&oacute; un control positivo con el gen mecA. La relaci&oacute;n de cada locus con el tipo de SSCmec, los iniciadores utilizados y el tama&ntilde;o del amplic&oacute;n est&aacute;n descritos en la <a href="#tabla2">tabla 2</a>. </p>     <p>    <center> <a name="tabla2"><img src="img/revistas/inf/v17n2/v17n2a04t2.gif"></a></center></p>     <p>Para evaluar la especificidad, cada iniciador fue analizado individualmente a temperaturas desde 50 o C hasta 60 o C. Para la PCR m&uacute;ltiple se utilizaron las condiciones descritas por Oliveira y Lencastre (2002) <sup>20</sup>. La PCR fue desarrollada en My Cycler TM Thermal cycler (Biorad) utilizando los siguientes par&aacute;metros: denaturaci&oacute;n inicial a 94&deg;C por 4 minutos, seguido de 30 ciclos de 94&deg;C por 30 segundos, 54&deg;C por 30 segundos y 72&deg;C por 1 minuto, posteriormente se realiz&oacute; una extensi&oacute;n final a 72&deg;C durante 5 minutos. Para el an&aacute;lisis de la amplificaci&oacute;n, se realiz&oacute; una electroforesis en un gel de agarosa al 2% en buffer TBE a 110 voltios utilizando 10 &mu;l de los productos de PCR. El gel fue coloreado con bromuro de etidio revelando los productos de amplificaci&oacute;n. </p>     <p><b>Consideraciones &eacute;ticas </b></p>     <p>El estudio tuvo la aprobaci&oacute;n del Comit&eacute; de investigaciones de la Instituci&oacute;n Universitaria Colegio Mayor de Antioquia, teniendo en cuenta las consideraciones que garantizaron el cumplimiento de los lineamientos &eacute;ticos del estudio y la obtenci&oacute;n del consentimiento informado de los pacientes. </p>     <p><b>Resultados </b></p>     <p><b>Resistencia a meticilina e identificaci&oacute;n del gen </b><b>MecA en cepas SARM </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A todos los aislamientos se les confirm&oacute; resistencia a meticilina mediante los m&eacute;todos microbiol&oacute;gicos descritos previamente; adicionalmente se les detect&oacute; la presencia del gen mecA mediante la t&eacute;cnica de PCR descrita, lo cual correlaciona los hallazgos microbiol&oacute;gicos y las pruebas de resistencia con esta prueba molecular. La amplificaci&oacute;n de los genes 16s confirmaron la identidad (g&eacute;nero y especie) de los microorganismos (<a href="#fig.1">fig. 1</a>). </p>     <p>    <center> <a name="fig.1"><img src="img/revistas/inf/v17n2/v17n2a04i1.jpg"></a></center></p>      <p><b>Caracterizaci&oacute;n del SSCmec de los aislamientos </b><b>SARM </b></p>     <p>Utilizando una estrategia de PCR m&uacute;ltiple, caracterizamos 39 de un grupo de 41 aislamientos SARM, de los cuales 17 (41,5%) fueron clasificados como SSCmec I, 1 (2,5%) como SSCmec II, 21 (51%) como SSC mecIV, y dos aislamientos no fue posible clasificarlos (<a href="#fig.2">fig. 2</a>). </p>     <p>    <center> <a name="fig.2"><img src="img/revistas/inf/v17n2/v17n2a04g1.jpg"></a></center></p>     <p>     <p><b>Discusi&oacute;n </b></p>     <p>La tipificaci&oacute;n molecular del gen SSCmec es una de las herramientas moleculares m&aacute;s importantes para explorar la epidemiolog&iacute;a y evoluci&oacute;n de los aislamientos SARM; adicionalmente podr&iacute;an ser una herramienta importante para la r&aacute;pida detecci&oacute;n de la resistencia a meticilina <sup>5,29</sup>. El conocimiento acerca de la naturaleza y diseminaci&oacute;n global de los aislamientos SARM es necesario para la implementaci&oacute;n de estrategias de control de la propagaci&oacute;n de estas cepas entre el ambiente comunitario e intrahospitalario <sup>9</sup>. La tipificaci&oacute;n del tipo de SSCmec utilizando PCR m&uacute;ltiple ha sido ampliamente utilizada en varios trabajos con fines investigativos, en los cuales demuestran una asociaci&oacute;n epidemiol&oacute;gica entre los aislamientos obtenidos en cada estudio <sup>20,30-33</sup>. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Varias estrategias de tipificaci&oacute;n del gen SSCmec no basadas en PCR convencional han sido reportadas. En 2004 Fran&ccedil;ois et al. utilizaron una PCR en tiempo real y sondas TaqMan para evaluar la expresi&oacute;n de las regiones ccrB de los tipos I y IV del gen SSCmec <sup>34</sup>. Recientemente, ha sido descrito el uso de an&aacute;lisis de microarreglos para la identificaci&oacute;n de los tipos I y IV del gen SSCmec <sup>32</sup>, sin embargo ambos m&eacute;todos se basan en la evaluaci&oacute;n de tipos espec&iacute;ficos ignorando el complejo SSCmec, lo que resulta en una subclasificaci&oacute;n de los aislamientos. Adicionalmente, se han descrito tipificaciones y clasificaci&oacute;n de este complejo basadas en secuenciamiento del ADN <sup>35-37</sup> al igual que el an&aacute;lisis de polimorfismo de nucle&oacute;tido simple <sup>38</sup>; sin embargo, esos m&eacute;todos no son apropiados para una r&aacute;pida identificaci&oacute;n, adem&aacute;s de ser muy laboriosos y de alto costo. </p>     <p>Para tipificar nuestros aislamientos, se ha utilizado el m&eacute;todo de PCR m&uacute;ltiple publicado por el grupo de Lencastre en 2002 <sup>20</sup>, el cual permiti&oacute; una r&aacute;pida y f&aacute;cil clasificaci&oacute;n de los tipos SSCmec de los aislamientos SARM de nuestro estudio. Con esta estrategia se logr&oacute; clasificar el tipo de SSCmec con una reproducibilidad del 100% en 39 aislamientos previamente obtenidos y clasificados como SARM, en los cuales el SSCmec tipo IV fue el m&aacute;s prevalente; este resultado est&aacute; de acuerdo con los trabajos realizados por Jim&eacute;nez et al. en Medell&iacute;n, en el cual en la poblaci&oacute;n pedi&aacute;trica el 60% de los aislamientos fue clasificado como SSCmec tipo IV <sup>25</sup>; en otro estudio realizado por el mismo grupo el 58,7% fue clasificado con el mismo tipo de SSCmec <sup>26</sup>, lo cual demuestra que este tipo de SSCmec es predominante en los hospitales de Medell&iacute;n. Sin embargo este tipo de SSCmec parece ser el m&aacute;s predominante a nivel internacional, puesto que Reyes et al. Reportaron que SSCmec tipo IV fue el m&aacute;s predominante en 32 hospitales de Colombia, Ecuador, Per&uacute; y Venezuela <sup>21</sup>. </p>     <p>A dos aislamientos no se les logr&oacute; identificar el tipo de SSCmec, y debido a la reciente aparici&oacute;n de nuevos tipos de SSCmec (REF), es posible que estos dos aislamientos pertenezcan a un tipo de SSCmec diferente a los que pueden ser clasificados con el m&eacute;todo utilizado, por lo tanto, deben ser desarrollados y aplicados sistemas de clasificaci&oacute;n m&aacute;s robustos con alto poder de discriminaci&oacute;n, los cuales permitir&aacute;n un mejor entendimiento de la epidemiolog&iacute;a y mecanismos de transmisi&oacute;n, tanto a nivel de la comunidad como en infecciones asociadas al cuidado de la salud a nivel intrahospitalario de unos aislamientos tan importantes como las cepas SARM. </p>     <p>La PCR m&uacute;ltiple utilizada en este estudio tiene un gran potencial para ser utilizada en laboratorios cl&iacute;nicos de microbiolog&iacute;a, gracias a su f&aacute;cil implementaci&oacute;n. Esta t&eacute;cnica aplicada a los aislamientos SARM permite una f&aacute;cil caracterizaci&oacute;n y facilita el manejo de la informaci&oacute;n epidemiol&oacute;gica para analistas, investigadores y personal de salud integrantes de los comit&eacute;s de infecciones de los diferentes hospitales y cl&iacute;nicas de nuestra ciudad. La clasificaci&oacute;n de las cepas SARM seg&uacute;n su tipo de SSCmec genera valiosa informaci&oacute;n acerca de su origen clonal, relaciones evolutivas, din&aacute;mica de transmisi&oacute;n de los aislamientos de microorganismos portadores de un casete espec&iacute;fico, con lo cual se puede evaluar el comportamiento epidemiol&oacute;gico de un determinado aislamiento y su capacidad de propagaci&oacute;n entre los diferentes servicios hospitalarios y la comunidad. </p>     <p>Finalmente, es importante resaltar que la toma de decisiones acertadas, con base en la informaci&oacute;n generada por los m&eacute;todos utilizados en el &aacute;rea de la epidemiolog&iacute;a molecular, produce un impacto positivo en los tratamientos de los pacientes y en el control de las enfermedades infecciosas hospitalarias. Lo cual se ver&aacute; reflejado en la evoluci&oacute;n cl&iacute;nica de los individuos afectados, en la disminuci&oacute;n de la ocurrencia de eventos adversos de tipo infeccioso y la disminuci&oacute;n de los gastos hospitalarios relacionados con largos tiempos de hospitalizaci&oacute;n y costosos tratamientos antibi&oacute;ticos. </p>     <p><b>Financiaci&oacute;n </b></p>     <p>Este trabajo fue financiado por el instituto de investigaciones de la Instituci&oacute;n Universitaria Colegio Mayor de Antioquia. </p>     <p><b>Conflicto de intereses </b></p>     <p>Los autores declaran no tener ning&uacute;n conflicto de intereses. </p>     <p><b>Agradecimientos </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A la Instituci&oacute;n Universitaria Colegio Mayor de Antioquia por la financiaci&oacute;n de este proyecto. </p>     <p>* Autor para correspondencia. <i>Correo electr&oacute;nico: </i><a href="mailto:orvillehr@hotmail.com">orvillehr@hotmail.com</a> (O. Hern&aacute;ndez)</p>      <p>0123-9392/$ - see front matter &copy; 2013 ACIN. Publicado por Elsevier Espa&ntilde;a, S.L. Todos los derechos reservados.</p>      <p><b>Bibliograf&iacute;a </b></p>     <!-- ref --><p>1. Revere D, Nelson K, Thiede H, Duchin J, Stergachis A, Baseman J. Public health emergency preparedness and response communications with health care providers: A literature review. BMC Public Health. 2011;11:337.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0123-9392201300020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>2. Larkin EA, Carman RJ, Krakauer T, Stiles BG. <i>Staphylococcus aureus: </i>the toxic presence of a pathogen extraordinaire. Curr Med Chem. 2009;16:4003-19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0123-9392201300020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>3. Luo R, Cannon L, Hernandez J, Piovoso MJ, Zurakowski R. Controlling the evolution of resistance. J Process Control. 2011;21:367-78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0123-9392201300020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>4. Castillo-Salgado C. Trends and directions of global public health surveillance. Epidemiol Rev. 2010;32:93-109.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0123-9392201300020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>5. Deurenberg RH, Stobberingh EE. The evolution of <i>Staphylococcus aureus </i>. Infect Genet Evol. 2008;8:747-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0123-9392201300020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>6. Lowy FD. <i>Staphylococcus aureus </i>infections. N Engl J Med. 1998;339:520-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0123-9392201300020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>7. Haque N, Bari MS, Bilkis L, Haque S, Sultana S. Methicillin resistant <i>Staphylococcus aureus </i>— an overview. Mymensingh Med J. 2011;20:159-64.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0123-9392201300020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>8. Deurenberg RH, Stobberingh EE. The molecular evolution of hospital- and community-associated methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>. Curr Mol Med. 2009;9:100-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0123-9392201300020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>9. Boucher HW, Corey GR. Epidemiology of methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>. Clin Infect Dis. 2008;46 Suppl 5:S344-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0123-9392201300020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>10. Justos JA, Gutierrez M. <i>Staphylococcus aureus </i>: la reemergencia de un pat&oacute;geno en la comunidad. Rev Biomed. 2006;17:287-305.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0123-9392201300020000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>11. Jevons MP, Coe AW, Parker MT. Methicillin resistance in staphylococci. Lancet. 1963;1:904-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0123-9392201300020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>12. Morgan M. Methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>and animals: zoonosis or humanosis? J Antimicrob Chemother. 2008;62:1181-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0123-9392201300020000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>13. Bartels MD, Nanuashvili A, Boye K, Rohde SM, Jashiashvili N, Faria NA, et al. Methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>in hospitals in Tbilisi, the Republic of Georgia, are variants of the Brazilian clone. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2008;27:757-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0123-9392201300020000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>14. Echevarria Zarate J. Estafilococo meticilinorresistente, un problema actual en la emergencia de resistencia entre los Gram positivos. Rev Med Hered. 2003;14:195-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0123-9392201300020000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>15. Cortes JA, Gomez CA, Cuervo SI, Leal AL. &#91;Community-acquired methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>in Bogota, Colombia: Public Health implications&#93;. Rev Salud Publica (Bogota). 2007;9:448-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0123-9392201300020000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>16. Eady EA, Cove JH. Staphylococcal resistance revisited: community- acquired methicillin resistant <i>Staphylococcus aureus </i>-an emerging problem for the management of skin and soft tissue infections. Curr Opin Infect Dis. 2003;16:103-24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0123-9392201300020000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>17. Katayama Y, Ito T, Hiramatsu K. A new class of genetic element, <i>Staphylococcus </i>cassette chromosome mec, encodes methicillin resistance in <i>Staphylococcus aureus </i>. Antimicrob Agents Chemother. 2000;44:1549-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0123-9392201300020000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>18. Ito T, Katayama Y, Hiramatsu K. Cloning and nucleotide sequence determination of the entire mec DNA of pre-methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>N315. Antimicrob Agents Chemother. 1999;43:1449-58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0123-9392201300020000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>19. Katayama Y, Takeuchi F, Ito T, Ma XX, Ui-Mizutani Y, Kobayashi I, et al. Identification in methicillin-susceptible <i>Staphylococcus hominis </i>of an active primordial mobile genetic element for the staphylococcal cassette chromosome mec of methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>. J Bacteriol. 2003;185:2711-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0123-9392201300020000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>20. Oliveira DC, de Lencastre H. Multiplex PCR strategy for rapid identification of structural types and variants of the mec element in methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>. Antimicrob Agents Chemother. 2002;46:2155-61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0123-9392201300020000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>21. Reyes J, Rincon S, Diaz L, Panesso D, Contreras G.A, Zurita J, et al. Dissemination of methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>USA300 sequence type 8 lineage in Latin America. Clin Infect Dis 2009;49:1861-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0123-9392201300020000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>22. Alvarez CA, Barrientes OJ, Leal AL, Contreras GA, Barrero L, Rincon S, et al. Community-associated methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>, Colombia. Emerg Infect Dis. 2006;12:2000-1.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0123-9392201300020000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>23. Alvarez CA, Yomayusa N, Leal AL, Moreno J, Mendez-Alvarez S, Ibanez M, et al. Nosocomial infections caused by community-associated methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>in Colombia. Am J Infect Control. 2010;38:315-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0123-9392201300020000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>24. Escobar JA, Marquez-Ortiz RA, Alvarez-Olmos MI, Leal AL, Castro BE, Vanegas N. Detection of a new community-genotype methicillin- resistant <i>Staphylococcus aureus </i>clone that is unrelated with USA300 clone causing pediatric infections in Colombia. J Clin Microbiol 2013;51:661-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0123-9392201300020000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>25. Jim&eacute;nez J, Ocampo A, Vanegas J, Rodr&iacute;guez E, Garc&eacute;s C, Pati&ntilde;o L, et al. Characterization of virulence genes in methicillin susceptible and resistant <i>Staphylococcus aureus </i>isolates from a paediatric population in a university hospital of Medell&iacute;n, Colombia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2011;106:980-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0123-9392201300020000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>26. Jim&eacute;nez JN, Ocampo AM, Vanegas JM, Rodriguez EA, Mediavilla JR, Chen L, et al. CC8 MRSA strains harboring SSCmec type IVc are predominant in Colombian hospitals. PLoS One. 2012;7:e38576. doi:10.1371/journal.pone.0038576. Epub 2012 Jun 20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0123-9392201300020000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>27. CLSI. Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Seventeenth Informational Supplement 2010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0123-9392201300020000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>28. Jaffe RI, Lane JD, Albury SV, Niemeyer DM. Rapid extraction from and direct identification in clinical samples of methicillin- resistant staphylococci using the PCR. J Clin Microbiol. 2000;38:3407-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0123-9392201300020000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>29. Faria NA, Carrico JA, Oliveira DC, Ramirez M, de Lencastre H. Analysis of typing methods for epidemiological surveillance of both methicillin-resistant and methicillin-susceptible <i>Staphylococcus aureus </i>strains. J Clin Microbiol. 2008;46:136-44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0123-9392201300020000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>30. Boye K, Bartels MD, Andersen IS, Moller JA, Westh H. A new multiplex PCR for easy screening of methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>SSCmec types I-V. Clin Microbiol Infect. 2007;13:725-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0123-9392201300020000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>31. Kondo Y, Ito T, Ma XX, Watanabe S, Kreiswirth BN, Etienne J, et al. Combination of multiplex PCRs for staphylococcal cassette chromosome mec type assignment: rapid identification system for mec, ccr, and major differences in junkyard regions. Antimicrob Agents Chemother. 2007;51:264-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0123-9392201300020000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>32. Kurt K, Alderborn A, Nilsson M, Strommenger B, Witte W, Nubel U. Multiplexed genotyping of methicillin-resistant <i>Staphylococcus aureus </i>isolates by use of padlock probes and tag microarrays. J Clin Microbiol. 2009;47:577-85.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0123-9392201300020000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>33. Milheirico C, Oliveira DC, de Lencastre H. Update to the multiplex PCR strategy for assignment of mec element types in <i>Staphylococcus aureus </i>. Antimicrob Agents Chemother. 2007;51:3374-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0123-9392201300020000400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>34. Francois P, Renzi G, Pittet D, Bento M, Lew D, Harbarth S, et al <i>. </i>A novel multiplex real-time PCR assay for rapid typing of major staphylococcal cassette chromosome mec elements. J Clin Microbiol. 2004;42:3309-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S0123-9392201300020000400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>35. Lina G, Durand G, Berchich C, Short B, Meugnier H, Vandenesch F, et al. Staphylococcal chromosome cassette evolution in <i>Staphylococcus aureus </i>inferred from ccr gene complex sequence typing analysis. Clin Microbiol Infect. 2006;12:1175-84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0123-9392201300020000400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>36. Oliveira DC, Milheirico C, de Lencastre H. Redefining a structural variant of staphylococcal cassette chromosome mec, SSCmec type VI. Antimicrob Agents Chemother. 2006;50:3457-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0123-9392201300020000400036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>37. Oliveira DC, Santos M, Milheirico C, Carrico JA, Vinga S, Oliveira AL, et al. CcrB typing tool: an online resource for staphylococci ccrB sequence typing. J Antimicrob Chemother. 2008;61:959-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0123-9392201300020000400037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>38. Stephens AJ, Huygens F, Inman-Bamber J, Price EP, Nimmo GR, Schooneveldt J, et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus genotyping using a small set of polymorphisms. J Med Microbiol. 2006;55(Pt 1):43-51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S0123-9392201300020000400038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p> </font>     ]]></body>
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