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<article-id pub-id-type="doi">10.1016/j.infect.2014.03.001</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Características inmunológicas claves en la fisiopatología de la sepsis]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Key immunological characteristics in the pathophysiology of sepsis]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Hospital Pablo Tobón Uribe Unidad de Investigaciones ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Despite our current understanding of sepsis pathophysiology, this disease is still a leading cause of death worldwide. Forty percent of patients admitted to intensive care units develop this illness, and 20 to 50% of septic patients die due to its associated complications. Current research aims to improve our understanding of the cellular and molecular mechanisms of this disease and translate these findings into clinical applications that provide a better prognosis for these patients. Currently, it is believed that a susceptible host develops a systemic inflammatory response syndrome (SIRS) after an encounter with a pathogen; however, some individuals progress to a state of immunoparalysis known as compensatory anti-inflammatory response syndrome (CARS), which has been associated with secondary infections. The purpose of the present review is to highlight the main features of sepsis pathophysiology and to highlight the clinical implications of basic research from an immunological perspective.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Síndrome de respuesta inflamatoria sistémica]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p>REVISI&Oacute;N </p>     <p><a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.infect.2014.03.001" target="_blank">http://dx.doi.org/10.1016/j.infect.2014.03.001</a></p>     <p><font size="4"><b>Caracter&iacute;sticas inmunol&oacute;gicas claves en la fisiopatolog&iacute;a de la sepsis </b></font></p>     <p><b>Henry Geovanni Gomez <sup>a</sup>, Mar&iacute;a Teresa Rugeles <sup>a</sup> y Fabi&aacute;n Alberto Jaimes <sup>b</sup>, <sup>c</sup>, <sup>*</sup></b></p>     <p><sup>a</sup> <i>Grupo Inmunovirolog&iacute;a, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, Medell&iacute;n, Antioquia, Colombia </i></p>     <p><sup>b</sup> <i>Grupo Acad&eacute;mico de Epidemiolog&iacute;a Cl&iacute;nica y Departamento de Medicina Interna, Facultad de Medicina, Universidad de </i><i>Antioquia, Medell&iacute;n, Antioquia, Colombia </i></p>     <p><sup>c</sup> <i>Unidad de Investigaciones, Hospital Pablo Tob&oacute;n Uribe, Medell&iacute;n, Antioquia, Colombia </i></p>     <p>Recibido el 14 de febrero de 2013; aceptado el 21 de marzo de 2014 </p>     <p>Disponible en Internet el 17 de junio de 2014 </p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Resumen </b>A pesar del conocimiento actual de la fisiopatolog&iacute;a de la sepsis, esta enfermedad sigue siendo una de las principales causas de muerte a nivel mundial. Alrededor del 40% de los pacientes admitidos a la unidades de cuidado intensivo desarrollan esta enfermedad, y del 20 al 50% de los pacientes s&eacute;pticos mueren por complicaciones asociadas. La investigaci&oacute;n actual busca comprender mejor los mecanismos celulares y moleculares de esta enfermedad, y extrapolar estos hallazgos en aplicaciones cl&iacute;nicas que mejoren el pron&oacute;stico de estos pacientes. </p>     <p>Actualmente, se cree que un hospedero susceptible desarrolla una respuesta inflamatoria sist&eacute;mica (SIRS) en respuesta a un pat&oacute;geno; sin embargo, algunos individuos progresan hacia un estado de inmunopar&aacute;lisis denominado s&iacute;ndrome de respuesta antiinflamatoria compensatoria (CARS), asociado a infecciones secundarias. El objetivo de esta revisi&oacute;n es resaltar las principales caracter&iacute;sticas de la fisiopatolog&iacute;a de la sepsis, destacando las implicaciones cl&iacute;nicas de la investigaci&oacute;n b&aacute;sica, desde una perspectiva inmunol&oacute;gica. </p>     <p><b>PALABRAS CLAVE </b></p>     <p>Sepsis; S&iacute;ndrome de respuesta inflamatoria sist&eacute;mica; Inmunosupresi&oacute;n </p>     <p>&copy; 2013 ACIN. Publicado por Elsevier Espa&ntilde;a, S.L.U. Todos los derechos reservados. </p> <hr size="1">     <p><font size="3"><b>Key immunological characteristics in the pathophysiology of sepsis </b></font></p>     <p><b>Abstract </b>Despite our current understanding of sepsis pathophysiology, this disease is still a leading cause of death worldwide. Forty percent of patients admitted to intensive care units develop this illness, and 20 to 50% of septic patients die due to its associated complications. </p>     <p>Current research aims to improve our understanding of the cellular and molecular mechanisms of this disease and translate these findings into clinical applications that provide a better prognosis for these patients. Currently, it is believed that a susceptible host develops a systemic inflammatory response syndrome (SIRS) after an encounter with a pathogen; however, some individuals progress to a state of immunoparalysis known as compensatory anti-inflammatory response syndrome (CARS), which has been associated with secondary infections. The purpose of the present review is to highlight the main features of sepsis pathophysiology and to highlight the clinical implications of basic research from an immunological perspective. </p>     <p><b>KEYWORDS </b></p>     <p>Sepsis; Systemic inflammatory response syndrome; Immunosuppression </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&copy; 2013 ACIN. Published by Elsevier Espa&ntilde;a, S.L.U. All rights reserved. </p> 0123-9392/&copy; 2013 ACIN. Publicado por Elsevier Espa&ntilde;a, S.L.U. Todos los derechos reservados.</p> <hr size="1">     <p><b>Introducci&oacute;n </b></p>     <p>En 1972, Lewis Thomas introdujo el concepto de que la respuesta del sistema inmune frente a los microorganismos durante una infecci&oacute;n puede ser tan fuerte que se convierta en nociva para nosotros mismos <sup>1</sup> . Posteriormente, Roger Bone acu&ntilde;&oacute; el t&eacute;rmino <i>s&iacute;ndrome de respuesta </i><i>inflamatoria sist&eacute;mica </i>(SIRS) para describir a aquellos pacientes que presentaban evidencia cl&iacute;nica de este fen&oacute;meno proinflamatorio <sup>2</sup> . La introducci&oacute;n de este paradigma propici&oacute; la realizaci&oacute;n de varios ensayos cl&iacute;nicos con el fin de evaluar la eficacia de diversos agentes que pudieran disminuir los efectos adversos de la respuesta inflamatoria; sin embargo, ninguno produjo los resultados esperados <sup>3</sup> . Actualmente, se considera que la sepsis consiste en un estado de inflamaci&oacute;n exacerbado que se desarrolla en respuesta a un pat&oacute;geno. Algunos individuos, buscando regular el sistema, progresan hacia un estado de inmunopar&aacute;lisis conocido como <i>s&iacute;ndrome de respuesta antiinflamatoria </i><i>compensatoria </i>(CARS) que parece volverlos susceptibles al desarrollo de infecciones secundarias e incluso a un mayor riesgo de muerte <sup>3</sup> . A pesar de los avances en el entendimiento de la fisiopatolog&iacute;a de la sepsis, esta enfermedad contin&uacute;a siendo un gran problema de salud mundial con una mortalidad que va del 20 al 50%, dependiendo de la gravedad del cuadro cl&iacute;nico <sup>4</sup> . Recientemente, un estudio multic&eacute;ntrico realizado en nuestro pa&iacute;s encontr&oacute; que la mortalidad al d&iacute;a 28 en los pacientes con sepsis, sepsis grave, y choque s&eacute;ptico es de 7,3, 21,9 y 45,6%, respectivamente <sup>5</sup> . A continuaci&oacute;n, se har&aacute; una descripci&oacute;n de los eventos inmunol&oacute;gicos asociados con el desarrollo de esta dolencia, as&iacute; como los posibles blancos terap&eacute;uticos objeto de inmunomodulaci&oacute;n. </p>     <p><b>S&iacute;ndrome de respuesta inflamatoria sist&eacute;mica </b></p>     <p>El t&eacute;rmino SIRS fue propuesto en 1991 para describir un proceso inflamatorio que se encuentra asociado al menos con 2 de las siguientes manifestaciones cl&iacute;nicas: a) temperatura corporal &gt; 38 &deg; C o &lt;36 &deg; C; b) frecuencia card&iacute;aca &gt; 90 latidos por minuto; c) frecuencia respiratoria &gt; 20 respiraciones por minuto o evidencia de hiperventilaci&oacute;n con una PaCO<sub>2</sub> &lt; 32mmHg y d) recuento de leucocitos en sangre perif&eacute;rica &gt; 12.000/mm <sup>3</sup> o &lt; 4.000/mm <sup>3</sup> , o con presencia de neutr&oacute;filos inmaduros (bandas) &gt; 10% <sup>6</sup> . Cuando el SIRS es el resultado de un proceso infeccioso se denomina sepsis <sup>6</sup> . </p>     <p>La conferencia de consenso del 2001 evalu&oacute; esta propuesta de definiciones y, aunque no encontr&oacute; evidencia suficiente que permita un cambio sustancial en las mismas, destaca que los criterios del SIRS no son muy sensibles ni espec&iacute;ficos y propone ampliar la lista de manifestaciones que pueden reflejar un proceso infeccioso con respuesta generalizada del individuo <sup>6</sup> . </p>     <p><b>Inducci&oacute;n y amplificaci&oacute;n de la respuesta </b><b>inflamatoria </b></p>      <p>Las c&eacute;lulas del sistema inmune innato, como los monocitos/ macr&oacute;fagos y las c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas (CD), expresan <i>receptores de reconocimiento de patrones </i>(PRR) que reconocen estructuras muy conservadas de los microorganismos invasores denominadas <i>patrones moleculares asociados a pat&oacute;genos </i>(PAMP), y tambi&eacute;n reconocen y se unen a mol&eacute;culas end&oacute;genas denominadas <i>patrones moleculares asociados a da&ntilde;o </i>(DAMP) <sup>7</sup> . Entre los PRR encontramos los receptores tipo toll (TLR), los cuales presentan una localizaci&oacute;n celular espec&iacute;fica y reconocen determinados PAMP <sup>7</sup> . La interacci&oacute;n entre los TLR y sus respectivos ligandos activa v&iacute;as de se&ntilde;alizaci&oacute;n que inducen la respuesta inflamatoria (<a href="#figura1">fig. 1</a>). Este proceso requiere de m&uacute;ltiples mol&eacute;culas adaptadoras intracelulares tales como TIRAP y MyD88, las cuales se asocian al dominio citoplasm&aacute;tico de la prote&iacute;na TLR e inducen la disociaci&oacute;n del complejo IKK&alpha; para liberar el factor de transcripci&oacute;n NF- k&Beta; ; este factor se transloca al n&uacute;cleo e induce la transcripci&oacute;n de los genes que codifican citocinas proinflamatorias <sup>7</sup> . Y se ha demostrado que los pacientes s&eacute;pticos presentan niveles elevados de citocinas proinflamatorias <sup>3</sup> . </p>     <p>    <center>   <a name="figura1"><img src="img/revistas/inf/v19n1/v19n1a08i1.jpg"></a></center> </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las bacterias gramnegativas han sido los microorganismos asociados con mayor frecuencia a la sepsis; sin embargo, la frecuencia de los g&eacute;rmenes grampositivos relacionados con esta enfermedad ha aumentado en los &uacute;ltimos a&ntilde;os <sup>5</sup> . En Colombia, ambos grupos de microorganismos se encuentran asociados tanto a las infecciones adquiridas en la comunidad como a las intrahospitalarias <sup>5</sup> . El lipopolisac&aacute;rido (LPS) es el componente mayoritario de la pared celular de las bacterias gramnegativas, mientras que el peptidoglicano (PGN) es el principal componente de la pared celular de las bacterias grampositivas; estos PAMP son reconocidos a trav&eacute;s del TLR4 y del TLR2 respectivamente <sup>7</sup> (fig. 1). Adicionalmente, el ADN bacteriano es reconocido por el TLR9 presente en los endolisosomas debido a que contiene secuencias CpG <sup>7</sup> (fig. 1). El reconocimiento inicial de los pat&oacute;genos puede ser llevado a cabo, entre otros, por los macr&oacute;fagos y mastocitos residentes en los tejidos, los cuales liberan diversos mediadores inflamatorios tales como quimiocinas, citocinas, aminas vasoactivas, eicosanoides y productos de cascadas proteol&iacute;ticas <sup>8</sup> . Cabe destacar que las citocinas proinflamatorias TNF-&alpha; , IL-1 &beta; , e IL-6 inducen la respuesta de fase aguda, as&iacute; como la activaci&oacute;n del endotelio y de otros leucocitos <sup>8</sup> . </p>     <p>El da&ntilde;o causado a los tejidos por todos esos mediadores inflamatorios liberados induce, a su vez, la liberaci&oacute;n de mol&eacute;culas end&oacute;genas que tambi&eacute;n pueden activar el sistema inmune 9 . La prote&iacute;na HMGB1 es una prote&iacute;na no histona que modifica el plegamiento del ADN; esta puede ser liberada pasivamente al medio extracelular por c&eacute;lulas necr&oacute;ticas o de manera activa por los monocitos y los macr&oacute;fagos activados <sup>9</sup> . En el 2005, se report&oacute; que la concentraci&oacute;n plasm&aacute;tica de la HMGB1 de los pacientes con sepsis grave y choque s&eacute;ptico se mantiene elevada hasta por una semana despu&eacute;s del ingreso al servicio hospitalario <sup>10</sup>. Sin embargo, un estudio multic&eacute;ntrico realizado en Europa encontr&oacute; que la cin&eacute;tica de las concentraciones plasm&aacute;ticas de la HMGB1 en los pacientes s&eacute;pticos puede variar, dependiendo de la fuente primaria del sitio de infecci&oacute;n <sup>11</sup> . La HMGB1 induce la activaci&oacute;n del TLR2 y del TLR4 <sup>12</sup> (fig. 1), promoviendo a&uacute;n m&aacute;s la producci&oacute;n de citocinas proinflamatorias en monocitos <sup>13</sup>. Adem&aacute;s, se ha demostrado que la HMGB1 induce un patr&oacute;n distintivo en la expresi&oacute;n g&eacute;nica y la activaci&oacute;n de los neutr&oacute;filos de pacientes s&eacute;pticos <sup>14</sup> . Nuestro grupo estudi&oacute; la utilidad diagn&oacute;stica <sup>15</sup> y pron&oacute;stica <sup>16</sup> de esta prote&iacute;na, con resultados negativos en ambos casos. </p>      <p>Otros factores end&oacute;genos que pudieran contribuir al estado inflamatorio exacerbado son los DAMP mitocondriales; se ha demostrado que estas mol&eacute;culas son reconocidas a trav&eacute;s de receptores presentes en los neutr&oacute;filos e inducen su activaci&oacute;n, migraci&oacute;n y degranulaci&oacute;n tanto <i>in vivo </i>como <i>in vitro </i><sup>17</sup> . Adicionalmente, se ha demostrado que los cristales de urato monos&oacute;dico (producto de degradaci&oacute;n de las purinas) inducen la producci&oacute;n de IL-1 &beta; a trav&eacute;s del inflamosoma NLRP3 (fig. 1) y que adem&aacute;s act&uacute;an en sinergia con el LPS para activar el TLR4, promoviendo a&uacute;n m&aacute;s la producci&oacute;n de IL-1 &beta; <sup>18</sup> . </p>      <p><b>Susceptibilidad gen&eacute;tica al desarrollo de un estado </b><b>proinflamatorio </b></p>      <p>Desde las investigaciones iniciales se report&oacute; el aumento de citocinas proinflamatorias en pacientes con sepsis, especialmente en aquellos individuos que mor&iacute;an a causa de esta enfermedad <sup>3</sup> . Los polimorfismos presentes en los promotores de los genes que codifican para las citocinas pudieran determinar las concentraciones plasm&aacute;ticas de estas prote&iacute;nas durante la respuesta a una infecci&oacute;n <sup>3</sup>. De hecho, se han descrito diferentes variantes al&eacute;licas del gen que codifica para el TNF- &alpha; , entre ellas un polimorfismo de un solo nucle&oacute;tido (SNP) en la posici&oacute;n -308 ubicada en la regi&oacute;n del promotor que da origen a las variantes TNF1 (G/G) y TNF2 (G/A o A/A) <sup>19</sup> ; el alelo TNF2 se presenta en baja frecuencia en la poblaci&oacute;n y se ha asociado con una mayor producci&oacute;n de TNF- &alpha;<sup>20</sup> . Diversos estudios han encontrado una asociaci&oacute;n entre este polimorfismo y la susceptibilidad a desarrollar sepsis <sup>21</sup> ; sin embargo, tambi&eacute;n se han reportado resultados contradictorios <sup>22</sup> . Recientemente, una revisi&oacute;n sistem&aacute;tica seguida de un metaan&aacute;lisis encontr&oacute; que el alelo TNF2 est&aacute; asociado al desarrollo de sepsis; sin embargo, no encontr&oacute; asociaci&oacute;n alguna entre esta variante y la mortalidad observada en este grupo de pacientes <sup>23</sup> . </p>      <p>Tambi&eacute;n se han descrito polimorfismos en el gen que codifica la IL-1 &beta; ; entre ellos el SNP-511 (C &gt; T) que se ubica en la regi&oacute;n promotora del gen y determina el nivel de expresi&oacute;n de la prote&iacute;na <sup>24</sup> . Aunque se ha encontrado asociaci&oacute;n entre este polimorfismo y el riesgo de desarrollar sepsis <sup>25</sup> , se requieren cohortes con un mayor n&uacute;mero de individuos que permitan corroborar la participaci&oacute;n de esta variante biol&oacute;gica en la fisiopatolog&iacute;a de la enfermedad. Adicionalmente, se ha estudiado el polimorfismo -174 (G/C) ubicado en el promotor del gen que codifica para la IL-6 en el contexto de la sepsis <sup>26</sup> ; sin embargo, los hallazgos recopilados hasta la fecha han sido contradictorios <sup>27</sup> . </p>      <p><b>S&iacute;ndrome de respuesta antiinflamatoria </b><b>compensatoria </b></p>      <p>El paradigma de la inflamaci&oacute;n exacerbada no logra explicar completamente los eventos observados en los pacientes con sepsis <sup>3</sup> ; de hecho, durante este proceso tambi&eacute;n se liberan mol&eacute;culas antiinflamatorias que buscan regular la respuesta inmune <sup>2</sup> , y en algunos casos se puede llegar a desarrollar un CARS <sup>2</sup> . El CARS se ha asociado con cambios en el sistema inmune (<a href="#tabla1">tabla 1</a>), entre los que se destacan la alteraci&oacute;n en la expresi&oacute;n del HLA-DR en monocitos (mHLA-DR), la apoptosis en linfocitos y el aumento de las citocinas reguladoras, los cuales parecieran influir en el desarrollo de infecciones secundarias y la muerte del paciente <sup>28</sup> . Sin embargo, los hallazgos asociados a CARS han sido principalmente descritos en cohortes aisladas, por lo que ha sido dif&iacute;cil hacer una caracterizaci&oacute;n completa de este proceso que permita proponer blancos terap&eacute;uticos susceptibles de inmunomodulaci&oacute;n. </p>      <p>    <center>   <a name="tabla1"><img src="img/revistas/inf/v19n1/v19n1a08t1.gif"></a></center> </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Expresi&oacute;n de HLA-DR en monocitos </b></p>      <p>Los monocitos son c&eacute;lulas del sistema inmune que se originan a partir de precursores mieloides presentes en la m&eacute;dula &oacute;sea, los cuales entran a la circulaci&oacute;n y d&iacute;as despu&eacute;s migran a los tejidos para diferenciarse en macr&oacute;fagos <sup>29</sup> . Adicionalmente, se ha demostrado que esta poblaci&oacute;n celular puede diferenciarse a CD mieloides tanto <i>in vitro </i>como <i>in vivo </i><sup>29</sup> . Los monocitos expresan en forma constitutiva la mol&eacute;cula HLA-DR en su superficie y se ha determinado que en individuos sanos el porcentaje de monocitos que la expresan es &gt; 90% <sup>30</sup> ; sin embargo, su expresi&oacute;n puede estar disminuida de manera parcial o total en pacientes con sepsis <sup>31</sup> . Este proceso se ha asociado a defectos en la producci&oacute;n de citocinas proinflamatorias y en la presentaci&oacute;n antig&eacute;nica a los linfocitos T, alterando el desarrollo de una respuesta adaptativa adecuada <sup>30</sup> . Un estudio realizado en Finlandia analiz&oacute; el mHLA-DR en 61 pacientes con sepsis, admitidos a 2 unidades de cuidados intensivos de un hospital local, y encontr&oacute; que el porcentaje de monocitos que expresaban HLA-DR de los individuos que fallecieron era significativamente menor al momento del ingreso con respecto a los sobrevivientes <sup>32</sup> . Hallazgos similares fueron encontrados en un estudio realizado en Grecia que incluy&oacute; una cohorte de 35 pacientes con diagn&oacute;stico de sepsis grave <sup>33</sup> . En contraste, un estudio realizado en 93 pacientes en choque s&eacute;ptico no encontr&oacute; diferencias estad&iacute;sticamente significativas en el porcentaje de monocitos que expresaban mHLA-DR entre sobrevivientes y no sobrevivientes <sup>34</sup> . As&iacute; mismo, una cohorte que incluy&oacute; a 35 pacientes con sepsis grave en Taiw&aacute;n report&oacute; resultados similares <sup>35</sup> . Teniendo en cuenta la disparidad de estos hallazgos, algunos estudios han analizado las variaciones en la expresi&oacute;n del mHLA-DR en el tiempo. Monneret et al. estudiaron su expresi&oacute;n durante los d&iacute;as 1-2 y 3-4 en pacientes con choque s&eacute;ptico y encontraron que el porcentaje de monocitos que expresan HLA-DR era significativamente mayor en los sobrevivientes con respecto a los no sobrevivientes en los d&iacute;as 3-4 <sup>34</sup> . Un estudio prospectivo realizado en China midi&oacute; el mHLA-DR durante los d&iacute;as 0, 3, y 7 en un grupo de 79 pacientes adultos con diagn&oacute;stico de sepsis grave; los investigadores analizaron los cambios en el valor medido los d&iacute;as 3 y 7 con respecto al d&iacute;a 0 ( &Delta; mHLADR <sub>3</sub> y &Delta; mHLA-DR <sub>7</sub> ) y encontraron que los pacientes con un &Delta; mHLA-DR <sub>3</sub> = 4,8% presentaban mayor mortalidad que aquellos con un &Delta; mHLA-DR <sub>3</sub> &gt; 4,8% (71,4 vs. 2.0%; OR 125; IC 95%: 13,93-1.121,67); de manera similar, los pacientes con un &Delta; mHLA-DR <sub>7</sub> = 9% ten&iacute;an mayor mortalidad que aquellos con un &Delta; mHLA-DR <sub>7</sub> &gt; 9% (52,9 vs. 2,0%; OR 54,00; IC 95%: 5,99-486,08), lo cual sugiere que el cambio del mHLADR puede predecir de manera confiable la probabilidad de supervivencia en los pacientes con sepsis grave 36 . Finalmente, cabe resaltar que niveles disminuidos de mHLA-DR tambi&eacute;n se han relacionado con el desarrollo de infecciones secundarias en pacientes con sepsis <sup>30</sup>. </p>      <p>La evidencia recopilada hasta el momento ha permitido proponer que el mHLA-DR deber&iacute;a ser empleado en el monitoreo del paciente en estado cr&iacute;tico <sup>30</sup> , no solo en adultos sino tambi&eacute;n en ni&ntilde;os, ya que el mHLA-DR tambi&eacute;n parece predecir de manera temprana el pron&oacute;stico de los pacientes con sepsis neonatal <sup>37</sup> . Sin embargo, es indispensable realizar una caracterizaci&oacute;n muy completa de las alteraciones del mHLA-DR en los pacientes s&eacute;pticos antes de emplear este posible biomarcador de manera rutinaria. Esto es porque se ha observado que la expresi&oacute;n de esta mol&eacute;cula puede ser modulada de manera diferencial de acuerdo al tipo de infecci&oacute;n subyacente, el pat&oacute;geno implicado y la severidad de la enfermedad <sup>38</sup> . Adicionalmente, se ha observado que individuos con niveles elevados de IL-10 presentan una correlaci&oacute;n inversa con el porcentaje de monocitos que expresan HLA-DR <sup>39</sup> ; de hecho, se ha demostrado que la IL-10 regula negativamente la expresi&oacute;n del HLA-DR en los monocitos cl&aacute;sicos CD14 <sup>Alt</sup> &deg; CD16 - <sup>40</sup> . Con base en todos estos estudios, se propuso que a los pacientes con sepsis que presenten disminuci&oacute;n significativa del mHLA-DR se les debe administrar el factor estimulante de colonia de granulocitos (G-CSF) o el factor estimulante de colonia de granulocito-macr&oacute;fago (GM-CSF) como inmunomoduladores; sin embargo, un metaan&aacute;lisis que analiz&oacute; 12 ensayos cl&iacute;nicos aleatorios (RCT) con 2.380 pacientes no encontr&oacute; evidencia suficiente que soporte el uso rutinario de estas sustancias en el tratamiento de los pacientes con esta enfermedad <sup>41</sup>. </p>      <p><b>Apoptosis de linfocitos </b></p>     <p>La apoptosis es un tipo de muerte celular que morfol&oacute;gicamente se caracteriza por la contracci&oacute;n celular y la compactaci&oacute;n y fragmentaci&oacute;n del n&uacute;cleo <sup>42 </sup>. Este fen&oacute;meno puede ocurrir mediante la interacci&oacute;n de un ligando que interact&uacute;a con un receptor ubicado en la membrana plasm&aacute;tica de la c&eacute;lula (apoptosis extr&iacute;nseca), por ejemplo la interacci&oacute;n del TNF- &alpha; con su receptor; o por el predominio de las prote&iacute;nas proapopt&oacute;ticas (BIM, PUMA u otras prote&iacute;nas tipo BH3) sobre las antiapopt&oacute;ticas (BCL2 y BCL-XL) debido a da&ntilde;o end&oacute;geno, lo cual induce la liberaci&oacute;n del citocromo C por parte de la mitocondria y la activaci&oacute;n de las caspasas efectoras (apoptosis intr&iacute;nseca) <sup>42</sup> . Durante este proceso, las c&eacute;lulas en apoptosis liberan mediadores lip&iacute;dicos los cuales atraen macr&oacute;fagos, pero al mismo tiempo pueden inhibir la liberaci&oacute;n de las citocinas proinflamatorias TNF- &alpha; e IL- 12 y aumentar la liberaci&oacute;n de factores inmunosupresores como la IL-10 <sup>43</sup> . Adicionalmente, las c&eacute;lulas en apoptosis expresan el fosfol&iacute;pido fosfatidilserina en la cara externa de la membrana plasm&aacute;tica, lo cual conlleva su reconocimiento por fagocitos a trav&eacute;s de diferentes receptores como los tipo TAM (TYRO3, AXL y MER) <sup>43</sup> . Se ha demostrado que la activaci&oacute;n de estos receptores inhibe la producci&oacute;n de citocinas proinflamatorias inducida por la se&ntilde;alizaci&oacute;n mediada por los TLR en c&eacute;lulas presentadoras de ant&iacute;genos (CPA) <sup>43</sup> . </p>     <p>Se ha observado que los pacientes con sepsis presentan evidencia de apoptosis masiva de linfocitos, tanto en sangre perif&eacute;rica como en tejido linfoide <sup>42</sup> . Esta muerte es inducida tanto por la v&iacute;a extr&iacute;nseca como por la intr&iacute;nseca en los linfocitos T <sup>44</sup> . La linfopenia resultante se asocia claramente con la mortalidad, puesto que la destrucci&oacute;n masiva de las c&eacute;lulas del sistema inmune impide una respuesta efectiva contra el insulto primario y adem&aacute;s favorece la aparici&oacute;n de infecciones secundarias <sup>42</sup> . La apoptosis se ha observado en diversas poblaciones de linfocitos T como LT CD4+, LT CD8+, y en CPA HLA-DR+ presentes en el bazo de individuos con sepsis grave <sup>45</sup> . Adem&aacute;s, la secreci&oacute;n de TNF-&alpha;  , IFN- &gamma; , IL-6 e IL-10 por los esplenocitos de estos pacientes es menos del 10%, comparada con la secreci&oacute;n en controles no infectados; este patr&oacute;n de citocinas es independiente de la edad, del tiempo que dure la enfermedad, del uso de corticoesteroides y del estado nutricional <sup>45</sup> . Con base en estas evidencias, se ha propuesto el uso de las citocinas IL-7 e IL-15 para limitar la extensi&oacute;n de la apoptosis en pacientes con sepsis; adem&aacute;s, la IL-15 tambi&eacute;n podr&iacute;a ayuda a restaurar la funci&oacute;n efectora de los linfocitos <sup>28</sup> . </p>     <p><b>Predominio de la respuesta tipo Th2 sobre Th1 </b></p>     <p>Los linfocitos T CD4+ &laquo; ayudadores &raquo; representan una poblaci&oacute;n celular heterog&eacute;nea que se puede clasificar de acuerdo con el perfil de citocinas producidas luego de ser estimulados <sup>46</sup> . Durante las fases tempranas de la presentaci&oacute;n antig&eacute;nica, las CD activadas producen IL-12 que induce la polarizaci&oacute;n de los linfocitos T hacia un perfil Th1, caracterizado por la producci&oacute;n de citocinas proinflamatorias tales como el IFN- &gamma;  y el TNF- &alpha; ; sin embargo, este fen&oacute;meno es transitorio y estas mismas c&eacute;lulas propician la respuesta tipo Th2, en la que predominan las citocinas reguladoras como la IL-4 e IL-10 <sup>46</sup> . Algunos individuos con sepsis presentan niveles plasm&aacute;ticos elevados tanto de citocinas proinflamatorias como de citocinas antiinflamatorias; sin embargo, el predominio de IL-10 sobre TNF- &alpha; es considerado un indicador de mal pron&oacute;stico <sup>47</sup> . Aunque la IL-10 puede ser producida por linfocitos T polarizados hacia la respuesta tipo Th2, esta citocina reguladora tambi&eacute;n puede ser secretada por monocitos, macr&oacute;fagos, CD mieloides, neutr&oacute;filos y c&eacute;lulas T reguladoras <sup>48</sup> . Se ha demostrado que la producci&oacute;n de IL-10 por parte de las c&eacute;lulas T puede ser modulada positivamente a trav&eacute;s de la IL-6 y el TGF&beta; <sup>49</sup> , mientras que en los macr&oacute;fagos la producci&oacute;n de IL-10 se modula positivamente mediante la prote&iacute;na C reactiva <sup>50</sup>. Adicionalmente, una mayor produci&oacute;n de IL-10 pudiera estar relacionada con la presencia de polimorfismos presentes en la regi&oacute;n promotora del gen que codifica para esta citocina <sup>51</sup> . Una de las principales funciones de la IL-10 es regular la respuesta inmune frente a los pat&oacute;genos; esta actividad biol&oacute;gica se ejerce mediante la inhibici&oacute;n en la producci&oacute;n de las citocinas proinflamatorias TNF- &alpha; , IL-6, IL-12 e IL-1 &beta; y la regulaci&oacute;n negativa de la expresi&oacute;n del complejo mayor de compatibilidad clase ii en monocitos activados por LPS 48 . La IL-10 tambi&eacute;n inhibe la expresi&oacute;n de mol&eacute;culas coestimuladoras como CD80 y de la mol&eacute;cula de adhesi&oacute;n ICAM-1 en monocitos/ macr&oacute;fagos; adem&aacute;s, inhibe tanto la generaci&oacute;n de CD derivadas de monocitos, como la maduraci&oacute;n de las CD estimuladas con LPS, alterando de esta manera la presentaci&oacute;n antig&eacute;nica y, por ende, la proliferaci&oacute;n y activaci&oacute;n de las c&eacute;lulas T <sup>48</sup> . Teniendo en cuenta estos hallazgos se ha propuesto el uso de anti-IL-10 como posible agente inmunomodulador en los pacientes con sepsis que presenten niveles muy elevados de esta citocina reguladora <sup>28</sup> . </p>      <p><b>Conclusiones </b></p>     <p>La fisiopatolog&iacute;a de la sepsis es un proceso complejo que involucra diversos elementos del sistema inmune, los cuales participan durante las diferentes etapas de la historia natural de la enfermedad. Entre ellas encontramos el reconocimiento inicial de los microorganismos a trav&eacute;s de receptores presentes en las CPA, la amplificaci&oacute;n de la respuesta inflamatoria por el reconocimiento de mol&eacute;culas end&oacute;genas asociadas a da&ntilde;o, la producci&oacute;n de citocinas pro- y antiinflamatorias, la modulaci&oacute;n en la expresi&oacute;n de mHLA-DR, y la apoptosis masiva de los linfocitos T. Aunque es muy probable que el genotipo del individuo contribuya a la susceptibilidad de padecer esta enfermedad, es el balance adecuado de los diferentes componentes lo que debe permitir alcanzar la regulaci&oacute;n &laquo; est&eacute;ril &raquo; , sin causar un da&ntilde;o colateral excesivo. A pesar de estos avances, a&uacute;n falta entender mejor la manera en la que cada uno de estos elementos contribuye al desarrollo de esta dolencia; adem&aacute;s, es indispensable caracterizar los biomarcadores que permitan identificar claramente cu&aacute;les individuos se encuentran en fase proinflamatoria y cu&aacute;les presenten caracter&iacute;sticas de inmunosupresi&oacute;n inducida por sepsis. Cuando esto suceda, se podr&aacute; introducir la inmunomodulaci&oacute;n como una herramienta terap&eacute;utica efectiva que permita disminuir tanto la mortalidad como la comorbilidad en los pacientes con sepsis. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Financiaci&oacute;n </b></p>     <p>Financiado por Estrategia de Sostenibilidad 2013-2014 del Grupo Inmunovirolog&iacute;a y del Grupo Acad&eacute;mico de Epidemiolog&iacute;a Cl&iacute;nica de la Universidad de Antioquia. </p>     <p><b>Conflicto de intereses </b></p>     <p>Los autores declaran no tener ning&uacute;n conflicto de intereses. </p> * Autor para correspondencia. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:fjaimes@udea.edu.co">fjaimes@udea.edu.co</a> (F.A. Jaimes).     <p><b>Bibliograf&iacute;a </b></p>     <!-- ref --><p>1. Thomas L. Germs. N Engl J Med. 1972;287:553-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S0123-9392201500010000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>2. Bone RC, Grodzin CJ, Balk RA. Sepsis: A new hypothesis for pathogenesis of the disease process. Chest. 1997;112:235-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S0123-9392201500010000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>3. Hotchkiss RS, Karl IE. The pathophysiology and treatment of sepsis. N Engl J Med. 2003;348:138-50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S0123-9392201500010000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>4. Vincent JL, Sakr Y, Sprung CL, Ranieri VM, Reinhart K, Gerlach H, et al. Sepsis in European intensive care units: Results of the SOAP study. Crit Care Med. 2006;34:344-53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0123-9392201500010000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>5. Rodr&iacute;guez F, Barrera L, de la Rosa G, Dennis R, Due&ntilde;as C, Granados M, et al. The epidemiology of sepsis in Colombia: A prospective multicenter cohort study in ten university hospitals. Crit Care Med. 2011;39:1675-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0123-9392201500010000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>6. Levy MM, Fink MP, Marshall JC, Abraham E, Angus D, Cook D, et al. 2001 SCCM/ESICM/ACCP/ATS/SIS International Sepsis Definitions Conference. Crit Care Med. 2003;31:1250-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0123-9392201500010000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>7. Kumar H, Kawai T, Akira S. Pathogen recognition by the innate immune system. Int Rev Immunol. 2011;30:16-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0123-9392201500010000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>8. Medzhitov R. Origin and physiological roles of inflammation. Nature. 2008;454:428-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0123-9392201500010000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>9. Scaffidi P, Misteli T, Bianchi ME. Release of chromatin protein HMGB1 by necrotic cells triggers inflammation. Nature. 2002;418:191-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0123-9392201500010000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>10. Sund&eacute;n-Cullberg J, Norrby-Teglund A, Rouhiainen A, Rauvala H, Herman G, Tracey KJ, et al. Persistent elevation of high mobility group box-1 protein (HMGB1) in patients with severe sepsis and septic shock. Crit Care Med. 2005;33:564-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0123-9392201500010000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>11. Van Zoelen MA, Laterre PF, van Veen SQ, van Till JW, Wittebole X, Bresser P, et al. Systemic and local high mobility group box 1 concentrations during severe infection. Crit Care Med. 2007;35:2799-804.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0123-9392201500010000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>12. Park JS, Gamboni-Robertson F, He Q, Svetkauskaite D, Kim JY, Strassheim D, et al. High mobility group box 1 protein interacts with multiple Toll-like receptors. Am J Physiol Cell Physiol. 2006;290:C917-24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0123-9392201500010000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>13. Youn JH, Oh YJ, Kim ES, Choi JE, Shin JS. High mobility group box 1 protein binding to lipopolysaccharide facilitates transfer of lipopolysaccharide to CD14 and enhances lipopolysaccharide-mediated TNF-alpha production in human monocytes. J Immunol. 2008;180:5067-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0123-9392201500010000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>14. Silva E, Arcaroli J, He Q, Svetkauskaite D, Coldren C, Nick JA, et al. HMGB1 and LPS induce distinct patterns of gene expression and activation in neutrophils from patients with sepsis-induced acute lung injury. Intensive Care Med. 2007;33:1829-39.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0123-9392201500010000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>15. G&aacute;mez-D&iacute;az LY, Enriquez LE, Matute JD, Vel&aacute;squez S, G&oacute;mez ID, Toro F, et al. Diagnostic accuracy of HMGB-1, sTREM-1, and CD64 as markers of sepsis in patients recently admitted to the emergency department. Acad Emerg Med. 2011;18:807-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0123-9392201500010000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>16. Vel&aacute;squez S, Matute JD, G&aacute;mez LY, Enr&iacute;quez LE, G&oacute;mez ID, Toro F, et al. Characterization of nCD64 expression in neutrophils and levels of s-TREM-1 and HMGB-1 in patients with suspected infection admitted in an emergency department. Biomedica. 2013;33:643-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0123-9392201500010000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>17. Zhang Q, Raoof M, Chen Y, Sumi Y, Sursal T, Junger W, et al. Circulating mitochondrial DAMPs cause inflammatory responses to injury. Nature. 2010;464:104-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0123-9392201500010000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>18. Giamarellos-Bourboulis EJ, Mouktaroudi M, Bodar E, van der Ven J, Kullberg BJ, Netea MG, et al. Crystals of monosodium urate monohydrate enhance lipopolysaccharide-induced release of interleukin 1 beta by mononuclear cells through a caspase 1- mediated process. Ann Rheum Dis. 2009;68:273-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0123-9392201500010000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>19. Wilson AG, di Giovine FS, Blakemore AI, Duff GW. Single base polymorphism in the human tumour necrosis factor alpha (TNF alpha) gene detectable by NcoI restriction of PCR product. Hum Mol Genet. 1992;1:353.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0123-9392201500010000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>20. Wilson AG, Symons JA, McDowell TL, McDevitt HO, Duff GW. Effects of a polymorphism in the human tumor necrosis factor alpha promoter on transcriptional activation. Proc Natl Acad Sci U S A. 1997;94:3195-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0123-9392201500010000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>21. Mira JP, Cariou A, Grall F, Delclaux C, Losser MR, Heshmati F, et al. Association of TNF2, a TNF-alpha promoter polymorphism, with septic shock susceptibility and mortality: A multicenter study. JAMA. 1999;282:561-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0123-9392201500010000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>22. Gordon AC, Lagan AL, Aganna E, Cheung L, Peters CJ, McDermott MF, et al. TNF and TNFR polymorphisms in severe sepsis and septic shock: A prospective multicentre study. Genes Immun. 2004;5:631-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0123-9392201500010000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>23. Teuffel O, Ethier MC, Beyene J, Sung L. Association between tumor necrosis factor-alpha promoter -308 A/G polymorphism and susceptibility to sepsis and sepsis mortality: A systematic review and meta-analysis. Crit Care Med. 2010;38:276-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0123-9392201500010000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>24. Di Giovine FS, Takhsh E, Blakemore AI, Duff GW. Single base polymorphism at -511 in the human interleukin-1 beta gene (IL1 beta). Hum Mol Genet. 1992;1:450.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0123-9392201500010000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>25. Davis SM, Clark EA, Nelson LT, Silver RM. The association of innate immune response gene polymorphisms and puerperal group A streptococcal sepsis. Am J Obstet Gynecol. 2010;202(308):e1-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0123-9392201500010000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>26. Schl&uuml;ter B, Raufhake C, Erren M, Schotte H, Kipp F, Rust S, et al. Effect of the interleukin-6 promoter polymorphism (-174 G/C) on the incidence and outcome of sepsis. Crit Care Med. 2002;30:32-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0123-9392201500010000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>27. Sutherland AM, Walley KR, Russell JA. Polymorphisms in CD14, mannose-binding lectin, and Toll-like receptor-2 are associated with increased prevalence of infection in critically ill adults. Crit Care Med. 2005;33:638-44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0123-9392201500010000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>28. Hotchkiss RS, Opal S. Immunotherapy for sepsis–a new approach against an ancient foe. N Engl J Med. 2010;363:87-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0123-9392201500010000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>29. Ziegler-Heitbrock L, Ancuta P, Crowe S, Dalod M, Grau V, Hart DN, et al. Nomenclature of monocytes and dendritic cells in blood. Blood. 2010;116:e74-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0123-9392201500010000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>30. Venet F, Lepape A, Monneret G. Clinical review: Flow cytometry perspectives in the ICU - from diagnosis of infection to monitoring of injury-induced immune dysfunctions. Crit Care. 2011;15:231.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0123-9392201500010000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>31. Venet F, Tissot S, Debard AL, Faudot C, Cramp&eacute; C, Pachot A, et al. Decreased monocyte human leukocyte antigen-DR expression after severe burn injury: Correlation with severity and secondary septic shock. Crit Care Med. 2007;35:1910-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0123-9392201500010000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>32. Hynninen M, Pettil&auml; V, Takkunen O, Orko R, Jansson SE, Kuusela P, et al. Predictive value of monocyte histocompatibility leukocyte antigen-DR expression and plasma interleukin-4 and -10 levels in critically ill patients with sepsis. Shock. 2003;20:1-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0123-9392201500010000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>33. Lekkou A, Karakantza M, Mouzaki A, Kalfarentzos F, Gogos CA. Cytokine production and monocyte HLA-DR expression as predictors of outcome for patients with community-acquired severe infections. Clin Diagn Lab Immunol. 2004;11:161-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0123-9392201500010000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>34. Monneret G, Lepape A, Voirin N, Boh&eacute; J, Venet F, Debard AL, et al. Persisting low monocyte human leukocyte antigen-DR expression predicts mortality in septic shock. Intensive Care Med. 2006;32:1175-83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0123-9392201500010000800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>35. Wu HP, Shih CC, Lin CY, Hua CC, Chuang DY. Serial increase of IL-12 response and human leukocyte antigen-DR expression in severe sepsis survivors. Crit Care. 2011;15:R224.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0123-9392201500010000800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>36. Wu JF, Ma J, Chen J, Ou-Yang B, Chen MY, Li LF, et al. Changes of monocyte human leukocyte antigen-DR expression as a reliable predictor of mortality in severe sepsis. Crit Care. 2011;15:R220.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0123-9392201500010000800036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>37. Genel F, Atlihan F, Ozsu E, Ozbek E. Monocyte HLA-DR expression as predictor of poor outcome in neonates with late onset neonatal sepsis. J Infect. 2010;60:224-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0123-9392201500010000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>38. Gogos C, Kotsaki A, Pelekanou A, Giannikopoulos G, Vaki I, Maravitsa P, et al. Early alterations of the innate and adaptive immune statuses in sepsis according to the type of underlying infection. Crit Care. 2010;14:R96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0123-9392201500010000800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>39. Monneret G, Finck ME, Venet F, Debard AL, Boh&eacute; J, Bienvenu J, et al. The antiinflammatory response dominates after septic shock: Association of low monocyte HLA-DR expression and high interleukin-10 concentration. Immunol Lett. 2004;95:193-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0123-9392201500010000800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>40. Kim OY, Monsel A, Bertrand M, Coriat P, Cavaillon JM, Adib-Conquy M. Differential down-regulation of HLA-DR on monocyte subpopulations during systemic inflammation. Crit Care. 2010;14:R61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0123-9392201500010000800040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>41. Bo L, Wang F, Zhu J, Li J, Deng X. Granulocyte-colony stimulating factor (G-CSF) and granulocyte-macrophage colony stimulating factor (GM-CSF) for sepsis: A meta-analysis. Crit Care. 2011;15:R58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0123-9392201500010000800041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>42. Hotchkiss RS, Strasser A, McDunn JE, Swanson PE. Cell death. N Engl J Med. 2009;361:1570-83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0123-9392201500010000800042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>43. Zitvogel L, Kepp O, Kroemer G. Decoding cell death signals in inflammation and immunity. Cell. 2010;140:798-804.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0123-9392201500010000800043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>44. Hotchkiss RS, Osmon SB, Chang KC, Wagner TH, Coopersmith CM, Karl IE. Accelerated lymphocyte death in sepsis occurs by both the death receptor and mitochondrial pathways. J Immunol. 2005;174:5110-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0123-9392201500010000800044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>45. Boomer JS, To K, Chang KC, Takasu O, Osborne DF, Walton AH, et al. Immunosuppression in patients who die of sepsis and multiple organ failure. JAMA. 2011;306:2594-605.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0123-9392201500010000800045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>46. Langenkamp A, Messi M, Lanzavecchia A, Sallusto F. Kinetics of dendritic cell activation: Impact on priming of TH1, TH2 and nonpolarized T cells. Nat Immunol. 2000;1:311-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0123-9392201500010000800046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>47. Gogos CA, Drosou E, Bassaris HP, Skoutelis A. Pro-versus antiinflammatory cytokine profile in patients with severe sepsis: A marker for prognosis and future therapeutic options. J Infect Dis. 2000;181:176-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0123-9392201500010000800047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>48. Sato T, Terai M, Tamura Y, Alexeev V, Mastrangelo MJ, Selvan SR. Interleukin 10 in the tumor microenvironment: A target for anticancer immunotherapy. Immunol Res. 2011;51:170-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0123-9392201500010000800048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>49. McGeachy MJ, Bak-Jensen KS, Chen Y, Tato CM, Blumenschein W, McClanahan T, et al. TGF-beta and IL-6 drive the production of IL-17 and IL-10 by T cells and restrain T(H)-17 cell-mediated pathology. Nat Immunol. 2007;8:1390-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0123-9392201500010000800049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>50. Mold C, Rodriguez W, Rodic-Polic B, du Clos TW. Creactive protein mediates protection from lipopolysaccharide through interactions with Fc gamma R. J Immunol. 2002;169: 7019-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0123-9392201500010000800050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>51. Shu Q, Fang X, Chen Q, Stuber F. IL-10 polymorphism is associated with increased incidence of severe sepsis. Chin Med J (Engl). 2003;116:1756-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0123-9392201500010000800051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p> </font>      ]]></body><back>
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