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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Perfil microbiológico de aislamientos en unidades neonatales en un hospital de tercer nivel de Bogotá, Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[OBJECTIVES: Investigating the prevalence and sensitivity of germs isolated from newborn in a referral hospital in Bogotá. Suggesting an empirical antibiotic treatment for neonatal infection. METHODS: Cultures taken between February and December 2002 were analysed. Blood cultures were processed using BacT/ALERT (Durham, NC), urine cultures by UROCULT (Bio-Bacter) and catheter tips in thioglycollate. BBL CRYSTAL identification system (BD, Sparks, MD) was used for identifying germs. Antibiotic sensitivity was determined by disk diffusion. RESULTS: There were 1,097 positive aerobic and facultative aerobic germ cultures; 64,3% were Gram-positive, 30,6% Gram-negative and 4,9% were yeasts. Gram-positive germs consisted of coagulase-negative staphylococci (64,2%), enterococcus (13,8%) and coagulase-positive staphylococci (13,3%). The most frequent Gram-negatives were Klebsiella (45,2%), Eschericha coli (30,9%) and Serratia (10,1%). Staphylococcus epidermidis accounted for 64% of the coagulase-negative staphylococci. S. epidermidis susceptibility to vancomycin was 100%. Coagulase-negative staphylococci susceptibility to rifampin and amikacin was 59% and 67,4% (respectively). Coagulase-negative staphylococci resistance to beta-lactams was 86,4% (95% CI: 82,3-89,9). Coagulase-positive staphylococci sensitivity to vancomycin was 100%. Gram-negative susceptibility to imipenem was 98,1% (95% CI: 89,9-99,9), 78,1% to gentamicin (95% CI: 64,9-88,2) and 46,6% to amikacin (95% CI: 28,3-65,7). CONCLUSIONS: There was high coagulase-negative staphylococci prevalence in neonatal infection (particularly S. epidermidis). All S. epidermidis and coagulase-positive staphylococci were sensitive to vancomycin. There was increasing coagulase-negative staphylococci and Gram-negative resistance to oxacillin and amikacin, respectively.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Stafilococcus epidermidis]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[source: MeSH, NLM]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULOS/INVESTIGACI&Oacute;N</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="4" face="Verdana"><b>Perfil microbiológico de aislamientos en unidades    neonatales en un hospital de tercer nivel de Bogotá, Colombia</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Microbiological profiling of isolates from    the neonatal unit of a third-level hospital in Bogotá, Colombia</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Yolanda Cifuentes<sup>I</sup>; Ariel Ruiz<sup>II</sup>;    Aura Leal<sup>III</sup>; Liliana Muñoz<sup>IV</sup>; Maria Herrera<sup>V</sup>;    Luz Jiménez<sup>VI</sup></b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><sup>I</sup>Médica.    Especialista en Pediatría y Neonatología. Departamento de Pediatría, Facultad    de Medicina, Universidad Nacional de Colombia. Instituto Materno Infantil. E-mail:    <a href="mailto:yoli52@hotmail.com">yoli52@hotmail.com</a>    <br>   <sup>II</sup>Médico. Especialista en Ginecobstetricia, Especialista en Biología    de la Reproducción. M. Sc. Departamento de Obstetricia y Ginecología, Centro    de Epidemiología Clínica, Facultad de Medicina, Universidad Nacional de Colombia.    E-mail: <a href="mailto:airuizp@unal.edu.co">airuizp@unal.edu.co</a>; <a href="mailto:arielruiz@supercabletv.net.co">arielruiz@supercabletv.net.co</a>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <sup>III</sup>Médica. M. Sc. Departamento    de Microbiología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional de Colombia. E-mail:    <a href="mailto:allealc@unal.edu.co">allealc@unal.edu.co</a>    <br>   <sup>IV</sup>Bacterióloga. M. Sc. Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca.    E-mail: <a href="mailto:lilimunozm@hotmail.com">lilimunozm@hotmail.com</a>    <br>   <sup>V</sup>Bacterióloga. Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca. E-mail:    <a href="mailto:mthm@etb.net.co">mthm@etb.net.co</a>    <br>   <sup>VI</sup>Bacterióloga. Instituto Materno Infantil. E-mail: <a href="mailto:andrejack15@hotmail.com">andrejack15@hotmail.com</a></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>OBJETIVOS:</b> Investigar la prevalencia y    sensibilidad de gérmenes aislados en recién nacidos hospitalizados en un hospital    de referencia de Bogotá. Proponer un esquema antibiótico inicial en infecciones    neonatales.    <br>   <b>M&Eacute;TODOS:</b> Se analizaron los cultivos para aerobios y aerobios facultativos    practicados entre febrero y diciembre del 2002. Los hemocultivos se procesaron    en BacT/ALERT (Dirham, NC); los urocultivos en UROCULT (Bio-Bacter) y las puntas    de catéter en Tioglicolato. La identificación se hizo con BBL CRYSTAL (BD, Sparks,    MD). La sensibilidad se determinó por difusión de disco.    <br>   <b>RESULTADOS:</b> Fueron positivos 1 097 de 3 710 cultivos; se aislaron 64,3    % Gram-positivos, 30,6% Gram-negativos y 4,9% Candidas. Los Gram-positivos aislados    fueron: estafilococos coagulasa negativa (64,2%); Enterococcus (13,8 %) y estafilococos    coagulasa positiva (13,3%). Los Gram-negativos mas frecuentes fueron Klebsielas    (45,2%); <i>Escherichia coli</i> (30,9%) y Serratias (10,1 %). El 64% de los    estafilococos coagulasa negativos fueron <i>Stafilococcus epidermidis</i>. La    sensibilidad del S. epidermidis y los estafilococos coagulasa positivos a la    vancomicina fue del 100%. Hubo 86,4% (IC95%: 82,3–89,9) de resistencia de los    estafilococos coagulasa negativos a los beta-lactámicos. La sensibilidad de    los Gram-negativos fue del 98,1% (IC95%: 89,9-99,9) a imipenem, 78,1% (IC95%:    64,9-88,2) a gentamicina y 46,6% (IC95%: 28,3-65,7) a amikacina.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <b>CONCLUSIONES:</b> Se encontró una alta prevalencia de estafilococos coagulasa    negativos particularmente de <i>S. epidermidis</i>. No se observó resistencia    de <i>S. epidermidis</i> ni estafilococos coagulasa positivos a vancomicina.    Se observa resistencia creciente de los estafilcocos coagulasa negativos a oxacilina    y de los Gram-negativos a amikacina</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras-clave:</b> <i>Stafilococcus epidermidis</i>,    infecciones estafilocócicas, recién nacido, infección hospitalaria, tests de    sensibilidad microbiana (<i>fuente: DeCS, BIREME</i>).</font></p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b> OBJECTIVES:</b> Investigating the prevalence    and sensitivity of germs isolated from newborn in a referral hospital in Bogotá.    Suggesting an empirical antibiotic treatment for neonatal infection.    <br>   <b>METHODS:</b> Cultures taken between February and December 2002 were analysed.    Blood cultures were processed using BacT/ALERT (Durham, NC), urine cultures    by UROCULT (Bio-Bacter) and catheter tips in thioglycollate. BBL CRYSTAL identification    system (BD, Sparks, MD) was used for identifying germs. Antibiotic sensitivity    was determined by disk diffusion.    <br>   <b>RESULTS:</b> There were 1,097 positive aerobic and facultative aerobic germ    cultures; 64,3% were Gram-positive, 30,6% Gram-negative and 4,9% were yeasts.    Gram-positive germs consisted of coagulase-negative staphylococci (64,2%), enterococcus    (13,8%) and coagulase-positive staphylococci (13,3%). The most frequent Gram-negatives    were Klebsiella (45,2%), <i>Eschericha coli</i> (30,9%) and Serratia (10,1%).    <i>Staphylococcus epidermidis</i> accounted for 64% of the coagulase-negative    staphylococci. <i>S. epidermidis</i> susceptibility to vancomycin was 100%.    Coagulase-negative staphylococci susceptibility to rifampin and amikacin was    59% and 67,4% (respectively). Coagulase-negative staphylococci resistance to    beta-lactams was 86,4% (95% CI: 82,3–89,9). Coagulase-positive staphylococci    sensitivity to vancomycin was 100%. Gram-negative susceptibility to imipenem    was 98,1% (95% CI: 89,9-99,9), 78,1% to gentamicin (95% CI: 64,9-88,2) and 46,6%    to amikacin (95% CI: 28,3-65,7).    <br>   <b>CONCLUSIONS:</b> There was high coagulase-negative staphylococci prevalence    in neonatal infection (particularly <i>S. epidermidis</i>). All <i>S. epidermidis</i>    and coagulase-positive staphylococci were sensitive to vancomycin. There was    increasing coagulase-negative staphylococci and Gram-negative resistance to    oxacillin and amikacin, respectively.</font></p>     <p><font size=2 face="verdana"><b> Key words:</b> <i>Staphylococcus epidermidis</i>,    infection, staphylococci, infant, newborn, cross-infection, microbial sensitivity    test (<i>source: MeSH, NLM</i>).</font></p> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">Las infecciones causadas por bacterias y hongos    constituyen una causa muy importante de morbimortalidad a nivel mundial, afectando    anualmente a más de 200.000 individuos en los Estados Unidos. Son mas frecuentes    en neonatos pretérmino y en países en vías de desarrollo. Los estudios de la    National Nosocomial Infection Surveillance y del Surveillance and Control of    Pathogens of Epidemiologic Importance muestran que los estafilococos coagulasa    negativa (ECN) son los patógenos más prevalentes en las infecciones nosocomiales    (1,2). También se ha informado un incremento de las infecciones por cándida    y pseudomona, un aumento en la resistencia de los estafilococos a la oxacilina,    de los estreptococos a la penicilina y de los enterococos a la vancomicina (3-5).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Un estudio sobre 662 episodios de sepsis neonatal    nosocomial, mostró que los Gram-positivos se aislaron en el 58,4% de los casos,    siendo el <i>Staphylococcus epidermidis</i> el más frecuente (42%); los Gram-negativos    mas frecuentes fueron <i>Escherichia coli</i> y Klebsiella y se aislaron hongos,    fundamentalmente Candida sp, en el 12% de los episodios (6).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> El presente estudio es un análisis retrospectivo    de los cultivos para aerobios y aerobios facultativos, obtenidos en pacientes    hospitalizados en unidades neonatales de un hospital maternoperinatal de referencia.    Los objetivos de estudio fueron: 1) identificar los microorganismos más frecuentemente    aislados en neonatos hospitalizados en el Instituto Materno Infantil (IMI) de    Bogotá, Colombia; 2) investigar el perfil de resistencia a los antibióticos    de los gérmenes aislados y 3) proponer un esquema antibiótico inicial para el    manejo de infecciones neonatales.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="3"><b>MATERIALES Y MÉTODOS</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Se analizaron retrospectivamente todos los resultados    consecutivos de los cultivos practicados entre el 1 de febrero y el 31 de diciembre    del 2002, de muestras obtenidas de recién nacidos hospitalizados en el IMI,    institución universitaria de referencia y único hospital exclusivamente perinatal    en Colombia. Todos los resultados positivos fueron elegibles para el estudio.    Durante el periodo hubo 2 331 ingresos a la Unidad de Neonatología; 1 057 neonatos    remitidos y 1 274 niños nacidos en el IMI.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Las muestras para hemocultivo se incubaron en    el sistema automatizado (BacT/ALERT; Biomeriux, Durham, NC) urocultivos en UROCULT    (Bio-Bacter) y las puntas de catéter, las muestras provenientes de secreciones    y líquido cefalorraquídeo (LCR) en medio enriquecido de caldo Tioglicolato para    posteriormente subcultivarlas. Las muestras de LCR se sembraron además en agar    sangre y agar chocolate. Los subcultivos se procesaron en agar tripticasa soya    al 5% en sangre de cordero y en medio de McConkey. Para la identificación de    los microorganismos Gram-positivos y Gram-negativos se utilizó BBL CRYSTAL (Becton    Dickinson, Sparks, MD, USA).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> La sensibilidad bacteriana se estudió por el    método de difusión de disco, para los siguientes antibióticos: penicilina (30    µg), oxacilina (1 µg), vancomicina (30 µg), rifampicina (5 µg), gentamicina    (10 µg), amikacina (30 µg), imipenem (10 µg), netilmicina (30 µg), trimetoprim/sulfa    (23,75/1,25 µg), ampicilina (20 µg), ampicilina/sulbactam (20 µg) y ciprofloxacina    (5 µg).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Se hizo análisis descriptivo de los datos e    intervalos de confianza utilizando paquete estadístico STATA 6.0. El estudio    se ajustó a las normas de investigación con riesgo mínimo en humanos.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="3"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> En total se realizaron 3.710 cultivos para aerobios    y aerobios facultativos distribuidos así: 2 255 hemocultivos; 751 urocultivos;    271 cultivos de punta de catéter; 202 LCR y 231 cultivos de otras muestras (103    coprocultivos; 55 secreciones oculares; 40 secreciones traqueales; 14 líquidos    peritoneales; 9 de tejidos blandos; 6 líquidos pleurales; 2 muestras osteoarticulares;    una de jugo gástrico y una de secreción de ileostomía).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En 1097 cultivos positivos se identificaron 707    Gram-positivos (64,3%); 336 Gram-negativos (30,6%) y 54 cándidas (4,9%). La    <a href="#tab01">Tabla 1</a> señala su distribución por tipo de muestra. Los    Gram-positivos aislados fueron: ECN (64,2%); Enterococcus (13,9%); Estafilococos    Coagulasa Positivos (ECP) (13,3%); Streptococcus (3,7%); Micrococcus (2,5 %);    Lactococcus (1,7%); bacilos Gram-positivos (0,4%) y Corynebacterium (0,3%).    Los Gram-negativos fueron: Klebsielas (45,2%); <i>E. coli</i> (30,9%); Serratias    (10,1%); Enterobacter (5,9%); Pseudomonas (2,1%); Acinetobacter (1,8%); Proteus    (1,5%) y otros (2,4%).</font></p>     <p><a name="tab01"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b>Tabla 1.</b> Aislamientos de    acuerdo con el tipo de muestra.    <br>   Unidad de Neonatología. IMI.</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rsap/v7n2/v7n2a07tab1.gif"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"> Hemocultivos</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">Se identificaron 486 (86,8%) Gram-positivos;    59 (10,5%) Gram-negativos y 15 (2,7%) cándidas. No se diferenció si la infección    correspondía a infección neonatal temprana o tardía. Los Gram-positivos aislados    fueron: ECN (72%); ECP (13,4%); Enterococcus (6,6%); Micrococcus (3,1%); Streptococcus    (2,5 %); Lactococcus (1,6%); bacilos Gram-positivos (0,6%) y Corynebacterium    (0,2%). Los ECN correspondieron en un 65,1% a <i>S. epidermidis</i>. En la <a href="#tab02">Tabla    2</a> se presenta la sensibilidad de ECN, <i>S. epidermidis</i> y ECP. Los Gram-negativos    fueron: Klebsiellas (45,8%), <i>E. coli</i> (23,7%), Serratia (11,9%) y otros    (18,6%). La <a href="#tab03">Tabla 3</a> muestra la sensibilidad de los Gram    negativos, Klebsiella y <i>E. coli</i>.</font></p>     <p><a name="tab02"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b>Tabla 2.</b> Sensibilidad en    porcentaje (IC95%)ª de los SCN, del <i>S. epidermidis</i>    <br>   y de los SCP aislados de hemocultivos Unidad de Neonatología. IMI.</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rsap/v7n2/v7n2a07tab2.gif">    <br>   <font size="2" face="Verdana">ª Entre paréntesis: Intervalo de confianza    del 95%;    <br>   <sup>b</sup> Intervalo de confianza del 97,5%, unilateral</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><a name="tab03"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b>Tabla 3.</b> Sensibilidad en    porcentaje (IC95%)ª de los gram negativos,    <br>   <i>Klebsiella y E. coli</i> aisladas de hemocultivos. Unidad de Neonatología.    IMI.</font></p>     <p align="center"> <img src="/img/revistas/rsap/v7n2/v7n2a07tab3.gif"><font size="2" face="Verdana">    <br>   ª Entre paréntesis: Intervalo de confianza del 95%;    <br>   <sup>b</sup> Intervalo de confianza del 97,5%, unilateral</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2">Urocultivos</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se aislaron 159 Gram-negativos (74,3%); 20 Gram-positivos    (9,3%) y 35 cándidas (16,3%). Los Gram-negativos aislados fueron: Klebsiella    (46,5 %), <i>E. coli</i> (37,7%), Serratia (8,2%), Enterobacter (4,4%), Proteus    (1,2 %) y otros (1,9%). La sensibilidad de klebsiella a imipenem, gentamicina    y amikacina fue del 98,5% (IC95%: 91,9-99,9), 69,5% (IC95%: 57,3-80,1) y 19,1%    (IC95%: 9,1-33,3) respectivamente. La sensibilidad de E. coli a imipenem, gentamicina    y amikacina fue del 100% (IC95%: 93,3-100), 77,1 % (IC95%: 64,2-87,3) y 73,5%    (IC95%: 55,6-87,1), respectivamente.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Cultivos de punta de catéter</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">Se aislaron 111 Gram-positivos (87,4%) y 16 Gram-negativos    (12,6%). Los Gram-positivos fueron: ECN (64%), de los que el 64,7% fue <i>S.    epidermidis</i>; ECP (16,2%) de los que el 83,3% fue <i>S. aureus; Enterococcus</i>    (15,3 %) y otros (4,5%). Los Gram-negativos aislados fueron: Klebsiella (37,5    %); Serratia (31,2%); <i>E. coli</i> (12,5%); Enterobacter (12,5%) y Pseudomonas    (6,2%).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="3"><b>DISCUSIÓN</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se presentan los resultados de 3 710 cultivos    para aerobios y aerobios facultativos, de muestras obtenidas de neonatos hospitalizados.    En total 1 097 cultivos fueron positivos (29,5%). En hemocultivos y cultivos    de punta de cateter predominaron los aislamientos de Gram-positivos (86,7% y    87,4%, respectivamente), mientras que en los urocultivos se aislaron mas frecuentemente    Gram-negativos (74,3%). Estos hallazgos concuerdan con la literatura (6,7).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> En el 86,8% de los hemocultivos positivos se    aislaron Gram-positivos, el 72% fueron ECN y de éstos, el 65% eran <i>S. epidermidis</i>,    indicando que este germen constituye un problema importante en las unidades    de neonatología del IMI. Pessoa-Silva y colaboradores encontraron que la mortalidad    específica atribuible a <i>S. epidermidis</i> era del 24% en neonatos con sepsis    tardía (10). Otros autores también han encontrado un predominio de los ECN en    neonatos con sepsis tardía (8,9). Sin embargo, en otros estudios la mayoría    de los aislamientos de hemocultivos en neonatos con septicemia correspondió    a bacilos Gram-negativos (11,13,14).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"> En este estudio el 99,4% (IC95%: 97,9-99,9)    de los ECN y el 100% (IC97,5%: 98,4-100) de los <i>S. epidermidis</i> de hemocultivos    fueron sensibles a vancomicina. La sensibilidad de los ECN a rifampicina y amikacina    fue solo del 59,1% (IC95%: 52,9-65,2) y 67,4% (IC95%: 61,9-72,5), respectivamente    y la del <i>S. epidermidis</i> fue de 53,2% (IC95%: 45,4-60,9) y 64,9% (IC95%:    58,2-71,3). La resistencia de los ECN a los <font face="Symbol">b</font> lactámicos    fue del 86,4% (IC95%: 82,3–89,9). Estos patrones de sensibilidad son similares    a los informados por Diekema y colaboradores (5) en aislamientos de infecciones    nosocomiales y en la comunidad.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Los <i>S. epidermidis</i>, los ECP y el 99,4%    (IC95%: 97,9-99,9) de los ECN fueron sensibles a la vancomicina. Hubo dos aislamientos    de ECN resistentes a la vancomicina. El primero, <i>S. Saprophyticus</i>, en    un paciente en quien 5 días antes se había aislado un <i>S. Epidermidis</i>    sensible a vancomicina y el segundo en un hemocultivo positivo para <i>Serratia    marcenses</i> y <i>S. Xylosus</i> por lo puede tratarse de una contaminación    o de interferencia en el antibiograma por Serratia.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">La sensibilidad de los Gram-negativos asilados    en hemocultivos fue del 98,1% (IC95%: 89,9-99,9) al imipenem, del 78,2% (IC95%:    64,9-88,2) a la gentamicina y del 46% (IC95%: 28,3-65,7) a la amikacina. La    sensibilidad de la Klebsiella a la gentamicina fue del 88% (IC95%: 68,8-97,5)    y la de <i>E. coli</i> del 85,7 % (IC95%: 57,2-98,2) para ese antibiótico. Aunque    fue alta la sensibilidad a ciprofloxacina tanto de klebsiella (94,9%; IC95%:    82,7-99,4) como de <i>E. coli</i> (100%; IC97,5%: 66,4-100), el uso de este    antibiótico está restringido en neonatología a casos de infecciones graves por    gérmenes sensibles únicamente a ciprofloxacina.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El 74,3% de los gérmenes aislados de urocultivos    fueron Gram-negativos, pero llama la atención la frecuencia alta de aislamientos    de cándida (16,3 %). El 98,5% (IC95%: 94,8-99,8) de los Gram-negativos aislados    de urocultivos fueron sensibles a imipenem; una cepa de Klebsiella y una de    Proteus fueron resistentes a este antibiótico. Solo el 41,7% (IC95%: 31,5-52,6)    de los Gram-negativos fueron sensibles a la amikacina. La sensibilidad al imipenem    fue del 98,5% (IC95%: 94,8-99,8) para Klebsiella y 100% (IC97,5%: 93,3-100)    para <i>E. coli</i>.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Con estos hallazgos, en casos de sepsis neonatal    sugerimos implementar un esquema inicial asociando vancomicina, para cubrir    <i>S. epidermidis</i> y SCP, con gentamicina, para cubrir los Gram-negativos.    Huang y colaboradores también han sugerido incluir la vancomicina en los esquemas    empíricos para bacteremia por ECN (15), sin embargo, Rubin y colaboradores sugirieron    desarrollar guías de práctica que disminuyan el uso empírico de éste antibiótico    para evitar resistencia (16).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">Los gérmenes mas frecuentemente aislados de puntas    de catéter fueron los Gram-positivos (87,4%), de éstos el 63,9% correspondieron    a ECN, siendo el <i>S. epidermidis</i> el más frecuente. La susceptibilidad    de los ECN cultivados a partir de muestras de punta de catéter fue similar a    la de los hemocultivos: 100% (IC97,5%: 94,9-100) a la vancomicina y 15,6% (IC    95%: 7,8-26,9) a la oxacilina. Desde 1972 se ha informado acerca de la infección    por ECN en pacientes con catéteres atribuida a la capacidad de colonización    y formación del "biofilm" con persistencia de la infección (17). La disminución    de la susceptibilidad a los antibióticos en el biofilm se debería a una combinación    de factores como pobre penetración del antibiótico, disminución de nutrientes    y crecimiento lento, respuestas adaptativas al estrés, formación de multicapas    de defensa, difusión de nutrientes y compromiso de las defensas del hospedero    por la presencia de biomateriales (18-20).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">No se aisló ninguna cepa de estreptococo beta-hemolítico    del grupo B y, al contrario de lo que ocurre en Australia, el Reino Unido y    Estados Unidos (9,21), la infección neonatal temprana por este germen no constituye    un problema en las unidades neonatales del IMI. No está claro si existen diferencias    específicas de prevalencia o si contribuye el uso anteparto de antibióticos    (22) que constituye una rutina en nuestras pacientes con ruptura prematura de    membranas pretérmino.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Una limitación de nuestro estudio es la ausencia    de cultivos para anaerobios, ya que no se practican rutinariamente en el IMI.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">En conclusión, la mayoría de los aislamientos    en las unidades neonatales del IMI fueron Gram-positivos. Se encontró una prevalencia    alta de ECN en general y, particularmente, de <i>S. epidermidis</i>. No tuvimos    ningún aislamiento de estreptococo del grupo B. Los perfiles de sensibilidad    indican que es urgente modificar el esquema antibiótico que se inicia antes    de los resultados de los cultivos y que dicho esquema debe incluir a la vancomicina.    En los pacientes que reciben vancomicina y tienen infección persistente por    <i>S. epidermidis</i>, se deben considerar factores como la presencia de catéteres,    pues <i>in vitro</i> no se ha demostrado la resistencia a la vancomicina. Debe    prestarse atención a la creciente resistencia a oxacilina de los ECN y a la    amikacina de los Gram-negativos &#149;</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Agradecimientos.</b> A Sandra L. Díaz, Angélica    Amador, Johanna Huertas y Andrea Morales, estudiantes de la Universidad Colegio    Mayor de Cundinamarca</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">1. Edmond MB, Wallace SE, McClish DK, Pfaller    MA, Jones RN, Wenzel RP. Nosocomial bloodstream infections in United States    hospitals: a three-year analysis. Clin Infect Dis 1999; 29: 239-244.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0124-0064200500020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">2. Schaberg DR, Culver DH, Gaynes RP. Major trends    in the microetiology of nosocomial infection. Am J Med 1991; 91: 72S-75S.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0124-0064200500020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">3. Pfaller MA, Jones RN, Doren GV, Kugler R.    and The SENTRY Participants Group. Bacterial pathogens isolated from patients    with bloodstream infection: Frequencies of occurrence and antimicrobial susceptibility    patterns from The Sentry Antimicrobial Surveillance Program (United States and    Canada, 1997). Antimicrob Agents Chemother 1998; 42(7): 1762-1770.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0124-0064200500020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">4. Raimundo O, Heussler H, Bruhn JB, Suntrarachun    S, Kelly N, Deighton MA, <i>et al</i>. Molecular epidemiology of coagulase-negative    staphylococcal bacteraemia in a newborn intensive care unit. J Hosp Infect.    2002; 51(1):33-42.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0124-0064200500020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">5. Diekema DJ, Pfaller MA, Schmitz FJ, Smayevsky    J, Bell J, Jones RN, <i>et al</i>.: Survey of infections due to Staphylococcus    species: Frecuency of occurrence and antimicrobial susceptibility of isolates    collected in the United States, Canada, Latin America, Europe and the Western    Pacific Region for the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program, 1997-1999.Clinical    Infectious Diseases 2001; 32 (supl 2):S114-32.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0124-0064200500020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">6. Lopez JB, Coto D, Fernandez B. Neonatal sepsis    of nosocomial origin: an epidemiological study from the "Grupo de Hospitales    Castrillo. J Perinat Med. 2002;30(2):149-57.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0124-0064200500020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">7. Cunha Ma. de L, Lópes CAM, Rugolo LMSS, Chalita    LVS. Clinical significance of coagulase-negative staphylococci isolated from    neonates. J Pediatr (Rio J) 2002; 78(4): 279-288.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0124-0064200500020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">8. Stoll BJ, Hansen N, Fanaroff AA, Wright LL,    Carlo WA, Ehrenkranz RA, <i>et al</i>. Late-onset sepsis in very low birth weight    neonates: the experience of the NICHD Neonatal Research Network. Pediatrics.    2002; 110(2 Pt 1):285-91.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0124-0064200500020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">9. Mehr SS, Sadowsky JL, Doyle LW, Carr J. Sepsis    in neonatal intensive care in the late 1990s. J Paediatr Child Health. 2002;    38(3):246-51.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0124-0064200500020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">10. Pessoa-Silva CL, Miyasaki CH, de Almeida    MF, Kopelman BI, Raggio RL, Wey SB. Neonatal late-onset bloodstream infection:    attributable mortality, excess of length of stay and risk factors. Eur J Epidemiol.    2001; 17(8):715-20.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0124-0064200500020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">11. Ahmed AS, Chowdhury MA, Hoque M, Darmstadt    GL. Clinical and bacteriological profile of neonatal septicemia in a tertiary    level pediatric hospital in Bangladesh. Indian Pediatr. 2002; 39(11):1034-9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0124-0064200500020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">12. Galanakis E, Krallis N, Levidiotou S, Hotoura    E, Andronikou S. Neonatal bacteraemia: a population-based study. Scand J Infect    Dis. 2002; 34(8):598-601.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0124-0064200500020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">13. Nambiar S, Singh N. Change in epidemiology    of health care-associated infections in a neonatal intensive care unit. Pediatr    Infect Dis J. 2002; 21(9):839-42.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0124-0064200500020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">14. Stoll BJ, Hansen N, Fanaroff AA, Wright LL,    Carlo WA, Ehrenkranz RA, <i>et al</i>. Changes in pathogens causing early-onset    sepsis in very-low-birth-weight infants. N Engl J Med. 2002l 25; 347(4):240-7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0124-0064200500020000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">15. Huang SY, Tang RB, Chen SJ, Chung RL. Coagulase-negative    staphylococcal bacteremia in critically ill children: risk factors and antimicrobial    susceptibility. 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Lyte M, Freestone PPE, Neal C, Olson B, Haigh    R, Bayston R, <i>et al</i>. Stimulation of staphylococcus epidermidis growth    and biofilm formation by catecholamine inotropes. Lancet 2003; 361:130-135.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0124-0064200500020000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">20. Boelens JJ, Dankert J, Murk JL, Weening JJ,    van der Poll T, Dingemans KP, <i>et al</i>. Biomaterial-assocated persistence    of <i>Staphylococcus epidermidis</i> in pericatheter macrophages. 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