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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Resistencia Antimicrobiana en Unidades de Cuidado Intensivo de Bogotá, Colombia, 2001-2003]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objectives Determining the frequency of antimicrobial resistance amongst bacterial isolates obtained from patients in Intensive Care Units (ICU). Methods Study data relating to 2001 to 2003 regarding microbiological isolates was obtained from a laboratory network for the ICUs of 14 third-level hospitals in Bogotá belonging to the Bogotá Bacterial Resistance Control Group (BBRCG). 27,301 isolates were obtained and their susceptibility profiles were analysed using WHONET 5.3. Results Staphylococcus aureus, Escherichia coli, coagulase negative Staphylococci (CNS), Pseudomonas aeruginosa y Klebsiella pneumoniae were the most commonly found microorganisms. Oxacillin-resistance rate ranged from 61% at 63 % during 2001 to 2003 amongst S. aureus isolates and 78 % to 83 % amongst coagulase negative Staphylococci (CNS). E. coli resistance to third generation cephalosporines was found to be about 10 % and over 20 % to ciprofloxacin. K. pneumoniae isolates’ resistance to third-generation cephalosporines was found to be more than 30 % in 2001. P. aeruginosa resistance to all but a few antibiotics was found to be over 30 % and multirresistance frequency was found to be 16 % to 24 %. Conclusion The antimicrobial resistance rates found in the ICU of hospitals in Bogotá were higher than those reported in surveillance studies in the USA, Europe or other Latin-American cities.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <FONT face=verdana size=2>      <P align=right><B>ART&Iacute;CULOS/INVESTIGACI&Oacute;N</B></P>      <P>&nbsp;</P>      <p>    <CENTER><FONT size=4><B>Resistencia Antimicrobiana en Unidades de Cuidado Intensivo de Bogot&aacute;, Colombia, 2001–2003 </B></FONT></P></CENTER>      <P>&nbsp;</P>      <P>    <CENTER><FONT size=3><B>Anti-microbial resistance in Intensive Care Units in Bogot&aacute;, Colombia, 2001–2003</B></FONT></P></CENTER>      <P>&nbsp;</P>     <P>&nbsp;</P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><b>Carlos Alvarez <SUP>1</SUP>, Jorge Cortes <SUP>2</SUP>, &aacute;lvaro Arango <sup>3</sup>, Constanza Correa <sup>4</sup>, Aura Leal <sup>5</sup> y Grebo <sup>6</sup> </b></P>  <sup>1</sup>  M&eacute;dico. Especialista en Infectolog&iacute;a. Unidad de Infectolog&iacute;a, Hospital Universitario San Ignacio. Facultad de Medicina, Universidad Nacional de Colombia. E-mail: <a href="mailto:caalvarezmo@unal.edu.co"> caalvarezmo@unal.edu.co </a>    <br>  <sup>2</sup> M&eacute;dico. Especialista en Infectolog&iacute;a. Hospital Universitario San Ignacio. Instituto Nacional de Cancerolog&iacute;a. E-mail:<a href="mailto:jorgecortes@yahoo.com"> jorgecortes@yahoo.com </a>    <br>  <sup>3</sup> M&eacute;dico. Especialista en Infectolog&iacute;a. Fundaci&oacute;n Cardioinfantil. E-mail: <a href="mailto:aarangod@sky.net.co"> aarangod@sky.net.co </a>      <br>  <sup>4</sup> Bacteri&oacute;loga. Hospital Sim&oacute;n Bol&iacute;var. E-mail:<a href="mailto:rmendez@hotmail.com"> rmendez@hotmail.com </a>    <br>   <sup>5</sup> M&eacute;dico. M. Sc. Control de Enfermedades Infecciosas. Especialista en Microbiolog&iacute;a y Parasitolog&iacute;a M&eacute;dicas. Departamento de Microbiolog&iacute;a, Facultad de Medicina. Universidad Nacional de Colombia.E-mail: <a href= "mailto:allealc@unal.edu.co"> allealc@unal.edu.co </a>    <br>  <sup>6</sup>   Grupo para el Control de la Resistencia Bacteriana de Bogot&aacute;      <P>&nbsp;</P>     <P>&nbsp;</P>  <HR SIZE=1>      <P><B>RESUMEN</B></P>  <b>Objetivos</b> Determinar la resistencia antimicrobiana entre los aislamientos bacterianos identificados en pacientes hospitalizados en Unidades de Cuidado Intensivo.    <br>  <b>M&eacute;todos</b> Se recolect&oacute; la informaci&oacute;n de los aislamientos de microbiolog&iacute;a provenientes de las Unidades de Cuidado Intensivo (UCI) de 14 instituciones de tercer nivel, pertenecientes al Grupo para el Control de la Resistencia Bacteriana de Bogot&aacute; (GREBO), entre los a&ntilde;os 2001 y 2003. Se obtuvieron 27301 aislamientos y su perfil de susceptibilidad fue analizado por el programa Whonet 5.3.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  <b>Resultados</b> Los microorganismos aislados con mayor frecuencia fueron Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Staphylococci coagulasa negativo (SCN), Pseudomonas aeruginosa y Klebsiella pneumoniae. Las tasas de resistencia de S. aureus y de SCN a oxacilina del 2001 al 2003 oscilaron  entre 61 y 63 % y entre 78 y 83 %, respectivamente. La resistencia a cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n en E. coli fue cercana a 10 % y a ciprofloxacina fue superior a 20 %. La resistencia a cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n de K. pneumoniae fue superior a 30 % durante el 2001. La resistencia de P. aeruginosa a varios grupos de antibi&oacute;ticos super&oacute; 30 % y la frecuencia de cepas multirresistentes oscil&oacute; entre 16 y 24 %.    <br>  <b>Conclusi&oacute;n</b> Las tasas de resistencia encontradas son superiores a las mostradas por estudios de vigilancia en E.E.U.U., Europa y otras ciudades de Am&eacute;rica Latina.      <p><b>Palabras Clave:</b> Colombia, epidemiolog&iacute;a, resistencia microbiana a las drogas, unidad de cuidado intensivo, vigilancia de la poblaci&oacute;n (fuente: DeCS, BIREME).</p>  <HR SIZE=1>      <P><B>ABSTRACT</B></P>  <b>Objectives</b> Determining the frequency of antimicrobial resistance amongst bacterial isolates obtained from patients in Intensive Care Units (ICU).    <br>  <b>Methods</b> Study data relating to 2001 to 2003 regarding microbiological isolates was obtained from a laboratory network for the ICUs of 14 third-level hospitals in Bogot&aacute; belonging to the Bogot&aacute; Bacterial Resistance Control Group (BBRCG). 27,301 isolates were obtained and their susceptibility profiles were analysed using WHONET 5.3.    <br>  <b>Results</b> Staphylococcus aureus, Escherichia coli, coagulase negative Staphylococci (CNS), Pseudomonas aeruginosa y Klebsiella pneumoniae were the most commonly found microorganisms. Oxacillin-resistance rate ranged from 61% at 63 % during 2001 to 2003 amongst S. aureus isolates and 78 % to 83 % amongst coagulase negative Staphylococci (CNS). E. coli resistance to third generation cephalosporines was found to be about 10 % and over 20 % to ciprofloxacin. K. pneumoniae isolates’ resistance to third-generation cephalosporines was found to be more than 30 % in 2001. P. aeruginosa resistance to all but a few antibiotics was found to be over 30 % and multirresistance frequency was found to be 16 % to 24 %.    <br>  <b>Conclusion</b> The antimicrobial resistance rates found in the ICU of hospitals in Bogot&aacute; were higher than those reported in surveillance studies in the USA, Europe or other Latin-American cities.        <p><b>Key Words:</b> Colombia, epidemiology, Drug Resistance, Microbial, Intensive Care Units, population surveillance (source: MeSH, NLM).</p>  <HR SIZE=1>      <P>&nbsp;</P>     <P>&nbsp;</P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La resistencia antimicrobiana (RA) ha sido considerada un fen&oacute;meno emergente en todo el mundo, especialmente en los hospitales. Los datos publicados en estudios multic&eacute;ntricos de Estados Unidos, Europa y Am&eacute;rica Latina muestran un nivel de resistencia creciente en bacterias aisladas en los hospitales (1). En Latinoam&eacute;rica y, especialmente en Colombia,  se dispone de un n&uacute;mero limitado de datos acerca de la magnitud de este problema, debido al escaso n&uacute;mero de hospitales que colaboraron en estudios multinacionales o a su publicaci&oacute;n en boletines de distribuci&oacute;n local (2,3). </p>      <p>En los hospitales, las Unidades de Cuidado Intensivo (UCI), debido a sus caracter&iacute;sticas  permiten la concentraci&oacute;n de los factores que conllevan a la RA (4): uso frecuente de antibi&oacute;ticos de amplio espectro (5), uso de procedimientos y dispositivos invasivos, , pacientes con alta frecuencia de comorbilidad y estancias prolongadas (6,7), entre otras. Por tanto, es frecuente observar mayores tasas de RA en los aislamientos de microorganismos provenientes de estas unidades. </p>      <p>El prop&oacute;sito de este art&iacute;culo es describir los resultados del programa de vigilancia GREBO, a partir de los aislamientos realizados en las UCI de 14 hospitales de tercer nivel de Bogot&aacute;, Colombia, entre el a&ntilde;o 2001 y el 2003.</p>      <P><FONT size=3><B>M&Eacute;TODOS</P></B></FONT>      <p>Hospitales participantes</p>      <p>Se recolect&oacute; la informaci&oacute;n procedente de pacientes atendidos en las UCI de 14 hospitales. Las instituciones participantes fueron: Cl&iacute;nica del Ni&ntilde;o (6 camas de UCI pedi&aacute;trica),  Fundaci&oacute;n San Carlos (42 camas de UCI adultos m&eacute;dico quir&uacute;rgica, Cardiovascular y pedi&aacute;trica), Hospital El Tunal (20 camas de UCI m&eacute;dico-quir&uacute;rgica), Hospital del Occidente Kennedy (43 camas de UCI m&eacute;dico-quir&uacute;rgica, pedi&aacute;trica), Cl&iacute;nica de Occidente (40 camas de UCI adultos, m&eacute;dico quir&uacute;rgica y cardiovascular), Hospital Militar Central (28 camas de UCI m&eacute;dica, quir&uacute;rgica y cardiovascular), Hospital Sim&oacute;n Bol&iacute;var (54 camas de UCI m&eacute;dico quir&uacute;rgica, pedi&aacute;trica, neonatal y quemados), Hospital Universitario San Ignacio (52 camas de UCI adultos, m&eacute;dico quir&uacute;rgica, cardiovascular, pedi&aacute;trica y neonatal), Hospital San Jos&eacute; (22 camas de UCI adultos, m&eacute;dico quir&uacute;rgica, cardiovascular y pedi&aacute;trica), Hospital Universitario Cl&iacute;nica San Rafael (41 camas de UCI adultos, m&eacute;dico quir&uacute;rgica, cardiovascular, pedi&aacute;trica y neonatal), Instituto Nacional de Cancerol&oacute;gica (6 camas de UCI adultos  y m&eacute;dico quir&uacute;rgica), Cl&iacute;nica San Pedro Claver (28 camas de UCI m&eacute;dico quir&uacute;rgica y cardiovascular), Hospital Santa Clara (24 camas de UCI m&eacute;dico quir&uacute;rgica), Fundaci&oacute;n Cardio Infantil (54 camas de UCI adultos, m&eacute;dico quir&uacute;rgica, cardiovascular y pedi&aacute;trica).</p>      <p>Recolecci&oacute;n de datos</p>      <p>Cada 3 a 6 meses los laboratorios de microbiolog&iacute;a enviaron los informes de susceptibilidad antimicrobiana, los cuales fueron incorporados a una base de datos creada en Whonet (Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud – OMS, versi&oacute;n 5.3) utilizando el programa BackLink 2 (OMS) para transferir la informaci&oacute;n de los sistemas automatizados VITEK&reg; (Biomerieux, Paris, Fr)  y MicroScan&reg; (Dade Behring, Sacramento, EEUU). En los laboratorios con sistemas manuales (Kirby Bauer), la informaci&oacute;n recolectada fue incluida directamente al programa Whonet. En este caso se incluyeron s&oacute;lo la informaci&oacute;n referente a los  aislamientos provenientes de UCI y se eliminaron los aislamientos repetidos, es decir aquellos g&eacute;rmenes aislados del mismo sitio de un paciente en la misma fecha. </p>      <p>Susceptibilidad antimicrobiana y control de calidad</p>      <p>La informaci&oacute;n de los resultados de susceptibilidad antimicrobiana fue clasificada como sensible, intermedia o resistente de acuerdo a los puntos de corte utilizados para cada antibi&oacute;tico determinado a partir de las recomendaciones de la NCCLS (2003). Para el an&aacute;lisis se consider&oacute; Pseudomonas multirresistente, a aquellos aislamientos de Pseudomonas spp. resistentes a cuatro o m&aacute;s antibi&oacute;ticos (piperacilina o piperacilina/tazobactam, ceftazidima, imipenem o meropenem, ciprofloxacina y amikacina) (8), posible fenotipo Amp C, a los aislamientos de enterobacterias corresistentes a cefamicinas (cefotetan) y oximinocefalosporinas (ceftriaxona &oacute; Ceftazidima); posible fenotipo de betalactamasa de espectro extendido (BLEE) a los aislamientos de Escherichia coli, Klebsiella spp. y Enterobacter spp. con sensibilidad a una cefamicina (cefotetan) y resistencia a una cefalosporina de tercera generaci&oacute;n o aztreonam. Los laboratorios incluidos en el programa Whonet, fueron sometidos a un programa de calidad externo, llevado a cabo por el laboratorio de Microbiolog&iacute;a del Instituto Nacional de Salud como previamente se describi&oacute; (9). </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</p>      <p>Los resultados de susceptibilidad antimicrobiana fueron comparados por distribuciones de frecuencia. Usando el programa EPIINFO 6.04 se compararon los porcentajes, medias, medianas y percentiles, usando las pruebas de chi cuadrado o prueba exacta de Fisher, cuando fue necesario, considerando valores significativos con p< 0.05.  Para realizar el an&aacute;lisis de corresistencia entre varios antibi&oacute;ticos se utiliz&oacute; la funci&oacute;n “scatterplot” del programa Whonet (OMS versi&oacute;n 5.3). </p>      <P><FONT size=3><B>RESULTADOS</P></B></FONT>      <p>Frecuencia de los aislamientos microbianos y sitio de origen</p>      <p>Se identificaron 18407 microorganismos durante los 3 a&ntilde;os en las UCI de los 14 hospitales participantes, predominando los g&eacute;rmenes Gram negativos (49,2 %) mientras que los hongos ocuparon un porcentaje bajo (7,1 %). En la  (<A href="#tab1">Tabla 1</A>) se describen los microorganismos aislados con mayor frecuencia de acuerdo al sitio de aislamiento. En general Staphylococcus aureus y  Escherichia coli fueron los g&eacute;rmenes aislados con mayor frecuencia. Otros microorganismos de importancia epidemiol&oacute;gica en UCI, como Serratia marcescens, Enterococcus faecium, Stenotrophomonas maltophilia, Streptococcus pneumoniae fueron aislados con muy baja frecuencia: 348, 1,9 %; 185, 1 %; 163, 0,9 %; 189, 1 %, respectivamente. A su vez, los sitios en los que se encontraron mayor n&uacute;mero de aislamientos, fueron sangre, secreciones de heridas, orina y cat&eacute;teres (23 %, 17,8 %, 11,2 %, 10,8 %), mientras que aislamientos de l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo s&oacute;lo ocuparon un 0,6 % del total. </p>      <P>    <CENTER><A name="tab1"></A><IMG src="/img/revistas/rsap/v8s1/v8s1a08tab1.gif"></CENTER></p>      <p>La (<A href="#tab2">Tabla 2</A>) muestra la alta resistencia tanto del S. aureus como de los SCN, resaltando la ausencia cepas con sensibilidad disminuida o resistencia a vancomicina. En S. aureus se encontr&oacute; un aumento en la resistencia a oxacilina entre el a&ntilde;o 2001 y 2002 con una disminuci&oacute;n para el 2003 (estas diferencias no fueron estad&iacute;sticamente significativa con un valor de p&gt;0.05). La frecuencia de corresistencia en aislamientos de S. aureus resistente a la oxacilina fue de 59,8 % para clindamicina, 57,4 % para eritromicina, 59,5 % para quinolonas, 8,0 % para tetraciclina, 3,9 % para rifampicina y 4,5 % para trimetoprim/sulfametoxazol.En SCN se observ&oacute; un aumento de la sensibilidad frente a oxacilina al comparar el 2001 con el 2002 y 2003 (p&lt;0.05).  Para los otros antibi&oacute;ticos tambi&eacute;n se observ&oacute; un amento progresivo en la susceptibilidad en el periodo estudiado.</p>      <P>    <CENTER><A name="tab2"></A><IMG src="/img/revistas/rsap/v8s1/v8s1a08tab2.gif"></CENTER></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La sensibilidad de E. faecalis frente a ampicilina y vancomicina se ha mantenido cercana a 95 % durante los a&ntilde;os 2001 y 2002 (<A href="#tab3">Tabla 3</A>), con un aumento estad&iacute;sticamente significativo de la sensibilidad en el a&ntilde;o 2003 (p&lt;0.5). Por el contrario, la resistencia de E. faecium frente a ampicilina y vancomicina, aument&oacute; en el 2002 y disminuy&oacute; nuevamente en el 2003. Los aislamientos resistentes a vancomicina (EVR), aislados entre 2001 y 2002, se encontraron en solo 5 hospitales participantes. </p>      <P>    <CENTER><A name="tab3"></A><IMG src="/img/revistas/rsap/v8s1/v8s1a08tab3.gif"></CENTER></p>      <p>Resistencia de bacilos ent&eacute;ricos </p>      <p>En la  (<A href="#tab4">Tabla 4</A>) se observa la susceptibilidad antimicrobiana en los aislamientos de E. coli, K. pneumoniae y Enterobacter cloacae. Al hacer un an&aacute;lisis de la corresistencia se encontr&oacute; que en 257 aislamientos de E. coli probados contra ceftriaxona y cefotetan, solo 0,8 % mostraron corresistencia a las dos mol&eacute;culas, mientras que 8 % mostraron un posible fenotipo BLEE. Al evaluar 200 aislamientos de K. pneumoniae, se encontr&oacute; corresistencia en 3,5 % entre los dos antibi&oacute;ticos mientras que 19,5 % mostraron un posible fenotipo BLEE. En E. cloacae los valores fueron de 39,5 % para un posible fenotipo AmpC) y 4,8 %  para un posible fenotipo BLEE. La susceptibilidad a los carbapen&eacute;micos se mantuvo por encima de 95 % para todos los aislamientos durante los tres a&ntilde;os mientras que a las quinolonas ha aumentado en relaci&oacute;n al 2001, especialmente entre los aislamientos de K. pneumoniae (p&lt;0.01). La resistencia a la gentamicina fue inferior 20 % entre los aislamientos de E. coli durante los 3 a&ntilde;os, disminuy&oacute; en K. pneumoniae y se mantuvo en E. cloacae (p&gt;0.05 para las diferencias entre los 3 a&ntilde;os). La sensibilidad frente a amikacina fue mayor para los 3 a&ntilde;os en E. coli y menor en K. pneumoniae y E. cloacae.</p>      <P>    <CENTER><A name="tab4"></A><IMG src="/img/revistas/rsap/v8s1/v8s1a08tab4.gif"></CENTER></p>      <p>La resistencia de P. aeruginosa a los betalact&aacute;micos, quinolonas y aminogluc&oacute;sidos se mantuvo elevada durante los 3 a&ntilde;os mientras que para cefepime y ciprofloxacina disminuy&oacute; su sensibilidad en el a&ntilde;o 2002 pero aument&oacute; en el 2003. En los carbapen&eacute;micos se observ&oacute; un aumento progresivo de la sensibilidad del imipenem durante los 3 a&ntilde;os, encontr&aacute;ndose una diferencia significativa (p&lt;0.05) entre los a&ntilde;os 2001 y 2003, mientras que en meropenem disminuy&oacute; para los 2 a&ntilde;os de los que se dispone de aislamientos probados (p&lt;0.05). El porcentaje de aislamientos multiresistentes fue de 23 % en el 2001, 24 % en el 2002 y de 16 % en el 2003 (p&lt;0.05 para la diferencia entre el 2002 y el 2003). En aislamientos de A. baumanni la resistencia al imipenem se increment&oacute; de forma importante entre estos a&ntilde;os (p&lt;0.001), mientras que para ampicilina/sulbactam, a pesar de ser elevada se mantuvo estable. La frecuencia de aislamientos coresistentes a una cefalosporina de tercera generaci&oacute;n y al imipenem creci&oacute; de forma significativa durante los 3 a&ntilde;os observados (1,4 %, 12 % y 15,7 % para 2001, 2002 y 2003 respectivamente, p&lt;0.05 para la diferencia entre los 3 a&ntilde;os, excepto entre 2002 y 2003).</p>      <P>    <CENTER><A name="tab5"></A><IMG src="/img/revistas/rsap/v8s1/v8s1a08tab5.gif"></CENTER></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><FONT size=3><B>DISCUSI&Oacute;N</P></B></FONT>      <p>La vigilancia de la resistencia antimicrobiana se ha convertido en uno de los pasos fundamentales para combatir este fen&oacute;meno emergente, que ya se considera un problema de salud p&uacute;blica a nivel mundial (10). En la UCI est&aacute; informaci&oacute;n es m&aacute;s valiosa por cuanto los patrones de resistencia difieren de los encontrados en los mismos hospitales y en la comunidad (11,12). La frecuencia de g&eacute;rmenes encontrada por nosotros es muy similar a la descrita  por Fluit, en UCI de Europa,  y a la de  Streit., en EEUU (13), con la excepci&oacute;n de la menor prevalencia de P. aeruginosa (6,75 % vs 12,5 % y 12,2 %, respectivamente) con un aumento concomitante en los SCN (13,2 % vs 10,5 % y 7,0 %). Estas diferencias probablemente son explicadas porque incluimos g&eacute;rmenes no solo causantes de infecci&oacute;n sino tambi&eacute;n de colonizaciones mientras que Fluit  y Streit, solo analizaron aquellos asociados a infecci&oacute;n. Sin embargo, dado que las principales infecciones nosocomiales observadas en la UCI son las asociadas a cat&eacute;teres, pulm&oacute;n, tracto urinario y las del sitio operatorio (14,15), en nuestro estudio los aislamientos  procedentes de dichos sitios anat&oacute;micos superan el 60 % y nos permite explicar las frecuencias encontradas de S. aureus, SCN, E. coli, Klebsiella spp. y P. aeruginosa en las UCI de la ciudad, g&eacute;rmenes tradicionalmente causantes de este tipo de infecciones.</p>      <p>El principal hallazgo de este estudio es la confirmaci&oacute;n de las elevadas tasas de RA entre los distintos grupos de microorganismos. En el estudio de Arias se encontr&oacute; en el a&ntilde;o 2001 una resistencia de S. aureus a la oxacilina del 52 % y una resistencia de SCN a la oxacilina de 73% (16). En este estudio las tasas fueron mayores y en general la resistencia a la oxacilina fue m&aacute;s alta en SCN al compararse con S. aureus con una  corresistencia a los otros antibi&oacute;ticos con actividad antiestafiloc&oacute;ccica elevada, lo que podr&iacute;a explicarse en parte, por la mayor presi&oacute;n generada por el mayor uso de antibi&oacute;ticos y la transmisi&oacute;n cruzada. Las diferencias con nuestros resultados pueden ser explicadas por su origen, ya que generalmente los perfiles de resistencia en UCI son mayores como se ha descrito previamente y confirmado por GREBO (9). Sin embargo, al comparar estas tasas de resistencia con las informadas en UCI de Asia, Europa y los Estados Unidos, nuestras tasas son superiores o similares, con excepci&oacute;n de la resistencia de los Enterococci a la vancomicina, la cual fue inferior (12,13,17-19). Con respecto a Am&eacute;rica Latina los perfiles de resistencia de E. coli, K. pneumoniae y E. cloacae son similares a los encontrados por Mendes en Brasil, pero los de P. aeruginosa para carbapen&eacute;micos muy superiores (40,8 – 36,8 vs. 18,6 %) (20). Estas diferencias con nuestros hospitales reflejan la importancia de disponer de datos locales que permitan tomar mejores decisiones cl&iacute;nicas o establecer pol&iacute;ticas de tratamiento, de control de infecciones y de uso prudente de antibi&oacute;ticos. </p>      <p>Es de resaltar el hecho de que la resistencia a la vancomicina entre los aislamientos de E. faecium haya disminuido considerablemente en las UCI de Bogot&aacute; durante el &uacute;ltimo a&ntilde;o, aunque no es claro cual es el factor determinante de este fen&oacute;meno. El estudio multic&eacute;ntrico previamente mencionado (16) mostr&oacute; una alta tasa de resistencia entre los a&ntilde;os 2001 y 2002, que nuevamente puede ser explicado por el tipo de muestreo empleado, pero tambi&eacute;n se evidenci&oacute; que las cepas identificadas  a las que se les realiz&oacute; estudio molecular estaban altamente relacionadas. Por lo que podemos estar en frente a brotes que se desarrollaron en algunos de los hospitales participantes, hecho que concuerda con que solo 5 hospitales reportaran EVR y 2 de ellos informaran 87 % de las muestras resistentes. Ello explicar&iacute;a las altas tasas observadas, junto con la posterior desaparici&oacute;n de este tipo de aislamientos en la UCI. En Medell&iacute;n se observ&oacute; un brote de caracter&iacute;sticas clonales con la expresi&oacute;n de Van A que ha persistido en el tiempo (21). </p>      <p>Los niveles de resistencia a las cefalosporinas entre las enterobacterias se han incrementado en los &uacute;ltimos a&ntilde;os. Un estudio realizado en varios centros hospitalarios del pa&iacute;s en 1997 mostr&oacute; una resistencia a las cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n en E. coli menor a 7  % (22), en Klebsiella spp. entre 13 y 26 % y en E. cloacae entre 18 y 29 %. En nuestro estudio la resistencia a las cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n y aztreonam se ha mantenido en niveles entre 7,1 y 13,5 % en E. coli, 20,1 y 52,8 % en K. pneumoniae y 40,9 y 57,8 % en E. cloacae.  Estos niveles de resistencia pueden deberse a la presencia de BLEE, as&iacute; como a la presencia de otras beta lactamasas plasm&iacute;dicas o cromosomales. Al hacer el an&aacute;lisis de la resistencia a ceftriaxona con sensibilidad a cefotetan, se deduce que las beta lactamasas responsables de la resistencia a cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n deben ser primordialmente BLEE en E. coli y K. pneumoniae, mientras que deben ser secundarias a la presencia de AmpC en E. cloacae (8).  Durante el a&ntilde;o 2002 se identific&oacute; en Colombia la presencia de BLEE de tipo CTX-M en algunos de los hospitales de la red (23), lo que implica que este tipo de enzimas pueden tener una alta circulaci&oacute;n entre nuestros hospitales, especialmente en la UCI. Uno de los factores m&aacute;s importantes para la aparici&oacute;n y mantenimiento de este tipo de enzimas es el uso de cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n (24). El aislamiento de los pacientes expuestos a cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n (ceftriaxona, ceftazidima, cefotaxima), as&iacute; como aquellos colonizados o infectados por microorganismos con este patr&oacute;n de resistencia debe recomendarse para evitar su diseminaci&oacute;n en el hospital (24).</p>      <p>Tambi&eacute;n se encontr&oacute; una alta resistencia a las quinolonas, lo que limita su uso como agentes terap&eacute;uticos efectivos en la UCI, tanto en infecciones severas como en aquellas adquiridas sen el hospital. Al hacer el an&aacute;lisis de corresistencia con quinolonas y cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n (datos no mostrados), se encontr&oacute; una alta resistencia a la ciprofloxacina y una baja tasa de corresistencia en E. coli, una tasa intermedia de corresistencia (7,9 %) y una mayor tasa de resistencia a cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n en K. pneumoniae y una alta corresistencia (37 %) con una alta resistencia a cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n en E. cloacae; estos datos sugieren que la resistencia a la ciprofloxacina puede ser un fen&oacute;meno independiente en E. coli, lo que puede explicarse por el amplio uso de quinolonas en la consulta externa y, quiz&aacute;s en muchos casos, incluso sin evaluaci&oacute;n m&eacute;dica. Estudios realizados en aislamientos de Klebsiella de varios pa&iacute;ses sugieren que estas tasas de resistencia pueden estar relacionadas y que el uso previo de cefalosporinas de amplio espectro es un factor de riesgo para la aparici&oacute;n de resistencia a ciprofloxacina (25).</p>      <p>La susceptibilidad de los Gram negativos a los carbapen&eacute;micos es alta pero no est&aacute; por encima de 99 %. Teniendo en cuenta que en nuestro pa&iacute;s no se ha informado de la presencia de aislamientos de E. coli o Klebsiella spp. productores de carbapenemasas, estos datos deben ser interpretados con cautela, requiriendo de un mayor control de calidad para asegurar esta informaci&oacute;n. Adem&aacute;s se debe llevar al extremo la vigilancia de aislamientos con este perfil de resistencia, con el fin de confirmar este comportamiento y, eventualmente, estudiarlo a trav&eacute;s de t&eacute;cnicas moleculares.</p>      <p>Las tasas de resistencia de P. aeruginosa a la mayor&iacute;a de antibi&oacute;ticos disponibles se ha incrementado durante los &uacute;ltimos a&ntilde;os. Los datos del programa de vigilancia de RA en Unidades de Cuidado Intensivo de  Europa y EEUU demuestran que  la resistencia a los carbapen&eacute;micos, cefepime y la piperacilina tazobactam se acerca a 20 %, mientras que otros antibi&oacute;ticos tienen tasas de resistencias a&uacute;n m&aacute;s altas (19,26-29). El n&uacute;mero de aislamientos probados contra meropenem durante el a&ntilde;o 2002 fue peque&ntilde;o, por lo que es dif&iacute;cil determinar si hubo un salto tan importante en la resistencia, o simplemente el n&uacute;mero limitado de aislamientos no es capaz de reflejar el verdadero nivel de resistencia. El estudio MYSTIC mostr&oacute; que la prevalencia de este tipo de microorganismos var&iacute;a de forma importante en los pa&iacute;ses europeos, oscilando entre menos de 3 % y 50 % (30). Estos clones deben ser detectados oportunamente por los laboratorios cl&iacute;nicos y por los comit&eacute;s de infecciones intrahospitalarias de forma que se pueda evitar su diseminaci&oacute;n, especialmente cuando estos pacientes tienen alternativas terap&eacute;uticas limitadas en nuestro pa&iacute;s (31), y m&aacute;s a&uacute;n cuando recientemente se describe en nuestro pa&iacute;s la aparici&oacute;n de carbapenemasas (32). La frecuencia y resistencia de A. baumanni creci&oacute; durante los a&ntilde;os estudiados en todos los hospitales y especialmente se ha incrementado el n&uacute;mero de g&eacute;rmenes multiresistentes (27). Este fen&oacute;meno se ha observado en UCI de todo el mundo, especialmente asociado al uso de cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n (33). La resistencia a imipenem es adem&aacute;s seleccionada por el uso de este antibi&oacute;tico.</p>      <p>La resistencia bacteriana es favorecida en las UCI por el uso amplio de antibi&oacute;ticos (6,17,34,35). Cambios significativos en el uso de antibi&oacute;ticos pueden afectar la susceptibilidad antimicrobiana de los microorganismos encontrados en la UCI (6,17,36,37). Por tanto estos resultados deben alertar acerca del uso de los antibi&oacute;ticos en nuestras UCI, el cual debe ser racional y prudente. Por otra parte, se debe estimular la vigilancia activa del consumo de antibi&oacute;ticos como una medida adicional para la vigilancia y control de la RA. Algunas estrategias de restricci&oacute;n de la prescripci&oacute;n de antibi&oacute;ticos, especialmente en UCI, han demostrado ser capaces adem&aacute;s de disminuir el grado de RA, disminuir costos de la atenci&oacute;n, tanto en pa&iacute;ses desarrollados con en v&iacute;as de desarrollo (38,39). Estas estrategias, sumadas a un mejoramiento en las medidas de control de infecci&oacute;n deben ser recomendadas en nuestros hospitales como una de las medidas para el control de la RA.</p>      <p>Las limitaciones de un estudio de vigilancia de este tipo se deben considerar en el momento de interpretar los datos. Aunque se realiz&oacute; un control de calidad de los laboratorios participantes los datos muestran que algunos perfiles antimicrobianos “inusuales” pueden estar pasando desapercibidos. Sin embargo, los datos mostrados son muy consistentes en cuanto a las tendencias observadas. Por otra parte, los resultados de este estudio son de g&eacute;rmenes causantes de colonizaci&oacute;n e infecci&oacute;n, por lo que deben ser analizados con precauci&oacute;n en el momento de decidir la prescripci&oacute;n de un paciente determinado; no obstante, para fines de vigilancia  y establecimiento de medidas de control son muy &uacute;tiles ya que reflejan mejor la ecolog&iacute;a de las UCI porque a su vez puede relacionar  el riesgo de transmisi&oacute;n cruzada (12). Para contener la diseminaci&oacute;n de la RA, se debe tener en cuenta todos los g&eacute;rmenes circulantes independientemente si est&aacute;n asociados a una colonizaci&oacute;n o a una infecci&oacute;n. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los resultados de este estudio son una invitaci&oacute;n para el establecimiento r&aacute;pido de pol&iacute;ticas locales y regionales que contribuyan a la contenci&oacute;n de  la resistencia.</p>      <p><b>Agradecimientos:</b> Grupo para el Control de la Resistencia Bacteriana (GREBO). Hospitales e Instituciones participantes (2001-2003): Universidad Nacional de Colombia (Aura Luc&iacute;a Leal Castro, Javier Eslava Schmalbach, Giancarlo Buitrago Guti&eacute;rrez, Carlos Saavedra Trujillo), Cl&iacute;nica del Ni&ntilde;o (Mauricio Luna, Tailandia Rodr&iacute;guez, Martha Uzeta), Cl&iacute;nica de Occidente (Elkin Lemos, Martha Salinas), Cl&iacute;nica San Pedro Claver (Carlos Alquichire, Martha Ruiz), Fundaci&oacute;n Cardioinfantil (&aacute;lvaro Arango, Patricia Bravo), Fundaci&oacute;n Universitaria San Carlos (Jorge A. Cort&eacute;s, Jaime Saravia), Hospital El Tunal (Elkin Lemos, Narda Olarte, Martha Garz&oacute;n), Hospital Militar Central (Matilde M&eacute;ndez, Carlos P&eacute;rez), Hospital de Occidente Kennedy (Elkin Lemos, Romelia Villa), Hospital San Jos&eacute; (Claudia Fajardo, Paola Jim&eacute;nez), Hospital Santa Clara (Gloria In&eacute;s Gallo, Luzmila L&oacute;pez, Roberto T&aacute;mara), Hospital Sim&oacute;n Bol&iacute;var (Carlos &aacute;lvarez, Gustavo Aristiz&aacute;bal, Constanza Correa), Hospital Universitario San Ignacio (Carlos &aacute;lvarez, Diana Moncada), Hospital Universitario Cl&iacute;nica San Rafael (Clemencia &aacute;vila, Carlos Saavedra, Martha Pulido), Instituto Nacional de Cancerolog&iacute;a (Patricia Arroyo, Jorge A. Cort&eacute;s y Sonia I. Cuervo), Asociaci&oacute;n Colombiana de Infectolog&iacute;a (ACIN) – Cap&iacute;tulo Central e Instituto Nacional de Salud.</p>      <P><FONT size=3><B>REFERENCIAS</P></B></FONT>      <!-- ref --><p>1. Jones RN. Resistance patterns among nosocomial pathogens: trends over the past few years. Chest 2001;119(2 Suppl):397S-404S.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0124-0064200600040000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Diekema DJ, Pfaller MA, Schmitz FJ, Smayevsky J, Bell J, Jones RN, et al. Survey of infections due to Staphylococcus species: frequency of occurrence and antimicrobial susceptibility of isolates collected in the United States, Canada, Latin America, Europe, and the Western Pacific region for the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program, 1997-1999. Clin Infect Dis 2001;32 Suppl 2:S114-32.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0124-0064200600040000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Sader HS, Jones RN, Andrade-Baiocchi S, Biedenbach DJ. Four-year evaluation of frequency of occurrence and antimicrobial susceptibility patterns of bacteria from bloodstream infections in Latin American medical centers. Diagn Microbiol Infect Dis 2002;44(3):273-80.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0124-0064200600040000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Kollef MH, Fraser VJ. Antibiotic resistance in the intensive care unit. Ann Intern Med 2001;134(4):298-314.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0124-0064200600040000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Neuhauser MM, Weinstein RA, Rydman R, Danziger LH, Karam G, Quinn JP. Antibiotic resistance among gram-negative bacilli in US intensive care units: implications for fluoroquinolone use. Jama 2003;289(7):885-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0124-0064200600040000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Alvarez CA. Control de la resistencia bacteriana. In: Gomez A, Alvarez CA, Leon A, editors. Enfermedades infecciosas en UCI. Una aproximacion basada en la evidencia. Bogota: Distribuna, 2003:447 - 480.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0124-0064200600040000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Lucet JC, Chevret S, Durand-Zaleski I, Chastang C, Regnier B. Prevalence and risk factors for carriage of methicillin-resistant Staphylococcus aureus at admission to the intensive care unit: results of a multicenter study. Arch Intern Med 2003;163(2):181-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0124-0064200600040000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Livermore DM, Winstanley TG, Shannon KP. Interpretative reading: recognizing the unusual and inferring resistance mechanisms from resistance phenotypes. J Antimicrob Chemother 2001;48 Suppl 1:87-102.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0124-0064200600040000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Leal AL, Buitrago G, Alvarez CA, Eslava J. Creaci&oacute;n de una red de vigilancia de la resistencia bacteriana en Bogot&aacute;. En prensa 2005.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0124-0064200600040000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Simonsen GS, Tapsall JW, Allegranzi B, Talbot EA, Lazzari S. The antimicrobial resistance containment and surveillance approach--a public health tool. Bull World Health Organ 2004;82(12):928-34.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0124-0064200600040000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Singh N, Yu VL. Rational empiric antibiotic prescription in the ICU. Chest 2000;117(5):1496-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0124-0064200600040000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Fridkin SK, Steward CD, Edwards JR, Pryor ER, McGowan JE, Jr., Archibald LK, et al. Surveillance of antimicrobial use and antimicrobial resistance in United States hospitals: project ICARE phase 2. Project Intensive Care Antimicrobial Resistance Epidemiology (ICARE) hospitals. Clin Infect Dis 1999;29(2):245-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0124-0064200600040000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. 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Crit Care Med 2000;28(5):1316-21.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0124-0064200600040000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Vincent JL, Bihari DJ, Suter PM, Bruining HA, White J, Nicolas-Chanoin MH, et al. The prevalence of nosocomial infection in intensive care units in Europe. Results of the European Prevalence of Infection in Intensive Care (EPIC) Study. EPIC International Advisory Committee. Jama 1995;274(8):639-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0124-0064200600040000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Arias CA, Reyes J, Zuniga M, Cortes L, Cruz C, Rico CL, et al. Multicentre surveillance of antimicrobial resistance in enterococci and staphylococci from Colombian hospitals, 2001-2002. J Antimicrob Chemother 2003;51(1):59-68.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0124-0064200600040000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System Report, data summary from January 1992 through June 2003, issued August 2003. Am J Infect Control 2003;31(8):481-98.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0124-0064200600040000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Jarlier V, Fosse T, Philippon A. Antibiotic susceptibility in aerobic gram-negative bacilli isolated in intensive care units in 39 French teaching hospitals (ICU study). Intensive Care Med 1996;22(10):1057-65.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0124-0064200600040000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Streit JM, Jones RN, Sader HS, Fritsche TR. Assessment of pathogen occurrences and resistance profiles among infected patients in the intensive care unit: report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program (North America, 2001). Int J Antimicrob Agents 2004;24(2):111-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0124-0064200600040000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Mendes C, Hsiung A, Kiffer C, Oplustil C, Sinto S, Mimica I, et al. Evaluation of the in vitro activity of 9 antimicrobials against bacterial strains isolated from patients in intensive care units in brazil: MYSTIC Antimicrobial Surveillance Program. Braz J Infect Dis 2000;4(5):236-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0124-0064200600040000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Panesso D, Ospina S, Robledo J, Vela MC, Pena J, Hernandez O, et al. First characterization of a cluster of VanA-type glycopeptide-resistant Enterococcus faecium, Colombia. Emerg Infect Dis 2002;8(9):961-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0124-0064200600040000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Jones RN, Salazar JC, Pfaller MA, Doern GV. Multicenter evaluation of antimicrobial resistance to six broad-spectrum beta-lactams in Colombia using the Etest method. The Colombian Antimicrobial Resistance Study Group. Diagn Microbiol Infect Dis 1997;29(4):265-72.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0124-0064200600040000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Villegas MV, Correa A, Perez F, Zuluaga T, Radice M, Gutkind G, et al. CTX-M-12 beta-lactamase in a Klebsiella pneumoniae clinical isolate in Colombia. Antimicrob Agents Chemother 2004;48(2):629-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0124-0064200600040000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Paterson DL, Ko WC, Von Gottberg A, Mohapatra S, Casellas JM, Goossens H, et al. International prospective study of Klebsiella pneumoniae bacteremia: implications of extended-spectrum beta-lactamase production in nosocomial Infections. Ann Intern Med 2004;140(1):26-32.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0124-0064200600040000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Paterson DL, Mulazimoglu L, Casellas JM, Ko WC, Goossens H, Von Gottberg A, et al. Epidemiology of ciprofloxacin resistance and its relationship to extended-spectrum beta-lactamase production in Klebsiella pneumoniae isolates causing bacteremia. Clin Infect Dis 2000;30(3):473-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0124-0064200600040000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->26. Unal S, Masterton R, Goossens H. Bacteraemia in Europe--antimicrobial susceptibility data from the MYSTIC surveillance programme. Int J Antimicrob Agents 2004;23(2):155-63.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0124-0064200600040000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Friedland I, Stinson L, Ikaiddi M, Harm S, Woods GL. Phenotypic antimicrobial resistance patterns in Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter: results of a Multicenter Intensive Care Unit Surveillance Study, 1995-2000. Diagn Microbiol Infect Dis 2003;45(4):245-50.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0124-0064200600040000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Glupczynski Y, Delmee M, Goossens H, Struelens M. A multicentre survey of antimicrobial resistance in gram-negative isolates from Belgian intensive care units in 1994-1995. Belgian Multicenter ICU Study Group. Acta Clin Belg 1998;53(1):28-38.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0124-0064200600040000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Garcia-Rodriguez JA, Jones RN. Antimicrobial resistance in gram-negative isolates from European intensive care units: data from the Meropenem Yearly Susceptibility Test Information Collection (MYSTIC) programme. J Chemother 2002;14(1):25-32.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0124-0064200600040000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Goossens H. Susceptibility of multi-drug-resistant Pseudomonas aeruginosa in intensive care units: results from the European MYSTIC study group. Clin Microbiol Infect 2003;9(9):980-3.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0124-0064200600040000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Markou N, Apostolakos H, Koumoudiou C, Athanasiou M, Koutsoukou A, Alamanos I, et al. Intravenous colistin in the treatment of sepsis from multiresistant Gram-negative bacilli in critically ill patients. Crit Care 2003;7(5):R78-83.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0124-0064200600040000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Crespo MP, Woodford N, Sinclair A, Kaufmann ME, Turton J, Glover J, et al. Outbreak of carbapenem-resistant Pseudomonas aeruginosa producing VIM-8, a novel metallo-beta-lactamase, in a tertiary care center in Cali, Colombia. J Clin Microbiol 2004;42(11):5094-101.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0124-0064200600040000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Lee SO, Kim NJ, Choi SH, Hyong Kim T, Chung JW, Woo JH, et al. Risk factors for acquisition of imipenem-resistant Acinetobacter baumannii: a case-control study. Antimicrob Agents Chemother 2004;48(1):224-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0124-0064200600040000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Monnet DL, Archibald LK, Phillips L, Tenover FC, McGowan JE, Jr., Gaynes RP. Antimicrobial use and resistance in eight US hospitals: complexities of analysis and modeling. Intensive Care Antimicrobial Resistance Epidemiology Project and National Nosocomial Infections Surveillance System Hospitals. Infect Control Hosp Epidemiol 1998;19(6):388-94.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0124-0064200600040000800034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Meyer E, Schwab F, Jonas D, Rueden H, Gastmeier P, Daschner FD. Surveillance of antimicrobial use and antimicrobial resistance in intensive care units (SARI): 1. Antimicrobial use in German intensive care units. Intensive Care Med 2004;30(6):1089-96.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0124-0064200600040000800035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Gentry C, Flournoy DJ, Reinert R. Analysis of antimicrobial resistance among gram-negative bacilli and antimicrobial use in intensive care unit patients for 5 years in a Veterans Affairs medical center. Am J Infect Control 2002;30(7):411-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0124-0064200600040000800036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Itokazu GS, Quinn JP, Bell-Dixon C, Kahan FM, Weinstein RA. Antimicrobial resistance rates among aerobic gram-negative bacilli recovered from patients in intensive care units: evaluation of a national postmarketing surveillance program. Clin Infect Dis 1996;23(4):779-84.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0124-0064200600040000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Dos Santos EF, Silva AE, Pinhati HM, Maia Mde O. Effectiveness of the actions of antimicrobial control in the intensive care unit. Braz J Infect Dis 2003;7(5):290-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0124-0064200600040000800038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->
      <!-- ref --><p>39. Geissler A, Gerbeaux P, Granier I, Blanc P, Facon K, Durand-Gasselin J. Rational use of antibiotics in the intensive care unit: impact on microbial resistance and costs. Intensive Care Med 2003;29(1):49-54.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0124-0064200600040000800039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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