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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Concordancia de dos pruebas serológicas para el diagnóstico de la enfermedad de Chagas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objetive Establish the concordance between in-house ELISA and IIF for the diagnosis of infection with T. cruzi using blood eluates. Methodology A study of diagnostic technology evaluation and cross-sectional sample of 650 residents of an endemic area of Colombia was conducted. It was determined the Receiver Operating Characteristic curve (ROC) and IIF was used as a gold standard. It was established the cutoff for the ELISA and the correlation between readings. Results The in-house ELISA it was an agreement of 0.99 (95 % CI: 0.989 to 0.992) between the two readings taken and the area for the ROC curve was 0.9795. The cutoff was set at 0.5 absorbance in the ELISA test. 16.6 % were positive by ELISA and 10.9 % by IIF. Conclusions The in-house ELISA showed good concordance compared to the IIF, so it is a good choice diagnostic for the population living in remote areas.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Enzima casera]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[enfermedad de Chagas]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">      <p align="center"><font size="4"><b>Concordancia de dos pruebas serol&oacute;gicas para el diagn&oacute;stico de la enfermedad de Chagas</b></font></p>      <p align="center"><font size="3"><b>Concordance of two serological tests for the diagnosis of Chagas disease</b></font></p>      <p align="center">Ana E. Farf&aacute;n-Garc&iacute;a, Yeny Z. Castellanos-Dom&iacute;nguez, Katherine P. Luna-Mar&iacute;n y V&iacute;ctor M. Angulo-Silva</p>      <p>Centro de Investigaciones en Enfermedades Tropicales -CINTROP-. Universidad Industrial de Santander. Colombia. <a href="mailto:elvirafarfan01@hotmail.com">elvirafarfan01@hotmail.com</a>, <a href="mailto:yenyzu1@gmail.com">yenyzu1@gmail.com</a>; <a href="mailto:katluna23@yahoo.com">katluna23@yahoo.com</a>; <a href="mailto:pitorio@hotmail.com">pitorio@hotmail.com</a>.</p>      <p align="center">Recibido 16 Junio 2012/Enviado para Modificaci&oacute;n 22 Julio 2012/Aceptado 8 Agosto 2012</p>  <hr>      <p><b>RESUMEN</b></p>      <p><b>Objetivo</b> Establecer la concordancia entre un Ensayo Inmunoenzim&aacute;tico Ligado a una Enima Casera (ELISA) y la Inmunofluorescencia Indirecta (IFI) para el diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n por <i>T. cruzi </i>empleando eluidos sangu&iacute;neos.</p>      <p><b>Metodolog&iacute;a</b> Se realiz&oacute; un estudio de evaluaci&oacute;n de tecnolog&iacute;a diagn&oacute;stica y muestreo de corte transversal a 650 habitantes de una zona end&eacute;mica de Colombia. Se determin&oacute; el &aacute;rea bajo la curva de operador-receptor (del ingl&eacute;s ROC) y se us&oacute; la IFI estandarizada en eluidos sangu&iacute;neos como <i>gold standard</i>. Se estableci&oacute; el punto de corte para el ELISA, as&iacute; como la concordancia entre las lecturas.</p>      <p><b>Resultados</b> El ELISA present&oacute; una concordancia de 0,99 (IC95 %: 0,989-0,992) entre las lecturas realizadas y una curva ROC de 0,9795. El punto de corte establecido fue 0,5 de absorbancia en la prueba de ELISA. 16,6 % fueron positivas para anticuerpos anti-<i>T. cruzi </i>por ELISA y 10,9 % por IFI.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Conclusiones</b> El ELISA mostr&oacute; buena concordancia frente a IFI, por lo tanto es una buena elecci&oacute;n diagn&oacute;stica para la poblaci&oacute;n que vive en &aacute;reas remotas.</p>      <p><b>Palabras Clave</b>: Enzima casera, enfermedad de Chagas, <i>Trypanosoma cruzi</i>, diagn&oacute;stico, serolog&iacute;a (<i>fuente: DeCS, BIREME</i>).</p>  <hr>      <p><b>ABSTRACT</b></p>      <p><b>Objetive</b> Establish the concordance between in-house ELISA and IIF for the diagnosis of infection with <i>T. cruzi</i> using blood eluates.</p>      <p><b>Methodology</b> A study of diagnostic technology evaluation and cross-sectional sample of 650 residents of an endemic area of Colombia was conducted. It was determined the Receiver Operating Characteristic curve (ROC) and IIF was used as a gold standard. It was established the cutoff for the ELISA and the correlation between readings.</p>      <p><b>Results</b> The in-house ELISA it was an agreement of 0.99 (95 % CI: 0.989 to 0.992) between the two readings taken and the area for the ROC curve was 0.9795. The cutoff was set at 0.5 absorbance in the ELISA test. 16.6 % were positive by ELISA and 10.9 % by IIF.</p>      <p><b>Conclusions</b> The in-house ELISA showed good concordance compared to the IIF, so it is a good choice diagnostic for the population living in remote areas.</p>      <p><b>Key Words</b>: Chagas disease, <i>Trypanosoma cruzi</i>, diagnosis, serology. (<i>source: MeSH, NLM</i>).</p>  <hr>      <p>La enfermedad de Chagas causada por <i>Trypanosoma cruzi </i>a&uacute;n se considera un serio problema de salud p&uacute;blica en Latinoam&eacute;rica (1,2). Los datos de la Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud (OPS) del a&ntilde;o 2006 sugieren que 7,6 millones de personas est&aacute;n infectadas y aproximadamente 75 millones se encuentran en riesgo de adquirir el par&aacute;sito (3,4). En Colombia la enfermedad de Chagas est&aacute; distribuida en diferentes departamentos, principalmente de la zona oriental del pa&iacute;s, donde alrededor de un mill&oacute;n de personas son seropositivas (5,7). Los datos de prevalencia de los tamizajes de bancos de sangre en esta zona oscilan entre 1,2 % y 7,2 % (8,9).</p>      <p>La presencia de <i>T. cruzi </i>en muestras biol&oacute;gicas o tejidos confirma el diagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n y su hallazgo depende de la fase cl&iacute;nica de la enfermedad: aguda o cr&oacute;nica. Para el diagn&oacute;stico en la fase cr&oacute;nica, asintom&aacute;tica o sintom&aacute;tica, se han desarrollado varias t&eacute;cnicas inmunol&oacute;gicas para la detecci&oacute;n de anticuerpos espec&iacute;ficos tipo IgG contra epimastigotes de <i>T. cruzi</i>, entre ellas la Inmunofluorescencia Indirecta (IFI), el Ensayo Inmunoenzim&aacute;tico Ligado a una Enzima (ELISA) y la Hemaglutinaci&oacute;n Indirecta (HAI) (10-13). La mayor&iacute;a de las t&eacute;cnicas inmunol&oacute;gicas comerciales emplean ant&iacute;genos recombinantes o ant&iacute;genos preparados a partir de cepas no aut&oacute;ctonas antig&eacute;nicamente diferentes a las cepas locales, lo que conduce a baja sensibilidad y especificidad de las mismas (14,15).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En la mayor&iacute;a de las &aacute;reas rurales en donde la enfermedad de Chagas es prevalente existe dificultad para el acceso de los pacientes a los servicios de salud y por lo tanto al diagn&oacute;stico oportuno de la infecci&oacute;n. Los laboratorios cl&iacute;nicos de los municipios end&eacute;micos no tienen la infraestructura adecuada para la realizaci&oacute;n de dichas pruebas y por consiguiente deben enviar las muestras de suero para el diagn&oacute;stico a instituciones de mayor complejidad. Para facilitar el env&iacute;o de muestras desde zonas de dif&iacute;cil acceso varios autores han recomendado la absorci&oacute;n de la sangre en papel filtro para posteriormente del eluido sangu&iacute;neo realizar las pruebas serol&oacute;gicas (16-20).</p>      <p>Desde los a&ntilde;os sesenta, pa&iacute;ses como Brasil, M&eacute;xico y Panam&aacute; han reportado el uso del eluido sangu&iacute;neo para la detecci&oacute;n de anticuerpos anti-<i>T. cruzi</i> mediante prueba de fijaci&oacute;n de complemento (FC), IFI y ELISA con excelentes resultados de sensibilidad y especificidad (16,21-22). En Colombia, en 1990 se realiz&oacute; un trabajo en una zona end&eacute;mica de Boyac&aacute; con el fin de comparar los resultados obtenidos entre ELISA e IFI y el rendimiento de las pruebas en sueros vs eluidos (19).</p>      <p>Es preciso anotar que la mayor&iacute;a de las pruebas comerciales no est&aacute;n estandarizadas para emplear eluidos sangu&iacute;neos; entonces se hace indispensable desarrollar pruebas inmunol&oacute;gicas caseras para el procesamiento de eluidos en las cuales se empleen cepas de <i>T. cruzi</i> locales. Si bien existen estudios en los que se emplea el eluido sangu&iacute;neo para detecci&oacute;n de anticuerpos tipo IgG para Chagas las caracter&iacute;sticas de calidad no han sido descritas en todos ellos, por consiguiente el objetivo del presente trabajo fue determinar la concordancia entre las t&eacute;cnicas ELISA casera e IFI utilizando una cepa colombiana como ant&iacute;geno para detectar anticuerpos tipo IgG anti-<i>T.cruzi</i> en eluidos.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>METODOLOG&Iacute;A</b></font></p>      <p><b>Dise&ntilde;o y poblaci&oacute;n</b></p>      <p>Se realiz&oacute; un estudio de evaluaci&oacute;n de tecnolog&iacute;a diagn&oacute;stica en Fase I mediante un muestreo de corte transversal (23,24). Entre los meses de diciembre de 2008 y junio de 2009 y con m&iacute;nimo 6 meses de duraci&oacute;n en la zona y con firma del consentimiento informado se incluyeron participantes de todas las edades procedentes del &aacute;rea rural de los municipios de Aguazul o Man&iacute; del Departamento de Casanare. El c&aacute;lculo del tama&ntilde;o de muestra se realiz&oacute; en el programa Epidat 3,0 con base en una prevalencia del evento en Casanare de 7,2 % (9), sensibilidad del 97 %, un nivel de confianza de 95 % y una precisi&oacute;n de 5 %. El tama&ntilde;o de muestra correspondi&oacute; a 626.</p>      <p><b>Muestras biol&oacute;gicas</b></p>      <p>Las muestras de sangre obtenidas por punci&oacute;n capilar fueron impregnadas en papel filtro Whatman No.3 de 1,5 cm. de di&aacute;metro en un volumen de 60 µl. Cada filtro fue sumergido en 480 µl de Phosphate Buffer Saline (PBS) pH 7,2 e incubado a 4&deg;C por 24 horas. Posteriormente se dejaron a temperatura ambiente, se centrifugaron por siete minutos a 2.500 r.p.m y los eluidos se almacenaron a -20&deg;C.</p>      <p><b>ELISA</b></p>      <p>El ant&iacute;geno correspondi&oacute; a epimastigotes de una cepa colombiana de <i>T. cruzi </i>genotipo I. El ELISA casero fue una versi&oacute;n modificada del protocolo de ant&iacute;genos inmovilizados (25). Para &eacute;ste, microplacas de poliestireno de 96 pozos (NUNC<sup>&reg;</sup>) se incubaron durante 18 horas a 4&deg;C con 6,5 µg/ml de ant&iacute;geno. Los eluidos diluidos 1/160 en buffer carbonatos pH 9,6 fueron incubados por una hora a 37ºC. Despu&eacute;s del bloqueo con alb&uacute;mina de huevo y los lavados con PBS-Tween 20 0,05 % a pH 7,2, se adicion&oacute; el conjugado anti-inmunoglobulina G humana cadena espec&iacute;fica marcada con fosfatasa alcalina (SIGMA<sup>&reg;</sup>) diluida 1/2.000 y se incub&oacute; por dos horas. La actividad enzim&aacute;tica fue detectada con el sustrato cromog&eacute;nico p-nitrofenilfosfato. La reacci&oacute;n fue detenida con NaOH 3N y las absorbancias le&iacute;das a 405 nm con filtro de referencia de 620 nm en un lector de ELISA (Anthos 2020).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Inmunofluorescencia Indirecta -IFI-</b></p>      <p>Los epimastigotes de <i>T. cruzi</i> fueron lavados con soluci&oacute;n salina (0,9 %) est&eacute;ril y posteriormente con formol al 2 %. Enseguida se centrifugaron y el sedimento se resuspendi&oacute; en soluci&oacute;n salina est&eacute;ril hasta obtener la concentraci&oacute;n de 20 – 40 par&aacute;sitos por campo en 40X. Se sirvieron en pozos de placas de 18 pozos y se almacenaron a -20&deg;C. Brevemente, se sirvieron las placas con una diluci&oacute;n en serie de los eluidos. Estos se incubaron a 37&deg;C durante 70 minutos. Despu&eacute;s de los lavados se adicion&oacute; el conjugado anti-IgG humana marcado con isotiocianato de fluoresce&iacute;na diluido 1/80 en Azul de Evans 1/750. Luego de la incubaci&oacute;n, se realiz&oacute; la lectura en un microscopio de Inmunofluorescencia con objetivo de 40x. Las muestras con t&iacute;tulo igual o mayor a 1/32 se consideraron positivas. La lectura se realiz&oacute; sin tener conocimiento previo de los resultados del ELISA y por dos operadores expertos.</p>      <p>Para las dos pruebas serol&oacute;gicas los controles negativos correspondieron a eluidos de pacientes de una zona no end&eacute;mica y los positivos a eluidos de pacientes con diagn&oacute;stico de enfermedad de Chagas cr&oacute;nica de la misma zona, con resultados de absorbancias altas, medias y bajas. Todas las pruebas se realizaron por duplicado.</p>      <p><b>An&aacute;lisis de datos</b></p>      <p>Los resultados obtenidos se registraron en una base de datos de Excel (Microsoft office, 2007) y los an&aacute;lisis se realizaron con el software Stata 10,0 (Stata Corp. 2007. Stata Statistical Software: Release 10. College Station, TX: Stata Corp LP). Se calcul&oacute; el coeficiente de correlaci&oacute;n intraclase para determinar la capacidad discriminativa del ELISA y la validez de esta prueba se estableci&oacute; mediante el c&aacute;lculo del &aacute;rea bajo la curva del receptor operador (ROC) (26), usando como test de referencia la IFI y considerando como resultado reactivo la diluci&oacute;n igual o mayor a 1/32. Se seleccion&oacute; el punto de corte donde la sensibilidad y especificidad del ELISA present&oacute; las mejores caracter&iacute;sticas de una prueba de tamizaje. La concordancia se analiz&oacute; teniendo en cuenta los duplicados del mismo corrido del ELISA.</p>      <p><b>Aspectos &eacute;ticos</b></p>      <p>Este estudio correspondi&oacute; a una investigaci&oacute;n con riesgo m&iacute;nimo de acuerdo con la resoluci&oacute;n No.08430 de 1993 del Ministerio de Salud de Colombia. Fue aprobado por el comit&eacute; de &eacute;tica de la Facultad de Salud de la Universidad Industrial de Santander, Acta No. 015 del 27 de agosto de 2007.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>RESULTADOS</b></font></p>      <p>Se tomaron 650 muestras de sangre en papel filtro de los habitantes de una zona end&eacute;mica con edades comprendidas entre los cinco meses y 88 a&ntilde;os, las cuales se procesaron con las t&eacute;cnicas de ELISA e IFI.</p>       <p>El coeficiente de correlaci&oacute;n intraclase obtenido de las dos mediciones del ELISA para evaluar la reproducibilidad intraevaluador fue de 0,99 (IC95 %:0,989-0,992) con una diferencia entre las dos mediciones de 0,004 (DS 0,04). Los l&iacute;mites de acuerdo del 95 % mostraron la distribuci&oacute;n de las absorbancias de las dos lecturas alrededor del acuerdo promedio m&aacute;s y menos dos desviaciones est&aacute;ndar. El l&iacute;mite de concordancia del 95 % estuvo entre -0,075 y 0,082. Las absorbancias por debajo de 0,5 se agruparon alrededor de cero y se observ&oacute; que al aumentar la absorbancia se incrementaba la dispersi&oacute;n de los datos (<a href="#fig1">Figura 1</a>).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="fig1"></a><img src="img/revistas/rsap/v15n2/v15n2a03f1.jpg"></p>      <p>Teniendo como referente la prueba de IFI y estableciendo como resultado positivo una diluci&oacute;n igual o mayor a 1/32 se aprecia que m&aacute;s del 50 % de los resultados positivos por IFI presentaron valores de absorbancia en el ELISA superiores a 0,5 (<a href="#fig2">Figura 2</a>).</p>      <p align="center"><a name="fig2"></a><img src="img/revistas/rsap/v15n2/v15n2a03f2.jpg"></p>      <p>La calidad del ELISA casero se expres&oacute; a trav&eacute;s del &aacute;rea bajo la curva ROC, la cual fue de 0,9795 (IC95 %: 0,959-0,999) con un error est&aacute;ndar de 0,013, lo que indic&oacute; una buena capacidad discriminatoria para el diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n por <i>T. cruzi </i>(<a href="#fig3">Figura 3</a>).</p>      <p align="center"><a name="fig3"></a><img src="img/revistas/rsap/v15n2/v15n2a03f3.jpg"></p>      <p>Para seleccionar el punto de corte del ELISA en muestras de eluido se establecieron las caracter&iacute;sticas de sensibilidad y especificidad de la prueba a diferentes absorbancias. La mayor eficiencia de la prueba se obtuvo con un punto el corte de 0,5 en donde la prueba mostr&oacute; una sensibilidad de 97,2 % y una especificidad de 93,7 % (<a href="#tab1">Tabla1</a>).</p>      <p align="center"><a name="tab1"></a><img src="img/revistas/rsap/v15n2/v15n2a03t1.jpg"></p>      <p>El &iacute;ndice Kappa entre IFI y ELISA para las muestras de eluidos fue de 0,73 (IC95 % 0,66-0,81). Este valor del coeficiente representa un nivel de concordancia sustancial entre estas dos pruebas (27).</p>      <p>Con el punto de corte de 0,5 establecido para la t&eacute;cnica de ELISA, 108 (16,6 %) muestras fueron positivas por ELISA y 71 (10,9 %) por IFI. Positividad simult&aacute;nea se observ&oacute; en 69 (10,6 %) casos (<a href="#tab2">Tabla 2</a>). Los valores predictivos positivo y negativo correspondieron a 63,9 y 99,6 respectivamente.</p>      <p align="center"><a name="tab2"></a><img src="img/revistas/rsap/v15n2/v15n2a03t2.jpg"></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Con el fin de dar un resultado definitivo a cada uno de los participantes del estudio, se tom&oacute; una nueva muestra a aquellos que presentaron pruebas discordantes: ELISA positiva con IFI negativo o ELISA negativa con IFI positivo (datos no publicados).</p>      <p align="center"><font size="3"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>      <p>La Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud recomienda emplear tres m&eacute;todos serol&oacute;gicos distintos para establecer el diagn&oacute;stico definitivo de la enfermedad de Chagas (28).</p>      <p>El ELISA es una de las t&eacute;cnicas serol&oacute;gicas m&aacute;s sensible utilizada para el diagn&oacute;stico de la enfermedad de Chagas en su fase cr&oacute;nica. Su interpretaci&oacute;n depende de par&aacute;metros calculados m&aacute;s que de la interpretaci&oacute;n subjetiva de quien realiza la prueba (29). Adem&aacute;s del ELISA est&aacute; la HAI y la IFI las cuales debido a su simplicidad, bajo costo y a los buenos resultados en t&eacute;rminos tanto de especificidad como de sensibilidad son ampliamente usadas para el diagn&oacute;stico de la enfermedad. Estas t&eacute;cnicas se basan en el empleo de fracciones antig&eacute;nicas semipurificadas o totales de epimastigotes o tripomastigotes de <i>T. cruzi</i> (30). En este estudio se determin&oacute; una buena correlaci&oacute;n entre los resultados obtenidos por ELISA y por IFI en eluidos, a pesar de usar preparaciones antig&eacute;nicas diferentes. En la prueba de ELISA se utiliz&oacute; un extracto completo crudo que representa los ant&iacute;genos solubles que componen el mosaico antig&eacute;nico del epimastigote, mientras que en la IFI se utilizaron par&aacute;sitos completos donde los &uacute;nicos ant&iacute;genos que est&aacute;n disponibles para interactuar con los anticuerpos del hu&eacute;sped son los ant&iacute;genos de superficie (31).</p>      <p>Tal como fue reportado por Bucio y colaboradores, el uso de cepas aut&oacute;ctonas aumenta la sensibilidad y la especificidad de la prueba de ELISA para la detecci&oacute;n de anticuerpos anti-<i>T. cruzi</i> (32). Para el ELISA casero de este estudio se us&oacute; como ant&iacute;geno una cepa colombiana de <i>T. cruzi </i>que corresponde al genotipo m&aacute;s com&uacute;n que circula en la zona oriental del pa&iacute;s (33).</p>      <p>El uso de papel filtro ha sido empleado satisfactoriamente para el tamizaje de otras infecciones de transmisi&oacute;n vectorial como dengue lo que extiende su uso en zonas de dif&iacute;cil acceso (34). Esta t&eacute;cnica minimiza las dificultades de costo y transporte de las muestras convirti&eacute;ndose en una herramienta &uacute;til para estudios seroepidemiol&oacute;gicos en poblaci&oacute;n dispersa como la de este estudio. Adem&aacute;s bajo condiciones adecuadas de almacenamiento pueden ser usadas hasta por un a&ntilde;o sin presentar alteraciones significativas en los t&iacute;tulos de anticuerpos (35).</p>      <p>Estudios previos que usaron sangre colectada en papel filtro y que emplearon la t&eacute;cnica de inmunofluorescencia indirecta mostraron un 100 % de concordancia con los sueros positivos y 0,8 % de los sueros negativos presentaron resultado reactivo cuando se procesaron en papel filtro; estos falsos positivos no fueron significativamente importantes dadas las otras ventajas que representa este m&eacute;todo (17).</p>      <p>Son pocas las investigaciones que presentan las caracter&iacute;sticas de confiabilidad y calidad de las pruebas que son empleadas para realizar diagn&oacute;stico y clasificar a un individuo como sano o enfermo. Los resultados de este trabajo concuerdan con los hallazgos de un estudio realizado en Chile en el que los valores de absorbancia obtenidos en las muestras de pacientes con diagn&oacute;stico positivo para Chagas se encuentran entre 0,508 y 1,469 (18). De igual manera L&oacute;pez y colaboradores encontraron las mejores caracter&iacute;sticas de sensibilidad y especificidad con un punto de corte de 0,4 para la t&eacute;cnica de ELISA en eluidos provenientes de pacientes de zona end&eacute;mica de Colombia usando como gold est&aacute;ndar la IFI (20). El &aacute;rea bajo la curva ROC para eluidos hallada en este estudio fue de 0,975, similar a la obtenida por Orozco y colaboradores (0,994) quienes usaron muestras colectadas en papel filtro de habitantes de zona end&eacute;mica de Colombia para la enfermedad de Chagas. En ese mismo estudio el punto de corte establecido estuvo entre 0,4 y 0,5 con valores de Kappa m&aacute;s altos respecto a este trabajo (19). Esta discrepancia puede deberse a una diferencia en la concentraci&oacute;n final del ant&iacute;geno y al procesamiento de la t&eacute;cnica de ELISA.</p>      <p>En estudios previos realizados por el mismo grupo se utilizaron las pruebas IFI y ELISA en sueros para el diagn&oacute;stico de la enfermedad de Chagas en habitantes de una zona end&eacute;mica de Santander, con en el que se obtuvieron resultados de calidad satisfactorios para las dos t&eacute;cnicas evaluadas (36,37).</p>      <p>Una limitaci&oacute;n de este estudio fue la no obtenci&oacute;n de suficientes muestras de suero de todos los participantes para establecer la concordancia con los eluidos. No obstante dadas las ventajas que presenta la recolecci&oacute;n y el transporte de sangre impregnada en papel filtro en &aacute;reas de dif&iacute;cil acceso, es innegable la utilidad del papel filtro para el tamizaje de la infecci&oacute;n por <i>T. cruzi.</i></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se concluye en este estudio que el ELISA frente a IFI en eluidos sangu&iacute;neos tiene muy buena concordancia y por lo tanto se recomienda extender su uso para el diagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n por <i>T. cruzi</i> en poblaciones que viven en &aacute;reas remotas.</p>      <p><b><i>Agradecimientos:</i></b> Al Doctor Luis Carlos Orozco por sus invaluables aportes en el an&aacute;lisis de los datos, al personal de la Secretar&iacute;a de Salud del Departamento de Casanare y a las personas de las comunidades incluidas en este estudio.</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p>1. Schofield CJ, Jannin J, Salvatella R. The future of Chagas disease control. Trends Parasitol. 2006; 22(12):583-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0124-0064201300020000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>2. Moncayo A, Silveira AC. Current epidemiological trends for Chagas disease in Latin America and future challenges in epidemiology, surveillance and health policy. Mem Inst Oswaldo Cruz 2009; 104(Suppl 1):17-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0124-0064201300020000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>3. Schmunis G. Epidemiology of Chagas disease in non-endemic countries: the role of international migration. Mem Inst Oswaldo Cruz 2007; 102(1):75-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0124-0064201300020000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>4. Hern&aacute;ndez P, Heimann M, Riera C, Solano M, Santalla J, Luquetti AO, et al. Highly effective serodiagnosis for Chagas' disease. Clin Vaccine Immunol. 2010; 17(10):1598-604.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0124-0064201300020000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>5. Enciso C, Montilla M, Santacruz M, Nicholls R, Rodr&iacute;guez A, Mercado M, et al. Comparaci&oacute;n de la prueba de inmunofluorescencia indirecta, un inmunoensayo enzim&aacute;tico y la prueba comercial Chagatek para la detecci&oacute;n de anticuerpos anti-<i>Trypanosoma cruzi</i>. Biom&eacute;dica. 2004; 24:104-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0124-0064201300020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>6. Angulo VM. Aspectos ecol&oacute;gicos de la enfermedad de Chagas en el oriente de Colombia. MVZ C&oacute;rdoba 2000; 5(1):64-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0124-0064201300020000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>7. Guhl F. Estado actual del control de la enfermedad de Chagas en Colombia. En: Guhl F, Jaramillo C. Editores. Curso-taller control de tripanosomiasis americana y leishmaniasis: aspectos biol&oacute;gicos, gen&eacute;ticos y moleculares. Santaf&eacute; de Bogot&aacute;: Corcas Editores; 1998. p. 47-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0124-0064201300020000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>8. Behrend M, Beltr&aacute;n M, Restrepo M, Kroeger A. Control de la enfermedad de Chagas en bancos de sangre de Colombia. Biom&eacute;dica. 2002; 22(1): 39-45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0124-0064201300020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>9. Beltr&aacute;n M, Berm&uacute;dez MI, Forero MC, Ayala M, Rodr&iacute;guez MJ. Control de la infecci&oacute;n por <i>Trypanosoma cruzi</i> en donantes de sangre de Colombia, 2003. Biom&eacute;dica 2005; 25(4): 527-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0124-0064201300020000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>10. Macêdo V. Indeterminate form of Chagas Disease. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999; 94(1):311-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0124-0064201300020000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>11. Zicker F, Smith PG, Luquetti AO, Oliveira OS. Bull World Health Organ 1990; 68(4):465-71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0124-0064201300020000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>12. Ponce C, Ponce E, Vinelli E, Montoya A, de Aguilar V, Gonzalez A, et al. Validation of a rapid and reliable test for diagnosis of chagas' disease by detection of <i>Trypanosoma cruzi</i>-specific antibodies in blood of donors and patients in Central America. J Clin Microbiol. 2005; 43(10):5065-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0124-0064201300020000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>13. Nakazawa M, Rosa DS, Pereira VR, Moura MO, Furtado VC, Souza WV, et al. ELISA versus PCR for diagnosis of chronic Chagas disease: systematic review and meta- analysis. Excretory-secretory antigens of <i>Trypanosoma cruzi</i> are potentially useful for serodiagnosis of chronic Chagas' disease. Clin Diagn Lab Immunol. 2001; 8(5):1024-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0124-0064201300020000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>14. Brasil P. ELISA versus PCR for diagnosis of chronic Chagas disease: systematic review and meta- analysis. BMC Infec Dis. 2010; 10(37):1-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0124-0064201300020000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>15. Barfield CA, Barney RS, Crudder CH, Wilmoth JL, Stevens DS, Mora-Garcia S, et al. A highly sensitive rapid diagnostic test for Chagas disease that utilizes a recombinant <i>Trypanosoma cruzi </i>antigen. IEEE Trans Biomed Eng. 2011; 58(3):814-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0124-0064201300020000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>16. De Souza SL, Camargo ME. The use of filter paper blood smears in a practical fluorescent test for American Trypanosomiasis serodiagnosis. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1966; 8(6):255-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0124-0064201300020000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>17. Alvarez M, De Rissio AM, Wynne de Martini GJ, Orrego LA, Cerisola JA. Recolecci&oacute;n de sangre en papel para diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n chag&aacute;sica por inmunofluorescencia. Bol Chil Parasitol. 1971; 26(1):1-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0124-0064201300020000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>18. Contreras MC, Salinas P, Sandoval L, Sol&iacute;s F, Rojas A. Utilidad de la ELISA-IgG en muestras de sueros y eluidos de sangre en papel filtro en el inmunodiagn&oacute;stico de la enfermedad de Chagas. Bol Chil Parasitol.1992; 47(3-4):76-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0124-0064201300020000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>19. Orozco LC, Camargo D, Lopez M, Duque S, Gualdr&oacute;n LE, C&aacute;ceres E, et al. Inmunodiagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n en humanos por <i>Trypanosoma cruzi</i> mediante ELISA utilizando sangre recolectada en papel filtro. Biom&eacute;dica. 1999; 19(2):164-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0124-0064201300020000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>20. L&oacute;pez MC, Duque S, Orozco LC, Camargo D, Gualdr&oacute;n LE, C&aacute;ceres E, et al. Inmunodiagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n chag&aacute;sica por ELISA. Biom&eacute;dica. 1999; 19(2):159-3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0124-0064201300020000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>21. Kagan IG, Goldsmith RS, Z&aacute;rate-Casta&ntilde;eda R, Allain DS. Evaluaci&oacute;n de pruebas serol&oacute;gicas utilizadas para estudiar la enfermedad de Chagas. Bol Oficina Sanit Panam. 1979; 87(4):309-18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0124-0064201300020000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>22. Anthony RL, Johnson CM, Sousa OE. Use of micro-ELISA for quantitating antibody to <i>Trypanosoma cruzi</i> and <i>Trypanosoma rangeli</i>. Am J Trop Med Hyg. 1979; 28(6):969-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0124-0064201300020000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>23. Orozco LC. Fases y muestreos, o de c&oacute;mo tomar las personas de una poblaci&oacute;n para hacer el estudio. Confiabilidad de la consistencia, reproducibilidad, acuerdo y algo m&aacute;s. En: Medici&oacute;n en Salud. Diagn&oacute;stico y Evaluaci&oacute;n de Resultados. Divisi&oacute;n de Publicaciones UIS. Bucaramanga; 2010. p. 63-157.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0124-0064201300020000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>24. Kraemer H. Sensitivity and Specificity: The signal Detection Approach. In: Evaluating medical Tests. Objective and quantitative guidelines. Sage publications, Inc; Newbury Park, California, USA; 1992. p. 63-95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0124-0064201300020000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>25. Voller A, Bartlett A, Bidwell DE. Enzyme immunoassays for parasitic diseases. Trans Roy Soc Trop Med and Hyg 1976; 70(2):98-06.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0124-0064201300020000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>26. Cerda J, Cifuentes L. Uso de curvas ROC en investigaci&oacute;n cl&iacute;nica. Aspectos te&oacute;rico-pr&aacute;cticos. Rev Chilena Infectol. 2012; 29(2):138-141.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0124-0064201300020000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>27. Seigel DG, Podgor MJ, Remaley NA. Acceptable values of kappa for comparison of two groups. Am J Epidemiol. 1992; 135(5):571-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0124-0064201300020000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>28. Reiche EM, Cavazzana M Jr, Okamura H, Tagata EC, Jankevicius SI, Jankevicius JV. Evaluation of the western blot in the confirmatory serologic diagnosis of Chagas' disease. Am J Trop Med Hyg 1998; 59(5):750-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0124-0064201300020000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>29. Palacios X, Belli A, Espino AM. Detecci&oacute;n de anticuerpos contra <i>Trypanosoma cruzi</i> en Somoto, Nicaragua, mediante ELISA indirecto e IFI en muestras de sangre en papel de filtro. 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