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<journal-title><![CDATA[Perspectivas en Nutrición Humana]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Capacidad atrapadora de radicales oxígeno (ORAC) y fenoles totales de frutas y hortalizas de Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Background: Fruits and vegetables have a high nutritional and therapeutic potential. It could be explained by presence of different phytochemicals, such as phenolic compounds, which have been associated with antioxidant activity. In order to determine antioxidant capacity in food matrices, one of the most widely used methods is oxygen radical absorbance capacity (ORAC). Objective: To estimate total phenolic content and ORAC in Colombian fruits and vegetables. Method and materials: Plant material was lyophilized, followed by an extraction process to separate hydrophilic and lipophilic fraction. Total phenolic content was estimated from hydrophilic fraction by Folin-Ciocalteu method. Antioxidant activity was evaluated in hydrophilic and lipophilic fractions by ORAC. Results: Total phenolic content varied from 30,5 to 10.584,7 mg/100 g in fruits, and 12,4 to 1.377,2 mg/100 g in vegetables. ORAC values were from 685,7 to 207.850,4 &mu;mol trolox/100 g in fruits, and 372,3 to 32.047,9 &mu;mol trolox/100 g in vegetables. Passion fruit and spinach had better antioxidant properties. Conclusions: Nutraceutical properties of Colombian fruits and vegetables may be explained by phenolic compounds content and antioxidant activity.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <p align="right"> <b>INVESTIGACI&Oacute;N</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="4">Capacidad atrapadora de radicales ox&iacute;geno (ORAC) y fenoles totales de frutas y hortalizas de Colombia</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="3"> Oxygen radical absorbance capacity (ORAC) and phenolic content of fruits and vegetables from Colombia</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Sandra Zapata<sup>1</sup>; Ana Mar&iacute;a Piedrahita<sup>1</sup>; Benjam&iacute;n Rojano<sup>1</sup></b></p>     <p> 1 Laboratorio de Ciencia de Alimento. Universidad Nacional de Colombia, Medell&iacute;n, Colombia.   <a href="mailto:brojano@unal.edu.co">brojano@unal.edu.co</a>.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Como citar este art&iacute;culo: Zapata S, Piedrahita AM, Rojano B. Capacidad atrapadora de radicales ox&iacute;geno (ORAC) y fenoles totales de frutas y   hortalizas de Colombia. Perspect Nutr Humana. 2014;16: 25-36.</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><i>Art&iacute;culo recibido: 13 de enero de 2014; Aceptado: 9 de abril de 2014</i></p>      <p>&nbsp;</p> <hr noshade size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>Antecedentes</b>: las frutas y hortalizas poseen un alto potencial nutricional y terap&eacute;utico, debido a   la presencia de diferentes fitoqu&iacute;micos, como los compuestos fen&oacute;licos que han sido relacionados   con la actividad antioxidante. Con el fin de determinar la capacidad antioxidante en matrices alimentarias,   uno de los m&eacute;todos m&aacute;s utilizados es la capacidad atrapadora de radicales de ox&iacute;geno   (ORAC). <b>Objetivo</b>: estimar el contenido de fenoles totales y la capacidad atrapadora de radicales   de ox&iacute;geno (ORAC) en frutas y hortalizas colombianas. <b>Materiales y m&eacute;todos</b>: el material vegetal   fue liofilizado, seguido de un proceso de extracci&oacute;n para separar la fracci&oacute;n hidrof&iacute;lica y lip&oacute;filica.   El contenido de fenoles totales se determin&oacute; en la fracci&oacute;n hidrof&iacute;lica por el m&eacute;todo de Folin-   Ciocalteu. La actividad antioxidante fue evaluada en la fracci&oacute;n hidrof&iacute;lica y lipof&iacute;lica por ORAC.   <b>Resultados</b>: el contenido de fenoles totales vari&oacute; entre 30,5 a 10.584,7 mg/100 g en las frutas y   12,4 a 1.377,2 mg/100 g en las hortalizas. Los valores ORAC obtenidos variaron desde 685,7 a   207.850,4 &mu;mol trolox/100 g en las frutas y 372,3 a 32.047,9 &mu;mol trolox/100 g en las hortalizas. La   curuba y espinaca presentaron mejores propiedades antioxidantes de las frutas y hortalizas analizadas,   respectivamente; con diferencias estad&iacute;sticamente significativas frente a los dem&aacute;s alimentos   de su grupo (p&lt;0,05). <b>Conclusi&oacute;n</b>: los productos hortofrut&iacute;colas colombianos presentan posibles propiedades nutrac&eacute;uticas por el aporte de compuestos fen&oacute;licos con actividad antioxidante.</p>     <p> <b>Palabras clave: </b>antioxidantes, sustancias protectoras, compuestos fen&oacute;licos, alimentos saludables,   frutas, verduras.</p> <hr noshade size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p><b>Background</b>: Fruits and vegetables have a high nutritional and therapeutic potential. It could be explained by presence   of different phytochemicals, such as phenolic compounds, which have been associated with antioxidant activity. In   order to determine antioxidant capacity in food matrices, one of the most widely used methods is oxygen radical absorbance   capacity (ORAC). <b>Objective</b>: To estimate total phenolic content and ORAC in Colombian fruits and vegetables.   <b>Method and materials:</b> Plant material was lyophilized, followed by an extraction process to separate hydrophilic and   lipophilic fraction. Total phenolic content was estimated from hydrophilic fraction by Folin&#8211;Ciocalteu method. Antioxidant   activity was evaluated in hydrophilic and lipophilic fractions by ORAC. <b>Results</b>: Total phenolic content varied   from 30,5 to 10.584,7 mg/100 g in fruits, and 12,4 to 1.377,2 mg/100 g in vegetables. ORAC values were from 685,7 to   207.850,4 &mu;mol trolox/100 g in fruits, and 372,3 to 32.047,9 &mu;mol trolox/100 g in vegetables. Passion fruit and spinach   had better antioxidant properties. <b>Conclusions</b>: Nutraceutical properties of Colombian fruits and vegetables may be explained by phenolic compounds content and antioxidant activity.</p>     <p><b> Key words: </b>antioxidants, protective agents, phenolic compounds, health food, fruits, vegetables.</p> <hr noshade size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>Las propiedades beneficiosas de las frutas y vegetales   sobre la salud est&aacute;n asociadas con los   metabolitos secundarios llamados fitonutrientes,   los cuales pueden ser agrupados como fenoles,   terpenos y derivados azufrados. El t&eacute;rmino fenoles   de las plantas deber&iacute;a ser el m&aacute;s adecuado,   sin embargo ha sido cambiado por polifenoles,   debido a su utilizaci&oacute;n en el campo nutricional,   la industria agr&iacute;cola, cosm&eacute;tica y de alimentos.   Los polifenoles son estructuras complejas y son   los antioxidantes de mayor consumo en la dieta   de humanos, con una alta implicaci&oacute;n en la salud   p&uacute;blica. Por lo tanto, es necesario proteger y   educar las comunidades a trav&eacute;s de un estilo de   vida saludable que promueva la prevenci&oacute;n de enfermedades   mediante una ingesta alimentaria de productos naturales nutrac&eacute;uticos (1-4).</p>     <p> Los compuestos polifen&oacute;licos son un grupo cercano   a 8.000 sustancias que pueden ser clasificados   de acuerdo con su estructura. Entre los m&aacute;s importantes   est&aacute;n los flavonoides, que poseen una estructura   b&aacute;sica C6-C3-C6, como las antocianinas,   catequinas y epicatequinas. El subgrupo de los fenilpropanoides   que incluye los derivados del &aacute;cido   hidroxicin&aacute;mico, como cafeico, fer&uacute;lico, sin&aacute;pico y   p-cum&aacute;rico; estilbenoides, como el resveratrol,   y derivados del &aacute;cido benzoico, como el g&aacute;lico y   algunos &aacute;cidos el&aacute;gicos, entre otros. Adem&aacute;s hay   un grupo de mol&eacute;culas simples, como los &aacute;cidos   fen&oacute;licos y m&aacute;s complejas, como los taninos. Los   polifenoles se encuentran generalmente glicosidados   y por eso son generalmente solubles en agua.   Los polifenoles en las frutas y hortalizas muestran   una actividad antioxidante mayor que las vitaminas   C y E, y desempe&ntilde;an un papel importante en   la prevenci&oacute;n de enfermedades cr&oacute;nicas, tales   como des&oacute;rdenes cardiovasculares y neurodegenerativos,   c&aacute;ncer, diabetes tipo 2, osteoporosis, antimutag&eacute;nicos y antitumorales (3,5-6).</p>     <p> Varias enfermedades neurodegenerativas, cardiovasculares,   cerebrovasculares y algunas formas   de c&aacute;ncer est&aacute;n asociadas con el da&ntilde;o oxidativo   generado por la presencia de radicales libres (2,7),   que poseen uno o m&aacute;s electrones desapareados,   que los hace altamente inestables y reactivos (8).   Estas estructuras qu&iacute;micas para estabilizarse reaccionan   r&aacute;pidamente con mol&eacute;culas adyacentes   mediante reacciones de oxido-reducci&oacute;n, da&ntilde;ando   biomol&eacute;culas, como carbohidratos, prote&iacute;nas, l&iacute;pidos   y ADN, y, por consiguiente, afectando la membrana   plasm&aacute;tica y organelas, como la mitocondria   y el n&uacute;cleo celular (5). El cuerpo humano desarrolla   sistemas de protecci&oacute;n contra radicales libres que   resultan insuficientes con la edad, por lo cual las   dietas ricas en frutas y hortalizas son una alternativa   para la buena salud (3-4). Las propiedades   ben&eacute;ficas de los polifenoles est&aacute;n asociadas a su estructura   qu&iacute;mica que es capaz de interactuar con las   especies reactivas de ox&iacute;geno y nitr&oacute;geno, que son   los radicales libres m&aacute;s da&ntilde;inos, mediante dos mecanismos:   uno de transferencia de electrones (SET)   y el otro de transferencia de un &aacute;tomo de hidr&oacute;geno   (HAT). En el mecanismo SET, el antioxidante   (ArOH) puede donar un electr&oacute;n al radical per&oacute;xilo,   formando entre los productos un ani&oacute;n per&oacute;xilo y un   cati&oacute;n radical del antioxidante (ArO<sup>&bull;+</sup>); y en el mecanismo   HAT, el antioxidante (ArOH) atrapa un radical   per&oacute;xilo por donaci&oacute;n de &aacute;tomos de hidr&oacute;geno, generando   un hidroper&oacute;xido y un radical antioxidante   m&aacute;s estable qu&iacute;micamente (ArO<sup>&bull;</sup>). Los mecanismos se describen a continuaci&oacute;n (9):</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/penh/v16n1/v16n1a3e1.jpg"></p>     <p> La cuantificaci&oacute;n de los polifenoles totales es   una forma directa de estimar el contenido de antioxidantes   en una matriz alimentaria, siempre y   cuando se correlacionen con medidas de la expresi&oacute;n   de los mismos a trav&eacute;s de una t&eacute;cnica   que eval&uacute;e su actividad, como el m&eacute;todo ORAC   (Capacidad atrapadora del radical ox&iacute;geno) (10).   Este m&eacute;todo es un ensayo que mide la capacidad   de un compuesto para atrapar el radical per&oacute;xilo,   relevante en la oxidaci&oacute;n de l&iacute;pidos en los alimentos;   mediante un mecanismo de transferencia   de un &aacute;tomo de hidr&oacute;geno HAT (11-12). En este   ensayo, los radicales per&oacute;xilo (ROO<sup>&bull;</sup>) generados   por iniciadores de radicales libres, reaccionan con   una sonda fluorescente para formar un producto   no fluorescente; es decir, a medida que avanza   la reacci&oacute;n la sonda fluorescente se consume y   disminuye la fluorescencia. El antioxidante adicionado   al medio compite con la sonda fluorescente,   manteni&eacute;ndose la fluorescencia (9,13). Adem&aacute;s,   este m&eacute;todo puede medir la expresi&oacute;n antioxidante   de compuestos hidrof&iacute;licos y lipof&iacute;licos en una   muestra (14), y es muy utilizado para determinar la   capacidad antioxidante de los alimentos y productos   naturales (9-10). El estudio de las propiedades   antioxidante de frutas y hortalizas y sus beneficios   para la salud es un campo emergente en Colombia   y con gran proyecci&oacute;n, pero hasta ahora se desconoce   el aporte de compuestos fen&oacute;licos como   la actividad antioxidante de la mayor&iacute;a de los productos   hortofrut&iacute;colas del pa&iacute;s. Por esta raz&oacute;n, el   objetivo de este estudio fue establecer una base   de datos de frutas y hortalizas con mayor potencial   nutrac&eacute;utico en Colombia, mediante la estimaci&oacute;n   de su contenido de fenoles totales y su capacidad atrapadora de radicales de ox&iacute;geno (ORAC).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> Reactivos y equipos</b></p>     <p> El AAPH &#91;2,20-Azo-bis (2-amidinopropano) dihidrocloruro&#93;   usado como una fuente de radicales   peroxilos, Trolox (Acido 6-hidroxi-2,5,8-tetrametilcromano-2-carboxilico), fluoresceinato de sodio,   BMCD (&beta; &#8211;metil ciclodextrina) y &aacute;cido g&aacute;lico fueron   obtenidos de Sigma Chemical Co. (St Louis,   MO). El metanol, acetona, &aacute;cido ac&eacute;tico, hexano,   fosfato &aacute;cido de sodio, fosfato b&aacute;sico de sodio,   reactivo de Folin y carbonato de sodio fueron obtenidos   de Merck (Alemania). Las medidas de absorbancia   se realizaron en un espectrofot&oacute;metro   UV-Vis Jenway 6405. Las lecturas de fluorescencia   se realizaron en un espectrofluor&iacute;metro marca Perkin Elmer modelo LS- 55.</p>     <p> <b>Muestras</b></p>     <p> Se seleccionaron 24 frutas y 18 hortalizas colombianas   de mayor inter&eacute;s comercial seg&uacute;n la base   de datos de Asohofrucol (<a href="#t1">Tabla 1</a>). El material vegetal   fue obtenido en el mercado local de la ciudad   de Medell&iacute;n-Colombia en madurez de consumo.   Las muestras frescas fueron liofilizadas.   Despu&eacute;s de la liofilizaci&oacute;n, el material fue molido y almacenado a -20&deg;C.</p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/penh/v16n1/v16n1a3t1.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <b>Extracci&oacute;n de las muestras</b></p>     <p> La preparaci&oacute;n de las muestras se realiz&oacute; siguiendo   la metodolog&iacute;a descrita por Prior y otros (12).   Se pes&oacute; 1 g de muestra liofilizada en un tubo de   centr&iacute;fuga de 20 mL. El extracto lipof&iacute;lico se obtuvo   mezclando la muestra con hexano (2x10 ml) y   centrifugando a 2.500 g durante 5 min. Los sobrenadantes   se mezclaron, se evaporaron y se secaron   con nitr&oacute;geno. El extracto hidrof&iacute;lico se obtuvo   mezclando el residuo de la extracci&oacute;n lipof&iacute;lica   seco con 10 ml de una soluci&oacute;n de acetona/agua/ &aacute;cido ac&eacute;tico (70;29,5;0,5 v/v/v). El tubo fue agitado durante 30 seg en un vortex, se agit&oacute; a 37&deg;C por 5 min, se almacen&oacute; a temperatura ambiente por 10 min y finalmente se centrifug&oacute; a 2.500 g durante 5 min. El sobrenadante fue transferido a otro tubo. El extracto hidrof&iacute;lico fue utilizado para cuantificar el contenido de fenoles totales y la actividad antioxidante por ORAC hidrof&iacute;lico, y el extracto lipof&iacute;lico para evaluar la capacidad antioxidante por ORAC lipof&iacute;lico.</p>     <p> <b>Determinaci&oacute;n de fenoles totales</b></p>     <p> El contenido de fenoles totales se determin&oacute; por   el m&eacute;todo de Folin-Ciocalteu (15). Este m&eacute;todo   cuantifica el poder reductor de los compuestos fen&oacute;licos   sobre el reactivo Folin-Ciocalteu, mediante   la formaci&oacute;n de un complejo azul que se lee a   760 nm. En un tubo de reacci&oacute;n se adicionaron   50 &mu;L del extracto hidrof&iacute;lico, 425 &mu;L de agua destilada   y 125 &mu;L del reactivo Folin-Ciocalteu (grado   anal&iacute;tico, Merck). Se agit&oacute; y luego se dej&oacute; en   reposo por 6 min. Posteriormente se adicionaron   400 &mu;L de Na<sub>2</sub>CO<sub>3</sub> al 7,1%. Despu&eacute;s de una hora   en la oscuridad se ley&oacute; la absorbancia a 760 nm.   Se usaron soluciones de &aacute;cido g&aacute;lico (Sigma-Aldrich<sup>&reg;</sup>) entre 50-500 &mu;g/mL para construir la curva de calibraci&oacute;n. Los resultados se expresaron como mg de &aacute;cido g&aacute;lico/100 g de muestra liofilizada en base seca.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b>Ensayo ORAC</b></p>     <p> El ensayo ORAC se determin&oacute; por la metodolog&iacute;a   descrita por Ou y otros, con algunas modificaciones   (6,16-17). Se prepararon 3 ml de la siguiente   soluci&oacute;n: 21 &mu;L de una soluci&oacute;n de fluoresce&iacute;na   10 &mu;M, 2899 &mu;L de buffer fosfato 75 mM (pH 7.4),   50 &mu;L de AAPH 600 mM y 30 &mu;L de muestra o   Trolox 500 &mu;M (est&aacute;ndar). La fluorescencia se registr&oacute;   cada 60 seg a 37&deg;C, usando un espectrofluor&iacute;metro   Perkin Elmer LS55 con una multicelda   termostatizada. Las lecturas se realizaron a una &lambda; de excitaci&oacute;n de 493 nm y una &lambda; de emisi&oacute;n de 515 nm. El valor ORAC se calcul&oacute; utilizando la siguiente ecuaci&oacute;n y los resultados fueron expresados como valores TEAC (&mu;mol de trolox/100 g de muestra liofilizada en base seca):</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/penh/v16n1/v16n1a3e1a.jpg"></p>     <p>  Donde AUC es el &aacute;rea bajo la curva y f es el factor de diluci&oacute;n de los extractos (16).</p>     <p> Para el ensayo de ORAC hidrof&iacute;lico, las diluciones   de los extractos hidrof&iacute;licos fueron preparadas en   agua ultrapura. Para el an&aacute;lisis de ORAC lipof&iacute;lico,   se resuspendi&oacute; el extracto lipof&iacute;lico en 250 &mu;L de   acetona y luego se diluy&oacute; en 750 &mu;L de una soluci&oacute;n   de BMCD al 7% (acetona / agua, 1:1, v/v).   La soluci&oacute;n de BMCD al 7% fue utilizada como  blanco y para preparar el trolox y las diferentes diluciones de las muestras (12).</p>     <p> <b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p>     <p> Todas las determinaciones se realizaron por triplicado   y se expresaron los valores como los promedios &plusmn; la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (DE). Las diferencias estad&iacute;sticas se determinaron mediante an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) y test de m&iacute;nima diferencia significativa (LSD) con un p&lt;0,05 para comparaci&oacute;n de medias en cada una de las variables analizadas (fenoles totales y ORAC), mediante el paquete estad&iacute;stico Statgraphics Centurion XV.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>RESULTADOS</b></font></p>     <p> Se determin&oacute; el contenido de fenoles totales y la   capacidad antioxidante de 24 frutas y 18 hortalizas   colombianas, por el m&eacute;todo de Folin-Ciocalteu y   ORAC, respectivamente.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Las <a href="/img/revistas/penh/v16n1/v16n1a3t2.jpg">tablas 2</a> y <a href="/img/revistas/penh/v16n1/v16n1a3t3.jpg">3</a> muestran el contenido de fenoles   totales en frutas y hortalizas colombianas. Los   valores var&iacute;an entre 30,5 a 10.584,7 mg/100 g en   las frutas y 12,4 a 1.377,2 mg/100 g en las hortalizas.   Las muestras fueron clasificadas en tres grupos   seg&uacute;n su contenido de fenoles totales: bajo   (&lt;100 mg/100 g), intermedio (100-500 mg/100 g)   y alto (&gt;500 mg/100 g). El primer grupo incluye:   yuca, arracacha, durazno, maracuy&aacute;, ajo, ahuyama,   mango tommy y banano, con un contenido   bajo de fenoles totales. En el segundo grupo se   encuentran la mayor&iacute;a de productos hortofrut&iacute;colas   analizados con un contenido intermedio de dichos   metabolitos: papa capira, pera, papa criolla,   papaya, pepino, zanahoria, tomate chonto, kiwi,   tomate de &aacute;rbol, mandarina, pi&ntilde;a, uva, tomate tipo   milano maduro, remolacha, habichuela, tomate   de &aacute;rbol injerto con mora, ciruela morada, lulo,   tomate tipo milano verde, manzana roja, coliflor y   acai; y en el tercer grupo se incluyen las muestras   con alto contenido de fenoles totales, como   la cebolla de bulbo blanca, granadilla, cebolla   de bulbo morada, guayaba manzana, carambolo,   piment&oacute;n, guayaba, morti&ntilde;o, espinaca, fresa,   mora y curuba. De los diferentes productos hortofrut&iacute;colas   analizados, la curuba present&oacute; significativamente   mayor contenido de fenoles totales   (10.584,7&plusmn;260,6 mg/100 g). Entre las hortalizas   estudiadas, la espinaca present&oacute; mejor contenido   de dichos metabolitos (1.377,2&plusmn;26,1 mg/100 g);   sin embargo, la mora y fresa exhibieron valores   mayores que esta hortaliza (1.864,4&plusmn;44,0 y 1.638,4&plusmn;9,2 mg/100 g, respectivamente).</p>     <p> La actividad antioxidante medida por el m&eacute;todo   ORAC para las diferentes frutas y hortalizas colombianas   se reporta en las <a href="/img/revistas/penh/v16n1/v16n1a3t2.jpg">tablas 2</a> y <a href="/img/revistas/penh/v16n1/v16n1a3t3.jpg">3</a>. Los valores   obtenidos var&iacute;an entre 685,7 a 207.850,4 &mu;mol   trolox/100 g en las frutas y 372,3 a 32.047,9 &mu;mol   trolox/100 g en las hortalizas. Los productos hortofrut&iacute;colas   se pueden clasificar en tres grupos seg&uacute;n   su capacidad antioxidante. En el primer grupo   se encuentra la yuca, mango tommy y arracacha,   con un bajo potencial antioxidante (&lt;1.000 &mu;mol   trolox/100 g). El segundo grupo est&aacute; conformado   por los productos con una actividad antioxidante   moderada (1.000-5.000 &mu;mol trolox/100 g): papaya,   maracuy&aacute;, ahuyama, banano, pera, pepino,   ajo, tomate chonto, papa capira, tomate tipo milano   verde, tomate tipo milano maduro, pi&ntilde;a, kiwi,   tomate de &aacute;rbol y papa criolla; y el tercer grupo   est&aacute; compuesto por el durazno, uva, zanahoria,   remolacha, cebolla de bulbo blanca, habichuela,   ciruela morada, granadilla, mandarina, tomate   de &aacute;rbol injerto con mora, piment&oacute;n, lulo, coliflor,   guayaba, cebolla de bulbo morada, mora, guayaba   manzana, manzana roja, carambolo, espinaca,   morti&ntilde;o, fresa, acai y curuba, que presentan   una elevada capacidad antioxidante (&gt;5.000 &mu;mol   trolox/100 g). De las frutas y hortalizas analizadas,   la curuba present&oacute; significativamente mayor   actividad antioxidante (207.850,4&plusmn;2906,5 &mu;mol   trolox/100 g). Entre las hortalizas estudiadas, la  espinaca present&oacute; mejor potencial antioxidante (32.047,9&plusmn;1541,2 &mu;mol trolox/100 g); sin embargo, el morti&ntilde;o (34.825,6&plusmn;819,7 &mu;mol trolox/100 g), fresa (35.841,7&plusmn;2.566,3 &mu;mol trolox/100 g) y acai (43.795,7&plusmn;1.674,1 &mu;mol trolox/100 g) exhibieron mayores valores que la espinaca.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p> El contenido de fenoles totales y la actividad atrapadora   de radicales ox&iacute;geno de frutas y hortalizas   colombianas fueron clasificados en tres grupos   seg&uacute;n el aporte de compuestos fen&oacute;licos y la   actividad antioxidante. Entre los productos hortofrut&iacute;colas   analizados, la curuba present&oacute; mayor   contenido de fenoles totales. Este resultado es   similar a los obtenidos en diferentes estudios. Se   ha encontrado que el contenido de fenoles de la   curuba es mucho mayor que todos los frutos del   g&eacute;nero <i>Passiflora</i> estudiados y que la mayor&iacute;a de   los vegetales, incluyendo diversos berries, frutas,   granos y legumbres. Esta fruta es rica en flavonoides, &aacute;cidos fen&oacute;licos y taninos (18-21).</p>     <p> De las hortalizas estudiadas, la espinaca present&oacute;   mayor aporte de compuestos fen&oacute;licos. Esta   hortaliza ha sido reportada como uno de los muchos   vegetales ricos en componentes antioxidantes   (22). Amin y otros, determinaron el contenido   de fenoles totales de cinco hortalizas diferentes,   siendo la espinaca la que present&oacute; mayor contenido de este metabolito (23).</p>     <p> Es importante resaltar que existen varios factores   internos y externos que afectan la calidad y/o cantidad   de los compuestos fen&oacute;licos en las plantas,   como la diversidad gen&eacute;tica (variedad y origen de   la muestra), etapa de madurez, variables ambientales   (intensidad de la luz, clima, temperatura, uso   de fertilizantes, heridas), m&eacute;todo de extracci&oacute;n, procesamiento y almacenamiento (19-20,24).</p>     <p> En cuanto a la actividad antioxidante medida por   el m&eacute;todo ORAC, cabe aclarar que el consumo de   aproximadamente 100 g de muchos de los productos   hortofrut&iacute;colas analizados, podr&iacute;an ejercer   una potente protecci&oacute;n antioxidante. Algunos investigadores   sugirieron una ingesta entre 3.000 a   5.000 ORAC/d&iacute;a, con el fin de promover un equilibrio   oxidativo en el plasma sangu&iacute;neo y los tejidos corporales (6,12,25).</p>     <p> Entre las frutas y hortalizas estudiadas, la curuba   present&oacute; mayor actividad antioxidante. El valor   ORAC total encontrado para la curuba de 207.850,4 &plusmn; 2.906,5 &mu;mol Trolox/100 g es m&aacute;s alto que la mayor&iacute;a de granos, legumbres y frutas (26-27). Se han reportado algunos estudios que evidencian el potencial antioxidante de esta fruta. Botero y otros encontraron que la curuba posee mayor capacidad reductora comparada con 15 frutas colombianas, usando las t&eacute;cnicas FRAP y midiendo el potencial de ionizaci&oacute;n por voltametr&iacute;a c&iacute;clica (2). Contreras Calder&oacute;n y otros obtuvieron diferencias significativas entre la capacidad antioxidante de la curuba y otras frutas colombianas por las t&eacute;cnicas ABTS+&middot;, DPPH&middot;y FRAP (20).</p>     <p> De las hortalizas estudiadas, la espinaca present&oacute;   mejor potencial antioxidante. Amin y otros demostraron   el gran potencial antioxidante de la espinaca   con respecto a otros vegetales (23). Tambi&eacute;n,   se ha reportado la habilidad de extractos de espinaca   para atrapar radicales libres por el m&eacute;todo   de DPPH&middot;(28).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La actividad antioxidante de estos productos hortofrut&iacute;colas   puede relacionarse con el contenido   de fenoles totales. En general, las frutas y hortalizas   con una baja capacidad antioxidante presentaron   un bajo contenido de compuestos fen&oacute;licos.   Aquellas con una capacidad antioxidante moderada   evidenciaron un aporte bajo a intermedio de   fenoles totales, y las que exhibieron un elevado   potencial antioxidante mostraron un aporte intermedio   a alto de compuestos fen&oacute;licos. Numerosos   estudios han demostrado que el contenido fen&oacute;lico   en frutas y vegetales puede contribuir significativamente   a su capacidad antioxidante (19-20,29).   Vasco y otros estimaron el contenido de fenoles   totales y la capacidad antioxidante de diferentes   frutas ecuatorianas. Ellos evidenciaron que las frutas   ecuatorianas con una elevada capacidad para   atrapar el radical DPPH&middot;, exhibieron un moderado   a elevado contenido de fenoles totales (19). Prior   y otros encontraron una alta correlaci&oacute;n entre el   contenido de fenoles totales y la capacidad antioxidante,   evaluada por ORAC, de diferentes cultivos   de especies de <i>Vaccinium</i> (29).</p>     <p> Adem&aacute;s, pueden existir correlaciones bajas o moderadas   entre la actividad antioxidante y el contenido   de fenoles totales, debido a la presencia de   otros compuestos no fen&oacute;licos, como carotenoides   y &aacute;cido asc&oacute;rbico, con potencial antioxidante   (19,30). De las frutas y hortalizas estudiadas, la   curuba present&oacute; un contenido de fenoles totales   cinco veces superior al de la mora y su capacidad   antioxidante fue 16 veces mayor; esto puede   deberse a altos contenidos de carotenoides y &aacute;cido   asc&oacute;rbico en la curuba (19-20,31). Aunque la   curuba evidenci&oacute; un alto aporte de polifenoles y   alto potencial antioxidante en las frutas analizadas   y la espinaca en las hortalizas estudiadas, el consumo   de ambas especies en Colombia es escaso.   Seg&uacute;n la Encuesta nacional de la situaci&oacute;n nutricional   de 2005 (ENSIN), solo 2% de las personas   encuestadas incluyeron curuba en su dieta y 3,1%   consumieron espina (32). Por lo tanto, se deber&aacute;n   implementar estrategias para promover el consumo   de este tipo de productos hortofrut&iacute;colas, que   tienen grandes efectos beneficiosos sobre la salud.   Cabe resaltar que estas propiedades beneficiosas   de las frutas y hortalizas depender&aacute;n de los   metabolitos presentes en ellas y su biodisponibilidad   en los organismos (33).</p>     <p> Entre las frutas y hortalizas de mayor consumo en   Colombia, la cebolla de bulbo (conocida como cebolla   de huevo o cabezona), tanto la roja como la   blanca, mostraron alto contenido de fenoles y alta   capacidad antioxidante. Casi la mitad de los colombianos   la incluye en su dieta (47,7%), sin embargo   se consume en baja cantidad (en promedio   13 g/d&iacute;a), debido a que es utilizada fundamentalmente   como ingrediente para adobar o ali&ntilde;ar productos   c&aacute;rnicos, entre otros (32). El tomate, con   un aporte intermedio de fenoles y una moderada   capacidad antioxidante, es la verdura incluida en   la alimentaci&oacute;n de la mayor&iacute;a de colombianos   (59,2%), en muchos casos se usa como ali&ntilde;o en   cantidades bajas (22 g/d&iacute;a) (32).</p>     <p> El hecho de que los alimentos difieran en su potencial   antioxidante y, por ende, en su capacidad para   disminuir los riesgos de padecer enfermedades cr&oacute;nicas,   es un aspecto con frecuencia olvidado en las   recomendaciones nutricionales para una dieta, que   se basan fundamentalmente en necesidades de   nutrientes. Sin embargo, se ha evidenciado que el   consumo de alimentos con alto contenido de compuestos   bioactivos, como los antioxidantes, contribuyen   a una menor prevalencia de enfermedades   cr&oacute;nicas degenerativas (3,5-6). Esto ha motivado a   la comunidad a que en su dieta incluya alimentos   con propiedades nutrace&uacute;ticas, mediante la implementaci&oacute;n   de nuevos modelos, como la rueda de   los alimentos antioxidantes en Espa&ntilde;a (34).</p>     <p> En conclusi&oacute;n, la mayor&iacute;a de frutas y hortalizas   estudiadas presenta un aporte entre intermedio y   alto de fenoles totales y entre moderada y elevada   actividad antioxidante, lo que potencializa sus   posibles propiedades nutrac&eacute;uticas como sus beneficios   para la salud.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>CONFLICTOS DE INTERESES</b></font></p>     <p> Los autores declaran no tener conflicto de inter&eacute;s.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> A Colciencias por el apoyo a la Joven Investigadora   Ana Mar&iacute;a Piedrahita. A la Direcci&oacute;n   de Investigaciones (DIME) y al Laboratorio de   Ciencia de los Alimentos de la Universidad Nacional   de Colombia, sede Medell&iacute;n, por el apoyo   financiero.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p> 1. Quideau S, Deffieux D, Douat-Casassus C, Pouys&eacute;gu L. Plant polyphenols: chemical properties biological activities, and   synthesis. Angew Chem Int Ed. 2011;50:586-621.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0124-4108201400010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 2. Botero ML, Ricaurte S, Monsalve C, Rojano B. Capacidad reductora de 15 frutas tropicales. Scientia Technica. 2007;33:295-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0124-4108201400010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 3. Gaviria C, Ochoa C, S&aacute;nchez N, Medina C, Lobo M, Galeano P, et al. Actividad antioxidante e inhibici&oacute;n de la peroxidaci&oacute;n   lip&iacute;dica de extractos de frutos de morti&ntilde;o (<i>Vaccinium meridionale</i> Sw). Blacpma. 2009;8:519-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0124-4108201400010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 4. Ninfali P, Mea G, Giorgini S, Rocchi M, Bacchiocca M. Antioxidant capacity of vegetables, spices and dressings relevant to   nutrition. Br J Nutr. 2005;93:257-66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0124-4108201400010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 5. Choksi RB, Boylston WH, Rabek JP, Widger WR, Papaconstantinou J. Oxidatively damaged proteins of heart mitochondrial   electron transport complexes. Biochim Biophys Acta. 2004;1688:95-101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0124-4108201400010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 6. Rojano B, Zapata K, Cort&eacute;s F. Capacidad atrapadora de radicales libres de <i>Passiflora mollissima </i>(Kunth) L.H. Bailey (curuba).   Rev Cubana Plantas Med. 2012;17:408-19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0124-4108201400010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 7. Mart&iacute;nez-Lazcano JC, Boll-Woehrlen MC, Hern&aacute;ndez-Melesio MA, Rubio-Osornio M, S&aacute;nchez-Mendoza MA, R&iacute;os C, et al.   Radicales libres y estr&eacute;s oxidativo en las enfermedades neurodegenerativas. Mensaje Bioquim. 2010;34:43-59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0124-4108201400010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 8. Halliwell B, Whiteman M. Measuring reactive species and oxidative damage in vivo and in cell culture: how should you do it   and what do the results mean? Br J Pharmacol. 2004;142:231-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0124-4108201400010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 9. Prior RL, Wu X, Schaich K. Standardized methods for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and   dietary supplements. J Agr Food Chem. 2005;53:4290-302.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0124-4108201400010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 10. Jacobo-Velazquez DA, Cisneros-Zevallos L. Correlations of antioxidant activity against phenolic content revisited: a new   approach in data analysis for food and medicinal plants. J Food Sci. 2009;74:R107-R13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0124-4108201400010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 11. US. Department of Agriculture, Agricultural Research Service. Oxygen radical absorbance capacity (ORAC) of selected   foods, release 2. Beltsville: Nutrient Data Laboratory; 2010. 46p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0124-4108201400010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 12. Prior RL, Hoang H, Gu L, Wu X, Bacchiocca M, Howard L, et al. Assays for hydrophilic and lipophilic antioxidant capacity   (oxygen radical absorbance capacity (ORAC<sub>FL</sub>) of plasma and other biological and food samples. J Agr Food Chem.   2003;51:3273-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0124-4108201400010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 13. Jim&eacute;nez-&Aacute;lvarez D, Giuffrida F, Vanrobaeys F, Golay PA, Cotting C, Lardeau A, et al. High-throughput methods to assess   lipophilic and hydrophilic antioxidant capacity of food extracts in vitro. J Agr Food Chem. 2008;56:3470-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0124-4108201400010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 14. Huang D, Ou B, Hampsch-Woodill M, Flanagan JA, Deemer EK. Development and validation of oxygen radical absorbance   capacity assay for lipophilic antioxidants using randomly methylated beta-cyclodextrin as the solubility enhancer. J Agr Food   Chem. 2002;50:1815-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0124-4108201400010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  15. Singleton Vl, Rossi JA. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. AJEV.   1965;16:144-58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0124-4108201400010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 16. Ou B, Hampsch-Woodill M, Prior R. Development and validation of an improved oxygen radical absorbance capacity assay   using fluorescein as the fluorescent probe. J Agr Food Chem. 2001;49:4619-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0124-4108201400010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 17. Naranjo M, V&eacute;lez T, Rojano B. Actividad antioxidante de caf&eacute; colombiano de diferentes calidades. Rev Cubana Plantas Med.   2011;16:164-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0124-4108201400010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 18. Dhawan K, Dhawan S, Sharma A. <i>Passiflora</i>: a review update. J Ethnopharmacol. 2004;94:1-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0124-4108201400010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 19. Vasco C, Ruales J, Kamal-Eldin A. Total phenolic compounds and antioxidant capacities of major fruits from Ecuador. Food   Chem 2008;111:816-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0124-4108201400010000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 20. Contreras-Calder&oacute;n J, Calder&oacute;n-Jaimes L, Guerra-Hern&aacute;ndez E, Garc&iacute;a-Villanova B. 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Epriliati I, Ginjom IR. Bioavailability of phytochemicals. In: Rao V, ed. Phytochemicals: a global perspective of their role in   nutrition and health. Rijeka: In Tech, 2011. p. 401-28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0124-4108201400010000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 34. Mart&iacute;nez JR, Izquierdo M. La capacidad antioxidante de la dieta espa&ntilde;ola, la rueda de los alimentos antioxidantes. Madrid:   Sociedad Espa&ntilde;ola de Diet&eacute;tica y Ciencias de los Alimentos; 2005. &#91;citado noviembre de 2013&#93;. 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