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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Propiedades antioxidantes de extractos de curuba (Passiflora mollisima Bailey) en crema de leche]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Background: Milk fat contributes to flavors of dairy products and contributes to fat-soluble vitamins absorption. However, it is susceptible to oxidation reactions that result in a decrease in the quality of products. Objective: To evaluate the antioxidant capacity of the milk cream supplemented with 0.40, 0.60 and 0.80 % w/w of Banana Passion Fruit extracts and oxidative stability during 25 days of storage at 4ºC. Materials and Methods: Lipid peroxidation was evaluated by the TBARS method. The antioxidant capacity was determined by DPPH, ORAC-H, ORAC-L and Folin-Ciocalteu assays. Results: Treatments improved significantly (p<0.05) the oxidative stability of the cream during 25 days of storage, the presence of 0.40, 0.60 and 0.80% w/w curuba extract reduced production of malondialdehyde by 6, 15 and 22% respectively compared to control, the antioxidant power of the supplemented samples was higher than control. In the sensory evaluation was found difference between the cream with and without extract. Conclusions: Banana Passion Fruit extract retards the oxidation process of the cream and may be associated with the antioxidant capacity of the product.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">     <p align="right"> <b>INVESTIGACI&Oacute;N</b></p>     <p align="right">doi: <a href="http://dx.doi.org/10.17533/udea.penh.v16n2a06" target="_blank">10.17533/udea.penh.v16n2a06</a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="4">Propiedades antioxidantes de extractos de curuba (<i><i>Passiflora mollisima</i></i> Bailey) en crema de leche</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="3"> Antioxidant properties of curuba extracts (<i><i>Passiflora mollisima</i></i> Bailey) in milk cream</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b>Clara In&eacute;s Ochoa Ospina<sup>1</sup>; Jos&eacute; Uriel Sep&uacute;lveda Valencia<sup>1</sup>; Mar&iacute;a E. Maldonado<sup>2</sup>; Karol Zapata Acosta<sup>1</sup>; Benjam&iacute;n Alberto Rojano<sup>1</sup></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>1 Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n, Colombia. <a href="mailto:brojano@unal.edu.co">brojano@unal.edu.co</a>.</p>     <p> 2 Grupo Impacto de los Componentes de los Alimentos en la Salud, Escuela de Nutrici&oacute;n y Diet&eacute;tica, Universidad de Antioquia. Calle 70   N&deg; 52-21, Medell&iacute;n, Colombia.</p>     <p>&nbsp;</p>      <p>Como citar este art&iacute;culo: Ochoa CI, Sep&uacute;lveda JU, Maldonado ME, Zapata K, Rojano BA. Propiedades antioxidantes de extractos de curuba <i>(<i>Passiflora mollisima</i></i> Bailey) en crema de leche. Perspect Nutr Humana. 2014;16: 186-199.</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><i>Fecha de recepci&oacute;n: 15 de junio de 2014; Fecha de aprobaci&oacute;n: 6 de septiembre de 2014</i></p>      <p>&nbsp;</p> <hr noshade size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>Antecedentes</b>: la grasa l&aacute;ctea contribuye al sabor y aroma de los productos l&aacute;cteos y ayuda a absorber   las vitaminas liposolubles. Sin embargo es susceptible a reacciones de oxidaci&oacute;n, que traen   como consecuencia una disminuci&oacute;n en la calidad de los productos. <b>Objetivo</b>: evaluar la capacidad   antioxidante de la crema de leche suplementada con 0,40 0,60 y 0,80% p/p de extracto de curuba   y la estabilidad oxidativa durante 25 d&iacute;as de almacenamiento a 4&ordm;C. <b>Materiales y m&eacute;todos</b>: para   evaluar la oxidaci&oacute;n lip&iacute;dica se determin&oacute; el valor TBAR. La capacidad antioxidante se comprob&oacute;   mediante las t&eacute;cnicas DPPH, ORAC-H, ORAC-L y Folin Ciocalteu. <b>Resultados</b>: los tratamientos   mejoraron significativamente la estabilidad oxidativa de la crema de leche (p&lt;0,05) durante los   25 d&iacute;as de almacenamiento, la presencia de 0,40; 0,60 y 0,80% p/p de extracto de curuba redujo la   producci&oacute;n de malondialdehido con respecto el blanco en un 6, 15 y 22% respectivamente, el poder   antioxidante de las muestras suplementadas fue superior al del blanco. En la evaluaci&oacute;n sensorial   se encontr&oacute; diferencia entre la crema de leche con y sin extracto. <b>Conclusiones</b>: el extracto de   curuba retrasa el proceso de oxidaci&oacute;n de la crema de leche y puede estar asociado a la capacidad antioxidante del producto.</p>     <p> <b>Palabras clave</b>: <i>Passiflora mollisima</i>, crema de leche, productos l&aacute;cteos, antioxidantes, peroxidaci&oacute;n   lip&iacute;dica.</p> <hr noshade size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>ABSTRACT</b></p>     <p><b>Background</b>: Milk fat contributes to flavors of dairy products and contributes to fat-soluble vitamins absorption. However,   it is susceptible to oxidation reactions that result in a decrease in the quality of products. <b>Objective</b>: To evaluate   the antioxidant capacity of the milk cream supplemented with 0.40, 0.60 and 0.80 % w/w of Banana Passion Fruit   extracts and oxidative stability during 25 days of storage at 4&ordm;C. <b>Materials and Methods</b>: Lipid peroxidation was evaluated   by the TBARS method. The antioxidant capacity was determined by DPPH, ORAC-H, ORAC-L and Folin-Ciocalteu   assays. <b>Results</b>: Treatments improved significantly (p&lt;0.05) the oxidative stability of the cream during 25 days   of storage, the presence of 0.40, 0.60 and 0.80% w/w curuba extract reduced production of malondialdehyde by 6,   15 and 22% respectively compared to control, the antioxidant power of the supplemented samples was higher than   control. In the sensory evaluation was found difference between the cream with and without extract. <b>Conclusions</b>:   Banana Passion Fruit extract retards the oxidation process of the cream and may be associated with the antioxidant capacity of the product.</p>     <p> <b>Keywords:</b> <i>Passiflora mollisima</i>, milk cream, dairy products, antioxidants, lipid peroxidation.</p> <hr noshade size="1">     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>La leche es un alimento complejo cuyo consumo   confiere una serie de beneficios para la salud, como   el &aacute;cido graso linol&eacute;ico conjugado (CLA), los &aacute;cidos   grasos omega-3 (n-3) con capacidad protectora contra   algunas enfermedades cr&oacute;nicas no-transmisibles,   como las enfermedades cardiovasculares, la obesidad,   la diabetes, la osteoporosis, entre otras. Contribuye   a la formaci&oacute;n &oacute;sea y mejora el funcionamiento   del sistema inmunol&oacute;gico (1-2). Adem&aacute;s, los l&iacute;pidos de   la leche son una importante fuente energ&eacute;tica (3-4) y   son transportadores de vitaminas liposolubles. As&iacute;   mismo, son responsables de las propiedades f&iacute;sicas,   son determinantes de las caracter&iacute;sticas de fabricaci&oacute;n   y cualidades sensoriales de los productos l&aacute;cteos   terminados (5). Por otro lado, son los componentes   m&aacute;s variables tanto en concentraci&oacute;n como en composici&oacute;n.</p>     <p> La crema de leche es un derivado l&aacute;cteo con un   alto contenido de grasa, utilizado no solo como   ingrediente para la fabricaci&oacute;n de muchos productos   alimenticios, sino para el consumo directo. Sin   embargo, al igual que otras emulsiones de aceite   en agua, puede sufrir reacciones de oxidaci&oacute;n   (6). Los procesos oxidativos son responsables del   deterioro de los alimentos, los cuales producen   alteraciones en la calidad nutricional y tambi&eacute;n   provocan aroma y sabor desagradables. En los l&iacute;pidos   la oxidaci&oacute;n es esencialmente una reacci&oacute;n   en cadena de los radicales libres que involucra etapas de iniciaci&oacute;n, propagaci&oacute;n y terminaci&oacute;n.</p>     <p> Los &aacute;cidos grasos insaturados se oxidan para formar   hidroper&oacute;xidos inestables, inodoros e ins&iacute;pidos,   que se descomponen para formar compuestos   m&aacute;s vol&aacute;tiles, como los aldeh&iacute;dos y cetonas de cadenas   cortas, muchos de los cuales contribuyen con   los malos sabores de los productos l&aacute;cteos (7), por   lo tanto la estabilidad oxidativa de la leche y los productos   l&aacute;cteos son de gran inter&eacute;s para la industria   l&aacute;ctea (8). Inhibir el progreso de oxidaci&oacute;n de l&iacute;pidos   es un factor clave en el mantenimiento de la calidad   de los alimentos (7), con el fin de prevenir o retrasar   el deterioro oxidativo, los antioxidantes han sido   ampliamente utilizados. En la actualidad los antioxidantes   sint&eacute;ticos, como el BHA, BHT y TBHQ, son   los m&aacute;s utilizados en la industria de los alimentos y   dem&aacute;s, sin embargo existe preocupaci&oacute;n respecto   a su seguridad, el butilhidroxianisol (BHA) y el butilhidroxitolueno   (BHT) han exhibido efectos adversos   a la salud, como el aumento del colesterol, hepatomegalia   e inducci&oacute;n de c&aacute;ncer hep&aacute;tico, entre otros   (9-10). Por ello se ha dirigido el inter&eacute;s hacia el hallazgo   y adici&oacute;n de antioxidantes naturales, como   vitamina C y E, carotenoides, tocoferoles y flavonoides,   debido a que se consideran m&aacute;s seguros,   inocuos, act&uacute;an a bajas concentraciones y adem&aacute;s   de inhibir la oxidaci&oacute;n, pueden tener efectos positivos sobre la salud (11-13).</p>     <p> Dado los antecedentes, las frutas frescas, sus jugos   y extractos tienen potencial para ser utilizados   como ingredientes funcionales en la industria alimentaria,   incluyendo el sector l&aacute;cteo. La adici&oacute;n   de antioxidantes a la crema de leche se hace con   el objetivo de retardar los procesos de rancidez,   disminuir la posibilidad de generaci&oacute;n de compuestos   t&oacute;xicos, evitar la decoloraci&oacute;n de los pigmentos,   disminuir la p&eacute;rdida de valor nutricional   causada por la degradaci&oacute;n de los &aacute;cidos grasos   esenciales y por la destrucci&oacute;n de las vitaminas   A, E y D, adem&aacute;s de que estos compuestos naturales   refuerzan la actividad de los sistemas antioxidantes   end&oacute;genos, aportando una protecci&oacute;n extra para el estr&eacute;s oxidativo.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La curuba (<i>Passiflora mollisima</i> B) originaria de   Am&eacute;rica y cultivada en Colombia durante todo el   a&ntilde;o, pertenece a la familia <i>Pasiflor&aacute;cea</i> del g&eacute;nero   Passiflora y especie <i>mollisima</i> (14). Varios estudios   han demostrado que la curuba posee una capacidad   antioxidante alta, expresada por diferentes   metodolog&iacute;as. Hallazgos hechos en los &uacute;ltimos   diez a&ntilde;os en Am&eacute;rica y el Caribe posicionan a la   curuba larga (<i>Passiflora mollisima</i>) en el primer lugar   en cuanto a actividad antioxidante y contenido   fen&oacute;lico, con valores muy superiores a los reportados   para frutas de alta ingesta en el pa&iacute;s, como   el mango, la mora, la fresa, la guayaba, el lulo, la   papayuela, el tomate de &aacute;rbol, el mel&oacute;n, el maracuy&aacute;,   la uchuva, la granadilla, la sand&iacute;a y la pi&ntilde;a   (15-17). Sin embargo, sus propiedades antioxidantes   no han sido investigadas en una matriz   alimenticia como la crema de leche. El objetivo   de este estudio fue evaluar el efecto de extractos   de curuba (<i>Passiflora mollisima</i> Bailey) sobre la estabilidad oxidativa de la crema de leche.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p> <b>Preparaci&oacute;n de la crema de leche:</b> se prepararon   lotes de 10 kg de crema de leche con un   contenido de materia grasa del 35%. La mezcla   fue pasterizada, homogenizada y enfriada. Posteriormente   se adicion&oacute; el extracto de curuba hasta   obtener concentraciones finales de 0,40; 0,60 y   0,80% p/p, como blanco se utiliz&oacute; crema de leche   de igual formulaci&oacute;n y proceso pero sin adici&oacute;n   del extracto. Las muestras se almacenaron a 4&deg;C   durante 25 d&iacute;as. Se procedi&oacute; mediante un dise&ntilde;o   completamente al azar con tres repeticiones,   utilizando tres niveles de extracto de curuba y un   blanco. Los an&aacute;lisis fueron realizados cada cinco d&iacute;as durante el almacenamiento.</p>     <p> <b>M&eacute;todo de extracci&oacute;n de la fase hidrof&iacute;lica y   lipof&iacute;lica de la crema de leche:</b> para extraer las   fracciones hidrof&iacute;lica y lipof&iacute;lica de las muestras   de crema de leche se emple&oacute; el m&eacute;todo descrito   por Stefanov (18). A la fase hidrof&iacute;lica de la crema   se le determin&oacute; el contenido de fenoles totales   y se evalu&oacute; la capacidad antioxidante mediante la   aplicaci&oacute;n de las metodolog&iacute;as DPPH y ORAC, las   cuales se detallar&aacute;n m&aacute;s adelante. El seguimiento   de la oxidaci&oacute;n a la fase lipof&iacute;lica se realiz&oacute; mediante el valor TBARS.</p>     <p>  <b>Caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica de la crema de   leche:</b> se realizaron pruebas de acidez por titulaci&oacute;n   con NaOH 0,1N, utilizando como indicador   fenolftale&iacute;na (AOAC 942.15, 1996) (19), el contenido   de cenizas se determin&oacute; por gravimetr&iacute;a en   mufla a 300&deg;C, hasta peso constante (20). Materia   grasa se llev&oacute; a cabo por el m&eacute;todo de Babcock   (AOAC 989.04) (20), la determinaci&oacute;n de prote&iacute;nas   se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de Kjeldahl seg&uacute;n   Norma T&eacute;cnica Colombiana NTC 4657 (21), los   minerales por el m&eacute;todo de espectrofotometr&iacute;a   ultravioleta (UV) NTC-4981 (22) para f&oacute;sforo y   por espectrofotometr&iacute;a de absorci&oacute;n at&oacute;mica (AA) NTC-5151 para calcio (23).</p>     <p> <b>Determinaci&oacute;n de az&uacute;cares:</b> se llev&oacute; a cabo   seg&uacute;n el protocolo de Borroto (24). Se utiliz&oacute; un   cromat&oacute;grafo l&iacute;quido (Shimadzu, LC-20AD), equipado   con un autoinyector SIL-20A /HT, un m&oacute;dulo   de comunicaci&oacute;n CBM-20A y un detector con &iacute;ndice de refracci&oacute;n (RID-10 A). La separaci&oacute;n de los az&uacute;cares se llev&oacute; a cabo en una columna BIORAD (Aminex HPX-87H); el corrido fue isocr&aacute;tico, empleando &aacute;cido sulf&uacute;rico 5mM con un flujo de 0,6 mL/min.</p>     <p> <b>Determinaci&oacute;n de &aacute;cido asc&oacute;rbico:</b> la determinaci&oacute;n   de &aacute;cido asc&oacute;rbico se cuantific&oacute; usando la   metodolog&iacute;a de Rizzolo (25), por medio de HPLC   (Shimadzu, LC-20AD), equipado con un autoinyector   SIL-20A /HT, un m&oacute;dulo de comunicaci&oacute;n   CBM-20A y un detector con arreglo de fotodiodos   (PDA) SPD-M20A, empleando una longitud de   onda de 245 nm. La separaci&oacute;n del &aacute;cido asc&oacute;rbico   se llev&oacute; a cabo en una columna C-8; el corrido   fue isocr&aacute;tico, empleando &aacute;cido f&oacute;rmico 0,1% con un flujo de 0,8 mL/min.</p>     <p> <b>Determinaci&oacute;n de fenoles totales:</b> se realiz&oacute; por   el m&eacute;todo colorim&eacute;trico Follin-Ciocalteu (26), se   construy&oacute; una curva patr&oacute;n usando como est&aacute;ndar &aacute;cido g&aacute;lico. A la fase hidrof&iacute;lica de la crema se le adicion&oacute; agua destilada, reactivo de Follin- Ciocalteu y una soluci&oacute;n de bicarbonato de sodio al 7,1%, las lecturas se realizaron a una longitud de onda de 760 nm en un espectrofot&oacute;metro Genesys 20 y los resultados son expresados como GAE (Equivalentes de &aacute;cido g&aacute;lico: mg de &aacute;cido g&aacute;lico / 100 L soluci&oacute;n).</p>     <p> <b>Actividad atrapadora del radical libre DPPH:</b>   se emple&oacute; el m&eacute;todo de Brand-Williams (27) con   algunas modificaciones. Se eval&uacute;o la capacidad   de las muestras para atrapar el radical DPPH, por   medio de la disminuci&oacute;n en la absorbancia le&iacute;da,   luego de 30 min de reacci&oacute;n a una longitud de onda   de 517 nm. En un tubo de ensayo se adicion&oacute; la   fase hidrof&iacute;lica de la crema y soluci&oacute;n de DPPH.   Los resultados se expresaron como valores TEAC   (Trolox equivalent antioxidant capacity: &mu;mol Trolox   / L soluci&oacute;n) mediante la construcci&oacute;n de una curva patr&oacute;n usando Trolox como antioxidante.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b>M&eacute;todo ORAC (Oxygen radical absorbance   capacity):</b> este m&eacute;todo eval&uacute;a la capacidad de   una muestra para atrapar los radicales peroxilos   (ROO&bull;) responsables de la decoloraci&oacute;n de la   sonda fluorescente fluoresce&iacute;na. Se us&oacute; el m&eacute;todo   descrito por Ou (28), para el ORAC-H y Wu   (29) para el ORAC-L, ambas metodolog&iacute;as con   algunas modificaciones: 30 &mu;L de la muestra por   evaluar fueron adicionados a 2899 &mu;L de Buffer   fosfato de sodio 75 mM - pH 7,4 (PBS), 21 &mu;L de   fluoresce&iacute;na 10 mM preparada en PBS y 50 &mu;L   de AAPH 0,6 M en PBS (generador de radicales),   la temperatura de reacci&oacute;n se ajust&oacute; a 37&deg;C y el   pH a 7,4. Las cin&eacute;ticas de decoloraci&oacute;n se realizaron   mediante medidas en un espectrofluor&iacute;metro   Perkin Elmer LS-55, durante 3.600 segundos, a un &lambda; de excitaci&oacute;n 493 nm y <i>slit</i> de excitaci&oacute;n 10, &lambda; de emisi&oacute;n 515 nm y <i>slit</i> de emisi&oacute;n 15 con placa atenuadora al 1%. El efecto protector antioxidante fue calculado usando las diferencias entre las &aacute;reas de decoloraci&oacute;n en presencia y ausencia de  la muestra comparada con la curva patr&oacute;n (presencia de Trolox). Los resultados son expresados en funci&oacute;n del patr&oacute;n primario como &mu;mol Trolox equivalente / L soluci&oacute;n para ORAC-H, y en &mu;mol Trolox / 100 g de aceite para ORAC-L, de acuerdo con la siguiente ecuaci&oacute;n:</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/penh/v16n2/v16n2a6e1.jpg"></p>     <p> Donde AUC=&Aacute;rea bajo la curva de la muestra,   AUC&deg;=&Aacute;rea bajo la curva del control (ausencia de   muestral), y AUCTrolox=&Aacute;rea bajo la curva usando   Trolox como muestra referencia, f=factor de   diluci&oacute;n de los extractos y &#91;Trolox&#93;=Concentraci&oacute;n   molar del patr&oacute;n usado Trolox. Para el ensayo   ORAC-H se prepar&oacute; la muestra diluyendo un   peso conocido en agua ultrapura, para el ensayo   ORAC-L se encapsul&oacute; la muestra diluy&eacute;ndola en acetona y &beta;-metil-ciclodextrina al 7%.</p>     <p> <b>Determinaci&oacute;n del contenido de sustancias   reactivas con el &aacute;cido 2-tiobarbit&uacute;rico (TBARS):</b>   se llev&oacute; a cabo mediante el procedimiento descrito   por Stephan (30). En un tubo de reacci&oacute;n se   adicion&oacute; la fase lipof&iacute;lica de la crema, reactivo de   TBA (&aacute;cido 2- tiobarbit&uacute;rico 0,7%) y reactivo TCA   (&aacute;cido tricloroac&eacute;tico 15%), se agit&oacute; y se llev&oacute; a   un ba&ntilde;o de agua a 90&deg;C. Posteriormente se enfri&oacute;   en agua-hielo y se le adicion&oacute; butanol, el complejo   fluorescente formado fue le&iacute;do en un espectrofl&uacute;orimetro   Perkin Elmer LS 55, a un &lambda; de excitaci&oacute;n   de 500 nm y <i>slit</i> de excitaci&oacute;n 5, de emisi&oacute;n   550 nm y <i>slit</i> de emisi&oacute;n 15. Los resultados son   expresados como equivalentes de malondialdehido (MDA) (nmol/ g de muestra).</p>     <p> <b>Evaluaci&oacute;n sensorial:</b> se realiz&oacute; una prueba   triangular (ISO, 4.120:2004) (31) con un total de   36 panelistas para evaluar las diferencias significativas   perceptibles causadas por la adici&oacute;n del   extracto de curuba a la crema de leche en las   concentraciones de 0,40; 0,60 y 0,80% p/p en el   d&iacute;a 25. Cada panelista recibi&oacute; tres muestras codificadas:   dos eran el mismo tratamiento y una era   diferente. Se les pidi&oacute; seleccionar la muestra que era diferente.</p>     <p> <b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico:</b> se realiz&oacute; an&aacute;lisis de varianza   (ANOVA) y m&iacute;nima diferencia significativa   (LDS), con el paquete estad&iacute;stico SAS 9.2. Las   regresiones lineales se realizaron en el paquete   estad&iacute;stico STATGRAPHICS Centurion XV. Un   p&lt;0,05 fue seleccionado como el criterio de diferencias significativas.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>RESULTADOS</b></font></p>     <p><b> Caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica</b></p>     <p> Los resultados de la caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica   se presentan en la <a href="#t1">tabla 1</a>. El contenido de calcio   vari&oacute; entre 685 y 750 mg/kg y el contenido de f&oacute;sforo   vari&oacute; entre 559 y 589 mg/kg. Las cremas de   leche presentaron porcentajes de prote&iacute;na similares   y sin diferencias estad&iacute;sticamente significativas   (p&gt;0,05). Los valores en el &iacute;ndice de acidez fueron   de 0,20; 0,26; 0,28 y 0,31% de &aacute;cido l&aacute;ctico para el   blanco y los tratamientos a 0,40; 0,60 y 0,80% respectivamente.   No se presentaron diferencias significativas   entre el contenido de az&uacute;cares de las muestras   tratadas (p&gt;0,05), pero s&iacute; existieron diferencias   de estas y el blanco y los tratamientos. Los valores   variaron entre 19359,4 y 10644,8 (o 19359,4 y   10644,8) mg/L para sacarosa, 308,0 y 730,4 mg/L   para glucosa y 185,9 y 759,2 mg/L para fructosa. El   comportamiento de los az&uacute;cares determinados no   muestra ninguna tendencia entre los tratamientos   y el blanco, en el blanco el contenido de glucosa y   fructosa fue menor que para los tratamientos, mientras   que en el contenido de sacarosa el menor valor lo present&oacute; el tratamiento 0,80% p/p.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/penh/v16n2/v16n2a6t1.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>  <b>Determinaci&oacute;n de fenoles totales</b></p>     <p> El contenido de fenoles totales (CFT) presentes en   los diferentes tratamientos durante los d&iacute;as de almacenamiento   se muestra en la <a href="#f1">figura 1</a>. Durante   el almacenamiento todos los tratamientos presentaron   diferencias estad&iacute;sticamente significativas   (p&lt;0,05) entre ellos, excepto los tratamientos 0,60   y 0,80% (p&gt;0,05). Se observ&oacute; una disminuci&oacute;n gradual   en el CFT en todos los tratamientos durante   los primeros 15 d&iacute;as de almacenamiento, pero los   valores aumentan el d&iacute;a 20 con valores m&aacute;ximos   de (213,3 &plusmn; 32,9), (266,3 &plusmn; 10,4) y (321,2 &plusmn; 8,9) mg, &aacute;cido G&aacute;lico/L para 0,40; 0,60 y 0,80% p/p respectivamente. Entre los tratamientos 0,40 y 0,60% para el d&iacute;a 25 no hubo diferencias estad&iacute;sticas significativas, sin embargo todos los tratamientos presentaron diferencias con el control (p&lt;0,05).</p>     <p align="center"><a name="f1"></a><img src="/img/revistas/penh/v16n2/v16n2a6f1.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <b>M&eacute;todo ORAC</b></p>     <p> Los resultados para el ensayo ORAC-H se   muestran en la <a href="#f2">figura 2</a>. Los valores variaron entre   1396,5 y 1978,6 &mu;mol Tx.L-1 para el blanco,   2825,7 y 3502,4 &mu;mol Tx.L-1 para el tratamiento   0,40%, 3087,4 y 3591,4 &mu;mol Tx.L-1 para el tratamiento   0,60% y 4681,7 y 3928,0 &mu;mol Tx.L-1   para el tratamiento 0,80%. Existen diferencias   estad&iacute;sticamente significativas entre el blanco   y los tratamientos en cuanto a su valor ORAC   (p&lt;0,05), mientras que los tratamientos 0,40 y   0,60% p/p no mostraron diferencia estad&iacute;stica   (p&gt;0,05). La capacidad antioxidante disminuye   los primeros 15 d&iacute;as de almacenamiento. El   tratamiento 0,80% exhibi&oacute; el mejor potencial antioxidante   seguido del tratamiento 0,60; 0,40 por ciento p/p y el blanco.</p>     <p align="center"><a name="f2"></a><img src="/img/revistas/penh/v16n2/v16n2a6f2.jpg"></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Los resultados para el ensayo ORAC-L en la fracci&oacute;n   lipof&iacute;lica se muestran en la <a href="#f3">figura 3</a>. Los valores   ORAC-L variaron entre 214,3 y 77,3 &mu;mol Trolox /   100 g para el blanco, 252,3 y 92,1 &mu;mol Trolox   / 100 g para 0,40% p/p, 285,9 y 97,3 &mu;mol Trolox /   100 g para 0,60% p/p y 411,3 y 104 &mu;mol Trolox   / 100 g para 0,80% p/p. Una disminuci&oacute;n continua  en los valores ORAC-L se observ&oacute; en todos los tratamientos durante el tiempo de almacenamiento, presentando diferencias estad&iacute;sticamente significativas (p&lt;0,05). El tratamiento 0,80% p/p exhibi&oacute; los valores m&aacute;s altos en todo el periodo de almacenamiento, con una diferencia significativa con respecto al blanco (p&gt;0,05), mientras que los tratamientos 0,40 y 0,60% p/p no mostraron diferencias significativas (p&lt;0,05).</p>     <p align="center"><a name="f3"></a><img src="/img/revistas/penh/v16n2/v16n2a6f3.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <b>Ensayo DPPH</b></p>     <p> El efecto de los tratamientos sobre la capacidad   atrapadora del radical DPPH se muestra en la <a href="#f4">figura   4</a>. Todas las cremas de leche con adici&oacute;n de   extracto de curuba presentaron mayor actividad antioxidante   que el blanco durante todo el periodo de   almacenamiento, con diferencias estad&iacute;sticamente   significativas (p&lt;0,05), mostrando un efecto m&aacute;s intenso   el tratamiento 0,80% p/p. Para los tratamientos   se observ&oacute; una disminuci&oacute;n de la inhibici&oacute;n del   DPPH los primeros 15 d&iacute;as de almacenamiento y   posteriormente se present&oacute; un incremento significativo   entre los d&iacute;as 15 y 25 (p&lt;0,05). El blanco no   exhibi&oacute; ning&uacute;n efecto sobre la capacidad atrapadora   del radical DPPH entre los d&iacute;as 0 y 20 (p&gt;0,05),   al final del tiempo de almacenamiento se observ&oacute; un peque&ntilde;o incremento en el valor TEAC.</p>     <p align="center"><a name="f4"></a><img src="/img/revistas/penh/v16n2/v16n2a6f4.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <b>Determinaci&oacute;n del contenido de sustancias   reactivas con el &aacute;cido 2-tiobarbit&uacute;rico (TBARS)</b></p>     <p> La <a href="#f5">figura 5</a> muestra el efecto de los diferentes   tratamientos y el blanco sobre la formaci&oacute;n de   las sustancias reactivas con el &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico   (TBARS) en las cremas de leche durante el   almacenamiento. Un incremento continuo del   valor TBARS fue observado en todas las muestras.   La muestra blanco alcanz&oacute; al final del almacenamiento   el valor m&aacute;s alto de TBARS, seguido   de las muestras suplementadas con 0,40; 0,60 y 0,80% p/p de extracto, respectivamente. Los tratamientos no mostraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre ellos (p&gt;0,05).</p>     <p align="center"><a name="f5"></a><img src="/img/revistas/penh/v16n2/v16n2a6f5.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p> <b>Evaluaci&oacute;n sensorial</b></p>     <p> La <a href="#t2">tabla 2</a> muestra los resultados para los tratamientos   por medio del n&uacute;mero de respuestas   correctas y el valor-p con base en las tablas de   Roessler y Watts (32) con un criterio de diferencias   significativas p&lt;0,05. El panel sensorial no fue capaz   de discriminar entre el tratamiento 0,40% p/p   y el blanco (p&gt;0,05). Se observaron diferencias   significativas en los tratamientos 0,60 y 0,80% p/p   con respecto al blanco (p&lt;0,05).</p>     <p align="center"><a name="t2"></a><img src="/img/revistas/penh/v16n2/v16n2a6t2.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p>  Los resultados obtenidos en el presente estudio   fueron equiparables con investigaciones anteriores,   la caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica arroj&oacute; resultados   comparables con los reportados en la literatura,   los valores de calcio fueron similares a los   reportados por Olafur y colaboradores (33) y el   contenido de f&oacute;sforo estuvo ligeramente por debajo   del valor reportado por los mismos autores. Esta   informaci&oacute;n permite catalogar al producto final   como una fuente importante de minerales, dado   que la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS)   recomienda una ingesta diaria de calcio y f&oacute;sforo de aproximadamente 800 y 700 mg respectivamente.   De la misma manera el contenido proteico   est&aacute; acorde con la informaci&oacute;n reportada por la   literatura (34), generalmente las cremas presentan   alrededor de 2% de prote&iacute;na (34-35), estos resultados   demuestran que este producto no es una   buena fuente proteica, sin embargo constituye un   ingrediente importante para otorgar propiedades texturizantes al producto terminado.</p>     <p> El contenido de cenizas est&aacute; por debajo del valor   reportado por algunas investigaciones Pachecho   Delahaye (36) que obtuvieron valores de 0,97%.   Todas las cremas de leche presentaron un porcentaje   de grasa de 35%, valor m&iacute;nimo permitido   por la normativa colombiana (Resoluci&oacute;n 2310 de   1986), adem&aacute;s se verific&oacute; que la adici&oacute;n del extracto   de curuba no afecta el contenido de grasa   inicial de la crema. La acidez en las cremas suplementadas   se da como resultado de la adici&oacute;n del   extracto de fruta, se sabe que la curuba es fuente   importante de taninos condensados que otorgan   astringencia, y es fuente importante de &aacute;cido   asc&oacute;rbico de 61,5 mg/100 g de fruta fresca (17),   ambos metabolitos no solo son responsables del   sabor del producto sino que tienen comprobada acci&oacute;n antioxidante.</p>     <p> El comportamiento antioxidante durante el almacenamiento   fue diverso. El CFT de las muestras   con y sin tratamiento presentaron un declive y   posterior aumento durante el almacenamiento,   esto puede deberse a que una matriz alimenticia   con ingredientes vegetales experimenta en los   primeros d&iacute;as de almacenaje un alto consumo   end&oacute;geno celular de metabolitos antioxidantes,   como defensa a las especies reactivas celulares   que se est&aacute;n generando producto del estr&eacute;s   ambiental, en ese punto se dice que el alimento   est&aacute; en su m&iacute;nima capacidad antioxidante, sin   embargo al transcurrir el tiempo y al aparecer la   adaptaci&oacute;n celular a las condiciones exteriores, se  comienza a evidenciar un aumento en los niveles   de compuestos polifen&oacute;licos y en consecuencia   de la actividad antioxidante, se ha sabido por investigaciones   anteriores que las alimentos con   ingredientes vegetales que se almacenan durante   periodos prolongados incrementan sus niveles   de az&uacute;cares reductores a lo que se refieren como ''edulcorante en almacenamiento'', estos compuestos son utilizados como precursores para la s&iacute;ntesis de compuestos polifen&oacute;licos futuros (36). Otros autores afirman que un aumento en la actividad fenil alanina monoliasa, que se traduce en un incremento en la concentraci&oacute;n de compuestos polifen&oacute;licos (37), junto con el bajo nivel de actividad polifenoloxidasa, pueden reducir la oxidaci&oacute;n de sustratos fen&oacute;licos a quinonas, e influir en los altos niveles de estos compuestos durante el almacenamiento (38). Estas mismas explicaciones pueden ser utilizadas para concluir sobre el comportamiento de la capacidad antioxidante de las muestras durante el almacenamiento, valor DDPH y valor ORAC- &mu;molH. Se sabe que la capacidad antioxidante de una muestra est&aacute; determinada por el contenido polifen&oacute;lico de la misma, un CFT elevado generalmente se asocia con una mayor capacidad antioxidante (DPPH y ORAC-H). El coeficiente de correlaci&oacute;n entre el valor ORAC-H y el CFT fue positivo y cercano a la unidad (r=0,85, p&lt;0,05), y el coeficiente de correlaci&oacute;n entre el valor DPPH el CFT fue de (r=0,96, p&lt;0,05). La t&eacute;cnica DPPH mide el poder de los fenoles de neutralizar radicales libres por el m&eacute;todo de transferencia electr&oacute;nica (SET), adem&aacute;s favorece la solubilizaci&oacute;n de metabolitos en medios org&aacute;nicos. El m&eacute;todo ORAC, por su parte, eval&uacute;a la capacidad de los fenoles de neutralizar especies radicalarias por el m&eacute;todo de transferencia de un &aacute;tomo de hidrogeno (HAT), adem&aacute;s favorece la solubilizaci&oacute;n de metabolitos en medios acuosos, es decir que ambas metodolog&iacute;as son necesarias para determinar el poder global antioxidante de una muestra. Los tratamientos presentaron mayor actividad antioxidante que el blanco, lo que es de esperarse debido al aporte de fitoqu&iacute;micos del extracto de curuba. Zulueta y su equipo (39) determinaron la capacidad antioxidante de diferentes leches comerciales por el m&eacute;todo ORAC y obtuvieron valores de 13606,0 &micro;M equivalentes Trolox para leche entera UHT y 14124,0 &micro;M equivalentes Trolox para leche entera pasteurizada. Estos valores difieren de los obtenidos para las cremas de leche porque estas &uacute;ltimas presentan un elevado contenido de fase grasa, en la cual se hallan importantes componentes antioxidantes, como las vitaminas A, E y el &beta;-caroteno (39).</p>     <p> Una matriz con un elevado poder antioxidante   presenta varias ventajas desde el punto de vista   comercial y farmacol&oacute;gico, primero se constituye   como un alimento funcional dado su aporte antioxidante,   el cual ha sido ampliamente asociado   con el mejoramiento de la salud del consumidor,   y segundo puede retrasar los procesos oxidativos   de un alimento y evitar alteraciones o el desarrollo   de aromas y sabores desagradables, que son   puntos clave en t&eacute;rminos de calidad. Esta &uacute;ltima   premisa se verific&oacute; mediante el ensayo TBARS,   que mide la cantidad de hidroper&oacute;xidos y aldeh&iacute;dos,   tales como malondialdehido (MDA), indicadores   de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica. Todas las muestras   presentaron un comportamiento creciente del valor   TBARS con el tiempo, indicando que la oxidaci&oacute;n   lip&iacute;dica es un fen&oacute;meno inherente al almacenamiento   de una emulsi&oacute;n, no obstante, el aumento   de la cantidad de curuba suplementada implica   una disminuci&oacute;n del valor TBARS comparado con   la muestra blanco. El mismo comportamiento fue   observado por otros autores (40), quienes evaluaron   la capacidad antioxidante del isoespintanol en   mantequilla y reportaron una buena relaci&oacute;n dosisrespuesta   con el aumento de las concentraciones   del isoespintanol. Aunque las muestras suplementadas   con extracto de curuba presentaron menor   producci&oacute;n de MDA en el tiempo, la metodolog&iacute;a   ORAC-L permite comprobar que a medida que se   agotan los antioxidantes se produce el MDA.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Finalmente la evaluaci&oacute;n sensorial permiti&oacute; concluir   que los panelistas son capaces de identificar   el producto emergente y diferenciarlo del blanco   siempre y cuando se usen cantidades del extracto   superiores a 0,60% p/p. No solo es necesario mejorar   las propiedades de estabilidad del producto   sino tambi&eacute;n verificar el nivel de agrado del consumir   frente al producto, esto si se tienen miras de   mercado. El buen aroma y el sabor fueron algunas   de las propiedades destacadas por los panelistas.   Es necesario aclarar que la utilidad pr&aacute;ctica de   esta investigaci&oacute;n es la elaboraci&oacute;n de un producto   tipo crema de leche saborizado, que no solo sea   agradable sensorialmente al consumidor, sino que   le otorgue bondades nutrac&eacute;uticas, y que presente   estabilidad oxidativa. Los resultados aqu&iacute; obtenidos   permiten concluir que el extracto de curuba   podr&iacute;a ser un sustituto de antioxidantes sint&eacute;ticos,   o bien un ingrediente en la preparaci&oacute;n industrial   de ciertas alimentos. En ambos casos mejorar&aacute;   el poder end&oacute;geno antioxidante de la matriz y, en   consecuencia, le ayudar&aacute; al retroceso de sus fen&oacute;menos   oxidativos y finalmente le otorga un valor   nutrac&eacute;utico importante.</p>     <p> En conclusi&oacute;n, la presencia del extracto de curuba   en la crema de leche es beneficiosa, pues incrementa   el poder antioxidante del producto final y   retarda los procesos oxidativos de la fase lip&iacute;dica   de la emulsi&oacute;n, mejorando as&iacute; no solo las propiedades   organol&eacute;pticas del producto sino nutrac&eacute;uticas.   Gracias al valor agregado del producto podr&iacute;a   enmarcarse dentro de la definici&oacute;n de alimento   funcional. Las concentraciones estudiadas del   extracto de curuba fueron capaces de proteger la   crema de leche contra la oxidaci&oacute;n. El tratamiento   0,80% present&oacute; significativamente mejor actividad   antioxidante en los ensayos DPPH, ORAC   y TBARS y el mayor contenido de fenoles totales   durante el tiempo de almacenamiento. Adem&aacute;s   los panelistas percibieron diferencias en las cremas   de leche que estuvieron bajo tratamiento de   0,60 y 0,80% p/p frente a la crema de leche sin   tratar; por ello esta dosis es recomendada para el   tratamiento del producto en cuesti&oacute;n.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font size="3"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p> A la Direcci&oacute;n de Investigaciones de la Universidad   Nacional de Colombia, sede Medell&iacute;n.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>REFERENCIAS </b></font></p>     <!-- ref --><p>1.  Nagao KT, Yanagita T. Conjugated fatty acids on food and their health benefits. J Biosci Bioeng. 2005;100:152-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0124-4108201400020000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 2. Haug A, Hostmark AT, Harstad OM. Bovine milk in human nutrition-a review. Lipids Health Dis. 2007;6:25-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0124-4108201400020000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 3. Calligaris S, Manzocco L. Nicoli MC. Effect of heat-treatment on the antioxidant and pro-oxidant activity of milk. Int Dairy J.   2004;14:421-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0124-4108201400020000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 4. Lopez C. Milk fat globules enveloped by their biological membrane: Unique colloidal assemblies with a specific composition   and structure. Curr Opin Colloid Interface Sci. 2011;16:391-404.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0124-4108201400020000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 5. Bauman DE, Griinari JM. Regulation and nutritional manipulation of milk fat: low-fat milk syndrome. Livest Prod Sc.   2001;70:15-29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0124-4108201400020000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 6. Bandyopadhyay M, Chakraborty R, Raychaudhuri U. Antioxidant activity of natural plant sources in dairy dessert (Sandesh)   under thermal treatment. LWT-Food Sci Tech. 2008;41:816-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0124-4108201400020000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  7. O'Connor TP, O'Brien NM. Lipid oxidation. In: Fox PF. Advanced dairy chemistry. New York: Springer; 2005. vol 2., p.557-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0124-4108201400020000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 8. Smet K, Raes K, De Block J, Herman L, Dewettinck K, Coudijzer K. A change in antioxidative capacity as a measure of onset   to oxidation in pasteurized milk. Int Dairy J. 2008;18:520-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0124-4108201400020000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 9. Wanasundara UN, Shahidi F. Antioxidant and pro-oxidant activity of green tea extracts in marine oils. Food Chem.   1998;63:342-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0124-4108201400020000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 10. Barlow SM. Toxicological aspects of antioxidants used as food additives. In: Hudson BJF, ed. Food antioxidant. Amsterdam:   Elsevier Science Publishing; 1990. p. 253-307.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0124-4108201400020000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 11. Proestos C, Chorianopoulos N, Nychas GJE, Komaitis M. RP-HPLC analysis of the phenolic compounds of plant extracts   investigation of their antioxidant capacity and antimicrobial activity. J Agr Food Chem. 2005;53:1190-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0124-4108201400020000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 12. Hussain A, Anwar F, Sherazi STH, Przybylski R. Chemical composition, antioxidant and antimicrobial activities of basil (Ocimumbasilicum)   essential oils depends on seasonal variations. Food Chem. 2008;108:986-95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0124-4108201400020000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 13. Miliauskas G, Mulder E, Linssen JP, Houben JH, van Beek TA, Venskutonis PR. Evaluation of antioxidative properties of   <i>Geranium macrorrhizum</i> and Potentillafruticosa extracts in Dutch style fermented sausages. Meat Sci. 2007;77:703-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0124-4108201400020000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 14. &Aacute;ngulo-Carmona R. Frutales ex&oacute;ticos de clima fr&iacute;o. Bogot&aacute;: Bayer Crop Science SA; 2003. p. 120-31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0124-4108201400020000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 15. Contreras-Calder&oacute;n J, Calder&oacute;n-Jaimes L, Guerra-Hern&aacute;ndez E, Garc&iacute;a-Villanova B. Antioxidant capacity, phenolic content   and vitamin C in pulp, peel and seed from 24 exotic fruits from Colombia. Food Res Int. 2010;44:2047-53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0124-4108201400020000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 16. Vasco C, Ruales J, Kamal-Eldin A. Total phenolic compounds and antioxidant capacities of major fruits from Ecuador. Food   Chem. 2008;111:816-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0124-4108201400020000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 17. Zapata S, Piedrahita A, Rojano B. Capacidad atrapadora de radicales ox&iacute;geno (ORAC) y fenoles totales de frutas y hortalizas   de Colombia. Perspect Nutr Humana. 2014;16(1):25-36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0124-4108201400020000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 18. Stefanov I, Vlaeminck B, Fievez V. A novel procedure for routine milk fat extraction based on dichloromethane. J Food Comp   Anal. 2010;23:852-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0124-4108201400020000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 19. Association of Official Analytical Chemists. Official methods of analysis. Basic calculations for chemical and biological analyses.   Arlington, VA: AOAC; 1996.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0124-4108201400020000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 20. Association of Official Analytical Chemists. Official methods of analysis of AOAC International.15&deg; ed. Arlington, VA:   AOAC; 1990.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0124-4108201400020000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 21. Instituto Colombiano de Normas T&eacute;cnicas y Certificaci&oacute;n. Norma t&eacute;cnica colombiana 4657. Alimento para animales. Determinaci&oacute;n   del contenido de nitr&oacute;geno y c&aacute;lculo del contenido de prote&iacute;na cruda. M&eacute;todo Kjeldahl. Bogot&aacute;: Icontec; 1999.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0124-4108201400020000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 22. Instituto Colombiano de Normas T&eacute;cnicas y Certificaci&oacute;n. Norma t&eacute;cnica colombiana 4657. Alimento para animales. Determinaci&oacute;n   del contenido de f&oacute;sforo. M&eacute;todo Espectrofotom&eacute;trico. Bogot&aacute;: Icontec; 2001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0124-4108201400020000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 23. Instituto Colombiano de Normas T&eacute;cnicas y Certificaci&oacute;n. Norma t&eacute;cnica colombiana 4657. Alimento para animales. Determinaci&oacute;n   de los contenidos de calcio, cobre, hierro, manganeso, potasio, sodio y zinc. M&eacute;todo usando espectrometr&iacute;a de   absorci&oacute;n at&oacute;mica. Bogot&aacute;: Icontec; 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0124-4108201400020000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 24. Borroto J. Contenido de carbohidratos asociados al crecimiento y desarrollo de cuatro variedades de ca&ntilde;a de az&uacute;car (Saccharumsp).   Agron Costarr. 2003;27:91-100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0124-4108201400020000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 25. Rizzolo A, Brambilla A. Evaluation of sampling and extraction procedures for the analysis of ascorbic acid from pear fruit   tissue. Food Chem. 2002;77:257-62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0124-4108201400020000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  26. Singleton VL, Rossi JA. Colorimetry of total phenolic with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. Am J Enol   Viticult. 1999;16:144-58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0124-4108201400020000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 27. Brand-Williams W, Cuvelier ME, Berset C. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. LWT-Food Sci Technol.   1995;28:25-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0124-4108201400020000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 28. Ou B, Hampsch-Woodill M, Prior R. Development and validation of an improved oxygen radical absorbance capacity assay   using fluorescein as the fluorescent probe. J Agr Food Chem. 2001;49:4619-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0124-4108201400020000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 29. Wu X. Development of a data base for total antioxidant capacity in foods: a preliminary study. J Food Comp Anal. 2004;17:407-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0124-4108201400020000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 30. Stern S, Potter T, Neun B. HEP G2 hepatocyte lipid peroxidation assay: NCL method, GTA-4 version 1.0. Frederick, MD:   National Cancer Institute. Nanotechnology Characterization Laboratory; 2006. 9p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0124-4108201400020000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 31. British Standard ISO. Sensory analysis methodology triangle test: 4120:2004. 2 ed. London: ISO: 2004. 15p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0124-4108201400020000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 32. Roessler EB, Warren J, Guymon JF. Significance in triangular test. Food Res. 1948;13:503.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0124-4108201400020000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 33. Olafur R. Minerals and trace elements in Icelandic dairy products and meat. J Food Compos Anal. 2011;24:980-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S0124-4108201400020000600033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 34. Pacheco de Delahaye E, Rojas A, Salinas N. Caracterizaci&oacute;n f&iacute;sico-qu&iacute;mica de cremas de leche. Fac Agron. 2008;25:303-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0124-4108201400020000600034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 35. Salinas N, La-Rosa Y. Estudio sobre algunos cambios qu&iacute;micos y fisicoqu&iacute;micos en un alimento de origen c&aacute;rnico Caracas:   C.I.T. Informaci&oacute;n Tecnol&oacute;gica; 1987. p.13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0124-4108201400020000600035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 36. Shabboo A, Salihin AB. Changes in yogurt fermentation characteristics, and antioxidant potential and in vitro inhibition of   angiotensin-1 converting enzyme upon the inclusion of peppermint, dill and basil. LWT-Food Sci Technol. 2011;44:1458-64.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0124-4108201400020000600036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 37. Shetty K, Randhir R, Shetty P. Functional foods and biotechnology: bioprocessing strategies to enhance L-DOPA and phenolic   antioxidants in fava bean (<i>Vicia faba</i>). 2 ed. Boca Raton: Taylor &amp; Francis Group/CRC Press; 2005.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S0124-4108201400020000600037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 38. Cantos E, Tudela JA, Gil MI, Espin JC. Phenolic compounds and related enzymes are not rate-limiting in browning development   of fresh-cut potatoes. J Agric Food Chem. 2002;50:3015-23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0124-4108201400020000600038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 39. Zulueta A, Maurizi A, Frigola A, Esteve MJ, Coli R, Burin G. Antioxidant capacity of cow milk, whey and deproteinized milk.   Int Dairy J. 2009;19:380-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0124-4108201400020000600039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 40. Rojano B, Saez J, Schinella G, Quijano J, V&eacute;lez E, Gil A, et al Experimental and theoretical determination of the antioxidant   properties of isoespintanol (2-Isopropyl-3,6-dimethoxy-5-me thylphenol). J Mol Struct. 2008;877:1-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0124-4108201400020000600040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>&nbsp;</p> </font>      ]]></body><back>
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