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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EVALUACIÓN DEL CONTENIDO DE NUTRIENTES Y PRODUCCIÓN DE BIOMASA EN CEPAS DE LEVADURA COLOMBIANAS Y COMERCIALES]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In the present study biomass production and nutrient (selenium, total carbohydrate and microbial protein) were evaluated in both commercial and native yeast isolates from the Colombian Germplasm Bank managed by the Colombian Corporation of Agricultural Research, CORPOICA. In an initial phase, three randomly chosen yeast isolates were grown under different conditions of pH, temperature and time of fermentation using liquid malt extract culture medium. The best responses in biomass yield were observed at a pH of 4.5, or temperature of 25 °C and a fermentation period of 24 hours. Using these conditions, 100 native and 4 commercial yeast isolates, were evaluated for their biomass production, content of selenium, total carbohydrates and microbial protein and nutrient intake. According to these variables, a cluster analysis was used to distribute the 104 isolates in homogeneous groups. Great variability in biomass production was observed among isolates, probably due to the existing biological variability in the population studied. Biomass yields varied from 0.101 to 0.480 g of biomass/ g of sugar consumed and rate of biomass production ranged between 0.040 to 0.185 g L-1 h-1. Average nutrient intake (g of consumed nutrients/ g of available nutrients) was of 91.6% in the case of carbohydrates and of 17.8% in the case of protein. Ten yeast isolates with superior growth and nutrient content were identified for future screening for prebiotic and probiotic potential.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>EVALUACIÓN   DEL CONTENIDO DE NUTRIENTES Y PRODUCCIÓN DE BIOMASA EN CEPAS DE LEVADURA   COLOMBIANAS Y COMERCIALES</b></font></p>     <p><i><font size="4"><b><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">EVALUATION   OF THE NUTRIENT CONTENT AND BIOMASS PRODUCTION IN COLOMBIAN AND COMMERCIAL   YEAST STRAINS</font></b></font></i></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Nohora Patricia Manovacía Moreno<sup>1</sup>;   Angélica María Moreno Cárdenas<sup>2</sup>; Olga Lucía Mayorga Mogollón<sup>3</sup>;   Rolando Barahona Rosales<sup>4</sup></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup><b><i>1</i></b> </sup><i>Joven Investigadora. COLCIENCIAS –   Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria, CORPOICA, CI Tibaitatá,   km 14 vía a Mosquera, Cundinamarca, Colombia. &lt;<a href="mailto:patico1511@gmail.com">patico1511@gmail.com</a>&gt;    <br>     <sup><b>2</b> </sup>Joven Investigadora. COLCIENCIAS   – Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria, CORPOICA, CI Tibaitatá,   km 14 vía a Mosquera, Cundinamarca, Colombia. &lt;<a href="mailto:angie1130@gmail.com">angie1130@gmail.com</a>&gt;    <br>   <sup><b>3</b></sup> Investigadora. Corporación   Colombiana de Investigación Agropecuaria, CORPOICA, CI Tibaitatá, km 14 vía a   Mosquera, Cundinamarca, Colombia. &lt;<a href="mailto:lmayorga@corpoica.org.co">lmayorga@corpoica.org.co</a>&gt;    <br>   <sup><b>4</b></sup> Profesor Asociado. Universidad   Nacional de Colombia, Sede Medellín. Facultad de Ciencias Agropecuarias. A.A.   1779. Medellín, Colombia. &lt;<a href="mailto:rbarahonar@unalmed.edu.co">rbarahonar@unalmed.edu.co</a>&gt;</i></font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Recibido: Agosto 22 de 2007;   Aceptado: Junio 24 de 2008.</b></font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Resumen.</i></b><i> En el presente estudio se evaluó la producción de biomasa,   el contenido de algunos nutrientes (selenio, carbohidratos totales y proteína   microbiana) y el consumo de sustrato de cepas de levaduras comerciales y   nativas pertenecientes al Banco de Germoplasma de la Nación Colombiana,   manejado por la Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria, CORPOICA.   Inicialmente se determinó el crecimiento de tres levaduras nativas   seleccionadas al azar bajo diferentes condiciones de pH, temperatura y tiempo   de fermentación usando un medio líquido de extracto de malta. Dentro de estas   condiciones, las mejores respuestas se observaron a pH de 4,5, 25 °C y 24 horas de   fermentación. Usando estas condiciones se evaluaron 100 accesiones  de levaduras nativas y 4 comerciales por su   producción de biomasa, contenido de selenio, carbohidratos totales y proteína   microbiana y consumo de sustratos. De acuerdo con estas variables y un análisis   de conglomerados fue posible agrupar las levaduras en grupos homogéneos. Hubo   elevada variabilidad en la producción de biomasa entre las 104 cepas evaluadas,   probablemente debido a la variabilidad biológica existente en la población   estudiada. Los rendimientos de biomasa variaron entre 0,101 y 0,480 g de biomasa g<sup>-1</sup> de azúcar consumido y las velocidades de producción de biomasa oscilaron entre   0,040 y    0,185 g   L<sup>-1</sup> h<sup>-1</sup>. El consumo promedio de nutrientes (g de   nutrientes consumidos/ g de nutrientes disponibles) fue de 91,6% en el caso de   los carbohidratos y de 17,8% en el caso de la proteína. Se identificaron diez   cepas de superior crecimiento y contenido de nutrientes, cuyo potencial   prebiótico y probiótico será evaluado en futuros ensayos In vivo.</i></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Palabras   claves:</b> Levaduras, producción de biomasa, selenio, proteína microbiana, carbohidratos   totales.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Abstract.</i></b><i> In   the present study biomass production and nutrient (selenium, total carbohydrate   and microbial protein) were evaluated in both commercial and native yeast   isolates from the Colombian Germplasm Bank managed by the Colombian Corporation   of Agricultural Research, CORPOICA. In an initial phase, three randomly chosen   yeast isolates were grown under different conditions of pH, temperature and   time of fermentation using liquid malt extract culture medium. The best   responses in biomass yield were observed at a pH of 4.5, or temperature of    25 °C and a fermentation   period of 24 hours. Using these conditions, 100 native and 4 commercial yeast   isolates, were evaluated for their biomass production, content of selenium,   total carbohydrates and microbial protein and nutrient intake. According to   these variables, a cluster analysis was used to distribute the 104 isolates in   homogeneous groups. Great variability in biomass production was observed among   isolates, probably due to the existing biological variability in the population   studied. Biomass yields varied from 0.101 to 0.480 g of biomass/ g of   sugar consumed and rate of biomass production ranged between 0.040 to 0.185 g L<sup>-1</sup> h<sup>-1</sup>. Average nutrient intake (g of consumed nutrients/ g of   available nutrients) was of 91.6% in the case of carbohydrates and of 17.8% in   the case of protein. Ten yeast isolates with superior growth and nutrient   content were identified for future screening for prebiotic and probiotic   potential.</i></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Key words:</b> Native yeast isolates, yeast biomass   production, selenium, protein, carbohydrates.</font></p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En los sistemas pecuarios es   frecuente el uso de antibióticos para el control de diferentes patógenos o como   promotores del crecimiento de los animales (FEDESA, 1999; Castro y Rodríguez,   2005). Sin embargo, dicho uso ocasiona residualidad en los productos de consumo   humano que puede relacionarse con el surgimiento de resistencia de los   patógenos a los antibióticos de uso común en la salud humana (Castro y   Rodríguez, 2005).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En muchos países la prohibición del   uso de antibióticos en dietas para animales ha contribuido con la creciente   aparición en el mercado de varios productos diseñados para reemplazarlos. Así,   en el mercado mundial de productos funcionales para la salud de humanos y   animales que se estimó recientemente en 50 billones de dólares al año (Hilliam,   2003), la mayor parte está siendo acaparada por productos de carácter   prebiótico, probiótico y simbiótico. Con la inclusión de estos en las dietas se   pretende aumentar la actividad y el número de especies microbianas benéficas en   la flora del tracto intestinal, reducir parcial o totalmente el uso de   antibióticos y favorecer el rendimiento animal. Sin embargo, estos nuevos   productos son generalmente de alto costo económico lo que limita su uso en los   sistemas colombianos de producción animal. Desde esta perspectiva adquiere   importancia la realización de estudios que contribuyan con la generación   nacional de productos prebióticos y prebióticos con efectos positivos   demostrados en la producción animal y en el valor agregado de los productos   lácteos y cárnicos.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Entre los microorganismos con gran   potencial probiótico se encuentran algunas especies bacterianas del género <i>Lactobacilli</i> y <i>Bifidobacteria</i> y las levaduras. En la comunidad científica ha venido   ganando interés el uso de <i>Saccharomyces boulardii</i> para controlar los   patógenos de la diarrea <i>Clostridium difficile, Vibrio cholerae</i> y <i>Enterobacteriaceae</i> (Gismondo <i>et al.</i>, 1999; Elmer y McFarland, 2001). El papel de las   levaduras, particularmente de <i>S. cerevisiae</i>, como probiótico para aves y   cerdos, ha recibido la atención de muchos investigadores, con resultados   prometedores basados en los efectos probioticos (exclusión competitiva de   patógenos) (Nurmi y Rantala, 1973) o en la oferta de minerales como el selenio   o el cromo que no son fácilmente disponibles a los animales en sus formas   inorgánicas (Zelenka y Fajmonova, 2005). En rumiantes con el suministro de levaduras   inactivas y/o levaduras vivas se han registrado aumentos en el consumo   (Williams <i>et al.</i>, 1991), la ganancia de peso (Yoon y Stern, 1996), la   producción de leche (Kellems <i>et al.</i>, 1990; Williams <i>et al.</i>, 1991;   Wohlt <i>et al.</i>, 1991; Piva <i>et al.</i>,   1993) y mejoras en la composición de la leche (Williams <i>et al.</i>, 1991;   Wohlt <i>et al.</i>, 1991). Estas respuestas han sido atribuidas a un estimulo   del crecimiento y de la actividad de las bacterias celulolíticas y utilizadoras   del lactato en el rumen, aumento de la digestión de fibra y en el flujo de la   proteína microbiana desde el rumen (Martin y Nisbet, 1992; Newbold <i>et al.</i>,   1996).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Estas características hacen que las   levaduras sean consideradas microorganismos de gran promesa para cumplir las   funciones de probióticos y prebióticos. La gran diversidad de levaduras   existentes en Colombia (muchas de las cuales están conservadas en el Banco de   Germoplasma de Microorganismos con Interés en Control Biológico manejado por   CORPOICA) mejora aún mas las perspectivas del uso de esta alternativa.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los estudios realizados por   CORPOICA han reportado el uso efectivo de algunas de estas levaduras en el   control biológico de fitopatógenos de poscosecha en frutas y hortalizas (Cotes <i>et     al.,</i> 2004) y han mostrado ser de gran interés para el control de <i>Botrytis, Rhizopus </i>y<i> Alternaria</i>. Sin embargo, aún no se ha investigado a profundidad su   inclusión en la formulación de prebióticos y probioticos para ser utilizados   como aditivos en nutrición animal. El presente estudio tuvo como propósito   evaluar tanto cepas nativas como comerciales con el fin de identificar aquellas   con características promisorias para ser utilizadas en la generación de   productos prebióticos y probioticos, contribuyendo a mejorar la competitividad   del productor colombiano en el mercado nacional e internacional.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><font size="3">MATERIALES   Y MÉTODOS</font></b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Cepas   de levaduras evaluadas</i></b><i> <b>y medios de cultivo</b></i><b>. </b>Para el estudio se seleccionaron   cien aislados de levaduras nativas pertenecientes al Banco de Germoplasma de   Microorganismos con Interés en Control Biológico de CORPOICA. Estas levaduras   fueron aisladas de muestras de frutas [lulo (<i>Solanum quitoense</i> Lam),   durazno (<i>Prunus persica</i>), curuba (<i>Passiflora mollisima</i> HBK   Bailey), manzana (<i>Malus domestica</i>), pera (<i>Pyrus communis</i>),   ciruela (<i>Prunus domestica</i>) y mora (<i>Rubus glaucus</i> Bent)], cebolla   (<i>Allium cepa</i>), melaza, panela ó suelo provenientes de diferentes   regiones de Colombia, principalmente de los departamentos de Boyacá, Antioquia,   Cundinamarca y Huila (Sánchez <i>et al.,</i> 2000). Como controles se   incluyeron cuatro productos comerciales a base de la levadura <i>Sacharomyces     cereviceae</i>.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De acuerdo con los lineamientos del   Laboratorio de Manejo Integrado de Plagas de CORPOICA (Corredor, 2002) y con el   fin de garantizar la viabilidad de los aislados, las levaduras se conservaron   en agua destilada estéril, en viales que se sellaron herméticamente con tapones   de butilo y agrafe de aluminio y se almacenaron a 4 °C. Estos viales se   utilizaron como la fuente inicial de inóculo en todos los experimentos   relacionados en este estudio.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La activación de los aislados se   llevó a cabo en cajas de petri que contenían medio sólido agar/ extracto de   malta<b>, </b>con 0,3% de extracto de   levadura, 3% de extracto de malta, 1% de dextrosa, 0,5% de peptona y 2% de   agar-agar en 1 L de agua. Para el crecimiento de las levaduras se utilizó medio   líquido de extracto de malta (YM), de igual composición al medio descrito   anteriormente con la diferencia que el extracto de malta se agregó sólo al   0,3%.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La curva de crecimiento se calculó   midiendo la absorbancia de los diferentes cultivos a diferentes tiempos (0, 2,   4, 6, 8, 10, 12, 18 y 24 horas) durante incubación en un espectrofotómetro   Milton Roy Spectronic 601. Con el fin de determinar la longitud de onda que   permite medir con mayor precisión el crecimiento las lecturas de absorbancia se   realizaron a 540, 570 y 620 nm. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Determinación del efecto de la   temperatura, el pH y el tiempo de incubación sobre el crecimiento de las   levaduras</i>. </b>En una primera fase se   realizó un ensayo con tres aislados de levadura (042, 068 y 155) seleccionados   al azar para determinar el efecto de cambios en el pH del medio de cultivo, la   temperatura y del tiempo de incubación. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El efecto del pH en el crecimiento   de las levaduras se evaluó en dos experimentos. En el primero los aislados 042,   068 y 155 fueron distribuidos en seis tubos de ensayo que contenían medio   líquido YM, con diferentes valores de pH de acuerdo con la escala sugerida por   Aguirre (2003): 4,5; 5,0; 5,5; 6,0; 6,5 y 7,0. Los tubos se incubaron a 25 °C   durante 24 horas. Con el fin de corroborar las observaciones del primer   experimento en un segundo ensayo se creció el aislado 042 en medio de cultivo   con pH de 4,5 y 5,5, a 25 °C durante 30 horas, realizando   lecturas de absorbancia a una longitud de onda de 540 nm.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para medir el efecto de la   temperatura en la cinética de crecimiento, se incubaron las levaduras en medio   liquido YM a pH 4,5 a 25, 30 y 35 °C durante 36 horas. El crecimiento se   determinó midiendo la absorbancia a 540 nm.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Evaluación de la producción de biomasa   y el contenido de nutrientes seleccionados en una colección de levaduras nativas y comerciales</i>. </b>Para esta evaluación se crecieron los 104 aislados de   levaduras (100 nativas, 4 comerciales) bajo las condiciones en que en la fase   preliminar se obtuvieron los mayores rendimientos de biomasa con los aislados   042, 068 y 155. Para esto se utilizaron frascos de 500 mL de capacidad, los   cuales contenían 100 mL de medio de cultivo líquido YM a pH 4,5. La   concentración inicial de levaduras fue ajustada inicialmente en cada frasco a   1x10<sup>7 </sup>células mL<sup>-1</sup>. Las levaduras se incubaron a  25 ºC, con agitación constante de 150 rpm   durante 24 horas. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Finalizado el período de incubación   se determinaron las siguientes variables: concentración de células, producción   de biomasa, contenido de azúcares reductores y proteína bruta en el medio de   cultivo y contenido de proteína bruta, carbohidratos y selenio en las   levaduras. Para medir la concentración final de células se usó la técnica de   conteo en cámara de Neubauer. La biomasa producida se determinó secando en un   liofilizador Labconco durante 96 horas muestras de biomasa, de peso inicial   conocido y pesando el residuo final. De cada frasco, se analizó el sobrenadante   en cuanto a su contenido de azúcares reductores mediante el método de Somogy   (1952) y de proteína extracelular por el método de Lowry <i>et al.</i> (1951).   También se analizó la biomasa microbiana por su contenido de proteína por el   método de Lowry <i>et al.</i> (1951) y de carbohidratos totales por el método   de la antrona (Laurentin y Edwards, 2003). Para determinar el contenido de   selenio disponible se realizó una extracción de la fracción soluble e insoluble   en agua en los extractos de levaduras. Estas dos fracciones fueron sometidas a   hidrólisis ácida por microondas y se cuantificó el selenio en los hidrolizados   por espectrometría de absorción atómica con generación de hidruros (Chassaigne <i>et     al.,</i> 2002).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Análisis estadístico</i>. </b>En el estudio las variables analizadas fueron el contenido   de selenio, carbohidratos totales y proteína en la biomasa producida y el   contenido de azúcares reductores y de proteína en el sobrenadante obtenido al   final de la incubación. La información de la concentración y utilización de   nutrientes de los 104 aislados se analizó mediante el procedimiento Cluster   (algoritmo de Ward) del SAS (1989), el cual minimiza la varianza dentro de los   grupos y la maximiza entre los grupos. Mediante este procedimiento se   distribuyeron los aislados de levadura en cinco grupos. La variable producción   de biomasa únicamente se tuvo en cuenta en el análisis descriptivo, debido a   que presentó una correlación directa con todas las demás variables aportando,   por tanto, información redundante.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESULTADOS   Y DISCUSIÓN</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Selección de una longitud de onda   para medir el crecimiento espectrofotométricamente</i></b>. No hubo diferencias   entre las tres longitudes de onda, a pesar de que la absorbancia a 570 y 620 nm   fue en promedio 5% más baja que la observada a 540 nm. En los siguientes   experimentos de este estudio, se leyeron las muestras a 540 nm, una longitud de   onda comúnmente utilizada para la determinación de crecimiento por el método de   turbidimetría (Hernández <i>et al.,</i> 1979, Ariza y González, 1997).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Determinación del efecto de la   temperatura, el pH y el tiempo de incubación sobre el crecimiento de tres   aislados de levaduras</i>. </b>Hubo variabilidad en el   crecimiento de los tres aislados de levadura cuando se usaron en medios de   cultivo de diferente valor de pH (<a href="#fig01">Figura 1</a>), observándose mayor crecimiento a   pH 4,5 que en los otro cinco valores de pH evaluados (P&lt;0,05). Esto   corrobora los resultados de otros estudios donde se ha reportado que 4,5 es un   pH adecuado para el crecimiento de levaduras (Hernández <i>et al.,</i> 1979,   Ariza y González, 1997). Por su parte, García (2002) reportó que en medios   alcalinos se promueve el crecimiento de bacterias y se desfavorece el de las   levaduras. Al comparar entre aislados, el crecimiento del aislado 155 fue en   promedio menor al del 068 (P&lt;0,05) y el del aislado 042 fue similar al de   los otros dos aislados (P&gt;0,05).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig01"></a><img src="/img/revistas/rfnam/v61n2/a08fig01.gif">    <br>   Figura 1.</b> Determinación del efecto   del pH en el medio de cultivo sobre el crecimiento de tres aislados (042, 068 y   155) de levaduras nativas.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para corroborar estas observaciones   se realizó un experimento adicional donde se midió la cinética de crecimiento   del aislado 042 en medio de cultivo a pH 4,5 y 5,5 (<a href="#fig02">Figura 2</a>). En el análisis   de la cinética de crecimiento, se utilizó el modelo logístico cuyo ajuste a los   datos experimentales fue adecuado (r&gt;0,999 en ambos casos). Durante las   primeras 10 horas de incubación, hubo mayor crecimiento a pH de 4,5; siendo   este al menos 1,35 veces el observado a pH 5,5 (P&lt;0,05). Sin embargo, el   crecimiento se igualó hacia las 15 horas y a partir de ese momento no se   observaron diferencias entre cultivos hasta el final de la incubación (P&gt;0,05).   A pH 4,5; la duración de la fase Lag fue menor que a pH 5,5; corroborando la   mayor adaptación del aislado a pH 4,5. Estos resultados sugieren que 4,5 es un   valor de pH adecuado para las levaduras evaluadas en este estudio.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig02"></a><img src="/img/revistas/rfnam/v61n2/a08fig02.gif">    <br>   Figura 2</b>. Cinética de crecimiento   del aislado de levadura 042 en medio de cultivo a dos valores de pH, 25 °C y 30   horas de incubación.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El efecto de temperatura de   crecimiento se muestra en la <a href="#fig03">Figura 3</a>. Durante las primeras 24 h de incubación   el crecimiento de los aislamientos fue mayor cuando la incubación se llevó a   cabo a    25 °C   (P&lt;0,05). Además, en las cinéticas de crecimiento a 30 y 35 °C hubo una fase Lag mayor   que la observada a 25 °C,   donde el crecimiento fue inmediato. Durante las primeras 18 horas de   incubación, el crecimiento observado a 25 °C fue mayor que a las otras temperaturas,   en las que solo se alcanzó entre el 64 y 69% del crecimiento observado con 25 °C. Las levaduras crecidas   a 25 °C   alcanzaron su fase estacionaria hacia las 21 h, lo que permite realizar   experimentos mas cómodamente que a las otras temperaturas evaluadas. Estas   observaciones están de acuerdo con las mencionadas por Tovar <i>et al. </i>(2000).   Con base en estas observaciones la temperatura de incubación escogida para los   siguientes experimentos fue de   25 ºC.  A su vez, como se muestra en las <a href="#fig02">Figuras 2</a> y   <a href="#fig03">3</a>, el aislado 042 alcanzó su fase estacionaria a las 24 horas.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig03"></a><img src="/img/revistas/rfnam/v61n2/a08fig03.gif">    <br>   Figura 3. </b>Cinética de crecimiento del   aislado de levadura 042 a diferentes temperaturas de crecimiento en un medio de   cultivo a pH 4,5 durante 36 horas de incubación.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Evaluación de la producción de   biomasa y el contenido de nutrientes seleccionados en una colección de   levaduras nativas y comerciales.</i></b> La producción de biomasa   varió entre 0,97 y 4,44 mg de células secas mL<sup>-1</sup>  de medio de cultivo. Las levaduras de mayor   producción de biomasa fueron las nativas, con las levaduras comerciales   ocupando los lugares 24, 72, 80 y 84 en producción de biomasa. Cotes <i>et al.</i> (2004) expresaron que el aislado 027 al ser crecido en medio MLXOM en un   reactor de    20 L   a 30 °C   durante 24 horas, tuvo rendimientos en biomasa de 2,35 mg•mL<sup>-1</sup>. Esto sugiere que   al menos el 20% de los aislados de levadura nativos evaluados en el presente   estudio poseen capacidades de producción de biomasa promisorias desde el punto   de vista de la producción industrial.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El contenido de selenio varió entre   1,20 a 2,68 mg L<sup>-1</sup> de   medio de cultivo. El selenio es un elemento traza esencial con un papel   importante en la actividad de las enzimas relacionadas con la protección   antioxidante y el metabolismo de la hormona tiroidea (Rayman, 2000). Además   existe un creciente cuerpo de evidencia que señala que un consumo adecuado de   Se es efectivo para reducir el riesgo de cáncer en animales y humanos (Clak <i>et     al.,</i> 1996; Rayman <i>et al.</i>, 2003). Los contenidos de selenio   encontrados en este estudio son bajos, lo que obedeció al bajo contenido de   selenio en el medio de cultivo utilizado. Cuando las levaduras crecen en medios   enriquecidos con selenio pueden llegar a contener entre 1000 a 2000 mg de Se g<sup>-1</sup> de levadura   (Schrauzer, 2001, Hinojosa <i>et al.</i>, 2006) dada su alta capacidad de   bioabsorción de metales (Wang y Chen, 2006).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los contenidos de carbohidratos   totales y de proteína microbiana variaron entre 0,59 y 2,95 y entre 0,11 y 0,96 mg•mL<sup>-1</sup> de medio de cultivo,   respectivamente. Con base en los datos experimentales se calcularon los   rendimientos de biomasa, expresados como gramos de biomasa de levadura por   gramo de azúcar consumido. Estos valores variaron desde 0,101 a 0,436 g   biomasa/ g azúcar consumido. La velocidad de producción de biomasa varió desde   0,040 a 0,185 g L<sup>-1 </sup>h<sup>-1</sup>.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En esta fase de la experimentación   la concentración inicial de los azúcares reductores en el sobrenadante fue 1,03   g/100 ml de medio de cultivo. Después de 24 h de incubación, la concentración   de carbohidratos no consumida por las levaduras estuvo entre 0,02 y 0,34 g/100   ml de medio de cultivo y el consumo promedio de carbohidratos fue del 91,6%. Se   ha informado que las levaduras pueden utilizar fructosa, glucosa, maltosa,   sucrosa, maltotriosa y maltotetraosa. Generalmente la levadura remueve los   azúcares del medio en un orden estricto: la sucrosa es hidrolizada   extracelularmente por invertasas y es la primera en ser consumida, seguida de   la glucosa y fructosa, y finalmente maltosa, maltotriosa y maltotetraosa   (Hammond, 2002). El factor más importante para determinar la tasa de   fermentación es la tasa de utilización de la maltosa (Kedia <i>et al.</i>,   2007). La baja concentración de carbohidratos en el medio de cultivo observado   al final de la fermentación en el actual experimento sugiere que la   disponibilidad de azúcares fue limitante para la obtención de mayor producción   de biomasa por las levaduras. En futuros experimentos con estos aislados se   recomienda usar concentraciones más altas de carbohidratos para aumentar la   producción de biomasa. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La concentración inicial de   proteína en el medio de cultivo fue de 4,08 mg•mL<sup>-1</sup>. Al final de la   fermentación la concentración de proteína en el medio de cultivo varió entre   2,43 y 3,97 mg•mL<sup>-1</sup>de medio   de cultivo. En promedio la retención de proteína (medida como la diferencia   entre la concentración inicial y final de proteína en el medio de cultivo) fue   baja (17,8% de la concentración inicial). Es difícil especular en cuanto a la   causa de la diferencia entre el metabolismo de los carbohidratos y de la   proteína. Las fuentes de proteína incluidas en el medio (extracto de levadura,   peptona) son de adecuada disponibilidad por lo que deben descartarse problemas   de asimilación de proteína por las levaduras. Es más factible creer que la baja   retención de proteína obedeció a una combinación entre adecuada asimilación y   alta excreción de proteína o inadecuada retención de proteína asociada a la   limitada disponibilidad de energía.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con el fin de analizar la   variabilidad biológica encontrada en esta fase se realizó un análisis de   correlación entre las variables estudiadas. Dicho análisis mostró la gran   variabilidad biológica existente entre los aislados de levadura e hizo   evidentes las diferencias en eficiencia de uso de nutrientes entre los aislados   de levaduras estudiados. El coeficiente de correlación entre la producción de   biomasa y el contenido de carbohidratos totales en la biomasa fue de 0,83   (<a href="#fig04">Figura 4</a>). Este valor indica que estas variables se relacionan directamente y   que a mayor producción de biomasa los aislados de levadura tienen un mayor   contenido de carbohidratos totales. En promedio a cada gramo de carbohidrato   producido se asociaron 1,15 g de biomasa. </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig04"></a><img src="/img/revistas/rfnam/v61n2/a08fig04.gif">    <br>   Figura 4. </b>Correlación entre la   producción de biomasa y la de carbohidratos totales en los 104 aislados de   levadura evaluados.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La <a href="#fig05">Figura 5</a> muestra la correlación entre   la producción de biomasa y la producción de proteína microbiana, que tuvo un   coeficiente de correlación de 0,73; por lo que a mayor producción de biomasa,   mayor producción de proteína microbiana. En promedio, la producción de cada   gramo de proteína microbiana estuvo asociada con la producción de    2,02 g de biomasa.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="fig05"></a><img src="/img/revistas/rfnam/v61n2/a08fig05.gif">    <br>   Figura 5. </b>Correlación entre la   producción de biomasa y la de proteína microbiana en los 104 aislados de   levadura evaluados.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Por su parte, no se existió correlación   (P&gt;0,05) entre el contenido de selenio y las demás variables evaluadas en   este estudio. Cabe recordar que el medio utilizado en estos experimentos no fue   enriquecido con selenio, lo que seguramente limitó la expresión de la capacidad   de bioabsorción de selenio por los aislados evaluados. Las levaduras están   entre un grupo de organismos con alta capacidad de bioabsorción de metales,   incluyendo los pesados, y pueden efectivamente secuestrar rápida y   eficientemente iones metálicos a partir de  soluciones muy diluidas (Wang y Chen, 2006). Dado el alto valor agregado   de la absorción de selenio sobre el valor de las levaduras como suplemento para   humanos (Schrauzer, 2003; Clark <i>et al.</i>, 1996) y animales (Newbold <i>et     al.</i>, 1996), futuros estudios deberán ocuparse en identificar estas   diferencias en cepas de levaduras colombianas. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La correlación de la variable   carbohidratos en el sobrenadante con todas las otras variables tuvo   coeficientes muy bajos. Esto se debió a que casi todos los microorganismos   consumieron casi totalmente los azúcares disponibles en el medio de cultivo, lo   que probablemente afectó su crecimiento como se discutió anteriormente.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Finalmente, en las correlaciones   realizadas con la variable proteína en el sobrenadante, se observaron coeficientes   de correlación de 0,52 con la variable producción de biomasa y de 0,51 con la   variable producción de proteína microbiana. Los valores de ambas variables   aumentaron al aumentar el consumo de nitrógeno por las levaduras. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El análisis estadístico de los   resultados permitió identificar cuatro componentes (producción de biomasa y   contenido de selenio, carbohidratos y proteína en la biomasa de las levaduras),   cuya variabilidad explicó el 92% de la variabilidad total observada. Con base   en esos cuatro componentes, el procedimiento Cluster del programa SAS (1989)   distribuyó los 104 aislados en cinco grupos, cuyas medias para cada uno de los   componentes evaluados se muestra en la <a href="#tab01">Tabla 1</a>. Un rápido análisis de los datos   muestra que las levaduras con las mejores características se encuentran en los   grupos 2 y 4, de allí que la selección de aislados promisorios se centró en   ambos grupos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="tab01"></a>Tabla 1.</b> Valores promedio de la   producción de biomasa y contenido de nutrientes en los 5 grupos resultantes del   análisis de conglomerados de las 104 cepas de levaduras evaluadas, Fase 2.</font>    <br>   <img src="/img/revistas/rfnam/v61n2/a08tab01.gif"></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los diez aislados identificados   como promisorios para avanzar en la caracterización de su potencial probiótico   y/ o prebiótico en ensayos con animales se muestran en la <a href="#tab02">Tabla 2</a>. Es   importante resaltar las bondades observadas en los aislados nativos en cuanto a   producción de biomasa y contenido de carbohidratos y proteína. </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><a name="tab02"></a>Tabla 2.</b> Producción de biomasa y   contenido de nutrientes en las 10 levaduras sobresalientes de acuerdo al   análisis de conglomerados, teniendo en cuenta las variables contenido de   selenio y carbohidratos totales y producción de biomasa. Se incluye la levadura   comercial de mayor crecimiento. Las variables son mostradas sobre mL o sobre   litro de medio de cultivo al final de la incubación.</font>    <br>   <img src="/img/revistas/rfnam/v61n2/a08tab02.gif"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>CONCLUSIONES   Y RECOMENDACIONES</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Probablemente debido a la biodiversidad   existente en la población estudiada, hubo diferencias en la eficiencia de   asimilación y utilización de nutrientes entre los aislados de levadura   evaluados. En consecuencia, los aislados variaron en crecimiento, consumo de   proteína y contenido de carbohidratos, proteína y selenio. Esta variabilidad en   contenido de nutrientes posibilita la identificación de aislados de levaduras   para diferentes usos, tales como la producción de suplementos proteicos o la de   productos probióticos y/o prebióticos. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aunque en este ensayo, el mayor   crecimiento de las levaduras se obtuvo a pH 4,5; 25 °C de temperatura y 24   horas de fermentación, lo que está en concordancia con otras citas en la   literatura, es de esperar que dependiendo de la levadura, las condiciones   optimas de crecimiento puedan diferir de las aquí comentadas. En consecuencia,   para aumentar la tasa de crecimiento de alguna levadura en particular, deben   realizarse las evaluaciones de pH, temperatura y tiempo de incubación, a fin de   asegurar que se usan las adecuadas para dicho aislado.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las diez levaduras seleccionadas   por características superiores de crecimiento, producción de proteína y   acumulación de carbohidratos y selenio, deben ser evaluadas por su potencial   prebiótico y probiótico en estudios <i>In vivo</i> con animales monogástricos y   bovinos jóvenes. Estos experimentos <i>In vivo</i> son requeridos por varias   razones: (1) Determinar la posible patogenicidad de los aislados seleccionados,   pues es reconocido que algunas levaduras como <i>Cryptococcus neoformans</i> y   varias del género <i>Candida</i> son organismos oportunistas causantes de   enfermedades en humanos y animales (Hurley <i>et al.</i>, 1987); (2) Determinar   el impacto de la inclusión de las levaduras seleccionadas en las condiciones   colombianas, entre las que se deben mencionar temperatura, humedad relativa y   dieta, factores que afectan el crecimiento de organismos patógenos o alteran la   capacidad del animal para tolerarlos y (3) Determinar niveles óptimos de   inclusión de levaduras en la dieta y/o identificar puntos críticos en la vida   de los animales en los cuales dicha inclusión resulta benéfica.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En el presente estudio se evaluó   solamente una parte de la población de levaduras existente en Colombia. Por   ejemplo, en el Banco de Germoplasma de Microorganismos con Interés en Control   Biológico de CORPOICA se encuentran conservadas mas de 230 accesiones, por lo   que se recomienda que con los aislados aun no caracterizados, se adelanten   estudios similares al acá reportado.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los autores agradecen a COLCIENCIAS   por la financiación del proyecto “Desarrollo de productos derivados de la   fermentación de levadura para mejorar la eficiencia nutricional en   monogástricos y/o rumiantes en condiciones tropicales”, Código 7106-07-14967,   Convenio 401-2003, en cuya primera fase se originaron los resultados aquí   reportados. Especial reconocimiento a Dora Elisa Sánchez, Marilce Castro y   Elizabeth Martín, Investigadoras del Programa de Fisiología y Nutrición Animal   de CORPOICA, por su colaboración en la realización de este proyecto.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>BIBLIOGRAFÍA</b></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aguirre, A. 2003. Obtención de un   biopreparado a partir de cepas nativas de levadura para ser utilizado en   animales monogástricos. Universitas Scientiarum. Revista de la Facultad de   Ciencias. Pontificia Universidad Javeriana 8 (2): 69-74.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0304-2847200800020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Ariza, B.E. y L.M. González. 1997.   Producción de proteína unicelular a partir de levaduras y melaza de caña de   azúcar como sustrato. Pontificia Universidad Javeriana. Facultad de Ciencias   Básicas. Bogotá D.C. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0304-2847200800020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Castro, M. y F. Rodríguez. 2005.   Levaduras: Probioticos y prebioticos que mejoran la producción animal. Revista   CORPOICA  6 (1): 26-38.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0304-2847200800020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Chassaigne,   H., C.C. Chery, G. Bordin and A.R. Rodríguez. 2002. Development of new   analytical methods for selenium speciation in selenium-enriched yeast material.   J. Chromatogr 8, 976 (1-2): 409-422.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0304-2847200800020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Clark,   L.C., G.F. Combs, B.W. Turnbull, E.H. Slate, D. Chalker, J. Chow, L.S. Davis, R.A.   Glover, G.F. Graham, E.G. Gross, A. Krongrad, J.L. Lesher, H.K. Park, B.B. Sanders,   C.L. Smith and J.R. Taylor. 1996. Effects of selenium supplementation for   cancer prevention in patients with carcinoma of the skin. A randomized   controlled trial. J. Am. Med. Assoc. 276: 1957-1963.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0304-2847200800020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Corredor, I.C. 2002. Evaluación de   dos métodos de conservación sobre diferentes microorganismos con interés en   control biológico. Pontificia Universidad Javeriana. Facultad de Ciencias   Básicas. Bogotá D.C.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0304-2847200800020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Cotes, A.M., L.F. Villamizar y P.G.   García. 2004. Las levaduras    como   alternativa de control biológico de fitopatógenos en poscosecha de frutas y   hortalizas. pp. 9-11. En: Laboratorio de Control Biológico. Programa de Manejo   Integrado de plagas. C.I. Tibaitatá, Mosquera (Cundinamarca). </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0304-2847200800020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Elmer, G.W. and L.V. Mcfarland.   2001. Biotherapeutic agents in the treatment of infectious   diarrhea. Gastroenterol Clin. North. Am. 30: 837–854.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0304-2847200800020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">FEDESA.   1999. Antiobiotics for animals. pp. 17-22. In: A FEDESA perspective on   antibiotics, animal health and the resistance debate. European Federation of   Animal Health. Rue Defacqz,    Brussels. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0304-2847200800020000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">García, S.R. 2002. Las levaduras   para la alimentación de los porcinos (<i>Saccharomyces cerevisiae</i>). En: Comunidad   de Negocios Internacionales Relacionados con la Producción Animal.   <a href="http://www.Engormix.com">http://www.Engormix.com</a>; consulta: agosto 2007.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0304-2847200800020000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Gismondo, M.R., L. Drago and A.   Lombarda. 1999. Review of probiotics available to modify   gastrointestinal flora. 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Maza y N. Lozano.   1979. Producción de proteína celular mediante cultivo continuo de levadura en   suero de leche desproteinizada. Revista de la Facultad de Agronomía, Venezuela   5(2): 468-477.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0304-2847200800020000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Hilliam, M. 2003. Future for dairy   products ingredients in the functional foods market. Aus. J. Dairy. Technol. 58:   98-103</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0304-2847200800020000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Hinojosa, L., J. Ruiz, J.M. Marchante,   J.I. García and A. Sanz. 2006. Selenium bioaccessibility   assessment in selenized yeast after “<i>In     vitro”</i> gastrointestinal digestion using two-dimensional chromatography and   mass spectrometry. 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Lagerstedt and M.V. Wallentine. 1990. Effect of feeding <i>Aspergillus     oryzae</i> fermentation extract or <i>Aspergillus oryzae</i> plus yeast culture   plus mineral and vitamin supplement on performance of    Holstein   cows during a complete lactation. J. Dairy Sci. 73: 2922–2928</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0304-2847200800020000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Laurentin,   A. and    C.A. Edwards. 2003. A microtiter modification of the anthrone-sulfuric acid   colorimetric assay for glucose-based carbohydrates. Anal. Biochem  315(1): 143-145.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0304-2847200800020000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Lowry, O.H.,   W.J. Rosebrough, A.L. Far and R.J. Randall. 1951. Protein measurement with the   Folin-phenol reagent. J. Biol. Chem. 193: 265-275.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0304-2847200800020000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Martin,   S.A. , and D.J. Nisbet.   1992. Effect of direct-fed microbials on ruminal microbial fermentation. J.   Dairy Sci. 75:1736–1744.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0304-2847200800020000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Newbold,   C.J., R.J. Wallace and F.M. McIntosh. 1996. Mode of action of the yeast <i>Saccharomyces     cerevisiae</i> as a feed additive for ruminants. Brit. J. 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Effects of yeast on dairy cow   performance, ruminal fermentation, blood components and milk manufacturing   properties. J. Dairy Sci. 76: 2717–2722.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0304-2847200800020000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Rayman, M.P.   2000. The importance of selenium in human nutrition. The Lancet 356: 233-241.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0304-2847200800020000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Rayman,   M.P., P. Bode and C.W.G. Redman. 2003. Low selenium status is associated with   the occurrence of pregnancy disease preclampsia in women from the    United Kingdom .   Am. J. Obstet. Gynecol 189: 1343-1349.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0304-2847200800020000800026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Sánchez,  N.M., R.F. Schwan,   M. Borges and C. Medina. 2000. The rising power of yeast in science and   industry. Tenth international symposium on yeast. The    Netherlands .</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0304-2847200800020000800027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">SAS   (Statistical Analysis System Institute Inc.) 1989. SAS/STAT user’s guide   version 6, 4th ed. Vol. 2. SAS Institute Inc.    Cary, N.C.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0304-2847200800020000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Schrauzer,   G.N. 2001. Commentary: Nutrition selenium supplements: Product types, quality,   and safety. J.  Am. College of Nutr.   20:1-4.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0304-2847200800020000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Schrauzer,   G.N. 2003. The nutritional significance, metabolism and toxicology of   selenomethionine. Adv. Food Nutr. Res. 47: 73-112.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0304-2847200800020000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Somogy, M.   1952. Notes on sugar determination. Journal of Biological Chemistry 195:19-23.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0304-2847200800020000800031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Tovar, D., J.L.   Zambonino, C. Cahu, F.J. Gatesoupe, y R. Vázquez. 2000. Efecto de la administración de   levaduras en el proceso de maduración del tracto digestivo de peces. pp. 19-22.   En: Memorias. Avances en Nutrición Acuícola V. Memorias del V Simposium   Internacional de Nutrición Acuícola. Yucatán, México.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0304-2847200800020000800032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Wang, J. and C. Chen. 2006.   Biosorption of heavy metals by <i>Saccharomyces cerevisiae</i>: A review. Biotechnology   Advances  24: 427–451.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0304-2847200800020000800033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Williams,   P.E.V., C.A.G. Tait, G.M. Innes and C.J. Newbold. 1991. Effects of the   inclusion of yeast culture (<i>Saccharomyces cerevisiae</i> plus growth medium)   in the diet of dairy cows on milk yield and forage degradation and fermentation   patterns in the rumen of steers. J. Anim. 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Fajmonova. 2005. Effect of age on   utilization of selenium by chickens. Poultry Science 84: 543-546.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0304-2847200800020000800037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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