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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Propolis, a natural product collected by honeybees (Apis mellifera) from certain plant resins, has been used in folk medicine since ancient times, due to its many biological properties. The chemical composition of this hive product is very complex and depends upon the vegetation of the area from where it was collected. In this work, physicochemical characteristics, and antifungal and antibacterial activity of propolis collected in the municipality of La Unión (Antioquia, Colombia) were evaluated. Results of the physicochemical analysis of propolis were: melting point 67-68°C; hexane extractable substances 74.32 ± 0.90%; resins soluble in ethanol 14.08 ± 2.24%; insoluble residues 10.47 ± 0.84%; loss by heating 1.82 ± 0.32%; ash 0.16 ± 0.01%, and oxidation index 8.0 ± 3.0 s. Evaluations of antifungal activity, against the fungi Colletotrichum gloeosporioides, C. acutatum, Aspergillus sp., and Penicillium sp., and antibacterial activity, against Bacillus subtilis (sporulated), Escherichia coli, Staphylococcus aureus and Salmonella tiphy, demonstrated an moderated effect of propolis in the growth of the different microorganisms. The analysis using gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) allows the detection mainly of fatty acids and their esters, steroids, triterpenes, and diterpenes.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font face="Verdana"><b><font size="4">CARACTERIZACI&Oacute;N FISICOQU&Iacute;MICA Y ACTIVIDAD ANTIMICROBIANA DEL  PROP&Oacute;LEOS EN EL MUNICIPIO DE LA UNI&Oacute;N (ANTIOQUIA, COLOMBIA)</font></b></font></p> 				    <p><font face="Verdana"><i><b><font size="3">PHYSICOCHEMICAL  CHARACTERIZATION AND ANTIMICROBIAL ACTIVITY OF PROPOLIS FROM MUNICIPALITY OF LA  UNION (ANTIOQUIA, COLOMBIA)</font></b></i></font></p> 				    <p class="texto-independiente">&nbsp;</p> 				    <p><font size="2" face="Verdana"><b>Lady Rossana Palomino Garc&iacute;a<sup>1</sup>; Juli&aacute;n Pa&uacute;l Mart&iacute;nez Gal&aacute;n<sup>2</sup>; Carlos Mario Garc&iacute;a Paj&oacute;n<sup>3</sup>; Jes&uacute;s Humberto Gil Gonz&aacute;lez<sup>4</sup> y Diego Luis Durango Restrepo<sup>5</sup></b></font></p> 				    <p>&nbsp;</p> 				    <p><font size="2" face="Verdana"><b><sup><i>1</i></sup></b><i> Ingeniera Qu&iacute;mica. Estudiante Maestr&iacute;a en Ciencias-Qu&iacute;mica. Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Facultad de Ciencias. Escuela de Qu&iacute;mica. A.A. 3840. Medell&iacute;n, Colombia. &lt;<a href="lrpalomi@unal.edu.co">lrpalomi@unal.edu.co</a>&gt;    <br>                   <b><sup>2</sup></b> Qu&iacute;mico de Alimentos. Estudiante Maestr&iacute;a en Ciencia y Tecnolog&iacute;a de los Alimentos. Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Departamento de Ingenier&iacute;a Agr&iacute;cola y de Alimentos. A.A.1779. Medell&iacute;n, Colombia.&lt;<a href="jpaulmg1@gmail.com">jpaulmg1@gmail.com</a>&gt;    <br>                     <b><sup>3</sup></b> Profesor Asociado. Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Facultad de Ciencias. Escuela de Qu&iacute;mica. A.A. 3840. Medell&iacute;n, Colombia: &lt;<a href="cmgarcia@unal.edu.co">cmgarcia@unal.edu.co</a>&gt;    <br>                   <b><sup>4</sup></b> Profesor Asociado. Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Departamento de Ingenier&iacute;a Agr&iacute;cola y fr Alimentos. A.A. 1779. Medell&iacute;n, Colombia. &lt;<a href="jhgilg@unal.edu.co">jhgilg@unal.edu.co</a>&gt;    <br>                   <b><sup>5</sup></b> Profesor Asistente. Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Facultad de Ciencias. Escuela de Qu&iacute;mica. A.A. 3840. Medell&iacute;n, Colombia. &lt;<a href="dldurango@unal.edu.co">dldurango@unal.edu.co</a>&gt;</i></font></p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p> 				    <p><font size="2" face="Verdana"><b>Recibido: Marzo 24 de 2009; Aceptado: Febrero 23 de 2010.</b></font></p> 				<hr /> 				    <p><i><font size="2" face="Verdana"><b>Resumen.</b> El prop&oacute;leo un producto natural elaborado por las abejas mel&iacute;feras <b>(Apis mellifera)</b> a partir de los brotes y exudados de diferentes plantas, se ha empleado en la medicina tradicional desde tiempos ancestrales, debido a sus propiedades biol&oacute;gicas. La composici&oacute;n qu&iacute;mica de este producto de la colmena es altamente compleja y dependiente de la vegetaci&oacute;n circundante al sitio de recolecci&oacute;n. En este trabajo, se evaluaron las caracter&iacute;sticas fisicoqu&iacute;micas, y la actividad antif&uacute;ngica y antibacteriana del prop&oacute;leo colectado en el municipio de La Uni&oacute;n (Antioquia, Colombia). Los resultados del an&aacute;lisis fisicoqu&iacute;mico del prop&oacute;leo fueron: punto de fusi&oacute;n, 67-68 &deg;C; sustancias extractables con hexano, 74,32 &plusmn; 0,90%; resinas solubles en etanol, 14,08 &plusmn; 2,24%; residuos insolubles, 10,47 &plusmn; 0,84%; p&eacute;rdidas por calentamiento, 1,82 &plusmn; 0,32%; cenizas, 0,16 &plusmn; 0,01%, y el &iacute;ndice de oxidaci&oacute;n, 8,0 &plusmn; 3,0 s. Las evaluaciones de actividad antif&uacute;ngica, contra los hongos <b>Colletotrichum gloeosporioides, C. acutatum, Aspergillus</b> sp. y <b>Penicillium</b> sp., y de actividad antibacteriana, contra <b>Bacillus subtilis</b> (esporulada), <b>Escherichia coli, Staphylococcus aureus</b> y <b>Salmonella tiphy</b>, demuestran un efecto moderado del prop&oacute;leo en la inhibici&oacute;n del crecimiento del microorganismo. El an&aacute;lisis mediante cromatograf&iacute;a de gases-espectrometr&iacute;a de masas (CG-EM), permiti&oacute; la detecci&oacute;n de &aacute;cidos grasos y sus &eacute;steres, esteroides, triterpenos y diterpenos.</font></i></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras claves:</b> Prop&oacute;leo, actividad antimicrobiana, Colletotrichum, Bacillus subtilis, composici&oacute;n qu&iacute;mica.</font></p> 				    <p><i><font size="2" face="Verdana"><b>Abstract.</b> Propolis, a natural product collected by honeybees <b>(Apis mellifera)</b> from certain plant resins, has been used in folk medicine since ancient times, due to its many biological properties. The chemical composition of this hive product is very complex and depends upon the vegetation of the area from where it was collected. In this work, physicochemical characteristics, and antifungal and antibacterial activity of propolis collected in the municipality of La Uni&oacute;n (Antioquia, Colombia) were evaluated. Results of the physicochemical analysis of propolis were: melting point 67-68&deg;C; hexane extractable substances 74.32 &plusmn; 0.90%; resins soluble in ethanol 14.08 &plusmn; 2.24%; insoluble residues 10.47 &plusmn; 0.84%; loss by heating 1.82 &plusmn; 0.32%; ash 0.16 &plusmn; 0.01%, and oxidation index 8.0 &plusmn; 3.0 s. Evaluations of antifungal activity, against the fungi <b>Colletotrichum gloeosporioides, C. acutatum, Aspergillus</b> sp., and <b>Penicillium</b> sp., and antibacterial activity, against <b>Bacillus subtilis</b> (sporulated), <b>Escherichia coli, Staphylococcus aureus</b> and <b>Salmonella tiphy</b>, demonstrated an moderated effect of propolis in the growth of the different microorganisms. The analysis using gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) allows the detection mainly of fatty acids and their esters, steroids, triterpenes, and diterpenes.</font></i></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana"><b>Key words:</b> Propolis, antimicrobial activity, Colletotrichum, Bacillus subtilis, chemical composition.</font></p> 				<hr /> 				    <p class="normal">&nbsp;</p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana">El prop&oacute;leo es una sustancia resinosa elaborada por las abejas mel&iacute;feras (<span class="italica">Apis mellifera</span>) a partir de los brotes y exudados de ciertas plantas. Una vez colectado, el material es enriquecido con secreciones salivares y enzim&aacute;ticas (G&oacute;mez <span class="italica">et al.</span>, 2006), y usado para construir y reparar la colmena. Sin embargo, el prop&oacute;leo no s&oacute;lo es un material de construcci&oacute;n, sino que tambi&eacute;n es el &ldquo;arma qu&iacute;mica&rdquo; de las abejas contra los microorganismos pat&oacute;genos; la presencia de esta sustancia al interior de la colmena proporciona un ambiente inadecuado para el crecimiento de bacterias y otros microorganismos (Kartal <span class="italica">et al.,</span> 2003).</font></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana">El prop&oacute;leo contiene una amplia variedad de compuestos qu&iacute;micos; se han identificado m&aacute;s de 300 (De Castro, 2001), tales como polifenoles (flavonoides, &aacute;cidos fen&oacute;licos y sus &eacute;steres, aldeh&iacute;dos, alcoholes y cetonas fen&oacute;licas), terpenoides, esteroides, amino&aacute;cidos, y compuestos inorg&aacute;nicos (Aga <span class="italica">et al.</span>, 1994; Bankova, De Castro y Marcucci, 2000). Sin embargo, la composici&oacute;n de este producto de la colmena es altamente variable y dependiente de la flora local en el sitio de recolecci&oacute;n (Marcucci 1995; Bankova, de Castro y Marcucci, 2000). As&iacute;, algunos estudios han demostrado que los prop&oacute;leos de regiones templadas (Europa, Norte Am&eacute;rica, Oeste de Asia) poseen como principales constituyentes compuestos fen&oacute;licos (flavonoides, &aacute;cidos cin&aacute;micos, y derivados), los cuales son colectados a partir de los exudados de diferentes brotes de &aacute;lamo (<span class="italica">Populus</span> spp.), abedul (<span class="italica">Betula alba</span>), casta&ntilde;o de Indias (<span class="italica">Aesculus hippocastanum</span>) y otros &aacute;rboles. No obstante, en las regiones tropicales d&oacute;nde est&aacute; ausente esta vegetaci&oacute;n, las abejas visitan otras plantas como fuente para la producci&oacute;n de prop&oacute;leos, lo que conduce a diferencias en la composici&oacute;n qu&iacute;mica. En Brasil, por ejemplo, se han encontrado como constituyentes principales de este producto ap&iacute;cola, terpenoides y derivados prenilados de &aacute;cidos <span class="italica">p</span>-cum&aacute;ricos (Marcucci, 1995), mientras que en Chile se encontraron predominantemente lignanos (Valcic, Montenegro y Timmermann, 1998), y en Venezuela, Brasil y Cuba se hallaron benzofenonas preniladas (Tomas <span class="italica">et al.</span>, 1993; Porto <span class="italica">et al.</span>, 2000; Trusheva <span class="italica">et al.,</span> 2004; Hern&aacute;ndez <span class="italica">et al.</span>, 2005). Las resinas de <span class="italica">Clusia</span> spp., <span class="italica">Araucaria heterophylla,</span> y <span class="italica">Baccharis</span> spp. se observaron como las fuentes dominantes del prop&oacute;leo tropical (Banskota <span class="italica">et al</span>., 1998; Bankova, de Castro y Marcucci, 2000; Park, Alencar y Aguiar, 2002; Kumazawa <span class="italica">et al.,</span> 2003).</font></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Numerosas propiedades biol&oacute;gicas se han asociado con el prop&oacute;leo, incluyendo antibacteriana, antif&uacute;ngica, antiviral, antiinflamatoria, antitumoral, antioxidante, entre otras (Dobrowolski <span class="italica">et al.,</span> 1991; Burdock, 1998; Kujumgiev <span class="italica">et al.</span>, 1999; Koo <span class="italica">et al.,</span> 2000; Kumazawa, Hamasaka y Nakayama, 2004). Se pueden distinguir innumerables usos para el prop&oacute;leo en diferentes industrias: farmac&eacute;utica (tanto en medicina humana como medicina veterinaria), agr&iacute;cola, cosm&eacute;tica, y alimentar&iacute;a (Matsuka, 2000). En esta &uacute;ltima, se ha empleado para m&uacute;ltiples prop&oacute;sitos, tales como la elaboraci&oacute;n de bebidas y alimentos funcionales (Banskota, Tezuka y Kadota, 2001), y como conservante de frutas en postcosecha (Sangalli, 1990) y alimentos congelados (Mizuno, 1989), debido a que permite aumentar la vida &uacute;til de &eacute;stos productos. La diversidad en la composici&oacute;n qu&iacute;mica de este producto ap&iacute;cola y su empleo generalizado en la industria, ha tra&iacute;do como consecuencia la necesidad de su control de calidad y normalizaci&oacute;n. Con este fin, se han desarrollado <span class="hoja2">metodolog&iacute;as de trabajo establecidas por diferentes normas internacionales, entre las que se incluyen la n</span>orma IRAM-INTA del Instituto Argentino de Normalizaci&oacute;n-Subcomit&eacute; de productos agroalimentarios del NOA <span class="hoja2">(2004), la norma Ramal del </span>Ministerio de Agricultura de Cuba (1994), y el reglamento t&eacute;cnico para la fijaci&oacute;n de identidad y calidad de prop&oacute;leos del Ministerio de Agricultura de Brasil (1999<span class="hoja2">).</span></font></p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="texto-independiente-3"><font size="2" face="Verdana">Actualmente, aunque en Colombia el prop&oacute;leo es ampliamente utilizado como medicamento homeop&aacute;tico en el tratamiento de infecciones respiratorias, son escasos los estudios que permitan realizar su estandarizaci&oacute;n qu&iacute;mica af&iacute;n de garantizar su calidad, seguridad y eficiencia, necesarios para ser admitido oficialmente entre los sistemas para el cuidado de la salud. En los prop&oacute;leos colectados en Antioquia, la informaci&oacute;n sobre la composici&oacute;n, origen, y actividad biol&oacute;gica es a&uacute;n limitada. El presente trabajo se realiz&oacute; con el fin de obtener informaci&oacute;n sobre algunos par&aacute;metros fisicoqu&iacute;micos, tales como punto de fusi&oacute;n, cenizas, material extractable con <span class="italica">n</span>-hexano y etanol, residuo insoluble e &iacute;ndice de oxidaci&oacute;n, del prop&oacute;leo colectado en el municipio de La Uni&oacute;n (Antioquia, Colombia),<span class="hoja2"> como parte del conjunto de estudios de control de calidad requeridos para la tipificaci&oacute;n de este valioso producto de la colmena. </span>Adicionalmente, se analiz&oacute; el perfil qu&iacute;mico mediante cromatograf&iacute;a de gases y se determin&oacute; la actividad antif&uacute;ngica contra <span class="italica">Colletotrichum gloeosporioides,</span> <span class="italica">C. acutatum, Aspergillus </span>sp. y <span class="italica">Penicillium</span> sp. y antibacteriana contra <span class="italica">Bacillus subtilis</span>, <span class="italica">Escherichia coli, Staphylococcus aureus</span> and <span class="italica">Salmonella tiphy.</span></font></p> 				    <p class="texto-independiente-3">&nbsp;</p> 				    <p class="normal"><font size="3" face="Verdana"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana"><b><i>Muestras de prop&oacute;leo.</i></b> La muestra de prop&oacute;leo se colect&oacute; en un apiario de abejas mel&iacute;feras africanizadas de la vereda San Juan del municipio de La Uni&oacute;n (Latitud: 5&deg;59&rsquo;N, Longitud: 75&deg;22&rsquo;O; 2.473 msnm), Antioquia. La recolecci&oacute;n se realiz&oacute; empleando trampas matrizadas durante los meses de marzo y abril de 2007 (&eacute;poca de lluvias). El muestreo se efectu&oacute; en forma aleatoria en las diferentes colmenas del apiario para formar una muestra compuesta representativa. En el &aacute;rea de recolecci&oacute;n del prop&oacute;leo, predominan las especies vegetales <span class="italica">Eucalyptus globulus, Baccharis latifolia, Polylepis quadrijuga, Myconia notabilis</span> y <span class="italica">Weinmannia tomentosa</span>. Una vez colectado, el material fue almacenado en frascos &aacute;mbar y conservado a -20 &deg;C hasta su an&aacute;lisis.</font></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana"><b><i>Caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica.</i></b> Se emplearon los m&eacute;todos recomendados en la norma IRAM-INTA del Instituto Argentino de Normalizaci&oacute;n - Subcomit&eacute; de productos agroalimentarios del NOA <span class="hoja2">(2004) as&iacute; como, la Norma del </span>Ministerio de Agricultura de Brasil (1999). Los par&aacute;metros analizados, el procedimiento empleado y los contenidos m&aacute;ximos y m&iacute;nimos establecidos por las normas fueron los siguientes: <span class="italica">Punto de fusi&oacute;n</span>: se determin&oacute; en un fusi&oacute;metro Fischer Scientific. <span class="italica">P&eacute;rdidas por calentamiento (humedad)</span>: se determin&oacute; por termo gravimetr&iacute;a (contenido m&aacute;ximo del 10%). <span class="italica">Cenizas:</span> se llev&oacute; a cabo por gravimetr&iacute;a en mufla a 500 &deg;C, hasta peso constante (contenido m&aacute;ximo del 5%). <span class="italica">Sustancias extractables en n-hexano (ceras):</span> se determin&oacute; por gravimetr&iacute;a del residuo obtenido mediante una extracci&oacute;n con <span class="italica">n</span>-hexano en un equipo Soxhlet, durante el tiempo necesario para extracci&oacute;n total, posterior destilaci&oacute;n del hexano y secado del extracto en estufa a 105 &deg;C hasta peso constante (contenido m&aacute;ximo del 40%). <span class="italica">Resinas solubles en etanol:</span> se determin&oacute; por gravimetr&iacute;a de las resinas obtenidas mediante una extracci&oacute;n con alcohol et&iacute;lico del 96%, en un equipo Soxhlet, a partir del residuo s&oacute;lido resultante de la extracci&oacute;n con <span class="italica">n</span>-hexano, posterior destilaci&oacute;n del etanol a presi&oacute;n reducida y secado de la resina obtenida hasta peso constante (contenido m&iacute;nimo del 30%). <span class="italica">Residuo insoluble (cuerpos extra&ntilde;os)</span>: se realiz&oacute; por gravimetr&iacute;a del residuo insoluble seco que resulta de las extracciones con <span class="italica">n</span>-hexano y alcohol et&iacute;lico (m&aacute;ximo del 25%). <span class="italica">&Iacute;ndice de oxidaci&oacute;n</span>: se determin&oacute; el tiempo de decoloraci&oacute;n de 50 <font face="Symbol">m</font>L de una soluci&oacute;n de permanganato de potasio 0,1 N con una soluci&oacute;n hidroalc&oacute;holica de prop&oacute;leos (Ministerio de Agricultura de Brasil 1999; Salamanca, Correa y Principal, 2007). Como referencia se suelen considerar valores hasta de 22 segundos como criterio comercial de calidad (Ministerio de Agricultura de Brasil 1999; Salamanca, 2002).</font></p> 				    <p class="texto-independiente-3"><font size="2" face="Verdana"><b><i>Actividad antif&uacute;ngica.</i></b> Para la evaluaci&oacute;n de la actividad antif&uacute;ngica <span class="italica">in vitro,</span> se utilizaron cepas de las especies de hongos <span class="italica">Aspergillus</span> sp., <span class="italica">Penicillium </span>sp., <span class="italica">Colletotrichum acutatum</span> y <span class="italica">C. gloesporioides.</span> Las dos primeras especies fueron donadas por el Laboratorio de Sanidad Vegetal, y las restantes por el Laboratorio de Fitopatolog&iacute;a, de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. La actividad antif&uacute;ngica, de la resina soluble en etanol del prop&oacute;leos, se determin&oacute; empleando el m&eacute;todo de la placa perforada. Previamente se prepararon los in&oacute;culos del hongo extendiendo una soluci&oacute;n de esporas sobre el medio de cultivo (PDA); luego de 48 h, la capa homog&eacute;nea de micelio joven, se cort&oacute; en cilindros con un sacabocados de 5 mm de di&aacute;metro. Estos in&oacute;culos se incrustaron en el punto medio de cajas de Petri que conten&iacute;an agar PDA adicionado de la resina a evaluar; utiliz&aacute;ndose 5 niveles de concentraci&oacute;n (50, 100, 250, 500, 1000 mg de resina L<sup>-1</sup> de medio de cultivo). Para facilitar la incorporaci&oacute;n homog&eacute;nea de la resina en el agar PDA, se emple&oacute; 0,5 <font face="Symbol">m</font>L de etanol:tween 60, 1:1; este volumen de mezcla a su vez se incorpor&oacute; en los respectivos controles. La actividad antif&uacute;ngica del extracto etan&oacute;lico del prop&oacute;leo se determin&oacute; en funci&oacute;n del di&aacute;metro de crecimiento micelial; medido con una regla milimetrada cada 24 h por un per&iacute;odo de tiempo m&aacute;ximo de 10 d&iacute;as. Adicionalmente, se determin&oacute; el porcentaje de inhibici&oacute;n a las 96 horas de incubaci&oacute;n mediante la siguiente ecuaci&oacute;n: </font></p> 				    <p align="center" class="texto-independiente-3"><font size="2" face="Verdana"><img src="/img/revistas/rfnam/v63n1/a13ecu01.gif" /></font></p> 				    <p class="texto-independiente-3"><font size="2" face="Verdana">Donde I = % inhibici&oacute;n; T = crecimiento en mm de los testigos de referencia; t = crecimiento en mm de los tratamientos. En las evaluaciones se emple&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar, con an&aacute;lisis de medidas repetidas en el tiempo; cada ensayo, conten&iacute;a tres repeticiones por tratamiento.</font></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana"><b><i>Actividad antibacteriana.</i></b> Para el estudio de la actividad antibacteriana tambi&eacute;n se emple&oacute; la resina soluble en etanol del prop&oacute;leo. &Eacute;sta se pes&oacute; bajo condiciones as&eacute;pticas en viales est&eacute;riles, y se disolvi&oacute; con etanol est&eacute;ril para obtener las concentraciones de estudio (0,1; 1,0 y 10 mg mL<sup>-1</sup>). La actividad se evalu&oacute; por el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en disco en agar Mueller-Hilton inoculado con la cepa indicadora correspondiente; dos bacterias Gram-positivas: <span class="italica">Staphylococcus aureus</span> y <span class="italica">Bacillus subtilis</span> (esporulada), y dos Gram-negativas: <span class="italica">Escherichia coli</span> y <span class="italica">Salmonella tiphy</span>, obtenidas del laboratorio de Microbiolog&iacute;a Industrial de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n. Para cada experimento se empleo un testigo con etanol. En la superficie del agar se depositaron discos de papel de filtro de 6 mm de di&aacute;metro y tama&ntilde;o de poro de 100 <font face="Symbol">m</font>m previamente esterilizados. Los discos fueron impregnados con 20 <font face="Symbol">m</font>L de las soluciones de prop&oacute;leo y las cajas incubadas durante 18 h a 37 &ordm;C. Luego de la incubaci&oacute;n se realizaron las lecturas del di&aacute;metro promedio del halo, con un calibrador. La actividad se expres&oacute; como la diferencia, en mil&iacute;metros, entre el radio del halo de inhibici&oacute;n y el radio del disco de papel filtro. Los experimentos se llevaron a cabo por triplicado y los resultados (di&aacute;metros de inhibici&oacute;n en mm) se expresaron como valores promedio. Todas las cepas fueron recuperadas en medio BHI a 37 &deg;C por 24 h.</font></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana"><b><i>An&aacute;lisis cromatogr&aacute;fico.</i></b> El an&aacute;lisis de cromatograf&iacute;a de gases-espectrometr&iacute;a de masas (CG-EM) se realiz&oacute; en un cromat&oacute;grafo de gases Varian 3800 acoplado a un detector de masas Saturn 2000 (tipo trampa de iones). La separaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo usando una columna HPS-MS (30 m x 0,25 mm x 0,25 <font face="Symbol">m</font>m, Agilent Technologies). Las muestras de prop&oacute;leo y est&aacute;ndares se analizaron posterior a su derivatizaci&oacute;n (metilaci&oacute;n) usando el m&eacute;todo descrito por Markham <span class="italica">et al</span>. (1996); una al&iacute;cuota de 400 <font face="Symbol">m</font>L (10 mg mL<sup>-1</sup>) del prop&oacute;leo, o los est&aacute;ndares, disuelto en etanol, se combin&oacute; con una soluci&oacute;n de CH2N2 (400 <font face="Symbol">m</font>L) en un vial de vidrio, y la mezcla resultante se refriger&oacute; durante 4 horas para permitir la metilaci&oacute;n completa. Un volumen de muestra de 1<font face="Symbol">m</font>L se inyect&oacute; y analiz&oacute; mediante CG-EM. La temperatura inicial de la columna fue de 100 &deg;C, la cual se elev&oacute; a 280 &deg;C y se mantuvo por 15 min, siendo 45 min el tiempo total de an&aacute;lisis. La inyecci&oacute;n se realiz&oacute; en modo splitless a 250 &deg;C. Se utiliz&oacute; helio como gas de arrastre a un flujo de 1 mL min-1. Los picos fueron identificados por comparaci&oacute;n con datos de la literatura y de la base de datos Nist 02 &oacute; bien por comparaci&oacute;n de los tiempos de retenci&oacute;n y patrones de fragmentaci&oacute;n con muestras aut&eacute;nticas (&aacute;cido isocupr&eacute;sico, agatadiol y 13-<span class="italica">epi</span>-torulosol).</font></p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="normal">&nbsp;</p> 				    <p class="normal"><font size="3" face="Verdana"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana"><b><i>Caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica.</i></b> En Colombia, la producci&oacute;n de prop&oacute;leo es un mercado cautivo y de manejo artesanal por lo que se requiere de una amplia difusi&oacute;n de las diferentes propiedades fisicoqu&iacute;micas y biol&oacute;gicas de este material, que permitan proponer alternativas para el mejoramiento de la calidad del producto, y asimismo interesen a los productores y empresarios a incursionar en un rubro no tradicional dentro de la actividad ap&iacute;cola.</font></p> 				    <p class="texto-independiente-2"><font size="2" face="Verdana">Los resultados de las determinaciones fisicoqu&iacute;micas se presentan en la <a href="#tab01">Tabla 1</a>. A partir de la informaci&oacute;n referente a las p&eacute;rdidas por calentamiento, se puede se&ntilde;alar que el prop&oacute;leo de La Uni&oacute;n, Antioquia, present&oacute; valores relativamente bajos, y cumplen con la normatividad vigente, ya que este par&aacute;metro no supera el 10% exigido como valor m&aacute;ximo. La humedad excesiva en el prop&oacute;leo favorece el desarrollo de algunas especies de mohos y levaduras en la superficie del mismo, lo que se manifiesta por la presencia de capas blancas y verdosas; adem&aacute;s de que se pueden producir fermentaciones que a su vez generan productos no deseados, se pueden generar toxinas perjudiciales para la salud (J&uuml;rgens, 2008). En cuanto al contenido de cenizas, el prop&oacute;leo tambi&eacute;n cumple con la normatividad mencionada, ya que no supera el 5% exigido como valor m&iacute;nimo para este par&aacute;metro. </font></p> 				    <p align="center" class="normal"><font size="2" face="Verdana"><a name="tab01" id="tab01"></a><span class="texto-independiente"><b>Tabla 1.</b> Determinaciones f&iacute;sico-qu&iacute;micas para el prop&oacute;leo del municipio de La Uni&oacute;n, Antioquia - Colombia.    <br>                 </span></font><font size="2" face="Verdana"><img src="/img/revistas/rfnam/v63n1/a13tab01.gif" /></font></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana">El an&aacute;lisis de sustancias extractables con n-hexano revel&oacute; que el prop&oacute;leo analizado presenta un alto contenido de ceras, 72,32 &plusmn; 0,90%, superior al valor m&aacute;ximo permitido por la norma utilizada y al m&aacute;ximo del 40% para prop&oacute;leo de buena calidad (Arrate, 2008). La presencia de ceras resta pureza al prop&oacute;leo. El exceso de ceras probablemente, puede ser resultado de la &eacute;poca del a&ntilde;o en que se recolect&oacute; el prop&oacute;leo o de una mala manipulaci&oacute;n del producto por parte del apicultor, quien eventualmente mezcla el prop&oacute;leo con cera de la colmena durante la recolecci&oacute;n. Adem&aacute;s, del contenido de ceras, otro par&aacute;metro que influye notablemente en la calidad del prop&oacute;leo es el contenido de resinas solubles en etanol. Cuanto mayor sea el valor de esta fracci&oacute;n, mejor ser&aacute; en t&eacute;rminos de rendimiento, la calidad del producto final, puesto que es all&iacute; donde se encuentran los compuestos con actividad biol&oacute;gica (Arrate, 2008). En el estudio se determin&oacute; que el prop&oacute;leo analizado presenta un contenido de resinas solubles en etanol menor al valor m&iacute;nimo exigido, demostr&aacute;ndose la calidad inferior para &eacute;ste.</font></p>     <p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Al igual que las ceras, las impurezas mec&aacute;nicas no contienen principios activos y su elevada presencia deprecia el producto. El prop&oacute;leo present&oacute; un contenido de 10,47 &plusmn; 0,84 %, valor muy inferior al que establece la normatividad como m&aacute;ximo permitido, 25% y al fijado por Arrate (2008) para prop&oacute;leos de baja pureza. El punto de fusi&oacute;n de la muestra fue bajo y se encuentra en el rango determinado frecuentemente para prop&oacute;leo, 60-100 &deg;C (Chaillou, Herrera y Maidana, 2004). El &iacute;ndice de oxidaci&oacute;n (8,0 &plusmn; 3,0 s) fue inferior al valor m&aacute;ximo establecido en el reglamento t&eacute;cnico para la fijaci&oacute;n de identidad y calidad de prop&oacute;leos del Ministerio de Agricultura de Brasil (1999<span class="hoja2">) </span>de 22 s. Este valor es inferior al presentado en otros prop&oacute;leos colombianos provenientes de los municipios de Cerinza, Santa Rosa y Bel&eacute;n (Boyac&aacute;), y de Tame (Arauca) (Salamanca, Correa y Principal, 2007). A partir de la informaci&oacute;n referente a &eacute;ste par&aacute;metro, se puede deducir que el prop&oacute;leo evaluado presenta una buena cantidad de compuestos oxidables. A mayor concentraci&oacute;n de este tipo de compuestos menor tiempo de decoloraci&oacute;n y por lo tanto mejor calidad del producto.</font></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana">A pesar de que el prop&oacute;leo tiene bajo porcentaje de sustancias extractables con etanol &eacute;ste presenta una r&aacute;pida decoloraci&oacute;n de la soluci&oacute;n de permanganato, indicando que posiblemente est&aacute;n presentes compuestos de naturaleza fen&oacute;lica, o con grupos funcionales oxidables (hidroxilos, instauraciones entre otras), los cuales pueden exhibir actividad biol&oacute;gica.</font></p> 				    <p class="normal-web-"><font size="2" face="Verdana">Actividad antif&uacute;ngica. En este trabajo, se evalu&oacute; la actividad antif&uacute;ngica del prop&oacute;leo contra hongos del g&eacute;nero <span class="italica">Colletotrichum</span> sp., causantes de la enfermedad conocida como antracnosis, la cual afecta diversos frutos y causa p&eacute;rdidas considerables en la producci&oacute;n tanto en cosecha como en postcosecha (Bailey y Jerger, 1992). Adicionalmente, se analiz&oacute; el efecto del prop&oacute;leo contra los hongos toxig&eacute;nicos del g&eacute;nero <span class="italica">Aspergillus</span> sp. y <span class="italica">Penicillium</span> sp., los cuales causan el deterioro de muchos productos alimenticios (por ejemplo, frutos) y son reconocidos por su capacidad para producir sustancias t&oacute;xicas y carcinog&eacute;nicas en seres humanos y animales (micotoxinas) (Abarca <span class="italica">et al</span>., 2001).</font></p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="normal-web-"><font size="2" face="Verdana">En la <a href="#fig01">Figura 1</a> se representa el crecimiento radial de las especies de hongos evaluadas en presencia de la fracci&oacute;n extractable con EtOH del prop&oacute;leo. De acuerdo con estos resultados, se observ&oacute; que durante todo el tiempo de an&aacute;lisis, la fracci&oacute;n del prop&oacute;leo inhibi&oacute; o retras&oacute; el crecimiento de todos los hongos en comparaci&oacute;n con los testigos. En general, la especie <span class="italica">C. acutatum</span> present&oacute; la mayor sensibilidad al prop&oacute;leo, lo cual se evidencia por la diferencia superior entre el crecimiento micelial de los tratamientos y los testigos durante todo el tiempo de observaci&oacute;n, en comparaci&oacute;n con las otras especies de hongos evaluadas. Esta mayor inhibici&oacute;n del hongo fitopat&oacute;geno <span class="italica">C. acutatum</span>, se observa tambi&eacute;n en la <a href="#fig02">Figura 2</a>, donde se aprecia un retraso del crecimiento micelial superior al 34 % para las concentraciones de 500 y 1000 mg L<sup>-1</sup> del extracto de prop&oacute;leo, luego de 4 d&iacute;as de incubaci&oacute;n. En estas mismas condiciones, el crecimiento micelial fue reducido para las especies <span class="italica">C. gloeosporioides</span> y <span class="italica">Penicillium </span>sp. entre 20 y 30 %.</font></p> 				    <p align="center" class="normal-web-"><font size="2" face="Verdana"><a name="fig01" id="fig01"></a><img src="/img/revistas/rfnam/v63n1/a13fig01.gif" />    <br> 				</font><font size="2" face="Verdana"><span class="normal"><b>Figura 1.</b> Crecimiento micelial de los hongos <span class="italica">Colletotrichum gloeosporioides </span>(A) y <span class="italica">Colletotrichum acutatum</span> (B), <span class="italica">Aspergillus</span> sp. (C) y <span class="italica">Penicillium</span> sp. (D) en presencia de la fracci&oacute;n extractable con EtOH del prop&oacute;leo del municipio de La Uni&oacute;n, Antioquia-Colombia, a diferente concentraci&oacute;n. </span></font></p>     <p align="center" class="normal-web-"><font size="2" face="Verdana"><a name="fig02" id="fig02"></a><img src="/img/revistas/rfnam/v63n1/a13fig02.gif" />    <br> </font><font size="2" face="Verdana"><b>Figura 2.</b> Inhibici&oacute;n del crecimiento micelial de los hongos Colletotrichum gloeosporioides, Colletotrichum acutatum, Aspergillus sp. y Penicillium sp. a las 96 h de incubaci&oacute;n con la fracci&oacute;n extractable con EtOH del prop&oacute;leos del municipio de La Uni&oacute;n, Antioquia-Colombia.</font></p>     <p class="normal-web-"><font size="2" face="Verdana">Actividad antibacteriana. La medida de las zonas de inhibici&oacute;n del crecimiento microbiano con la fracci&oacute;n extractable en EtOH del prop&oacute;leo, se muestran en la <a href="#tab02">Tabla 2</a>. Las bacterias E. <span class="italica">coli, S. aureus</span> y <span class="italica">S. tiphy,</span> no presentaron reducci&oacute;n del crecimiento en presencia de la fracci&oacute;n del prop&oacute;leos, mientras que la bacteria Gram positiva <span class="italica">B. subtilis</span> (esporulada) fue sensible a las concentraciones de 1,0 y 10,0 mg mL<sup>-1</sup>, observ&aacute;ndose tanto un efecto bacteriost&aacute;tico (leve recrecimiento del cultivo a 1,0 mg mL<sup>-1</sup>) como bactericida (10,0 mg mL<sup>-1</sup>), con halos de inhibici&oacute;n de 8,0 &plusmn; 1,7 mm (<a href="#fig03">Figura 3</a>). Es importante mencionar que <span class="italica">B. subtilis</span> ha demostrado resistencia a algunos antibi&oacute;ticos en el pasado (Graham y Bott, 1975; Cohan, King y Zawadzki, 1994).</font></p> 				    <p align="center" class="normal-web-"><font size="2" face="Verdana"><a name="tab02" id="tab02"></a><span class="normal"><b>Tabla 2.</b> Actividad antibacteriana del extracto etan&oacute;lico del prop&oacute;leo del municipio de La Uni&oacute;n, Antioquia - Colombia.    <br> 				</span></font><font size="2" face="Verdana"><img src="/img/revistas/rfnam/v63n1/a13tab02.gif" /></font></p>     <p align="center" class="normal-web-"><font size="2" face="Verdana"><a name="fig03" id="fig03"></a><img src="/img/revistas/rfnam/v63n1/a13fig03.gif" />    <br> </font><font size="2" face="Verdana"><span class="normal"><b>Figura 3.</b> Efecto bacteriost&aacute;tico y bactericida del extracto etan&oacute;lico del prop&oacute;leo del municipio de La Uni&oacute;n, a concentraciones de 1 mg/mL (A) y 10 mg/mL (B).</span></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="texto-independiente-2"><font size="2" face="Verdana">Los resultados de la actividad antibacteriana concuerdan con aquellos encontrados por Grange y Davey (1990), quienes observaron una marcada acci&oacute;n de los prop&oacute;leos contra bacterias Gram-positivas y una actividad limitada contra aquellas Gram-negativas. Dobrowolski <span class="italica">et al</span>. (1991), y Woisky, Giesbrecht y Salatino (1994) tambi&eacute;n obtuvieron resultados similares, soportando la hip&oacute;tesis de que los prop&oacute;leos son activos principalmente contra bacterias Gram-positivas. Adem&aacute;s, es conocido que bacterias Gram-negativas como <span class="italica">E. coli,</span> poseen una membrana adicional denominada &ldquo;Estructura OM&rdquo; la cual les confiere un mayor grado de resistencia a los agentes antimicrobianos (Urzua <span class="italica">et al</span>., 1998; Brehm-Stecher y Jonson, 2003). Es necesario, sin embargo, probar el efecto del prop&oacute;leo, en un n&uacute;mero mayor de cepas bacterianas.</font></p> 				    <p class="texto-independiente-2"><font size="2" face="Verdana"><b><i>Composici&oacute;n qu&iacute;mica.</i></b> La composici&oacute;n qu&iacute;mica del extracto etan&oacute;lico del prop&oacute;leo, se evalu&oacute; mediante an&aacute;lisis por CG/EM. La identificaci&oacute;n de las sustancias se bas&oacute; en la interpretaci&oacute;n del espectro de masas, el tiempo de retenci&oacute;n, y por comparaci&oacute;n con los espectros de masas reportados en la base de datos Nist 02 y con muestras aut&eacute;nticas. En general, la identificaci&oacute;n a partir del an&aacute;lisis de los espectros de masas solamente, y en una mezcla compleja como el prop&oacute;leo, es una tarea ardua debido al n&uacute;mero de is&oacute;meros y la presencia de diferencias m&iacute;nimas en los espectros de los constituyentes (Pereira <span class="italica">et al.,</span> 2000). La caracterizaci&oacute;n de los constituyentes se describe a continuaci&oacute;n:</font></p> 				    <p class="texto-independiente-2"><font size="2" face="Verdana"><span class="italica"><b><i>&Aacute;cidos grasos y sus &eacute;steres:</i></b></span> A valores de tiempo de retenci&oacute;n entre 15,8 y 20,1 minutos se detectaron los &eacute;steres met&iacute;licos o et&iacute;licos de los &aacute;cidos grasos saturados, palm&iacute;tico y este&aacute;rico, e insaturados, linol&eacute;ico, oleico y linol&eacute;nico. Los &eacute;steres met&iacute;licos de los &aacute;cidos grasos saturados y monoen&oacute;icos (&aacute;cido oleico) presentaron picos con buena abundancia a m/z 74 y m/z 87, los cuales corresponden a fragmentos de referencia que han sido empleados por otros autores (Vetter y Thurnhofer, 2007). Los &eacute;steres et&iacute;licos de los &aacute;cidos grasos saturados y mono&eacute;noicos mostraron los fragmentos a m/z 73 y 88, mientras que los &eacute;steres met&iacute;licos de los &aacute;cidos polien&oacute;icos (con m&aacute;s de un doble enlace), &aacute;cidos linol&eacute;ico y linol&eacute;nico, presentaron picos a m/z 79 y 81 (Vetter y Thurnhofer, 2007). <span class="italica">Sesquiterpenos:</span> se detectaron cinco sesquiterpenos a tiempos de retenci&oacute;n entre 9,0 y 12,0 min, los cuales han sido previamente reportados en prop&oacute;leos Europeos (Melliou, Stratis y Chinou, 2007; Silici y Kutluca, 2005). Los sesquiterpenos detectados presentaron una se&ntilde;al a m/z 204 (pico de ion molecular para el cadineno y muuroleno, y M-18, p&eacute;rdida de H2O, para el cadinol y muurolol); adicionalmente la p&eacute;rdida del grupo metilo genera el ion a m/z 189 y la del grupo isopropilo, resulta en un i&oacute;n prominente a m/z 161. <span class="italica">Triterpenos pentaciclicos:</span> fueron observados seis triterpenos entre los que se encuentran acetato de cicloartenol, 7-Friedouren-3-ol, cuyas fragmentaciones caracter&iacute;sticas son m/z 177 (abundante, 84%), 191, 341, 205 (Budzikiewicz <span class="italica">et al.,</span> 1963), y Acetato del 3-lupanol que presenta el ion caracter&iacute;stico a m/z 191; sin embargo, se debe tener en cuenta que los espectros de masas de derivados del lupano presentan pocas caracter&iacute;sticas en com&uacute;n y solo unos pocos fragmentos ofrecen informaci&oacute;n &uacute;til (Budzikiewicz <span class="italica">et al.</span>, 1963). <span class="italica">Diterpenos</span>: en el prop&oacute;leo analizado se encontraron dos clases de diterpenos, diterpenos bic&iacute;clicos tipo labdano y un &aacute;cido tric&iacute;clico (&aacute;cido abi&eacute;tico). El &aacute;cido abi&eacute;tico present&oacute; un pico de i&oacute;n molecular de 316 um; adicionalmente, se&ntilde;ales en m/z 241 (M-75; M-CH<sub>3</sub>-HCO2CH<sub>3</sub>; pico prominente), 257 (M-CO<sub>2</sub>CH<sub>3</sub>), 256 (M-HCO<sub>2</sub>CH<sub>3</sub>), 91 (C<sub>7</sub>H<sub>7</sub>+), 213 (M-103; M-C<sub>3</sub>H<sub>7</sub>-HCO<sub>2</sub>CH<sub>3</sub>) y 273 (M-43; M-C<sub>3</sub>H<sub>7</sub>) (Holmbom, Avela y p&eacute;cala, 1974). Asimismo, los diterpenos tipo labdano presentaron picos con buena abundancia a m/z 109, 107, y 95. Adem&aacute;s, para la identificaci&oacute;n se tuvieron en cuenta los fragmentos M-18 (p&eacute;rdida de agua), debida a la presencia del grupo hidroxilo de la cadena &alpha;,&beta;-insaturada (Cox <span class="italica">et al.</span>, 2007); M-60 (perdida del grupo acetato), y las se&ntilde;ales con m/z 189, 177 107 y 81, correspondientes a las fragmentaciones del sistema bic&iacute;clico, algunas de los cuales han sido previamente utilizados para la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de diterpenos tipo labdano (Guedes de Pinho <span class="italica">et al.,</span> 2009).</font></p> 				    <p class="normal-web-"><font size="2" face="Verdana">El cromatograma obtenido y los compuestos detectados se presentan en la Figura 4 y Tabla 3, respectivamente. El n&uacute;mero de picos en la Tabla 3 est&aacute; dado tomando en cuenta el tiempo de retenci&oacute;n de los picos mayoritarios. Los resultados muestran que el extracto etan&oacute;lico del prop&oacute;leo posee una composici&oacute;n compleja, constituida principalmente por la presencia de &aacute;cidos grasos y sus &eacute;steres, triterpenos pentac&iacute;clicos, y &aacute;cidos diterp&eacute;nicos. La metodolog&iacute;a empleada no permiti&oacute; la detecci&oacute;n de flavonoides &oacute; &aacute;cidos fen&oacute;licos en la muestra.</font></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana">De acuerdo con diferentes autores (Kujumgiev <span class="italica">et al</span>., 1999; Sforcin <span class="italica">et al.</span>, 2000), la actividad antibacteriana de los prop&oacute;leos es debida a la presencia de compuestos fen&oacute;licos, especialmente flavonoides, &aacute;cidos fen&oacute;licos y sus &eacute;steres. No obstante, esta clase de metabolitos secundarios es m&aacute;s caracter&iacute;stica de los prop&oacute;leos de zonas templadas. Debido a la relaci&oacute;n existente entre la actividad biol&oacute;gica del prop&oacute;leo y el contenido de diterpenos tipo labdano, de acuerdo con lo observado para prop&oacute;leos de Brasil (Bankova <span class="italica">et al.</span>, 1996; Bankova, de Castro y Marcucci, 2000), prop&oacute;leos de Grecia (Melliou y Chinou, 2004) y prop&oacute;leos colombianos (Meneses, Durango y Garc&iacute;a, 2009), se procedi&oacute; a evaluar la presencia en la muestra de prop&oacute;leo, de los compuestos de reconocida actividad antimicrobiana, &aacute;cido isocupr&eacute;sico (como &eacute;ster met&iacute;lico), 13<span class="italica">-epi</span>-torulosol, y agatadiol, mediante comparaci&oacute;n de sus propiedades cromatogr&aacute;ficas y espectrom&eacute;tricas con est&aacute;ndares puros inyectados bajo las mismas condiciones. El an&aacute;lisis revel&oacute; que las se&ntilde;ales en CG con tiempos de retenci&oacute;n de 22,56, 24,52 y 25,75 min, corresponden con las de los compuestos 13-<span class="italica">epi-</span>torulosol, agatadiol y &aacute;cido isocupr&eacute;sico <span class="italica">(como &eacute;ster met&iacute;lico), respectivamente. Estos resultados indican que posiblemente la actividad biol&oacute;gica de este material se encuentra relacionada con la presencia de los diterpenos tipo labdano o al sinergismo de &eacute;stos con otros componentes.</span></font></p> 				    <p class="normal">&nbsp;</p> 				    <p class="t-tulo-2"><b><font size="3" face="Verdana">CONCLUSIONES</font></b></p> 				    <p class="normal-web-"><font size="2" face="Verdana">La muestra de prop&oacute;leo proveniente del municipio de La Uni&oacute;n, Antioquia present&oacute; caracter&iacute;sticas fisicoqu&iacute;micas que se encuentran dentro de los valores establecidos en normas internacionales; sin embargo, se except&uacute;an el contenido de ceras, el cual supera el 40%, y el porcentaje de extracto etan&oacute;lico que fue inferior al valor m&iacute;nimo exigido en la normatividad. Adicionalmente, la composici&oacute;n qu&iacute;mica del extracto etan&oacute;lico fue compleja, destac&aacute;ndose la presencia de &aacute;cidos grasos y sus &eacute;steres, sesquiterpenos, triterpenos pentac&iacute;clicos y diterpenos biciclicos tipo labdano, tales como: acido isocupr&eacute;sico, agatadiol y 13-epi-turolosol. La actividad antif&uacute;ngica del extracto etan&oacute;lico a concentraciones entre 50 y 1.000 mg mL<sup>-1</sup> fue moderada, teniendo mayor efecto de inhibici&oacute;n del crecimiento micelial sobre el hongo <span class="italica">C. acutatum</span>&nbsp; (&gt; 34 %). Asimismo, se observ&oacute; que el extracto posee actividad bacteriost&aacute;tica (a 1,0 mg mL<sup>-1</sup>) y bactericida (a 10,0 mg mL<sup>-1</sup>) contra la bacteria Gram positiva esporulada <span class="italica">B. subtilis.</span> Con estos resultados se hace un aporte importante a la cadena ap&iacute;cola regional, mediante la caracterizaci&oacute;n desde el punto de vista qu&iacute;mico y de actividad biol&oacute;gica del prop&oacute;leo proveniente del lugar mencionado; no obstante, es necesario emprender estudios m&aacute;s profundos que permitan relacionar el origen, la composici&oacute;n y la actividad biol&oacute;gica del prop&oacute;leo aqu&iacute; considerado y los de otros municipios de Antioquia.</font></p> 				    <p class="normal-web-">&nbsp;</p> 				    <p class="t-tulo-2"><b><font size="3" face="Verdana">AGRADECIMIENTOS</font></b></p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="normal"><font size="2" face="Verdana">La presente investigaci&oacute;n se realiz&oacute; gracias a la financiaci&oacute;n otorgada por la Universidad Nacional de Colombia sede Medell&iacute;n a trav&eacute;s del proyecto DIME-20101006710. Los autores agradecen al profesor Carlos L&oacute;pez de la Universidad de Antioquia por su valiosa colaboraci&oacute;n para la obtenci&oacute;n de los cromatogramas (GC-MS) y al apicultor Lu&iacute;s Demetrio Rodr&iacute;guez por la consecuci&oacute;n de la muestra.</font></p> 				    <p class="normal">&nbsp;</p> 				    <p><b><font size="3" face="Verdana">BIBLIOGRAF&Iacute;A</font></b></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Abarca, M.L., F. Accensi, M.R. Bragulat and F.J. Caba&ntilde;es. 2001. Current importance of ochratoxin A-producing <span class="italica">Aspergillus</span> spp. Journal of Food Protection 64(6): 903&ndash;906.</font></p> 				    <!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Aga, H., T. Shibuya, T. Sugimoto, M. Kurimoto and S. Nakajima. 1994. Isolation and identification of antimicrobial compounds in Brazilian propolis. <span class="x-nfasis">Bioscience</span>, <span class="x-nfasis">Biotechnology</span> and Biochemistry 58(5): 945-946.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0304-2847201000010001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p class="t-tulo-1"><font size="2" face="Verdana">Arrate, L. 2008. Propoleo, el &ldquo;antibi&oacute;tico&rdquo; natural de la colmena. Sustrai: Revista Agropesquera 85: 56-61.</font></p> 				    <!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Bailey, J.A. and M.J. Jeger. 1992. Colletotrichum: biology, pathology and control. CAB International, Wallingford, UK. 388 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0304-2847201000010001300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Bankova, V.S., S.L. de Castro and M.C. Marcucci. 2000. Propolis: recent advances in chemistry and plant origin. Apidologie 31(1): 3-15.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0304-2847201000010001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Bankova, V.S., M.C. Marcucci, S. Simova, N. Nikolova, A. Kujumgiev and S. Popov. 1996. Antibacterial diterpenic acids from Brazilian propolis. Zeitschrift f&uuml;r Naturforschung 51(5-6): 277-280.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0304-2847201000010001300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="t-tulo-1"><font size="2" face="Verdana">Banskota, A.H., Y. Tezuka and S. Kadota. 2001. Recent progress in pharmacological research of propolis. Phytotherapy Research 15(7): 561-571.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0304-2847201000010001300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Banskota, A.H., Y. Tezuka, J.K. Prasain, K. Matsushige, I. Saiki and S. Kadota. 1998. Chemical constituents of Brazilian propolis and their cytotoxic activities. Journal of Natural Products 61(7): 896-900.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0304-2847201000010001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Brehm-Stecher, B. and E. Johnson. 2003. Sensitization of <span class="italica">Staphylococcus aureus</span> and <span class="italica">Escherichia coli </span>to antibiotics by the sesquiterpenoids nerodiol, farnesol, bisabolol and apritone. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 47(10): 3357&ndash;3360. </font></p> 				    <!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Budzikiewicz, H., J.M. Wilson and C. Djerassi. 1963. Mass spectrometry in structural and stereochemical problems. XXXII Pentacyclic Triterpenes. Journal of the American Chemical Society 85(22): 3688-3699.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0304-2847201000010001300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Burdock, G.A. 1998. Review of the biological properties and toxicity of bee propolis (propolis). Food Chemical Toxicology 36(4): 347-363.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0304-2847201000010001300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Chaillou, L.L., H.A. Herrera y J.F. Maidana. 2004. Estudio del propoleos de Santiago del Estero, Argentina. Ciencia e Tecnologia de Alimentos 24 (1): 11-15.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0304-2847201000010001300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Cohan, F.M., E.C. King and P. Zawadzki. 1994. Amelioration of the deleterious pleiotropic effects of an adaptive mutation in <span class="italica">Bacillus subtilis</span>. Evolution 48(1): 81&ndash;95.</font></p> 				    <!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Cox, R.E., S. Yamamoto, A. Otto and B.T. Simoneit. 2007. Oxygenated di and tricyclic diterpenoids of southern hemisphere conifers. Biochemical Systematics and Ecology 35(6): 342-362.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0304-2847201000010001300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">De Castro, S.L. 2001. Propolis: biological and pharmacological activities. Therapeutic uses of this bee-product. Annual Review of Biomedical Science 3: 49-83. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0304-2847201000010001300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Dobrowolski, J.W., S.B. Vohora, K. Sharma, S.A. Shah, S.A. Naqvi and P.C. Dandiya. 1991. Antibacterial, antifungal, antiamoebic, antiinflammatory and antipyretic studies on propolis bee products. Journal of Ethnopharmacology 35(1): 77-82.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0304-2847201000010001300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Guedes de Pinho, P., R.F. Gon&ccedil;alves, P. Valent&atilde;o, D.M. Pereira, R.M. Seabra, P.B. Andrade and M. Sotomayor. 2009. Volatile composition of <span class="italica">Catharanthus roseus</span> (L.) G. Don using solid-phase microextraction and gas chromatography/mass spectrometry. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis 49(3): 674&ndash;685.</font></p> 				    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">G&oacute;mez, A.M., G.M. G&oacute;mez, D. Arr&aacute;ez, A. Segura and A. Fern&aacute;ndez. 2006. Advances of phenolic compounds in product derived from bees. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis 41(4): 1220-1234.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0304-2847201000010001300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="sangr-a-de-texto-normal"><font size="2" face="Verdana">Graham, R.S. and K.F. Bott. 1975. Antibiotic-resistant mutants of <span class="italica">Bacillus subtilis</span> conditional for sporulation. Molecular and General Genetics 137(3): 227-237.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0304-2847201000010001300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Grange, J.M. and R.W. Davey. 1990. Antibacterial properties of propolis (bee glue). Journal of the Royal Society of Medicine 83(3): 159-160.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0304-2847201000010001300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Hern&aacute;ndez, I., M.C. Fern&aacute;ndez, O. Cuesta, A.L. Piccinelli and L. Rastrelli. 2005. Polyprenylated benzophenone derivatives from Cuban propolis. Journal of Natural Products 68(6): 931-934.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0304-2847201000010001300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Holmbom, B., E. Avela and S. Pekkala. 1974. Capillary gas chromatography-mass spectrometry of resin acids in tall oil rosin. Journal of the American Oil Chemists&rsquo; Society 51(9): 397-400.</font></p> 				    <!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Instituto Argentino de Normalizaci&oacute;n-Subcomit&eacute; de productos agroalimentarios del NOA. 2004. Norma IRAM-INTA 15935-1 Scheme 1. Buenos Aires, Argentina.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0304-2847201000010001300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana"><span class="x-nfasis">J&uuml;rgens,</span> C. 2008. Factores que influyen en la producci&oacute;n y almacenado del prop&oacute;leo. En: Vida Ap&iacute;cola, <a href="http://www.vidaapicola.com/tecnica/manejo/almacenado.html." target="Referencia">http://www.vidaapicola.com/tecnica/manejo/almacenado.html.</a> 5 p.; consulta: noviembre 2008.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0304-2847201000010001300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Kartal, M., S. Yildiz, S. Kaya, S. Kurucu and G. Top&ccedil;u. 2003. Antimicrobial activity of propolis samples from two different regions of Anatolia. Journal of Ethnopharmacology 86(1): 69-73.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0304-2847201000010001300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p class="sangr-a-de-texto-normal"><font size="2" face="Verdana">Koo, M.H., B.P. Gomes, P.L. Rosalen, G.M. Ambrosano, Y.K. Park and J.A. Cury. 2000. <span class="italica">In vitro</span> antimicrobial activity of propolis and <span class="italica">Arnica montana</span> against oral pathogens. Archives of Oral Biology 45(2): 141&ndash;148.</font></p> 				    <!-- ref --><p class="sangr-a-de-texto-normal"><font size="2" face="Verdana">Kujumgiev, A., I. Tsvetkova, Y. Serkedjieva, V. Bankova, R. Christov and S. Popov. 1999. Antibacterial, antifungal and antiviral activity of propolis of different geographic origin. Journal of Ethnopharmacology 64(3): 235-240.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0304-2847201000010001300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Kumazawa, S., M. Yoneda, I. Shibata, J. Kanaeda, T. Hamasaka and T. Nakayama. 2003. Direct evidence for the plant origin of Brazilian propolis by the observation of honeybee behavior and phytochemical analysis. Chemical and Pharmaceutical Bulletin. 51(6): 740&ndash;742.</font></p> 				    <p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Kumazawa, S., T. Hamasaka and T. Nakayama. 2004. Antioxidant activity of propolis of various geographic origins. Food Chemistry 84(3): 329&ndash;339.</font></p> 				    <!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Marcucci, M.C. 1995. Propolis: chemical composition, biological properties and therapeutic activity. Apidologie 26(2): 83-99.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0304-2847201000010001300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Markham, K.R., K.A. Mitchell, A.L. Wilkins, J.A. Daldy and Y. Lu. 1996. HPLC and GC-MS identification of the major organic constituents in New Zealand propolis. Phytochemistry 42(1): 205-211.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0304-2847201000010001300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="sangr-a-2-de-t-independiente"><font size="2" face="Verdana">Matsuka, M. 2000. Criteria of propolis in Japan. p. 4. In: Japan Propolis Conference. Japan Health Food and Nutrition Food Association. Tokio.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0304-2847201000010001300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Melliou, E., E. Stratis and I. Chinou. 2007. Volatile constituents of propolis from various regions of Greece &ndash; Antimicrobial activity. Food Chemistry 103(2): 375&ndash;380.</font></p> 				    <!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Melliou, E. and I Chinou. 2004. Chemical analysis and antimicrobial activity of Greek propolis. Planta Medica 70(6): 515-519.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0304-2847201000010001300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Meneses, E.A., D. Durango and C.M. Garc&iacute;a. 2009. Antifungal activity against postharvest fungi by extracts from Colombian propolis. Qu&iacute;mica Nova 32(8): 2011-2017.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0304-2847201000010001300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Ministerio de Agricultura de Brasil-Apacame. 1999. Reglamento t&eacute;cnico para fijar la identidad y calidad de prop&oacute;leos. Revista Mensagem Doce 52.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0304-2847201000010001300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Ministerio de Agricultura de Cuba. 1994. Norma Ramal Cubana: Apicultura NRAG-1135-94 (Prop&oacute;leos Materia Prima), Especificaciones. La Habana, Cuba.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0304-2847201000010001300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="t-tulo-1"><font size="2" face="Verdana">Mizuno, M. 1989. Food packaging materials containing propolis as a preservative. Japanese Patent No. JP Ol 243 974 [89 243 974]. 5 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0304-2847201000010001300038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Park, Y.K., S.M. Alencar and C.L. Aguiar. 2002. Botanical origin and chemical composition of Brazilian propolis. Journal of Agricultural and Food Chemistry 50(9): 2502-2506.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0304-2847201000010001300039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Pereira, A.S., M. Norsell, J.N. Cardoso, F.R. Aquino and M.F. Ramos. 2000. Rapid screening of polar compounds in Brazilian propolis by high-temperature high-resolution gas chromatography-mass spectrometry. Journal of Agriculture and Food Chemistry 48(11): 5226-5230.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0304-2847201000010001300040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Porto, A.L., S.M. Machado, C.M. de Oliveira, V. Bittrich, M.C. Amaral and A.J. Marsaioli. 2000. Polyisoprenylated benzophenones from Clusia floral resins. Phytochemistry 55(7): 755-768.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0304-2847201000010001300041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal-web-"><font size="2" face="Verdana">Salamanca, G.G. 2002. Origen naturaleza y caracter&iacute;sticas de los prop&oacute;leos. p. 101-110. En: Memorias XVI Seminario Americano de Apicultura. Secretaria de Agricultura Pesca y Alimentaci&oacute;n. Tuxtla, Guti&eacute;rrez, M&eacute;xico.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0304-2847201000010001300042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal-web-"><font size="2" face="Verdana">Salamanca, G., I.L. Correa y J. Principal. 2007. Perfil de flavonoides e &iacute;ndices de oxidaci&oacute;n de algunos prop&oacute;leos colombianos. Zootecnia Tropical 25(2): 95-102.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0304-2847201000010001300043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="t-tulo-1"><font size="2" face="Verdana">Sangalli, A. 1990. La propoli. L&acute;Ape Nostra Amica 12(4): 16-25.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0304-2847201000010001300044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Sforcin, J.M., J.A. Fernandes, C.A.M. Lopes, V. Bankova, and S.R.C. Funari. 2000. Seasonal effect on Brazilian propolis antibacterial activity. Journal of Ethnopharmacology 73(1-2): 243-249.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0304-2847201000010001300045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Silici, S. and S. Kutluca. 2005. Chemical composition and antibacterial activity of propolis collected by three different races of honeybees in the same region. Journal of Ethnopharmacology 99(1): 69&ndash;73.</font></p> 				    <!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Tomas, F.A., C. Garc&iacute;a, P. Vit-Olivier, F. Ferreres and F. Tomas.1993. Phytochemical evidence for the botanical origin of tropical propolis from Venezuela. Phytochemistry 34(1): 191-196.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0304-2847201000010001300047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Trusheva, B., M. Popova, H. Naydenski, I. Tsvethkova, J.V. Rodr&iacute;guez and V. Bankova. 2004. New polyisoprenylated benzophenones from Venezuelan propolis. Fitoterapia 75 (7-8): 683-689.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0304-2847201000010001300048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Urzua, A., M. Caroli, L. Vasquez, L. Mendoza, M. Wilkens and E. Tojo. 1998. Antimicrobial study of the resinous exudate and of diterpenoids isolated from <span class="italica">Eupatorium salvia</span> (Asteraceae). Journal of Ethnopharmacology 62(3): 251-254.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0304-2847201000010001300049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Valcic, S., G. Montenegro and B.N. Timmermann. 1998. Lignans from Chilean Propolis. Journal of Natural Products 61(6): 771-775.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0304-2847201000010001300050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Vetter, W. and S. Thurnhofer. 2007. Analysis of fatty acids by mass spectrometry in the selected ion monitoring mode. Lipid Technology 19(8): 184-186.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0304-2847201000010001300051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p class="normal"><font size="2" face="Verdana">Woisky, R.G., A.M Giesbrecht e A. Salatino. 1994. Atividade antibacteriana de uma formula&ccedil;&atilde;o preparada a partir de pr&oacute;polis de <span class="italica">Apis mellifera</span> L. Revista da Farmacia e Bioquimica da Universidade de S<span class="x-nfasis">ao Paulo</span> 30(1): 19-21.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0304-2847201000010001300052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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