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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Psidium cattleianum Sabine, known as cas sweet, japanese guava, peruvian guava and strawberry guava, is a tree native to South America. Preliminary studies in this species have suggested a high antioxidant activity, a high phenolic content and great nutritional and functional potential. In this study, the evolution of some components of the non-enzimatic antioxidant defense system was analized during growth and ripening of fruit of Psidium cattleianum Sabine. The growing period of the fruits presented the highest antioxidant activity, measured by techniques DPPH, ABTS, FRAP and ORAC, and the maximum content of total phenols, among which found chlorogenic, caffeic and p-coumaric acids, and non-polyphenolic substances such as ascorbic acid. During the ripeness period, a decrease in antioxidant activity was observed, possibly promoted by the gradual loss of some polyphenolic compounds as well as the appearance of other compounds such as anthocyanins. The results showed that these fruits contained a high content of substances with antioxidant activity, which supported the development of this species as new productive alternative.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">      <p align="center"><font size="4"><b>Cambios en la Actividad Antioxidante Durante el Desarrollo de    Frutos de <i>Psidium cattleianum</i> Sabine (Myrtaceae)</b></font></p>      <p align="center"><font size="3"><b>Changes in the Antioxidant Activity During the Development in Fruits of <i>Psidium cattleianum</i> Sabine (Myrtaceae)</b></font></p>      <p align="center">Ver&oacute;nica Villacorta Lozano<sup>1</sup>; Luis Fernando Osorio V&eacute;lez<sup>2</sup> y Benjam&iacute;n Alberto Rojano<sup>3</sup></p>     <p><sup>1</sup> Ingeniera T&eacute;cnica Agr&iacute;cola Especialidad Industrias Agrarias y Alimentarias. Universidad Nacional de Colombia -Sede Medell&iacute;n - Facultad d</b>e    Ciencias Agrarias - Departamento de Ingenier&iacute;a Agr&iacute;cola y Alimentos. Calle 59A No. 63-20, Medell&iacute;n, Colombia. &lt;<a href="mailto:vvillacortal@unal.edu.co">vvillacortal@unal.edu.co</a>&gt;    <br>   <sup>2 </sup>Profesor Asociado. Universidad Nacional de Colombia -Sede Medell&iacute;n -Facultad de Ciencias Agrarias -Departamento de Ciencias      Forestales. Calle 59A No. 63-20, Medell&iacute;n, Colombia. &lt;<a href="mailto:lfosoriv@unal.edu.co">lfosoriv@unal.edu.co</a>&gt;    <br> 	<sup>3</sup> Profesor Asociado. Universidad Nacional de Colombia - Sede Medell&iacute;n - Facultad de Ciencias - Escuela de Qu&iacute;mica. Calle 59A No. 63-20,        Medell&iacute;n, Colombia. &lt;<a href="mailto:brojano@unal.edu.co">brojano@unal.edu.co</a>&gt; </p>      <p>Recibido:  Octubre 11 de 2012; aceptado: Diciembre 2 de 2012. </p> <hr>      <p><font size="3"><b><I>Resumen</I></b></font></p>     <p><i><b><i>Psidium cattleianum</i></b> Sabine, conocida como cas dulce, guayaba japonesa, guayaba peruana y guayaba fresa, es un &aacute;rbol originario de Am&eacute;rica del Sur. Estudios preliminares en esta especie han sugerido una elevada actividad antioxidante, un alto contenido fen&oacute;lico y un gran potencial nutricional y funcional. En esta investigaci&oacute;n se analiz&oacute; la evoluci&oacute;n de varios componentes del sistema de defensa antioxidante no enzim&aacute;tico, durante el crecimiento y maduraci&oacute;n de los frutos de <b>Psidium cattleianum</b> Sabine. El periodo de crecimiento de los frutos present&oacute; la actividad antioxidante m&aacute;s elevada, medida a trav&eacute;s de las t&eacute;cnicas TEAC-DPPH y TEAC-ABTS (Trolox equivalent antioxidant capacity), FRAP (Ferric reducing/antioxidant power) y ORAC (Oxigen Radical Absorbance Capacity), as&iacute; como el contenido m&aacute;ximo de fenoles totales, entre los que destacaron los &aacute;cidos clorog&eacute;nico, cafeico y p-coum&aacute;rico, y de sustancias no polifen&oacute;licas como el &aacute;cido asc&oacute;rbico. Durante el periodo de maduraci&oacute;n, se observ&oacute; una disminuci&oacute;n de la actividad antioxidante, posiblemente promovida por la p&eacute;rdida gradual de algunos compuestos polifen&oacute;licos, as&iacute; como tambi&eacute;n, debido a la aparici&oacute;n de otros compuestos como las antocianinas. Los resultados mostraron que estos frutos contienen un alto contenido de sustancias con actividad antioxidante, lo cual soporta el desarrollo de esta especie como nueva alternativa productiva.</i></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Palabras clave:</b> Polifenoles, &aacute;cido asc&oacute;rbico, maduraci&oacute;n, alternativa productiva.</p> <hr>      <p><font size="3"><b><i>Abstract</i></b></font></p>     <p><i><b><i>Psidium cattleianum</i></b> Sabine, known as cas sweet, japanese guava, peruvian guava and strawberry guava, is a tree native to South America. Preliminary studies in this species have suggested a high antioxidant activity, a high phenolic content and great nutritional and functional potential. In this study, the evolution of some components of the non-enzimatic antioxidant defense system was analized during growth and ripening of fruit of <b><i>Psidium cattleianum</i></b> Sabine. The growing period of the fruits presented the highest antioxidant activity, measured by techniques DPPH, ABTS, FRAP and ORAC, and the maximum content of total phenols, among which found chlorogenic, caffeic and p-coumaric acids, and non-polyphenolic substances such as ascorbic acid. During the ripeness period, a decrease in antioxidant activity was observed, possibly promoted by the gradual loss of some polyphenolic compounds as well as the appearance of other compounds such as anthocyanins. The results showed that these fruits contained a high content of substances with antioxidant activity, which supported the development of this species as new productive alternative.</i></p>     <p><b>Key words:</b> Polyphenols, ascorbic acid, ripening, productive alternative.</p> <hr>     <p>Las especies reactivas del ox&iacute;geno (ERO), tales como el radical super&oacute;xido, el per&oacute;xido de hidr&oacute;geno y el radical hidroxilo, son generadas inevitablemente como consecuencia del metabolismo normal (Mondal <i>et al</i>., 2004, 2009). En las c&eacute;lulas vegetales, la producci&oacute;n de ERO est&aacute; centrada fundamentalmente en el proceso de respiraci&oacute;n celular y metabolismo peroxisomal (Mondal <i>et al</i>., 2009; Matamoros <i>et al</i>., 2010), as&iacute; como en la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno y en la fotos&iacute;ntesis (Matamoros <i>et al</i>., 2010). Con el objetivo de evitar la sobreacumulaci&oacute;n de estas especies, los organismos poseen mecanismos de defensa antioxidantes, los cuales incluyen enzimas como la super&oacute;xido dismutasa, catalasa, peroxidasa, ascorbato peroxidasa y glutati&oacute;n peroxidasa, entre otras, componentes solubles en agua como la vitamina C, compuestos polifen&oacute;licos y glutati&oacute;n, y componentes solubles en l&iacute;pidos como los carotenoides, la vitamina E y los tocoferoles (Prior y Cao, 2000; Mondal <i>et al</i>., 2004, 2009; Shen <i>et al</i>., 2008; Krishnaiah <i>et al</i>., 2011; Oliveira <i>et al</i>., 2011). </p>      <p>En la vida del fruto pueden distinguirse cuatro fases: cuajado, crecimiento activo, maduraci&oacute;n y senescencia (Coleto, 1994). El per&iacute;odo de crecimiento de los frutos, se corresponde con una elevada tasa de respiraci&oacute;n celular (Coleto, 1994), y una actividad fotosint&eacute;tica mayor (Gil - Albert, 1995); es decir, con dos de los procesos fundamentales generadores de ROS, principalmente radical super&oacute;xido y per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (Mondal <i>et al</i>., 2009; Matamoros <i>et al</i>., 2010), y en consecuencia determinantes de la actividad antioxidante, tanto enzim&aacute;tica como no enzim&aacute;tica (Abassi <i>et al</i>., 1998; Mondal <i>et al</i>., 2009; Matamoros <i>et al</i>., 2010). </p>      <p>La maduraci&oacute;n es un proceso que, desde el punto de vista metab&oacute;lico, conlleva una diferenciaci&oacute;n de tejidos, s&iacute;ntesis espec&iacute;fica de enzimas y modificaciones f&iacute;sico-qu&iacute;micas que se reflejan en un cambio de las propiedades y atributos de calidad (Hern&aacute;ndez y Sastre, 1999); este proceso culmina en la madurez del fruto, que puede ser de tres tipos: madurez comercial o de recolecci&oacute;n, madurez de consumo o gustativa y madurez fisiol&oacute;gica (Coleto, 1994). Asimismo, durante esta etapa, probablemente con el fin de facilitar los cambios metab&oacute;licos asociados a este proceso, es necesario, generalmente, la disminuci&oacute;n de la actividad del sistema de defensa antioxidante, a trav&eacute;s de la p&eacute;rdida parcial tanto de la actividad enzim&aacute;tica como del contenido de sustancias no enzim&aacute;ticas, conllevando al incremento del estr&eacute;s oxidativo generado por la acumulaci&oacute;n de ERO, tales como el radical super&oacute;xido y el per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (Abassi <i>et al</i>., 1998; Mondal <i>et al</i>., 2004; Kulkarni y Aradhya, 2005; Huang <i>et al</i>., 2007). </p>     <p>No obstante, a pesar de los efectos delet&eacute;reos de las ERO, determinadas concentraciones de las mismas cumplen un importante papel en procesos como el reconocimiento de pat&oacute;genos, desarrollo vegetal, regulaci&oacute;n de la fotos&iacute;ntesis y s&iacute;ntesis de la pared celular (formaci&oacute;n de lignina) (Iturbe, 1996; Shen <i>et al</i>., 2008; Matamoros <i>et al</i>., 2010). </p>     <p><i>Psidium cattleianum</i> Sabine pertenece a la familia Myrtaceae, y es conocida vulgarmente con los nombres de cas dulce, guayaba japonesa, guayaba peruana y guayaba fresa; es originaria de Am&eacute;rica del Sur, concretamente de Uruguay y de las zonas templadas de Brasil, aunque posteriormente se propag&oacute; por Am&eacute;rica Central y del Norte, Asia, &Aacute;frica y Europa. Los frutos de esta especie son bayas redondas, de color rojizo y con una pulpa blanquecina, arom&aacute;tica y de sabor entre dulce y agridulce (Janick  y Paull, 2008). Es un fruto potencialmente comercial, altamente perecedero y con un patr&oacute;n respiratorio t&iacute;picamente climat&eacute;rico. Se ha encontrado para esta especie una elevada actividad antioxidante, un alto contenido fen&oacute;lico y un gran potencial nutricional y funcional, propiedades que se han relacionado con el efecto protector de los extractos sobre c&eacute;lulas eucari&oacute;ticas, usando la levadura <i>Saccharomyces cereviasiae</i>, con el efecto antimicrobiano frente a la bacteria pat&oacute;gena <i>Salmonella enteritidis</i> y con el efecto antiproliferativo sobre las c&eacute;lulas humanas cancer&iacute;genas MCF - 7 y Caco - 2 (Coelho de Souza <i>et al</i>., 2004; Silva <i>et al</i>., 2007; Lisboa <i>et al</i>., 2011). </p>     <p>De tal manera que el objetivo de la investigaci&oacute;n fue determinar el potencial antioxidante, durante el crecimiento y maduraci&oacute;n de frutos de <i>Psidium cattleianum</i>, con la intenci&oacute;n de promover su desarrollo como nueva alternativa productiva a trav&eacute;s de la asignaci&oacute;n de valores de existencia, opci&oacute;n y utilizaci&oacute;n, as&iacute; como a la promoci&oacute;n de su preservaci&oacute;n y potenciar la agro-industria colombiana. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>Materiales y M&eacute;todos</b></font></p>     <p><b><i>Reactivos y equipos</i></b>. El radical DPPH (2,2-difenil1-picrilhidracilo), ABTS (diamonio 2,2'-azino-bis (3-etilbenzo-thiazolina-6-sulfonato) y los compuestos Trolox (6-hidroxi-2, 5, 7, 8- tetrametil croman-2-&aacute;cido carbox&iacute;lico), TPTZ (2, 4, 6&#91;tri&#91;2-piridil-s-triazina))), &aacute;cido g&aacute;lico (&aacute;cido 3,4,5 - trihidroxi benzoico), reactivo de Folin Ciocalteu, carbonato de sodio, &aacute;cido L- asc&oacute;rbico, metanol, &aacute;cido f&oacute;rmico, cloruro de hierro, buffers (pH: 1,0; 3,6; 4,5; 7,4), fluoresce&iacute;na y AAPH (2,2'-azobis (2-amidino propano) diclorhidrato) fueron obtenidos de Merck&reg; (Alemania). El agua usada en los experimentos fue de tipo supra-pura. Se utiliz&oacute; un espectrofot&oacute;metro UV-vis (Jenway&reg; 6405), un espectrofluor&iacute;metro (Perkin Elmer&reg; Precisely LS 55) y un equipo de cromatograf&iacute;a de alta resoluci&oacute;n (Shimadzu&reg;). </p>     <p><b><i>Frutos</i></b>. El material de trabajo se obtuvo de una poblaci&oacute;n de <i>P. cattleianum</i> establecida en el Centro de Investigaci&oacute;n La Selva de Corpoica, situado en la vereda Llanogrande - Rionegro, Antioquia, Colombia. Dentro del sistema de clasificaci&oacute;n ecol&oacute;gica de las zonas de vida (Holdridge, 1967), corresponde al bosque h&uacute;medo montano bajo (bh-MB), situado a 2.120 msnm, con una temperatura promedio de 17 &deg;C, humedad relativa promedio del 78% y coordenadas de ubicaci&oacute;n 06&deg; 08' 06'' latitud Norte y 75&deg; 25' 03'' longitud Oeste. Los frutos fueron seleccionados en funci&oacute;n del color de su epidermis, realiz&aacute;ndose en total seis recolecciones, correspondientes a seis estados de desarrollo, constituidas por cuatro repeticiones. El estado de desarrollo identificado como 0, hizo referencia a frutos caracterizados por una epidermis de color verde oscuro, perteneciente al periodo de crecimiento. El estado de desarrollo 1, hizo referencia a frutos de color verde claro, en madurez de recolecci&oacute;n o en estado verde maduro. Los estados de desarrollo 2, 3, 4 y 5, hicieron referencia a frutos caracterizados por menos de un 20%, 50%, 90% y por un 100% de superficie rojiza, respectivamente. Los cuatro estados conformaron el periodo de maduraci&oacute;n organol&eacute;ptica, el cual se inici&oacute; a partir del estado 1 y finaliz&oacute; en el estado 5, correspondiente a madurez de consumo. </p>     <p><b><i>Preparaci&oacute;n de extractos</i>. </b>5 g de cada una de las 24 muestras fueron homogeneizados en un ultraturrax (Janke and Kunkel&reg;), usando como solvente de extracci&oacute;n de agua desionizada (50 mL). Cada homogeneizado fue filtrado al vac&iacute;o, usando papel filtro Whatman No. 4. Las soluciones de trabajo fueron almacenadas en viales rotulados a temperatura de refrigeraci&oacute;n de 4 &deg;C. </p>     <p><b><i>TEAC-DPPH</i>.</b> Se determin&oacute; mediante el m&eacute;todo de Brand-Williams (1995), con modificaciones de Rojano <i>et al</i>. (2008). Se valor&oacute; la decoloraci&oacute;n del radical 2,2'-difenil-1-picrilhidracilo, ocasionada por un proceso de reducci&oacute;n promovido por el extracto antioxidante. Se construy&oacute; una curva patr&oacute;n utilizando como est&aacute;ndar Trolox&reg;. Posteriormente, se prepararon diluciones a partir de las soluciones de trabajo, de forma que 10 &micro;L de cada diluci&oacute;n obtenida fueron mezclados con 990 &micro;L de soluci&oacute;n estandarizada de DPPH a 0,300 unidades, con el objetivo de obtener lecturas a 517 nm, despu&eacute;s de permanecer por media hora en ausencia de luz, comprendidas en un intervalo determinado de la curva patr&oacute;n. Los resultados se expresaron como &micro;mol equivalentes de Trolox (TEAC) por cada 100 g de fruta fresca. </p>     <p><b><i>TEAC-ABTS<sup>+</sup></i>. </b>Esta t&eacute;cnica fue aplicada con base en la metodolog&iacute;a propuesta por Re <i>et al</i>., 1999, con modificaciones de Rojano <i>et al</i>., 2008. Se construy&oacute; una curva patr&oacute;n utilizando como est&aacute;ndar Trolox&reg;. Posteriormente, se prepararon diluciones a partir de las soluciones de trabajo, de forma que 10 &micro;L de cada diluci&oacute;n obtenida fueron mezclados con 990 &micro;L de soluci&oacute;n estandarizada de ABTS a 0,700 unidades, con el objetivo de obtener lecturas a 734 nm, despu&eacute;s de permanecer por media hora en ausencia de luz, comprendidas en un intervalo determinado de la curva patr&oacute;n. Los resultados se expresaron como &micro;moles equivalentes de Trolox (TEAC) por cada 100 g de fruta fresca. </p>      <p><b><i>Poder reductor FRAP</i>.</b> El m&eacute;todo FRAP, se bas&oacute; en la capacidad de los extractos acuosos de transferir un electr&oacute;n al complejo &#91;Fe(III)(TPTZ)2&#93;<sup>+3 </sup>para reducirlo al complejo &#91;Fe(II)(TPTZ) 2&#93;<sup>+2</sup>. De acuerdo con la metodolog&iacute;a propuesta por Benzie y Strain, 1996, con modificaciones de Gaviria <i>et al</i>., 2009, se construy&oacute; una curva patr&oacute;n utilizando como est&aacute;ndar el &aacute;cido asc&oacute;rbico. Posteriormente, se prepararon diluciones a partir de las soluciones de trabajo, de forma que 50 &micro;L de cada diluci&oacute;n obtenida fueron mezclados con 50 &micro;L de buffer de pH 3,6 y 900 &micro;L de soluci&oacute;n de FRAP, constituida en una proporci&oacute;n determinada de TPTZ, FeCl<sub>3 </sub>y buffer de pH 3,6, con el objetivo de obtener lecturas a 590 nm, despu&eacute;s de permanecer por media hora en ausencia de luz, comprendidas en un intervalo determinado de la curva patr&oacute;n. Los resultados se expresaron como mg equivalentes de &aacute;cido asc&oacute;rbico por cada 100 g de fruta fresca. </p>      <p><b><i>Actividad ORAC</i></b>. Mediante la t&eacute;cnica ORAC se evalu&oacute; la inhibici&oacute;n de la reacci&oacute;n de oxidaci&oacute;n en cadena inducida por los radicales peroxilo, generados por la descomposici&oacute;n t&eacute;rmica del AAPH. El mecanismo se fundament&oacute; en reacciones de transferencia de &aacute;tomos de hidr&oacute;geno, del antioxidante a los radicales peroxilo, los cuales reaccionaron con la fluoresce&iacute;na formando productos cuantificables. Se utilizaron condiciones controladas de temperatura (37 &deg;C) y pH (7,4). El efecto protector se calcul&oacute; usando las diferencias de &aacute;reas bajo la curva de decaimiento de la fluoresce&iacute;na entre el blanco y la muestra, se compar&oacute; con la curva de Trolox&reg; y los resultados fueron expresados en &micro;moles equivalentes de Trolox por cada 100 g de fruta fresca, de acuerdo a la siguiente <a href="#for1">ecuaci&oacute;n (1)</a>. </p>     <p>    <center><a name="for1"><img src="img/revistas/rfnam/v66n1/v66n1a11for1.jpg"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Donde AUC es el &aacute;rea bajo la curva de la muestra; AUC&deg; es el &aacute;rea bajo la curva para el control; AUC<sub>Trolox </sub>es el &aacute;rea bajo la curva para el trolox y f el factor de diluci&oacute;n de los extractos (Romero <i>et al</i>., 2010). </p>      <p><b><i>Determinaci&oacute;n de fenoles totales</i>. </b>La determinaci&oacute;n del contenido de fenoles totales se realiz&oacute; por el m&eacute;todo colorim&eacute;trico Folin-Ciocalteu (Singleton y Rossi, 1965, modificado por Gaviria <i>et al</i>., 2009). Se construy&oacute; una curva patr&oacute;n utilizando como est&aacute;ndar &aacute;cido g&aacute;lico. Posteriormente, se prepararon diluciones a partir de las soluciones de trabajo, de forma que 50 &micro;L de cada diluci&oacute;n fueron mezclados con 425 &micro;L de agua supra- pura, 125 &micro;L del reactivo Folin y 400 &micro;L de carbonato de sodio, con el objetivo de obtener lecturas a 760 nm, despu&eacute;s de permanecer por una hora en ausencia de luz, en un intervalo determinado de la curva patr&oacute;n. Los resultados se expresaron como mg equivalentes de &aacute;cido g&aacute;lico por cada 100 g de fruta fresca. </p>     <p><b><i>Determinaci&oacute;n de antocianinas totales</i></b>. Para la determinaci&oacute;n de antocianinas totales, se utiliz&oacute; el m&eacute;todo diferencial de pH (Giusti y Wrolstad, 2000, modificado por Gaviria <i>et al</i>., 2007), de forma que a cada 100 &micro;L de soluci&oacute;n de trabajo sin diluir se le adicionaron 900 &micro;L de buffer pH 1 y 900 &micro;L de buffer pH 4,5, de manera independiente, procediendo a efectuarse las lecturas a 530 y 700 nm, despu&eacute;s de permanecer por media hora en ausencia de luz, para ambos pH. Los resultados fueron expresados en mg equivalentes de cianidin-3-gluc&oacute;sido por cada 100 g de fruta fresca. </p>      <p><b><i>Perfil cromatogr&aacute;fico de &aacute;cidos fen&oacute;licos, antocianidinas y &aacute;cido asc&oacute;rbico</i>. </b>Se determinaron mediante an&aacute;lisis por HPLC. El extracto acuoso se filtr&oacute; (tama&ntilde;o de poro 0,45 &micro;m) y se hicieron diluciones en agua supra-pura, antes de la inyecci&oacute;n al cromat&oacute;grafo, equipado con un auto inyector SIL20A /HT, un m&oacute;dulo de comunicaci&oacute;n CBM-20A y un detector con arreglo de fotodiodos (PDA) SPD-M20A, calibrado a 280 nm. Se emple&oacute; una columna C-8 ultra acuosa (5 &micro;m de tama&ntilde;o de part&iacute;cula, 250 x 4,6 mm). La raz&oacute;n de flujo de la fase m&oacute;vil fue 1,0 mL/min, 25 &deg;C y condiciones isocr&aacute;ticas. El espectro UV-visible fue recorrido de 200 a 600 nm para todos los picos. Para determinar el perfil de los &aacute;cidos fen&oacute;licos y las antocianidinas se emple&oacute; como fase m&oacute;vil metanol acidulado con &aacute;cido f&oacute;rmico al 0,1%; mientras que el acido asc&oacute;rbico se eluy&oacute; con &aacute;cido f&oacute;rmico al 0,1%. La identificaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de los compuestos se realiz&oacute; con curvas de calibraci&oacute;n para cada uno de los &aacute;cidos fen&oacute;licos (Naranjo <i>et al</i>., 2011), las antocianidinas (Rojano <i>et al</i>., 2011; Rojano <i>et al</i>., 2012) y el &aacute;cido asc&oacute;rbico (Shakya y Navarre, 2006). </p>     <p><b><i>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</i>. </b>Con la informaci&oacute;n recolectada se caracteriz&oacute; la din&aacute;mica de las variables en funci&oacute;n del estado de desarrollo durante el periodo de medici&oacute;n, utilizando el programa estad&iacute;stico Statgraphics Centurion XVI. </p>     <p>Se realizaron an&aacute;lisis de varianza (ANAVA) para cada variable en funci&oacute;n de los estados de desarrollo, con un nivel de significancia del 5%. Las medias que tuvieron una letra en com&uacute;n no difirieron significativamente al 5%, acorde con la prueba de Fisher (LSD). </p>     <p><font size="3"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>     <p>Las <a href="#tab1">Tablas 1</a> y <a href="#tab2">2</a> muestran los resultados obtenidos de la actividad antioxidante (t&eacute;cnicas TEAC-DPPH, TEACABTS, FRAP y ORAC), as&iacute; como el contenido de fenoles totales (&aacute;cido clorog&eacute;nico, cafeico y p-coum&aacute;rico), &aacute;cido asc&oacute;rbico y antocianinas totales, evaluados en cada uno de los estados de desarrollo de frutos de <i>P. cattleianum</i> Sabine seleccionados. </p>     <p>    <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/rfnam/v66n1/v66n1a11t1.jpg"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="tab2"><img src="img/revistas/rfnam/v66n1/v66n1a11t2.jpg"></a></center></p>      <p>La etapa de crecimiento (estado de desarrollo 0), correspondiente a frutos con una epidermis verde oscura, present&oacute; la actividad antioxidante m&aacute;s elevada, medida a trav&eacute;s de todas las t&eacute;cnicas antioxidantes (<a href="#tab1">Tabla 1</a>), debido a la alta concentraci&oacute;n de los compuestos polifen&oacute;licos (<a href="#tab2">Tabla 2</a>). Esta situaci&oacute;n estuvo probablemente orientada a proteger a las c&eacute;lulas vegetales del da&ntilde;o oxidativo causado por la elevada producci&oacute;n de especies reactivas del ox&iacute;geno, derivadas de la elevada tasa de respiraci&oacute;n celular y una mayor actividad fotosint&eacute;tica, caracter&iacute;sticas de este periodo (Coleto, 1994; Gil-Albert, 1995). Al respecto, frutos como los aguacates (Persea americana Mill.) cv. Hass, tienen el potencial de realizar actividad fotosint&eacute;tica, cuya contribuci&oacute;n a los propios requerimientos de carbono, es mayor durante los primeros estados de desarrollo (Gandolfo, 2008). De igual manera, en ar&aacute;ndanos azules (<i>Vaccinium corymbosum</i> L.) y rojos (<i>Vaccinium vitisidaea</i> L.) se han reportado durante las etapas iniciales de crecimiento, actividades antioxidantes muy elevadas, debidas a la alta concentraci&oacute;n de &aacute;cidos hidroxicin&aacute;micos y de flavanoles, as&iacute; como de procianidinas, respectivamente (Stoner y Seeram, 2011). En los estados verdes de <i>Vaccinium vitisidaea</i> L., se encontraron los mayores valores de ORAC, DPPH y contenido de fenoles totales (Stoner y Seeram, 2011). Asimismo, estudios realizados en extractos metan&oacute;licos de <i>Myrtus communis</i> L. (Fadda y Mulas, 2010) y en extractos acuosos de granada (<i>Punica granatum</i> Linn.) (Kulkarni y Aradhya, 2005), mostraron durante las etapas   iniciales de crecimiento concentraciones m&aacute;ximas   de fenoles totales, con valores de 4.896,6 (mg/100   g fruta fresca) y de 506 (mg/100 g fruta fresca),   respectivamente, as&iacute; como de &aacute;cido asc&oacute;rbico, con   un valor de 36 (mg/100 g fruta fresca) (Kulkarni y   Aradhya, 2005), lo que se tradujo en una elevada actividad antioxidante medida por el m&eacute;todo DPPH.</p>      <p>Entre el estado 0 y 1, correspondiente este &uacute;ltimo a frutos verdes maduros, se observ&oacute; la disminuci&oacute;n de la actividad antioxidante, medida a trav&eacute;s de todas las t&eacute;cnicas (<a href="#tab1">Tabla 1</a>), contempor&aacute;nea a la reducci&oacute;n del contenido de las sustancias antioxidantes mostradas en la <a href="#tab2">Tabla 2</a>. A partir del estado 1, comenz&oacute; el periodo de maduraci&oacute;n organol&eacute;ptica, el cual abarc&oacute; los estados 2, 3, 4 y 5, este &uacute;ltimo correspondiente a frutos en estado de madurez de consumo. Durante este periodo pudo observarse el decremento estad&iacute;sticamente significativo de la actividad antioxidante medida por ORAC (<a href="#tab1">Tabla 1</a>), la p&eacute;rdida gradual de los compuestos determinados con dicha actividad, &aacute;cido asc&oacute;rbico y clorog&eacute;nico (<a href="#tab2">Tabla 2</a>), el inicio de la acumulaci&oacute;n de antocianinas en la epidermis de los frutos a partir del estado 2, detectables cuantitativamente en el estado 5 (<a href="#tab2">Tabla 2</a>) y una ligera disminuci&oacute;n, aunque no estad&iacute;sticamente significativa, del contenido de fenoles totales (<a href="#tab2">Tabla 2</a>), probablemente debida a la disminuci&oacute;n de algunos reductores. Sin embargo, hubo una acumulaci&oacute;n progresiva de las antocianinas totales (<a href="#tab2">Tabla 2</a>) y de la antocianidina malvidina (<a href="#tab3">Tabla 3</a>). Al respecto, durante las etapas que siguen a la fase inicial de crecimiento, y con el objetivo de facilitar muchos de los cambios metab&oacute;licos asociados a los procesos de maduraci&oacute;n, se produce generalmente la disminuci&oacute;n de los compuestos que integran el sistema de defensa antioxidante, tanto enzim&aacute;tico como no enzim&aacute;tico, y en consecuencia el aumento del estr&eacute;s oxidativo generado por la acumulaci&oacute;n de especies reactivas del ox&iacute;geno, tales como el radical super&oacute;xido y el per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (Abassi <i>et al</i>., 1998; Mondal <i>et al</i>., 2004; Kulkarni y Aradhya, 2005; Huang <i>et al</i>., 2007). En tomate (Lycopersicon esculentum Mill. cv. Lichun) ha sido observado, durante los primeros estadios de maduraci&oacute;n organol&eacute;ptica, un fuerte incremento en la acumulaci&oacute;n de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno en las semillas, contempor&aacute;neo a los cambios m&aacute;s notables observados en la producci&oacute;n de etileno, respiraci&oacute;n y composici&oacute;n antioxidante, sugiriendo la gran influencia de esta especie reactiva del ox&iacute;geno en la regulaci&oacute;n de esta etapa (Shen <i>et al</i>., 2008). Asimismo, la reducci&oacute;n del contenido de fenoles totales, puede estar asociado a que estos compuestos son usados en la s&iacute;ntesis de la estructura qu&iacute;mica fundamental de las antocianidinas y antocianinas, el anillo flavilium, y que su p&eacute;rdida est&aacute; relacionada con la minimizaci&oacute;n de la actividad de las enzimas causantes del pardeamiento durante las etapas que preceden a la senescencia, en las cuales esta actividad no es deseada (Shen <i>et al</i>., 2008; Fadda y Mulas, 2010). </p>     <p>    <center><a name="tab3"><img src="img/revistas/rfnam/v66n1/v66n1a11t3.jpg"></a></center></p>     <p>Huang <i>et al</i>., 2007 reportaron en naranja (<i>Citrus   sinensis</i> L.), que la etapa de maduraci&oacute;n organol&eacute;ptica   se caracteriz&oacute; por la evoluci&oacute;n decreciente de FRAP   como consecuencia de la reducci&oacute;n del contenido de   ascorbato y de los compuestos polifen&oacute;licos propios de   este tipo de fruta. Otros autores han reportado, por el   contrario, en granada (<i>Punica granatum</i> Linn.) y <i>Rubus ideaus</i> L. el aumento de DPPH, y de DPPH y ORAC, respectivamente, durante la etapa de maduraci&oacute;n organol&eacute;ptica, como consecuencia, posiblemente, de la formaci&oacute;n de antocianinas (Kulkarni y Aradhya, 2005; Stoner y Seeram, 2011). En extractos acuosos de tres genotipos de <i>P. cattleianum</i> Sabine en estado de madurez de consumo, se determin&oacute; un contenido de antocianinas totales entre 4,82 y 6,29 mg/100 g fruta fresca, as&iacute; como un contenido de fenoles totales entre 581,02 y 632,56 mg de &aacute;cido g&aacute;lico/100 g de fruta fresca (Lisboa <i>et al</i>., 2011). </p>      <p>En cuanto al &aacute;cido asc&oacute;rbico, se han observado en los estados maduros de <i>Psidium cattleianum</i> Sabine valores entre 0,12 y 0,45 mg de &aacute;cido asc&oacute;rbico/100 g fruta fresca (Lisboa <i>et al</i>., 2011), y en extractos acuosos de granada (<i>Punica granatum</i> L.) en estado maduro, de aproximadamente 6 mg/100 g de fruta fresca (Kulkarni y Aradhya, 2005). En <i>Rubus fruticosus y Vaccinium corymbosumse</i> se obtuvieron unos contenidos del mismo compuesto en los estados maduros de 15,5 y 12,4 mg/100 g de fruta fresca, respectivamente (Szajdek y Borowska, 2008). En guayaba (<i>Psidium guajava</i> L.), se report&oacute; que el contenido de &aacute;cido asc&oacute;rbico mostr&oacute; un comportamiento sigmoidal (Mondal <i>et al</i>., 2009), similar al de esta investigaci&oacute;n, durante la maduraci&oacute;n organol&eacute;ptica. </p>     <p>Finalmente, el contenido de fenoles totales y la actividad antioxidante evaluada por las diferentes metodolog&iacute;as present&oacute; una elevada correlaci&oacute;n (<a href="#tab4">Tabla 4</a>); por lo tanto, es posible inferir que en funci&oacute;n de las caracter&iacute;sticas estructurales asociadas a la actividad antioxidante de los compuestos fen&oacute;licos; que &eacute;stos fueron posiblemente los principales responsables de la actividad antioxidante de los frutos de <i>Psidium cattleianum</i> Sabine. </p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="tab4"><img src="img/revistas/rfnam/v66n1/v66n1a11t4.jpg"></a></center></p>      <p><font size="3"><b>Conclusiones</b></font></p>     <p>Los frutos de <i>P. cattleianum</i> Sabine que crecen bajo las condiciones del bosque h&uacute;medo montano bajo, de Colombia, tienen un alto contenido de sustancias con actividad antioxidante, lo que apoya el desarrollo de esta especie como nueva alternativa productiva; otorgando, por lo tanto, a la misma un valor de existencia, opci&oacute;n y utilizaci&oacute;n. El estudio de la evoluci&oacute;n de la actividad antioxidante de los frutos a lo largo del periodo de desarrollo, permite describir asimismo el proceso de estr&eacute;s oxidativo. Los elevados valores de actividad antioxidante y contenido de las sustancias involucradas, observados en los estados de madurez de cosecha y de consumo, posicionan a la guayaba fresa como una fruta con un alto potencial nutrac&eacute;utico, que se puede cultivar extensivamente en las zonas alto andinas de Colombia. </p> <hr>     <p><font size="3"><b>Bibliograf&iacute;a</b></font></p>      <!-- ref --><p> <b></b>Abassi, N.A., M.M. Kushad and A.G. Endress. 1998. Active oxygen -scavenging enzymes activities in developing apple flowers and fruits. Scientia Horticulturae 74(3): 183-194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S0304-2847201300010001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Benzie, I.F. and J.J. Strain. 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of "antioxidant power": the FRAP assay. Analytical Biochemistry 239(1): 70-76.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S0304-2847201300010001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Coelho de Souza, G., A.P. Haasb, G.L. von Poserc, E.E. Schapovalc and E. Elisabetsky. 2004. Ethnopharmacological studies of antimicrobial remedies in the south of Brasil. Journal of Ethnopharmacology 90(1): 135-143.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S0304-2847201300010001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Coleto, J.M. 1994. Crecimiento y desarrollo de las especies frutales. Segunda edici&oacute;n. Ediciones Mundiprensa, Espa&ntilde;a. 167 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S0304-2847201300010001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>De Souza, G., A.P. Haasb, G.L. von Poserc, E.E. Schapovalc and E. Elisabetsky. 2004. Ethnopharmacological studies of antimicrobial remedies in the south of Brasil. Journal of Ethnopharmacol 90(1): 135-143.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S0304-2847201300010001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Fadda, A. and M. Mulas. 2010. Chemical changes during myrtle (<i>Myrtus communis </i>L.) fruit development and ripening. Scientia Horticulturae 125(3): 477-485.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S0304-2847201300010001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Gandolfo, S.P. 2008. Factores Ecofisiol&oacute;gicos Relacionados con el crecimiento vegetativo, floraci&oacute;n y desarrollo del fruto del aguacate. Tesis doctoral. Departamento de Producci&oacute;n Vegetal. Universidad Polit&eacute;cnica de Valencia, Valencia, Espa&ntilde;a. 211 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S0304-2847201300010001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Gaviria, C.A., O.A. Cifuentes, C.E. Monsalve y B. Rojano. 2007. Actividad antioxidante de extractos metan&oacute;licos de <i>Attalea butyraceae</i>. Scientia et Technica 13(33): 297-298.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S0304-2847201300010001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Gaviria, C., C. Ochoa, N. S&aacute;nchez, C. Medina, M. Lobo, P. Galeano, A. Mosquera, A. Tamayo, Y. Lopera y B. Rojano. 2009. Actividad antioxidante e inhibici&oacute;n de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica de extractos de frutos de morti&ntilde;o (<i>Vaccinium meridionale</i> SW). Bolet&iacute;n Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Arom&aacute;ticas 8(6): 519-528.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S0304-2847201300010001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Gil - Albert, V.F. 1995. Tratado de Arboricultura Frutal. Vol&uacute;men 1. Morfolog&iacute;a y fisiolog&iacute;a del &aacute;rbol frutal. Cuarta edici&oacute;n. Ediciones Mundiprensa, Madrid. 102 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S0304-2847201300010001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Hern&aacute;ndez, M. y A. Sastre. 1999. Tratado de nutrici&oacute;n. Ediciones D&iacute;az de Santos S.A., Madrid. 1.496 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0304-2847201300010001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Holdridge, LR. 1967. Life zone ecology. Tropical Science Center, San Jos&eacute;, Costa Rica. 206 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0304-2847201300010001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Huang, R., R. Xia, L. Hu, Y. Lu and M. Wang. 2007. Antioxidant activity and oxygen - scavenging system in orange pulp during fruit ripening and maturation. Scientia Horticulturae 113(2): 166-172.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0304-2847201300010001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Iturbe, I. 1996. Sistemas antioxidantes en plantas de guisante sometidas a estreses ambientales. Tesis doctoral. Consejo Superior de Investigaciones Cient&iacute;ficas, Zaragoza, Espa&ntilde;a. 129 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0304-2847201300010001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Janick, J. and R.E. Paull. 2008. The enciclopedia of fruit and nuts. CABI North American Office, Cambridge, USA. 954 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0304-2847201300010001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Krishnaiah, D., R. Sarbatly and R. Nithyanandam. 2011. A review of the antioxidant potential of medicinal plant species. Food and Bioproducts Processing 89(3): 217-233.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0304-2847201300010001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Kulkarni, A.P. and S.M. Aradhya. 2005. Chemical changes and antioxidant activity in pomegranate arils during fruit development. Food Chemistry 93(2): 319-324.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0304-2847201300010001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Lisboa, A., L.I. Reckziegel, F. Clasen, M. Salvador, R. Carlos, W. Padilha da Silva, L. Nora, and C. Valmor. 2011. Ara&ccedil;&aacute; (<i>Psidium cattleianum</i> Sabine) Function of antioxidant enzymes and metabolites during maturation of pea. Food Chemistry 128(4): 916-922.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0304-2847201300010001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Matamoros, M.A., J. Loscos, K.J. Dietz, P.M. Aparicio and M. Becana. 2010. Function of antioxidant enzymes and metabolites during maturation of pea fruits. Journal of Experimental Botany 61(1): 87-97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0304-2847201300010001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Mondal, K., N.S. Sharma, S.P. Malhotra, K. Dhawan and R. Singh. 2004. Antioxidant systems in ripening tomato fruits. Biologia Plantarum 48(1): 49-53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0304-2847201300010001100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Mondal, K., Malhotra, SP., Jain, V. and Singh, R. 2009. Oxidative stress and antioxidant systems in Guava (<i>Psidium guajava</i> L.) fruits during ripening. Anual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology 15(4): 328-334.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0304-2847201300010001100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Naranjo, M., T. V&eacute;lez, y B. Rojano. 2011. Actividad antioxidante de caf&eacute; colombiano de diferentes calidades. Revista Cubana de Plantas Medicinales 16(2): 164-73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0304-2847201300010001100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Oliveira, I., P. Baptista, R. Malheiro, S. Casal, A. Bento and J.A. Pereira. 2011. Influence of strawberry tree (<i>Arbutus unedo</i> L.) fruit ripening stage on chemical composition and antioxidant activity. Food Research International 44(5): 1401-1407.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S0304-2847201300010001100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Prior, RL. and G. Cao. 2000. Analysis of botanicals and dietary supplements for antioxidant capacity: a review. Journal of AOAC Internacional 83(4): 950-956.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0304-2847201300010001100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Re, R.,  N. Pellegrini, A. Proteggente, A. Pannala, M. Yang and C. Rice-Evans. 1999. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biology and Medicine 26(9- 10): 1231-1237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S0304-2847201300010001100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Rojano, B., C.A. Gaviria, M.A. Gil, J.A. Saez, G. Schinella y  H. Tournier. 2008. Actividad antioxidante del isoespintanol en diferentes medios. Vitae 15(1): 173-181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S0304-2847201300010001100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Rojano, B., I.C. Zapata y F. Cortes. 2012. Estabilidad de antocianinas y valores de capacidad de absorbancia de radicales ox&iacute;geno (ORAC) de extractos acuosos de corozo (<i>Bactris guineensis</i>). Revista  Cubana de Plantas Medicinales 17(3): 244-255.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S0304-2847201300010001100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Rojano, B.A., I.C. Zapata, A.F. Alzate, A.J. Mosquera, F.B. Cortes y L. Gamboa. 2011. Polifenoles y actividad antioxidante del fruto liofilizado de palma naidi (A&ccedil;ai Colombiano) (<i>Euterpe oleracea</i> Mart). Revista Facultad Nacional de Agronom&iacute;a Medell&iacute;n 64(2): 6213-6220.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S0304-2847201300010001100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Romero, M., B. Rojano, J. Mella, C.D. Pessoa, E. Lissi and C. L&oacute;pez. 2010. Antioxidant capacity of pure compounds and complex mixtures evaluated by the ORAC - Pyrogallol red assay in the presence of Triton X-100 micelles. Molecules 15(9): 6152-6167.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S0304-2847201300010001100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Shakya, R. and D.A. Navarre. 2006. Rapid screening of ascorbic acid, glycoalkaloids, and phenolics in potato using high-performance liquid chromatography. Journal of Agricultural and Food Chemistry 54(15): 5253-5260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S0304-2847201300010001100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Shen, L., Y. Ruan, K. Liu and J. Sheng. 2008. Metabolism of reactive oxygen dynamic changes during tomato fruit ripening and senescence. Acta Horticulturae 768: 517-523.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S0304-2847201300010001100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Singleton, V.L. and J.A. Rossi. 1965. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture 16(3): 144-158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S0304-2847201300010001100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Silva, A., N. Fern&aacute;ndez, M.A. Bacarin and M de G. De souza. 2007. Chemical composition and growth respiration in <i>Psidium cattleyanum</i> Sabine fruits during development cycle. Revista Brasileira de Fruticultura 29(1): 61-66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S0304-2847201300010001100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Stoner, G.D  and N.P. Seeram. 2011. Berries and cancer prevention. Springer, New York. 305 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S0304-2847201300010001100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>Szajdek, A. and E.J. Borowska. 2008. Bioactive compounds and health-promoting properties of berry fruits: a review. Plant Foods for Human Nutrition 63(4): 147-156.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0304-2847201300010001100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p> </font>      ]]></body><back>
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