<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0304-3584</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Actualidades Biológicas]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Actu Biol]]></abbrev-journal-title>
<issn>0304-3584</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Instituto de Biología, Universidad de Antioquia]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0304-35842012000200007</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[DEPENDENCIA MICORRÍCICA DE BARCINO (CLUSIACEAE: CALOPHYLLUM BRASILIENSE CAMBERS)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[MYCORRHIZAL DEPENDENCE OF BARCINO (CLUSIACEAE: CALOPHYLLUM BRASILIENSE CAMBERS)]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sierra-Escobar]]></surname>
<given-names><![CDATA[Jorge A.]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Castro-Restrepo]]></surname>
<given-names><![CDATA[Dagoberto]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Osório-Vega]]></surname>
<given-names><![CDATA[Walter]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A03"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad Católica de Oriente Grupo de estudios florísticos ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Rionegro Antioquia]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,Universidad Católica de Oriente Grupo de estudios florísticos ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Rionegro Antioquia]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<aff id="A03">
<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia sede Medellín Grupo de Microbiología de suelos ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Medellín Antioquia]]></addr-line>
<country>Colombia</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>12</month>
<year>2012</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>12</month>
<year>2012</year>
</pub-date>
<volume>34</volume>
<numero>97</numero>
<fpage>199</fpage>
<lpage>206</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0304-35842012000200007&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0304-35842012000200007&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0304-35842012000200007&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se realizó un experimento en invernadero, cuyo objetivo fue determinar la dependencia micorrícica de barcino (Calophyllum brasiliense Cambers). Para lo cual se utilizó un diseño experimental completamente al azar. Los tratamientos tuvieron un arreglo factorial 3 x 2 con cinco repeticiones, que consistieron en la combinación de tres concentraciones de fósforo (P) en la solución del suelo (0,002, 0,02 y 0,2 mg l-1) con 2 niveles de inoculación micorrizal de Glomus agreggatum Schenck y Smith, modificado por Koske (inoculado y no inoculado). Se emplearon como variables respuesta el contenido de P foliar en función del tiempo. Al momento de la cosecha, se determinaron la masa seca aérea (MSA), el P total absorbido (PTA) en la parte aérea, la colonización micorrizal y la dependencia micorrizal (DM). Los resultados indican que el contenido de P foliar no tuvo variaciones significativas en relación a la inoculación micorrizal. El contenido de P total absorbido no varió al igual que la masa seca aérea. No se presentó colonización micorrizal en ninguno de los tratamientos. Finalmente, no hubo dependencia micorrizal con G. agreggatum de barcino, ubicando a esta especie dentro de la categoría independiente, al menos en las condiciones del estudio.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A greenhouse bioassay was carried out to determine the mycorrhizal dependency of barcino (Calophyllum brasiliense Cambers), using a completely randomized experimental design. Treatments were arranged in a 3 x 2 factorial design with five repetitions, that consisted of combinations of three concentrations of phosphorus (P) in the soil solution (0.002, 0.02, and 0.2 mg l-1), with two levels of mycorrhizal inoculation with Glomus agreggatum Schenck and Smith, modified by Koske (inoculated and not innoculated). Leaf P content as a function of time was the response variable. Shoot dry matter (MSA), shoot P content (PTA), mycorrhizal colonization of roots, and mycorrhizal dependency (DM) were measured at harvest. The results indicated that foliar P content did not vary significantly with micorrizal inoculation. The total P content absorbed did not vary, nor did aerial dry mass. Micorrizal colonization with G. agreggatum was not documented in any of the treatments. Finally, barcino showed no mycorrhizal dependence to G. aggreggatum, placing this species in the independent category, at least under the conditions of this study.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[dependencia micorrizal]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[fósforo]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Calophyllum brasiliense]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Glomus agreggatum]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[mycorrhizal dependency]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[phosphorous]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Calophyllum brasiliense]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Glomus agreggatum]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">     <p align="right"> <b>ART&Iacute;CULOS DE INVESTIGACI&Oacute;N</b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="4"><b>DEPENDENCIA MICORR&Iacute;CICA DE BARCINO    <br> (CLUSIACEAE: <i>CALOPHYLLUM BRASILIENSE</i> CAMBERS)</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="3"><b> MYCORRHIZAL DEPENDENCE OF BARCINO    <br> (CLUSIACEAE: CALOPHYLLUM BRASILIENSE CAMBERS)</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b> Jorge A. Sierra-Escobar<sup>1</sup>; Dagoberto Castro-Restrepo<sup>2</sup>; Walter Os&oacute;rio-Vega<sup>3</sup></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>1 Grupo de estudios flor&iacute;sticos. Universidad Cat&oacute;lica de Oriente. A. A. 050956 Rionegro. Rionegro (Antioquia), Colombia. <a href="mailto:jsierra@uco.edu.co">jsierra@uco.edu.co</a>.</p>     <p>2 Grupo de estudios flor&iacute;sticos. Universidad Cat&oacute;lica de Oriente. A. A. 050956 Rionegro. Rionegro (Antioquia), Colombia. <a href="mailto:dcastro@uco.edu.co">dcastro@uco.edu.co</a>.</p>     <p>3 Grupo de Microbiolog&iacute;a de suelos. Universidad Nacional de Colombia sede Medell&iacute;n. Medell&iacute;n (Antioquia), Colombia. <a href="mailto:nwosorio@unal.edu.co">nwosorio@unal.edu.co</a>.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>Recibido: febrero 2012; aceptado: octubre 2012. </p> <hr noshade size="1">     <p><b> Resumen</b></p>     <p>Se realiz&oacute; un experimento en invernadero, cuyo objetivo fue determinar la dependencia micorr&iacute;cica de barcino   (<i>Calophyllum brasiliense</i> Cambers). Para lo cual se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar. Los   tratamientos tuvieron un arreglo factorial 3 x 2 con cinco repeticiones, que consistieron en la combinaci&oacute;n de tres   concentraciones de f&oacute;sforo (<b>P</b>) en la soluci&oacute;n del suelo (0,002, 0,02 y 0,2 mg l<sup>-1</sup>) con 2 niveles de inoculaci&oacute;n   micorrizal de <i>Glomus agreggatum</i> Schenck y Smith, modificado por Koske (inoculado y no inoculado). Se   emplearon como variables respuesta el contenido de P foliar en funci&oacute;n del tiempo. Al momento de la   cosecha, se determinaron la masa seca a&eacute;rea (<b>MSA</b>), el P total absorbido (<b>PTA</b>) en la parte a&eacute;rea, la colonizaci&oacute;n   micorrizal y la dependencia micorrizal (<b>DM</b>). Los resultados indican que el contenido de P foliar no tuvo variaciones   significativas en relaci&oacute;n a la inoculaci&oacute;n micorrizal. El contenido de P total absorbido no vari&oacute; al igual que la   masa seca a&eacute;rea. No se present&oacute; colonizaci&oacute;n micorrizal en ninguno de los tratamientos. Finalmente, no hubo   dependencia micorrizal con <i><i>G. agreggatum</i></i> de barcino, ubicando a esta especie dentro de la categor&iacute;a independiente, al menos en las condiciones del estudio.</p>     <p> <i>Palabras clave:</i> dependencia micorrizal, f&oacute;sforo, <i>Calophyllum brasiliense</i>, <i>Glomus agreggatum</i>.</p> <hr noshade size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b>Abstract</b></p>     <p>A greenhouse bioassay was carried out to determine the mycorrhizal dependency of barcino (<i>Calophyllum   brasiliense</i> Cambers), using a completely randomized experimental design. Treatments were arranged in a 3 x 2   factorial design with five repetitions, that consisted of combinations of three concentrations of phosphorus (<b>P</b>) in   the soil solution (0.002, 0.02, and 0.2 mg l<sup>-1</sup>), with two levels of mycorrhizal inoculation with <i>Glomus agreggatum</i>   Schenck and Smith, modified by Koske (inoculated and not innoculated). Leaf P content as a function of time   was the response variable. Shoot dry matter (<b>MSA</b>), shoot P content (<b>PTA</b>), mycorrhizal colonization of roots,   and mycorrhizal dependency (<b>DM</b>) were measured at harvest. The results indicated that foliar P content did not   vary significantly with micorrizal inoculation. The total P content absorbed did not vary, nor did aerial dry mass.   Micorrizal colonization with <i><i>G. agreggatum</i></i> was not documented in any of the treatments. Finally, barcino showed   no mycorrhizal dependence to G. aggreggatum, placing this species in the independent category, at least under the conditions of this study.</p>     <p> <i>Key words:</i> mycorrhizal dependency, phosphorous, <i>Calophyllum brasiliense</i>, <i>Glomus agreggatum</i>.</p> <hr noshade size="1">     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>Las micorrizas son asociaciones simbioticas   beneficas entre las raices de las plantas y   algunos hongos del suelo, se cree que estos   hongos forman mutualismos con el 95% de las   plantas terrestres (Sanchez 1999). Existen varios   tipos de hongos micorricicos (ectomicorrizas,   endomicorrizas y ectendomicorrizas) que se   diferencian entre si por sus caracteristicas   morfo-anatomicas, y por las plantas hospederas   que colonizan (Brundrett 2002, Silvia et   al. 2005). Las endomicorrizas o hongos   micorrizo arbusculares (<b>HMA</b>), son el grupo   mas representativo formando asociaciones con   el 80% de las especies de plantas, principalmente   tropicales (Schusler et al. 2001, Silvia et   al. 2005). Son varios los beneficios para las   plantas derivados de la simbiosis, por ejemplo,   se incrementa la captacion de nutrientes por   parte de la planta, especialmente P, Cu, y Zn   (Bolan 1991, Johansen et al. 1993, Jakobsen   et al. 1992b, Sieverding 1991), se mejora la   estructura del suelo, se aumenta la resistencia de   la planta al estres biotico y abiotico, se favorece   las interacciones con otros microorganismos   beneficos (Barea et al. 2002, Elsen et al. 2003,   Haselwandter y Bowen 1996, Johansson et al.   2004, Mansfeld et al. 2002, Sieverding 1991). Pero   no todas las plantas reciben estos beneficios debido   a que no realizan simbiosis con los HMA, o   pueden hacerlo con diferente intensidad. En este   sentido, Plenchette et al. (1983) determinaron   que la dependencia micorrizal (<b>DM</b>) varia para   cada especie, definiendo asi DM como el grado   en el cual una especie de planta es dependiente   sobre la condicion micorrizal para producir su   maximo crecimiento o rendimiento con un nivel de   fertilidad de suelo dado. Numerosos estudios   de DM se han realizado utilizando la formula de   Plenchette et al. (1983), en Colombia se registran   algunos articulos con especies de plantas nativas   e introducidas como <i>Coffea arabiga</i> (Jaramillo   y Osorio 2009), <i>Ocotea sp.</i> (Sierra et al. 2009),   Persea americana (Montoya y Osorio 2009) y   <i>Solanum quitoense</i> (Gonzalez y Osorio 2008).   A pesar de su reconocida importancia, es   poco lo que se conoce sobre DM en especies   arboreas nativas, este dato seria fundamental   si queremos profundizar en el manejo efectivo   de las especies autoctonas, como por ejemplo   para usos en restauracion, conservacion ex situ,   enriquecimiento de bosques entre otros. En este   sentido, se escogio para el estudio de DM a la   especie <i>Calophyllum brasiliense</i> Cambess.,   arbol perteneciente a la familia Clusiaceae, de   gran importancia ecologica y etnobotanica, que   se encuentra en el interior de bosques maduros   o secundarios muy maduros hasta los 2.100 m   de altitud, su uso y tala la han llevado a un   dramatico descenso de sus poblaciones (Vargas   2002), siendo prioritario su repoblamiento.   Por tal motivo, el objetivo principal del   presente estudio fue determinar la dependencia micorricica de barcino (<i>C. brasiliense</i>).</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>MATERIALES Y METODOS</b></font></p>     <p> <b>Sitio de estudio.</b> El experimento de dependencia   micorrizal (<b>DM</b>) se realizo en el invernadero de   la Universidad Catolica de Oriente, Rionegro   (Antioquia), Colombia (6&deg; 9' 15,2'' N, 75&deg; 22'   10,4'' O y altitud de 2.112 m). El sitio presenta,   una temperatura promedio de 17 &deg;C y una   precipitacion anual de 1.700 mm y se ubica en   la zona de vida bosque humedo montano bajo   (Holdridge 1978).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b>Metodologia</b>. <i>Suelo</i>. El suelo utilizado para el   experimento correspondio a una muestra del   horizonte subsuperficial (<b>Bw</b>) de un andisol de   la estacion experimental Piedras Blancas (6&deg;   15' 38'' N, 75&deg; 30' 23'' O; altitud 2.484 m), para   reducir la influencia del fosforo (<b>P</b>) organico   sobre el P disponible. El suelo se seco al aire   y se tamizo a 4 mm y luego se analizo en   el Laboratorio de Suelos de la Universidad   Nacional de Colombia, Sede Medellin. El pH   del suelo se ajusto a 5,9 con 2 g de CaCO<sub>3</sub> por   kg de suelo para evitar niveles altos de aluminio   y optimizar la solubilidad de P. Para determinar   el requerimiento de cal se realizo una curva de   incubacion con CaCO<sub>3</sub> (Uchida y Hue 2000).   El suelo se esterilizo con vapor a 80 &deg;C durante   una hora. La fertilizacion del sustrato consistio   en la adicion de (mg kg <sup>-1</sup>): urea 0,17, CaSO<sub>4</sub>  2H<sub>2</sub>O 0,73, MgSO<sub>4</sub>. 7H2O 0,93, y K<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> 0,21.   Asimismo, se aplico P en forma de KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>  para obtener tres concentraciones de P en la   solucion del suelo 0,002-0,02 y 0,2 mg l<sup>-1</sup>  segun lo propuesto por Habte y Manjunath   (1991). Para este fin se realizo una isoterma de   adsorcion de P de acuerdo al metodo de Fox y   Kamprath (1970) cuyos resultados se muestran   en la (<a href="#f1">figura 1</a>). Las cantidades de KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>  fueron 2-3,8 y 17,6 g kg<sup>-1</sup>. Luego, el sustrato   esteril y fertilizado se trasfirio a bolsas plasticas   con dimensiones de 13 cm de diametro y 19,5 cm   de alto.</p>         <p align="center"><a name="f1"></a><img src="/img/revistas/acbi/v34n97/v34n97a07f1.jpg"></p>     <p> Cada unidad experimental recibio quincenalmente   la solucion nutritiva Hogland libre de P a las   siguientes dosis (mg l<sup>-1</sup>): N 50, K 132, Mg 106, S   204, Zn 10, Cu 5, B 0,8 y Mo 0,5. El sustrato se   mantuvo entre un 50-60% de la maxima capacidad   de retencion de agua (39 y 47%, respectivamente),   para lo cual se aplico agua corriente o la solucion   nutritiva mencionada.</p>     <p><i>Muestras biologicas.</i> La especie utilizada   en el experimento fue barcino (<i>Calophyllum   brasiliense</i> Cambess.) perteneciente a la   familia Clusiaceae. Semillas de barcino fueron   suministradas por Corantioquia (Programa de   conservacion de flora y fauna) y se obtuvieron   de una fuente semillera identificada ubicada en   el municipio de Jardin (Antioquia), Colombia.   Todas las semillas se lavaron con agua destilada,   se desinfectaron con hipoclorito de sodio al   1%, se trasfirieron a bandejas de germinacion   (temperatura ambiente) que contenian arena   esterilizada hasta su germinacion. Una vez   germinadas cada plantula de barcino se trasplanto   a potes plasticos que contenian arena esteril   donde permanecieron hasta alcanzar 10 o 15 cm   de altura, para posteriormente pasarlas a bolsa   plastica en su respectiva unidad experimental.</p>     <p> Se utilizo un inoculo puro de <i>Glomus agreggatum</i>   Schenck y Smith modificado por Koske de   efectividad comprobada, el cual contenia esporas,   fragmentos de raices infectadas e hifas del hongo   suspendidas en una matriz solida compuesta   por suelo y cuarzo (1:1). El inoculo tuvo 8.500   propagulos micorrizales infectivos por kg de   suelo determinado por el metodo del numero   mas probable (<b>NMP</b>) (Porter 1979). Este hongo   fue originalmente suministrado por M. Habte de   la Universidad de Hawaii (Honolulu, U. S. A.) y   multiplicado en raices de sorgo y kudzu (Habte   y Osorio 2001). Su efectividad para incrementar   la absorcion de P y el crecimiento vegetal en   suelos con bajo contenido de P soluble ha sido   comprobada por Gonzalez y Osorio (2008),   Jaramillo et al. (2004) y Osorio et al. (2008). Al   momento de la siembra, 20 g de inoculo crudo   de <i>G. aggregatum</i> por kg de suelo se mezclaron   uniformemente en cada unidad experimental. El   suelo no inoculado recibio 20 g de suelo esteril   por kg, ademas de filtrados de una suspension   del inoculo crudo (10%) luego de remover   las estructuras de los hongos con papel filtro   Schleicher y Schuell (tamano de poro: 2 &micro;m).</p>     <p> <i>Tratamientos</i>. Se utilizo un diseno   experimental completamente al azar. Los   tratamientos tuvieron un arreglo factorial 3   x 2 con cinco plantulas por tratamiento; los   tratamientos consistieron en la combinacion   de tres niveles de P (0,002-0,02 y 0,2 mg l<sup>-1</sup>)   con 2 niveles de inoculacion micorrizal de <i>G. agreggatum</i> (inoculado y no inoculado).</p>     <p> Se realizaron mediciones periodicas del contenido   de P en las hojas jovenes completamente   maduras (Habte y Osorio 2001). Para tal fin, una   porcion circular del tejido foliar se removio con   un perforador (6 mm de diametro) (<a href="#f2">figura 2</a>). El   contenido de P se expreso en terminos de &micro;g por   disco de hoja. El P fue determinado por el metodo   del azul de molibdato (Murphy y Riley 1962)   luego de reducir los discos de hoja a cenizas en   mufla a 500 &deg;C por 3 h. Este metodo de muestreo   no destructivo fue originalmente propuesto por   Aziz y Habte (1987).</p>           <p align="center"><a name="f2"></a><img src="/img/revistas/acbi/v34n97/v34n97a07f2.jpg"></p>           <p align="center">&nbsp;</p>           <p> Al final del periodo de crecimiento de las plantas   se cosecho la parte aerea de las plantulas. Las   muestras se llevaron a estufa y se secaron a 60 &deg;C   durante 72 horas. Luego se determino la masa   seca aerea (<b>MSA</b>). EL fosforo total absorbido   (<b>PTA</b>) en la parte aerea fue determinado al final   de la cosecha como se describio anteriormente.   Para esto se utilizo la concentracion de P en el   disco de hoja al momento de la cosecha (Habte et   al. 1987). Para la colonizacion micorrizal (<b>CM</b>)   las raices finas de las plantas se sometieron a   KOH para aclaracion de las raices (Phillips y   Hayman 1970), luego se tineron con fucsina   acida (Kormanik et al. 1980) y posteriormente se   determino la colonizacion micorrizal siguiendo   el metodo del intercepto de cuadricula propuesto   por Giovannetti y Mosse (1980). Con los datos de   masa seca total (masa seca aerea), se determino la   dependencia micorrizal (<b>DM</b>) usando para ello   la formula propuesta por Plenchette et al. (1983).   La DM se clasifico de acuerdo a lo propuesto   por Habte y Manjunath (1991):</p>             ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/acbi/v34n97/v34n97a07e1.jpg"></p>     <p> <i>Analisis estadistico</i>. Los datos obtenidos se   sometieron al analisis de varianza (prueba F) para   determinar si existian diferencias significativas   en funcion de los tratamientos. La prueba de la   diferencia minima significativa (<b>LSD</b>) se uso   para separar promedios con respecto al control   no inoculado en cada uno de los niveles de P.   Para los analisis estadisticos se empleo un nivel   de significancia (P) &le; 0,05 y se utilizo el paquete   estadistico StatGraphics version 4.0.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>RESULTADOS Y DISCUSION</b></font></p>     <p> El sustrato de crecimiento arrojo los siguientes   resultados: arena 92%, limo 4%, arcilla 4%,   textura A (Bouyucos), pH 5,7 (agua, 1:1, V:V ),   materia organica 11% (Walkley y Black), calcio,   magnesio y potasio, 1,7-0,1 y 0,05 cmol<sub>c</sub> kg<sup>-1</sup>  (acetato de amonio 1M, pH 7), respectivamente;   fosforo 1 mg kg<sup>-1</sup> (Bray II); hierro, manganeso,   cobre y zinc 64, 1,1 y 1 mg kg<sup>-1</sup> (Olsen-EDTA);   boro no detectable mg kg<sup>-1</sup> (agua caliente);   nitrato 3 mg kg-1 (sulfato de aluminio 0,025M)   y amonio 18 mg kg<sup>-1</sup> (KCl 1M).</p>     <p>  Con respecto a la inoculacion micorrizal con <i>G. agreggatum</i>, esta no tuvo efectos significativos   sobre el contenido de P foliar en barcino en los   niveles de P evaluados en la solucion de suelo y   para todas las fechas de muestreo. En la <a href="#f3">figura 3</a>,   se aprecia que no existen diferencias entre los   tratamientos inoculados y no inoculados cuando   se compara un mismo nivel de P. Por otro lado,   cuando se comparan las concentraciones diferentes   de P (0,2-0,02 y 0.002 mg l<sup>-1</sup>), la concentracion de   P en la solucion del suelo de 0,2 mg l<sup>-1</sup> incremento   significativamente el contenido de P foliar   (independientemente si el tratamiento estaba   inoculado) en todos los dias de muestreo con   valores superiores a 2,6 &micro;g/disco, resultado   diferente de las otras concentraciones de P con   valores inferiores a 1,8 &micro;g/disco (<a href="#f3">figura 3</a>). La   concentracion de P en la solucion de suelo de   0,2 mg l<sup>-1</sup> reflejo incrementos significativos en   el P foliar, aunque dichos incrementos no se   manifestaron en el crecimiento vegetal cuando   se evaluo su masa (<a href="#f4">figura 4</a>), resultados similares   fueron observados en Retrophylum rospigliosii   en el mismo nivel de P (0,2 mg l<sup>-1</sup>) que a pesar   de una alta concentracion de P foliar no hubo   aumento de su masa (Osorio et al. 2008).</p>             <p align="center"><a name="f3"></a><img src="/img/revistas/acbi/v34n97/v34n97a07f3.jpg"></p>             <p align="center">&nbsp;</p>             <p align="center"><a name="f4"></a><img src="/img/revistas/acbi/v34n97/v34n97a07f4.jpg"></p>     <p> La MSA no presento diferencias significativas   entre M y MN para los diferentes niveles de P   (<a href="#f4">figura 4</a>). Sin embargo, al comparar entre niveles   de P, se encontro que en la medida que P en solucion   incremento, la MSA fue significativamente   menor (<a href="#f4">figura 4</a>). El fosforo total absorbido   tampoco presento diferencias significativas   respecto a la inoculacion (M y NM) para los   diferentes niveles de P (<a href="#f4">figura 4</a>). No se encontro   colonizacion micorrizal en <i>C. brasiliense</i>, ya que   no se detectaron estructuras de <i><i>G. agreggatum</i></i>   en ninguno de los tratamientos evaluados. En   cuanto a la dependencia micorricica de barcino   con <i><i>G. agreggatum</i></i> se obtuvo diferencias negativas   aplicando la formula de Plenchete et al. (1983) lo   cual da como resultado independencia micorrizal,   por lo menos en cuanto a la especie micorricia   utilizada (<a href="#t1">tabla1</a>).</p>             ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/acbi/v34n97/v34n97a07t1.jpg"></p>     <p>  Los resultados concuerdan con algunos estudios   realizados en bosques humedos tropicales, en   donde las especies pioneras y secundarias iniciales   estan mayormente influenciadas por la simbiosis   micorrizal que las especies secundarias tardias   y las climax (Siqueira y Saggin-Junior 2001,   Zangaro et al. 2000, 2003), es de anotar, que   barcino pertenece al grupo ecologico de las   climax (Kageyama y Viana 1989).</p>     <p> Los niveles bajo e intermedio de P disponible   (0,002 y 0,02 mg l<sup>-1</sup>) solo tuvieron ligeras   variaciones sobre la MSA, lo que indica la gran   adaptacion de esta especie a suelos con bajo   contenido de P. Incluso, el sistema radicular   vario con respecto al contenido de P, en el nivel   mas alto, las raices se afectaron tanto en tamano   como en numero y en vigor (<a href="/img/revistas/acbi/v34n97/v34n97a07f5.jpg" target="_blank">figura 5</a>).</p>     <p> Es explicable el crecimiento reducido en el nivel   mas alto, debido a que el habitat en que crece   <i>C. brasiliense</i>, siendo una especie de interior de   bosque andino adaptada a suelos pobres en P; la   cual en condiciones de P a un nivel superior al   normal para la planta, pudo llevar a causar un   efecto de toxicidad, afectando negativamente   el crecimiento; ademas, la mayoria de las   plantas toman el P inorganico del suelo, ya sea   una planta micorrizada o no micorrizada sin   afectar la fraccion organica (Bolan 1991), lo que   permite inferir la saturacion de P al nivel mas   alto (0,2 mg/l). Es bueno resaltar que, en general   existe mayor incremento en el crecimiento   vegetal cuando se adicionan a las plantas bajas   dosis de P soluble, e incluso se manifiestan   cambios cuando se aplica la misma cantidad de   P soluble pero con diferente fuente de fertilizante   (Bolan 1991).</p>     <p> En conclusion, no se presento colonizacion   micorrizal en ninguno de los tratamientos, ni   dependencia micorrizal con <i><i>G. agreggatum</i></i>   en barcino, lo cual ubica a esta especie dentro   de la categoria independiente, al menos en las   condiciones del estudio. No se sabe aun si <i>C.   brasiliense</i> responderia de la misma forma   con otras especies de HMA, o con inoculos   multiesporicos.</p>     <p> La informacion aqui presentada, sera de utilidad   para todas las personas e instituciones interesadas   en propagar masivamente a la especie <i>C.   brasiliense</i>, ya que, define algunos aspectos de   las relaciones simbioticas de la misma.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3"> <b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p> Este trabajo fue realizado gracias a la financiacion   y apoyo de la Direccion de Investigacion y   Desarrollo de la Universidad Catolica de Oriente,   en coordinacion con la Unidad de Biotecnologia   Vegetal de la misma universidad. Ademas,   se agradece muy especialmente a todos los   integrantes del Grupo de Microbiologia de   Suelos de la Universidad Nacional Sede   Medellin, quien con su apoyo permitieron llevar   a feliz termino la presente investigacion.</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p> 1. Aziz T, Habte M. 1987. Determining vesicular-arbuscular   micorrizal effectiveness by monitoring P status of leaf   disk. Canadian Journal of Botany, 33: 1097-1101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S0304-3584201200020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 2. Barea JM, Azcon R, Azcon-Aguilar C. 2002.   Mycorrhizosphere interactions to improve plant fitness   and soil quality. Antonie Van Leewenhoek, 81: 343-351.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S0304-3584201200020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 3. Bolan NS. 1991. A critical review on the role of mycorrhizal   fungi in the uptake of phosphorus by plants. Plant and   Soil, 134: 189-293.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S0304-3584201200020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 4. Brundrett MC. 2002.Coevolution of root and mycorrhizas of   land plants. New Phytologist, 154: 275-304.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S0304-3584201200020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 5. Elsen A, Baimey H, Swennen R, De Waele D. 2003. Relative   mycorrhizal dependency and mycorrhiza nemato de   interaction in banana cultivars (<i>Musa</i> spp.) differing in   nematode susceptibility. Plant and Soil, 256: 303-313.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S0304-3584201200020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 6. Fox R, Kamprath E. 1970. Phosphate sorption isotherms for   evaluating the phosphate requirements of soils. Soil   Science Society of America Proceedings, 34: 902-907.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0304-3584201200020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 7. Giovannetti M, Mosse B. 1980. An evaluation of techniques   for measuring vesicular-arbuscular mycorrhizal   infection in roots. <b>New Phytologist</b>, 84: 489-500.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0304-3584201200020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 8. Gonzalez O, NW Osorio. 2008. Determinacion de la   dependencia micorrizal del lulo. Acta Biologica   Colombiana, 13 (2): 163-174.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0304-3584201200020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 9. Habte M, Fox R, Huang R. 1987. Determining vesicular   arbuscular micorrizal effectiveness by monitoring P   status of subleaflets of indicator plants. Communications   in Soil Science and Plant Analysis, 18: 1403-1420.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0304-3584201200020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 10. Habte M, Manjunath A. 1991. Categories of vesicular   arbuscular mycorrhizal dependency of host species.   Mycorrhiza, 1: 3-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0304-3584201200020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 11. Habte M, Osorio NW. 2001. Arbuscular Mycorrhizas:   Producing and applying Arbuscular Mycorrhizal   Inoculum. Honolulu: University of Hawaii. p. 47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0304-3584201200020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 12. Haselwandter K, Bowen GD. 1996. Mycorrhizal relations   in trees for agroforestry and land rehabilitation. Forest   Ecology and Management, 81: 1-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0304-3584201200020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 13. Holdridge LR. 1979. Ecologia en zonas de vida. San Jose   (Costa Rica): Instituto Interamericano de Ciencias   Agricolas (IICA). Organizacion de Estados Americanos   (OEA). p. 216.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0304-3584201200020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 14. Jakobsen I, Abbott LK, Robson AD. 1992. External hyphae of   vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi associated with<i> Trifolium subterraneum</i> L. 2. Hyphal transport of 32P   over defined distances. New Phytologist, 120: 509-516.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0304-3584201200020000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 15. Johansen A, Jakobsen I, Jensen ES. 1993. External hyphae of   vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi associated with<i> Trifolium subterraneum</i> L. 3. Hyphal transport of 32P   and 15N. New Phytologist, 1993: 61-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0304-3584201200020000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 16. Jaramillo SP, Osorio NW. 2009. Mycorrhizal dependency   of coffee seedling at different levels of soil solution   phosphorus. Revista Suelos Ecuatoriales, 39 (1): 100-106.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0304-3584201200020000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 17. Jaramillo SP, Silva M, Osorio NW. 2004. Potencial   simbiotico y efectividad de hongos micorrizico   arbusculares de tres suelos sometidos a diferentes   usos. Revista de la Facultad Nacional de Agronomia   Medellin. 57 (1): 2203-2214.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0304-3584201200020000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 18. Kageyama P, Viana VM. 1989. Tecnologia de sementes e grupos   ecologicos de especies tropicales. Sao Paulo. Simposio   Brasileiro sobre Tecnologia de Semillas Florestais.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0304-3584201200020000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 19. Kormanik PP, McGraw AC, Schultz RC. 1980. Procedure   and equipment for staining a large number of plant   samples for endomycorrhizal assay. Canadian Journal   of Botany, 26: 536-538.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0304-3584201200020000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 20. Mansfeld-Giese K, Karsen J, Bodker L. 2002. Bacterial   populations associated with mycelium of the arbuscular   mycorrhizal fungus <i>Glomus intrarradices</i>. FEMS   Microbiology Ecology, 41: 133-140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0304-3584201200020000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 21. Montoya B, Osorio NW. 2009. Mycorrhizal dependency of   avocado at different levels of soil solution phosphorus.   Revista Suelos Ecuatoriales, 39 (2): 143-147.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0304-3584201200020000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 22. Murphy J, Riley JP. 1962. A modified single solution method   for the determination of phosphate in natural waters.   Analytica Chimica Acta, 27: 31-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0304-3584201200020000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 23. Osorio, NW, Diez MC, Sierra JA, Paternina L. 2008.   Consideraciones ecologicas sobre la asociacion   micorrizal en suelos de la region altoandina. En: Leon   JD, editor. Ecologia de bosques andinos. Experiencias   de investigacion. Medellin (Colombia): La Carreta   Editores. p. 181-200.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0304-3584201200020000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 24. Phillips JM, Hayman DS. 1970. Improved procedures for   clearing and staining parasitic and vesicular-arbuscular   mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection.   Transactions of the British Mycological Society, 55:   158-161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0304-3584201200020000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 25. Plenchette C, Fortin A, Furlan V. 1983. Growth responses   of several plant species to mycorrhizae in a soil of   moderate P-fertility. Mycorrhizal dependency under   field conditions. Plant and Soil, 70: 191-209.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0304-3584201200020000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 26. Sanchez M. 1999. Endomicorrizas en agroecosistemas   colombianos. Palmira (Colombia): Universidad   Nacional de Colombia, sede Palmira. p. 210.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0304-3584201200020000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 27. Schubler A, Scwarzott D, Walker C. 2001. A new fungal   phylum, the <i>Glomeromycota</i>: phylogeny and evolution.   Mycological Research, 105: 1413-1421.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0304-3584201200020000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 28. Sierra JA, Castro D, Osorio NW. 2009. Dependencia   micorrizal de laurel (<i>Ocotea</i> sp.) Revista Colombia   Forestal, 12: 21-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0304-3584201200020000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 29. Sieverding E. 1991. Vesicular-Arbuscular mycorrhiza   management. Eschbor (Hesse, Alemania): Editorial   GTZ. p. 72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0304-3584201200020000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 30. Silvia DM, Fuhrmann JJ, Hartel PG, Zuberer YD. 2005.   Principles and applications of soil microbiology.   2nd ed. New Jersey (U. S. A.): Pearson Prentice   Hall. p. 450.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0304-3584201200020000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 31. Siqueira JO, Saggin-Junior O. 2001. Dependency on   arbuscular mycorrhizal fungi and resposiveness of   some Brazilian native woody species. Mycorrhiza,   11: 245-255.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0304-3584201200020000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 32. Uchida R, Hue NV. 2000. Plant nutrient management in   Hawaii's soils, approaches for tropical and subtropical   agriculture. Manoa (U. S. A.): College off Tropical   Agriculture and Human Resources, University of   Hawaii at Manoa. p. 158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0304-3584201200020000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 33. Vargas WG. 2002. Guia Ilustrada de las Plantas de   las Montanas del Quindio y los Andes Centrales.   Manizales (Colombia): Centro editorial, Universidad   de Caldas. p. 814.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0304-3584201200020000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 34. Zangaro W, Bononi V, Trufen S. 2000. Mycorrhizal   dependency, inoculum potential And habitat preference   of native woody species in South Brazil. En: Journal of   Tropical Ecology, 16: 603-622.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0304-3584201200020000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p> 35. Zangaro W, Nisizaki SMA, Domingos JCB, Nakano EM.   2003. Mycorrhizal response and succesional status in   80 woody species from south Brazil. Journal of Tropical   Ecology, 315-324.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0304-3584201200020000700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p>&nbsp;</p> </font>      ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Aziz]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Habte]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Determining vesicular-arbuscular micorrizal effectiveness by monitoring P status of leaf disk]]></article-title>
<source><![CDATA[Canadian Journal of Botany,]]></source>
<year>1987</year>
<volume>33</volume>
<page-range>1097-1101</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Barea]]></surname>
<given-names><![CDATA[JM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Azcon]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Azcon-Aguilar]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhizosphere interactions to improve plant fitness and soil quality]]></article-title>
<source><![CDATA[Antonie Van Leewenhoek,]]></source>
<year>2002</year>
<volume>81</volume>
<page-range>343-351</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bolan]]></surname>
<given-names><![CDATA[NS.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A critical review on the role of mycorrhizal fungi in the uptake of phosphorus by plants]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant and Soil,]]></source>
<year>1991</year>
<volume>134</volume>
<page-range>189-293</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Brundrett]]></surname>
<given-names><![CDATA[MC.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Coevolution of root and mycorrhizas of land plants]]></article-title>
<source><![CDATA[New Phytologist,]]></source>
<year>2002</year>
<volume>154</volume>
<page-range>275-304</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Elsen]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Baimey]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Swennen]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[De Waele]]></surname>
<given-names><![CDATA[D.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Relative mycorrhizal dependency and mycorrhiza nemato de interaction in banana cultivars (Musa spp.) differing in nematode susceptibility]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant and Soil,]]></source>
<year>2003</year>
<volume>256</volume>
<page-range>303-313</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Fox]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kamprath]]></surname>
<given-names><![CDATA[E.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phosphate sorption isotherms for evaluating the phosphate requirements of soils]]></article-title>
<source><![CDATA[Soil Science Society of America Proceedings,]]></source>
<year>1970</year>
<volume>34</volume>
<page-range>902-907</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Giovannetti]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mosse]]></surname>
<given-names><![CDATA[B.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[An evaluation of techniques for measuring vesicular-arbuscular mycorrhizal infection in roots]]></article-title>
<source><![CDATA[New Phytologist,]]></source>
<year>1980</year>
<volume>84</volume>
<page-range>489-500</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Gonzalez]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Osorio.]]></surname>
<given-names><![CDATA[NW]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Determinacion de la dependencia micorrizal del lulo]]></article-title>
<source><![CDATA[Acta Biologica Colombiana,]]></source>
<year>2008</year>
<volume>13</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>163-174</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Habte]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fox]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Huang]]></surname>
<given-names><![CDATA[R.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Determining vesicular arbuscular micorrizal effectiveness by monitoring P status of subleaflets of indicator plants]]></article-title>
<source><![CDATA[Communications in Soil Science and Plant Analysis,]]></source>
<year>1987</year>
<volume>18</volume>
<page-range>1403-1420</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Habte]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Manjunath]]></surname>
<given-names><![CDATA[A.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Categories of vesicular arbuscular mycorrhizal dependency of host species]]></article-title>
<source><![CDATA[Mycorrhiza,]]></source>
<year>1991</year>
<volume>1</volume>
<page-range>3-12</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Habte]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Osorio]]></surname>
<given-names><![CDATA[NW]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Arbuscular Mycorrhizas: Producing and applying Arbuscular Mycorrhizal Inoculum]]></source>
<year>2001</year>
<page-range>47</page-range><publisher-loc><![CDATA[Honolulu ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[University of Hawaii]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Haselwandter]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bowen]]></surname>
<given-names><![CDATA[GD.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhizal relations in trees for agroforestry and land rehabilitation]]></article-title>
<source><![CDATA[Forest Ecology and Management,]]></source>
<year>1996</year>
<volume>81</volume>
<page-range>1-17</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Holdridge]]></surname>
<given-names><![CDATA[LR]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Ecologia en zonas de vida]]></source>
<year>1979</year>
<page-range>216</page-range><publisher-loc><![CDATA[San Jose ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Instituto Interamericano de Ciencias Agricolas (IICA). Organizacion de Estados Americanos (OEA)]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jakobsen]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Abbott]]></surname>
<given-names><![CDATA[LK]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Robson]]></surname>
<given-names><![CDATA[AD.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[External hyphae of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi associated with Trifolium subterraneum L. 2. Hyphal transport of 32P over defined distances]]></article-title>
<source><![CDATA[New Phytologist,]]></source>
<year>1992</year>
<volume>120</volume>
<page-range>509-516</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Johansen]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jakobsen]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jensen]]></surname>
<given-names><![CDATA[ES.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[External hyphae of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi associated with Trifolium subterraneum L. 3. Hyphal transport of 32P and 15N]]></article-title>
<source><![CDATA[New Phytologist,]]></source>
<year>1993</year>
<volume>1993</volume>
<page-range>61-68</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jaramillo]]></surname>
<given-names><![CDATA[SP]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Osorio]]></surname>
<given-names><![CDATA[NW.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhizal dependency of coffee seedling at different levels of soil solution phosphorus]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista Suelos Ecuatoriales,]]></source>
<year>2009</year>
<volume>39</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>100-106</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jaramillo]]></surname>
<given-names><![CDATA[SP]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Silva]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Osorio]]></surname>
<given-names><![CDATA[NW.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Potencial simbiotico y efectividad de hongos micorrizico arbusculares de tres suelos sometidos a diferentes usos]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista de la Facultad Nacional de Agronomia Medellin.]]></source>
<year>2004</year>
<volume>57</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>2203-2214</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kageyama]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Viana]]></surname>
<given-names><![CDATA[VM]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Tecnologia de sementes e grupos ecologicos de especies tropicales]]></source>
<year>1989</year>
<publisher-loc><![CDATA[Sao Paulo ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kormanik]]></surname>
<given-names><![CDATA[PP]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[McGraw]]></surname>
<given-names><![CDATA[AC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Schultz]]></surname>
<given-names><![CDATA[RC.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Procedure and equipment for staining a large number of plant samples for endomycorrhizal assay]]></article-title>
<source><![CDATA[Canadian Journal of Botany,]]></source>
<year>1980</year>
<volume>26</volume>
<page-range>536-538</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Mansfeld-Giese]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Karsen]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bodker]]></surname>
<given-names><![CDATA[L.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Bacterial populations associated with mycelium of the arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intrarradices]]></article-title>
<source><![CDATA[FEMS Microbiology Ecology,]]></source>
<year>2002</year>
<volume>41</volume>
<page-range>133-140</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Montoya]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Osorio]]></surname>
<given-names><![CDATA[NW.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhizal dependency of avocado at different levels of soil solution phosphorus]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista Suelos Ecuatoriales,]]></source>
<year>2009</year>
<volume>39</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>143-147</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<label>22</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Murphy]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Riley]]></surname>
<given-names><![CDATA[JP.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A modified single solution method for the determination of phosphate in natural waters]]></article-title>
<source><![CDATA[Analytica Chimica Acta,]]></source>
<year>1962</year>
<volume>27</volume>
<page-range>31-35</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<label>23</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Osorio]]></surname>
<given-names><![CDATA[NW]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Diez]]></surname>
<given-names><![CDATA[MC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sierra]]></surname>
<given-names><![CDATA[JA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Paternina]]></surname>
<given-names><![CDATA[L.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Consideraciones ecologicas sobre la asociacion micorrizal en suelos de la region altoandina]]></article-title>
<person-group person-group-type="editor">
<name>
<surname><![CDATA[Leon]]></surname>
<given-names><![CDATA[JD]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Ecologia de bosques andinos. Experiencias de investigacion]]></source>
<year>2008</year>
<page-range>181-200</page-range><publisher-loc><![CDATA[Medellin ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[La Carreta Editores]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<label>24</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Phillips]]></surname>
<given-names><![CDATA[JM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hayman]]></surname>
<given-names><![CDATA[DS.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Improved procedures for clearing and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection]]></article-title>
<source><![CDATA[Transactions of the British Mycological Society,]]></source>
<year>1970</year>
<volume>55</volume>
<page-range>158-161</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B25">
<label>25</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Plenchette]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fortin]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Furlan]]></surname>
<given-names><![CDATA[V.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Growth responses of several plant species to mycorrhizae in a soil of moderate P-fertility]]></article-title>
<source><![CDATA[Mycorrhizal dependency under field conditions. Plant and Soil,]]></source>
<year>1983</year>
<volume>70</volume>
<page-range>191-209</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B26">
<label>26</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sanchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Endomicorrizas en agroecosistemas colombianos]]></source>
<year>1999</year>
<page-range>210</page-range><publisher-loc><![CDATA[Palmira ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Universidad Nacional de Colombia, sede Palmira]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B27">
<label>27</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Schubler]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Scwarzott]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Walker]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A new fungal phylum, the Glomeromycota: phylogeny and evolution]]></article-title>
<source><![CDATA[Mycological Research,]]></source>
<year>2001</year>
<volume>105</volume>
<page-range>1413-1421</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B28">
<label>28</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sierra]]></surname>
<given-names><![CDATA[JA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Castro]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Osorio]]></surname>
<given-names><![CDATA[NW.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Dependencia micorrizal de laurel (Ocotea sp.)]]></article-title>
<source><![CDATA[Revista Colombia Forestal,]]></source>
<year>2009</year>
<volume>12</volume>
<page-range>21-30</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B29">
<label>29</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sieverding]]></surname>
<given-names><![CDATA[E.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Vesicular-Arbuscular mycorrhiza management]]></source>
<year>1991</year>
<page-range>72</page-range><publisher-loc><![CDATA[Hesse ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Editorial GTZ]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B30">
<label>30</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Silvia]]></surname>
<given-names><![CDATA[DM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fuhrmann]]></surname>
<given-names><![CDATA[JJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hartel]]></surname>
<given-names><![CDATA[PG]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zuberer]]></surname>
<given-names><![CDATA[YD]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Principles and applications of soil microbiology.]]></source>
<year>2005</year>
<edition>2</edition>
<page-range>450</page-range><publisher-loc><![CDATA[New Jersey ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Pearson Prentice Hall]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B31">
<label>31</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Siqueira]]></surname>
<given-names><![CDATA[JO]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Saggin-Junior]]></surname>
<given-names><![CDATA[O.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Dependency on arbuscular mycorrhizal fungi and resposiveness of some Brazilian native woody species]]></article-title>
<source><![CDATA[Mycorrhiza,]]></source>
<year>2001</year>
<volume>11</volume>
<page-range>245-255</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B32">
<label>32</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Uchida]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hue]]></surname>
<given-names><![CDATA[NV]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Plant nutrient management in Hawaii's soils, approaches for tropical and subtropical agriculture]]></source>
<year>2000</year>
<page-range>158</page-range><publisher-loc><![CDATA[Manoa ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[College off Tropical Agriculture and Human Resources, University of Hawaii at Manoa]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B33">
<label>33</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Vargas]]></surname>
<given-names><![CDATA[WG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Guia Ilustrada de las Plantas de las Montanas del Quindio y los Andes Centrales]]></source>
<year>2002</year>
<page-range>814</page-range><publisher-loc><![CDATA[Manizales ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Centro editorial, Universidad de Caldas]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B34">
<label>34</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Zangaro]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bononi]]></surname>
<given-names><![CDATA[V]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Trufen]]></surname>
<given-names><![CDATA[S.]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhizal dependency, inoculum potential And habitat preference of native woody species in South Brazil]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Tropical Ecology,]]></source>
<year>2000</year>
<volume>16</volume>
<page-range>603-622</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B35">
<label>35</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Zangaro]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nisizaki]]></surname>
<given-names><![CDATA[SMA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Domingos]]></surname>
<given-names><![CDATA[JCB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nakano]]></surname>
<given-names><![CDATA[EM]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycorrhizal response and succesional status in 80 woody species from south Brazil]]></article-title>
<source><![CDATA[Journal of Tropical Ecology]]></source>
<year>2003</year>
<page-range>315-324</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
