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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The floral and reproductive biology of Passiflora edulis f. edulis was studied in crops located at the Cordillera Oriental in the Colombian Andes (Buenavista, Boyacá). The floral anthesis occurred between 6 and 8 hrs, and the average floral longevity was of 25 hrs. Four phenological flower phases were recognized: (1) Female with herkogamy, (2) Homogamy with herkogamy, (3) Homogamy with not herkogamy, and (4) Senescence. Although the stigmas were receptive during all floral phases, there was a higher fruit production from pollination carried out at the second and third phases. Pollen donation occurs at phase 2 with 96% of viability. The production of nectar showed an increasing tendency through the floral life. Pollination experiments showed that although P. edulis f. edulis is highly auto-compatible, it requires of pollinators to increase fruit harvesting, as indicated by the low percentage (33%) of fruits obtained without pollinators. Our results suggest that gulupa has a mixed reproductive strategy promoting endogamy in some floral phases while promoting crossing in others. The conservation of gulupa's pollinators in Buenavista is crucial to keep fruit production as a sustainable activity in the region.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="verdana">      <p><font size="4">        <center>     <b>BIOLOG&Iacute;A FLORAL Y REPRODUCTIVA DE LA GULUPA <i>PASSIFLORA EDULIS</i>      SIMS F. <i>EDULIS</i></b>    </center>   </font></p> <font size="3">      <center>       <p><b>Floral and reproductive biology of the &quot;gulupa&quot; <i>Passiflora      edulis</i> Sims f. <i>edulis</i></b></p> </center> </font>      <p><b>CATALINA &Aacute;NGEL-COCA</b>    <br>   <b>GUIOMAR NATES-PARRA</b>    <br>   <b>RODULFO OSPINA-TORRES</b>    <br>   <b>CARLOS DANIEL MELO ORTIZ</b>    <br>   <b>MARISOL AMAYA-M&Aacute;RQUEZ</b>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Departamento de Biolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Apartado    46527, Bogot&aacute; D. C., Colombia. <a href="mailto:lcangelc@unal.edu.co">lcangelc@unal.edu.co</a>;    <a href="mailto:mgnatesp@unal.edu.co">mgnatesp@unal.edu.co</a>; <a href="mailto:rospinat@unal.edu.co">rospinat@unal.edu.co</a>;    <a href="mailto:cardaniel@gmail.com">cardaniel@gmail.com</a></i></p>     <p><i>Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia, Apartado    7495. Bogot&aacute;, D. C., Colombia. <a href="mailto:mamayam@unal.edu.co">mamayam@unal.edu.co</a></i></p>     <p><b>RESUMEN</b>      <p>Se estudi&oacute; la biolog&iacute;a floral y reproductiva de <i>Passiflora    edulis</i> f. <i>edulis</i> en cultivos ubicados en la Cordillera Oriental en    los Andes colombianos (Buenavista, Boyac&aacute;). La flor present&oacute; antesis    entre las 6 y las 8 hrs, la longevidad floral promedio fue de 25 hrs. Se reconocieron    cuatro fases fenol&oacute;gicas: (1) Femenina con hercogamia (2) Hom&oacute;gama    con hercogamia (3) Hom&oacute;gama sin hercogamia y (4) Senescente. Aunque el    estigma est&aacute; receptivo durante todas las fases florales, se obtuvo mayor    producci&oacute;n de frutos en las fases segunda y tercera. La donaci&oacute;n    del polen, en su mayor&iacute;a ocurri&oacute; en la fase dos con una viabilidad    del 96%. El n&eacute;ctar mostr&oacute; una tendencia ascendente durante la    vida floral. Los experimentos de polinizaci&oacute;n indican que la gulupa es    una variedad altamente autocompatible, pero requiere de los polinizadores para    producir una buena cosecha, pues s&oacute;lo el 33% de los frutos se forma sin    el acceso de &eacute;stos. Los resultados sugieren que la gulupa tiene una estrategia    floral mixta con el potencial para promover endogamia y entrecruzamiento gen&eacute;tico,    y que la conservaci&oacute;n de las abejas polinizadoras es crucial en la productividad    de este frutal.      <p><b>Palabras clave.</b> Gulupa,<i>Passiflora edulis</i> f. <i>edulis</i>, Biolog&iacute;a    floral, Biolog&iacute;a reproductiva, Servicio de polinizaci&oacute;n, Colombia.</p>     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p> The floral and reproductive biology of <i>Passiflora edulis</i> f. <i>edulis</i>    was studied in crops located at the Cordillera Oriental in the Colombian Andes    (Buenavista, Boyac&aacute;). The floral anthesis occurred between 6 and 8 hrs,    and the average floral longevity was of 25 hrs. Four phenological flower phases    were recognized: (1) Female with herkogamy, (2) Homogamy with herkogamy, (3)    Homogamy with not herkogamy, and (4) Senescence. Although the stigmas were receptive    during all floral phases, there was a higher fruit production from pollination    carried out at the second and third phases. Pollen donation occurs at phase    2 with 96% of viability. The production of nectar showed an increasing tendency    through the floral life. Pollination experiments showed that although P. edulis    f. edulis is highly auto-compatible, it requires of pollinators to increase    fruit harvesting, as indicated by the low percentage (33%) of fruits obtained    without pollinators. Our results suggest that gulupa has a mixed reproductive    strategy promoting endogamy in some floral phases while promoting crossing in    others. The conservation of gulupa's pollinators in Buenavista is crucial    to keep fruit production as a sustainable activity in the region.</p>     <p><b>Key words.</b> Gulupa, <i>Passiflora edulis</i> f. <i>edulis</i>, Floral Biology, Reproductive    Biology, Pollination service, Colombia.</p>     <p>Recibido: 17/02/2011    <br>   Aceptado: 08/09/2011</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></p>     <p>El &eacute;xito en la reproducci&oacute;n sexual de las plantas con flores    se refleja en la cantidad y la calidad de la descendencia producida. Sin embargo,    el proceso no es trivial, la producci&oacute;n de nuevos esporofitos en las    plantas con flores implica complejas interacciones ecol&oacute;gicas entre las    especies y el medio, las cuales se establecen a partir de la estructura, la    fenolog&iacute;a, y la fisiolog&iacute;a de los v&aacute;stagos reproductivos.    Los rasgos y el funcionamiento de las flores e inflorescencias aunque est&aacute;n,    en su mayor parte, determinados gen&eacute;ticamente son afectados por factores    externos tales como: la regi&oacute;n geogr&aacute;fica, la disponibilidad de    parejas, de nutrientes, de agua, de polinizadores y de dispersores. De acuerdo    con Dafni (1992) el sistema reproductivo de las especies de plantas puede variar    a lo largo de gradientes altitudinales y ecol&oacute;gicos. Por lo tanto, el    conocimiento de la biolog&iacute;a floral y del sistema reproductivo de las    plantas con flores es fundamental para su manejo local, en particular, es importante    conocer las variaciones geogr&aacute;ficas en el comportamiento reproductivo    de especies promisorias con el fin de propagarlas y cultivarlas de manera &oacute;ptima    en diferentes regiones.</p>     <p>Numerosas plantas del g&eacute;nero <i>Passiflora</i> L. producen frutos comestibles    y se les denomina, en general, frutas de la pasi&oacute;n, siendo dentro de    este grupo Passiflora edulis Sims la especie m&aacute;s importante y conocida    (Ulmer &amp; MacDougal 2004; Ocampo et al. 2007). Esta especie consiste de dos    variedades: el maracuy&aacute; (<i>Passiflora edulis</i> Sims f. flavicarpa    Degener) y la gulupa (<i>Passiflora edulis</i> Sims f. edulis), ambas muy apreciadas    por sus frutos comestibles. La gulupa aunque es originaria de Brasil, actualmente    se cultiva en regiones tropicales, subtropicales y templadas de: Sur Am&eacute;rica,    Sur &Aacute;frica, India, Malasia, Australia, Nueva Zelanda, Hawai, y Asia.    La gulupa es la forma m&aacute;s tolerante al fr&iacute;o y se reproduce bien    en elevaciones entre 600 y 2000 m (Cervi 1997; Ulmer &amp; McDougal 2004), y    es una variedad autocompatible (Moncur 1988; Bruckner et al. 1995), factores    que, en parte explican el &eacute;xito de esta planta en su expansi&oacute;n    geogr&aacute;fica. En Colombia fue introducida en el a&ntilde;o 1950 y actualmente    crece cultivada o de forma silvestre en las regiones Andina, Pac&iacute;fica    y Amaz&oacute;nica en un rango de elevaci&oacute;n entre 1100 y 2750 m. Es conocida    como gulupa en Cundinamarca y como curuba redonda en Antioquia, Caldas, Risaralda    y Quind&iacute;o (Ocampo et al. 2007). Se siembra en los municipios de La Mesa,    Fusagasug&aacute;, Cachipay (Cundinamarca) y bajo invernadero en la sabana de    Bogot&aacute; (Avenda&ntilde;o &amp; Quevedo 1989), tambi&eacute;n en los departamentos    del Huila, Caldas, Santander, Meta (Alm&eacute;ciga &amp; Herrera 2008) y Boyac&aacute;.  </p>     <p>El fruto comestible de la gulupa ha generado una demanda en los mercados internacionales,    ocupando el tercer rengl&oacute;n dentro de las frutas exportadas de Colombia    hacia el mercado europeo (Pinz&oacute;n et al. 2007). Lo anterior ha despertado    el inter&eacute;s por conocer la biolog&iacute;a de esta planta con el fin de    mejorar la producci&oacute;n en el pa&iacute;s, pues a pesar de ser &eacute;sta    una forma extensivamente cultivada, el conocimiento de su biolog&iacute;a es    escaso (Alm&eacute;ciga &amp; Herrera 2008).</p>     <p>Existen numerosos estudios sobre la biolog&iacute;a floral y reproductiva de    <i>P. edulis</i> f. <i>flavicarpa</i> (Nishida 1958; Ruggiero et al. 1976; Hardin    1986; Endress 1994; Magalh&atilde;es Souza et al. 2004; Viana et al. 2011 en    prensa), pero existe menos informaci&oacute;n sobre estos aspectos en <i>P.    edulis</i> f. <i>edulis</i> (Gilmartin 1958; Kishore et al. 2010), y en Colombia    los estudios realizados son escasos (Gir&oacute;n van der Huck 1991). Estudios    previos realizados en pasionarias indican que los polinizadores, y la biolog&iacute;a    floral y reproductiva de estas plantas var&iacute;a con la ubicaci&oacute;n    geogr&aacute;fica, evidenci&aacute;ndose la labilidad del sistema incluso entre    localidades separadas por pocos kil&oacute;metros de distancia (Free 1993; Holland    &amp; Lanza 2008). En Colombia, el gradiente altitudinal en el cual se cultiva    la gulupa es muy amplio, pudiendo variar el comportamiento reproductivo de la    planta y el tipo de polinizadores de acuerdo con las condiciones geogr&aacute;ficas    y ambientales.</p>     <p>Con el fin de optimizar la producci&oacute;n de gulupa en el municipio de Buenavista    en Boyac&aacute;, en particular por ser &eacute;ste un cultivo nuevo para la    regi&oacute;n, decidimos estudiar los aspectos b&aacute;sicos de su biolog&iacute;a    floral y reproductiva en cultivos locales. Las preguntas que guiaron la presente    investigaci&oacute;n fueron: (1) &iquest;Cu&aacute;les son las fases fenol&oacute;gicas    y funcionales que experimentan las flores de la gulupa a lo largo de su vida    floral? (2) &iquest;Requiere la gulupa de la polinizaci&oacute;n para la producci&oacute;n    de frutos? Siendo una variedad autocompatible, cual es su dependencia de los    polinizadores para la producci&oacute;n de frutos? (3) &iquest;C&oacute;mo es    el patr&oacute;n de producci&oacute;n de n&eacute;ctar en las flores de gulupa?    (4) &iquest;Cu&aacute;l es el grado de autocompatibilidad gen&eacute;tica en    la localidad estudiada? Estas preguntas fueron abordadas en el marco de la investigaci&oacute;n:    &quot;Manejo de la polinizaci&oacute;n con abejas en cultivos de gulupa y granadilla&quot;    del Laboratorio de investigaciones en abejas (LABUN, Universidad Nacional de    Colombia).</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b> </p>     <p>El estudio se realiz&oacute; en el municipio de Buenavista en el departamento    de Boyac&aacute;, Colombia, ubicado en las estribaciones occidentales de la    cordillera Oriental. Se utilizaron dos cultivos de gulupa, el primero ubicado    en la vereda Dominguito, (5&deg;29'29&quot; N-073&deg;58'11&quot; W a 1657 m    (C1) con una extensi&oacute;n de 1 he., y el segundo en la vereda Sabaneta,    5&deg;31'04,6&quot; N-073&deg;56'29,7&quot; W a 2255 m (C2) con una extensi&oacute;n    de 1.6 he. La toma de datos se llev&oacute; a cabo de mayo a octubre de 2009.</p>     <p><b>BIOLOG&Iacute;A FLORAL</b></p>     <p><b>Morfolog&iacute;a floral.</b> Las observaciones se hicieron directamente    en el campo en plantas vivas, y se complementaron con observaciones de flores    colectadas y fijadas en alcohol al 70% bajo el estereoscopio. La descripci&oacute;n    sigui&oacute; la terminolog&iacute;a utilizada en bot&aacute;nica taxon&oacute;mica.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Fenolog&iacute;a floral.</b> Las fases florales se caracterizaron con base    en el estado sexual de la flor y en los cambios fenol&oacute;gicos evidentes    con la edad floral. Se realizaron observaciones continuas desde el momento de    la antesis floral hasta el cierre de la flor, registrando cambios en posici&oacute;n,    tama&ntilde;o y coloraci&oacute;n de los verticilos florales y de la corona.    Las observaciones se realizaron en C1 debido a la mayor cantidad de flores en    este cultivo al momento de realizar las observaciones. Para ello se escogieron    15 flores de 15 plantas diferentes, marcadas individualmente desde el estado    de bot&oacute;n floral. Las variables registradas en la flor fueron: fecha y    hora de apertura, longevidad, di&aacute;metro de la flor, posici&oacute;n de    los estigmas y de los estambres, distancia entre las anteras y los estigmas,    y &aacute;ngulo formado entre los estilos con relaci&oacute;n al plano de la    corona. Una vez establecidas las fases fenol&oacute;gicas se evaluaron las funciones    sexuales y la producci&oacute;n de n&eacute;ctar en cada una de &eacute;stas.    Para cada prueba se utilizaron grupos diferentes de flores. La funci&oacute;n    femenina se cuantific&oacute; con pruebas de receptividad del estigma, mientras    que la funci&oacute;n masculina se evalu&oacute; registrando el momento en que    ocurr&iacute;a la dehiscencia de las anteras, y cuantificando la viabilidad    del polen liberado por &eacute;stas. </p>     <p><b>Receptividad estigm&aacute;tica</b>    <br>   Se realizaron tres pruebas de receptividad estigm&aacute;tica: una histoqu&iacute;mica    y dos basadas en polinizaci&oacute;n manual midiendo la respuesta de las fases    florales en t&eacute;rminos de: (a) tubos pol&iacute;nicos germinados, y (b)    desarrollo de frutos. Estas pruebas se realizaron en los dos cultivos.    <br>   <i>Prueba de reacci&oacute;n a la peroxidasa:</i> el m&eacute;todo de la actividad    de la enzima peroxidasa se realiz&oacute; siguiendo a Osborn et al. (1998).    La respuesta se consider&oacute; positiva cuando se formaron burbujas inmediatamente    despu&eacute;s de la inmersi&oacute;n (<a href="#figura1">Fig. 1 A y B</a>).    Esta prueba se realiz&oacute; con cinco flores de cada fase para un total de    20 flores muestreadas.</p>     <p>        <center>     <img src="/img/revistas/cal/v33n2/v33n2a9fig1.gif"><a name="figura1"></a>    </center>     <p>        <center>     <b>Figura 1.</b> Respuesta estigm&aacute;tica de los estigmas sumergidos en      per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 10% (A) superficie estigm&aacute;tica      intacta. (B) Superficie estigm&aacute;tica receptiva con respuesta de burbujeo.      (C) Grano de polen germinando el tubo pol&iacute;nico, te&ntilde;ido con anilina      azul, y observado en microscopio de fluorescencia (aumentado 400 X). (D) Tubos      pol&iacute;nicos creciendo en el estilo, te&ntilde;idos con anilina azul,      vistos en fluorescencia (aumentado 100 X). (E) Grano de polen con citoplasma      te&ntilde;ido con acetocarm&iacute;n (aumentado 400 X).    </center>       <br>   <i>Prueba de crecimiento de tubos pol&iacute;nicos:</i> Se polinizaron manualmente    flores en cada fase floral con una mezcla de polen procedente de tres plantas    parentales externas al grupo experimental Las flores estuvieron embolsadas con    malla de nil&oacute;n antes y despu&eacute;s de efectuada la polinizaci&oacute;n    manual; pasadas 24 horas se recogieron los estilos de las flores y se fijaron    en FAA con el fin de utilizar el procedimiento descrito por Martin (1959) para    observar los tubos pol&iacute;nicos al microscopio de epifluorescencia. Se contaron    los tubos pol&iacute;nicos que hubieran alcanzado un desarrollo, al menos hasta    la mitad del estilo (<a href="#figura1">Fig. 1 C y D</a>). Se examinaron los    tres estilos de la flor en cinco flores de cada fase fenol&oacute;gica, para    un total de 20 flores muestreadas.    <br>   <i>Formaci&oacute;n de frutos por polinizaci&oacute;n manual:</i> se realiz&oacute;    polinizaci&oacute;n manual de la misma forma que en el caso anterior, las bolsas    se retiraron despu&eacute;s del cierre de la flor. Cinco d&iacute;as despu&eacute;s    se verific&oacute; la formaci&oacute;n de frutos, y a los 2 meses se recogieron    los frutos. Para esta prueba se utilizaron 20 flores por fase floral para un    total de 80 flores muestreadas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Viabilidad del polen.</b> De cada flor se tom&oacute; una muestra de polen    sobre una l&aacute;mina y se ti&ntilde;&oacute; con acetocarm&iacute;n; luego    se cubri&oacute; con una laminilla y se observ&oacute; en el microscopio &oacute;ptico.    Se consideraron viables los granos enteros que ti&ntilde;eron de rojo el citoplasma    (<a href="#figura1">Fig. 1 E</a>). Se contaron 500 granos por flor en campos    aleatorios siguiendo el procedimiento descrito por Dafni et al. (2005). Para    esta prueba se escogieron cinco flores por fase floral, para un total de 15    muestras representativas de las tres &uacute;ltimas fases florales, puesto que    en la primera fase floral las anteras no est&aacute;n dehiscentes.</p>     <p><b>Producci&oacute;n de n&eacute;ctar.</b> A las flores se les extrajo el n&eacute;ctar    hacia el final de cada fase floral, utilizando para ello capilares calibrados.    Se midieron el volumen y la concentraci&oacute;n del n&eacute;ctar, esta &uacute;ltima    con ayuda de un refract&oacute;metro de mano. Las flores, excepto al momento    del muestreo, se mantuvieron embolsadas en malla de nil&oacute;n para evitar    que los visitantes florales afectaran la cantidad de n&eacute;ctar disponible.    A partir de estos datos se calcul&oacute; la producci&oacute;n de az&uacute;car,    mediante la ecuaci&oacute;n de regresi&oacute;n exponencial de Galetto presentada    en Galetto &amp; Bernardello (2005):</p>     <p>y=0.00226+(0.00937x) + (0.0000585x2)</p>     <p>Donde: x= concentraci&oacute;n del n&eacute;ctar     <br>   y= mg de az&uacute;car por &micro;L de n&eacute;ctar.     <br>   Para esta prueba se escogieron 15 flores por fase floral para un total de 60    flores muestreadas.</p>     <p><b>BIOLOG&Iacute;A REPRODUCTIVA</b></p>     <p>Con el fin de conocer los aspectos b&aacute;sicos de la biolog&iacute;a reproductiva    de <i>P. edulis</i> f. <i>edulis</i> se realizaron experimentos de polinizaci&oacute;n    controlada evaluando el efecto de los diferentes tratamientos de polinizaci&oacute;n    sobre la producci&oacute;n de frutos y semillas. Estas pruebas se llevaron a    cabo en C2 debido a que en este cultivo exist&iacute;a mayor disponibilidad    de flores en el momento de estudio. Los experimentos se llevaron a cabo en 90    flores pertenecientes a 15 plantas individuales. Se marcaron seis flores por    planta para aplicar los siguientes tratamientos:    <br>   <b>Tratamiento I</b> (Agamospermia = A): se marcaron y se embolsaron flores    desde el estado de bot&oacute;n floral, apenas abrieron se emascularon y se    embolsaron nuevamente.     <br>   <b>Tratamiento II</b> (Polinizaci&oacute;n espont&aacute;nea = PE): se marcaron    y embolsaron flores desde el estado de bot&oacute;n evitando la visita de los    agentes polinizadores.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <b>Tratamiento III</b> (Polinizaci&oacute;n natural = PN): se marcaron flores    antes de la antesis y se dejaron expuestas a los polinizadores.    <br>   <b>Tratamiento IV</b> (Polinizaci&oacute;n natural con flor emasculada= PNE):    se marcaron flores antes de la antesis, se retiraron los estambres al momento    de la apertura floral y se dejaron expuestas a los polinizadores.    <br>   <b>Tratamiento V</b> (Autopolinizaci&oacute;n = AP): se marcaron y se embolsaron    flores desde el estado de bot&oacute;n floral, se polinizaron manualmente con    polen de la misma flor y se embolsaron nuevamente.     <br>   <b>Tratamiento VI</b> (Cruzada = PC): se marcaron y embolsaron botones florales;    las flores se emascularon al momento de la apertura floral, volvi&eacute;ndose    a embolsar hasta el momento de la polinizaci&oacute;n; el tratamiento se realiz&oacute;    con polen proveniente de cuatro plantas donantes. Una vez realizada la polinizaci&oacute;n    la flor fue embolsada nuevamente. </p>     <p>En los tratamientos que requer&iacute;an polinizaci&oacute;n manual, &eacute;sta    se realiz&oacute; en la fase fenol&oacute;gica (F3) debido a que las pruebas    preliminares de receptividad estigm&aacute;tica in vivo mostraron que en esta    fase de desarrollo floral se forma la mayor cantidad de frutos. Cinco d&iacute;as    despu&eacute;s de aplicado el tratamiento de polinizaci&oacute;n se examin&oacute;    la formaci&oacute;n de fruto y dos meses despu&eacute;s &eacute;stos se recogieron.    A los frutos desarrollados se les midi&oacute; el peso, el tama&ntilde;o (la    altura y el ancho) y se les cont&oacute; el n&uacute;mero de semillas.</p>     <p><b>Tratamiento estad&iacute;stico.</b> Se utiliz&oacute; la prueba no param&eacute;trica    Kruskall-Wallis para comparar: (1) el n&uacute;mero de tubos pol&iacute;nicos    desarrollados por fase, (2) la duraci&oacute;n de las fases fenol&oacute;gicas    en los sitios de muestreo, y (3) las caracter&iacute;sticas de los frutos recogidos    por tratamiento de polinizaci&oacute;n; en este &uacute;ltimo se utiliz&oacute;    la correcci&oacute;n de Bonferroni para hacer comparaciones pareadas m&uacute;ltiples.    El nivel de significancia de las pruebas fue del 95%.</p>     <p><b>RESULTADOS</b></p>     <p><b>BIOLOG&Iacute;A FLORAL DE LA GULUPA</b> </p>     <p><b>Morfolog&iacute;a floral.</b> Las flores de gulupa son perfectas y completas,    est&aacute;n conformadas por ocho o nueve verticilos: c&aacute;liz, corola,    androceo, gineceo, y entre cuatro y cinco verticilos de filamentos. El c&aacute;liz    es pent&aacute;mero, los s&eacute;palos son verdes en la cara abaxial y blancos    en la cara adaxial, cada s&eacute;palo presenta un proceso unifacial en su cara    abaxial el cual tiene apariencia de espina, tomando coloraciones verdes o rojizas.    La corola es pent&aacute;mera, los p&eacute;talos son blancos. C&aacute;liz    y corola descansan sobre un recept&aacute;culo floral en forma de copa, el cual    tiene un tama&ntilde;o de 1.3 X 1.2 cm. La corona est&aacute; conformada por    cientos de filamentos dispuestos en cuatro o cinco verticilos, los cuales representan    extensiones del recept&aacute;culo, los filamentos de los dos verticilos externos    son liguliformes de 2.7 cm de longitud, color p&uacute;rpura en una longitud    de 5 mm en la base del filamento el resto es homog&eacute;neamente blanco, creando    en conjunto una imagen de dos anillos conc&eacute;ntricos diferencialmente coloreados;    los verticilos internos est&aacute;n conformados por filamentos reducidos a    procesos dentiformes que toman una coloraci&oacute;n rojiza o viol&aacute;cea.    El op&eacute;rculo est&aacute; situado en el interior del recept&aacute;culo    debajo de la corona, consiste de una peque&ntilde;a membrana circular lisa de    2 mm que cubre al nectario. La c&aacute;mara nectar&iacute;fera se encuentra    por debajo del op&eacute;rculo en la base del recept&aacute;culo. El androceo    y el gineceo se encuentran sostenidos por un androgin&oacute;foro. El androceo    est&aacute; conformado por 5 estambres libres; el filamento tiene 0.8 cm de    longitud, es verde con puntos violeta, la antera oblonga es de 1 X 0.3 cm con    dos tecas cada una, y dehiscencia longitudinal; la uni&oacute;n entre el filamento    y la antera es dorsifija. El gineceo es tr&iacute;mero, parac&aacute;rpico,    con placentaci&oacute;n parietal; el ovario es globoso, 0.6 X 0.4 cm; el estilo    se divide en tres ramas estilares verdes, cada una llevando un estigma capitado    de 0.5 cm de di&aacute;metro. El androgin&oacute;foro tiene una longitud de    1.7 cm y es verde con m&aacute;culas viol&aacute;ceas (<a href="#figura2">Fig.    2</a>).</p>     <p>        ]]></body>
<body><![CDATA[<center>     <img src="/img/revistas/cal/v33n2/v33n2a9fig2.gif"><a name="figura2"></a>    </center>     <p>        <center>     <b>Figura 2.</b> Estructuras de la flor de la gulupa, <i>Passiflora edulis</i>      f. <i>edulis</i> en una vista longitudinal: (A) ped&uacute;nculo, (B) epic&aacute;liz,      (C) pedicelo, (D) s&eacute;palo, (E) proceso unifacial del s&eacute;palo,      (F) p&eacute;talo, (G) c&aacute;mara del n&eacute;ctar, (H) op&eacute;rculo,      (I) androgin&oacute;foro, (J) procesos dentiformes de la corona, (K) filamento      o radio de la corona, (L) filamento del estambre, (M) antera, (N) estilo,      (O) ovario, y (P) estigma.    </center>     <p><b>Fenolog&iacute;a floral.</b> Las flores de la gulupa son diurnas, presentaron    antesis entre las 6 y las 8 hrs. con una duraci&oacute;n de alrededor de 25    hrs. (&plusmn;7, n=15). La fase previa a la antesis floral se denomin&oacute;    F0 y corresponde al estado floral inmediatamente anterior a la apertura floral.    Se reconocieron cuatro fases fenol&oacute;gicas y &eacute;stas fueron f&aacute;cilmente    identificables por los movimientos de: los s&eacute;palos los cuales abren,    se reflectan y luego se cierran nuevamente; los estilos los cuales inician erectos    y luego se recurvan hasta dejar los estigmas en la misma orientaci&oacute;n    de las anteras; y por la torsi&oacute;n de las anteras. Estos movimientos florales    estuvieron asociados con cambios en las funciones sexuales de la flor, como    se ilustra en la descripci&oacute;n de las fases florales. No se observaron    cambios notables en la coloraci&oacute;n, ni se detecto aroma en las flores    desde la apertura hasta el cierre, excepto algunos cambios en coloraci&oacute;n    asociados al marchitamiento en la fase F4. </p>     <p><i>Fase F0: pre-antesis</i>     <br>   El gineceo, el androceo, la corona, y la corola se encuentran totalmente cubiertos    por el c&aacute;liz. En esta fase los s&eacute;palos convergen hacia el centro    de la flor pr&aacute;cticamente toc&aacute;ndose por su margen, la distancia    entre los procesos unifaciales entre s&eacute;palos opuestos est&aacute; en    el rango entre 0 y 1.7 cm. Las estructuras reproductivas no son visibles (<a href="#figura3">Fig.    3A</a>). </p>     <p>        <center>     <img src="/img/revistas/cal/v33n2/v33n2a9fig3.gif"><a name="figura3"></a>    </center>     <p>        <center>     <b>Figura 3.</b> Fases fenol&oacute;gicas de la flor de <i>Passiflora edulis</i>      f. <i>edulis</i>. A. Fase F0: pre-antesis, bot&oacute;n floral cerrado. B.      Fase F1: flor abriendo, en estado femenino y con hercogamia, dehiscencia de      las anteras mirando hacia arriba, sin liberaci&oacute;n de polen. C. Fase      F2: flor abierta, en fase de homogamia y hercogamia, las anteras han girado      180&ordm; y la dehiscencia mira hacia abajo, polen funcional. D. Fase F3:      estigmas recurvados hacia abajo, la flor presenta homogamia sin hercogamia.      E y F. Fase F4: flor senescente, cerr&aacute;ndose.    </center>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <i>Fase F1: flor femenina con hercogamia</i>     <br>   Esta fase tiene una duraci&oacute;n de 29 min (&plusmn;9, n=15), la flor inicia    su apertura, la distancia entre los procesos unifaciales de los s&eacute;palos    se incrementa paulatina y continuamente dejando a las estructuras reproductivas    completamente expuestas al medio externo. Inicialmente los estilos est&aacute;n    erectos y las anteras introrsas con la dehiscencia orientada hacia arriba, posteriormente    esta orientaci&oacute;n cambia 180&ordm; y la dehiscencia de las anteras queda    orientada hacia la base de la flor. Los estilos a partir de una posici&oacute;n    erecta en la cual forman un &aacute;ngulo de 90&ordm; con respecto al plano    de la corona, empiezan a inclinarse hasta alcanzar un &aacute;ngulo aproximado    de 40&ordm; (<a href="#figura3">Fig. 3B</a>). Durante esta fase la flor es funcionalmente    femenina como lo evidencian las pruebas de receptividad realizadas en este periodo    (<a href="#figura4">Fig. 4A y 4B</a>) y las anteras est&aacute;n indehiscentes.    La fase termina cuando los s&eacute;palos alcanzan un &aacute;ngulo de cero    grados con respecto al plano de la corona En esta fase la flor inicia la producci&oacute;n    de peque&ntilde;as cantidades de n&eacute;ctar (X= 2.37 &micro;L &plusmn; 0.99,    n=15) de concentraci&oacute;n 35.9 % P/P (&plusmn;2.2, n=15), con una producci&oacute;n    total de az&uacute;car de 0.97 mg (&plusmn;0.38, n=15) (<a href="#figura6">Fig.    6</a>).</p>     <p>        <center>     <img src="/img/revistas/cal/v33n2/v33n2a9fig4.gif"><a name="figura4"></a>    </center>     <p>        <center>     <b>Figura 4.</b> Receptividad estigm&aacute;tica en las fases florales de      <i>Passiflora edulis</i> f. <i>edulis</i> (A) n&uacute;mero de tubos pol&iacute;nicos      germinados en los estigmas. (B) porcentaje de frutos formados por polinizaciones      efectuadas en las diferentes fases florales.    </center>       <br>   <i>Fase F2: flor hom&oacute;gama con hercogamia</i>     <br>   Esta fase tiene una duraci&oacute;n de 182 min (&plusmn;35, n=15) en la cual    la flor alcanza su m&aacute;xima apertura (di&aacute;metro floral X=6.6 cm &plusmn;    0,25; n=15). Los estigmas contin&uacute;an receptivos (<a href="#figura4">Fig.    4A y 4B</a>) y los estilos contin&uacute;an descendiendo; las anteras comienzan    la donaci&oacute;n de polen, el cual en su mayor&iacute;a es viable (96 %) (<a href="#figura5">Fig.    5</a>). La corona floral se extiende en un plano horizontal mientras que los    p&eacute;talos y los s&eacute;palos se reflectan acerc&aacute;ndose al pedicelo,    este &uacute;ltimo fen&oacute;meno aumenta la separaci&oacute;n espacial entre    los verticilos est&eacute;riles y la corona. (<a href="#figura3">Fig. 3C</a>).    Esta fase floral es hom&oacute;gama y presenta hercogamia, con una separaci&oacute;n    espacial entre estigmas y anteras (X = 0.9 cm &plusmn; 0.28, n=15). La producci&oacute;n    de n&eacute;ctar en esta fase aumenta en volumen a 18.6 &micro;L (&plusmn;9.19,    n=15), y en concentraci&oacute;n a 38,2% P/P (&plusmn;9.19, n=15), reflej&aacute;ndose    en un incremento en la producci&oacute;n de az&uacute;car (8.25 mg, &plusmn;4.63,    n=15) (<a href="#figura6">Fig. 6</a>).</p>     <p>        <center>     <img src="/img/revistas/cal/v33n2/v33n2a9fig5.gif"><a name="figura5"></a>    </center>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>        <center>     <b>Figura 5.</b> Viabilidad del polen en las fases florales de <i>Passiflora      edulis</i> f. <i>edulis</i>. La fase F1 no se indica debido a que durante      esta fase de la fenolog&iacute;a floral no ocurre liberaci&oacute;n de polen.    </center>       <br>       <center>     <img src="/img/revistas/cal/v33n2/v33n2a9fig6.gif"><a name="figura6"></a>    </center>     <p>        <center>     <b>Figura 6.</b> Producci&oacute;n de n&eacute;ctar en las fases florales      de <i>Passiflora edulis</i> f. <i>edulis</i>. (A) Volumen. (B) Concentraci&oacute;n.      (C) Producci&oacute;n de az&uacute;car. Las barras corresponden a la desviaci&oacute;n      est&aacute;ndar.    </center> </p>     <p><i>Fase F3: Flor hom&oacute;gama sin hercogamia</i>     <br>   Este fase tiene una duraci&oacute;n de 1039 min (&plusmn;89, n=12); la hercogamia    desaparece, los estigmas forman un &aacute;ngulo de cero grados con respecto    al plano de la corona y la distancia vertical entre estigmas y anteras es cero.    De este modo los estigmas y las anteras toman la misma ubicaci&oacute;n espacial,    quedando orientados en el mismo plano e intercalados (<a href="#figura3">Fig.    3D</a>). Despu&eacute;s de este momento se observ&oacute; que en algunas flores    los estigmas regresan a la posici&oacute;n erecta inicial. La fase femenina    y masculina se presentan simult&aacute;neamente, pues el estigma continua receptivo    (<a href="#figura4">Fig. 4A y 4B</a>) y el polen est&aacute; disponible y viable    en un 91% (<a href="#figura5">Fig. 5</a>). Hacia el final de la fase los s&eacute;palos    comienzan a subir nuevamente hasta quedar en el plano horizontal de la corona.    La producci&oacute;n de n&eacute;ctar que se acumula en esta fase es de 77.58    &micro;L (&plusmn;16.02, n=15), presentando un incremento neto de cuatro veces    con respecto a la fase anterior, con una concentraci&oacute;n de 39.2% P/P (&plusmn;2.6,    n=15). La flor produce la m&aacute;xima cantidad de az&uacute;car en esta fase    (35.34 mg &plusmn;5.77, n=15) (<a href="#figura6">Fig. 6</a>). No todas las    flores estudiadas evidenciaron el patr&oacute;n anteriormente descrito, debido    a que los estilos no descienden. Observaciones adicionales realizadas para evaluar    la incidencia de este fen&oacute;meno, mostraron que el 13% de las flores tienen    estilos que nunca descienden (n=60).    <br>   <i>Fase F4: Flor senescente</i>    <br>   Esta fase se caracteriza por el inicio de la senescencia floral, la cual se    evidencia en el cierre de la flor, y por las se&ntilde;ales de marchitamiento    de los p&eacute;talos, los cuales se amarillean levemente. Los s&eacute;palos    y los p&eacute;talos retornan a una posici&oacute;n erecta, manteniendo un &aacute;ngulo    positivo con relaci&oacute;n al plano de la corona; los estigmas pueden quedar    erectos o recurvados hacia abajo. A pesar de este proceso de marchitamiento    floral la receptividad del estigma y la viabilidad del polen se mantienen (<a href="#figura6">Fig.    4A, 4B</a>, <a href="#figura5">fig. 5</a>). Las estructuras reproductivas est&aacute;n    disponibles a los polinizadores por un corto tiempo, debido a que el cierre    de la flor va impidiendo la entrada de los mismos (<a href="#figura3">Fig. 3E    y 3F</a>). La producci&oacute;n de n&eacute;ctar en esta fase presenta un comportamiento    contrastante en cuanto a los patrones de volumen y concentraci&oacute;n, en    los cuales pese al incremento de volumen a un valor de 122.05 &micro;L (&plusmn;23.96,    n=15), la concentraci&oacute;n baja a 24% P/P (&plusmn;5,4, n=15), por lo tanto    la producci&oacute;n de az&uacute;car disminuy&oacute; en esta fase a 32.14    mg (&plusmn;10.35, n=15) (<a href="#figura6">Fig. 6</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Receptividad estigm&aacute;tica.</b> La prueba de la peroxidasa fue positiva    en todos los casos indicando que los estigmas est&aacute;n receptivos desde    la apertura floral hasta el cierre (n=20). Lo anterior se corrobor&oacute; con    el resultado obtenido en las otras dos pruebas de receptividad estigm&aacute;tica.    Con la tinci&oacute;n fluorescente se observ&oacute; la formaci&oacute;n de    tubos pol&iacute;nicos en todas las fases (<a href="#figura4">Fig. 4A</a>) y    en la prueba de polinizaci&oacute;n in vivo tambi&eacute;n hubo formaci&oacute;n    de frutos como resultado de la polinizaci&oacute;n manual realizada en todas    las fases fenol&oacute;gicas (<a href="#figura4">figura 4B</a>), aunque con    una mayor formaci&oacute;n de frutos en las fases 2 y 3 (<a href="#figura4">Fig.    4B</a>). No se encontraron diferencias significativas entre el n&uacute;mero    de tubos pol&iacute;nicos desarrollados por fase (K-W=0.881, n=20). </p>     <p><b>Viabilidad del polen.</b> La viabilidad de los granos de polen vari&oacute;    en las diferentes fases fenol&oacute;gicas, siendo mayor en F2, seguida por    F3 y F4 (<a href="#figura5">Figura 5</a>); estas diferencias fueron significativas    (K-W=0.006; n=15).</p>     <p><b>BIOLOG&Iacute;A REPRODUCTIVA DE GULUPA</b> </p>     <p><i>P. edulis</i> f. <i>edulis</i> no form&oacute; frutos por agamospermia y    s&oacute;lo un 33% por polinizaci&oacute;n espont&aacute;nea; los dem&aacute;s    tratamientos mostraron un alto porcentaje de formaci&oacute;n de fruto, siendo    mayor en el tratamiento de polinizaci&oacute;n natural con flor emasculada (97%),    seguido por los dem&aacute;s tratamientos (polinizaci&oacute;n natural, autopolinizaci&oacute;n    y polinizaci&oacute;n cruzada) (93%) (<a href="#figura7">Fig.7</a>). No fue    necesario calcular el &iacute;ndice de auto-compatibilidad porque la producci&oacute;n    de frutos mayor al 90% en los experimentos de autopolinizaci&oacute;n evidenci&oacute;    una alta autocompatibilidad gen&eacute;tica en la gulupa. No todos los frutos    formados sobrevivieron hasta el momento de la recolecci&oacute;n, debido al    ataque de plagas de moscas y thrips. Se encontraron diferencias significativas    en todas las caracter&iacute;sticas de los frutos formados por tratamiento (<a href="#tabla1">Tabla    1</a>). Al realizar comparaciones pareadas por tratamientos usando la correcci&oacute;n    de Bonferroni, se encontr&oacute; que las diferencias encontradas en las variables    n&uacute;mero de semillas, ancho y alto de los frutos son causadas por los frutos    formados en el tratamiento PE (<a href="#figura8">Fig. 8C</a>). El numero de    semillas formadas por fruto en el tratamiento PE fue diferente del numero de    semillas en los frutos formados en todos los dem&aacute;s tratamientos (<a href="#figura8">Fig.    8A</a>). El peso de los frutos formados en el tratamiento PE fue diferente del    peso de los frutos formados en todos los dem&aacute;s tratamientos (<a href="#figura8">Fig.    8B</a>). Tambi&eacute;n fue significativa la diferencia de peso entre los frutos    formados en los tratamientos PNE y PC (<a href="#figura8">Fig. 8B</a>). </p>     <p>        <center>     <img src="/img/revistas/cal/v33n2/v33n2a9fig7.gif"><a name="figura7"></a>    </center>     <p>        <center>     <b>Figura 7.</b> Frutos formados en los diferentes tratamientos de polinizaci&oacute;n      en <i>Passiflora edulis</i> f. <i>edulis</i> (n=30). A= Agamospermia, PE =      Polinizaci&oacute;n espont&aacute;nea, PN = Polinizaci&oacute;n natural, PNE      = Polinizaci&oacute;n Natural flor Emasculada, AP = Autopolinizaci&oacute;n,      PC = Polinizaci&oacute;n cruzada.&nbsp;    </center> </p>     <center>   <img src="/img/revistas/cal/v33n2/v33n2a9fig8.gif"><a name="figura8"></a>  </center>     <p>        ]]></body>
<body><![CDATA[<center>     <b>Figura 8.</b> Frutos obtenidos de los diferentes tratamientos de polinizaci&oacute;n      aplicados a <i>Passiflora edulis</i> f. <i>edulis</i> (A) N&uacute;mero de      semillas. (B) Peso. (C). Tama&ntilde;o. AP = Autopolinizaci&oacute;n, PC =      Polinizaci&oacute;n Cruzada, PE = Polinizaci&oacute;n Espont&aacute;nea, PN      = Polinizaci&oacute;n Natural, PNE = Polinizaci&oacute;n Natural flor Emasculada.    </center>     <center>       <p><b>Tabla 1.</b> Caracter&iacute;sticas de los frutos formados en diferentes      tratamientos de polinizaci&oacute;n aplicados a <i>Passiflora edulis</i> f.      <i>edulis</i>. Las cantidades indican la media y la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar,      el tama&ntilde;o de la muestra se se&ntilde;ala entre par&eacute;ntesis. PE      = Polinizaci&oacute;n Espont&aacute;nea, PN = Polinizaci&oacute;n Natural,      PNE = Polinizaci&oacute;n Natural flor Emasculada, AP = Autopolinizaci&oacute;n,      PC = Polinizaci&oacute;n Cruzada.</p> </center>     <center>       <p><img src="/img/revistas/cal/v33n2/v33n2a9tab1.gif"><a name="tabla1"></a>    </p> </center>     <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p><b>BIOLOG&Iacute;A FLORAL DE LA GULUPA</b></p>     <p>La flor de la gulupa (<i>P. edulis</i> f. <i>edulis</i>) exhibe rasgos florales    que se&ntilde;alan alta especializaci&oacute;n para la polinizaci&oacute;n por    abejas grandes. Estos son: un gran tama&ntilde;o (6.6 cm en su di&aacute;metro    m&aacute;ximo), perianto blanco y corona conformada por filamentos blancos y    p&uacute;rpura en la base formando una gu&iacute;a circular que atrae y gu&iacute;a    visualmente a los polinizadores al op&eacute;rculo, duraci&oacute;n floral de    un d&iacute;a, producci&oacute;n de n&eacute;ctar abundante y en concentraciones    entre 36-39% valores similares a los reportados para otras especies de <i>Passiflora</i>    polinizadas por abejas (Koschnitzke &amp; Sazima 1997), de dif&iacute;cil acceso    gracias al op&eacute;rculo que evita: el robo por parte de ladrones de n&eacute;ctar    (Endress 1994; Tcherkez 2004) y el acceso a visitantes oportunistas. El conjunto    de rasgos florales de la gulupa es coherente con el s&iacute;ndrome de polinizaci&oacute;n    melit&oacute;filo (sensu Faegri &amp; van der Pijl 1979; Proctor et al. 1996;    Baker &amp; Baker 1983), y la distancia entre el op&eacute;rculo y las estructuras    sexuales de la flor, sugiere que la gulupa ha evolucionado para ser polinizada    por una o varias especies de abejas grandes. En efecto, durante el estudio de    las flores in vivo fueron frecuentemente observadas visitas por parte de abejas    grandes de los g&eacute;neros <i>Xylocopa</i> y <i>Epicharis</i>, <i>Apis mellifera</i>,    y colibr&iacute;es. Medina (2009) provee datos espec&iacute;ficos de la eficiencia    de polinizaci&oacute;n efectuada por estos visitantes en la regi&oacute;n de    estudio, los cuales indican que las abejas grandes tienen una mayor eficiencia,    as&iacute;: <i>Epicharis</i> sp. (100%), <i>Xylocopa</i> (73%), mientras que    <i>Apis mellifera</i> es eficiente en s&oacute;lo un 53%, y los colibr&iacute;es    en un 8%. Sin embargo, en un estudio realizado en la India, el mejor polinizador    de la gulupa fue la abeja mel&iacute;fera, pese a la existencia de abejas xilocopas    en la regi&oacute;n (Kishore et al. 2010). Una posible raz&oacute;n para explicar    esta discrepancia podr&iacute;a encontrarse en el estudio comparativo de varias    especies de <i>Passiflora</i> realizado por Koschnitzke &amp; Sazima (1997)    donde muestran como el tama&ntilde;o del tipo de abeja polinizadora de las diversas    especies de plantas, se correlaciona con la longitud del androgin&oacute;foro    (incluyendo la presencia de salientes y limen). Esto indica que si existe variaci&oacute;n    interpoblacional en el tama&ntilde;o de las flores de la gulupa, &eacute;sta    tendr&aacute; una mayor plasticidad ecol&oacute;gica para utilizar polinizadores    de diferente tama&ntilde;o. Los resultados son coherentes con una visi&oacute;n    en donde las interacciones planta-polinizador altamente especializadas se reflejan    en mosaicos ecol&oacute;gicos locales, de maneras muy diversas. As&iacute;,    investigaciones con especies del g&eacute;nero Passiflora realizados en regiones    geogr&aacute;ficas diferentes, han mostrado que la composici&oacute;n de polinizadores,    e incluso la especie que funciona como polinizador principal cambia regionalmente    (Holland &amp; Lanza 2008; Kishore et al. 2010). </p>     <p>Las flores de la gulupa tuvieron una duraci&oacute;n de 25 hrs., lo cual junto    con los movimientos de las estructuras florales parece corresponder a una carga    gen&eacute;tica del g&eacute;nero <i>Passiflora</i>, pues como lo ha se&ntilde;alado    Endress (1994), todas las especies del g&eacute;nero exhiben dichos movimientos.    Las flores abrieron entre las 6 y las 8 hrs., datos muy similares a los obtenidos    en los estudios de gulupa realizados en India en donde la mayor&iacute;a de    las flores abren entre las 6 y la 7 hrs. aunque all&iacute; el espectro en la    hora de antesis es m&aacute;s amplio, ocurriendo desde las 5 hasta las 10 hrs.    (Kishore et al. 2010).</p>     <p>En las dos primeras fases fenol&oacute;gicas correspondientes al 2% (F1) y    al 12 % (F2) de la vida floral, las flores de la gulupa evitan la autopolinizaci&oacute;n,    debido a que en F1 son funcionalmente femeninas y en F2 hom&oacute;gamas pero    con hercogamia. En estas fases la flor produjo n&eacute;ctar para atraer a los    polinizadores y se present&oacute; un alto porcentaje de formaci&oacute;n de    frutos, se&ntilde;alando que las flores tienen la capacidad biol&oacute;gica    para promover la reproducci&oacute;n xen&oacute;gama. Sin embargo, debido a    que en F1 y F2 los estilos no han alcanzado la curvatura ideal para la polinizaci&oacute;n,    se requiere obtener informaci&oacute;n adicional sobre el comportamiento de    los polinizadores en las flores en fase F1 y F2 y verificar si en condiciones    naturales los estigmas de estas fases est&aacute;n recibiendo polen xen&oacute;gamo    por parte de sus vectores. En la fase F3 la flor es bisexual y no presenta hercogamia    (<a href="#figura3">Fig. 3D</a>), produce la mayor cantidad de az&uacute;car    en el n&eacute;ctar (<a href="#figura6">Fig. 6C</a>) y tiene la mayor duraci&oacute;n    (71% de la vida floral); esta es la fase en que es m&aacute;s probable que el    estigma entre en contacto con su propio polen, sin embargo esto no conduce a    la interferencia sexual entre las gametas de la misma planta debido la alta    autocompatibilidad mostrada por la gulupa (<a href="#figura7">Fig. 7</a>). En    esta fase el comportamiento y tipo de polinizador pueden promover no s&oacute;lo    la autopolinizaci&oacute;n sino tambi&eacute;n la polinizaci&oacute;n cruzada.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Numerosas especies de pasifloras han desarrollado un sistema de polinizaci&oacute;n    con abejas grandes (Janzen 1968; Corbet &amp; Willmer 1980; Koschnitzke &amp;    Sazima 1997; Magalh&atilde;es Freitas &amp; Oliveira Filho 2001; Viana et al.    2007) las cuales usualmente tienen un rango de forrajeo mayor que las abejas    peque&ntilde;as, pudi&eacute;ndose desplazar distancias de varios kil&oacute;metros    en sus rutas de recolecci&oacute;n de alimento (Janzen 1971; Roubik 1989), y    de acuerdo con Janzen (1968) el dorso de estas abejas puede contener polen de    entre 25 y 50 flores donantes, lo cual permite pensar que la flor de la gulupa    en fase F3 se beneficia de la visita de una abeja grande recibiendo cargas de    polen propio y de diferentes donantes. En la F4, la flor comienza a cerrar,    por lo que sus estructuras reproductivas no est&aacute;n expuestas por mucho    tiempo (15% de la vida floral), sin embargo es factible producir frutos y la    hercogamia puede o no ocurrir; tambi&eacute;n se mantiene el n&eacute;ctar como    recompensa a los polinizadores, pero mucho m&aacute;s diluido. Esto quiere decir    que la flor se mantiene f&eacute;rtil hasta el &uacute;ltimo momento, pudiendo    aprovechar eventos de polinizaci&oacute;n que ocurran incluso en la fase de    senescencia. Este comportamiento floral es entendible debido a la corta duraci&oacute;n    de la flor y a la alta necesidad de gametas masculinas para fecundar cientos    de &oacute;vulos. La producci&oacute;n de n&eacute;ctar diluido en la fase de    senescencia deja la inc&oacute;gnita sobre el valor funcional de este rasgo    en las flores de gulupa y si existe otro grupo de organismos, diferente a los    reportados en esta investigaci&oacute;n que est&eacute;n haciendo uso de dicho    recurso.    <br>   Resultados similares a los hallados en esta investigaci&oacute;n han sido reportados    para <i>P. suberosa</i>, otra pasionaria autocompatible, en la cual la receptividad    de los estigmas se presenta en todos los estados florales incluso antes que    ocurra la dehiscencia de las anteras (Amela-Garc&iacute;a 2008) pero difieren    de los estudios que reportan a <i>P. edulis</i> como prot&aacute;ndrica (Cox    1957). Estudios fenol&oacute;gicos realizados en <i>P. edulis</i> f. <i>flavicarpa</i>    han reportado una alta declinaci&oacute;n de la receptividad femenina despu&eacute;s    de 2 hrs. de la antesis floral (Magalh&atilde;es Souza et al. 2004), resultado    que contrasta con nuestros hallazgos en P. edulis f. edulis, pues si bien registramos    un &oacute;ptimo de receptividad estigm&aacute;tica para las fases F2 y F3,    en la F4 la cual ocurre 20 hrs. despu&eacute;s de la antesis, muestra valores    de receptividad estigm&aacute;tica a&uacute;n muy altos, como lo evidencia la    formaci&oacute;n de frutos en 70% de las flores polinizadas en esta fase (<a href="#figura4">Fig.    4B</a>).</p>     <p><b>BIOLOG&Iacute;A REPRODUCTIVA DE LA GULUPA</b></p>     <p>La gulupa requiere de la polinizaci&oacute;n y la fecundaci&oacute;n para reproducirse,    pues no produce frutos por agamospermia (A) (<a href="#figura7">Fig. 7</a>).    Es altamente autocompatible, y aunque es capaz de reproducirse por autopolinizaci&oacute;n    espont&aacute;nea, requiere de los vectores de polen para producir un mayor    n&uacute;mero de frutos, pues produjo s&oacute;lo un 33% de &eacute;stos por    polinizaci&oacute;n espont&aacute;nea, mientras que en los tratamientos de polinizaci&oacute;n    natural (PN y PNE) y polinizaci&oacute;n manual (PC) alcanz&oacute; una producci&oacute;n    de frutos mayor al 93%. La ausencia de polinizaci&oacute;n mediada por un agente    de polen no s&oacute;lo afect&oacute; la cantidad de frutos formados, tambi&eacute;n    disminuy&oacute; su calidad. Los frutos producidos por polinizaci&oacute;n espont&aacute;nea    (PE) presentaron menor n&uacute;mero de semillas, menor peso, y menor tama&ntilde;o    (<a href="#figura8">Fig. 8</a>). Deginani (2001) ha argumentado que a pesar    de la cercan&iacute;a entre anteras y estigmas en alguna de las fases florales    de las Passifloras la transferencia pasiva de polen es rara, posiblemente porque    el grano de polen es pesado y pegajoso lo que le dificulta su transporte al    estigma por viento, requiriendo de vectores animales para la producci&oacute;n    de frutos de buena calidad. En Jap&oacute;n, en donde no existen los polinizadores    naturales, se emplea la polinizaci&oacute;n manual (Ishihata 1991), pr&aacute;ctica    que genera costos adicionales de mano de obra a los productores. Los datos del    peso de los frutos obtenidos por polinizaci&oacute;n cruzada manual (PC) y polinizaci&oacute;n    natural de flores emasculadas (PNE ) indican que la participaci&oacute;n de    los polinizadores incrementa el peso del fruto (<a href="#tabla1">Tabla 1</a>)    puesto que en el tratamiento PNE las flores estuvieron expuestas a numerosas    visitas por parte de los polinizadores, mientras que en PC la polinizaci&oacute;n    se efect&uacute;o una sola vez. Este resultado indica que en el caso de la gulupa    y en ausencia de sus polinizadores naturales, los costos por polinizaci&oacute;n    manual ser&iacute;an a&uacute;n mucho m&aacute;s altos pues las flores tendr&iacute;an    que ser polinizadas varias veces. </p>     <p>A pesar de que <i>P. edulis</i> f. <i>edulis</i> tiene flores especializadas    para la polinizaci&oacute;n bi&oacute;tica, en condici&oacute;n silvestre puede    afrontar restricciones para la reproducci&oacute;n sexual, pues siendo plantas    trepadoras con distribuci&oacute;n espacial dispersa, pueden m&aacute;s f&aacute;cilmente    afrontar la limitaci&oacute;n de parejas para la reproducci&oacute;n xen&oacute;gama    y de polinizadores &quot;ruteadores&quot; que las visiten, esto &uacute;ltimo    especialmente en especies de Passiflora que carecen de aroma floral para ser    localizada por sus polinizadores. Bajo este escenario y con incapacidad de reproducci&oacute;n    por agamospermia, el aseguramiento reproductivo por autopolinizaci&oacute;n    espont&aacute;nea, le permite a la gulupa producir al menos 1/3 de la descendencia    potencial (<a href="#figura7">Fig. 7</a>), lo cual se torna en una gran adaptaci&oacute;n    de la planta para reproducirse incluso en ausencia de polinizadores. Con la    presencia de polinizadores se incrementa dram&aacute;ticamente la producci&oacute;n    de frutos incluso en ausencia de parejas xen&oacute;gamas, y si finalmente las    condiciones son lo suficientemente beneficiosas para la planta, contando con    otros individuos en el vecindario para la reproducci&oacute;n cruzada, se tiene    el beneficio de incrementar la heterosis en la poblaci&oacute;n.</p>     <p>Los resultados concuerdan con la hip&oacute;tesis del aseguramiento reproductivo,    la cual plantea que &eacute;ste debe mantenerse en plantas que enfrentan limitaciones    de polinizadores o de parejas para su reproducci&oacute;n (Darwin 1876). Los    datos y la teor&iacute;a en general apoyan la hip&oacute;tesis que los autocompatibles    son buenos colonizadores (Elle 2004), la gulupa es una planta introducida que    actualmente crece silvestre, a diferencia del maracuy&aacute;, que es autoincompatible    y excepcionalmente se encuentra fuera de los cultivos (Ocampo et al. 2007).    Una de las ventajas de los autocompatibles es contribuir con dos copias de genes    a cada generaci&oacute;n producto de autogamia, comparado con una &uacute;nica    copia que aportan los alog&aacute;micos a la siguiente generaci&oacute;n (Fisher    1941) y que a partir de un &uacute;nico individuo se pueda formar una nueva    poblaci&oacute;n, sin embargo el costo de esta estrategia reproductiva, es la    depresi&oacute;n por endogamia la cual puede disminuir la aptitud biol&oacute;gica    de la planta de forma tan severa que muchos hermafroditas previenen la autopolinizaci&oacute;n    mediante una variedad de mecanismos fisiol&oacute;gicos de autoincompatibilidad    (Wilson &amp; Harder 2003) o simplemente con mecanismos dicog&aacute;micos o    hercog&aacute;micos. Estudios realizados en Clarkia xantiana se&ntilde;alan    que el aseguramiento reproductivo es una estrategia adaptativa en respuesta    a las probabilidades de reproducci&oacute;n cruzada de los individuos (Fausto    et al. 2001). Esta es una hip&oacute;tesis interesante para someter a prueba,    en poblaciones silvestres de gulupa expuestas a servicios diferenciales de polinizaci&oacute;n,    y evaluar si la respuesta poblacional de aseguramiento reproductivo funciona    como una adaptaci&oacute;n ecol&oacute;gica local y si tiene un componente gen&eacute;tico.    De acuerdo con lo expuesto anteriormente y siguiendo los criterios de Cruden    &amp; Lyon (1989) (cit. en Kearns &amp; Inouye 1993) el sistema reproductivo    de la gulupa ser&iacute;a xen&oacute;gamo facultativo. </p>     <p>En el cultivo de gulupa estudiado, el 13% de las flores tuvieron estigmas que    no se recurvan permaneciendo siempre erectos. Seg&uacute;n los estudios de Ishihata    (1991), estas flores no producen frutos, pero s&iacute; polen viable, funcionando    as&iacute; como flores funcionalmente masculinas y las de estigmas recurvados    como hermafroditas, esto determina a la planta como funcionalmente andromonoica    (May &amp; Spears 1988). Con base en esto concluimos que la gulupa estudiada    en los cultivos de Boyac&aacute; es 13% andromonoica, datos que ameritan profundizar    el estudio de esta esterilidad femenina, evaluando si es un rasgo heredado gen&eacute;ticamente,    su valor funcional, y su efecto en la productividad del cultivo.</p>     <p>Los resultados de la presente investigaci&oacute;n deben ser incorporados a    los planes de manejo regional del cultivo de gulupa en el municipio de Buenavista,    porque evidencian que el 67% de la producci&oacute;n de frutos y la calidad    de &eacute;stos, depende de los polinizadores. La producci&oacute;n de gulupa    como una actividad de desarrollo regional, sostenible en el tiempo, requiere    de la conservaci&oacute;n y el buen manejo de sus polinizadores. </p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>A la Universidad Nacional de Colombia por la financiaci&oacute;n de esta investigaci&oacute;n    (DIB: 8003251, QUIPU: 2002010011561); a Martha Bueno por su colaboraci&oacute;n    con el uso del laboratorio de citogen&eacute;tica para realizar las observaciones    de los tubos pol&iacute;nicos; a Diego Giraldo-Ca&ntilde;as por la revisi&oacute;n    del manuscrito y sus valiosas observaciones; a los agricultores y autoridades    del municipio de Buenavista por su apoyo para la realizaci&oacute;n de esta    investigaci&oacute;n. Finalmente a cuatro evaluadores an&oacute;nimos por sus    valiosos comentarios al manuscrito.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>LITERATURA CITADA</b></p>     <!-- ref --><p> 1. ALM&Eacute;CIGA, J.C. &amp; E.G. HERRERA. 2008. Inventario preliminar de    la entomofauna asociada al cultivo de gulupa (Passiflora edulis f. edulis Sims),    en los municipios de Choach&iacute; y Ubaque, Cundinamarca, Colombia. Trabajo    de grado. Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;,    D.C. 1-45 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0366-5232201100020000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   2. AMELA GARC&Iacute;A, M.T. 2008. Breeding system and related floral features    under natural and experimental conditions of Passiflora suberosa (Passifloraceae).    Bolet&iacute;n de la Sociedad Argentina de Bot&aacute;nica 43: 83-93.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S0366-5232201100020000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   3. AVENDA&Ntilde;O, J.C. &amp; E. QUEVEDO. 1989. An&aacute;lisis de la floraci&oacute;n    y fructificaci&oacute;n bajo tres sistemas de soporte en la gulupa. Trabajo    de grado. Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;,    D.C. 5-15 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0366-5232201100020000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   4. BAKER, H. G. &amp; I. BAKER. 1983. Floral nectar sugar constituents in relation    to pollination type. En: Handbook of experimental pollination biology. Jones,    C. E. &amp; R. J. Little (Eds.). Van Nostrand Reinhold, Nueva York. 117-141    pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S0366-5232201100020000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   5. BRUCKNER, C.H., V.W.D. CASALI MOARAES, A.J. RAGAZZI &amp; E.M.A. SILVA. 1995.    Self-incompatibility in passion fruit (Passiflora edulis Sims). Acta Horticulturae    370: 45-57.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0366-5232201100020000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   6. CERVI, A.C. 1997. Passifloraceae do Brasil: estudo do g&ecirc;nero Passiflora    L., subg&ecirc;nero Passiflora. Cyanus, S. L., Madrid. 42-45 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S0366-5232201100020000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   7. CORBET, S.A. &amp; P.G. WILLMER. 1980. Pollination of the yellow passion    fruit: Nectar, pollen and carpenter bees. Journal of Agricultural Science 95:    655-666.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0366-5232201100020000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   8. COX, J.E. 1957. Flowering and pollination of the yellow passion fruit. Agricultural    Gazette of New South Wales 68: 573-576.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S0366-5232201100020000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   9. CRUDEN, R.W. &amp; D.L. LYON. 1989. Facultative xenogamy: examination of    a mixed mating system. The Evolutionary Ecology of Plants. Bock, J. H. &amp;    Y. B. Linhart (Eds.). Westview Press, Boulder, Colorado. 171-207 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0366-5232201100020000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   10. DAFNI, A. 1992. Pollination Ecology: A Practical Approach. The Practical    Approach Series. Rickwood, D. &amp; B. D. Hames (Eds.). IRL Press. Oxford University    Press Inc., Nueva York. 250 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S0366-5232201100020000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   11. DAFNI, A., E. PACINI &amp; M. NEPI. 2005. Pollen and stigma biology. En:    Practical pollination biology. Dafni, A; P. G. Kevan &amp; B. Husband (Eds.).    Eviroquest Ltd., Cambridge, Ontario, Canad&aacute;. 83-146 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0366-5232201100020000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   12. DARWIN, C. 1876. On the Effects of Cross and Self Fertilization in the Vegetable    Kingdom. John Murray, Londres.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S0366-5232201100020000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   13. DEGINANI, N.B. 2001. Las especies argentinas del g&eacute;nero Passiflora    (Passifloraceae). Darwiniana 39: 43-129.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0366-5232201100020000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   14. ELLE, E. 2004. Floral adaptations and biotic and abiotic selection pressures.    En: Plant adaptation: Molecular Genetics and Ecology. Cronk, Q. C. B. (Ed.).    Ottawa. 111-116 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S0366-5232201100020000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   15. ENDRESS, P.K. 1994. Diversity and evolutionary biology of tropical flowers.    Cambridge University Press, Cambridge. 249-255 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0366-5232201100020000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   16. FAEGRI, K. &amp; L. VAN DER PILJ. 1979. The principles of pollination ecology.    Pergamon Press Ltd., Oxford.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S0366-5232201100020000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   17. FAUSTO, J.A. JR., V.M. ECKHART &amp; M.A. GEBER. 2001. Reproductive assurance    and the evolutionary ecology of self-pollination in Clarkia xantiana (Onagraceae).    American Journal of Botany 88: 1794-1800.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0366-5232201100020000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   18. FREE, J.B. 1993. Insect pollination of crops. Academic Press, Londres. 404-409.        &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S0366-5232201100020000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   19. FISHER, R.A. 1941. Average excess and average effect of a gene substitution.    Annals of Eugenics 11: 53-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0366-5232201100020000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   20. GALETTO, L. &amp; G. BERNARDELLO. 2005. Nectar: 261-328. En: Practical pollination    biology. Dafni, A; P. G. Kevan &amp; B. Husband (Eds.) Eviroquest Ltd., Cambridge,    Ontario, Canad&aacute;.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S0366-5232201100020000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   21. GILMARTIN, A. 1958. Post-fertilization, seed and ovary development in Passiflora    edulis Sims. Tropical Agriculture-Trinidad 35: 41-58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0366-5232201100020000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   22. GIR&Oacute;N VAN DER HUCK, M. 1991. Biolog&iacute;a floral de dos especies    de pasifloras. Primer Simposio Internacional de Passifloras: memorias. 89-93    pp. Universidad Nacional de Colombia. Palmira.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S0366-5232201100020000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   23. HARDIN, C.L. 1986. Floral biology and breeding system of the yellow passion    fruit, Passiflora edulis f. flavicarpa En: Proceedings of the Interamerican    Society for Tropical Horticulture 30: 35-44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0366-5232201100020000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   24. HOLLAND, J.B. &amp; J. LANZA. 2008. Geographic variation in pollination    biology of Passiflora lutea (Passifloraceae). Journal of the Arkansas Academy    of Science 62: 32-36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S0366-5232201100020000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   25. ISHIHATA, K. 1991. Studies on pollen germination and tube growth from normal    and upright style flowers in purple passion fruit Passiflora edulis Sims using    various artificial media. Japanese Journal of Tropical Agriculture 35: 98-103.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0366-5232201100020000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   26. JANZEN, D.H. 1968. Reproductive behavior in the Passifloraceae and some    of its pollinators in Central America. Behaviour 32: 33-48.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0366-5232201100020000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   27. JANZEN, D.H. 1971. Euglossine bees as long-distance pollinators of tropical    plants. Science 171: 203-205.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S0366-5232201100020000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   28. KEARNS, C.A. &amp; D.W. INOUYE. 1993. Techniques for pollination biologists.    University Press of Colorado, Colorado.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S0366-5232201100020000900028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   29. KISHORE, K., K.A. PATHAK, R. SHUKLA &amp; R. BHARALI. 2010. Studies on floral    biology of passion fruit (Passiflora spp.). Pakistan Journal of Botany 42: 21-29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S0366-5232201100020000900029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   30. KOSCHNITZKE, C. &amp; M. SAZIMA. 1997. Biologia floral de cinco esp&eacute;cies    de Passiflora L. (Passifloraceae) em mata semidec&iacute;dua. 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GONZAGA    PEREIRA, A. TEXEIRA DO AMARAL J&Uacute;NIOR &amp; H. CHAGAS MADUREIRA. 2004.    Flower receptivity and fruit characteristics associated to time of pollination    in the yellow passion fruit Passiflora edulis Sims f. flavicarpa Degener (Passifloraceae).    Scientia Horticulturae 101: 373-385.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S0366-5232201100020000900032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   33. MARTIN, F.W. 1959. Staining and observing pollen tubes by means of fluorescence.    Stain Technology 34:125-128.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S0366-5232201100020000900033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   34. MAY, P.G. &amp; E. SPEARS. 1988. Andromonoecy and variation in Phenotypic    Gender of Passiflora incarnata (Passifloraceae). American Journal of Botany    75: 1830-1841.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S0366-5232201100020000900034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   35. MEDINA, J. 2009. Estudio de agentes polinizadores de gulupa Passiflora edulis    f. edulis en dos cultivos a diferente altitud en Buenavista-Boyac&aacute;, Colombia.    Trabajo de grado. Departamento de Biolog&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia.    Bogot&aacute;, D.C.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S0366-5232201100020000900035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   36. MONCUR, M.W. 1988. Floral Development of Tropical and Subtropical Fruit    and Nut Species. An Atlas of Scanning Electron Micrographs. CSIRO, Canberra.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S0366-5232201100020000900036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   37. NISHIDA, T. 1958. Pollination of passion fruit in Hawaii. Journal of Economical    Entomology 51:146-148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S0366-5232201100020000900037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   38. OCAMPO P&Eacute;REZ, O., G. COPPENS D'EECKENBRUGGE, M. RESTREPO, A.    JARVIS, M. SALAZAR &amp; C. CAETANO. 2007. Diversity of Colombian Passifloraceae:    biogeography and an updated list for conservation. 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Determinaci&oacute;n    de los estados de madurez del fruto de la gulupa (Passiflora edulis Sims). Agronom&iacute;a    Colombiana 25: 83-95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S0366-5232201100020000900040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   41. PROCTOR, M., P. YEO &amp; A. LACK. 1996. The Natural History of Pollination.    Timber Press, Portland, Oregon.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S0366-5232201100020000900041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   42. ROUBIK, D.W. 1989. Ecology and Natural History of Tropical Bees. Cambridge    University Press, Cambridge. 514 pp.     &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S0366-5232201100020000900042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   43. RUGGIERO, C., A. LAM-SANCHEZ &amp; R. CARVALHO. 1976. Oc&ocirc;rrencia de    diferentes tipos de flores de maracuj&aacute; amarelo (Passiflora edulis f.    Flavicarpa Deg). Cient&iacute;fica (Jaboticabal) 4: 82-86.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S0366-5232201100020000900043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   44. TCHERKEZ, T. 2004. Flower evolution of the floral Architecture of Angiosperms.    Science Publishers, New Hampshire.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S0366-5232201100020000900044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   45. ULMER, T. &amp; J. M. MACDOUGAL. 2004. Passiflora: passion flowers of the    world. Timber Press Portland, Oregon. 69-70 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S0366-5232201100020000900045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   46. VIANA, B.F., P.L.B. ROCHA, F.O. SILVA &amp; A.M. KLEIN. 2007. Exploring    causes of pollinator limitation of yellow passion fruit (Passiflora edulis Sims)    in Northeast of Brazil. In: International Pollination Synposium, Ames, Iowa.    135-136 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S0366-5232201100020000900046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   47. VIANA, B.F., A.M. ALMEIDA &amp; F.O. SILVA. 2011. Poliniza&ccedil;&atilde;o    do maracuj&aacute;-amarelo no semi-&aacute;rido da Bahia. PROBIO.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000170&pid=S0366-5232201100020000900047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br>   48. WILSON, W.G. &amp; L.D. HARDER. 2003. Reproductive uncertainty and the relative    competitiveness of simultaneous hermaphroditism versus dioecy. The American    Naturalist 162: 220-241.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S0366-5232201100020000900048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br> </p> </font>      ]]></body>
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