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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[RENDIMIENTO Y CAPACIDAD ANTIOXIDANTE DE EXTRACTOS DE ROSMARINUS OFFICINALIS, SALVIA OFFICINALIS Y PSIDIUM GUAJAVA OBTENIDOS CON CO2 SUPERCRÍTICO]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Extracts from stems and leaves of sage (Salvia officinalis, Labiatae Fam.) and rosemary (Rosmarinus officinalis, Labiatae Fam.) and from guava leaves (Psidium guajava, Myrtaceae Fam.), were obtained using supercritical CO2. Polynomic models were formulated to relate yield with extraction conditions. The compositions of the volatile fractions of these extracts were determined using GC-MS. Their antioxidant capacity (ORAC) and the protection resultant from their addition to a cosmetic base subjected to lipid peroxidation as a result of its exposure to UV radiation were also measured. The extract from rosemary imparted the highest lipid peroxidation inhibition (88%), followed by those obtained from sage (76%) and guava leaves (43%). Rosemary and sage extracts exhibited a high antioxidant capacity (1,9 µmol Trolox®/mg), similar to those of BHT and vitamin E (2,8 and 3,0 µmol Trolox®/mg), respectively, and higher than that of the guava leaves extract (0,7 µmol Trolox®/mg).]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> &nbsp;     <p align="right"><font size="3"><b>BIOQU&Iacute;MICA</b></font></p> &nbsp;     <p><font size="4"><b>    <center> RENDIMIENTO Y CAPACIDAD ANTIOXIDANTE DE EXTRACTOS DE <i>ROSMARINUS OFFICINALIS</i>, <i>SALVIA OFFICINALIS</i> Y <i>PSIDIUM GUAJAVA</i> OBTENIDOS CON CO<sub>2</sub> SUPERCR&Iacute;TICO </center></b></font></p> &nbsp;     <p><b>    <center> Edwin Alexander Rodr&iacute;guez, Anderson Juli&aacute;n &aacute;rias, Eva Giselle V&aacute;squez, Jairo Ren&eacute; Mart&iacute;nez, Elena E. Stashenko* </center></b></p>     <p>* Centro de Cromatograf&iacute;a y Espectrometr&iacute;a de Masas, CROM-MASS, CIBIMOL, CENIVAM, Universidad Industrial de Santander. Carrera 27, Calle 9, Bucaramanga, Colombia. <a href="mailto:elena@tucan.uis.edu.co">elena@tucan.uis.edu.co</a></p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>Se obtuvieron extractos de hojas y tallos de salvia (<i>Salvia officinalis</i>, Fam. Labiatae) y romero (<i>Rosmarinus officinalis</i>, Fam. Labiatae) y de hojas de guayaba (<i>Psidium guajava</i> Fam. Myrtaceae), empleando CO<sub>2</sub> en estado supercr&iacute;tico. Se obtuvieron modelos polin&oacute;micos para relacionar el rendimiento de extractos con las condiciones de su obtenci&oacute;n. La composici&oacute;n de la fracci&oacute;n vol&aacute;til de los extractos se determin&oacute; por medio de GC-MS. Se midieron la capacidad antioxidante (ORAC) de los extractos y el grado de protecci&oacute;n que ofrecen al agregarse a una base cosm&eacute;tica sometida a oxidaci&oacute;n lip&iacute;dica por acci&oacute;n de la radiaci&oacute;n UV. El extracto de romero mostr&oacute; el mayor porcentaje de inhibici&oacute;n de la oxidaci&oacute;n lip&iacute;dica (88%), seguido por el de salvia (76%) y el de hojas de guayaba (43%). Los extractos de romero y salvia exhibieron una capacidad antioxidante alta (1,9 &micro;mol Trolox&reg;/mg), similar a la del BHT y la vitamina E (2,8 y 3,0 &micro;mol Trolox&reg;/mg), mayor que la del extracto de hojas de guayaba (0,7 &micro;mol Trolox&reg;/mg).</p>     <p><b>Palabras clave:</b> <i>Salvia officinalis</i>; <i>Rosmarinus officinalis</i>; <i>Psidium guajava</i>; fluido supercr&iacute;tico; antioxidante; ORAC; peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica; hexanal.</p> <hr size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>ABSTRACT</b> </p>     <p>Extracts from stems and leaves of sage (<i>Salvia officinalis</i>, Labiatae Fam.) and rosemary (<i>Rosmarinus officinalis</i>, Labiatae Fam.) and from guava leaves (<i>Psidium guajava</i>, Myrtaceae Fam.), were obtained using supercritical CO<sub>2</sub>. Polynomic models were formulated to relate yield with extraction conditions. The compositions of the volatile fractions of these extracts were determined using GC-MS. Their antioxidant capacity (ORAC) and the protection resultant from their addition to a cosmetic base subjected to lipid peroxidation as a result of its exposure to UV radiation were also measured. The extract from rosemary imparted the highest lipid peroxidation inhibition (88%), followed by those obtained from sage (76%) and guava leaves (43%). Rosemary and sage extracts exhibited a high antioxidant capacity (1,9 &micro;mol Trolox&reg;/mg), similar to those of BHT and vitamin E (2,8 and 3,0 &micro;mol Trolox&reg;/mg), respectively, and higher than that of the guava leaves extract (0,7 &micro;mol Trolox&reg;/mg). </p>     <p><b>Key words:</b> <i>Salvia officinalis</i>; <i>Rosmarinus officinalis</i>; <i>Psidium guajava</i>; supercritical; antioxidant; ORAC; lipid peroxidation; hexanal</p> <hr size="1"> &nbsp;     <p><font size="3"><b>1. Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p>   La b&uacute;squeda de productos de origen natural que permitan   sustituir compuestos sint&eacute;ticos, que actualmente se usan en   las industrias alimenticia, de cosm&eacute;ticos, farmacol&oacute;gica y   muchas otras, ha adquirido gran importancia. Esto se debe   a los posibles efectos adversos y toxicidad reportada de los   compuestos sint&eacute;ticos. El butilhidroxianisol (BHA) y el butilhidroxitolueno   (BHT) se han usado ampliamente como   agentes antioxidantes, para conservar productos alimenticios   (<b>JECFA,</b> 1996). El BHT ha extendido su uso en productos   farmac&eacute;uticos, vitaminas liposolubles y cosm&eacute;ticos, puesto   que les aumenta su estabilidad y tiempo de vida &uacute;til (FDA,   1981). La Agencia Internacional para la Investigaci&oacute;n del   C&aacute;ncer (IARC) evalu&oacute; el modo de acci&oacute;n del BHA, y encontr&oacute;   evidencia suficiente de acci&oacute;n carcinog&eacute;nica de este compuesto en animales (<b>IARC,</b> 1986).</p>     <p>   Las plantas romero (<i>Rosmarinus officinalis</i>, Fam. Labiatae),   salvia (<i>Salvia officinalis</i>, Fam. Labiatae) y guayaba (Psidium   guajava, Fam. Myrtaceae) se presentan como una fuente   alternativa de compuestos que pueden ser suced&aacute;neos de   los antioxidantes de origen sint&eacute;tico. El romero y la salvia,   poseen metabolitos secundarios con efectos medicinales reportados   (<b>Aim <i>et al</i>.,</b> 2005). La actividad antioxidante que   se les atribuye, se debe principalmente a la presencia de los   &aacute;cidos carn&oacute;sico y rosmar&iacute;nico (<b>Iba&ntilde;ez <i>et al</i>.,</b> 2003; <b>Bisio   <i>et al</i>.,</b> 1997). Sin embargo, esta actividad biol&oacute;gica depende   tambi&eacute;n de la presencia de compuestos activos, que incluyen   terpenoides, flavonoides y &aacute;cidos fen&oacute;licos (<b>Masaki <i>et al</i>.,</b>   1995). La guayaba, especie originaria de Am&eacute;rica tropical,   ha sido objeto de varias investigaciones sobre actividad biol&oacute;gica,   que han mostrado que tanto la fruta como la hoja son   fuentes de flavonoides, polifenoles y otras sustancias bioactivas   (<b>P&eacute;rez <i>et al</i>.,</b> 2008). Adicionalmente, en las hojas de   guayaba se han encontrado &aacute;cidos fen&oacute;licos tales como el   fer&uacute;lico, a los cuales se les atribuye su mayor capacidad antioxidante,   en comparaci&oacute;n con los compuestos presentes en la fruta (<b>Chen <i>et al</i>.,</b> 2007).</p>     <p>   Existen diferentes formas de extraer los compuestos bioactivos   de las plantas. Para seleccionar alguna t&eacute;cnica es necesario   tener en cuenta que los compuestos pueden degradarse   con la temperatura u oxidarse en presencia de ox&iacute;geno y   luz. La extracci&oacute;n con fluidos supercr&iacute;ticos es una t&eacute;cnica   importante que aprovecha las caracter&iacute;sticas de densidad y   viscosidad de las sustancias en estados m&aacute;s all&aacute; de su punto   cr&iacute;tico. El CO<sub>2</sub> es uno de los solventes m&aacute;s usados debido a   que el extracto resultante se colecta libre de residuos de solvente,   no tiene restricciones medioambientales, ni problemas   de regulaci&oacute;n en la salud p&uacute;blica (<b>Meireles <i>et al</i>.,</b> 2005). El   CO<sub>2</sub> en estado supercr&iacute;tico puede ser utilizado en productos   nutrac&eacute;uticos, funcionales y alimenticios, lo que actualmente   es un tema de creciente inter&eacute;s (<b>Sebasti&aacute;n <i>et al</i>.,</b> 1998;   <b>Mart&iacute;nez,</b> 2008).</p>     <p>   El objetivo de este trabajo fue encontrar modelos matem&aacute;ticos   para la predicci&oacute;n del rendimiento de la extracci&oacute;n de   salvia, romero y guayaba (hojas) con CO<sub>2</sub> en estado supercr&iacute;tico.   Para cada uno de los 3 extractos se determinaron la   composici&oacute;n de su fracci&oacute;n vol&aacute;til, la actividad antioxidante   seg&uacute;n el m&eacute;todo ORAC, y su comportamiento como inhibidor   de la peroxidaci&oacute;n de una base cosm&eacute;tica.</p>   &nbsp;     <p><font size="3"><b>   2. Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>     <p>   <b>2.1. Extracci&oacute;n con CO<sub>2</sub> supercr&iacute;tico</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Las hojas y tallos de romero y salvia, con un contenido de   humedad entre 20 y 30%, fueron suministradas por la Asociaci&oacute;n   Municipal de Usuarios Campesinos el Retiro Veredas   Aleda&ntilde;as Sucre Santander (ACRESS) en enero de 2011.   La empresa Fharmavicola S.A. proporcion&oacute; las hojas de   guayaba en condiciones de humedad similares. Antes de la   extracci&oacute;n con CO<sub>2</sub> se realiz&oacute; un pretratamiento de reducci&oacute;n   de tama&ntilde;o de part&iacute;cula y de secado. La reducci&oacute;n de tama&ntilde;o   se efectu&oacute; en un picador/triturador forrajero TRF 300 (Metal&uacute;rgica   TRAPP Ltda. Jaragu&aacute; do sul, Brasil) acondicionado   con un tamiz de 0,8 mm. Posteriormente, el material   vegetal picado de cada especie se introdujo por lotes de 0,6   kg en un horno el&eacute;ctrico de bandejas (INDUMEGAS, Bucaramanga,   Colombia) durante 18 horas, para lograr un contenido   de humedad menor de 10%. Todas las extracciones   con CO<sub>2</sub> supercr&iacute;tico se realizaron en un equipo Thar modelo   SFE-2000-2-FMC50 (Thar Instruments, Inc, Pittsburg,   PA, EE.UU.). Su c&aacute;mara de extracci&oacute;n tiene un volumen de   1,78x10<sup>-3</sup> m<sup>3</sup>. El extractor est&aacute; dise&ntilde;ado para condiciones   m&aacute;ximas de presi&oacute;n, flujo de CO<sub>2</sub> y temperatura, de 60 MPa,   12 kg/h y 120&deg;C, respectivamente. El material vegetal se carg&oacute;   al extractor con una densidad aparente de 370 kg/m<sup>3</sup>, lo   que ocup&oacute; cerca del 83% de la c&aacute;mara de extracci&oacute;n. Estos   valores son similares a los utilizados por A. Meireles y colaboradores   en los estudios cin&eacute;ticos de la extracci&oacute;n con CO<sub>2</sub>   supercr&iacute;tico de romero (Meireles <i>et al</i>., 2005). La temperatura   de extracci&oacute;n se mantuvo constante en 50&deg;C, teniendo   en cuenta los datos de densidad del CO<sub>2</sub> para presiones que   se encuentran por encima de 30 MPa, con un valor m&aacute;ximo   de 920 &plusmn; 39 kg/m<sup>3</sup> a esta temperatura (Shi <i>et al</i>., 2009). Los   niveles para la presi&oacute;n se seleccionaron con base en estudios   sobre la solubilidad del &aacute;cido carn&oacute;sico (compuesto presente   en las tres especies) en CO<sub>2</sub>, los cuales indicaron que solo   se observa un aumento significativo de esta propiedad cuando   se opera a presiones superiores a 30 MPa (RiÅ¾nar <i>et al</i>.,   2008).</p>     <p><b>2.2. Dise&ntilde;o experimental</b></p>     <p>  La presi&oacute;n (P, 30; 40; 50 MPa), el tiempo de extracci&oacute;n (t,   0,5; 1,25; 2 h) y el flujo de CO<sub>2</sub> (F, 1,5; 2,25; 3 kg/h), se variaron   sistem&aacute;ticamente seg&uacute;n un dise&ntilde;o experimental central   compuesto, para evaluar sus efectos sobre el rendimiento de   extracci&oacute;n de las tres especies vegetales. Los valores entre   par&eacute;ntesis corresponden a los niveles bajo (-1), medio (0) y   alto (1) tomados por las variables. El dise&ntilde;o incluy&oacute; 8 experimentos   en puntos factoriales, 6 en puntos axiales y 3 en puntos   centrales (<a href="#t1">Tabla 1</a>). Los tres experimentos del punto central   (0,0,0) se utilizaron para evaluar el error experimental.</p>     <p>    <center><a name="t1"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01t1.jpg"></a></center></p>     <p>  Los rendimientos de extracci&oacute;n observados para las 3 especies   se muestran en la <a href="#t1">Tabla 1</a>. Se utiliz&oacute; una ecuaci&oacute;n   polin&oacute;mica de segundo orden para modelar el rendimiento   como una funci&oacute;n de variables independientes, con base en   el an&aacute;lisis de varianza. Se construyeron modelos en los que   se conservaron &uacute;nicamente los coeficientes que presentaran   influencia estad&iacute;sticamente significativa. Los modelos fueron   refinados con el m&eacute;todo de validaci&oacute;n cruzada (dejando   fuera un caso a la vez) aplicado a los 17 resultados experimentales.</p>     <p>   <b>2.3. An&aacute;lisis cromatogr&aacute;fico: GC-MS y HPLC.</b></p>     <p>   Los extractos se disolvieron en metanol, se les adicion&oacute; <i>n</i>-tetradecano   como est&aacute;ndar interno y se analizaron en un   cromat&oacute;grafo de gases GC <i>Agilent Technologies</i> 6890N <i>Plus</i>   (AT, Palo Alto, California, EE.UU.), acoplado a un detector   selectivo de masas AT MSD 5973, con un puerto de inyecci&oacute;n   <i>split</i>/<i>splitless</i> (relaci&oacute;n <i>split</i> 1:30) e inyector autom&aacute;tico   AT 7863. Se us&oacute; una columna capilar de s&iacute;lice fundida,   DB-5MS de 60 m x 0,25 mm, D.I., recubierta con una fase   estacionaria de 5%-fenil-poli(metilsiloxano) de 0,25 &micro;m de   grosor (d<sub>f</sub>). La temperatura del horno se program&oacute; de 45&deg;C   (5 min) hasta 150&deg;C (2 min) a 4&deg;C min<sup>-1</sup>, luego, hasta 250&deg;C   (5 min) a 5&deg;C min<sup>-1</sup> y, finalmente, hasta 275&deg;C a 10&deg;C/min,   temperatura a la cual permaneci&oacute; constante durante 15 min.</p>     <p>   Para su an&aacute;lisis por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida, los extractos se   disolvieron en metanol: &aacute;cido ac&eacute;tico (0,5%) (1:1). Se utiliz&oacute;   un cromat&oacute;grafo l&iacute;quido AT 1200 con un detector UV-Vis   de arreglo de diodos, DAD G1315B y columna KINETICS   2.6u C18 (100 mm x 4,6 mm). La temperatura de la columna   se mantuvo en 35 &deg;C y el volumen de muestra inyectada   fue de 20 &micro;L. Las fases m&oacute;viles A y B fueron &aacute;cido ac&eacute;tico   (0.3%) y acetonitrilo, respectivamente. Las condiciones cromatogr&aacute;ficas   fueron: 0-13 min, 4.5% B; 14-17 min, 15% B;   20-28 min, 22% B, 30-33 min, 100% B; 34-45 min, 4.5% B.   Se utiliz&oacute; un flujo de fase m&oacute;vil de 1,0 mL/min.</p>     <p>   <b>2.4. Preparaci&oacute;n de las muestras para la evaluaci&oacute;n de   su capacidad antioxidante</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   Cada uno de los extractos de romero, salvia y hojas de guayaba,   se diluy&oacute; en metanol, seguido de agitaci&oacute;n mec&aacute;nica   (v&oacute;rtice, 30 s) y por ultrasonidos (30 min) y centrifugaci&oacute;n (3500 rpm, 15 min). Se tom&oacute; el l&iacute;quido sobrenadante y se filtr&oacute; sobre vidrio poroso (0,22 &micro;m).</p>     <p>   <b>2.5. An&aacute;lisis de la capacidad antirradicalaria</b></p>     <p>   La determinaci&oacute;n de la capacidad antirradicalaria de los extractos   se realiz&oacute; mediante el ensayo ORAC descrito por Ou   y colaboradores (<b>Ou <i>et al</i>.</b> 2001). &eacute;ste se llev&oacute; a cabo en un   espectrofot&oacute;metro <i>Modulus</i>&trade; II, <i>microplate reader</i>, 645 N   de <i>Turner Biosystems</i>, (North Mary Avenue, Sunnyvale, CA,   EE.UU.) en un rango de longitud de onda de 490-570 nm; las   mediciones se realizaron en microplacas de 96 pozos.</p>     <p>   <b>2.6. Determinaci&oacute;n de la capacidad antioxidante <i>in-vitro</i></b></p>     <p>   La microextracci&oacute;n en fase s&oacute;lida (SPME) con derivaci&oacute;n   simult&aacute;nea sobre la fibra (<b>Stashenko <i>et al</i>.,</b> 2000, 2002) se   utiliz&oacute; para medir la inhibici&oacute;n ejercida por los extractos,   sobre la peroxidaci&oacute;n lipidica de una base cosm&eacute;tica O/W,   inducida por radiaci&oacute;n UV-A. Mezclas homog&eacute;neas de las   sustancias de an&aacute;lisis (0,5% en peso) y la base cosm&eacute;tica   O/W (Laboratorios MyN Bogot&aacute;, Colombia) fueron expuestas   durante 12 h a radiaci&oacute;n ultravioleta, en un fotorreactor,   con el fin de inducir la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica de la crema cosm&eacute;tica.   El avance de la peroxidaci&oacute;n se supervis&oacute; a trav&eacute;s   de la cuantificaci&oacute;n del hexanal liberado, ya que &eacute;ste es un   producto secundario final de la oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos   insaturados, principalmente, el &aacute;cido linoleico.</p>     <p>   La fibra (PDMS/DVB) de SPME se satur&oacute; previamente por   exposici&oacute;n a la fase vapor de una soluci&oacute;n acuosa de pentafluorofenilhidracina   (PFPH); la fibra as&iacute; preparada, se expuso   al espacio de cabeza de la mezcla (base cosm&eacute;tica con   extracto SFE), para capturar y derivatizar aldeh&iacute;dos resultantes   de su peroxidaci&oacute;n, inducida por radiaci&oacute;n UV. Las   hidrazonas formadas por la reacci&oacute;n entre PFPH y los compuestos   carbon&iacute;licos presentes en la fase vapor (<b>Stashenko   <i>et al</i>.,</b> 2002), fueron desorbidas t&eacute;rmicamente por inserci&oacute;n   directa de la fibra en el puerto de inyecci&oacute;n de un cromat&oacute;grafo   de gases HP-5890 <i>Series</i> II acoplado a un detector de   captura de electrones (ECD, <sup>63</sup>Ni).</p> &nbsp;     <p><b><font size="3">   3. Resultados y discusi&oacute;n</font></b></p>     <p><b>   3.1. Efecto de los par&aacute;metros de extracci&oacute;n.</b></p>     <p>   El an&aacute;lisis de la varianza de las mediciones de los experimentos   de extracci&oacute;n SFE de romero (tallos y hojas), salvia   (tallos y hojas) y guayaba (hojas) mostr&oacute; que en todos los   casos, la presi&oacute;n, el flujo de CO<sub>2</sub> y el tiempo de extracci&oacute;n,   afectaron significativamente el rendimiento de la extracci&oacute;n.   Por medio de la regresi&oacute;n lineal m&uacute;ltiple se hallaron los coeficientes   de modelos polin&oacute;micos de 2&deg; orden para relacionar   el rendimiento de extracci&oacute;n con estas 3 variables. En   procesos de validaci&oacute;n cruzada con exclusi&oacute;n de un t&eacute;rmino   a la vez, se utilizaron el error cuadrado medio de la predicci&oacute;n   del rendimiento y el coeficiente de determinaci&oacute;n ajustado   (R<sup>2</sup><sub>aj</sub>) como criterios de refinamiento de los modelos. La <a href="#f1">Figura 1</a> presenta los gr&aacute;ficos de comparaci&oacute;n de los valores   de rendimiento de extracci&oacute;n (Y), experimental y predicho,   para las 3 especies estudiadas, con los modelos refinados   (<a href="#e1">Ecuaciones 1 - 3</a>).</p>       <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="f1"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01f1.jpg"></a></center></p>       <p>    <center><a name="e1"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01e1.jpg"></a></center></p>     <p>Los valores utilizados para las variables F, P y t en estos modelos   fueron los resultantes del escalamiento seg&uacute;n los niveles   bajo (-1) y alto (1) empleados en los experimentos (<a href="#t1">Tabla   1</a>). En las etapas de la validaci&oacute;n cruzada (17 experimentos),   el error de ajuste del modelo (<a href="#e2">ecuaci&oacute;n 4</a>) se calcul&oacute; como   la diferencia entre el error experimental total (con base en   la varianza de las m r&eacute;plicas Xi) y la suma de los errores en   la predicci&oacute;n (&#374;i) del experimento excluido. En la <a href="#t2">Tabla 2</a>   aparecen los valores del error cuadrado medio (RMSE), el   error de ajuste registrado en la validaci&oacute;n cruzada (ecuaci&oacute;n   4) y el coeficiente de determinaci&oacute;n de los modelos 1 - 3. El   modelo con mejor ajuste fue el obtenido para la predicci&oacute;n del rendimiento de extracci&oacute;n de hojas de guayaba.</p>     <p>    <center><a name="e2"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01e2.jpg"></a></center></p>     <p>    <center><a name="t2"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01t2.jpg"></a></center></p>     <p>Para los 3 modelos, el rendimiento de extracci&oacute;n fue directamente   proporcional a las 3 variables estudiadas, aunque   su crecimiento no fue mon&oacute;tono, debido a la presencia de   t&eacute;rminos cuadr&aacute;ticos y de interacci&oacute;n binaria. Las <a href="#f2">Figuras 2</a>, <a href="#f3">3</a> y <a href="#f4">4</a> contienen gr&aacute;ficos de contorno para estos 3 modelos,   en los que se predicen los valores m&aacute;s altos de rendimiento   de extracci&oacute;n para condiciones experimentales externas a la   regi&oacute;n explorada con el dise&ntilde;o central compuesto. Algunas   condiciones de presi&oacute;n y flujo correspondientes a las regiones   de mayor rendimiento de extracci&oacute;n predicho no son accesibles experimentalmente (P &gt; 100 MPa, F &gt; 10 kg/h).</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="f2"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01f2.jpg"></a></center></p>     <p>    <center><a name="f3"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01f3.jpg"></a></center></p>     <p>    <center><a name="f4"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01f4.jpg"></a></center></p>     <p>Los mayores rendimientos de extracci&oacute;n experimentales se registraron   cuando se utilizaron los niveles altos de F, P y t en la   extracci&oacute;n de romero o salvia. En el caso de la extracci&oacute;n de hojas de guayaba, este valor se obtuvo con los niveles altos de F y t y el nivel bajo de P. Seg&uacute;n la extrapolaci&oacute;n hecha en los gr&aacute;ficos de contorno (<a href="#f2">Figuras 2</a>, <a href="#f3">3</a> y <a href="#f4">4</a>), para obtener los rendimientos &oacute;ptimos, se requerir&iacute;an tiempos de extracci&oacute;n 4, 5 y 6 veces m&aacute;s largos que el nivel superior empleado en los experimentos de extracci&oacute;n de romero, salvia y guayaba, respectivamente. Esta dependencia del rendimiento de extracci&oacute;n coincide en general con la encontrada en varios modelos para la extracci&oacute;n SFE de semillas de cilantro (<b>Magoulas <i>et al</i>.,</b> 2000). Con base en estos gr&aacute;ficos de contorno, para lograr rendimientos de extracci&oacute;n altos (&gt; 1%) se puede formular la recomendaci&oacute;n de usar niveles altos de F, P y t en las extracciones de romero y salvia y niveles altos de F y T y un nivel bajo de P, en la extracci&oacute;n de hojas de guayaba.</p>     <p>   <b>3.2 Composici&oacute;n de los extractos, actividad antioxidante   e inhibici&oacute;n de la lipoxidaci&oacute;n.</b></p>     <p>   Por disoluci&oacute;n o arrastre por el CO<sub>2</sub> en estado supercr&iacute;tico,   sustancias de baja masa molecular (mono- y sesquiterpenos),   as&iacute; como otros compuestos m&aacute;s pesados (triterpenos,   polifenoles), son retirados del material vegetal y conforman   la mezcla llamada extracto SFE. Para determinar su composici&oacute;n   se recurre a la cromatograf&iacute;a de gases (para los   componentes vol&aacute;tiles y semivol&aacute;tiles) y a la cromatograf&iacute;a   l&iacute;quida (para las sustancias con baja presi&oacute;n de vapor, poco   vol&aacute;tiles). En este trabajo, se utiliz&oacute; la microextracci&oacute;n en fase s&oacute;lida para tomar la muestra de las sustancias vol&aacute;tiles   del extracto SFE (fracci&oacute;n vol&aacute;til), a analizar por cromatograf&iacute;a   de gases. La composici&oacute;n de la fracci&oacute;n vol&aacute;til de los   extractos SFE aislada por medio de la microextracci&oacute;n en   fase s&oacute;lida, se describe en las <a href="#t3">Tablas 3</a>, <a href="#t4">4</a> y <a href="#t5">5</a>, en las que se incluyen   los &iacute;ndices de retenci&oacute;n experimental y reportado en   la literatura cient&iacute;fica (<b>Adams,</b> 2004) para cada compuesto.   El extracto de romero se caracteriz&oacute; por contener mayoritariamente   alcanfor (13,4 %) y 1,8-cineol (10,1%), lo cual   coincide con lo determinado en otras investigaciones (<b>Carvalho   <i>et al</i>.,</b> 2005). De igual forma, se encuentran presentes   ciertos terpenos que han sido identificados en el aceite   esencial de romero. Verbenona (5,3 %), &alpha;-pineno (2,5 %),   canfeno (2,8 %) y borneol (0,7 %) resultaron ser caracter&iacute;sticos   de la fracci&oacute;n vol&aacute;til del extracto; tal como lo describieron   Reverchon y colaboradores, quienes reportaron que   los compuestos presentes en el extracto SFE, resultan ser los   mismos presentes en el aceite esencial, pero con diferentes cantidades relativas (<b>Reverchon <i>et al</i>.,</b> 1992).</p>     <p>    <center><a name="t3"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01t3.jpg"></a></center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="t4"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01t4.jpg"></a></center></p>     <p>    <center><a name="t5"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01t5.jpg"></a></center></p>     <p>Existe una amplia variaci&oacute;n en la composici&oacute;n de los aceites   esenciales y extractos de <i>S. officinalis</i> de diferentes or&iacute;genes.   Sin embargo, en la mayor&iacute;a de los casos se observan 4 compuestos   mayoritarios (alcanfor, 1,8-cineol, a- y b-tuyonas),   cuyas proporciones relativas dan lugar a 5 tipos de aceite   esencial de salvia (<b>Mockut&eacute; <i>et al</i>.,</b> 2003). En esta investigaci&oacute;n   tambi&eacute;n se hallaron estos 4 compuestos mayoritarios   en la fracci&oacute;n vol&aacute;til del extracto SFE de salvia. El diterpeno   manool (25%) fue el componente mayoritario de esta   fracci&oacute;n vol&aacute;til, cuya composici&oacute;n fue similar a la reportada   por <b>Glisik <i>et al</i>.</b> (2010) para extractos de salvia cultivada en Serbia.</p>     <p>   En el extracto de hojas de guayaba se encontr&oacute; mayoritariamente   el <i>trans-&beta;</i>-cariofileno (12.8 %), seguido de &alpha;- y   &beta;-selinenos (7.0 % y 6.9 %). Hasta la fecha, solamente se encuentran   en la literatura cient&iacute;fica 2 reportes sobre composici&oacute;n   de extractos SFE de hojas de guayaba. En esos casos no   se realiz&oacute; el muestreo de la fase vapor con SPME, sino que   se inyect&oacute; la soluci&oacute;n de extracto directamente en el cromat&oacute;grafo   de gases. Las composiciones reportadas son similares   a la encontrada en el presente trabajo, aunque hay varias   diferencias cualitativas. En el primer caso, los 2 componentes   m&aacute;s abundantes fueron b- y a-selinenos (21,3 y 19,3%,   respectivamente), seguidos del globulol (18,5%) y del b-cariofileno   (15%) (<b>Moura <i>et al</i>.,</b> 2011). En el segundo caso, los   3 componentes m&aacute;s abundantes fueron a-selineno (23,7%),   b-cariofileno (18,8%) y d-selineno (18,3%) (<b>Sagrero-Nieves   <i>et al</i>.,</b> 1994). Distinto a lo hallado en el caso del romero, las   composiciones reportadas para los aceites esenciales obtenidos   de hojas de guayaba difirieron notoriamente de las de   los extractos SFE. En el aceite extra&iacute;do de material vegetal   de Nigeria, el limoneno (42,1%) y el b-cariofileno (21,3%)   fueron los componentes m&aacute;s abundantes (<b>Ogunwande <i>et al</i>.,</b>   2003). En el aceite de hojas de guayaba recolectadas en la   Polinesia Francesa, el componente mayoritario fue el b-cariofileno   (18,3%) y los sesquiterpenos oxigenados m&aacute;s abundantes   fueron selin-11-en-4a-ol (6,9%), a-cadinol (3,6%) y   (E)-nerolidol (3,2%) (<b>Adam <i>et al</i>.,</b> 2011). Para mostrar la   amplitud de las diferentes composiciones encontradas alrededor   del mundo, se resalta el caso del aceite obtenido de <i>P.   guajava</i> cultivada en Brasil, cuyos componentes mayoritarios   fueron a-pineno (23,9%), 1,8-cineol (21,4%) y b-bisabolol   (9,2%) (<b>da Silva <i>et al</i>.,</b> 2003). Mediante cromatograf&iacute;a   l&iacute;quida se detect&oacute; la presencia del &aacute;cido carn&oacute;sico en todos   los extractos de las tres especies vegetales. Este diterpeno   fen&oacute;lico, que es el m&aacute;s abundante en los extractos de romero   (<b>Cavero <i>et al</i>.,</b> 2005) y que ha sido relacionado directamente   con la actividad antioxidante del romero y de la salvia (<b>Cuvelier   <i>et al</i>.,</b> 1996; <b>Wellwood,</b> 2004), se encontr&oacute; en mayor   proporci&oacute;n en el extracto de romero (22,3 mg de &aacute;cido   carn&oacute;sico/g de extracto); seguido del extracto de salvia (2,8   mg de &aacute;cido carn&oacute;sico/g de extracto) y el de hojas de guayaba   (1,1 mg de &aacute;cido carn&oacute;sico/g de extracto). Tanto en el   an&aacute;lisis cromatogr&aacute;fico del compuesto patr&oacute;n como en el de   los extractos, se observ&oacute; la presencia de picos diferentes al   correspondiente al &aacute;cido carn&oacute;sico, lo que permite suponer la posible degradaci&oacute;n del compuesto, a productos como el   carnosol (<b>Moura <i>et al</i>.,</b> 2005), especialmente, al estar disuelto en metanol (<b>Schwarz <i>et al</i>.,</b> 1992).</p>     <p>   Se ha establecido que los aldeh&iacute;dos de baja masa molecular   son productos finales de la peroxidaci&oacute;n de los l&iacute;pidos (<b>Halliwell   <i>et al</i>.,</b> 1993). Su volatilidad facilita el seguimiento de   procesos de peroxidaci&oacute;n, por medio del an&aacute;lisis de la fase   vapor sobre la muestra, lo cual es aun m&aacute;s sencillo con el   uso de la SPME como t&eacute;cnica de muestreo. Varios investigadores   han desarrollado m&eacute;todos anal&iacute;ticos para seguir la   peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica con base en la cuantificaci&oacute;n de los aldeh&iacute;dos   liberados en el proceso (<b>Frankel <i>et al</i>.,</b> 1989; <b>Luo et   al.,</b> 1995) y en este trabajo se utiliz&oacute; el muestreo por SPME   con derivaci&oacute;n simult&aacute;nea de los aldeh&iacute;dos (<b>Stashenko et   al.,</b> 2002). Se evalu&oacute; la disminuci&oacute;n del &aacute;rea del hexanal   derivado <i>in-situ</i> sobre la fibra, como par&aacute;metro indicador   del efecto protector de la lipoxidaci&oacute;n por parte de los extractos.   La <a href="#f5">Figura 5</a> muestra el decrecimiento del &aacute;rea del   hexanal detectado en la fase vapor sobre la base cosm&eacute;tica   luego de adicionar los extractos de romero, salvia o guayaba,   y someterla a condiciones de peroxidaci&oacute;n. En la <a href="#t6">Tabla 6</a> se   encuentra reportado el correspondiente efecto protector de   los extractos y las sustancias antioxidantes de referencia. La   protecci&oacute;n impartida por los extractos vari&oacute; entre 43 y 88%;   los extractos de romero y salvia presentaron el grado de protecci&oacute;n   m&aacute;s alto, logrando superar el 63% determinado para   la vitamina E. Extractos acuosos de las hojas de guayaba han   demostrado inhibir la oxidaci&oacute;n del &aacute;cido linoleico en un 94-   96% (<b>Chen <i>et al</i>.,</b> 2007); de forma similar, se han reportado   niveles de inhibici&oacute;n de la peroxidaci&oacute;n del 87% para extractos   de romero (<b>Gawlik-Dzik <i>et al</i>.,</b> 2007), valor muy similar   al que se hall&oacute; en esta investigaci&oacute;n.</p>      <p>    <center><a name="f5"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01f5.jpg"></a></center></p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="t6"><img src="img/revistas/racefn/v36n140/v36n140a01t6.jpg"></a></center></p>     <p>   La actividad antirradicalaria de los extractos de romero y salvia   en los que se obtuvo el mayor rendimiento de extracci&oacute;n,   resultaron tener el mismo valor de 1.9 &micro;mol Trolox&reg;/mg   extracto (<a href="#t6">Tabla 6</a>), contrario a otros an&aacute;lisis en los cuales la   actividad antioxidante del romero fue m&aacute;s alta que la de salvia   (<b>IvanoviÄ‡ <i>et al</i>.,</b> 2009); por otro lado, los valores para los   antioxidantes sint&eacute;ticos BHT y vitamina E, fueron un poco   superiores a los valores de los extractos. El ensayo ORAC   examina la capacidad de la sustancia bajo ensayo para aniquilar   radicales, en medio acuoso. El ensayo de determinaci&oacute;n   de hexanal se puede implementar tanto en medio acuoso   como hidrof&oacute;bico y eval&uacute;a la capacidad para inhibir la peroxidaci&oacute;n   lip&iacute;dica con base en sus resultados, sin distinguir   el mecanismo. Debido a que el uso buscado para los extractos   de romero, salvia y guayaba es el de agentes antioxidantes   para productos cosm&eacute;ticos, este ensayo, por utilizar como   sustrato una base cosm&eacute;tica, se constituye en una prueba de   desempe&ntilde;o real de estos extractos en la aplicaci&oacute;n deseada.</p>     <p>El mejor desempe&ntilde;o del extracto de romero en la inhibici&oacute;n   de la peroxidaci&oacute;n, muestra que adem&aacute;s del &aacute;cido carn&oacute;sico,   cuyo contenido es 10 veces mayor que el del extracto de salvia,   existen otros componentes de car&aacute;cter hidrof&oacute;bico que   contribuyen a bloquear la peroxidaci&oacute;n m&aacute;s eficientemente que los que est&aacute;n presentes en el extracto de salvia.</p> &nbsp;     <p><b><font size="3"> 4. Conclusiones</font></b></p>     <p>   El rendimiento de la extracci&oacute;n con CO<sub>2</sub> supercr&iacute;tico de romero,   salvia y hojas de guayaba depende de la presi&oacute;n, el flujo   y el tiempo de extracci&oacute;n. En los 3 casos se requieren flujos   de CO<sub>2</sub> altos (&gt;3 kg h<sup>-1</sup>) y tiempos de extracci&oacute;n de varias   horas para lograr rendimientos de extracci&oacute;n altos (&lt; 1%).   Mientras que para romero y salvia el incremento de la presi&oacute;n   aument&oacute; el rendimiento, en el caso de las hojas de guayaba, se obtuvieron mayores rendimientos al reducir la presi&oacute;n.</p>     <p>   La fracci&oacute;n vol&aacute;til de los extractos de romero, salvia y hojas   de guayaba, se caracteriz&oacute; por compuestos como alcanfor,   1,8-cineol, manool y <i>trans-&beta;</i>-cariofileno, presentes en   cantidades relativas menores del 25 %. El extracto de romero   mostr&oacute; los mejores resultados de actividad antioxidante, al   inhibir el 88% de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica de los &aacute;cidos grasos   presentes en una base cosm&eacute;tica analizada; igualmente,   &eacute;ste present&oacute; el mayor contenido de &aacute;cido carn&oacute;sico (22,3   &micro;g de &aacute;cido carn&oacute;sico/mg de extracto), lo que explica el alto   porcentaje de inhibici&oacute;n de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica. Los extractos   de salvia y hojas de guayaba con un 76 y 43% de   inhibici&oacute;n de la peroxidaci&oacute;n, pueden considerarse tambi&eacute;n   como promisorios para reemplazar antioxidantes sint&eacute;ticos   comerciales en productos para el consumo humano.</p>     <p>   <b>Agradecimientos</b></p>     <p>   Los autores agradecen la financiaci&oacute;n del proyecto a la Gobernaci&oacute;n   de Santander (Convenio Neomundo-UIS 00001   2010), al Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural (contrato   2008V3781-3740) y a Colciencias (CENIVAM, contrato   RC 245-2011). As&iacute; mismo, agradecen a ACRESS y   Fharmav&iacute;cola por la provisi&oacute;n del material vegetal y a Laboratorios   MyN Ltda. por el suministro de la base cosm&eacute;tica.</p> &nbsp;     <p><font size="3"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p>   <b>Adams, R. P.</b> 2007. Identification of essential oil componentes by gas chromatography-   mass spectrometry. 4a. Ed. Alluredbooks. Carol Stream,   Illinois, EE.UU.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0370-3908201200030000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Adam, F., Vahirua-Lechat, I. Deslandes, E. Menut, C.</b> 2011. Aromatic   plants of French Polynesia. V. Chemical composition of essential oils   of leaves of <i>Psidium guajava</i> L. and <i>Psidium cattleyanum</i> Sabine. J.   Essent. Oil Res. <b>23</b>(1):98-101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0370-3908201200030000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Aleksovski S.A., Sovov&aacute;, H.</b> 2007. Supercritical CO<sub>2</sub> extraction of <i>Salvia   officinalis</i> L. J. Supercrit. Fluids. <b>40</b> (2):239-245.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0370-3908201200030000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Amin, A., Hamza A. A.</b> 2005. Hepatoprotective effects of <i>Hibiscus</i>, <i>Rosmarinus</i>   and <i>Salvia</i> on azathioprine&#39;introduced toxicity in rats. Life   Sci. <b>77</b>(3):266-278.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0370-3908201200030000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Bisio, A. Romussi, G. Ciarallo, G. De Tommasi, N.</b> 1997. Flavonoids and   triterpenoids from <i>Salvia blepharophylla</i>. Pharmazie. <b>52</b>:330-331.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0370-3908201200030000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Carvalho Jr., R.N., Lucinewton S., Moura, P, Rosa, T.V., Meireles,   M.A.A.</b> 2005. Supercritical fluid extraction from rosemary (<i>Rosmarinus   officinalis</i>): Kinetic data, extract&#39;s global yield, composition,   and antioxidant activity. J. Supercrit. Fluids. <b>35</b>:197-204.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0370-3908201200030000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Cavero, S., Jaime, L., Mart&iacute;n-&aacute;lvarez P.J., Se&ntilde;or&aacute;ns, F.J., Reglero,   G., Ib&aacute;&ntilde;ez, E.</b> 2005. In vitro antioxidant analysis of SFE extracts   from rosemary (<i>Rosmarinus officinalis</i> L.). Eur. Food Res. Technol.   <b>221</b>:478-486.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0370-3908201200030000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Chen, H.Y., Yen, G.C.</b> 2007. Antioxidant activity and free radical-scavenging   capacity of extracts from guava (<i>Psidium guajava</i> L.) leaves.   Food Chem. <b>101</b>:686-694.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0370-3908201200030000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Chen, H.-Y., Yen, G.-C.</b> 2007. Antioxidant activity and free radical-scavenging   capacity of extracts from guava (<i>Psidium guajava</i> L.) leaves.   Food Chem. <b>101</b>:686-694.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0370-3908201200030000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Cuvelier, M-E., Richard H., Berset C.</b> 1996. Antioxidative activity and   phenolic composition of pilot-plant and commercial extracts of sage   and rosemary. J. Am. Oil. Chem. Soc. <b>73</b>:645-652.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0370-3908201200030000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>FDA.</b> 1981. Number of Brand Name Products in Each Product Code, Cosmetic   Product Formulation Data. In <i>Division of Cosmetics Technology</i>   33-34, Food and Drug Administration, Washington, DC.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0370-3908201200030000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Frankel, E. N., Hu, M. L., Tappel, A. L.</b> 1989. Rapid headspace gas chromatography   of hexanal as a measure of lipid peroxidation in biological   samples. Lipids <b>24</b> (11):976-981.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0370-3908201200030000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Gawlik-Dziki, U., Swieca, M.</b> 2007. Effect of various pH conditions simulated   in vivo on the activity of lipophilic antioxidants isolated from   selected spices. Pol. J. Food Nutr. Sci., <b>57</b> (3A):19-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0370-3908201200030000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Glisik, S., Ivanovic, J., Ristic, M., Skala, D.</b> 2010. Extraction of sage (<i>Salvia   officinalis</i> L.) by supercritical CO<sub>2</sub>: Kinetic data, chemical composition   and selectivity of diterpenes. J. Supercrit. Fluids <b>52</b>:62-70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S0370-3908201200030000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Halliwell, B., Chirico, S.</b> 1993. Lipid peroxidation: Its mechanism, measurement,   and significance. Am. J. Clin. Nutr. <b>57</b>: 715S-725S.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0370-3908201200030000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>IARC.</b> 1986. IARC Monographs on the Evaluation of the Carcinogenic   Risks of Chemicals to Humans. Some Naturally Occurring and Synthetic   Food Components, Furocoumarins.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S0370-3908201200030000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Iba&ntilde;ez, E., Kub&aacute;tov&aacute;, A., Se&ntilde;or&aacute;ns, F.J., Cavero, S., Reglero, G.,   Hawthorne, S. B.</b> 2003. Subcritical water extraction of antioxidant   compounds from rosemary plants. J. Agric. Food Chem. <b>51</b>:375-382.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0370-3908201200030000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p><b>Ivanovic, J., &ETH;ilas, S., Jadranin, M., Vajs,V., Babovic, N., Petrovic, S.,   Izovic, I.</b> 2009. Supercritical carbon dioxide extraction of antioxidants   from rosemary (<i>Rosmarinus officinalis</i> L.) and sage (<i>Salvia officinalis</i> L.). J. Serb. Chem. Soc. <b>74</b> (7):717-732.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0370-3908201200030000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>JECFA.</b> 1996. Toxicological evaluation of certain food additives and contaminants   in food. Who Food Additives Series <b>35</b>:3-86. Joint FAO/   WHO Expert Committee on Food Additives, Geneva.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0370-3908201200030000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Luo, X. P., Yazdanpanah, M., Bhooi, N., Lehotay, D. C.</b> 1995. Determination   of aldehydes and other lipid peroxidation products in biological   samples by gas chromatography-mass spectrometry. Anal. Biochem.   <b>228</b>: 294-298.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0370-3908201200030000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Magoulas, K., Louli, V., Papamichail, I.</b> 2000. Supercritical fluid extraction   of celery seed oil. J. Supercrit. Fluids <b>18</b>:213-226.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S0370-3908201200030000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Mart&iacute;nez, J. L.</b> 2008. Supercritical Fluid Extraction of Nutraceuticals and   Bioactive Compounds. CRC Press, Boca Rat&oacute;n, Florida, EE.UU.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S0370-3908201200030000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Masaki, H., Sakaki, S., Atsumi, T., Sakurai, H.</b> 1995. Active-oxygen scavenging   activity of plant extracts. Biol. Pharm. Bull. <b>18</b>:162-166.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S0370-3908201200030000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Mockut&eacute;, D., Nivinskien&eacute;, O., Bernotien&eacute;, G., Butkien&eacute;, R.</b> 2003. The   cis-thujone chemotype of <i>Salvia officinalis</i> L. essential oils. Chemija   (Vilnius) <b>14</b>(4):216-220.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S0370-3908201200030000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Moura, P.M., Prado, G.H.C. Meireles, M.A.A, Pereira, C.G.</b> 2012.   Supercritical fluid extraction from guava (<i>Psidium guajava</i>) leaves:   Global yield, composition and kinetic data. J. Supercrit. Fluids   <b>62</b>:116-122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S0370-3908201200030000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Ogunwande, I. A., Olawore, N. O., Adeleke, K. A., Ekundayo, O.,   Koenig, W, A.</b> 2003. Chemical composition of the leaf volatile oil   of <i>Psidium guajava</i> L. growing in Nigeria. Flavour Fragrance J.   <b>18</b>(2):136-138.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S0370-3908201200030000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Ou, B., Hampsch-Woodill, M., Prior, R.</b> 2001. Development and validation   of an improved oxygen radical absorbance capacity assay   using fluorescein as the fluorescent probe. J. Agric. Food Chem.   <b>49</b>:4619âˆ’4626.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S0370-3908201200030000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>P&eacute;rez, R. M., Mitchell, S., Vargas, R..</b> 2008. <i>Psidium guajava</i>: A review of   its traditional uses, phytochemistry and pharmacology. J. Ethnopharmacol.   <b>117</b>:1-27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S0370-3908201200030000100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Reverchon, E., Senatore, F.</b> 1992. Isolation of rosemary oil: Comparison   between hydrodistillation and supercritical CO<sub>2</sub> extraction. Flavour   Fragrance J. <b>7</b> (4):227-230.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S0370-3908201200030000100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Riznar, K., Celan, S., Skerget, M., Knez, Z.</b> 2008. Solubility of carnosic   acid and carnosol from rosemary extract in supercritical CO<sub>2</sub>. Acta   Chim. Slov. <b>55</b>:516-520.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S0370-3908201200030000100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Sagrero-Nieves, L., Bartley J.P. Provis-Schwede, A. </b>1994. Supercritical   fluid extraction of the volatile components from the leaves of <i>Psidium   guajava</i> L. (guava). Flavour Fragrance J. <b>9</b>:135-137.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S0370-3908201200030000100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Schwarz, K.; Ternes, W.</b> 1992. Antioxidative constituents of <i>Rosmarinus   officinalis</i> and <i>Salvia officinalis</i>. II. Isolation of carnosic acid and   formation of other phenolic diterpenes. Z. Lebensm.-Unters. Forsch.   <b>195</b>: 99âˆ’103.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S0370-3908201200030000100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Sebasti&aacute;n, S.L., Ramos, E., Ib&aacute;&ntilde;ez, E., Bueno, L., Ballester, J., Tabera,   M., Reglero J..</b> 1998. Dearomatization of antioxidant rosemary extracts   by treatment with supercritical carbon dioxide. J. Agric. Food   Chem. <b>46</b>(1):13-19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S0370-3908201200030000100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Shi, J., Khatri, M., Xue, S. J., Mittal, G. S., Ma, Y., Li, D.</b> 2008. Solubility   of lycopene in supercritical CO<sub>2</sub> fluid as affected by temperature   and pressure. Sep. Purif. Technol.<b> 66</b>:322-328&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S0370-3908201200030000100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   <b>da Silva, D. J., Luz, A. I., da Silva, H. L. M., Andrade, E. H., Zoghbi, M.   d. G. Maia, J. G.</b> 2003. Essential oils of the leaves and stems of four   Psidium spp. Flavour Fragrance J. <b>18</b>(3):240-243.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S0370-3908201200030000100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   <b>Stashenko, E. E., Puertas, M. A., Salgar, W., Delgado, W., Mart&iacute;nez,   J.R.</b> 2000. Solid-phase microextraction with on-fibre derivatisation   applied to the analysis of volatile carbonyl compounds. J. Chromatogr.   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