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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Vigilancia del dengue basada en el laboratorio: diferencias en el número de casos y virus aislados según la recolección del suero y la prueba serológica]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Surveillance of the Dengue based on the laboratory: differences in the number of cases and virus isolated according to the gathering of the serum and serologic tests]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[BACKGRAUND: Dengue control measures depend on the laboratory-based surveillance data. In this study was investigated the differences in dengue cases and viruses isolated in according with surveillance strategy. STUDY DESIGN AND METHODS: Two surveillance strategies were analyzed in this study. First (Local Surveillance System): single serum sample (acute or convalescent) was collected from 337 dengue suspected cases and then kept at 4ºC. IgM antibodies were detected using UMELISA DENGUE kit (IPK, Cuba), and serotypes identification was performed by viral isolation attempts in C6/36. Second: paired serum sample were collected from 318 dengue suspected cases and then kept at -70ºC. IgM antibodies were detected using MAC-ELISA test and virus isolation as above. Some paired sera analyzed by MAC-ELISA were processed by “Dengue IgM-capture ELISA” kit (PANBIO) and “IgM*ELISA anti-dengue” (IPK, Cuba). RESULTS: More IgM+ dengue cases were detected by the first than second strategy using acute or convalescent serum: 61.1 vs 22% (p<0.001) y 86.8 vs 49.3% (p<0.001), respectively. Dengue diagnosis by MAC-ELISA was concordant in 85% (K=0.29) respect to UM-ELISA, but 100% (K=1) and 90.4% (K=0.84) respect to “IgM ELISA anti-dengue” and “Dengue IgM-capture ELISA” kits. Differences in dengue cases detected by the second strategy were found when serological result with single acute or paired samples was compared: 70 (22%) vs 155 (48.7%) (p<0.001). Dengue virus was isolated more frequently from sera kept at -70ºC than those kept at 4ºC: 17.8% vs. 4.7% (p<0.001). All virus serotypes were isolated. The UMELISA DENGUE test specificity and relationship between impact dengue surveillance and implemented strategy are analyzed. CONCLUSIONS: The specificity of UMELISA DENGUE test require to be evaluated by the high frequency of dengue in suspected cases. Serum paired analyzes in dengue surveillance is necessary to obtain reliable information.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Dengue]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Arial" size="+1">    <p align="center"><b>Vigilancia del dengue basada en el laboratorio: diferencias en el n&uacute;mero de casos y virus aislados seg&uacute;n la recolecci&oacute;n del suero y la prueba serol&oacute;gica</b><b><sup>1</sup></b></p></font> <font face="Arial">    <p align="center"><b>Raquel E. Ocazionez, Ph.D.<sup>2</sup>, Fabi&aacute;n Cort&eacute;s, Bact.<sup>3</sup>, Luis Angel Villar, M.Sc.<sup>4</sup></b></p></font> <font face="Arial" size="-1">    <p align="justify">1. Este trabajo fue financiado por COLCIENCIAS (Proyecto N&ordm; 11020413042) con el apoyo de la Secretar&iacute;a de Salud del Departamento de Santander (Contrato N&ordm; 133-99).    <br> 2. Profesora Asociada, Departamento de Ciencias B&aacute;sicas, Escuela de Medicina, Directora Laboratorio de Arbovirus, Centro de Investigaciones en Enfermedades Tropicales (CINTROP), Laboratorio de Virolog&iacute;a, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga.    <br> 3. Bacteri&oacute;logo, Centro de Investigaciones en Enfermedades Tropicales (CINTROP), Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga.    <br> 4. Profesor Asociado, Departamento de Ciencias B&aacute;sicas, Escuela de Medicina. Investigador Asociado, Centro de Investigaciones Epidemiol&oacute;gicas (CIE),Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga.    <br> Recibido para publicaci&oacute;n marzo 19, 2004 Aprobado para publicaci&oacute;n marzo 15, 2005</p></font>
    <br>
<font face="Arial">    <p align="justify"><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><B>INTRODUCCION:</b> El control del dengue depende de los datos de la vigilancia basada en el laboratorio. El objetivo de este estudio fue establecer las diferencias en n&uacute;mero de casos (IgM positiva) y serotipos del virus seg&uacute;n la estrategia de vigilancia.</p>     <p align="justify"><B>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS:</b> Se compararon los resultados de dos estrategias de vigilancia. Primera (SIVIGILA local): de 337 casos con sospecha cl&iacute;nica de dengue se colect&oacute; un &uacute;nico suero (agudo o convaleciente) que se almacen&oacute; a 4<SUP>o</SUP>C. Se utiliz&oacute; el estuche UMELISA DENGUE (IPK, Cuba) para detectar anticuerpos IgM y se hicieron intentos de aislamiento del virus en c&eacute;lulas C6/36. Segunda: de 318 casos sospechosos se colectaron sueros pareados que se almacenaron a -70<SUP>o</SUP>C, se us&oacute; una prueba local de MAC-ELISA y se intent&oacute; el aislamiento del virus como en la primera. Algunos sueros procesados por el MAC-ELISA se analizaron tambi&eacute;n por el UMELISA y los estuches Dengue IgM-capture ELISA (PANBIO) e IgM*ELISA anti-dengue (IPK, Cuba).</p>     <p align="justify"><B>RESULTADOS:</b> Se encontraron m&aacute;s casos IgM+ con la primera que con la segunda estrategia tanto con sueros agudos como convalecientes. Esto es, 61.1 vs 22% (p&lt;0.001) y 86.8 vs 49.3% (p&lt;0.001), respectivamente. Los resultados del MAC-ELISA concordaron 85% (k=0.29) con los del UMELISA, pero 90.4% (k=0.84 ) y 100% (k=1) con los estuches de PAMBIO e IgM*ELISA, respectivamente. Se encontraron diferencias significativas en la frecuencia del dengue en casos de la segunda estrategia, cuando el resultado de la serolog&iacute;a con suero agudo o con pareado se compar&oacute;: 70 (22%) vs 155 (48.7%) (p&lt;0.001). El aislamiento viral fue m&aacute;s exitoso de los sueros almacenados a -70<SUP>o</SUP>C que a 4<SUP>o</SUP>C: 17.8% vs. 4.7% (p&lt;0.001). Se identificaron los 4 serotipos del virus. Se discuten la especificidad del UMELISA DENGUE y las consecuencias en el control del dengue en relaci&oacute;n a la estrategia de vigilancia.</p>     <p align="justify"><B>CONCLUSIONES:</b> Se requiere evaluar la especificidad del estuche UMELISA considerando la alta frecuencia del dengue en casos con sospecha. El an&aacute;lisis de sueros pareados en la vigilancia del dengue es necesario para obtener informaci&oacute;n confiable.</p>     <p align="center"><B>Palabras clave:</b> Dengue; ELISA de captura; Aislamiento viral; Serotipos virus dengue.</p>     <p align="justify"><B>SUMMARY</b></p>     <p align="justify"><B>BACKGRAUND:</b> Dengue control measures depend on the laboratory-based surveillance data. In this study was investigated the differences in dengue cases and viruses isolated in according with surveillance strategy.</p>     <p align="justify"><B>STUDY DESIGN AND METHODS:</b> Two surveillance strategies were analyzed in this study. First (Local Surveillance System): single serum sample (acute or convalescent) was collected from 337 dengue suspected cases and then kept at 4<SUP>o</SUP>C. IgM antibodies were detected using UMELISA DENGUE kit (IPK, Cuba), and serotypes identification was performed by viral isolation attempts in C6/36. Second: paired serum sample were collected from 318 dengue suspected cases and then kept at -70&#186;C. IgM antibodies were detected using MAC-ELISA test and virus isolation as above. Some paired sera analyzed by MAC-ELISA were processed by “Dengue IgM-capture ELISA” kit (PANBIO) and “IgM*ELISA anti-dengue” (IPK, Cuba).</p>     <p align="justify"><B>RESULTS:</b> More IgM+ dengue cases were detected by the first than second strategy using acute or convalescent serum: 61.1 vs 22% (p&lt;0.001) y 86.8 vs 49.3% (p&lt;0.001), respectively. Dengue diagnosis by MAC-ELISA was concordant in 85% (K=0.29) respect to UM-ELISA, but 100% (K=1) and 90.4% (K=0.84) respect to “IgM ELISA anti-dengue” and “Dengue IgM-capture ELISA” kits. Differences in dengue cases detected by the second strategy were found when serological result with single acute or paired samples was compared: 70 (22%) vs 155 (48.7%) (p&lt;0.001). Dengue virus was isolated more frequently from sera kept at -70&#186;C than those kept at 4&#186;C: 17.8% vs. 4.7% (p&lt;0.001). All virus serotypes were isolated. The UMELISA DENGUE test specificity and relationship between impact dengue surveillance and implemented strategy are analyzed.</p>     <p align="justify"><B>CONCLUSIONS:</b> The specificity of UMELISA DENGUE test require to be evaluated by the high frequency of dengue in suspected cases. Serum paired analyzes in dengue surveillance is necessary to obtain reliable information.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><B>Key words:</b> Dengue; IgM-capture ELISA; Viral isolation; Dengue virus serotypes; RT-PCR.</p>     <br>     <p align="justify">El dengue es una enfermedad causada por cualquiera de los 4 serotipos del virus del mismo nombre (DEN-1, DEN-2, DEN-3 y DEN-4), que son transmitidos a los humanos por mosquitos del g&eacute;nero Aedes<SUP>1,2</SUP>. En los &uacute;ltimos 25 a&ntilde;os ha emergido como la arbovirosis de mayor prevalencia en el mundo. Se estima que cerca de 492,820 casos ocurrieron en las Am&eacute;ricas en la d&eacute;cada de 1990 de los cuales m&aacute;s de 77,000 fueron hemorr&aacute;gicos, pero s&oacute;lo en el a&ntilde;o 2002 se informaron 1’015,420 casos siendo 14,374 severos<SUP>3,4</SUP>. En Colombia, entre 1998 y 2003 se informaron 283,357 casos pudi&eacute;ndose clasificar 27,997 (9.8%) como hemorr&aacute;gicos. De estos, 46,615 (16.4%) fueron en Santander (4,450 severos), convirti&eacute;ndose en uno de los departamentos que m&aacute;s casos informa al Ministerio de Salud y Protecci&oacute;n Social<SUP>5-7</SUP>.</p>     <p align="justify">Ante la carencia de tratamiento farmacol&oacute;gico e inmunoprofilaxis, la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS) defini&oacute; la estrategia global para el control del dengue que incluye, entre otros componentes, la vigilancia basada en el laboratorio<a href="#8"><sup>8</sup></a>. Esta permite estimar el n&uacute;mero de casos confirmando la enfermedad en los sospechosos y conocer los serotipos del virus que est&eacute;n circulando. Lo primero se hace rutinariamente por serolog&iacute;a que detecta anticuerpos IgM, siendo el MAC-ELISA el procedimiento m&aacute;s utilizado<a href="#9"><sup>9</sup></a>. Para esto es indispensable analizar sueros pareados y demostrar seroconversi&oacute;n o aumento cu&aacute;druplo del t&iacute;tulo del anticuerpo. Cuando la serolog&iacute;a se realiza en un &uacute;nico suero, el resultado positivo indica un caso probable y no es confirmatorio, porque los anticuerpos pueden ser de una infecci&oacute;n pasada reciente, pues la IgM permanece hasta por 90 d&iacute;as despu&eacute;s de una infecci&oacute;n. Por otro lado, el resultado negativo en suero de los primeros d&iacute;as de s&iacute;ntomas no descarta el dengue porque en algunas personas la concentraci&oacute;n de la IgM es a&uacute;n insuficiente para encontrarse en el ensayo<SUP>10,11</SUP>.</p>     <p align="justify">La vigilancia de los virus forma parte del control del dengue porque la entrada de un serotipo nuevo o la reaparici&oacute;n de uno ausente por largo tiempo, se han asociado con epidemias y aumento del dengue hemorr&aacute;gico (DH). La entrada del DEN-2 en Cuba en 1981<SUP>12,13</SUP> y la reaparici&oacute;n del DEN-3 en Nicaragua en 1994<a href="#14"><sup>14</sup></a>, produjeron las mayores epidemias de DH en Am&eacute;rica. El aislamiento del virus en cultivo de c&eacute;lulas de mosquito y la posterior identificaci&oacute;n del serotipo con anticuerpos monoclonales, ha sido el procedimiento utilizado de rutina para la identificaci&oacute;n de los virus. El &eacute;xito del mismo depende del d&iacute;a de recolecci&oacute;n y preservaci&oacute;n adecuada del suero<SUP>9,15</SUP>.</p>     <p align="justify">La vigilancia del dengue basada en el laboratorio en &aacute;reas end&eacute;micas colombianas, incluido el departamento de Santander, se realiza de forma pasiva. Esto es, de cada caso sospechoso se recolecta un &uacute;nico suero, con mayor frecuencia durante los primeros d&iacute;as de s&iacute;ntomas cuando el paciente solicita la atenci&oacute;n m&eacute;dica, el cual se remite al Laboratorio de Salud P&uacute;blica de la Secretar&iacute;a de Salud (LDSP) de cada departamento. En esta dependencia las muestras se procesan para buscar IgM y una al&iacute;cuota se remite al Laboratorio de Virolog&iacute;a del Instituto Nacional de Salud (Bogot&aacute;) para el aislamiento del virus. En tres de los departamentos donde el dengue ocurre, la vigilancia de los serotipos se desarrolla en laboratorios locales. Como las acciones de control se fundamentan en la informaci&oacute;n obtenida de la vigilancia basada en el laboratorio, los autores de este art&iacute;culo decidieron realizar este estudio. El objetivo fue comparar la frecuencia de casos de dengue y el n&uacute;mero de virus aislados seg&uacute;n dos estrategias de vigilancia que se diferenciaron en los siguientes aspectos:</p>     <blockquote>       <p align="justify">a. N&uacute;mero de sueros recolectados de cada caso sospechoso (&uacute;nico o pareado) y momento de luego de inicio de s&iacute;ntomas (agudo o convaleciente).    <br>     b. Almacenamiento del suero (4oC &oacute; -70oC) y    <br>     c. Protocolo del MAC-ELISA (estuche comercial o prueba local).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </p> </blockquote>     <p align="justify"><B>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p align="justify"><B><I>Casos.</I></b> Se incluyeron 655 casos febriles con sospecha cl&iacute;nica de dengue de los ocurridos en Santander en los a&ntilde;os 2000, 2003 y 2004. En estos a&ntilde;os el sistema de vigilancia local no inform&oacute; de brotes<SUP>7,16</SUP>. Los pacientes se seleccionaron si presentaban fiebre acompa&ntilde;ada de dos o m&aacute;s s&iacute;ntomas como dolor de cabeza, dolor retro-orbital, mialgias, artralgias, erupci&oacute;n cut&aacute;nea, y con o sin manifestaciones hemorr&aacute;gicas (petequias, epistaxis, hemoptisis o sangrado de enc&iacute;as). Se excluyeron quienes tuvieron alg&uacute;n foco de infecci&oacute;n aparente como otitis, infecci&oacute;n urinaria, enfermedades cr&oacute;nicas y otros.</p>     <p align="justify"><B><I>Estrategias de vigilancia</I></b></p>     <p align="justify"><I>1. Con sueros no-pareados.</I> Se realiz&oacute; por el sistema de vigilancia (SIVIGILA) de Santander en el a&ntilde;o 2000. Se incluyeron 337 casos febriles del total de informados a la Secretar&iacute;a de Salud por las instituciones de salud que los atendieron. De cada uno se colect&oacute; un &uacute;nico suero antes o despu&eacute;s del sexto d&iacute;a de s&iacute;ntomas y luego se remiti&oacute; al Laboratorio Departamental de Salud P&uacute;blica. En este laboratorio los sueros se almacenaron a 4<SUP>o</SUP>C antes de ser procesados para detectar anticuerpos IgM usando el estuche UMELISA DENGUE como se describe adelante. De las sueros agudos (antes del sexto d&iacute;a de s&iacute;ntomas) almacenados m&aacute;ximo 8 d&iacute;as, se remiti&oacute; una al&iacute;cuota al Laboratorio de Virolog&iacute;a del Centro de Investigaciones en Enfermedades Tropicales de la Universidad Industrial de Santander (CINTROP/UIS), para aislamiento del virus en cultivo de c&eacute;lulas como se describe luego. La informaci&oacute;n sobre fecha y d&iacute;a de recolecci&oacute;n del suero se consult&oacute; en la ficha de informe que acompa&ntilde;aba la muestra.</p>     <p align="justify"><I>2. Con sueros pareados.</I> Se incluyeron 318 casos atendidos en cl&iacute;nicas privadas entre los a&ntilde;os 2003 y 2004. De cada uno se colect&oacute; un suero el d&iacute;a de la consulta (hasta con 5 d&iacute;as de s&iacute;ntomas) y 10 &oacute; 15 d&iacute;as despu&eacute;s una enfermera participante en el estudio visit&oacute; al paciente en su residencia para colectar el suero convaleciente. Las muestras se remitieron al Laboratorio de Virolog&iacute;a del CINTROP/UIS en las 6 horas siguientes a su colecta. Aqu&iacute; se almacenaron a -70<SUP>o</SUP>C por una semana y luego se procesaron para detectar anticuerpos IgM usando un protocolo est&aacute;ndar del MAC-ELISA y aislar el virus como se describe adelante.</p>     <p align="justify"><B><I>Detecci&oacute;n de IgM</I></b></p>     <p align="justify"><I>1. Estuche UMELISA DENGUE</I>(Instituto Pedro Kour&iacute;, La Habana, Cuba). Seg&uacute;n las instrucciones del fabricante el procedimiento brevemente consisti&oacute; en: 10 ml del suero se hicieron reaccionar con un anticuerpo anti-IgM humana ligado a pozos de tiras ultramicroELISA por 1 hora a 37<SUP>o</SUP>C; se hicieron 6 lavados con tamp&oacute;n fosfato y enseguida se adicionaron 10 ml del ant&iacute;geno. Despu&eacute;s de incubaci&oacute;n y lavados en las mismas condiciones, se adicionaron 10 ml del anticuerpo conjugado con fosfatasa alcalina (anti IgG/FA) por 1 hora a 37<SUP>o</SUP>C y despu&eacute;s de lavar se agregaron 10 ml del substrato (4-metilumberiferil fosfato). Al t&eacute;rmino de la incubaci&oacute;n a temperatura ambiente por 30 min la fluorescencia se ley&oacute; en un lector SUMA (IPK, Cuba). Los sueros con valores de densidad &oacute;ptica mayor o igual a 0.3 se consideraron positivos. Los autores fueron autorizados por la Secretar&iacute;a de Salud para consultar los valores de densidad &oacute;ptica en el libro de registros del Laboratorio de Salud P&uacute;blica.</p>     <p align="justify"><I>2. MAC-ELISA.</I>Se utiliz&oacute; el protocolo est&aacute;ndar<a href="#18"><sup>18</sup></a>. Se sensibilizaron por 18 horas a 4&#186;C, microplacas de 96 pozos con 100 ml de anticuerpo anti-IgM humana (Sigma St. Louis, MO). Despu&eacute;s de lavar 3 veces con tamp&oacute;n fosfato (PBS pH 7.4) se adicionaron 50 ml del suero (1:40) a cada pozo y las placas se incubaron por 2 horas a 37&#186;C. Despu&eacute;s de 5 lavados se agregaron 50 ml de ant&iacute;geno por 18 horas a 4&#186;C y de nuevo se lavaron y enseguida se adicion&oacute; 50 ml de anticuerpo anti-dengue conjugado con peroxidasa (6B6C; CDC, Dengue Branch, Puerto Rico). Las placas se incubaron por una hora a 37&#186;C, se lavaron y luego se adicionaron 100 ml del sustrato (TMB; Sigma St. Louis, MO). La lectura se realiz&oacute; a 450 nm en un lector de ELISA (Sensident Scan Merck) y el valor del punto de corte se calcul&oacute; como el promedio de los valores de densidad &oacute;ptica (DO) de los sueros negativos m&aacute;s 2 ED. Los sueros que presentaron la DO igual o mayor al punto de corte se consideraron positivos. Cuando las dos muestras del mismo paciente resultaron positivas, la muestra de convalecencia se diluy&oacute; 4 veces y se hizo de nuevo el proceso. Un resultado positivo en estos casos se consider&oacute; infecci&oacute;n aguda por dengue y el negativo infecci&oacute;n pasada reciente.</p>     <p align="justify"><I>Validaci&oacute;n del MAC-ELISA.</I> Grupos de sueros pareados procesados por el MAC-ELISA se analizaron tambi&eacute;n por el UMELISA (n=28) y los estuches IgM*ELISA anti-dengue (IPK, La Habana, Cuba) (n=55) y dengue IgM-capture ELISA (PANBIO Pty Ltd., East Brisbane, Australia) (n=29). Las pruebas se realizaron siguiendo el procedimiento indicado por el fabricante similar al MAC-ELISA con diferencias en el volumen de los reactivos y tiempo de incubaci&oacute;n. Con ambos estuches un resultado positivo se consider&oacute; cuando el valor de la DO fue 2 ED del promedio de los controles negativos.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><I>Aislamiento del virus.</I>Se utilizaron sueros agudos para infectar c&eacute;lulas de mosquito Aedes albopictus (clon C6/36) mantenidas en medio Leibozt&#180;s (L-15. GIBCO,BRL) suplementado con suero bovino fetal (10%), triptosa fosfato (10%) y antibi&oacute;ticos (penicilina 100 UI/ml; estreptomicina 100 mg/ml) (1%). Brevemente, se adicionaron 100 ml de suero a monocapas celulares crecidas en tubos de vidrio y luego los cultivos se centrifugaron a 2,000 rpm por 30 min y a temperatura ambiente. Despu&eacute;s se adicion&oacute; 1 ml del medio de cultivo suplementado con 2% de suero bovino fetal y los cultivos se incubaron a 32<SUP>o</SUP>C por 8 d&iacute;as<a href="#17"><sup>17</sup></a>. La presencia del virus se determin&oacute; por inmunofluorescencia directa usando un anticuerpo policlonal anti-dengue marcado con fluoresce&iacute;na y luego el serotipo se identific&oacute; por inmunofluorescencia indirecta con anticuerpos monoclonales espec&iacute;ficos<a href="#15"><sup>15</sup></a>. Los anticuerpos fueron gentilmente donados por el CDC, Dengue Branch Puerto Rico.</p>     <p align="justify"><B><I>Diagn&oacute;stico del dengue.</I></b> Seg&uacute;n el resultado de las pruebas de laboratorio, el diagn&oacute;stico se estableci&oacute; de acuerdo con los criterios de la OMS<a href="#8"><sup>8</sup></a> como:</p>     <blockquote>       <p align="justify">a. Caso confirmado: cuando se encontr&oacute; seroconversi&oacute;n o aumento de 4 veces el t&iacute;tulo de la IgM y/o se aisl&oacute; el virus.    <br>     b. Caso sin dengue: cuando no se encontr&oacute; IgM en suero de la convalecencia.    <br>     c. Caso probable: cuando se encontr&oacute; IgM en una sola muestra de suero y no se aisl&oacute; el virus.    <br>     d. Caso no-concluyente: cuando no se encontr&oacute; IgM en el suero agudo ni se aisl&oacute; el virus y cuando no se colect&oacute; suero de la convalecencia.    <br>     e. Caso de infecci&oacute;n pasada reciente: cuando se encontr&oacute; IgM en el suero agudo y convaleciente sin aumento cu&aacute;druplo del t&iacute;tulo y el virus no se aisl&oacute;.</p> </blockquote>     <p align="justify"><B><I>An&aacute;lisis de los datos.</I></b> Se utiliz&oacute; la prueba de Chi cuadrado (c<a href="#2"><sup>2</sup></a>) para determinar la significancia de las diferencias en las frecuencias, utilizando el programa Epi Info vesi&oacute;n 5.0.</p>     <p align="justify"><B>RESULTADOS</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><B><I>Detecci&oacute;n de anticuerpos.</I></b> En los casos sospechosos la IgM se detect&oacute; con diferente frecuencia dependiendo del suero colectado y la prueba (<a href="#c1">Cuadro 1</a>), en 61.1% vs. 22% de los agudos y en 86.8% vs. 49.3% de los convalecientes analizados por el UMELISA y MAC-ELISA, respectivamente, y estas diferencias fueron significativas (p&lt;0.001). De acuerdo con estos resultados se pudo establecer que 73.8% (249/337) de los pacientes de la primera estrategia (SIVIGILA local) fueron IgM+ en contraste con 48.7% (155/318) de la segunda. De los 155 pacientes IgM+ de la segunda estrategia en 70 (45.1%) el anticuerpo se encontr&oacute; en ambos sueros, pero 2 de estos (2.8%) no tuvieron aumento cu&aacute;druplo del t&iacute;tulo (infecciones pasadas).</p>     <p align="center"><a name="c1"><img src="/img/revistas/cm/v36n2/2a1c1.gif"></a></p>     <p align="justify">Al comparar el MAC-ELISA con las otras pruebas estos fueron los resultados (<a href="#c2">Cuadro 2</a>): con el estuche Dengue IgM-capture ELISA (IPK) se obtuvo concordancia en 53 sueros agudos (96.3%; k=0.88) y 55 convalecientes (100%; k=1) de 55 pareados, resultando 32 pacientes confirmados por ambas pruebas. Con el de PAMBIO, de 29 pareados 27 agudos y sus convalecientes concordaron (93.1%; k=0.86) pudi&eacute;ndose confirmar el dengue en 21 pacientes de los cuales en 2 no se logr&oacute; por el MAC-ELISA local. Con el UMELISA en 10 agudos (35.7%; k= -0.1) y 19 convalecientes (65.5%; k=0.29) de 28 pareados los resultados fueron iguales, resultando 17 pacientes confirmados de los cuales 3 no lo fueron por la prueba local. En los casos confirmados con cada uno de los estuches la IgM se detect&oacute; en el suero agudo en 31.2 (10/32), 57.1 (12/21) y 100% (17/17) por el del IPK, PANBIO y UMELISA, respectivamente.</p>     <p align="center"><a name="c2"><img src="/img/revistas/cm/v36n2/2a1c2.gif"></a></p>     <p align="justify"><B><I>Diagn&oacute;stico del dengue seg&uacute;n la estrategia de vigilancia.</I></b> Usando un &uacute;nico suero (primera estrategia) el dengue no se pudo confirmar por serolog&iacute;a en ning&uacute;n de los 337 casos. De estos, 249 (73.8%) resultaron casos probables (IgM+), en 22 (6.5%) el dengue se descart&oacute; (IgM- en suero convaleciente) y en 66 (19.6%) el diagn&oacute;stico no se pudo concluir (IgM- en suero agudo). En contraste, cuando se usaron sueros pareados (segunda estrategia) el diagn&oacute;stico se defini&oacute; en los 318 casos. Esto es, en 155 (48.7%) el dengue se confirm&oacute;, en 161 (50.6%) se descart&oacute; y 2 (0.6%) fueron infecciones recientemente pasadas.</p>     <p align="justify">Los autores del presente art&iacute;culo intentaron hacer un an&aacute;lisis m&aacute;s preciso de la exactitud en los datos de la vigilancia seg&uacute;n el suero que se analice. Para esto se compar&oacute; la frecuencia del dengue en los 318 casos de la segunda estrategia, cuando el resultado de la serolog&iacute;a con sueros pareados o con un &uacute;nico suero (agudo o convaleciente) es el que se considera (<a href="#c3">Cuadro 3</a>). Con muestras pareadas 155 (48.7%) fueron casos de dengue (IgM+), pero con suero de la convalecencia fueron 157 (49.3%) porque se incluyen las 2 personas con infecci&oacute;n pasada reciente. En contraste, cuando se utiliza la serolog&iacute;a en suero agudo el n&uacute;mero de casos disminuy&oacute; de 155 a 70 (22%) porque se excluyeron 85 (54.8%) que resultaron IgM+ en la convalecencia y esta disminuci&oacute;n fue significativa (p&lt;0.001).</p>     <p align="center"><a name="c3"><img src="/img/revistas/cm/v36n2/2a1c3.gif"></a></p>     <p align="justify"><B><I>Aislamiento del virus.</i></b> Se intent&oacute; de 170 y 236 sueros de la primera y segunda estrategia, respectivamente (<a href="#c4">Cuadro 4</a>). De los primeros se aislaron 8 cepas y de los segundos 42, resultando porcentajes de aislamiento significativamente diferentes: 4.7% y 17.8% (p&lt;0.001). La sensibilidad del m&eacute;todo de aislamiento se determin&oacute; en personas con dengue confirmado por serolog&iacute;a y &eacute;sta fue de 26.7% (42/157). El virus se aisl&oacute; con mayor frecuencia de sueros agudos sin anticuerpos IgM (31.3%; 27/86) que cuando estos estuvieron presentes (21.1%; 15/71) aunque las diferencias no fueron significativas (p=0.147). Se encontraron los 4 serotipos distribuidos temporalmente. El DEN-1 y el DEN-2 se aislaron en los 3 a&ntilde;os del estudio (2 y 6 cepas, respectivamente), mientras que el DEN-4 se aisl&oacute; s&oacute;lo en el a&ntilde;o 2000 (2 cepas) y el DEN-3 entre los a&ntilde;os 2003 y 2004 (40 cepas).</p>     <p align="center"><a name="c4"><img src="/img/revistas/cm/v36n2/2a1c4.gif"></a></p>     <p align="justify"><B>DISCUSI&Oacute;N</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Existen por lo menos dos razones para la vigilancia del dengue basada en el laboratorio. La primera porque se requiere confirmar los casos teniendo en cuenta que existen enfermedades cl&iacute;nicamente semejantes (sarampi&oacute;n, influenza, leptospirosis, fiebre tifoidea, malaria, otras) e igualmente frecuentes. La segunda porque se ha demostrado que el riesgo de epidemias de dengue e incremento de casos hemorr&aacute;gicos puede depender del serotipo y la cepa del virus que este circulando<SUP>19,20</SUP>.</p>     <p align="justify">En la mayor&iacute;a de las localidades donde ocurre el dengue la vigilancia de casos se realiza por serolog&iacute;a para IgM empleando ELISA de captura (MAC-ELISA). En este estudio se usaron dos protocolos para estudiar pacientes sospechosos durante per&iacute;odos no epid&eacute;micos. En 49.3% y 73.8% se detect&oacute; la IgM por el MAC-ELISA o el UM-ELISA, respectivamente. Esta frecuencia fue mayor que la observada durante epidemias en otras &aacute;reas end&eacute;micas. Por ejemplo, en la de Cuba en 1997 s&oacute;lo 17.2% de los casos informados al sistema de vigilancia fueron de dengue<a href="#21"><sup>21</sup></a>; en la de Bel&eacute;n, Brasil, entre 1996 y 1997, 21.2%<a href="#22"><sup>22</sup></a>;y en la de Nicaragua en 1998, 43%<a href="#23"><sup>23</sup></a>. Esas diferencias son posibles teniendo en cuenta que normalmente se informan individuos con otras virosis semejantes al dengue, con mayor frecuencia durante brotes, dada la alarma m&eacute;dica que este produce. Sin embargo, cuando el porcentaje de casos IgM+ se compara con el encontrado en otros estudios de b&uacute;squeda activa de casos, el del MAC-ELISA fue m&aacute;s cercano que el del UM-ELISA. Esto es, 49.3% y 73.8% vs. 37%<a href="#24"><sup>24</sup></a>, 31.7%<a href="#11"><sup>11</sup></a> &oacute; 35%<a href="#25"><sup>25</sup></a>.</p>     <p align="justify">Por el dise&ntilde;o del estudio no se pudo concluir si la mayor frecuencia de casos IgM+ por el UMELISA se debi&oacute; a mayor sensibilidad de la prueba. No obstante, la discordancia de resultados con el MAC-ELISA sugiere mayor sensibilidad pero menor especificidad, considerando la concordancia de los resultados de la segunda con la de los otros estuches; adem&aacute;s, porque por el MAC-ELISA local se procesaron sueros previamente analizados en el IPK (Cuba) y los resultados fueron 100% concordantes (Dra. Guadalupe Guzm&aacute;n, comunicaci&oacute;n personal). Otros hallazgos que respaldan la hip&oacute;tesis de baja especificidad del UMELISA son los siguientes: a) el porcentaje de casos IgM+ en el suero agudo de casos sospechosos (61.1%) fue superior al de pacientes con dengue confirmado por aislamiento del virus (38.9% hasta 58%)<SUP>11,24,26,27</SUP>. Por tanto, un porcentaje como el obtenido con el UMELISA no se esperaba porque normalmente se remiten al SIVIGILA casos que no son de dengue. b) la frecuencia de casos IgM+seg&uacute;n resultados del UMELISA fue similar en a&ntilde;os diferentes a los del estudio, tanto en el suero agudo como en el convaleciente.</p>     <p align="justify">Los autores descartan alg&uacute;n sesgo en la selecci&oacute;n de los sueros que resultara en la mayor positividad del UMELISA, como inclusi&oacute;n de pacientes con mayor probabilidad de sufrir dengue, porque la selecci&oacute;n se hizo al azar y los datos se conocieron meses m&aacute;s tarde. Sin embargo, no se puede descartar inexactitud del dato del d&iacute;a de colecta. Esto es, sueros considerados agudos podr&iacute;an ser del sexto d&iacute;a o m&aacute;s considerando que esta informaci&oacute;n fue suministrada por el paciente y por lo mismo subjetiva. Un factor que pudiera haber contribuido a la alta positividad del UMELISA es el punto de corte. Cuando se increment&oacute; de 0.3 a 0.8 DO el n&uacute;mero de casos IgM+ fue similar a los del MAC-ELISA local. No es conocido por los autores que se hubiesen procesado sueros de individuos sanos residentes en la regi&oacute;n para establecer el punto de corte del UMELISA.</p>     <p align="justify">La vigilancia virol&oacute;gica es &uacute;til para predecir la magnitud y severidad de un brote porque incrementos en la tasa de aislamientos virales, que reflejan emergencia o introducci&oacute;n de un serotipo, se pueden descubrir tempranamente<a href="#28"><sup>28</sup></a>. Es conocido que el &eacute;xito del aislamiento es mayor cuando los sueros se procesan en las primeras horas de la colecta, porque el almacenamiento prolongado a temperaturas inadecuadas disminuye la viabilidad del virus<SUP>9,31,32</SUP>. En este estudio se aislaron m&aacute;s cepas de sueros almacenados a -70<SUP>o</SUP>C (17.8%), que a 4<SUP>o</SUP>C, (4.7%). En el Laboratorio de Arbovirus del CINTROP se encontr&oacute; que el almacenamiento a 4<SUP>o</SUP>C por 8 d&iacute;as de sueros contaminados experimentalmente con DEN-4, disminuye hasta 1,000 veces el n&uacute;mero de UFP/ml que se recuperan en el cultivo (datos no mostrados). Por tanto, es prioritario para la vigilancia virol&oacute;gica instruir al personal encargado de la recolecci&oacute;n de los sueros sobre la importancia de remitirlos al laboratorio en el menor tiempo posible, o en su defecto almacenarlos por tiempo y a temperatura adecuados; as&iacute; se podr&aacute; aislar con m&aacute;s frecuencia serotipos de baja circulaci&oacute;n y descubrir la entrada de un nuevo virus con antelaci&oacute;n al brote.</p>     <p align="justify">El &eacute;xito en el control del dengue depende de cu&aacute;nto, a trav&eacute;s de la vigilancia, se puede predecir el inicio de una epidemia, lo que a su vez depende de la rapidez, calidad e interpretaci&oacute;n apropiadas de las pruebas de laboratorio. Cuando la vigilancia se realiza con un &uacute;nico suero el estimativo del n&uacute;mero de casos es impreciso como se confirm&oacute; en este estudio. Se puede incluir casos como dengue que en realidad no lo sufrieron o excluir los que si tuvieron (IgM- en suero agudo). Por las dificultades log&iacute;sticas inherentes al sistema de salud colombiano y al de la misma cultura, es dif&iacute;cil establecer una vigilancia activa para recolecci&oacute;n de sueros pareados. Como consecuencia la muestra recomendada ser&iacute;a el suero colectado despu&eacute;s del sexto d&iacute;a porque se aumenta la probabilidad de confirmar los casos. Sin embargo, esto tiene los siguientes inconvenientes:</p>     <p align="justify">1. La mayor&iacute;a de pacientes reciben asistencia m&eacute;dica durante la etapa aguda y son pocos con quienes se tiene contacto despu&eacute;s de &eacute;sta. En la experiencia de los autores, en 2% de los que se siguieron no se consigui&oacute; la aceptaci&oacute;n para la segunda muestra y de 25 que se citaron telef&oacute;nicamente ninguno acudi&oacute;.    <br> 2. La posibilidad de conocer los virus circulantes disminuye significativamente porque el aislamiento es exitoso del suero de los primeros 4 d&iacute;as de s&iacute;ntomas.    <br> 3. Infecciones recientemente pasadas se podr&iacute;an informar como agudas (2.8% en este estudio), considerando que la IgM se puede detectar hasta por 3 meses. Vaughn et al.<a href="#24"><sup>24</sup></a> encontraron 2% de infecciones recientes en ni&ntilde;os tailandeses con s&iacute;ndrome febril compatible con dengue.</p>     <p align="justify">Los resultados aqu&iacute; presentados muestran que para una adecuada vigilancia del dengue, en localidades donde es poco factible el seguimiento del paciente, es una prioridad utilizar pruebas que permitan confirmar el caso e identificar el virus simult&aacute;neamente en el suero colectado durante la primera consulta. La RT-PCR<SUP>32-34</SUP> y la detecci&oacute;n de ant&iacute;geno por el ELISA<a href="#35"><sup>35</sup></a>, constituyen alternativas, pero deber&aacute;n evaluarse a nivel local para determinar su utilidad en t&eacute;rminos de sensibilidad y costo-beneficio. Mientras estas se establecen y dadas las dificultades para la recolecci&oacute;n de sueros pareados, los autores hacen las siguientes recomendaciones para una mejor vigilancia del dengue basada en el laboratorio:</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">1. Colectar muestras pareadas en todos los casos que sea posible, remitiendo al laboratorio el suero agudo en las primeras horas.    <br> 2. Cuando s&oacute;lo es posible recolectar un &uacute;nico suero, hacerlo con preferencia en la convalecencia y almacenarlo a -20<SUP>o</SUP>C antes de ser remitido al laboratorio.    <br> 3. En pacientes hospitalizados recolectar el suero el d&iacute;a de la primera consulta y si el paciente es dado de alta antes del sexto d&iacute;a de s&iacute;ntomas, citarlo al laboratorio para la toma de la segunda muestra.</p>     <p align="justify">Siguiendo estas recomendaciones ser&aacute; posible una mayor precisi&oacute;n de los datos y de la magnitud del problema del dengue, adem&aacute;s de identificar tempranamente los factores de riesgo y mantener un sistema de alerta inmediata en prevenci&oacute;n de epidemias.</p>     <p align="justify"><B>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p align="justify">Los autores agradecen a la Secretar&iacute;a de Salud del Departamento de Santander por permitir la informaci&oacute;n del UMELISA. Al Dr. Vancen Vorndam del CDC, Puerto Rico, por el suministro de anticuerpos y ant&iacute;genos y al Instituto Pedro Kour&iacute;, Cuba, por el estuche del MAC-ELISA. A Sergio Yebrail G&oacute;mez por el apoyo t&eacute;cnico.</p>     <p align="justify"><B>REFERENCIAS</b></p></font> <font face="Arial" size="-1">    <!-- ref --><p align="justify">1<a name="1"></a>. Gubler JD, Clark CG. Dengue/dengue hemorrhagic fever: the emergence of a global health problem. Emerg Infect Dis 1995; 1: 55-57.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S1657-9534200500020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 2<a name="2"></a>. Rothman AL. Viral pathogenesis of dengue infections. In: Gubler DJ, Kuno G (eds.). Dengue and dengue hemorragic fever. London: CAB International; 1997. p. 245-272.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S1657-9534200500020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 3<a name="3"></a>. Pancharoen C, Kulwichit W, Tantawichien T, Thysiakorn U, Thisyakorn C. Dengue infection: a global concern. J Med Assoc Thai 2002; 85 (Suppl 1): 25-33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S1657-9534200500020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 4<a name="4"></a>. Guzm&aacute;n MG, Kouri G. Dengue and dengue hemorrhagic in the Americas: lessons and challenges. J Clin Virol 2003; 27: 1-3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S1657-9534200500020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 5<a name="5"></a>. Ministerio de Salud. Prevenci&oacute;n y control del dengue. Informe ejecutivo, Sistema Nacional de Vigilancia (SIVIGILA). Bogot&aacute;: Ministerio de Salud; 2001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S1657-9534200500020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 6<a name="6"></a>. Ministerio de Salud. Prevenci&oacute;n y control del dengue. Informe ejecutivo, Sistema Nacional de Vigilancia (SIVIGILA). Bogot&aacute;: Ministerio de Salud; 2002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S1657-9534200500020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 7<a name="7"></a>. Rey JJ, Segura AM. La estratificaci&oacute;n epidemiol&oacute;gica del riesgo. Una estrategia alternativa en el control del dengue para el &aacute;rea metropolitana de Bucaramanga, Bol Epidemiol; 2003: 8-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S1657-9534200500020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 8<a name="8"></a>. World Health Organization. Dengue haemorrhagic fever: diagnosis, treatment, prevention and control. 2nd ed. Geneva: World Health Organization; 1997. p. 12-47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S1657-9534200500020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 9<a name="9"></a>. Vorndam V, Kuno G. Laboratory diagnosis of dengue virus infections. In: Gubler DJ, Kuno G (eds.). Dengue and dengue hemorragic fever. London: CAB International; 1997. p. 313-333.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S1657-9534200500020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 10<a name="10"></a>. Ruechusatawat K, Morita K, Tanaka M. Daily observation of antibodies levels among dengue patients detected by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Jpn Trop Med Hyg 1994; 22: 9-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S1657-9534200500020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 11<a name="11"></a>. Green S, Vaughn DW, Kalayanarooj S, et al. Dengue in early phase: viremia and antibody responses. J Infec Dis 1977; 176: 322-330.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S1657-9534200500020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 12<a name="12"></a>. Kouri GP, Guzm&aacute;n MG, Bravo JR, Triana C. Dengue haemorrhagic fever/dengue shock syndrome: lessons from the Cuban epidemic, 1981. Bull WHO 1989; 67: 375-380.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S1657-9534200500020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 13<a name="13"></a>. Guzm&aacute;n MG, Kouri G, Morier L, Soler M, Fern&aacute;ndez A. A study of fatal hemorrhagic dengue cases in Cuba, 1981. PAHO Bull 1984; 18: 213-220.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S1657-9534200500020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 14<a name="14"></a>. Guzm&aacute;n MG, V&aacute;zquez S, Martines E, et al. Dengue in Nicaragua, 1994: reintroduction of serotype 3 in the Americas. Bol Oficina Sanit Panam 1996; 121: 102-110.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S1657-9534200500020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 15<a name="15"></a>. Gubler DJ, Kuno G, Sather GE, et al. Mosquito cell cultures and specific monoclonal antibodies in surveillance for dengue viruses. Am J Trop Med Hyg 1984; 33: 158-165.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S1657-9534200500020000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 16<a name="16"></a>. Gobernaci&oacute;n de Santander, Secretar&iacute;a de Salud Departamental, Subdirecci&oacute;n de Salud P&uacute;blica. Plan de contingencia Fiebre Amarilla Santander, enero 2004. URL disponible en <a href="http://www.saludsantander.gov.co" target="_blank">http://www.saludsantander.gov.co</a>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S1657-9534200500020000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 17<a name="17"></a>. Rodr&iacute;guez R, &Aacute;lvarez M, Guzm&aacute;n M, Morier L, Kouri G. Comparision of rapid centrifugation assay with conventional tissue culture method for isolation of dengue 2 virus in C6/36-HT cells. 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Epidemiologic, clinical, and virologic observations on dengue in the Kingdom of Tonga. Am J Trop Med Hyg 1978; 27: 581-589.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S1657-9534200500020000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 20<a name="20"></a>. Gubler DJ, Suharyono W, Lubis I, Eram S, Gunarso S. Epidemic dengue 3 in Central Java, associated with low viremia in man. Am J Trop Med Hyg 1981; 30: 1094-1099.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S1657-9534200500020000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 21<a name="21"></a>. Kouri G, Guzm&aacute;n MG, Vald&eacute;s L, et al. Reemergence of dengue in Cuba: A 1997 epidemic in Santiago de Cuba. Emerg Infect Dis 1998; 4: 89-92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S1657-9534200500020000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 22<a name="22"></a>. Travassos da RA, Vasconcelos P, Travassos da RE, et al. Dengue epidemic in Belem, Par&aacute;, Brazil, 1996-1997. Emerg Infect Dis 2000; 6: 298-301.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S1657-9534200500020000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 23<a name="23"></a>. Harris E, Videa E, P&eacute;rez L, et al. Clinical, epidemiological and virological features of dengue in the 1998 epidemic in Nicaragua. Am J Trop Med Hyg 2000; 63: 5-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S1657-9534200500020000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 24<a name="24"></a>. Vaughn DW, Green S, Kalajanarooj S, et al. Dengue viremia titer, antibody response pattern and virus serotype correlate with disease severity. J Infect Dis 2000; 81: 2-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S1657-9534200500020000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 25<a name="25"></a>. Kalayanarooj S, Vaughn DW, Nimmannitya S, et al. Early clinical and laboratory indicators of acute dengue illness. J Infect Dis 1997; 176: 313-321.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S1657-9534200500020000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 26<a name="26"></a>. Innis BL, Nisalak A, Nimmannitya S, et al. An enzyme-linked immunosorbent assay to characterize dengue infections where dengue and japanese encephalitis co-circulate. Am J Trop Med Hyg 1989; 40: 418-427.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S1657-9534200500020000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 27<a name="27"></a>. Nogueira RM, Miagostovich MP, Cavalcanti SM, Marzochi KB, Shatzmayr HG. Levels of IgM antibodies against dengue virus in Rio de Janeiro. Res Virol 1992; 143: 423-427.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S1657-9534200500020000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 28<a name="28"></a>. Rigau JC, Gubler DJ. Surveillance for dengue and dengue hemorrhagic fever. In: Gubler DJ, Kuno G (eds.). Dengue and dengue hemorragic fever. London: CAB International; 1997. p. 405-423.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S1657-9534200500020000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 29<a name="29"></a>. Rigau JC, Ayala A, Garc&iacute;a E, et al. The reappearance of dengue-3 and a subsequent dengue-4 and dengue-1 epidemic in Puerto Rico. Am J Trop Med Hyg 2002; 67: 355-362.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S1657-9534200500020000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 30<a name="30"></a>. Fakeeh M, Zaki M. Virological and serological surveillance for dengue fever in Jeddah, Saudi Arabia, 1994-1999. Am J Trop Med Hyg 2001; 65: 764-767.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S1657-9534200500020000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 31<a name="31"></a>. Yamada KI, Takasaki T, Nawa M, Kurane I. Virus isolation as one of the diagnostic method por dengue virus infection. J Clin Virol 2002; 24: 203-209.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S1657-9534200500020000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 32<a name="32"></a>. Vaughan HE, George A, Morris-Glasgow V, Campione-Piccardo J. Molecular diagnosis of dengue by reverse transcriptase-polymerase chain reaction. West Indian Med J 1999; 48: 118-122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S1657-9534200500020000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 33<a name="33"></a>. Yamada K, Nawa M, Takasaki T, Yabe S, Kurane I. Laboratory diagnosis of dengue virus infection by reverse transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) and IgM-capture enzyme -linked immunosorbent assay (ELISA). Jpn J Infect Dis 1999; 4: 150-155.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S1657-9534200500020000200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 34<a name="34"></a>. Balmaseda A, Sandoval E, P&eacute;rez L, Guti&eacute;rrez CM, Harris E. Application of molecular typing techniques in the 1998 dengue epidemic in Nicaragua. Am J Trop Med Hyg 1999: 6; 893-897.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S1657-9534200500020000200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 35<a name="35"></a>. Young PR, Hilditch PA, Bletchly C, Halloran W. An antigen capture enzyme-linked immunosorbent assay reveals high levels of the dengue virus protein NS1 in the sera of the infected patients. J Clin Microbiol 2000; 38: 1053-1057.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S1657-9534200500020000200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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