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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Toxoplasmosis congénita: aspectos clínicos y epidemiológicos de la infección durante el embarazo]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[We present an updated review on toxoplasmosis during the pregnancy and its more feared outcome, the damage to the fetus and the newborn. The scope of this review is to summarize current and important epidemiological and clinical aspects concerning this disease. Several new parasitological and epidemiological concepts are reviewed, as well as the clinical presentation of the perinatal infection. In addition, we discussed current diagnostic approaches and treatment of the pregnant woman, fetus and newborn. Recent controversies on the different strategies for primary and secondary prevention of toxoplasmosis during the pregnancy are also discussed.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Arial" size="+1">    <p align="center"><b>Toxoplasmosis cong&eacute;nita: aspectos cl&iacute;nicos y epidemiol&oacute;gicos de la infecci&oacute;n durante el embarazo</b></p></font> <font face="Arial">    <p align="center"><b>Fernando Rosso, M.D.<sup>1</sup>, Alejandro Agudelo, M.D.<sup>2</sup>, &Aacute;ngela Isaza, M.D.<sup>3</sup>, Jos&eacute; Gilberto Montoya, M.D.<sup>4</sup></b></p></font> <font face="Arial" size="-1">    <p align="justify">1. Postdoctoral Fellow, Divisi&oacute;n de Enfermedades Infecciosas, Universidad de Stanford, EE.UU. Especialista Institucional, Servicio de Enfermedades Infecciosas, Fundaci&oacute;n Cl&iacute;nica Valle del Lili, Cali, Colombia. Docente Adscrito, Programa de Medicina Interna, Universidad CES, Medell&iacute;n, Colombia. e-mail: <a href="mailto:frosso07@gmail.com">frosso07@gmail.com</a>    <br> 2. Profesor Adjunto, Departamento de Ginecolog&iacute;a y Obstetricia, Escuela de Medicina, Universidad del Valle, Cali, Colombia. e-mail: <a href="mailto:agudeloa@uniweb.net.co">agudeloa@uniweb.net.co</a>    <br> 3. M&eacute;dica Hospitalaria, Fundaci&oacute;n Cl&iacute;nica Valle del Lili, Cali, Colombia. e-mail: <a href="mailto:a_isaza@hotmail.com">a_isaza@hotmail.com</a>    <br> 4. Profesor Asociado, Departamento de Medicina Interna y Divisi&oacute;n de Enfermedades Infecciosas, Universidad de Stanford. Instituto de Investigaci&oacute;n y Laboratorio Nacional de Referencia para el Estudio y Diagn&oacute;stico de la Toxoplasmosis. Fundaci&oacute;n M&eacute;dica de Palo Alto, California, EE.UU. e-mail: <a href="mailto:gilberto@stanford.edu">gilberto@stanford.edu</a>    <br> Recibido para publicaci&oacute;n marzo 30, 2006 Aceptado para publicaci&oacute;n julio 4, 2007</p></font>     <br> <font face="Arial">    <p align="justify"><b>RESUMEN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Se presenta una revisi&oacute;n actualizada sobre la toxoplasmosis durante el embarazo y de su consecuencia la toxoplasmosis cong&eacute;nita. Se pretende ilustrar a los profesionales de la salud con los diferentes aspectos tanto epidemiol&oacute;gicos como cl&iacute;nicos concernientes a esta enfermedad. Se revisan conceptos actuales de la parasitolog&iacute;a y de la epidemiolog&iacute;a de la transmisi&oacute;n materno-fetal, as&iacute; como la presentaci&oacute;n cl&iacute;nica de la infecci&oacute;n perinatal. Se discuten nuevos adelantos en el diagn&oacute;stico y su influencia en el tratamiento de la mujer embarazada, del feto y del reci&eacute;n nacido. Tambi&eacute;n se discuten las controversias recientes sobre las diversas estrategias de prevenci&oacute;n primaria y secundaria durante el embarazo.</p>     <p align="center"><B>Palabras clave:</b> Toxoplasmosis; Embarazo; Transmisi&oacute;n; Epidemiolog&iacute;a.</p>     <p align="justify"><b>Congenital toxoplasmosis: Clinical and epidemiological aspects of the infection during pregnancy</b></p>     <p align="justify"><b>SUMMARY</b></p>     <p align="justify">We present an updated review on toxoplasmosis during the pregnancy and its more feared outcome, the damage to the fetus and the newborn. The scope of this review is to summarize current and important epidemiological and clinical aspects concerning this disease. Several new parasitological and epidemiological concepts are reviewed, as well as the clinical presentation of the perinatal infection. In addition, we discussed current diagnostic approaches and treatment of the pregnant woman, fetus and newborn. Recent controversies on the different strategies for primary and secondary prevention of toxoplasmosis during the pregnancy are also discussed.</p>     <p align="center"><b>Keywords:</b> Toxoplasmosis; Pregnancy; Transmission; Epidemiology.</p>      <br>     <p align="right"><b>Who would not give a trifle to prevent what he would give a thousand worlds to cure?</b>    <br> <b>Edward Young 1683-1765</b></p>     <p align="justify">Hace 12 a&ntilde;os se public&oacute; en Colombia M&eacute;dica la &uacute;ltima revisi&oacute;n que sobre este tema se hizo, y se plante&oacute; la toxoplasmosis cong&eacute;nita (TC) como un problema subestimado de salud p&uacute;blica en Colombia<sup><a href="#1">1</a></sup>. En esta &uacute;ltima d&eacute;cada han surgido nuevos conocimientos en la literatura m&eacute;dica mundial que han facilitado el entendimiento de la enfermedad y su din&aacute;mica en la poblaci&oacute;n. Asimismo, ha mejorado el entendimiento en la variabilidad del riesgo de transmisi&oacute;n durante el embarazo y el riesgo de enfermedad al reci&eacute;n nacido. Se han hecho nuevos avances en la aproximaci&oacute;n diagn&oacute;stica de la infecci&oacute;n aguda materna y la infecci&oacute;n fetal que han impactado las recomendaciones de manejo. Sin embargo y a pesar de estos adelantos, durante estos &uacute;ltimos a&ntilde;os, se han generado en el mundo diferentes controversias sobre las estrategias de prevenci&oacute;n de la infecci&oacute;n cong&eacute;nita.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">El inter&eacute;s con esta revisi&oacute;n es actualizar los conocimientos cl&iacute;nicos y epidemiol&oacute;gicos de quienes cuidan de la salud materno-infantil en Colombia y permitirles un mejor entendimiento de la enfermedad. De igual forma, motivar a los profesionales de la salud p&uacute;blica, para entender la problem&aacute;tica alrededor de la TC y la necesidad existente de estudios epidemiol&oacute;gicos en el pa&iacute;s para la toma de decisiones en estrategias de prevenci&oacute;n.</p>     <p align="justify"><b>Parasitolog&iacute;a.</b> El Toxoplasma gondii es un protozoario intracelular obligatorio perteneciente a la familia Apicomplexa, subclase Coccidia. Puede adquirir diferentes formas o estad&iacute;os como el ooquiste, el taquizo&iacute;to, y el quiste. La fase sexuada del par&aacute;sito tiene lugar en la mucosa intestinal de los felinos (el gato es hospedero definitivo del T. gondii), donde los gametocitos dan origen a los ooquistes. Durante la infecci&oacute;n aguda, millones de ooquistes son excretados en las heces del gato durante 7 a 21 d&iacute;as. Los gatitos y gatos j&oacute;venes emiten m&aacute;s ooquistes que los gatos maduros durante la infecci&oacute;n aguda. Estos ooquistes no son infectantes de inmediato sino luego de la esporulaci&oacute;n, que ocurre durante los primeros 20 d&iacute;as despu&eacute;s de emitidos los ooquistes. &Eacute;stos liberan esporozoitos que son infectivos al ser ingeridos por diferentes mam&iacute;feros (incluido el hombre). Posteriormente en el intestino delgado del mam&iacute;fero ocurre la conversi&oacute;n al estado de taquizo&iacute;to. Estos taquizo&iacute;tos invaden las c&eacute;lulas epiteliales de la mucosa y se diseminan por v&iacute;a hemat&oacute;gena y/o linf&aacute;tica a varios &oacute;rganos del cuerpo entre ellos cerebro, ojos, coraz&oacute;n, m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, placenta y al feto.</p>     <p align="justify">La replicaci&oacute;n del par&aacute;sito lleva a muerte celular y r&aacute;pida invasi&oacute;n a c&eacute;lulas vecinas, lo que provoca una fuerte respuesta inflamatoria y destrucci&oacute;n tisular con las manifestaciones de la enfermedad. Posteriormente estos taquizo&iacute;tos se transforman en bradizo&iacute;tos por la presi&oacute;n del sistema inmune y se convierten en quistes tisulares. Cada quiste puede tener de cientos a miles de bradizo&iacute;tos, los cuales son morfol&oacute;gicamente id&eacute;nticos a los taquizo&iacute;tos, pero de multiplicaci&oacute;n lenta. Estos bradizo&iacute;tos persisten en los quistes tisulares de por vida en el hospedero. Sin embargo, en pacientes inmunocomprometidos (v.g. enfermedad avanzada por VIH) pueden liberarse bradizo&iacute;tos de los quistes que se transforman de nuevo en taquizo&iacute;tos y causan recrudescencias de la enfermedad (2,3).</p>     <p align="justify">De igual forma, los quistes tisulares son infectivos para los hospederos definitivos (felinos), como para los intermediarios (incluido el hombre) al ingerir carnes provenientes de otro mam&iacute;fero infectado. Despu&eacute;s de su ingesti&oacute;n, en el intestino se liberan los bradizo&iacute;tos del quiste y se transforman en taquizo&iacute;tos que provocan la infecci&oacute;n aguda. A su vez, los felinos emiten ooquistes en sus heces y as&iacute; se perpet&uacute;a la infecci&oacute;n en el medio<sup><a href="#4">4</a></sup>.</p>     <p align="justify">Con el avance de las pruebas moleculares se han descrito tres genotipos del par&aacute;sito, tipos I, II y III, los cuales aparentemente difieren en su virulencia, comportamiento biol&oacute;gico y patrones epidemiol&oacute;gicos de ocurrencia (5-7). Se han encontrado cepas genotipo I y II en enfermos con toxoplasmosis cong&eacute;nita, y el tipo III en infecci&oacute;n de animales. La recombinaci&oacute;n sexual entre dos l&iacute;neas clonales distintas y competitivas del par&aacute;sito ha conducido a la evoluci&oacute;n natural de la virulencia. En modelos murinos, se ha encontrado mayor virulencia en el genotipo I, que en los II y III. Estas cepas distintas parecen tener una distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica diferente. Los estudios mundiales en aves de corral, han encontrado grandes diferencias en la distribuci&oacute;n de estos genotipos. En Norteam&eacute;rica y en Francia hay predominio del genotipo II8, en India y Egipto II y III, en &Aacute;frica existen los tres genotipos<sup><a href="#9">9</a></sup>, pero con predominio del III. En Sudam&eacute;rica, en M&eacute;xico y Argentina se han encontrado los tres genotipos (10,11). Sin embargo en Brasil, Colombia y Per&uacute; no se encontr&oacute; genotipo II, y el predominio es del genotipo I (12-15). Es de especial inter&eacute;s, que las cepas tipo I de Brasil y Colombia fueron letales en los modelos murinos, mientras las cepas II de Norteam&eacute;rica no lo fueron (15,16). Esto podr&iacute;a indicar que existen diversidades en la virulencia, lo que podr&iacute;a explicar la variaci&oacute;n en la frecuencia y las manifestaciones de la enfermedad entre distintas poblaciones. Los estudios futuros aclarar&aacute;n lo significativo para la cl&iacute;nica de estas diferencias genot&iacute;picas en cuanto al riesgo de transmisi&oacute;n y el riesgo de enfermedad, as&iacute; como la respuesta al tratamiento m&eacute;dico.</p>     <p align="justify"><b>EPIDEMIOLOG&Iacute;A</b></p>     <p align="justify"><b>Aspectos generales.</b> La infecci&oacute;n por T. gondii es una zoonosis que se encuentra mundialmente distribuida y esto la distingue de otras parasitosis que afectan sobre todo a los pa&iacute;ses tropicales, y no son end&eacute;micas en los pa&iacute;ses desarrollados. Sin embargo, hay variaciones en la prevalencia entre las diversas regiones geogr&aacute;ficas del mundo. Estas variaciones parecen correlacionarse con la alimentaci&oacute;n y los h&aacute;bitos higi&eacute;nicos de las personas, lo cual soporta la ruta oral como el mecanismo m&aacute;s importante de transmisi&oacute;n. Por esto, las diferencias existentes entre los sistemas de crianza de animales para consumo humano, los sistemas de riego de aguas en los cultivos, las costumbres alimentarias de los grupos humanos, y las condiciones higi&eacute;nicas generales, juegan un papel fundamental en la transmisi&oacute;n de las infecciones por T. gondii en cada zona geogr&aacute;fica (2,3). Ciertas temperaturas y humedades favorecen la maduraci&oacute;n y la supervivencia de los ooquistes. Los climas muy fr&iacute;os o muy calientes o secos son adversos para el par&aacute;sito. No existen diferencias en la seroprevalencia de la infecci&oacute;n entre ambos g&eacute;neros, pero aumenta con la edad por el riesgo acumulado de exposici&oacute;n.</p>     <p align="justify">Los seres humanos se pueden infectar generalmente por dos rutas:</p>     <p align="justify">1. Por ingesti&oacute;n o manipulaci&oacute;n de carne cruda o mal cocida (en especial cerdo y cordero) que contienen quistes tisulares, y/o    <br> 2. Por ingerir agua, vegetales, frutas o tambi&eacute;n otros elementos (tierra o arena) contaminados con ooquistes que se excretan en las heces de felinos con la infecci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Casi todas las infecciones pasan inadvertidas en la cl&iacute;nica, lo que hace dif&iacute;cil establecer la ruta espec&iacute;fica de transmisi&oacute;n. Recientemente se han descrito en seres humanos varios brotes epid&eacute;micos asociados con el consumo de agua no filtrada, y parece que este modo de transmisi&oacute;n es m&aacute;s com&uacute;n de lo que se estima (17,18).</p>     <p align="justify">La transmisi&oacute;n en la lactancia o transmisi&oacute;n directa de humano a humano no se ha descrito, excepto la que ocurre de la madre al feto en el curso de la infecci&oacute;n aguda durante el embarazo. En esta infecci&oacute;n, la placenta puede ser infectada, y de all&iacute; puede infectar al feto. Se cree que cuando ocurre la infecci&oacute;n placentaria, puede persistir durante toda la gestaci&oacute;n, lo cual pone a riesgo al feto en el resto del embarazo (19).</p>     <p align="justify">La infecci&oacute;n materna antes del embarazo no supone riesgo para el feto; sin embargo se han descrito excepcionalmente transmisiones en mujeres que se infectaron por lo menos dentro de 3 meses antes de la concepci&oacute;n (20).</p>     <p align="justify"><b>Fuentes de la infecci&oacute;n por T. gondii durante el embarazo.</b> En un estudio multic&eacute;ntrico europeo de casos y controles (21) se encontr&oacute; que el factor de riesgo que m&aacute;s predec&iacute;a la infecci&oacute;n aguda en las mujeres embarazadas era el consumo de carnes mal cocidas de cordero, res y animales de caza. Asimismo, el contacto con tierra y el viajar fuera de Europa y Norte Am&eacute;rica eran factores asociados. El contacto con gatos no fue un factor de riesgo. Entre 30% y 63% de la infecci&oacute;n en distintos centros se atribuyeron al consumo de carnes mal cocinadas o curadas (como salami) y entre 6% y 17% por contacto con tierra (21).</p>     <p align="justify">En un reciente estudio de casos y controles sobre factores de riesgo en mujeres embarazadas en Armenia (Colombia) se observ&oacute; que los factores de riesgo m&aacute;s importantes fueron: el consumo de carnes mal cocidas, seguido por tomar bebidas que se preparaban con agua sin hervir, y el contacto con gatos j&oacute;venes (menores de 6 meses); adem&aacute;s, el consumo de agua purificada en botella era un factor protector contra la infecci&oacute;n (22).</p>     <p align="justify">A pesar de estos estudios que hablan de factores de riesgo durante el embarazo, un estudio reciente norteamericano encontr&oacute; que en un grupo de madres de ni&ntilde;os con infecci&oacute;n cong&eacute;nita confirmada, 50% de ellas no recordaban haber tenido exposici&oacute;n a camas de gatos, carne mal cocida, ni haber presentado cualquier sintomatolog&iacute;a que hiciera sospechar la toxoplasmosis (23).</p>     <p align="justify"><b>Riesgo de la infecci&oacute;n durante el embarazo.</b> El riesgo de la infecci&oacute;n por T. gondii durante el embarazo en una poblaci&oacute;n determinada depende de:</p>     <p align="justify">1. La circulaci&oacute;n del par&aacute;sito en el medio y la comunidad. Esto se puede reflejar en los cambios de la prevalencia de la infecci&oacute;n por T. gondii en la poblaci&oacute;n general en el curso de los a&ntilde;os.    <br> 2. El riesgo que tienen la mujeres susceptibles de adquirir la infecci&oacute;n en el curso del embarazo (incidencia de infecci&oacute;n durante el embarazo) (24).</p>     <p align="justify"><b>Prevalencia de la infecci&oacute;n pasada.</b> La prevalencia de la infecci&oacute;n por T. gondii difiere en las zonas geogr&aacute;ficas del mundo. En varios pa&iacute;ses industrializados comenz&oacute; a comprobarse la disminuci&oacute;n de la prevalencia al mejorar las condiciones de vida y reducir la infecci&oacute;n de T. gondii en animales de consumo humano. En las zonas donde existe mayor transmisi&oacute;n, la prevalencia de transmisi&oacute;n cong&eacute;nita es mayor, y por tanto la seroprevalencia se incrementa desde edades m&aacute;s tempranas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">En Europa existe una gran variaci&oacute;n en la seroprevalencia entre mujeres embarazadas: en Francia es alrededor de 54%, mientras en Suecia es tan s&oacute;lo 12% (24). En los Estados Unidos la seroprevalencia para T. gondii entre mujeres entre 15 y 55 a&ntilde;os es 15% (25). En Latinoam&eacute;rica, M&eacute;xico tiene alrededor de 35% (24) y en Brasil (S&atilde;o Paulo, Rio de Janeiro) se han informado diferentes valores entre 59% y 78% (18).</p>     <p align="justify">En Colombia, de acuerdo con el Estudio Nacional de Salud realizado entre 1977 y 1980 (26), la tasa de seroprevalencia observada en mujeres en edad f&eacute;rtil vari&oacute; entre 42.5% y 54.4%. Esta seroprevalencia tuvo una distribuci&oacute;n desigual en las diferentes regiones del pa&iacute;s, pues fue mayor en las regiones Atl&aacute;ntica (56.8%-73%) y Oriental (57.7%-66.2%), y menor en las regiones Pac&iacute;fica (33%-37.6%) y Central (31.6%-41.7%). Un trabajo posterior, en el departamento del Quind&iacute;o mostr&oacute; 60% de prevalencia de anticuerpos en mujeres embarazadas (27). El reciente estudio de Rosso et al. (28) sobre seroprevalencia en embarazadas de la ciudad de Cali encontr&oacute; 46.2% (IC 95% 42.9%-49.4%). Estos hallazgos sugieren que existe una constante transmisi&oacute;n del par&aacute;sito en los &uacute;ltimos 25 a&ntilde;os, y a diferencia de otros pa&iacute;ses no hay pruebas de descenso en la prevalencia.</p>     <p align="justify">Incidencia de la infecci&oacute;n en mujeres susceptibles. El hecho de existir una poblaci&oacute;n mayor de mujeres susceptibles (sin infecci&oacute;n previa) no necesariamente significa un mayor riesgo de infecci&oacute;n durante el embarazo, debido a que este riesgo tambi&eacute;n depende de la circulaci&oacute;n del par&aacute;sito en la poblaci&oacute;n general. Si esta circulaci&oacute;n disminuye en la poblaci&oacute;n, la prevalencia disminuye, y aunque aumente el n&uacute;mero de mujeres susceptibles, disminuir&aacute; la incidencia de la infecci&oacute;n en las embarazadas (24). En cambio, en una poblaci&oacute;n con una alta circulaci&oacute;n del par&aacute;sito, habr&aacute; un menor n&uacute;mero de mujeres susceptibles (muchas mujeres se habr&aacute;n infectado antes del embarazo), pero tendr&aacute;n mayor riesgo de infectarse durante el embarazo.</p>     <p align="justify">En Europa diferentes estudios han mostrado variaciones en la incidencia de la infecci&oacute;n por T. gondii entre pa&iacute;ses. As&iacute;, en Dinamarca, la cifra es 2.9; en Holanda, 3.4; y en Francia, 8.1 por cada 1,000 mujeres embarazadas susceptibles (seronegativas para T. gondii), respectivamente. Se ha estimado de modo global una tasa de incidencia (ajustada para un embarazo de nueve meses) de 3 a 10 por cada 1,000 mujeres embarazadas susceptibles (24,28-32).</p>     <p align="justify">En Am&eacute;rica Latina, estas cifras podr&iacute;an ser mayores, sin embargo no hay grandes estudios que logren contestar esta pregunta. En un estudio en gestantes del Quind&iacute;o se encontr&oacute; una alta incidencia de alrededor de 1.9% (IC 95% 1.2 a 1.8)<sup><a href="#1">1</a></sup>.</p>     <p align="justify"><b>Riesgo de transmisi&oacute;n de la madre al feto.</b> El riesgo de la TC en los neonatos se relaciona directamente con tres factores:</p>     <p align="justify">1. La incidencia de la infecci&oacute;n aguda en las mujeres durante el embarazo,    <br> 2. La edad gestacional en la que la mujer embarazada adquiri&oacute; la infecci&oacute;n y,    <br> 3. Los programas de salud p&uacute;blica instituidos para prevenir, diagnosticar y tratar la infecci&oacute;n durante el embarazo (24). Se discutir&aacute; este &uacute;ltimo factor en la secci&oacute;n de prevenci&oacute;n.</p>     <p align="justify">La prevalencia mundial de la TC en reci&eacute;n nacidos puede variar de 1 a 10 por 10,000 nacidos vivos (NV), sin embargo var&iacute;a seg&uacute;n el &aacute;rea geogr&aacute;fica: Suecia: 1/10,000 NV, Brasil: 3/10,000 NV, Francia: 10/10,000 NV) (2,19,24). En Colombia se estima que podr&iacute;a estar entre 2 y 10 por cada 1000 NV, lo que representa de 600 a 3000 ni&ntilde;os que nacen cada a&ntilde;o con infecci&oacute;n cong&eacute;nita<sup><a href="#1">1</a></sup>. Recientemente un estudio en Armenia (Quind&iacute;o) demostr&oacute; una alta prevalencia entre 0.2% y 0.8% (33).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">El riesgo de TC var&iacute;a mucho de acuerdo con el momento de la gestaci&oacute;n cuando la madre se infecta. Si ocurre dentro de las dos primeras semanas de embarazo, el riesgo es muy bajo, pero aumenta a medida que avanza la gravidez.</p>     <p align="justify">El trabajo de Dunn et al. (34) concluye que el riesgo durante el primer trimestre puede variar de 3% a 11%, en el segundo trimestre de 16% a 30% y para el tercer trimestre puede ser de 30% y m&aacute;s de 60%. As&iacute;, el riesgo global de transmisi&oacute;n es 29%, pero depende sobre todo de la edad gestacional en el momento de la infecci&oacute;n materna (<a href="#g1">Gr&aacute;fica 1</a>).</p>     <p align="center"><a name="g1"></a><img src="/img/revistas/cm/v38n3/v38n3a14g1.jpg"></p>     <p align="justify"><b>Riesgo de secuelas cl&iacute;nicas en el ni&ntilde;o infectado cong&eacute;nitamente.</b> El riesgo de transmisi&oacute;n materno-fetal y el riesgo de secuelas en el feto se relacionan de modo inverso con la edad del embarazo. Las infecciones tempranas de la madre en la primera mitad, tienen menor riesgo de transmisi&oacute;n materno-fetal, pero si se contamina el feto, podr&aacute; resultar en infecci&oacute;n cong&eacute;nita severa, muerte fetal in &uacute;tero o aborto espont&aacute;neo. Por el contrario, en las infecciones maternas tard&iacute;as en el embarazo, si el feto se infecta, por lo general resulta en neonatos que parecen normales. La frecuencia de infecci&oacute;n subcl&iacute;nica en neonatos puede ser tan alta como 85%. Esta infecci&oacute;n por rareza se descubre, y si no se trata a tiempo, algunos de ellos desarrollar&aacute;n coriorretinitis en la segunda o tercera d&eacute;cadas de la vida.</p>     <p align="justify">El riesgo de desarrollar por lo menos uno de los signos cl&iacute;nicos cl&aacute;sicos (calcificaciones intracraneales, coriorretinitis y/o hidrocefalia) antes de los tres a&ntilde;os de edad en el ni&ntilde;o cong&eacute;nitamente infectado, tiene una asociaci&oacute;n muy fuerte con el momento de la seroconversi&oacute;n materna (24,34). Este riesgo disminuye de 61% (IC 90% 37%-83%) si la infecci&oacute;n ocurri&oacute; entre las semanas 13 a 25 (IC 90% 19%-31%), si la infecci&oacute;n fue a la semana 26, y a 9% (IC 90% 4%-16%) si la infecci&oacute;n ocurri&oacute; en la semana 3634 (<a href="#g2">Gr&aacute;fica 2</a>).</p>     <p align="center"><a name="g2"></a><img src="/img/revistas/cm/v38n3/v38n3a14g2.jpg"></p>     <p align="justify"><b>Riesgo de signos cl&iacute;nicos en ni&ntilde;os expuestos a la infecci&oacute;n materna.</b> Para una mujer embarazada con diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n aguda, el conocimiento de los riesgos de secuelas cl&iacute;nicas en su hijo es importante; sin embargo, debe decidir primero si se somete al diagn&oacute;stico prenatal para confirmar o descartar que el feto est&eacute; infectado.</p>     <p align="justify">El riesgo de signos cl&iacute;nicos en un feto nacido de una mujer infectada (sin conocer el estado de infecci&oacute;n del feto) se obtiene al multiplicar el riesgo de la infecci&oacute;n cong&eacute;nita por el riesgo de desarrollar signos cl&iacute;nicos en ni&ntilde;os infectados cong&eacute;nitamente (24,34). Por ejemplo, si la infecci&oacute;n fue a las 26 semanas de gravidez; el riesgo de transmisi&oacute;n materno-fetal es 40% (<a href="#g1">Gr&aacute;fica 1</a>) y el riesgo de signos cl&iacute;nicos en un feto infectado es 25% (<a href="#g2">Gr&aacute;fica 2</a>). El riesgo global ser&aacute; 10% (0.40 x 0.25 = 0.1). Con este tipo de operaciones se han podido hacer gr&aacute;ficas (<a href="#g3">Gr&aacute;fica 3</a>) donde se calcula este riesgo, y pueden ser de utilidad cl&iacute;nica en la consejer&iacute;a del diagn&oacute;stico fetal (ver secci&oacute;n de diagn&oacute;stico). Este riesgo se debe equilibrar contra los riesgos de p&eacute;rdida fetal (0.3% a 0.9%) asociada con la amniocentesis en la evaluaci&oacute;n fetal.</p>     <p align="center"><a name="g3"></a> <img src="/img/revistas/cm/v38n3/v38n3a14g3.jpg"></p>     <p align="justify">El riesgo m&aacute;s alto de desarrollar signos cl&iacute;nicos en el feto se presenta en las infecciones que ocurren entre las semanas 12 y 24. Es importante entender que el riesgo de secuelas en el neonato en infecciones maternas ocurridas temprana o tard&iacute;amente durante el embarazo es menor. Esto se debe a que el riesgo de transmisi&oacute;n materno-fetal durante las primeras semanas de gestaci&oacute;n es bajo, y el riesgo de secuelas severas de infecciones tard&iacute;as es menor (usualmente subcl&iacute;nicas) ya que ha terminado la etapa de organog&eacute;nesis en el feto (24,34). As&iacute; se explica la silueta de &laquo;campana&raquo; que tiene la <a href="#g3">Gr&aacute;fica 3</a>.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">En la <a href="#c1">Cuadro 1</a> se resumen los tres conceptos de riesgo: riesgo de transmisi&oacute;n materno-fetal (<a href="#g1">Gr&aacute;fica 1</a>), riesgo de secuelas dada la infecci&oacute;n cong&eacute;nita (<a href="#g2">Gr&aacute;fica 2</a>), y el riesgo de secuela de la infecci&oacute;n materna, sin conocer si hay infecci&oacute;n fetal (<a href="#g3">Gr&aacute;fica 3</a>).</p>     <p align="center"><a name="c1"></a> <img src="/img/revistas/cm/v38n3/v38n3a14c1.jpg"></p>     <p align="justify">Es muy importante enfatizar que todos estos estudios se hicieron en pa&iacute;ses donde hay una estrategia de detecci&oacute;n prenatal y que a casi todas las mujeres infectadas durante el embarazo se les suministr&oacute; espiramicina para disminuir la transmisi&oacute;n vertical. Por tanto, estos resultados no se pueden extrapolar por completo en poblaciones donde no se utilice la misma estrategia. Es posible que los riesgos sean mayores que lo estimado donde no se usen tales conductas. Adem&aacute;s de lo anterior, el aborto es legal en estos pa&iacute;ses, y algunos casos de infecci&oacute;n fetal severa pudieron haber sido abortados, y no incluirse en las estad&iacute;sticas. Esto puede introducir un efecto minimizador, al seleccionar las infecciones m&aacute;s leves, y subestimar el riesgo final de enfermedad grave, al abortar los casos severos.</p>     <p align="justify">Es importante mencionar adem&aacute;s que la variabilidad biol&oacute;gica del par&aacute;sito podr&iacute;a influir en las probabilidades de transmisi&oacute;n y de las secuelas de la infecci&oacute;n cong&eacute;nita.</p>     <p align="justify"><b>MANIFESTACIONES CL&Iacute;NICAS DE LA INFECCI&Oacute;N EN EL EMBARAZO</b></p>     <p align="justify">Casi 90% de las infecciones agudas por toxoplasmosis en la mujer embarazada pasan inadvertidas. Los signos y s&iacute;ntomas con frecuencia son tan leves que las mujeres ni siquiera los recuerdan al dar a luz a un reci&eacute;n nacido con toxoplasmosis cong&eacute;nita (2,19,32). En un estudio reciente encontraron que m&aacute;s de 50% de 131 mujeres embarazadas que tuvieron un hijo con toxoplasmosis cong&eacute;nita no recordaban haber estado expuesta a ning&uacute;n factor de riesgo conocido, o haber tenido s&iacute;ntomas sugestivos de toxoplasmosis (23). Por tanto, la toxoplasmosis no s&oacute;lo se debe sospechar en las mujeres que tengan factores de riesgo conocidos o s&iacute;ntomas sugestivos.</p>     <p align="justify">La manifestaci&oacute;n cl&iacute;nica m&aacute;s com&uacute;n es la linfadenopat&iacute;a, que compromete m&aacute;s a menudo las regiones linf&aacute;ticas cervical y sub-occipital, donde hay aumento discreto de tama&ntilde;o. Los ganglios suelen ser de firmeza variable, no supuran y no duelen. Por todo esto a veces la paciente se los encuentra casi de modo accidental. Por rareza puede desarrollarse una linfadenopat&iacute;a difusa y en ocasiones se puede presentar con fiebre de bajo grado, adinamia, malestar general y cefalea. En algunos casos la linfadenopat&iacute;a puede persistir varios meses o recurrir. Se cree que cuando aparece la linfadenopat&iacute;a la infecci&oacute;n ha ocurrido entre 4 y 8 semanas antes (3,19). Este dato cl&iacute;nico es importante para sospechar el posible momento de infecci&oacute;n. El riesgo de transmisi&oacute;n al feto no depende de la aparici&oacute;n de s&iacute;ntomas en la madre durante la gestaci&oacute;n (3,19).</p>     <p align="justify">Es posible que una mujer con una infecci&oacute;n latente o cr&oacute;nica por T. gondii pueda mostrar una reactivaci&oacute;n en forma de coriorretinitis durante su embarazo. Esta reactivaci&oacute;n no significa riesgo para el feto (35). Parece que la infecci&oacute;n se reactiva de manera local s&oacute;lo en estructuras intraoculares. Las pacientes embarazadas con enfermedad avanzada por VIH, s&iacute; pueden hacer la reactivaci&oacute;n sist&eacute;mica de una infecci&oacute;n latente y causar infecci&oacute;n fetal, aunque el riesgo de presentarse es bajo (3,19,36).</p>     <p align="justify">Varios aspectos cl&iacute;nicos llevan a sospechar toxoplasma durante el embarazo o despu&eacute;s del parto. El m&aacute;s usual es la embarazada asintom&aacute;tica a quien por serolog&iacute;a se le tamiza la infecci&oacute;n. Tambi&eacute;n se debe sospechar en cualquier gestante con linfadenopat&iacute;a (s&iacute;ntomas similares a una infecci&oacute;n viral) o en la gestante en quien los hallazgos ultrasonogr&aacute;ficos sean consistentes con da&ntilde;o fetal por infecci&oacute;n intrauterina. A veces la sospecha de la enfermedad se desencadena cuando el reci&eacute;n nacido desarrolla manifestaciones cl&iacute;nicas consistentes con el s&iacute;ndrome de TORCH (toxoplasmosis, s&iacute;filis, rub&eacute;ola, citomegalovirus CMV, herpes) (3,19).</p>     <p align="justify"><b>MANIFESTACIONES CL&Iacute;NICAS DE LA INFECCI&Oacute;N EN EL RECI&Eacute;N NACIDO</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La toxoplasmosis cong&eacute;nita tiene una amplia variedad de presentaciones cl&iacute;nicas; sin embargo, se podr&iacute;a condensar en estos cuatro grupos:</p>     <p align="justify">1. Una enfermedad neonatal manifiesta en el momento de nacer.    <br> 2. Una enfermedad leve o severa que se evidencia durante los primeros meses de vida del ni&ntilde;o.    <br> 3. Una secuela o una reca&iacute;da de una infecci&oacute;n no diagnosticada, que puede aparecer durante la infancia o la adolescencia.    <br> 4. Una infecci&oacute;n subcl&iacute;nica, con una prueba serol&oacute;gica que confirma o demuestra la infecci&oacute;n.</p>     <p align="justify">En el primer grupo son indudables la infecci&oacute;n y sus consecuencias, pero en los otros grupos, las secuelas definitivas de la infecci&oacute;n, presentes despu&eacute;s en la vida, pueden ser muy inciertas, en especial si estos ni&ntilde;os no se han diagnosticado y tratado a tiempo (19). En diferentes estudios la frecuencia de la presentaci&oacute;n cl&iacute;nica de cada grupo es muy variable, pues depende del tiempo de seguimiento que se le haya ofrecido a los ni&ntilde;os.</p>     <p align="justify">Es probable que si los ni&ntilde;os infectados s&oacute;lo se eval&uacute;an en el momento de nacer, la mayor&iacute;a estar&aacute;n asintom&aacute;ticos, pero si se hace una evaluaci&oacute;n en edades mayores, esta probabilidad cambie. Este fen&oacute;meno es fundamental para entender y calcular el verdadero impacto de la infecci&oacute;n cong&eacute;nita en una poblaci&oacute;n.</p>     <p align="justify">Aproximadamente 85% de los reci&eacute;n nacidos con TC son subcl&iacute;nicos al nacer. Sin embargo, esta informaci&oacute;n se deriva de pa&iacute;ses donde se trata a las mujeres que tengan infecci&oacute;n aguda. En estudios de seguimiento a largo plazo se ha demostrado que sin terapia adecuada 75% de ellos desarrollar&aacute;n coriorretinitis y 50% sufrir&aacute;n da&ntilde;os neurol&oacute;gicos a&ntilde;os o d&eacute;cadas despu&eacute; (19,37-39).</p>     <p align="justify">Algunos ni&ntilde;os (15%) nacen con manifestaciones cl&iacute;nicas, que pueden variar de acuerdo con el compromiso o severidad de la infecci&oacute;n como: coriorretinitis, estrabismo, ceguera, anemia, ictericia, petequias debidas a la trombocitopenia, hepato-esplenomegalia, urticaria, neumonitis, diarrea, hipotermia, entre otras.</p>     <p align="justify">Las m&aacute;s frecuentes y conspicuas son las del sistema nervioso central y las oculares. La tr&iacute;ada cl&aacute;sica de Sabin es hidrocefalia, calcificaciones cerebrales y coriorretinitis; sin embargo, tener las tres al mismo tiempo es raro (10%) (9,37,38).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La hidrocefalia puede ser cl&iacute;nicamente obvia si lleva a macrocefalia o se puede detectar con m&eacute;todos de imagenolog&iacute;a como la ecograf&iacute;a o la escanograf&iacute;a (19,39). Pueden aparecer convulsiones y otros signos neurol&oacute;gicos asociados. La coriorretinitis se puede manifestar como estrabismo o nistagmus. La toxoplasmosis cong&eacute;nita se debe diferenciar de otras infecciones que pueden ocurrir durante el embarazo, a saber:</p>     <p align="justify">a. Infecciones virales, por ejemplo, rub&eacute;ola, CMV y herpes simple.    <br> b. Infecciones bacterianas como s&iacute;filis y listeriosis. Adem&aacute;s, encefalopat&iacute;as infecciosas, eritroblastosis fetal y sepsis.</p>     <p align="justify">Ciertos virus (herpes simple, CMV y rub&eacute;ola), tambi&eacute;n pueden causar coriorretinitis (3,19).</p>     <p align="justify"><b>DIAGN&Oacute;STICO POR LABORATORIO DE LAS INFECCIONES MATERNA, FETAL Y DEL RECI&Eacute;N NACIDO</b></p>     <p align="justify">Las herramientas disponibles en el laboratorio para el diagn&oacute;stico de la toxoplasmosis son m&uacute;ltiples e incluyen ex&aacute;menes serol&oacute;gicos, amplificaci&oacute;n de secuencias de &aacute;cidos nucleicos espec&iacute;ficos (por ejemplo reacci&oacute;n en cadena de polimerasa-PCR), hallazgos histol&oacute;gicos del par&aacute;sito o de sus ant&iacute;genos (por ejemplo, tinci&oacute;n inmunoperoxidasa) o por aislamiento del organismo en cultivos tisulares o en la cavidad peritoneal de rat&oacute;n (41).</p>     <p align="justify"><b>Ex&aacute;menes serol&oacute;gicos.</b> El m&eacute;todo m&aacute;s com&uacute;nmente empleado para el diagn&oacute;stico de la toxoplasmosis durante el embarazo es la demostraci&oacute;n de anticuerpos espec&iacute;ficos contra T. gondii. Existen varias pruebas serol&oacute;gicas que miden distintos tipos de anticuerpos. Los anticuerpos espec&iacute;ficos anti T. gondii que se pueden medir incluyen: IgG, IgM, IgA, y la IgE. Cada uno de estos anticuerpos tiene un comportamiento en el tiempo y en los diversos escenarios cl&iacute;nicos. Adem&aacute;s, hay distintas t&eacute;cnicas para su medici&oacute;n (40-42). Conocer este comportamiento en los diferentes anticuerpos permite determinar si ha ocurrido la infecci&oacute;n y m&aacute;s o menos cu&aacute;ndo. El diagn&oacute;stico serol&oacute;gico de infecci&oacute;n aguda se basa en la seroconversi&oacute;n (el paso de seronegativa a seropositiva en una paciente a riesgo). Cuando se dispone tan s&oacute;lo de una muestra de sangre por lo general se requiere una combinaci&oacute;n de pruebas serol&oacute;gicas para determinar si la mujer se infect&oacute; hace poco o en un pasado distante (41,42).</p>     <p align="justify"><b>TIPOS DE ANTICUERPOS MEDIDOS PARA EL DIAGN&Oacute;STICO SEROL&Oacute;GICO</b></p>     <p align="justify"><b>Anticuerpos IgG.</b> Las t&eacute;cnicas que m&aacute;s se usan para cuantificar los anticuerpos IgG son las pruebas de Sabin y Feldman (Dye test o prueba del colorante), ELISA (inmunoensayo enzim&aacute;tico); IFA (inmunofluorescencia indirecta) y la prueba de aglutinaci&oacute;n directa modificada. En estos m&eacute;todos, los anticuerpos espec&iacute;ficos IgG aparecen de modo habitual dentro de las primeras 2 semanas de la infecci&oacute;n, con un pico en 1-2 meses, luego disminuyen y persisten casi siempre durante toda la vida. Si no se encuentran, lo m&aacute;s probable es que la paciente no haya tenido la infecci&oacute;n y no se pueden atribuir a ella las manifestaciones cl&iacute;nicas de la madre o del feto. Sin embargo, a veces se puede descubrir una infecci&oacute;n tan temprana que la IgG puede ser negativa al principio, y una muestra subsiguiente revela la seroconversi&oacute;n. Las deficiencias en la respuesta inmune humoral pueden dar pruebas IgG negativas. El aumento de los t&iacute;tulos entre un suero agudo y uno convaleciente tres semanas despu&eacute;s indica una infecci&oacute;n reciente aguda. Si los t&iacute;tulos previos eran negativos y los actuales son positivos, hubo una seroconversi&oacute;n, y es diagn&oacute;stica de que la infecci&oacute;n ocurri&oacute; en alg&uacute;n momento entre la toma de las dos muestras (40,41).</p>     <p align="justify">La IgG materna atraviesa la placenta y por tanto la presencia de IgG en el reci&eacute;n nacido puede ser por paso a trav&eacute;s de la placenta y no necesariamente por infecci&oacute;n intrauterina (19). En consecuencia, el diagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n del neonato no se puede basar en una IgG positiva.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Anticuerpos IgM.</b> Estos anticuerpos se demuestran sobre todo con IFA, ELISA, o ISAGA (immunosorbent agglutination assay). Los anticuerpos IgM suelen aparecer y declinar con m&aacute;s rapidez que los anticuerpos IgG. La medici&oacute;n de la IgM se utiliza en la mayor&iacute;a de los laboratorios para determinar si las infecciones son recientes o del pasado. Los t&iacute;tulos se elevan en la primera o segunda semana de la infecci&oacute;n (40,41). Es tan r&aacute;pido el aumento que casi siempre cuando se detectan ya est&aacute; en su valor m&aacute;ximo y, es muy raro ver el aumento entre el suero agudo y el convaleciente (lo que s&iacute; se logra algunas veces con la IgG). En casi todas las pacientes, la IgM se hace negativa al a&ntilde;o de la infecci&oacute;n, pero casi nunca antes de los 5 meses. En algunos casos los t&iacute;tulos de anticuerpos IgM pueden persistir elevados por m&aacute;s de un a&ntilde;o (se han descrito hasta 12 a&ntilde;os), pero por lo general con t&iacute;tulos bajos (40). Aqu&iacute; tambi&eacute;n influye la t&eacute;cnica que se siga. Se sabe que la IFA se puede demorar m&aacute;s que ELISA en tornarse negativa. La persistencia de los anticuerpos en el tiempo parece no tener ninguna importancia cl&iacute;nica y a estos enfermos se les debe considerar como cr&oacute;nicamente infectados (40,41).</p>     <p align="justify">Por su alta sensibilidad, la gran utilidad de la IgM est&aacute; en determinar que la embarazada no se infect&oacute; recientemente. Los valores negativos de esta prueba durante las primeras 24 semanas del embarazo descartan de modo esencial una infecci&oacute;n adquirida durante la gestaci&oacute;n (sobre todo con t&iacute;tulos bajos de IgG). Los valores negativos despu&eacute;s de 24 semanas de gravidez son m&aacute;s dif&iacute;ciles de interpretar; en estos casos no se puede descartar la infecci&oacute;n temprana en el embarazo y que la IgM se torn&oacute; negativa pocos meses despu&eacute;s (19,40,43).</p>     <p align="justify">Una prueba de IgM positiva puede reflejar tres de las siguientes situaciones:</p>     <p align="justify">1. IgM verdadera positiva en una mujer con infecci&oacute;n aguda reciente.    <br> 2. IgM verdadera positiva en una mujer con infecci&oacute;n cr&oacute;nica en la que la IgM ha persistido positiva por meses o aun a&ntilde;os.    <br> 3. IgM falsamente positiva. En este caso es negativa cuando se mide por otros m&eacute;todos en laboratorios de referencia.</p>     <p align="justify">Por tanto, en mujeres embarazadas con IgM positiva se deben hacer siempre pruebas confirmatorias como la IgM por ELISA de doble captura (44-46), y otras pruebas adicionales como: IgA, IgE, prueba de avidez para IgG, o la aglutinaci&oacute;n diferencial de IgG para determinar el posible tiempo de la infecci&oacute;n. Nunca se debe hacer el diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n aguda durante el embarazo con una sola prueba positiva de IgM. Sin embargo, una sola prueba negativa sirve para descartarla (41).</p>     <p align="justify">Varios estudios (41,44,46) han encontrado IgM falsos positivos en laboratorios comerciales de los EEUU hasta en 60%, por ese motivo la FDA recomienda que todo t&iacute;tulo positivo IgM, se debe confirmar en un laboratorio de referencia. Esta confirmaci&oacute;n es muy importante, pues reduce el n&uacute;mero de an&aacute;lisis incorrectos del resultado y evita intervenciones innecesarias a la embarazada, como abortos entre otras (46).</p>     <p align="justify">La IgM es &uacute;til tambi&eacute;n en el diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n cong&eacute;nita. Por su alto peso molecular, la IgM producida por la mujer no pasa la barrera placentaria y algunos fetos la producen cuando est&aacute;n infectados. Por esta raz&oacute;n encontrar una IgM espec&iacute;fica en un reci&eacute;n nacido es diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n intrauterina (a menos que al beb&eacute; se le hayan transfundido hemoderivados en los d&iacute;as anteriores a la prueba) (19). Sin embargo, no todos los reci&eacute;n nacidos con T. gondii la producen, por eso s&oacute;lo a 50% &oacute; 75% de los reci&eacute;n nacidos con TC se les detecta la lgM al nacer. Esto limita la utilidad de medir la IgM en el reci&eacute;n nacido para tamizaci&oacute;n de la TC. Por tanto, se recomienda evaluar la IgM en los reci&eacute;n nacidos por ISAGA (preferible) o por ELISA de doble captura, pues los otros m&eacute;todos pueden tener aun falsos negativos m&aacute;s altos. El m&eacute;todo por ISAGA parece ser ligeramente m&aacute;s sensible que el de ELISA por doble captura.</p>     <p align="justify">Ocasionalmente la IgM medida al reci&eacute;n nacido puede ser falsamente positiva por transfusi&oacute;n materno fetal durante el parto, o transfusi&oacute;n temprana despu&eacute;s del nacimiento. La IgM que es de origen materno debe desaparecer a los 10 d&iacute;as (tiene una vida media corta); por tanto en el reci&eacute;n nacido una IgM que persista en el tiempo confirma la infecci&oacute;n neonatal. Si la madre tiene una IgM negativa en el momento del parto, no hay duda que el reci&eacute;n nacido est&aacute; infectado (a menos que el beb&eacute; haya sido transfundido con hemoderivados).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Recientemente se ha hecho el an&aacute;lisis de muestras pareadas de la madre y el ni&ntilde;o, IgG e IgM por Western blot. Esta t&eacute;cnica sirve para reconocer la disparidad de bandas que se pueden encontrar entre los anticuerpos maternos y los del reci&eacute;n nacido. Si hay disparidad en las bandas de IgM, es diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n en el reci&eacute;n nacido, pues el beb&eacute; elabora sus propios anticuerpos IgM que difieren de los de la madre (48). Se han encontrado algunas dificultades t&eacute;cnicas en el desarrollo de esta prueba, por lo cual no se ha introducido en la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica rutinaria, en espera de una prueba mejor.</p>     <p align="justify"><b>Anticuerpos IgA.</b> Los anticuerpos IgA espec&iacute;ficos se pueden demostrar por ISAGA y ELISA en suero de adultos con infecci&oacute;n aguda y en reci&eacute;n nacidos con infecci&oacute;n cong&eacute;nita (41,47). En los adultos la cin&eacute;tica para producir anticuerpos IgA espec&iacute;ficos despu&eacute;s de una infecci&oacute;n aguda, parece seguir un curso similar al de la producci&oacute;n de anticuerpos IgM descubiertos por ISAGA y ELISA. No se ha demostrado la confiabilidad de los kits comerciales. La detecci&oacute;n de IgA parece ser m&aacute;s sensible que la de IgM para el diagn&oacute;stico de TC, tanto en fetos como en reci&eacute;n nacidos. En algunos casos de reci&eacute;n nacidos con TC y anticuerpos IgM negativos, el diagn&oacute;stico serol&oacute;gico se ha establecido por la presencia de anticuerpos IgA y la persistencia de IgG hasta el a&ntilde;o de vida postnatal (19,48). Cuando los t&iacute;tulos de un reci&eacute;n nacido son positivos en una mujer con IgA positiva se recomienda repetirle los t&iacute;tulos al reci&eacute;n nacido a los 10 d&iacute;as. Si persisten positivos se confirma la infecci&oacute;n neonatal (19,48).</p>     <p align="justify"><b>Anticuerpos IgE.</b> Los anticuerpos IgE son detectables por ELISA en el suero de adultos infectados, en ni&ntilde;os con infecci&oacute;n cong&eacute;nita y en ni&ntilde;os con coriorretinitis por toxoplasma. Su cuantificaci&oacute;n no parece ser particularmente &uacute;til para el diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n por T. gondii en el feto o en el reci&eacute;n nacido cuando se compara con la prueba de IgA. La duraci&oacute;n de la seropositividad es m&aacute;s corta que con los IgA o IgM. Cuando se utiliza junto con la medici&oacute;n de IgA e IgM, es de gran ayuda para determinar si un adulto adquiri&oacute; la infecci&oacute;n en fecha cercana. Es poco sensible, pero muy espec&iacute;fica. No est&aacute; disponible comercialmente sino en centros de referencia (19,48).</p>     <p align="justify"><b>Prueba de aglutinaci&oacute;n diferencial (AC/HS) de IgG.</b> En esta prueba, los taquizo&iacute;tos vivos se someten a formalina a fin de obtener el ant&iacute;geno HS, y otros taquizo&iacute;tos se someten a la acci&oacute;n de acetona para conseguir el ant&iacute;geno AC. Los tratados con formalina (HS) tienen preferencia por anticuerpos presentes cuando la infecci&oacute;n lleva ya varios meses; y los tratados con acetona-metanol (AC) reaccionan de modo principal con anticuerpos producidos en la infecci&oacute;n aguda. As&iacute;, esta prueba ayuda a determinar el tiempo de evoluci&oacute;n de las infecciones. Seg&uacute;n la presencia de estos anticuerpos se puede definir un patr&oacute;n agudo, y un patr&oacute;n no agudo. Casi siempre esta transici&oacute;n habla de una infecci&oacute;n que ocurri&oacute; varios meses atr&aacute;s. Es especialmente &uacute;til cuando el resultado es compatible con cronicidad y cuando se usa en conjunto con otras pruebas (49). No est&aacute; disponible en el comercio para su uso, y s&oacute;lo la hacen laboratorios de referencia (Palo Alto Medical Foundation, Toxoplasmosis Serology laboratory <a href="http://www.pamf.org/serology/">www.pamf.org/serology</a>).</p>     <p align="justify"><b>Prueba de avidez de IgG.</b> Hace poco se desarrollaron pruebas de avidez de anticuerpos IgG para ayudar a diferenciar las infecciones adquiridas recientemente de las cr&oacute;nicas (51). Se realiza al medir la afinidad (avidez) de la IgG por su ant&iacute;geno. Durante la fase inicial de la infecci&oacute;n, la producci&oacute;n de estos anticuerpos muestra una afinidad baja por su ant&iacute;geno, pero a medida que transcurre el tiempo aumenta en forma progresiva. Los estudios sobre la cin&eacute;tica de la avidez de los anticuerpos IgG en mujeres gestantes en quienes la seroconversi&oacute;n ocurri&oacute; durante el embarazo mostraron, que aquellas con resultados de avidez alta hab&iacute;an sido infectadas hac&iacute;a de 3 a 5 meses. Debido a que una avidez baja puede permanecer por varios meses, la baja avidez no indica de necesidad una infecci&oacute;n reciente.</p>     <p align="justify">Esta prueba se utiliza en mujeres con IgG e IgM positivas durante la primera mitad del embarazo. Como se desea conocer si la infecci&oacute;n sucedi&oacute; antes o durante el embarazo, una prueba de avidez alta (&gt;30%) puede sugerir que la infecci&oacute;n aguda ocurri&oacute; m&iacute;nimo 3 &oacute; 5 meses atr&aacute;s (50-52) lo que descarta la posibilidad de infecci&oacute;n durante el embarazo. Una prueba de avidez baja (&lt;20%) por el contrario podr&iacute;a sugerir una infecci&oacute;n reciente. Sin embargo, hay pacientes que pueden persistir con avidez baja durante muchos meses.</p>     <p align="justify">Resumiendo el resultado de la prueba de avidez: si es alta (&gt;30) descarta una infecci&oacute;n prenatal reciente (&lt;16 semanas), pero una baja avidez no confirma siempre una infecci&oacute;n aguda. En el <a href="#c2">Cuadro 2</a> hay un resumen de las pruebas disponibles comercialmente en Colombia.</p>     <p align="center"><a name="c2"></a><img src="/img/revistas/cm/v38n3/v38n3a14c2.jpg"></p>     <p align="justify"><b>DIAGN&Oacute;STICO PRENATAL DE LA INFECCI&Oacute;N FETAL</b></p>     <p align="justify">Una vez establecido el diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n aguda adquirida durante el embarazo, se deben realizar esfuerzos diagn&oacute;sticos con el fin de establecer si el feto est&aacute; infectado. Existen diferentes m&eacute;todos para alcanzar este diagn&oacute;stico:</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Reacci&oacute;n en cadena de polimerasa (PCR).</b> Esta t&eacute;cnica molecular ha revolucionado el diagn&oacute;stico prenatal de la toxoplasmosis al permitir un diagn&oacute;stico temprano (50,53-56). Se efect&uacute;a en el l&iacute;quido amni&oacute;tico obtenido por amniocentesis casi siempre despu&eacute;s de la semana 18 de gestaci&oacute;n. La PCR en el l&iacute;quido amni&oacute;tico tiene una sensibilidad alrededor de 64% (IC 95% 53.1%-74.9%) y un valor predictivo negativo de 87.8% (IC 95% 83.5%-92.1%), mientras que su especificidad y valor predictivo positivo es de casi 100% (IC 95% 98%-100%) respectivamente (53). La sensibilidad de esta prueba var&iacute;a seg&uacute;n la edad gestacional en la que la madre adquiere la infecci&oacute;n (50,54). La sensibilidad es baja si la infecci&oacute;n aguda sucede entre las semanas 4 a 16 (42.9%, IC 95%: 17%-68%), aumenta si ocurre entre las semanas 17 a 21 (92.9% IC 95% 67.9%-98.8%), y disminuye si tiene lugar despu&eacute;s de la semana 22 de gravidez (61.7% IC 95%: 47.8%-75.6%) (<a href="#g4">Gr&aacute;fica 4</a>).</p>     <p align="center"><a name="g4"></a><img src="/img/revistas/cm/v38n3/v38n3a14g4.jpg"></p>     <p align="justify">La baja sensibilidad de PCR durante la infecci&oacute;n en el primer trimestre podr&iacute;a explicarse por las limitaciones para obtener suficientes c&eacute;lulas fetales que albergan el par&aacute;sito (situaci&oacute;n semejante acontece con el cariotipo del l&iacute;quido amni&oacute;tico). Las explicaciones adicionales podr&iacute;an relacionarse con el momento de la amniocentesis: si se hace muy temprano (poco tiempo despu&eacute;s de la infecci&oacute;n materna) todav&iacute;a no ha ocurrido la infecci&oacute;n fetal, o por el contrario si es muy tard&iacute;a (por ejemplo: seroconversi&oacute;n a la semana 8, y la amniocentesis hasta la semana 22 &oacute; despu&eacute;s), es posible ya no encontrar el par&aacute;sito en el l&iacute;quido amni&oacute;tico por el tiempo trascurrido.</p>     <p align="justify">En las infecciones agudas durante el tercer trimestre, la baja sensibilidad se puede explicar porque el feto se defiende mejor y limita las cantidades de par&aacute;sitos que llegan al l&iacute;quido amni&oacute;tico, y por tanto podr&iacute;an no ser detectados. Los estudios recientes parecen demostrar la utilidad de PCR cuantitativa para determinar el pron&oacute;stico de la severidad en la infecci&oacute;n fetal.</p>     <p align="justify">En un estudio de fetos con infecci&oacute;n antes de la semana 20, una concentraci&oacute;n mayor de 100 par&aacute;sitos/ml predec&iacute;a infecci&oacute;n severa en todos los fetos. Si la concentraci&oacute;n era menor 100/ml, el riesgo de compromiso era muy bajo. Este efecto de la concentraci&oacute;n del par&aacute;sito parece ser independiente de la edad gestacional cuando se infect&oacute; la gestante (54). En resumen, una PCR positiva confirma la infecci&oacute;n fetal a cualquier edad gestacional pero una PCR negativa no la descarta, en especial en infecciones agudas adquiridas en la segunda mitad del embarazo donde el riesgo de transmisi&oacute;n materno-fetal es mayor.</p>     <p align="justify">Aislamiento del T. gondii. El l&iacute;quido amni&oacute;tico se debe usar tambi&eacute;n para intentar el aislamiento del par&aacute;sito. Se inyecta el l&iacute;quido en la cavidad peritoneal de ratones o se siembra en cultivos celulares. Cualquiera de las dos pruebas positiva es diagn&oacute;stica de infecci&oacute;n fetal (41).</p>     <p align="justify">Diagn&oacute;stico histol&oacute;gico. La demostraci&oacute;n de quistes tisulares o raramente de taquizo&iacute;tos en tejido o extendido de fluidos corporales fetales o placentarios establece el diagn&oacute;stico de una infecci&oacute;n cong&eacute;nita. Usualmente es dif&iacute;cil demostrar los taquizo&iacute;tos en piezas de tejido con tinci&oacute;n convencional. La t&eacute;cnica de inmunoperoxidasa, ha probado ser sensible y espec&iacute;fica para demostrar los quistes titulares (41).</p>     <p align="justify">Otras anormalidades de laboratorio. Otras anormalidades encontradas en fetos y reci&eacute;n nacidos con TC son la elevaci&oacute;n de g-glutamiltransferasa, el aumento de la concentraci&oacute;n total de IgM, eosinofilia y trombocitopenia, sin embargo no son espec&iacute;ficas.</p>     <p align="justify">Ecograf&iacute;a fetal. El hallazgo m&aacute;s com&uacute;n es la dilataci&oacute;n de los ventr&iacute;culos laterales, casi siempre bilateral y sim&eacute;trica (57,58). La hidrocefalia se puede desarrollar con rapidez, por esto en Francia las autoridades recomiendan ex&aacute;menes ecogr&aacute;ficos mensuales en caso que la ecograf&iacute;a inicial no revele alteraci&oacute;n alguna. Otras anormalidades en la ecograf&iacute;a son aumento del grosor placentario, hepatomegalia y ascitis. La hidrocefalia con calcificaciones intracraneanas es caracter&iacute;stica, pero no patognom&oacute;nica de TC, por lo que se requiere complementar este hallazgo con ex&aacute;menes serol&oacute;gicos a la madre.</p>     <p align="justify">La hidrocefalia en un feto cuya madre tiene una toxoplasmosis aguda es un signo de mal pron&oacute;stico. Las calcificaciones sin hidrocefalia no son un signo tan ominoso pero implicar&iacute;an un seguimiento ecogr&aacute;fico estricto con el &aacute;nimo de descubrir la hidrocefalia precoz (57).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Tratamiento de la infecci&oacute;n por T. gondii en la embarazada. El tratamiento de la infecci&oacute;n en la mujer embarazada no es necesario para ella. Se administra para prevenir y/o tratar la infecci&oacute;n por T. gondii del feto. Este tratamiento a la mujer embarazada con infecci&oacute;n por toxoplasma podr&iacute;a reducir la incidencia y severidad de la infecci&oacute;n fetal (59).</p>     <p align="justify">Cuando la infecci&oacute;n materna ocurre antes de las semanas 18-24 se inicia espiramicina por v&iacute;a oral. Esta terapia se debe continuar hasta que se obtengan los resultados serol&oacute;gicos que confirman infecci&oacute;n aguda y los resultados de la PCR en l&iacute;quido amni&oacute;tico (19,32).</p>     <p align="justify">Si existe una alta sospecha de infecci&oacute;n aguda en la madre y la PCR es negativa, se recomienda continuar el tratamiento con espiramicina durante todo el embarazo combinada con seguimiento de ecograf&iacute;a fetal, as&iacute; como seguimiento postnatal del ni&ntilde;o. La explicaci&oacute;n es que puede ser un falso negativo de PCR, o el feto no haberse infectado aun, pero estar&iacute;a a riesgo de infectarse durante el resto del embarazo (por infecci&oacute;n de la placenta) (19,54,58).</p>     <p align="justify">Si el feto esta infectado (PCR positiva) se cambia el tratamiento a pirimetamina/sulfadiazina m&aacute;s &aacute;cido fol&iacute;nico. Los estudios en Francia han establecido que el tratamiento con pirimetamina/sulfadiazina es m&aacute;s efectivo que la espiramicina en los casos de infecci&oacute;n confirmada en el feto. Este manejo se debe seguir hasta el t&eacute;rmino del embarazo (<a href="#c3">Cuadro 3</a>). Se recomienda el uso de &aacute;cido fol&iacute;nico para reducir la supresi&oacute;n de m&eacute;dula &oacute;sea asociada con la terapia pirimetamina/sulfadiazina. No se debe usar &aacute;cido f&oacute;lico, porque interfiere con la efectividad de la primetamina (19). Cuando la infecci&oacute;n materna ocurre despu&eacute;s de la semana 24 se recomienda iniciar pirimetamina/sulfadiazina.</p>     <p align="center"><a name="c3"></a><img src="/img/revistas/cm/v38n3/v38n3a14c3.jpg"></p>     <p align="justify"><b>DESCRIPCI&Oacute;N BREVE DE LOS MEDICAMENTOS USADOS EN EL TRATAMIENTO MATERNO DE TC</b></p>     <p align="justify"><b>Espiramicina.</b> Antibi&oacute;tico que pertenece al grupo de los macr&oacute;lidos, se obtienen sus concentraciones mayores en tejidos que en suero. En la placenta, los niveles son varias veces mayores que en suero materno o fetal. En general durante la gestaci&oacute;n se tolera bien. Las indicaciones de la espiramicina durante el embarazo son:</p>     <p align="justify">1. Alta sospecha de infecci&oacute;n o infecci&oacute;n materna antes de la semana 18, cuando est&aacute; contraindicado el uso de pirimetamina.    <br> 2. Alta sospecha de infecci&oacute;n o infecciones ocurridas en la primera mitad del embarazo y cuando el diagn&oacute;stico prenatal con PCR ha sido negativo. La dosis usual es 1g (3 millones UI) cada 8 horas (dosis por d&iacute;a: 3 g/d&iacute;a &oacute; 9 millones UI/d&iacute;a). Se debe administrar con est&oacute;mago vac&iacute;o para mejor su absorci&oacute;n.</p>     <p align="justify">Pirimetamina es un inhibidor de la s&iacute;ntesis del &aacute;cido f&oacute;lico; que tambi&eacute;n se usa como antimal&aacute;rico contra Plasmodium falciparum. Tiene una vida media plasm&aacute;tica de 100 horas. Act&uacute;a en sinergia con la sulfadiazina contra el toxoplasma. Puede producir una depresi&oacute;n gradual y reversible de la m&eacute;dula &oacute;sea, con neutropenia pero tambi&eacute;n anemia y trombocitopenia. El &aacute;cido fol&iacute;nico (5-15 mg/d&iacute;a) previene estos efectos t&oacute;xicos sin inhibir la acci&oacute;n sobre el par&aacute;sito. Contrariamente, el &aacute;cido f&oacute;lico, s&iacute; inhibe la acci&oacute;n sobre el par&aacute;sito, raz&oacute;n por la cual se recomienda no administrarlo. Se debe vigilar la posible hematotoxicidad, y solicitar hemogramas seriados. Se ha descrito como teratog&eacute;nico en ratas, y podr&iacute;a serlo potencialmente en seres humanos. Por esta raz&oacute;n no se debe utilizar durante el primer trimestre de la gestaci&oacute;n (19). Dosis de carga: 50 mg cada 12 horas por dos d&iacute;as, y luego dosis de mantenimiento de 50 mg/d&iacute;a.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Sulfadiazina es la m&aacute;s estudiada de las sulfas en el tratamiento de la toxoplasmosis. Se han demostrado su efectividad y seguridad en el tratamiento de la infecci&oacute;n durante el embarazo, la ni&ntilde;ez, y en pacientes inmunocomprometidos. La efectividad de otras sulfas es variable. La sulfadoxina que acompa&ntilde;a a la pirimetamina en el Fancidar&reg; (que se usa como antimal&aacute;rico), se ha utilizado para el tratamiento de toxoplasmosis. Sin embargo, no se tiene mucha experiencia con su uso, en el especial durante el embarazo. Por las dosis altas en las tabletas y por la vida media larga de la sulfadozina, de haber efectos adversos, &eacute;stos ser&iacute;an de mayor duraci&oacute;n. Se puede presentar toxicidad hematol&oacute;gica, hep&aacute;tica, y dermatol&oacute;gica (se ha descrito necr&oacute;lisis epid&eacute;rmica t&oacute;xica). En algunas regiones del mundo se utiliza cada 7 &oacute; 15 d&iacute;as. Se considera que no hay suficiente evidencia con respecto a su seguridad para el uso prolongado durante el embarazo (19).</p>     <p align="justify">Dosis de sulfadiazina: carga 75 mg/kg/d&iacute;a por dos d&iacute;as y, luego dosis de mantenimiento de100 mg/kg/d&iacute;a, sin excederse de un m&aacute;ximo 4 g/d&iacute;a).</p>     <p align="justify">Las indicaciones de la combinaci&oacute;n de pirimetamina/sulfadiazina son</p>     <p align="justify">1. Sospecha o confirmaci&oacute;n de infecci&oacute;n aguda materna ocurrida en la segunda mitad del embarazo (por mayor riesgo de transmisi&oacute;n y mayor efectividad que espiramicina).    <br> 2. Embarazadas en quienes la ecograf&iacute;a fetal es altamente sugestiva de TC y las pruebas serol&oacute;gicas confirman la sospecha de infecci&oacute;n adquirida durante el embarazo.    <br> 3. Embarazadas con l&iacute;quido amni&oacute;tico positivo para PCR. Es importante recordar que se debe administrar esta combinaci&oacute;n despu&eacute;s de la semana 18 de gestaci&oacute;n.</p>     <p align="justify"><b>EVALUACI&Oacute;N DEL RECI&Eacute;N NACIDO CUYA MADRE HIZO SEROCONVERSI&Oacute;N DURANTE EL EMBARAZO</b></p>     <p align="justify">Se debe evaluar a todo reci&eacute;n nacido de madre que haya hecho infecci&oacute;n aguda en el embarazo, independientemente de la edad gestacional de la infecci&oacute;n materna, del manejo terap&eacute;utico que se haya seguido durante el embarazo, o de la edad gestacional al nacimiento (19).</p>     <p align="justify">Una prueba de IgG positiva aislada no se ha de considerar como diagn&oacute;stica, pues puede serlo debido al paso pasivo de anticuerpos maternos. Si unas pruebas IgM o IgA son positivas al nacer, sugieren mucho una infecci&oacute;n cong&eacute;nita. Sin embargo, se deben repetir a los 10-15 d&iacute;as para descartar falsos positivos (debidos a transfusiones). El resultado positivo continuo de estas pruebas es diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n cong&eacute;nita.</p>     <p align="justify">Si se a&iacute;sla el par&aacute;sito de la placenta, esto podr&iacute;a sugerir altamente la posibilidad que el reci&eacute;n nacido ha sido infectado. Se pueden hacer diversas pruebas como PCR en sangre, LCR y orina que son diagn&oacute;sticas de infecci&oacute;n fetal. Otras pruebas m&aacute;s complejas o especializadas como cultivo de sangre de cord&oacute;n y de placenta, ya sea con inoculaci&oacute;n en rat&oacute;n o en cultivos tisulares est&aacute;n disponibles en laboratorios de referencia.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Se debe siempre descartar compromiso del sistema nervioso central con examen del l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo y con im&aacute;genes como tomograf&iacute;a computadorizada del cerebro. La valoraci&oacute;n oftalmol&oacute;gica se debe efectuar precozmente para eliminar la posibilidad de da&ntilde;os oculares.</p>     <p align="justify">El seguimiento serol&oacute;gico se debe hacer con IgG cada 6 semanas hasta que se vuelva negativo o hasta el a&ntilde;o. El tipo m&aacute;s aceptado de diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n cong&eacute;nita es la persistencia de t&iacute;tulos positivos de IgG despu&eacute;s del a&ntilde;o de vida. Si no hay infecci&oacute;n la IgG es negativa al a&ntilde;o de edad (casi siempre se hace negativa hacia los 6 meses) (19).</p>     <p align="justify"><b>TRATAMIENTO DEL RECI&Eacute;N NACIDO</b></p>     <p align="justify">Para decidir el tratamiento o no de los reci&eacute;n nacidos, se debe establecer en cu&aacute;l de las siguientes categor&iacute;as est&aacute; el neonato:</p>     <p align="justify">1. Reci&eacute;n nacido con TC, con hallazgos cl&iacute;nicos y de laboratorio que la confirman. Estos ni&ntilde;os requieren tratamiento.    <br> 2. Reci&eacute;n nacido cuya madre sufri&oacute; infecci&oacute;n aguda durante el embarazo, y recibi&oacute; tratamiento desde el momento del diagn&oacute;stico, y no presenta signos cl&iacute;nicos de infecci&oacute;n y los ex&aacute;menes no demostraron infecci&oacute;n fetal (PCR negativa en l&iacute;quido amni&oacute;tico). Esto es, sin hallazgos al examen f&iacute;sico (incluye examen oftalmol&oacute;gico hecho por un oftalm&oacute;logo pediatra con experiencia), ni de laboratorio (IgM, IgA, cultivo de placenta, cultivo de sangre de cord&oacute;n, PCR en sangre perif&eacute;rica, ecograf&iacute;a o escanograf&iacute;a de SNC, etc.). Probablemente no requiere tratamiento. Debe hacerse seguimiento cuidadoso de la IgG y cl&iacute;nico hasta que desaparezca para confirmar la ausencia de infecci&oacute;n.    <br> 3. Reci&eacute;n nacido cuya madre sufri&oacute; infecci&oacute;n aguda durante el embarazo. No se hizo amniocentesis. Con o sin tratamiento durante el embarazo. Ex&aacute;menes neonatales todos negativos. Es probable que no necesite terapia,pero es imperioso el seguimiento de la IgG.    <br> 4. Reci&eacute;n nacido cuya madre sufri&oacute; infecci&oacute;n aguda durante el embarazo y los ex&aacute;menes mostraron infecci&oacute;n fetal. La madre recibi&oacute; tratamiento. Est&aacute; sin signos cl&iacute;nicos ni paracl&iacute;nicos de la infecci&oacute;n (cultivo de placenta, IgM del reci&eacute;n nacido, etc., todos negativos). Conducta recomendada. Podr&iacute;a ser que el tratamiento fue efectivo, y lo cur&oacute; in &uacute;tero, o que los ex&aacute;menes que mostraron infecci&oacute;n fetal fueron falsamente positivos (raro), o que la infecci&oacute;n neonatal existe pero no se puede demostrar porque es leve, subcl&iacute;nica y el tratamiento reduce la respuesta de anticuerpos. Adem&aacute;s, la capacidad de aislar el par&aacute;sito es relativamente baja. El riesgo de no tratarlo es que se reactive una infecci&oacute;n que el tratamiento in utero la volvi&oacute; latente. Se requiere seguimiento de la IgG.</p>     <p align="justify">Se debe tratar al reci&eacute;n nacido con TC durante un a&ntilde;o, as&iacute; sea la infecci&oacute;n subcl&iacute;nica. El tratamiento m&aacute;s utilizado es la combinaci&oacute;n de pirimetamina y sulfadiazina, m&aacute;s el &aacute;cido fol&iacute;nico para evitar los efectos t&oacute;xicos de la pirimetamina (19). En el <a href="#c4">Cuadro 4</a> se resume el tratamiento al ni&ntilde;o con infecci&oacute;n cong&eacute;nita.</p>     <p align="center"><a name="c4"></a><img src="/img/revistas/cm/v38n3/v38n3a14c4.jpg"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">En algunos estudios se pudo demostrar que el da&ntilde;o neurol&oacute;gico y las secuelas oculares son menos severos en los ni&ntilde;os a quienes se trat&oacute; por un a&ntilde;o, en comparaci&oacute;n con los que no recibieron ning&uacute;n tratamiento o fueron tratados s&oacute;lo por un mes despu&eacute;s de nacer (19,38,39).</p>     <p align="justify"><b>TC EN EMBARAZADAS CON INFECCI&Oacute;N POR VIH</b></p>     <p align="justify">La TC en el infante VIH(+) parece presentar un curso mucho m&aacute;s r&aacute;pido en comparaci&oacute;n con los ni&ntilde;os sin infecci&oacute;n por VIH, pues hay falla en el crecimiento, fiebre, hepatoesplenomegalia, coriorretinitis y convulsiones. La mayor&iacute;a de estos ni&ntilde;os padece alteraciones multiorg&aacute;nicas, incluyendo SNC, enfermedades card&iacute;acas y pulmonares (60). La infecci&oacute;n con T. gondii adquirida antes del embarazo no ofrece riesgo cuando la madre es inmunocompetente. En contraste, debido a las profundas deficiencias inmunol&oacute;gicas, la infecci&oacute;n cr&oacute;nica por T. gondii (latente) de una mujer embarazada y coinfectada con VIH (sobre todo si ha desarrollado SIDA) puede reactivarse. Puede resultar en un estado que comprometa la vida de la mujer, o en la transmisi&oacute;n de la infecci&oacute;n por T. gondii y/o VIH al feto. Si la madre es seronegativa para T. gondii, el riesgo est&aacute; en la infecci&oacute;n aguda, con sus consecuencias en el feto. Si es seropositiva para T. gondii, entonces el riesgo est&aacute; en la reactivaci&oacute;n de la infecci&oacute;n y su transmisi&oacute;n cong&eacute;nita (36,60).</p>     <p align="justify">La PCR en l&iacute;quido amni&oacute;tico para hacer el diagn&oacute;stico prenatal de TC no se recomienda en estas pacientes por el posible riesgo de facilitar la transmisi&oacute;n del virus del VIH al feto por el procedimiento.</p>     <p align="justify"><b>PREVENCI&Oacute;N DE LA INFECCI&Oacute;N CONG&Eacute;NITA POR T. gondii</b></p>     <p align="justify"><b>Prevenci&oacute;n primaria.</b> Se han hecho peque&ntilde;os esfuerzos para estudiar la prevenci&oacute;n primaria durante el embarazo. El desconocimiento de los factores de riesgo de transmisi&oacute;n para la embarazada es com&uacute;n y lo puede ser aun para el equipo de salud (62,63). La prevenci&oacute;n primaria consiste en evitar la infecci&oacute;n en la gestante seronegativa. Se debe educar a la embarazada sobre los modos de adquisici&oacute;n de la enfermedad y c&oacute;mo prevenirlos. Se debe recomendar evitar el consumo de carnes crudas o curadas o mal cocidas de animales infectados. Se debe advertir que la manipulaci&oacute;n de la carne cruda tambi&eacute;n puede aumentar el riesgo de infecci&oacute;n y mientras se cocina se debe evitar comer. Se deben lavar las superficies y utensilios que estuvieron en contacto con los alimentos crudos. Se debe tener cuidado con alimentos crudos (como frutas y verduras) que puedan estar contaminados con tierra o lavados con aguas no tratadas, que pudiesen tener ooquistes. La ingesti&oacute;n de aguas no tratadas tambi&eacute;n es un importante factor de riesgo para adquirir la infecci&oacute;n (17,18,61). El ser vegetariano tampoco elimina el riesgo, porque s&oacute;lo se elimina el riesgo atribuible a la carne, mas no los otros factores de riesgo. Probablemente alimentarse con pollo y pescado sea menos riesgoso que hacerlo con carnes rojas. Si tiene contacto con tierra o con arena (por ejemplo cuando se hace jardiner&iacute;a) se deben usar guantes, abstenerse de comer mientras lo hacen y lavarse las manos despu&eacute;s. Si hay contacto con gatos se debe evitar el contacto con sus heces; de ser necesario se deben usar guantes y lavarse las manos despu&eacute;s. El sitio donde los gatos hacen sus deposiciones se debe lavar a diario con agua hirviente (<a href="#c5">Cuadro 5</a>).</p>     <p align="center"><a name="c5"></a><img src="/img/revistas/cm/v38n3/v38n3a14c5.jpg"></p>     <p align="justify">En un estudio belga, la estrategia educativa de promoci&oacute;n fue efectiva. Sin embargo, esta estrategia no reca&iacute;a solamente en el m&eacute;dico, sino en gu&iacute;as que eran repetidas en las clases antenatales y en la informaci&oacute;n escrita (64).    <br>    <br> En un reciente estudio sobre percepci&oacute;n del riesgo en embarazadas en Cali, Colombia, el grupo encontr&oacute; que 50% de las mujeres no hab&iacute;an o&iacute;do sobre la toxoplasmosis. De las mujeres restantes que s&iacute; hab&iacute;an escuchado, s&oacute;lo 45% pudieron nombrar por lo menos una forma v&aacute;lida de prevenir la infecci&oacute;n durante el embarazo (78). Los trabajadores de la salud deben responsabilizarse de la educaci&oacute;n a la madre gestante para prevenir la infecci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Prevenci&oacute;n secundaria.</b> La prevenci&oacute;n secundaria consiste en la estrategia de hacer diagn&oacute;stico temprano a la madre y al feto, dar un tratamiento adecuado para disminuir incidencia, severidad y secuelas de la infecci&oacute;n fetal y neonatal.</p>     <p align="justify">No existe consenso con respecto a las estrategias de prevenci&oacute;n de la TC en el mundo (65,73). Hay dos estrategias vigentes en la prevenci&oacute;n secundaria: la prenatal y la post natal.</p>     <p align="justify"><b>Estrategia prenatal.</b> La estrategia prenatal se basa en hacer una tamizaci&oacute;n inicial a las embarazadas susceptibles y buscar un diagn&oacute;stico temprano de infecci&oacute;n aguda durante el embarazo. Si se descubre temprano la infecci&oacute;n, se puede iniciar una terapia precoz en las gestantes infectadas para evitar la transmisi&oacute;n y el posible da&ntilde;o al feto (<a href="#f1">Figura 1</a>).</p>     <p align="center"><a name="f1"></a> <img src="/img/revistas/cm/v38n3/v38n3a14f1.jpg">    <br> <img src="/img/revistas/cm/v38n3/v38n3a14f1A.jpg"></p>     <p align="justify">Un programa de tamizaci&oacute;n prenatal casi siempre funciona de la siguiente manera:</p>     <p align="justify">1. Evaluaci&oacute;n preconcepcional. Se solicita IgG para conocer el estado de inmunidad (infecci&oacute;n pasada), o susceptibilidad (seronegativas) a la infecci&oacute;n por T. gondii.    <br> 2. Durante el embarazo. Se inicia el filtro serol&oacute;gico con IgG e IgM, de forma temprana (antes de la semana 20). Si una mujer susceptible (IgG negativa) seroconvierte (IgG positiva) es indicativo de infecci&oacute;n aguda. Si la IgM es negativa indica que la infecci&oacute;n ocurri&oacute; antes de la concepci&oacute;n. Si la IgM es positiva, orienta a una infecci&oacute;n reciente, pero es dif&iacute;cil saber si ocurri&oacute; antes o despu&eacute;s de la concepci&oacute;n. Por tanto se requieren pruebas complementarias en un laboratorio de referencia.</p>     <p align="justify">Estas pruebas son: avidez, aglutinaci&oacute;n diferencial (AC/HS), IgA, IgM-ISAGA (inmunoensayo m&aacute;s espec&iacute;fico). Con ellas se seleccionan a qu&eacute; pacientes no se les puede descartar una infecci&oacute;n aguda y cu&aacute;les necesitan ex&aacute;menes para evaluar la posible infecci&oacute;n fetal. Tener un laboratorio de referencia para el estudio de sueros positivos con IgM es b&aacute;sico para esta estrategia preventiva, y no poder disponer de las pruebas complementarias, hace menos viable la estrategia prenatal.</p>     <p align="justify">Un escenario auxiliar, es tener en el momento de la tamizaci&oacute;n unas pruebas IgG negativa e IgM positiva. Las posibilidades para explicar este hallazgo son, falso negativo, o infecci&oacute;n muy temprana, donde todav&iacute;a no hay una respuesta IgG. Para descartar estas opciones, se debe repetir la prueba de IgG a las tres semanas. Si la IgG contin&uacute;a negativa, se trataba de un falso positivo de la IgM, y si se vuelve positiva es una seroconversi&oacute;n aguda que indica una infecci&oacute;n muy reciente. En este &uacute;ltimo caso no se requieren pruebas serol&oacute;gicas complementarias, y estar&iacute;a indicado iniciar los estudios para descartar una infecci&oacute;n fetal.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">En Francia, se practica tamizaci&oacute;n mensual a las embarazadas seronegativas para demostrar infecciones agudas por la seroconversi&oacute;n. Se inicia tratamiento con espiramicina en caso de que ocurra, se realiza amniocentesis para el diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n fetal. Si &eacute;sta se confirma, se cambia a pirimetamina/sulfadiazina (19). Los estudios de las observaciones muestran descenso en la incidencia de la infecci&oacute;n cong&eacute;nita, y sobre todo de la severidad de la TC (19,71). Pa&iacute;ses como Austria, tambi&eacute;n tienen estos programas, pero la tamizaci&oacute;n serol&oacute;gica var&iacute;a, pues se hace por trimestre.</p>     <p align="justify">En otros pa&iacute;ses del mundo, incluyendo a EEUU y Colombia, no se ha adoptado como estrategia universal por diferentes razones. Muchos pa&iacute;ses no han evaluado el verdadero impacto de la enfermedad en la poblaci&oacute;n, y no han decidido ninguna acci&oacute;n al respecto. En los pa&iacute;ses desarrollados (como EEUU) la prevalencia de toxoplasmosis ha disminuido, y establecer un programa para descubrir la enfermedad, podr&iacute;a carecer de efectividad por el costo. En los pa&iacute;ses en v&iacute;as de desarrollo, con tal vez una mayor prevalencia, no se conoce el impacto de la infecci&oacute;n en los habitantes. Ciertas naciones no tienen el presupuesto para ejecutar el programa, o hay otras enfermedades m&aacute;s comunes, o con intervenciones m&aacute;s costo-efectivas sin resolver. En ausencia de estas pol&iacute;ticas de salud p&uacute;blica, las soluciones se dejan a la libre decisi&oacute;n de los m&eacute;dicos y las embarazadas. Este es el caso de Colombia, donde se sospecha que el impacto de la enfermedad es grande, pero no se ha tomado ninguna estrategia de salud p&uacute;blica para su control (1,27,33).</p>     <p align="justify">En los &uacute;ltimos a&ntilde;os, el grupo de estudio europeo EMSCOT (European Multicenter Study on Congenital Toxoplasmosis) ha publicado algunos art&iacute;culos de observaciones y sugiere que el tratamiento con espiramicina durante el embarazo, no tiene la suficiente efectividad para disminuir la transmisi&oacute;n vertical (66-68). Sin embargo, estos investigadores aceptan que tampoco se puede descartar por completo el beneficio del tratamiento, en especial de la pirimetamina-sulfadiazina.</p>     <p align="justify">Estos estudios tienen limitaciones en su dise&ntilde;o, por ejemplo, bajo poder en el tama&ntilde;o de la muestra para encontrar diferencias significativas, sesgos al seleccionar las mujeres embarazadas, variabilidad en los m&eacute;todos diagn&oacute;sticos de la infecci&oacute;n aguda, dificultad para determinar el tiempo de seroconversi&oacute;n materna, fallas en monitorizar la adherencia al tratamiento, entre otras (69,70). Adem&aacute;s, errores de clasificaci&oacute;n diferencial de los ni&ntilde;os al nacer, el corto tiempo de seguimiento y la p&eacute;rdida de seguimiento de estos ni&ntilde;os tambi&eacute;n influyen en los resultados en cuanto a la infecci&oacute;n cong&eacute;nita de los ni&ntilde;os (69,70). Hace poco, este mismo grupo EMSCOT publica un estudio para informar una disminuci&oacute;n significativa del riesgo (72%) de lesiones intracraneales en los casos donde el tratamiento prenatal se inici&oacute; temprano (en las primeras 4 semanas de la seroconversi&oacute;n) al ser comparado con los que no recibieron tratamiento (76). Un reciente meta-an&aacute;lisis (77) de estos estudios observacionales sugieren que el tratamiento temprano durante el embarazo (en las primeras 3 semanas de la servoconversi&oacute;n materna) reducen la transmisi&oacute;n materno fetal.</p>     <p align="justify">A pesar de los problemas metodol&oacute;gicos en el dise&ntilde;o y an&aacute;lisis de los resultados, estos estudios crean dudas que dificultan adoptar estrategias para otras regiones del mundo (19,69). La limitaci&oacute;n que tienen los estudios de observaciones existentes y la falta de ensayos cl&iacute;nicos controlados, hacen imposible modificar las recomendaciones actuales. Las revisiones sistem&aacute;ticas al respecto tampoco han podido resolver este dilema (73). La clara demostraci&oacute;n del efecto del tratamiento prenatal parece que s&oacute;lo es posible a trav&eacute;s de un ensayo cl&iacute;nico aleatorio multic&eacute;ntrico (69,70,77).</p>     <p align="justify"><b>Estrategia postnatal.</b> Pa&iacute;ses como Dinamarca, Suecia y ciertas provincias como Poznam en Polonia, y el estado de Massachussets en EEUU, hacen tamizaci&oacute;n al reci&eacute;n nacido. Argumentan que vista la baja incidencia de la infecci&oacute;n y como la mayor&iacute;a de los ni&ntilde;os que nacen tienen infecci&oacute;n subcl&iacute;nica, es m&aacute;s costo efectivo la estrategia de tamizaje y el tratamiento postnatal. Pero argumentan tambi&eacute;n que no hacer el diagn&oacute;stico al reci&eacute;n nacido y dejarlo sin tratamiento lo llevar&iacute;a a la aparici&oacute;n tard&iacute;a de secuelas oculares o neurol&oacute;gicas.</p>     <p align="justify">Es importante anotar que pese a una baja incidencia, la toxoplasmosis es igual o m&aacute;s frecuente que otras enfermedades que se tamizan en los reci&eacute;n nacidos como la fenilcetonuria o el hipotiroidismo cong&eacute;nito (74).</p>     <p align="justify">El seguimiento de estos ni&ntilde;os con infecci&oacute;n cong&eacute;nita asintom&aacute;tica o leve (con cualquiera de las estrategias) ha sido favorable, pues parece que a los tres a&ntilde;os de edad el desarrollo neurol&oacute;gico es semejante al de los ni&ntilde;os sin esta infecci&oacute;n (75,79). En ni&ntilde;os m&aacute;s sintom&aacute;ticos, el tratamiento postnatal por un a&ntilde;o disminuye las secuelas neurol&oacute;gicas, sensoriales y la recurrencia de enfermedad ocular (79). Estos hallazgos refuerzan la importancia de descubrir y tratar a los ni&ntilde;os con TC.</p>     <p align="justify">Por todo lo anterior, en sitios donde en la actualidad no hay una pol&iacute;tica de salud p&uacute;blica al respecto, la escogencia de una u otra estrategia debe hacerse en el contexto de estudios de investigaci&oacute;n (70,73). Los presentes autores consideran que Colombia tiene que efectuar estudios para evaluar el verdadero impacto de esta enfermedad, y con esa base, decidir qu&eacute; estrategias favorecer&iacute;an m&aacute;s a su poblaci&oacute;n.</p>     <p align="justify"><b>CONCLUSIONES</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La toxoplasmosis durante el embarazo y su consecuencia, la TC, sigue siendo un problema desafiante para los equipos de salud que tienen a su cargo la atenci&oacute;n de las mujeres embarazadas y sus ni&ntilde;os alrededor del mundo.</p>     <p align="justify">El riesgo de TC est&aacute; determinado por el riesgo de infecci&oacute;n materna durante el embarazo y, el riesgo de transmisi&oacute;n materno-fetal seg&uacute;n la edad gestacional en la que ocurra la infecci&oacute;n de la madre. Actualmente hay disponibles varias t&eacute;cnicas serol&oacute;gicas de diagn&oacute;stico para el estudio de la infecci&oacute;n materna, as&iacute; como m&eacute;todos directos moleculares para diagnosticar la infecci&oacute;n fetal. La predicci&oacute;n del riesgo de TC deber&aacute; siempre combinar la exactitud de las pruebas diagn&oacute;sticas y el riesgo de transmisi&oacute;n materno-fetal.</p>     <p align="justify">La TC se considera una enfermedad prevenible con adecuada educaci&oacute;n antes y en la gravidez, como tambi&eacute;n por medio de un diagn&oacute;stico temprano de la infecci&oacute;n materna. Infortunadamente, casi todas las infecciones agudas durante el embarazo son asintom&aacute;ticas, y en muchos casos no se reconoce el posible factor de exposici&oacute;n. Por este motivo se ha establecido la tamizaci&oacute;n prenatal de rutina en algunos pa&iacute;ses con alta prevalencia de toxoplasmosis. En otros pa&iacute;ses con menor prevalencia, se han adoptado estrategias de tamizaje postnatal. Sin embargo, en muchas partes del mundo no se efect&uacute;a ning&uacute;n tipo de filtro como estrategia para prevenir la TC.</p>     <p align="justify">Las controversias sobre las ventajas y desventajas de ambas estrategias son tema actual de debate. Quiz&aacute; ser&aacute; necesario realizar un gran ensayo cl&iacute;nico aleatorio y comparar las estrategias prenatal y postnatal. Por el momento cada regi&oacute;n tendr&aacute; que enfrentar este problema de acuerdo con el impacto que sobre la salud tenga esta infecci&oacute;n parasitaria en su poblaci&oacute;n.</p>     <p align="justify">Por &uacute;ltimo, se deben tratar de disminuir las consecuencias de la TC en los ni&ntilde;os con el conocimiento actual, mientras se defina la estrategia preventiva m&aacute;s apropiada en el futuro.</p>     <p align="justify"><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p align="justify">A la Fundaci&oacute;n Cl&iacute;nica Valle del Lili por el soporte irrestricto con el que han apoyado al primer autor para su entrenamiento en enfermedades infecciosas en la Universidad de Stanford, California. Asimismo por el apoyo a los proyectos de investigaci&oacute;n en el &aacute;rea de toxoplasmosis realizados en la ciudad de Cali. A la Fundaci&oacute;n M&eacute;dica de Palo Alto, y al doctor Jack S. Remington por el apoyo sin descanso al avance en el estudio y diagn&oacute;stico de la toxoplasmosis.</p>     <p align="justify"><B>REFERENCIAS</b></p></font> <font face="Arial" size="-1">    <!-- ref --><p align="justify">1<a name="1"></a>. G&oacute;mez JE, Casta&ntilde;o JC, Montoya MT. Toxoplasmosis: Un problema de salud p&uacute;blica en Colombia. Colomb Med 1995; 26: 66-70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S1657-9534200700030001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 2<a name="2"></a>. Montoya JG, Liesenfeld O. Toxoplasmosis. Lancet 2004; 363: 1965-1976.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000192&pid=S1657-9534200700030001400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 3<a name="3"></a>.  Montoya JG, Kovacs J, Remington JS. Toxoplasma gondii. Chapter 276. En: Mandell GL, Dolin R (eds.). Mandel, Douglas, and Bennett's principles and practice of infectious diseases. 6th ed. Philadelphia: Elsevier Churchill Livingstone; 2005. p. 3170-3197.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000193&pid=S1657-9534200700030001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 4<a name="4"></a>. Dubey JP. Infectivity and pathogenicity of Toxoplasma gondii oocysts for cats. J Parasitol 1996; 82: 957-961.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000194&pid=S1657-9534200700030001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 5<a name="5"></a>. Howe DK, Sibley DL. Toxoplasma gondii comprises three clonal lineages: correlation of parasite genotype with human disease. J Infect Dis 1995; 172: 1561-1566.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S1657-9534200700030001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 6<a name="6"></a>. Ajzenberg D, Cogne N, Paris L, Bessi&egrave;res MH, Thulliez P, Filisetti D, et al. Genotype of 86 Toxoplasma gondii isolates associated with human congenital toxoplasmosis, and correlation with clinical findings. J Infect Dis 2002; 186: 684-689.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000196&pid=S1657-9534200700030001400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 7<a name="7"></a>. Grigg ME, Bonnefoy S, Hehl AB, Suzuki Y, Boothroyd JC. Success and virulence in Toxoplasma as the result of sexual recombination between two distinct ancestries. 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First biologic and genetic characterization of Toxoplasma gondii isolates from chickens from Africa (Democratic Republic of Congo, Mali, Burkina Faso, and Kenya). J Parasitol 2005; 91: 69-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000199&pid=S1657-9534200700030001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 10<a name="10"></a>. Dubley JP, Venturinini MC, Venturini L, Piscopo M, Graham DH, Dahl E, et al. Isolation and genotyping of Toxoplasma gondii from free-ranging chickens from Argentina. 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Dubey JR, G&oacute;mez-Mar&iacute;n JE, Bedoya LA, Lora F, Vianna MC, Hill D, et al. Genetic and biologic characteristics of Toxoplasma gondii isolates in free-range chickens from Colombia, South America. Vet Parasitol 2005: 134: 67-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000205&pid=S1657-9534200700030001400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 16<a name="16"></a>. Gallego C, Casta&ntilde;o JC, Giraldo A, Ajzenberg D, Dard&eacute; ML, G&oacute;mez JE. Molecular and biological characterization of the CIBMUQ/HDC strain, a reference strain for Colombian Toxoplasma gondii. 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Vogel N, Kirisits M, Michael E, Bach H, Hostetter M, Boyer K, et al. Congenital toxoplasmosis transmitted from an immunologically competent mother infected before conception. Clin Infect Dis 1996; 23: 1055-1060. <a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/sites/entrez?cmd=Retrieve&amp;db=PubMed&amp;list_uids=8922802&amp;dopt=Citation" style="color: rgb(0, 0, 0);"></a>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000210&pid=S1657-9534200700030001400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 21<a name="21"></a>. Cook AJ, Gilbert RE, Buffolano W, Zufferey J, Petersen E, Jenum PA, et al. Sources of toxoplasma infection in pregnant women: European multicentre case-control study. 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Boyer K, Holfels E, Roizen N, Swisher C, Mack D, Remington J, et al. Risk factors for Toxoplasma gondii infection in mothers of infants with congenital toxoplasmosis: Implications for prenatal management and screening. Am J Obstet Gynecol 2005; 192: 564-571.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000213&pid=S1657-9534200700030001400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 24<a name="24"></a>. Gilbert R. Epidemiology of infection in pregnant women. In: Ambroise-Thomas P, Petersen E (eds.). Congenital toxoplasmosis. Scientific background, clinical management and control. 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Guerina NHW, Hsu HW, Meissner HC, Maguire JH, Lynfield R, Stechenberg B, et al. Neonatal serologic screening and early treatment for congenital Toxoplasma gondii infection. N Engl J Med 1994: 330: 1858-1863.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000219&pid=S1657-9534200700030001400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 30<a name="30"></a>. Jenum PA, Stray-Pedersen B, Melby KK, Kapperud G, Whitelaw A, Eskild A, et al. Incidence of Toxoplasma gondii infection in 35,940 pregnant women in Norway and pregnancy outcome for infected women. J Clin Microbiol 1998; 36: 2900-2906.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000220&pid=S1657-9534200700030001400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 31<a name="31"></a>. Lebech M, Andersen O, Christensen NC, Hertel J, Nielsen HE, Peitersen B, et al. Feasibility of neonatal screening for toxoplasma infection in the absence of prenatal treatment. Lancet 1999; 353: 1834-1837.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000221&pid=S1657-9534200700030001400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 32<a name="32"></a>. Montoya JG, Rosso F. Diagnosis and management of toxoplasmosis. Clin Perinatol 2005; 32: 705-726.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000222&pid=S1657-9534200700030001400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 33<a name="33"></a>. Gallego-Mar&iacute;n C, Henao AC, G&oacute;mez-Mar&iacute;n JE. Clinical validation of a Western Blot assay for congenital toxoplasmosis and newborn screening in a hospital in Armenia (Quind&iacute;o) Colombia. J Trop Pediatr 2005; 52: 107-112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000223&pid=S1657-9534200700030001400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 34<a name="34"></a>. Dunn D, Wallon M, Peyron F, Petersen E, Peckham C, Gilbert R. Mother-to-child transmission of toxoplasmosis: risk estimates for clinical counseling. Lancet 1999; 353: 1829-1833.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000224&pid=S1657-9534200700030001400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 35<a name="35"></a>. Garweg JG, Scherrer J, Wallon M, Kodjikian L, Peyron F. Reactivation of ocular toxoplasmosis during pregnancy. BJOG 2005; 112: 241-242.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000225&pid=S1657-9534200700030001400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 36<a name="36"></a>. Dunn D, Gilbert R. Low risk of congenital toxoplasmosis in children born to women infected with human immunodeficiency virus. Pediatr Infect Dis J 1997; 16: 84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000226&pid=S1657-9534200700030001400036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 37<a name="37"></a>. Wilson CB, Remington JS, Stagno S, Reynolds DW. Development of adverse sequelae in children born with subclinical congenital Toxoplasma infection. Pediatrics 1980; 66: 767-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000227&pid=S1657-9534200700030001400037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 38<a name="38"></a>. McAuley J, Boyer K, Patel D, Mets M, Swisher C, Roizen N, et al. Early and longitudinal evaluations of treated infants and untreated historical patients with congenital toxoplasmosis: The Chicago collaborative treatment trial. Clin Infect Dis 1994; 18: 38-72. <a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/sites/entrez?cmd=Retrieve&amp;db=PubMed&amp;list_uids=8054436&amp;dopt=Citation" style="color: rgb(0, 0, 0);"></a>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000228&pid=S1657-9534200700030001400038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 39<a name="39"></a>. Patel DV, Holfels EM, Vogel NP, Boyer KM, Mets MB, Swisher CN, et al. Resolution of intracraneal calcifications in infants with treated congenital toxoplasmosis. Radiology 1996; 199: 433-440.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000229&pid=S1657-9534200700030001400039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 40<a name="40"></a>. Montoya JG, Remington JS. Studies on the serodiagnosis of toxoplasmic lymphadenitis. Clin Infect Dis 1995; 20: 781-789.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000230&pid=S1657-9534200700030001400040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 41<a name="41"></a>. Montoya JG. Laboratory diagnosis of Toxoplasma gondii infection and toxoplasmosis. J Infect Dis 2002; 185 (Suppl 1): 73-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000231&pid=S1657-9534200700030001400041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 42<a name="42"></a>. Press C, Montoya JG, Remington J. Use of a single serum sample for diagnosis of acute toxoplasmosis in pregnant women and other adults. J Clin Microbiol 2005; 43: 3481-3483.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000232&pid=S1657-9534200700030001400042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 43<a name="43"></a>. Roberts A, Hedman K, Luyasu V, Zufferey J, Bessieres MH, Blatz RM, et al. Multicenter evaluation of strategies for serodiagnosis of primary infection with Toxoplasma gondii. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2001; 20: 467-474.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000233&pid=S1657-9534200700030001400043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 44<a name="44"></a>. Liesenfeld O, Press C, Montoya JG, Gill R, Isaac-Renton JL, Hedman K, et al. False-positive results in immunoglobulin M (IgM) toxoplasma antibody tests and importance of confirmatory testing: the Platelia toxo IgM test. J Clin Microbiol 1997; 35: 174-178.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000234&pid=S1657-9534200700030001400044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 45<a name="45"></a>. Naot Y. Remington JS. An enzyme-linked immunosorbent assay for detection of IgM antibodies to Toxoplasma gondii: use for diagnosis of acute acquired toxoplasmosis. J Infect Dis 1980; 142: 757-766.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000235&pid=S1657-9534200700030001400045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 46<a name="46"></a>. Liesenfeld O, Montoya JG, Tathinemi NJ, Davis M, Brown BWJr, Cobb KL, et al. Confirmatory serologic testing for acute toxoplasmosis and rate of induced abortions among women reported to have positive Toxoplasma immunoglobulin M antibody titers. Am J Obstet Gynecol 2001; 184: 140-145.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000236&pid=S1657-9534200700030001400046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 47<a name="47"></a>. Stepick-Biek P, Ara&uacute;jo FG, Remington JS. IgA antibodies for diagnosis of acute congenital and acquired toxoplasmosis. J Infect Dis 1990; 162: 270.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000237&pid=S1657-9534200700030001400047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 48<a name="48"></a>. Pinon JM, Dumon H, Chemla C, Franck J, Petersen E, Lebech M, et al. Strategy for diagnosis of congenital toxoplasmosis: evaluation of methods comparing mothers and newborns and standard methods for postnatal detection of immunoglobulin G, M, and A antibodies. J Clin Microbiol 2001; 39: 2267-2271.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000238&pid=S1657-9534200700030001400048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 49<a name="49"></a>. Dannemann BR, Vaughan WC, Thulliez P, Remington JS. Differential agglutination test for diagnosis of recently acquired infection with, Toxoplasma gondii. J Clin Microbiol 1990; 28: 1928-1933.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000239&pid=S1657-9534200700030001400049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 50<a name="50"></a>. Remington J, Thulliez P, Montoya J. Recent developments for diagnosis of toxoplasmosis. J Clin Microbiol 2004; 42: 941-945.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000240&pid=S1657-9534200700030001400050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 51<a name="51"></a>. Liesenfeld O, Montoya JG, Kinney S, Press C, Remington JS. Effect of testing for IgG avidity in the diagnosis of Toxoplasma gondii infection in pregnant women: experience in a US reference laboratory. J Infect Dis 2001; 183: 1248-1253.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000241&pid=S1657-9534200700030001400051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 52<a name="52"></a>. Montoya JG, Liesenfeld O, Kinney S, Press C, Remington JS. VIDAS Test for Avidity of Toxoplasma-Specific Immunoglobulin G for Confirmatory Testing of Pregnant Women. J Clin Microbiol 2002; 40: 2504-2508.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000242&pid=S1657-9534200700030001400052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 53<a name="53"></a>. Romand S, Wallon M, Franck J, Thulliez P, Peyron F, Dumon H. Prenatal diagnosis using polymerase chain reaction on amniotic fluid for congenital toxoplasmosis. Obstet Gynecol 2001; 97: 296-300.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000243&pid=S1657-9534200700030001400053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 54<a name="54"></a>. Romand S, Chosson M, Franck J, Wallon M, Kieffer F, Kaiser K, et al. Usefulness of quantitative polymerase chain reaction in amniotic fluid as early prognostic marker of fetal infection with Toxoplasma gondii. Am J Obstet Gynecol 2004; 190: 797-802.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000244&pid=S1657-9534200700030001400054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 55<a name="55"></a>. Hohlfeld P, Daffos F, Costa JM, Thulliez P, Forestier F, Vidaud M. Prenatal diagnosis of congenital toxoplasmosis with polymerase-chain-reaction test on amniotic fluid. N Engl J Med 1994; 331: 695-699.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000245&pid=S1657-9534200700030001400055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 56<a name="56"></a>. Thalib L, Gras L, Romand S, Prusa A, Bessieres MH, Petersen E, et al. for the European Multicentre Study on Congenital Toxoplasmosis (EMSCOT). Prediction of congenital toxoplasmosis by polimerase chain reaction analysis of amniotic fluid. BJOG 2005; 112: 567-574.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000246&pid=S1657-9534200700030001400056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 57<a name="57"></a>. Hohlfeld P, Daffos F, Thulliez P, Aufrant C, Couvreur J, MacAleese J, et al. Fetal toxoplasmosis: outcome of pregnancy and infant follow-up after in utero treatment. J Pediatr 1989; 115: 765-769.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000247&pid=S1657-9534200700030001400057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 58<a name="58"></a>. Hohlfeld P, MacAlesse J, Capella-Pavlovski M, Giovangrandi Y, Thulliez P, Forestier F, et al. Fetal toxoplasmosis: ultrasonographic signs. Ultrasound Obstet Gynecol 1991; 1: 241-244.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000248&pid=S1657-9534200700030001400058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 59<a name="59"></a>. Couvreur J, Thulliez P, Daffos F, Aufrant C, Bompard Y, Gesquiere A, et al. Fetal toxoplasmosis. In utero treatment with pyrimethamine sulfamides. Arch Fr Pediatr 1991; 48: 397-403.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000249&pid=S1657-9534200700030001400059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 60<a name="60"></a>. Minkoff H, Remington JS, Holman S, Ram&iacute;rez R, Goodwin S, Landesman S. Vertical transmission of toxoplasma by human immunodeficiency virus-infected women. Am J Obstet Gynecol 1997; 176: 555-559.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000250&pid=S1657-9534200700030001400060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 61<a name="61"></a>. Ertug S, Okyay P, Turkmen M, Yuksel H. Seroprevalence and risk factors for toxoplasmosis infection among pregnant women in Aydin providence, Turkey. BMC Public Health 2005; 5: 66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000251&pid=S1657-9534200700030001400061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 62<a name="62"></a>. Jones JL, Ogunmodede F, Scheftel J, Kirkland E, L&oacute;pez A, Schulkin J, et al. Toxoplasmosis-related knowledge and practices among pregnant women in the United States. Infect Dis Obstet Gynecol 2003; 11: 139-145.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000252&pid=S1657-9534200700030001400062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 63<a name="63"></a>. 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Foulon W, Villena I, Stray-Pedersen B, Decoster A, Lappalainen M, Pinon JM, et al. Treatment of toxoplasmosis during pregnancy: a multicenter study of impact on fetal transmission and children's sequelae at age 1 year. Am J Obstet Gynecol 1999; 180: 410-415.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000262&pid=S1657-9534200700030001400072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 73<a name="73"></a>. Wallon M, Liou C, Garner P, Peyron F. Congenital toxoplasmosis: systematic review of evidence of efficacy of treatment in pregnancy. 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Freeman K, Salt A, Prusa A, Malm G, Ferret N, Buffolano, et al. Association between congenital toxoplasmosis and parent-reported developmental outcomes, concerns, and impairments, in 3 year old children. BMC Pediatrics 2005; 5: 23.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000265&pid=S1657-9534200700030001400075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> 76<a name="76"></a>. Gras L, Wallon M, Pollak A, Cortina-Borja M, Hyade M, Petersen E, et al. Association between prenatal treatment and clinical manifestations of congenital toxoplasmosis in infancy: A cohort study in 13 European centres. 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