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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Respuesta de una subpoblación de interneuronas y del transportador glial de glutamato GLT1 en la corteza contralateral a un foco isquémico]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidade de São Paulo Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto Departamento de Fisiologia]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Cerebral ischemia is an important cause of brain lesion in humans. The target in research has been the ischemic core or the penumbra zones; little attention has been given to areas outside the core or the penumbra but connected with the primary site of injury. Objective: Evaluate the laminar response of a subpopulation of gabaergic cells, those that are parvalbumin (PV) positive and the astrocytes through the expression of the glial transporter GLT1 on the contralateral cortex to an ischemic core. Methodology: For this purpose we used the medial cerebral artery occlusion model in rats. The artery was occluded for 90 minutes and the animals were sacrificed at 24 and 72 hours post-ischemia. The brains were removed, cut in a vibratome at 50 microns and incubated with the primary antibodies against PV or GLT1. Sections were developed using the vectastain Kit. In control tissue the primary antibody was omitted. Results: When compared with control animals, treated ones show a decrease in the expression of GLT1, especially in layers III and IV of the contralateral cortex to the ischemic core. PV positive cells increases in layers II and V. Conclusion: Increases in the expression of PV cells could correspond to an adaptation associated with glutamate increases in the synaptic compartment. These increases may be due to decreases in the expression of GLT1 transporter, that could not remove the glutamate present in the synaptic cleft, generating hyperactivity in the contralateral cortex. These changes could represent an example of neuronal and glial plasticity in remote areas to an ischemic core but connected to the primary site of injury.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Parvalbúmina]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Arial" size="+1">    <p align="center"><b>Respuesta de una subpoblaci&oacute;n de interneuronas y del transportador glial de glutamato GLT1 en la corteza contralateral a un foco isqu&eacute;mico</b></p></font> <font face="Arial">    <p align="center"><b>Adriana M. Medina, PhD<sup>1,2</sup>, Norberto Garc&iacute;a-Cairasco, MSc, PhD<sup>3</sup>, Martha Isabel Escobar, MSc<sup>1</sup></b></p></font> <font face="Arial" size="-1">    <p>1. Centro de Estudios Cerebrales, Facultad de Salud, Universidad del Valle; Cali, Colombia.    <br>   e-mail: <a href="mailto:maiesbe@yahoo.com">maiesbe@yahoo.com</a>    <br> 2. Neuroscience Laboratory, Michigan University, Ann Arbor, USA. e-mail: <a href="mailto:ammedina@umich.edu">ammedina@umich.edu</a>    <br> 3. Laboratorio de Neurofisiologia e Neuroetologia Experimental, Departamento de Fisiologia, Faculdade de Medicina de Ribeir&atilde;o Preto, Universidade de S&atilde;o Paulo, Ribeir&atilde;o Preto, Brasil. e-mail: <a href="mailto:ngcairas@fmrp.usp.br">ngcairas@fmrp.usp.br</a>    <br> Recibido para publicaci&oacute;n diciembre 20, 2007 Aceptado para publicaci&oacute;n junio 26, 2008</p></font> <font face="Arial">    <p><b>RESUMEN</b></p>     <p><b>Introducci&oacute;n:</b> La isquemia cerebral es una de las formas de lesi&oacute;n cerebral mas frecuentes en el humano. Usualmente los investigadores cuando estudian su fisiopatolog&iacute;a se centran en las &aacute;reas directamente comprometidas: regi&oacute;n del foco, o en las zonas de penumbra, olvidando otros sectores vecinos o no del foco que est&aacute;n conectados con estos sectores de injuria, los cuales pueden estar implicados en algunos de los s&iacute;ntomas que se observan en los pacientes que sufren procesos isqu&eacute;micos.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <b>Objetivo:</b>  Evaluar el comportamiento laminar de una subpoblaci&oacute;n de interneuronas y de la poblaci&oacute;n glial de la corteza cerebral contralateral al foco isqu&eacute;mico, a trav&eacute;s de los marcadores parvalb&uacute;mina (PV), que detecta neuronas gaba&eacute;rgicas y del transportador glial de glutamato GLT1.    <br> <b>Materiales y m&eacute;todos:</b>  Se ocluy&oacute; la arteria cerebral media derecha en ratas macho adultas, durante 90 minutos, utilizando una sutura intraluminal. Los animales se sacrificaron a las 24 y 72 horas post isquemia. El an&aacute;lisis se hizo en la corteza contralateral al foco, identificando interneuronas PV positivas y la expresi&oacute;n en astrocitos del transportador GLT1.    <br> <b>Resultados:</b>  Se encontr&oacute; disminuci&oacute;n significativa de la marcaci&oacute;n del transportador de glutamato, GLT1, en las capas III y IV de la corteza contralateral al foco isqu&eacute;mico y un aumento en la expresi&oacute;n de PV en las capas II a V comparado con los animales controles.    <br> <b>Conclusiones:</b>  Los cambios en la expresi&oacute;n de GLT1 pueden proveer un nuevo estado de regulaci&oacute;n de glutamato y un patr&oacute;n diferente de actividad en &aacute;reas remotas a un foco isqu&eacute;mico. El aumento en la expresi&oacute;n de PV puede corresponder a un mecanismo adaptativo asociado al incremento de glutamato, por la disminuci&oacute;n del transportador, en las envolturas gliales de las sinapsis. Este estudio representa un ejemplo de plasticidad neuronal y glial en zonas remotas al foco isqu&eacute;mico pero conectadas con el mismo.</p>     <p align="center"><b>Palabras clave:</b> Parvalb&uacute;mina; Transportador glial de glutamato 1; Isquemia cerebral; Corteza contralateral; Plasticidad neuronal; Desconexi&oacute;n.</p>     <p><b>Contralateral cortical response of a subpopulation of interneurons and the glial glutamate transporter GLT1 to an ischemic core</b></p>     <p><b>SUMMARY</b></p>     <p><b>Introduction:</b> Cerebral ischemia is an important cause of brain lesion in humans. The target in research has been the ischemic core or the penumbra zones; little attention has been given to areas outside the core or the penumbra but connected with the primary site of injury.    <br> <b>Objective:</b>  Evaluate the laminar response of a subpopulation of gabaergic cells, those that are parvalbumin (PV) positive and the astrocytes through the expression of the glial transporter GLT1 on the contralateral cortex to an ischemic core.    <br> <b>Methodology:</b> For this purpose we used the medial cerebral artery occlusion model in rats. The artery was occluded for 90 minutes and the animals were sacrificed at 24 and 72 hours post-ischemia. The brains were removed, cut in a vibratome at 50 microns and incubated with the primary antibodies against PV or GLT1. Sections were developed using the vectastain Kit. In control tissue the primary antibody was omitted.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <b>Results:</b>  When compared with control animals, treated ones show a decrease in the expression of GLT1, especially in layers III and IV of the contralateral cortex to the ischemic core. PV positive cells increases in layers II and V.    <br> <b>Conclusion:</b> Increases in the expression of PV cells could correspond to an adaptation associated with glutamate increases in the synaptic compartment. These increases may be due to decreases in the expression of GLT1 transporter, that could not remove the glutamate present in the synaptic cleft, generating hyperactivity in the contralateral cortex. These changes could represent an example of neuronal and glial plasticity in remote areas to an ischemic core but connected to the primary site of injury.</p>     <p align="center"><b>Keywords:</b> Parvalbumin; Ischemia; Stroke; Contralateral cortex; Plasticity; Disconnection.</p>     <p>La isquemia focal es una de las formas m&aacute;s frecuentes de lesi&oacute;n cerebral en humanos. Durante a&ntilde;os los estudios se han dirigido a comprender la fisiopatolog&iacute;a del foco isqu&eacute;mico y del &aacute;rea de penumbra. Por la amplia conectividad del sistema nervioso y los arreglos sin&aacute;pticos precisos entre las c&eacute;lulas vecinas y la relaci&oacute;n directa con c&eacute;lulas localizadas en &aacute;reas remotas, la lesi&oacute;n que ocurre en una regi&oacute;n determinada del sistema nervioso central repercute directamente sobre zonas que no est&aacute;n involucradas en la injuria inicial, pero que reciben o pierden las aferencias de la regi&oacute;n lesionada. Despu&eacute;s de una lesi&oacute;n isqu&eacute;mica focal experimental se han descrito adaptaciones morfofuncionales y moleculares en la corteza contralateral<sup><a href="#1">1</a></sup>. Estos cambios involucran hiperexcitabilidad, cambios en la conformaci&oacute;n de las espinas dendr&iacute;ticas y sobre-regulaci&oacute;n en la expresi&oacute;n de varios genes, la mayor&iacute;a de ellos asociados con plasticidad, se&ntilde;alizaci&oacute;n neuronal y factores de crecimiento. Se considera que en el ser humano los cambios remotos consecuentes a la isquemia pueden contribuir a la aparici&oacute;n de alteraciones neurol&oacute;gicas y neuropsiqui&aacute;tricas tales como depresi&oacute;n, demencia y epilepsia, los cuales no en todos los casos pueden correlacionarse con el sitio primario de lesi&oacute;n<sup><a href="#2">2</a></sup>.</p>     <p>Los cambios observados en las zonas distantes al foco lesional se denominan cambios remotos o diasquisis<sup><a href="#3">3</a></sup> que se pueden clasificar en cuatro niveles de acuerdo con el mecanismo de injuria:</p>     <blockquote>1. Cambios remotos originados por edema cerebral.    <br> 2. Cambios remotos atribuibles a depresi&oacute;n diseminada (spreading depression)    <br> 3. Cambios remotos en &aacute;reas de proyecci&oacute;n    <br> 4. Cambios remotos debidos a plasticidad reactiva y efectos sist&eacute;micos<sup><a href="#3">3</a></sup>. </blockquote>     <p>El presente trabajo se centra en el tercer mecanismo, bas&aacute;ndose en el conocimiento existente sobre la conectividad cortical y el fen&oacute;meno de la diasquisis. El prop&oacute;sito de este trabajo es analizar los cambios que ocurren en una subpoblaci&oacute;n de interneuronas gaba&eacute;rgicas y en los astrocitos localizados en la corteza cerebral contralateral a un foco isqu&eacute;mico, mediante un anticuerpo contra la prote&iacute;na atrapadora de calcio parvoalb&uacute;mina (PV), que es espec&iacute;fica de interneuronas gaba&eacute;rgicas y el transportador glial de glutamato GLT1.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La hip&oacute;tesis se basa en que una lesi&oacute;n focal de la corteza se debe reflejar en la corteza opuesta:</p>     <blockquote>1. En interneuronas de la corteza contralateral que recibe aferentes comisurales y    <br> 2. En la poblaci&oacute;n de astrocitos que expresan GLT1, el cual remueve 90% del glutamato presente en las interacciones sin&aacute;pticas excitatorias. </blockquote>     <p>Se espera que haya variaciones interlaminares en la expresi&oacute;n inmunohistoqu&iacute;mica de parvalb&uacute;mina y del transportador GLT1, considerando que si bien existen interacciones interlaminares en la corteza, en cada l&aacute;mina hay variantes en la relaci&oacute;n entre interneuronas y patrones de conectividad aferente y eferente.</p>     <p><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></p>     <p>Los experimentos se realizaron en ratas macho Wistar con un peso promedio entre 280-350 g, las cuales se obtuvieron del Bioterio de la Facultad de Salud de la Universidad del Valle. Los animales se mantuvieron en un ciclo de 12:12 horas de luz-oscuridad y recibieron comida y agua ad libitum. Todos los procedimientos y el protocolo experimental fueron aprobados por el Comit&eacute; de &Eacute;tica en Experimentaci&oacute;n Animal de la Facultad de Salud, Universidad del Valle.</p>     <p><b>Procedimiento quir&uacute;rgico.</b> Los animales se anestesiaron con una mezcla de ketamina-xilazina (50 mg/ml; 2 mg/ml; 0.8 mg/kg) por v&iacute;a intraperitoneal. Se mantuvieron en una temperatura rectal de 37+0.5&ordm;C con la ayuda de una l&aacute;mpara de calor. Bajo microscop&iacute;a estereot&aacute;xica, se disec&oacute; la vasculatura del cuello exponiendo la arteria car&oacute;tida com&uacute;n derecha hasta la bifurcaci&oacute;n, se disec&oacute; y lig&oacute; la arteria car&oacute;tida externa (ACE), luego se disec&oacute; la arteria car&oacute;tida interna (ACI), se separ&oacute; del nervio vago adyacente y se interrumpi&oacute; el flujo sangu&iacute;neo de la arteria pterigopalatina sutur&aacute;ndola a nivel de su origen con un monofilamento de nylon 4-0. La isquemia focal se indujo siguiendo el protocolo de Longa<sup><a href="#4">4</a></sup>, de la siguiente manera: se utiliz&oacute; un monofilamento de nylon 4-0 (Ethilon &reg;, Ethicon&reg; Co, Inc) cubierta previamente con una soluci&oacute;n de poli-l-lisina (0.1% (peso/volumen) (Sigma&reg;), preparado en agua desionizada y secado durante una hora a 60&deg;C. El monofilamento se introdujo 18 mm desde la arteria car&oacute;tida externa derecha hacia la car&oacute;tida interna (ACI) hasta alcanzar la parte inicial del segmento de la arteria cerebral media derecha (ACM). La ACE se sutur&oacute; con un nylon 5-0 en el lugar donde se introdujo la sutura para prevenir la hemorragia. La incisi&oacute;n en el cuello se cerr&oacute; con seda calibre 3-0. El monofilamento se dej&oacute; en su lugar durante 90 minutos y luego se removi&oacute; para permitir la reperfusi&oacute;n. Los animales control se trataron con los mismos protocolos de anestesia y quir&uacute;rgico sin introducci&oacute;n del monofilamento intraluminal. Los animales que mostraron s&iacute;ntomas neurol&oacute;gicos (ver escala), se seleccionaron para el an&aacute;lisis inmunohistoqu&iacute;mico.</p>     <p>A las 2, 8 y 12 horas de isquemia se realiz&oacute; la prueba neurol&oacute;gica para evaluar la adecuada oclusi&oacute;n de la arteria cerebral media derecha, con la escala de 4 puntos de Longa<sup><a href="#4">4</a></sup>:</p>     <blockquote>1. Falla para extender completamente la pata izquierda.    <br> 2. Movimientos circulares hacia la izquierda.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 3. Ca&iacute;das hacia el lado izquierdo.    <br> 4. P&eacute;rdida de movimientos espont&aacute;neos con disminuci&oacute;n del nivel de conciencia.</blockquote>     <p><b>Protocolo inmunohistoqu&iacute;mico.</b> Los animales se prefundieron a las 24 y 72 horas posteriores a la isquemia (n=5), con una mezcla de paraformaldehido, lisina y periodato de sodio (PLP, pH: 7.4) por v&iacute;a intracard&iacute;aca. Con el mismo protocolo de anestesia con ketamina-xilazina (50 mg/ml; 2 mg/ml; 0.8 mg/kg) se perfundieron los animales por v&iacute;a intracard&iacute;aca. Los animales utilizados para evaluar la expresi&oacute;n de PV y GLT1 se agruparon para el sacrificio a las 24 y 72 horas posteriores a la isquemia (n=5), se perfundieron utilizando una mezcla de paraformaldehido, lisina y periodato de sodio (PLP, pH: 7.4). Los cerebros se removieron y se dejaron en el mismo fijador por 24 horas a 4&ordm;C. Por medio de un vibr&aacute;tomo (Lancer) se obtuvieron secciones coronales seriadas (50 &micro;m), utilizando como referencia la comisura blanca anterior, la regi&oacute;n anterior del hipot&aacute;lamo, el estriado y el p&aacute;lido ventral, este nivel corresponde a las coordenadas interaural 9.2 mm, bregma 0.2 mm. Para confirmar las alteraciones histopatol&oacute;gicas, se utiliz&oacute; marcaci&oacute;n inmunohistoqu&iacute;mica para la prote&iacute;na asociada con microt&uacute;bulos 2 (MAP2, Kosik, Santa B&aacute;rbara CA, diluido 1:100 PBS/TritonX100), la cual es un marcador de injuria neuronal (<a href="#g1">Figura 1</a>) y NeuN (Chemicon) (1:2500 PBS/TritonX100 0.5%), que marca las poblaciones neuronales, con el prop&oacute;sito de definir claramente el espesor de cada l&aacute;mina cortical. Los individuos que mostraron alteraciones histol&oacute;gicas por este criterio fueron los que se utilizaron en este estudio.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/cm/v39s3/v39s3a3f1.jpg"><a name="g1"></a></p>     <p>Con el prop&oacute;sito de identificar neuronas positivas para PV y para GLT1, las secciones flotantes se incubaron durante 12 horas en anti-PV (Sigma&reg;), diluido 1:5000 PBS/triton X-100 y en anti-GLT1 (Novo Castra&reg;) diluido 1:40 en PBS. Se escogi&oacute; examinar el comportamiento del marcador GLT1 in situ, por los informes sobre labilidad de los transportadores de glutamato en tejido homogenizado. La marcaci&oacute;n para ambos anticuerpos se revel&oacute; utilizando avidina-biotina siguiendo las instrucciones del fabricante (Vectastain&reg; CA). La actividad de la peroxidasa se revel&oacute;, utilizando 3.3 diaminobencidina como crom&oacute;geno con per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 0.01% y contrastando despu&eacute;s con n&iacute;quel. Los animales control (n=5), se procesaron simult&aacute;neamente, omitiendo la incubaci&oacute;n con el anticuerpo primario.</p>     <p><b>An&aacute;lisis a microscop&iacute;a de luz</b>. Se seleccionaron los cortes de la corteza frontoparietal, que corresponde al &aacute;rea sensoriomotora, porque en el modelo de isquemia utilizado por los autores, el foco isqu&eacute;mico comprende estas &aacute;reas corticales y un sector de la regi&oacute;n dorso-lateral del caudado. Adem&aacute;s, se analiz&oacute; cualitativamente la regi&oacute;n del c&iacute;ngulo tanto ipsi como contra-lateral, teniendo en cuenta que estas dos regiones est&aacute;n conectadas entre si por fibras comisurales, pero que no corresponden a regiones infartadas por la oclusi&oacute;n de la arteria cerebral media. Los cortes se fotograf&iacute;aron con una c&aacute;mara digital Cannon&reg; Power Shot S30 adaptada a un microscopio de luz (Olympus&reg; CH-2 optical modelo CHS). Las im&aacute;genes a analizar se lograron mediante la composici&oacute;n de fotograf&iacute;as consecutivas, las cuales se fusionaron digitalmente con el programa Photo Stich&reg; versi&oacute;n 3.1 (2000). Las im&aacute;genes obtenidas representaban el espesor completo de la corteza cerebral, sobre las cuales se realizaron los conteos correspondientes utilizando el programa SigmaScan-Pro&reg; 5. Para el procedimiento cuantitativo se hicieron cajones de 100 x 500 micras (100 en el plano coronal y 500 en el plano tangencial). Se tuvo como criterio colocar el caj&oacute;n en el centro de cada l&aacute;mina. Para cumplir este criterio la gu&iacute;a fue el espesor de cada l&aacute;mina determinado en cortes coronales te&ntilde;idos con NeuN (marcador neuronal), acoplados con los cortes sucesivos para PV y GLT1 y as&iacute; asegurar la ubicaci&oacute;n laminar.</p>     <p>Los datos se analizaron con ANOVA de una v&iacute;a, seguido por el post-prueba de Neuman Keuls. Se consideraron estad&iacute;sticamente significativos valores de p&lt;0.05.</p>     <p><b>RESULTADOS</b></p>     <p>De los 25 animales operados, 15 presentaron d&eacute;ficit neurol&oacute;gico al recuperarse de la anestesia, llegando a los grados 1, 2 y 3 despu&eacute;s del per&iacute;odo de recuperaci&oacute;n. No se utilizaron animales en el grado 4 (n=10), por su baja supervivencia. Se realizaron cortes coronales sucesivos a partir de la comisura blanca anterior, para hacer el an&aacute;lisis con los marcadores seleccionados teniendo en cuenta las coordenadas mencionadas antes. La regi&oacute;n examinada correspondi&oacute; a la corteza fronto-parietal contra-lateral (izquierda), que se relaciona con la corteza isqu&eacute;mica en espejo. En cada caso la primera secci&oacute;n procesada con el anticuerpo anti-MAP2, permiti&oacute; medir el tama&ntilde;o del infarto, aproximadamente 30.8%, que incluy&oacute; tanto la corteza fronto-parietal como el caudado putamen (<a href="#g1">Figura 1</a>). Los cortes te&ntilde;idos con NeuN permitieron medir el espesor de las l&aacute;minas con el prop&oacute;sito de facilitar la cuantificaci&oacute;n celular en cada capa (<a href="#c1">Cuadro 1</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/cm/v39s3/v39s3a3c1.jpg"><a name="c1"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Observaciones en el c&iacute;ngulo.</b> Como se parti&oacute; de la premisa de que el infarto producido en el hemisferio derecho puede afectar a la corteza contra-lateral del hemisferio izquierdo, se examin&oacute; la regi&oacute;n del c&iacute;ngulo diferente al foco y a la penumbra isqu&eacute;mica para observar el comportamiento de los marcadores seleccionados en el modelo. La lesi&oacute;n isqu&eacute;mica no mostr&oacute; diferencias cualitativas en el c&iacute;ngulo del hemisferio isqu&eacute;mico ni en el del hemisferio contralateral (<a href="#g2">Figura 2</a>), mientras que los cambios para PV y GLT1 en las regiones contra-laterales al foco isqu&eacute;mico fueron muy notables, por tanto se decidi&oacute; hacer una evaluaci&oacute;n cuantitativa l&aacute;mina por l&aacute;mina de las regiones remotas y establecer la progresi&oacute;n de estos cambios con el tiempo de supervivencia.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/cm/v39s3/v39s3a3f2.jpg"><a name="g2"></a></p>     <p><b>Distribuci&oacute;n de PV y de GLT1 en la corteza cerebral normal.</b> En la corteza fronto-parietal de animales controles, las neuronas positivas para PV muestran un patr&oacute;n laminar espec&iacute;fico. Es importante mencionar que la capa I carece de c&eacute;lulas positivas para PV, en su lugar se observa una considerable inmunorreactividad representada en neuritas probablemente pertenecientes a neuronas localizadas en capas inferiores o derivadas de regiones subcorticales. Las capas II a la VI, muestran c&eacute;lulas positivas para PV con un cuerpo bien definido y procesos dendr&iacute;ticos y axones con diversa orientaci&oacute;n claramente marcados. La mayor&iacute;a de estas c&eacute;lulas se clasificaron como c&eacute;lulas en candelabro y c&eacute;lulas en cesta. El n&uacute;mero de cuerpos celulares inmunorreactivos es bajo en las capas II y VI, intermedio en la capa III y alto en las capas IV, V.</p>     <p>La inmunorreactividad para GLT1 se observa homog&eacute;neamente distribuida en todas las capas corticales, las c&eacute;lulas inmunopositivas aparecen como anillos a partir de los cuales emergen procesos cortos.</p>     <p>Inmunorreactividad para PV y GLT1 en la corteza cerebral contralateral al foco isqu&eacute;mico. Mientras que en los controles las neuronas positivas para PV predominan en las capas IV y V, en la corteza contra-lateral al foco isqu&eacute;mico se observa un aumento notorio en la inmunorreactividad a PV en las neuronas de las capas II-III (<a href="#g3">Figura 3</a> y <a href="#g1">Gr&aacute;fica 1</a>). En la corteza contra-lateral se observa una disminuci&oacute;n en la inmunorreactividad para GLT1 en todas las l&aacute;minas analizadas en los diferentes tiempos de supervivencia; esta reducci&oacute;n es notable en las l&aacute;minas medio corticales, sobre todo en la l&aacute;mina III (<a href="#g4">Figura 4</a> y <a href="#g2">Gr&aacute;fica 2</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/cm/v39s3/v39s3a3f3.jpg"><a name="g3"></a>    <br> <img src="img/revistas/cm/v39s3/v39s3a3f4.jpg"><a name="g4"></a></p>     <p align="center"><img src="img/revistas/cm/v39s3/v39s3a3g1.jpg"><a name="g1"></a>    <br>   <img src="img/revistas/cm/v39s3/v39s3a3g2.jpg"><a name="g2"></a></p>     <p><b>Variaciones laminares en la expresi&oacute;n de PV y GLT1 en la corteza contralateral</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>L&aacute;mina I:</b> Como la l&aacute;mina I carece de cuerpos celulares inmunorreactivos para PV, no se consider&oacute; esta capa en el an&aacute;lisis cuantitativo. La inmunorreactividad para GLT1 aparece cualtitativamente disminu&iacute;da; sin embargo, no se encontraron diferencias en el conteo celular.L&aacute;mina II: El n&uacute;mero de c&eacute;lulas positivas para PV aument&oacute; a las 24 y a las 72 horas, y no se presentaron cambios en la expresi&oacute;n de GLT1.L&aacute;mina III: El n&uacute;mero de c&eacute;lulas inmunorreactivas para PV se increment&oacute; a las 24 y a las 72 horas y la expresi&oacute;n de GLT1 disminuy&oacute; en ambos tiempos de supervivencia.L&aacute;mina IV: La inmunorreactividad para PV aument&oacute; a las 24 horas de supervivencia; este incremento fue a&uacute;n mayor a las 72 horas. Por su parte la inmunorreactividad para GLT1 disminuy&oacute; &uacute;nicamente a las 72 horas de supervivencia.L&aacute;mina V: En esta l&aacute;mina la inmunorreactividad para PV se increment&oacute; a las 24 y 72 horas de supervivencia, mientras que la expresi&oacute;n de GLT1 no present&oacute; cambios.L&aacute;mina VI: La inmunorreactividad para PV y para GLT1 no cambi&oacute; en ninguno de los tiempos analizados.</p>     <p>En resumen, las c&eacute;lulas inmunorreactivas para PV se aumentaron en las capas II, III, IV y V y permanecieron constantes en la l&aacute;mina VI. La expresi&oacute;n de GLT1 disminuy&oacute; en la capa III en los dos tiempos de supervivencia analizados (24 y 72 horas) y en la capa IV disminuy&oacute; s&oacute;lo a las 72 horas. La expresi&oacute;n de GLT1 no cambia en las capas I, II, V y VI.</p>     <p><b>DISCUSI&Oacute;N</b></p>     <p>La mayor parte de las interneuronas de la corteza cerebral expresan prote&iacute;nas atrapadoras de calcio. Entre &eacute;stas la calbindina D28K, la calretinina y la parvalb&uacute;mina se expresan en interneuronas gaba&eacute;rgicas y en ellas contribuyen a mantener la homeostasis del calcio<sup><a href="#5">5</a></sup>. Se han utilizado procedimientos inmunohistoqu&iacute;micos para identificar los diferentes tipos de c&eacute;lulas gaba&eacute;rgicas presentes en la corteza, teniendo en cuenta que cada prote&iacute;na se encuentra en diferentes tipos neuronales, con muy poca coexpresi&oacute;n<sup><a href="#6">6</a></sup>.</p>     <p>La parvalb&uacute;mina se encuentra en c&eacute;lulas en cesta y en c&eacute;lulas en candelabro<sup><a href="#7">7</a></sup>. Estas c&eacute;lulas realizan contacto sin&aacute;ptico con el soma y el segmento inicial del ax&oacute;n de neuronas piramidales respectivamente. Las c&eacute;lulas en cesta forman una importante red inhibitoria de la corteza cerebral, debido a su localizaci&oacute;n estrat&eacute;gica cerca de los cuerpos de las neuronas piramidales, donde controlan y sincronizan las salidas de las c&eacute;lulas piramidales. Se ha demostrado que en el hipocampo y en la neocorteza las neuronas gaba&eacute;rgicas positivas para PV forman una red dual conectada por medio de uniones laxas (gap junctions) y sinapsis qu&iacute;micas entre ellas de tipo inhibitorio. Las primeras son importantes para mantener la sincron&iacute;a y las &uacute;ltimas pueden estar implicadas en la generaci&oacute;n de la actividad oscilatoria en el rango de la frecuencia gama<sup><a href="#8">8</a></sup>.</p>     <p>En el presente estudio se demuestran incrementos en la expresi&oacute;n de PV en la corteza contralateral a un foco isqu&eacute;mico posterior a la oclusi&oacute;n de la arteria cerebral media en ratas y disminuci&oacute;n en la expresi&oacute;n de GLT1 particularmente en la l&aacute;mina III cortical. La parvalb&uacute;mina es una prote&iacute;na perteneciente a la familia EF-hand, conformada por un conjunto de prote&iacute;nas atrapadoras de calcio que como se mencion&oacute; antes est&aacute;n implicadas en la transducci&oacute;n directa de se&ntilde;ales mediadas por calcio y en el control de su homeostasis<sup><a href="#5">5</a></sup>. Varios autores han informado que las prote&iacute;nas atrapadoras de calcio como calbindina D28K, calretinina y parvalb&uacute;mina, tienen un papel neuroprotector al actuar como amortiguadores de calcio que aten&uacute;an la sobrecarga inducida por fen&oacute;menos excitot&oacute;xicos generados por la lesi&oacute;n isqu&eacute;mica<sup><a href="#9">9</a></sup>. Sin embargo, este papel ha sido controvertido, sobre todo en el caso de la PV.</p>     <p>Existen informes que indican que el papel de la PV puede ir desde protector hasta tener un efecto delet&eacute;reo, por ejemplo en cultivos celulares de neuronas corticales la expresi&oacute;n de parvalb&uacute;mina se incrementa con la neurotoxicidad inducida por un agonista del glutamato el N-metil-D-aspartato<sup><a href="#10">10</a></sup>. Tambi&eacute;n se ha informado que la expresi&oacute;n inmunohistoqu&iacute;mica de PV puede cambiar en diferentes condiciones experimentales y en diferentes regiones del sistema nervioso. Despu&eacute;s de deprivaci&oacute;n olfatoria por oclusi&oacute;n unilateral de las nares realizado en ratas y evaluadas dos meses despu&eacute;s de la oclusi&oacute;n, se encontr&oacute; un incremento significativo ipsi y contra-lateral de c&eacute;lulas positivas a PV en los n&uacute;cleos olfatorios anteriores dorsal y lateral respectivamente<sup><a href="#11">11</a></sup>. Lo anterior indica que la actividad regula la expresi&oacute;n de las prote&iacute;nas atrapadoras de calcio. Los resultados del presente trabajo muestran un incremento general en el n&uacute;mero de neuronas que expresan PV en las capas II, III, IV y V en la corteza contralateral a un foco isqu&eacute;mico. Los autores consideran que estos cambios pueden ser el resultado de la desconexi&oacute;n parcial por p&eacute;rdida de circuitos comisurales y de probables mecanismos de reorganizaci&oacute;n sin&aacute;ptica inducidos por el proceso isqu&eacute;mico. En la rata las fibras comisurales se originan en neuronas localizadas en las capas III y V, estos axones son glutamat&eacute;rgicos y terminan en las capas II-III y V-VI12. Aunque la mayor parte de las fibras comisurales terminan sobre espinas dendr&iacute;ticas de neuronas piramidales, tambi&eacute;n conectan neuronas gaba&eacute;rgicas, en especial c&eacute;lulas en cesta y en candelabro, las cuales expresan parvalb&uacute;mina<sup><a href="#12">12</a></sup>. Estas interacciones sin&aacute;pticas son relevantes como una fuente de inhibici&oacute;n, que modulan la actividad de la corteza cerebral.</p>     <p>Teniendo en cuenta que la isquemia focal genera muerte celular en la regi&oacute;n del foco, si las neuronas piramidales del foco mueren, los axones que terminan en la corteza contra-lateral se degeneran, causando una disminuci&oacute;n de la estimulaci&oacute;n de las c&eacute;lulas en cesta y en candelabro, pero al mismo tiempo dejando vacantes sin&aacute;pticas que pueden ser ocupadas por axones recurrentes de c&eacute;lulas piramidales vecinas, por fibras asociativas del mismo hemisferio o por aferentes tal&aacute;micas, todas las anteriores de car&aacute;cter excitatorio.</p>     <p>En el presente estudio no hay evidencia directa de esta reorganizaci&oacute;n sin&aacute;ptica, pero es una posibilidad que es necesario explorar con experimentos nuevos y m&aacute;s amplios. Tambi&eacute;n es necesario se&ntilde;alar que las neuronas comisurales que se proyectan desde la corteza contralateral (exofocales) al foco isqu&eacute;mico, no podr&aacute;n entonces realizar contactos sin&aacute;pticos sobre sus blancos espec&iacute;ficos. Este nuevo estado implica un contexto morfol&oacute;gico y funcional diferente, que puede inducir cambios espaciales y temporales en la expresi&oacute;n de parvalb&uacute;mina, como los demostrados en este estudio, donde se observan variantes en la expresi&oacute;n de PV entre las 24 y 72 horas de supervivencia postisqu&eacute;mica. Es importante anotar que las cortezas ipsi y contra-lateral del giro c&iacute;ngulo, no presentaron cambios obvios en la expresi&oacute;n de parvoalb&uacute;mina como los que ocurren en la corteza contra-lateral al foco. Se podr&iacute;a especular que una diferencia en el sistema de circuitos corticales ipsilaterales vs. los comisurales podr&iacute;an explicar las discrepancias, sin embargo, esto requiere confirmaci&oacute;n experimental m&aacute;s directa.</p>     <p>Los cambios en la expresi&oacute;n inmunohistoqu&iacute;mica de parvalb&uacute;mina descritas en el presente trabajo, nos permiten plantear que la se&ntilde;al para la inducci&oacute;n de los cambios remotos implicar&iacute;a procesos de hiperactividad glutamat&eacute;rgica en las zonas de injuria, con incrementos en la liberaci&oacute;n de glutamato en las regiones remotas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Expresi&oacute;n de GLT1 despu&eacute;s de isquemia en la corteza contra-lateral. La p&eacute;rdida de la homeostasis de glutamato est&aacute; involucrada en el inicio de varias condiciones neurol&oacute;gicas incluyendo isquemia cerebral. La homeostasis del glutamato es regulada principalmente por una familia de transportadores de membrana conocidos como transportadores para amino&aacute;cidos excitatorios<sup><a href="#13">13</a></sup>. Esta familia de prote&iacute;nas incluye cinco miembros: GLAST (tambi&eacute;n conocido como EAAT 1), transportador glial encontrado sobre todo en el cerebelo; GLT 1 (o EAAT2), el principal transportador glial del telenc&eacute;falo, EAAC1 (o EAAT3), transportador neuronal tambi&eacute;n de localizaci&oacute;n en el telenc&eacute;falo, EAAT 4, transportador neuronal del cerebelo y el transportador EAAT 5, un transportador neuronalglial presente en la retina<sup><a href="#14">14</a></sup>.</p>     <p>Las alteraciones en la recaptura de glutamato debida a cambios en la expresi&oacute;n o funci&oacute;n de los transportadores de glutamato se han considerado como una causa de la hiperexcitabilidad<sup><a href="#15">15</a></sup>.</p>     <p>Teniendo en cuenta que la lesi&oacute;n isqu&eacute;mica afecta a las proyecciones comisurales, las cuales realizan contactos sin&aacute;pticos en la corteza contralateral sobre neuronas piramidales y no piramidales y que alrededor de estas sinapsis se encuentra dispuesta una envoltura glial, la cual a trav&eacute;s de la presencia de transportadores de glutamato se encarga de mantener la homeostasis del neurotransmisor, se mir&oacute; adem&aacute;s, c&oacute;mo la isquemia afecta el comportamiento de este transportador en la corteza contra-lateral al foco isqu&eacute;mico.</p>     <p>Se han demostrado cambios en la expresi&oacute;n del transportador GLT1 en diferentes entidades dependiendo de los modelos utilizados, del procedimiento experimental o de las condiciones patol&oacute;gicas. Estos cambios son m&aacute;s evidentes en unas &aacute;reas que en otras. Despu&eacute;s de isquemia global transitoria en ratas se ha observado que la expresi&oacute;n del RNAm para GLT1 disminuye en la regi&oacute;n CA1 del hipocampo y en la regi&oacute;n CA3 disminuye s&oacute;lo en per&iacute;odos tempranos de supervivencia (d&iacute;a 1)<sup><a href="#15">15</a></sup>. Los datos anteriores indican selectividad y especificidad regional en la expresi&oacute;n del transportador GLT1 despu&eacute;s de isquemia global. Posterior a isquemia focal transitoria, se ha descrito que los niveles de prote&iacute;nas y de la expresi&oacute;n del RNAm para GLT1 y EAAC1 disminuyen significativamente (entre 36% y 56%) en el hemisferio isqu&eacute;mico al compararlo con la corteza contra-lateral o con los espec&iacute;menes control<sup><a href="#16">16</a></sup>.</p>     <p>En el presente estudio se observ&oacute; una disminuci&oacute;n significativa en la expresi&oacute;n inmunohistoqu&iacute;mica de GLT1 en la corteza cerebral contra-lateral al foco isqu&eacute;mico, despu&eacute;s de oclusi&oacute;n de la arteria cerebral media en ratas. Los resultados muestran una disminuci&oacute;n de la inmunorreactividad para GLT1 en las l&aacute;minas III y IV de la corteza cerebral, mientras que en las capas I, II, V y VI no se observan cambios significativos. En la l&aacute;mina III la disminuci&oacute;n de la inmunorreactividad para GLT1 se inicia a las 24 horas y contin&uacute;a disminuyendo hasta las 72 horas, mientras que en la capa IV s&oacute;lo disminuye de manera significativa a las 72 horas. Es posible que la disminuci&oacute;n en la expresi&oacute;n de GLT1 en las capas III y IV sea el resultado de la deaferentaci&oacute;n de las fibras comisurales que se origina a partir de estas l&aacute;minas. Otras l&aacute;minas como la II, V y VI no muestran ning&uacute;n cambio, posiblemente porque la capa II da lugar a fibras corticocorticales ipsilaterales, la capa V a fibras corticoestriatales y la capa VI a proyecciones corticotal&aacute;micas<sup><a href="#17">17</a></sup>, de tal manera que los axones que se originan en estas capas no estar&iacute;an en directa relaci&oacute;n con el sitio de la lesi&oacute;n.</p>     <p>Se ha demostrado en cultivos celulares que los astrocitos expresan la prote&iacute;na GLT1 s&oacute;lo en la presencia de neuronas. Existe tambi&eacute;n la evidencia in vivo de que la expresi&oacute;n de GLT1 requiere de la interacci&oacute;n glianeurona. En isquemia cerebral transitoria se observa una correlaci&oacute;n positiva entre la p&eacute;rdida de neuronas piramidales de la regi&oacute;n CA3 y la disminuci&oacute;n de la prote&iacute;na y del RNAm para GLT1<sup><a href="#15">15</a></sup>. En el hemisferio no lesionado la regulaci&oacute;n por lo bajo de GLT1, puede obedecer a otros factores diferentes a los que se observan en el hemisferio lesionado.</p>     <p>Se ha descrito ampliamente que la isquemia cerebral focal puede tambi&eacute;n afectar la funci&oacute;n de amplias regiones dentro del mismo hemisferio y del hemisferio contra-lateral, adem&aacute;s de las regiones directamente lesionadas por la reducci&oacute;n del flujo sangu&iacute;neo. Despu&eacute;s de oclusi&oacute;n permanente de la arteria cerebral media se ha descrito en humanos incrementos en la excitabilidad de la corteza contra-lateral. En pacientes con infarto cortical se observa sobre-activaci&oacute;n de &aacute;reas bilaterales motoras y no motoras<sup><a href="#18">18</a></sup>. Un aumento bilateral en la activaci&oacute;n de la red motora puede representar un incremento en el reclutamiento de redes neuronales.</p>     <p>Los cambios demostrados en la expresi&oacute;n de GLT1 en el presente trabajo, podr&iacute;an contribuir a los incrementos en la actividad el&eacute;ctrica de la corteza contra-lateral al foco isqu&eacute;mico, causado por aumentos moderados en las concentraciones de glutamato.</p>     <p>Como ya se mencion&oacute; la expresi&oacute;n de GLT1 por los astrocitos s&oacute;lo se da en la presencia de neuronas. El p&eacute;ptido pituitario activador de la adenilciclasa (PACAP) es un conocido modulador de la se&ntilde;alizaci&oacute;n glutamat&eacute;rgica. Este p&eacute;ptido es esencial para que se exprese el transportador GLT1 en la corteza cerebral<sup><a href="#19">19</a></sup>. Con base en los resultados del presente art&iacute;culo se propone que la desconexi&oacute;n procedente de las regiones isqu&eacute;micas puede llevar a una disminuci&oacute;n en los niveles de PACAP, lo cual puede producir una baja en los niveles de GLT1. Lo anterior ocasionar&iacute;a un moderado aumento en la concentraci&oacute;n de glutamato. La disminuci&oacute;n de los niveles de GLT1 l&aacute;mina espec&iacute;fica (III y IV), el incremento en la expresi&oacute;n de PV y en la actividad el&eacute;ctrica informada por otros<sup><a href="#20">20</a></sup>, pueden indicar adaptaciones morfofuncionales en el hemisferio contra-lateral a un foco isqu&eacute;mico. En conclusi&oacute;n, despu&eacute;s de isquemia focal, los cambios en la expresi&oacute;n de GLT1 pueden proveer un nuevo estado de regulaci&oacute;n de glutamato y un patr&oacute;n diferente de actividad. Por otro lado los incrementos en la expresi&oacute;n de PV pueden reflejar un mecanismo compensatorio en respuesta a la actividad de glutamato. Estos cambios son m&aacute;s relevantes en la l&aacute;mina III. Aunque los aumentos en la expresi&oacute;n de PV no se pueden correlacionar con los de la actividad gaba&eacute;rgica, estos podr&iacute;an vincularse a cambios en la actividad glutamat&eacute;rgica provistos por la reorganizaci&oacute;n sin&aacute;ptica.</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los autores desean expresar su agradecimiento al doctor Hern&aacute;n Jos&eacute; Pimienta por la revisi&oacute;n cr&iacute;tica del manuscrito. Al doctor Efra&iacute;n Buritic&aacute; por el apoyo en el manejo del software y en el an&aacute;lisis de las im&aacute;genes. Este estudio se realiz&oacute; gracias al apoyo financiero de COLCIENCIAS, proyecto N&deg; 1106-04-11990 y de la Universidad del Valle. El doctor Norberto Garc&iacute;a-Cairasco recibi&oacute; apoyo de las fundaciones Brasileras FAPESP, CNPq y PRONEX.</p>     <p><b>REFERENCIAS</b></p></font> <font face="Arial" size="-1">    <!-- ref --><p><a name="1"></a>1. Arango-D&aacute;vila C, Escobar-Betancourt M, Cardona-G&oacute;mez GP, Pimienta-Jim&eacute;nez H. Fisiopatolog&iacute;a de la isquemia cerebral focal: Aspectos b&aacute;sicas y proyecci&oacute;n a la cl&iacute;nica. Rev Neurol. 2004; 39: 156-65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S1657-9534200800070000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="2"></a>2. Angeleri F, Angeleri VA, Foschi N, Giaquintos S, Nolfe G. The influence of depression, social activity and family stress on functional outcome after stroke. Stroke. 1993; 24: 1478-83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S1657-9534200800070000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="3"></a>3. Witte O, Stoll G. Delayed and remote effects of focal cortical infarctions: secondary damage and reactive plasticity. Adv Neurol. 1997; 73: 207-27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S1657-9534200800070000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="4"></a>4. Longa EZ, Wenstein PR, Carlson S, Cummins R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke. 1989; 20: 84-91.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S1657-9534200800070000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="5"></a>5. Hof P, Glexer I, Cond&eacute; F, Flagg R, Rubin M, Nimchinsky E, et al. Cellular distribution of the calcium-binding proteins parvalbumin, calbindin, and calretinin in the neocortex of mammals: phylogenetic and developmental patterns. J Chem Neuroanat. 1999; 16: 77-116.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S1657-9534200800070000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="6"></a>6. Kawaguchi Y, Kondo S. Parvoalbumin, somatostatin and cholcecystokinin as chemicals markers for specific gabaergic interneuron types in the rat frontal cortex. J Neurocytol. 2002; 31: 277-87.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S1657-9534200800070000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="7"></a>7. DeFelipe J, Jones EG. Parvoalbumin immunoreactivity reveals layer IV of monkey cerebral cortex as a mosaic of microzones of thalamic afferent terminations. Brain Res. 1991; 562: 39-47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S1657-9534200800070000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="8"></a>8. Fukuda T, Kosaka T. Ultraestructural study of gap junctions between dendrites of parvoalbumin-containing gabaergic neurons in various neocortical areas of the adult rat. Neuroscience. 2003; 120: 5-20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S1657-9534200800070000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="9"></a>9. Figueredo-C&aacute;rdenas G, Harris CL, Anderson KD, Reiner A. Relative resistance of striatal neurons containing calbindin or parvalbumin in quinolenic acid mediated excitotoxicity compared to other striatal neuron types. Exp Neurol. 1998; 149: 356-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S1657-9534200800070000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="10"></a>10. Hartley DM, Neve RL, Bryan J, Ullrey DB, Bask SY, Lang P, et al. Expression of the calbinding-binding proteins, parvalbumin in cultured cortical neurons using a HSV-1 vector system enhances NMDA neurotoxicity. Mol Brain Res. 1996; 40: 285-96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S1657-9534200800070000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="11"></a>11. Barbado MV, Bri&ntilde;&oacute;n JG, Weruaga E, Porteros A, Ar&eacute;valo R, Aij&oacute;n J, et al. Changes in immunoreactivity to calcium-binding proteins in the anterior olfactory nucleus of the rat after neonatal olfactory deprivation. Exp Neurol. 2002; 177: 133-50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S1657-9534200800070000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="12"></a>12. Innocenti GM. General organization of callosal connections in the cerebral cortex. In: Jones EG, Peters A, Editors. Cerebral cortex. Vol 5. Sensory-motor areas and aspects of cortical connectivity. New York: Ed Plenum Press; 1986. p. 291-354.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S1657-9534200800070000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="13"></a>13. Gegelashvili G, Schousboe A. High affinity glutamate transporters: regulation of expression and activity. Mol Pharmacol. 1997; 52: 6-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S1657-9534200800070000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="14"></a>14. Bar-Peled O, Ben-Hur H, Biegon A, Groner Y, Dewhurst S, Furuta A, et al. Distribution of glutamate trasnporter subtypes during human brain development. J Neurochem. 1997; 69: 2571-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S1657-9534200800070000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="15"></a>15. Bruhn T, Levy LM, Nielsen M, Chistensen T, Johansen FF, Diemer NH. Ischemia induced changes in expression od the astrocyte glutamate transporter GLT-1 in hippocampus of the rat. Neurochem Int. 2000; 37: 277-85.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S1657-9534200800070000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="16"></a>16. Rao VL, Bowen KK, Dempsey RJ. Transient focal cerebral ischemia down-regulates glutamate transporters GLT-1 and EAAC1 expression in rat brain. Neurochem Res. 2001; 26: 497-502.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S1657-9534200800070000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="17"></a>17. Valverde F. Estructura de la corteza cerebral. Organizaci&oacute;n intr&iacute;nseca y an&aacute;lisis comparativo del neocortex. Rev Neurol. 2002; 34: 758-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S1657-9534200800070000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="18"></a>18. Cao Y, Olhaberriague LD, Vikingstad EM, Levine SR, Welch KM. Pilot study of functional MRI to assess cerebral activation of motor function after poststroke hemiparesis. Stroke. 1998: 112-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S1657-9534200800070000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="19"></a>19. Figiel M, Engele J. Pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide (PACAP), a neuron-derived peptide regulating glial glutamate transport and metabolism. J Neurosci. 2000; 20: 3596-605.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S1657-9534200800070000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> <a name="20"></a>20. Neumann-Haefelin T, Witte OW. Periinfarct and remote excitability changes after transient middle cerebral artery occlusion. J Cereb Blood Flow Metab. 2000; 20: 45-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S1657-9534200800070000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <p><b>LISTA ABREVIATURAS</b></p>     <p>PV: Parvalb&uacute;mina    <br>GLT1: Transportador de glutamato 1    <br>PACAP: P&eacute;ptido pituitario activador de la adenilciclasa    <br>CA3: Cuerno de Am&oacute;n 3    <br>NeuN: Ant&iacute;geno nuclear neuronal    <br>MAP2: Prote&iacute;na asociada con microt&uacute;bulos 2</p></font>     ]]></body>
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