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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ACTIVIDAD ANTIINFLAMATORIA DE EXTRACTOS Y FRACCIONES DE Myrcianthes leucoxila, Calea prunifolia, Curatella americana Y Physalis peruviana EN LOS MODELOS EDEMA AURICULAR POR TPA, EDEMA PLANTAR POR CARRAGENINA Y ARTRITIS INDUCIDA POR COLÁGENO]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[ANTIINFLAMMATORY ACTIVITY OF EXTRACTS AND FRACTIONS OF Myrcianthes leucoxila, Calea prunifolia, Curatella americana Y Physalis peruviana OBTAINED FROM ON TPA-INDUCED EAR OEDEMA, CARRAGEENANINDUCED PAW OEDEMA AND COLLAGEN-INDUCED ARTHRITIS]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. Ethnopharmacological use of plants in management of chronic inflammatory diseases and the need to have their pharmacological characterization promote the evaluation of anti-inflammatory activity over in vivo models. Materials and methods. Evaluation of extracts and fractions of Calea prunifolia (CP), Curatella americana (CA), Myrcianthes leucoxila(ML) and Physalis peruviana (PP) on auricular edema by tetradecanoylphorbol acetate (TPA)-in ICR albino mice and carrageenan-induced leg edema in Wistar rats selecting an extract to evaluate its anti-arthritic activity in collagen-induced arthritis model in DBA mice. Results. The fractions with greater edema inhibition percentage on TPA-induced ear edema included whole ethanolic fraction of ML (82±6%), CP terpenes rich fraction (81±6%) and CA terpenes rich fraction (81±7%) (P<0.05). Significant antiinflamatory activity was not obtained on the carrageenan-induced leg edema. Evaluation of antiarthritic activityof the ML terpenes rich fraction was carried out on collagen induced arthritis. Without finding any significant effect on back leg edema, corporal weight, arthritis histopathology severity scale or immunohistochemical tumoral necrosis factor alfa immunohistochemical evaluation (P>0.05). Discussion. Anti-inflammatory activity in TPAinduced acute ear edema model for CP, CA, and ML extracts and fractions can be interfered by phospholipase A2 related mediators due to similar effect with indomethacin was found. The ML terpens rich fraction neither show any anti-arthritic activity nor affected TNF-a expression on the autoimmune chronic arthritis model used, reason why it does not have immunomodulatory/anti-inflammatory effect on the evaluated dose. Conclusion. CA and CP terpenic rich fractions and ML ethanol extract showed significant anti-inflammatory activity in TPA-induced ear edema. They did have some activity in carrageenan-induced leg edema. The ML terpenic rich fraction did not have anti-arthritic activity in the collagen-induced arthritis model.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">      <p>    <center><font face="verdana" size="4"><b>ACTIVIDAD ANTIINFLAMATORIA DE EXTRACTOS Y FRACCIONES DE <i>Myrcianthes leucoxila</i>, <i><i>Calea</i> prunifolia</i>, <i>Curatella americana</i> Y <i>Physalis peruviana</i> EN LOS MODELOS EDEMA AURICULAR POR TPA, EDEMA PLANTAR POR CARRAGENINA Y ARTRITIS INDUCIDA POR COL&Aacute;GENO</b></font></center></p>      <center><font face="verdana" size="3"><b>ANTIINFLAMMATORY ACTIVITY OF EXTRACTS AND FRACTIONS OF <i>Myrcianthes leucoxila</i>, <i>Calea prunifolia</i>, <i>Curatella americana</i> Y <i>Physalis peruviana</i> OBTAINED FROM ON TPA-INDUCED EAR OEDEMA, CARRAGEENANINDUCED PAW OEDEMA AND COLLAGEN-INDUCED ARTHRITIS</b></font></center>      <p align="right"> Mar&iacute;a Cristina Gonz&aacute;lez Guevara<a href="#a1"><sup>1</sup></a>     <br>Luis Fernando Ospina Giraldo<a href="#a2"><sup>2</sup></a>     <br>Javier Rinc&oacute;n Velandia<a href="#a2"><sup>2</sup></a></p>     <p><a name="a1"><sup>1</sup></a> M.D. M.Sc. Profesora Asistente, Departamento de Farmacia, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia. Direcci&oacute;n postal: Avenida Carrera 30 No. 45-03. Ciudad Universitaria, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;, Edificio 450, Oficina 215. Tel&eacute;fonos: 3165000 Ext. 14622. Fax: 3165060.     <br><a name="a2"><sup>2</sup></a> Q.F. Ph.D. Profesor Asociado, Departamento de Farmacia, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia.</p> <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>RESUMEN</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Introducci&oacute;n</b>. El empleo etnofarmacol&oacute;gico de plantas en el manejo de procesos inflamatorios cr&oacute;nicos y la necesidad su caracterizaci&oacute;n farmacol&oacute;gica, promueven la evaluaci&oacute;n de actividad antiinflamatoria de sustancias en modelos <i>in vivo</i>.</p>     <p><b>Materiales y m&eacute;todos</b>. Evaluaci&oacute;n de extractos y fracciones de <i>Calea prunifolia</i> (CP), <i>Curatella americana</i> (CA), <i>Myrcianthes leucoxila</i> (ML) y <i>Physalis peruviana</i> (PP) sobre los modelos edema auricular por acetato de tetradecanoilforbol (TPA) en rat&oacute;n albino ICR y edema plantar por carragenina en ratas Wistar, seleccionando un extracto para valorar su actividad antiartr&iacute;tica en el modelo artritis inducida por col&aacute;geno en ratones DBA.</p>     <p> <b>Resultados</b>. Las fracciones con mayor porcentaje de inhibici&oacute;n del edema en el modelo edema auricular por TPA fueron ML etan&oacute;lica total (82&plusmn;6%), CP rica en terpenos (81&plusmn;6%) y CA rica en terpenos (81&plusmn;7%) (P&lt;0,05). No se obtuvo actividad antiinflamatoria significativa sobre el modelo edema plantar por carragenina. Se evalu&oacute; la actividad antiartr&iacute;tica de la fracci&oacute;n rica en terpenos de ML sobre el modelo artritis inducida por col&aacute;geno, sin encontrarse efecto significativo sobre edema de patas traseras, peso corporal, escala histopatol&oacute;gica de severidad de artritis ni inmunohistoqu&iacute;mica para factor de necrosis tumoral alfa (P&gt;0,05).</p>     <p><b>Discusi&oacute;n</b>. La actividad antiinflamatoria en el modelo de inflamaci&oacute;n aguda edema auricular por TPA para los extractos y fracciones de CP, CA y ML se puede relacionar con la afectaci&oacute;n de mediadores relacionados con fosfolipasa A2 dado el nivel de efecto similar a indometacina encontrado. La fracci&oacute;n terp&eacute;nica de ML no mostr&oacute; actividad antiartr&iacute;tica ni modific&oacute; la expresi&oacute;n de TNF-<i>a</i> en el modelo de artritis cr&oacute;nica autoinmune empleado, por lo cual no posee actividad inmunomoduladora ni antiinflamatoria en la dosis evaluada.</p>     <p> <b>Conclusi&oacute;n</b>: Las fracciones terp&eacute;nicas de los extractos de CA y CP y los extractos metan&oacute;licos de ML mostraron una actividad antiinflamatoria significativa en el edema auricular inducida por TPA. Estos extractos tuvieron poca actividad sobre el edema inducido por carragenina en la pata. La fracci&oacute;n terp&eacute;nica del extracto ML no present&oacute; actividad antiartr&iacute;tica en el modelo de artritis inducido por el col&aacute;geno.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: actividad antiinflamatoria, artritis inducida por col&aacute;geno, edema plantar por carragenina, <i>Calea prunifolia</i>, <i>Curatella americana</i>, <i>Myrcianthes leucoxila</i>, <i>Physalis peruviana</i>.</p>  <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p><b>Introduction</b>. Ethnopharmacological use of plants in management of chronic inflammatory diseases and the need to have their pharmacological characterization promote the evaluation of anti-inflammatory activity over <i>in vivo</i> models. </p>     <p><b>Materials and methods</b>. Evaluation of extracts and fractions of <i>Calea prunifolia</i> (CP), <i>Curatella americana</i> (CA), <i>Myrcianthes leucoxila</i>(ML) and <i>Physalis peruviana</i> (PP) on auricular edema by tetradecanoylphorbol acetate (TPA)-in ICR albino mice and carrageenan-induced leg edema in Wistar rats selecting an extract to evaluate its anti-arthritic activity in collagen-induced arthritis model in DBA mice.</p>     <p> <b>Results</b>. The fractions with greater edema inhibition percentage on TPA-induced ear edema included whole ethanolic fraction of ML (82&plusmn;6%), CP terpenes rich fraction (81&plusmn;6%) and CA terpenes rich fraction (81&plusmn;7%) (P&lt;0.05). Significant antiinflamatory activity was not obtained on the carrageenan-induced leg edema. Evaluation of antiarthritic activityof the ML terpenes rich fraction was carried out on collagen induced arthritis. Without finding any significant effect on back leg edema, corporal weight, arthritis histopathology severity scale or immunohistochemical tumoral necrosis factor alfa immunohistochemical evaluation (P&gt;0.05).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Discussion</b>. Anti-inflammatory activity in TPAinduced acute ear edema model for CP, CA, and ML extracts and fractions can be interfered by phospholipase A2 related mediators due to similar effect with indomethacin was found. The ML terpens rich fraction neither show any anti-arthritic activity nor affected TNF-<i>a</i> expression on the autoimmune chronic arthritis model used, reason why it does not have immunomodulatory/anti-inflammatory effect on the evaluated dose.</p>      <p> <b>Conclusion</b>. CA and CP terpenic rich fractions and ML ethanol extract showed significant anti-inflammatory activity in TPA-induced ear edema. They did have some activity in carrageenan-induced leg edema. The ML terpenic rich fraction did not have anti-arthritic activity in the collagen-induced arthritis model.</p>     <p><b>Key words</b>: anti-inflammatory activity, collageninduced arthritis, carrageenan-induced paw oedema, <i>Calea prunifolia</i>, <i>Curatella americana</i>, <i>Myrcianthes leucoxila</i>, <i>Physalis peruviana</i>.</p>  <hr>     <p align="center"><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>El manejo farmacol&oacute;gico actual disponible para la artritis reumatoidea (AR) presenta, entre otras caracter&iacute;sticas, respuesta no predecible entre pacientes frente a los f&aacute;rmacos antirreum&aacute;ticos modificadores de enfermedad (FAME), riesgo de reacciones adversas, y alto costo (1). Debido a lo anterior, se hace necesaria la b&uacute;squeda de alternativas terap&eacute;uticas y/o complementarias para dicha entidad, dentro de las cuales est&aacute;n los productos derivados de fuentes naturales (2, 3). Teniendo en cuenta la diversidad vegetal colombiana y el empleo etnofarmacol&oacute;gico de sustancias obtenidas de fuentes naturales para diversas patolog&iacute;as, entre ellas procesos inflamatorios cr&oacute;nicos, se hace necesaria su evaluaci&oacute;n en modelos biol&oacute;gicos. Dentro de las plantas de uso com&uacute;n para dichas entidades se encuentran: <i><i>Calea</i> prunifolia</i>, <i>Curatella americana</i>, <i>Myrcianthes leucoxila</i> y <i>Physalis peruviana</i> (4), sobre las cuales se ha descrito en trabajos previos actividad antiinflamatoria, antioxidante e inmunomoduladora (5, 6, 7, 8, 9, 10). Se considera necesario como complemento de la caracterizaci&oacute;n de actividad biol&oacute;gica, la valoraci&oacute;n de la capacidad antiartr&iacute;tica en modelos de inflamaci&oacute;n cr&oacute;nica, para lo cual la literatura describe diversas metodolog&iacute;as en murinos (11, 12), dentro de las cuales se encuentran modelos espont&aacute;neos e inducidos de artritis. Dentro de estos &uacute;ltimos, se incluye el modelo artritis inducida por col&aacute;geno (Collagen-induced arthritis, CIA), descrito en 1977 por Trentham y cols. en ratas y en 1980 por Courtenay y cols. en ratones (13), el cual se caracteriza por la inducci&oacute;n de una reacci&oacute;n inmunol&oacute;gica frente a componentes del cart&iacute;lago articular al aplicar col&aacute;geno II (CII) (hom&oacute;logo o heter&oacute;logo). La susceptibilidad al modelo var&iacute;a seg&uacute;n la cepa de roedor, siendo la cepa de rat&oacute;n DBA una para las que se describe alta respuesta artr&iacute;tica (13). El modelo CIA presenta similitud en cuanto a fisiopatolog&iacute;a y curso cl&iacute;nico con AR en humanos y es &uacute;til en la evaluaci&oacute;n de sustancias con actividad inmunomoduladora, entre otras ventajas (14, 15, 16). </p>     <p>Para continuar la caracterizaci&oacute;n de la actividad antiinflamatoria de productos obtenidos de plantas colombianas, el presente estudio evalu&oacute; sobre los odelos edema auricular inducido por 13-acetato de 12-tetradecanoilforbol (EATPA) en rat&oacute;n y edema plantar por carragenina en rata (EPC), extractos y fracciones de C. prunifolia, C. americana, M. leucoxila y P. peruviana. Sobre dichos resultados, se seleccion&oacute; el extracto con potencial efecto antiinflamatorio para la valoraci&oacute;n de su actividad antiartr&iacute;tica en el modelo artritis inducida por col&aacute;geno en rat&oacute;n.</p>     <p align="center"><font size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p><b>Material vegetal</b></p>     <p> <i>Calea prunifolia</i> (CP): se evalu&oacute; el extracto etan&oacute;lico total, fracci&oacute;n rica en flavonoides y fracci&oacute;n rica en terpenos, obtenidos de partes a&eacute;reas.  </p>     <p><i>Curatella americana</i> (CA): se evaluaron una fracci&oacute;n rica en flavonoides y otra rica en terpenos, obtenidas de corteza.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <i>Myrcianthes leucoxila</i> (ML): se evalu&oacute; el extracto etan&oacute;lico total y una fracci&oacute;n rica en terpenos. </p>     <p><i>Physalis peruviana</i> (PP): se evalu&oacute; el extracto et&eacute;reo total A y su fracci&oacute;n primaria EtOH-H2O D, obtenidas previamente por Franco y cols. (6).</p>     <p> <b>Modelos evaluados</b> </p>     <p><i>Edema auricular inducido por TPA en rat&oacute;n (EATPA)</i></p>     <p>Se emplearon ratones albinos ICR machos de 28 a 40 g, entre siete a diez semanas (n = 6-10), suministrados por el Departamento de Farmacia, Universidad Nacional de Colombia (DFUNC), mantenidos en condiciones est&aacute;ndar. Se administr&oacute; el irritante 13-acetato de 12-tetradecanoilforbol (TPA, 2,5 <i>u</i>g/oreja) (Sigma Chemical Co. St. Louis, MO, USA) junto con indometacina 500 <i>u</i>g/oreja como patr&oacute;n (Sigma Chemical Co. St. Louis, MO, USA) o con la sustancia evaluada (fracci&oacute;n o extracto 500-1000 mg/oreja) disueltas en acetona (Mallinckrodt Chemicals) v&iacute;a t&oacute;pica en la oreja derecha (volumen total: 20 <i>u</i>L/oreja, 10 <i>u</i>L/cara). La oreja izquierda se emple&oacute; como control. Transcurridas 4 horas se sacrificaron los animales por dislocaci&oacute;n cervical y se obtuvo muestra de cada pabell&oacute;n auricular por sacabocado (7 mm de di&aacute;metro) (17). Se calcul&oacute; la diferencia de peso entre oreja tratada y no tratada &#91;Delta de peso (mg) = &Delta; peso (mg) = peso tratada – peso no tratada&#93;. Finalmente se expresaron los resultados como porcentaje de inhibici&oacute;n del edema calculado con la f&oacute;rmula: </p>     <p>% de inhibici&oacute;n: 100 * (&Delta; peso grupo control – &Delta; peso tratamiento)/(&Delta; peso grupo control).</p>     <p> Se considera como actividad antiinflamatoria moderada la inhibici&oacute;n del edema del 35 al 65% y como buen efecto antiinflamatorio un valor mayor de 65%. </p>     <p><i><b>Edema plantar por carragenina (EPC)</b></i></p>     <p> Se emplearon ratas Wistar hembras, peso entre 100-320 g, 7 a 14 semanas de edad (n = 6-10) suministradas por el DFUNC. Previo ayuno de 12 horas, se administr&oacute; v&iacute;a oral el tratamiento a evaluar (patr&oacute;n indometacina) (Sigma Chemical Co. St. Louis, MO, USA) 10 mg/kg; sustancia a evaluar (extracto o fracci&oacute;n 250 a 1000 mg/ kg); veh&iacute;culo (glicerina, propilenglicol, tween 80 y soluci&oacute;n salina normal) (17). A la hora se administra carragenina ? al 3% como agente inductor de inflamaci&oacute;n (Sigma Chemical Co. St. Louis, MO, USA) suspendida en soluci&oacute;n salina (0,1 ml) en la pata trasera derecha. Se realiza la evaluaci&oacute;n del efecto en la primera, tercera y quinta horas tras la aplicaci&oacute;n del irritante mediante la determinaci&oacute;n del desplazamiento de volumen que producen las patas de los animales en el pletism&oacute;metro digital (Ugo Basile 7140). Se calcula la diferencia de desplazamiento entre la pata derecha irritada (tratada) con la izquierda (no tratada). Los resultados se expresan como porcentaje de inhibici&oacute;n del edema aplicando la f&oacute;rmula (siendo V desplazamiento de volumen): </p>     <p>% de inhibici&oacute;n = 100*&#91;(Vt-Vnt) grupo control – (Vt-Vnt) tratamiento&#93;/(Vt-Vnt) grupo control.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Se considera como actividad antiinflamatoria moderada la inhibici&oacute;n del edema del 30 al 65% y como buen efecto antiinflamatorio un valor mayor de 65%. </p>     <p><i><b>Artritis inducida por col&aacute;geno (CIA)</b></i></p>      <p><i>Animales de experimentaci&oacute;n</i>: ratones DBA/1 machos (Harlan Sprague Dawley, Inc, Chicago, IL, USA) de 10 a 11 semanas al inicio de la inducci&oacute;n de la artritis, previa cuarentena, mantenidos en el bioterio del DFUNC en condiciones est&aacute;ndar, con la administraci&oacute;n de la comida empleada por el proveedor de los animales (Global 18% Sterilizable Rodent Diet. Cod. 1304, lote No. 010108, Harlan Teklad, Madison, WI, USA).</p>     <p><i>Preparaci&oacute;n del ant&iacute;geno</i>: se disolvi&oacute; el CII (Sigma Chemical Co. St. Louis, MO, USA, c&oacute;d. C9301) en &aacute;cido ac&eacute;tico 10 mM a una concentraci&oacute;n de 4 mg/ml (100 <i>u</i>g de CII) para la inmunizaci&oacute;n inicial y de 2 mg/ml para el refuerzo mediante agitaci&oacute;n continua durante un periodo de 8 horas a 4&deg;C. Se prepar&oacute; el adyuvante completo de Freund (Complete Freund´s adjuvant, CFA) mediante la molida de 100 <i>u</i>g de <i>Mycobacterium tuberculosis</i> H37Ra (Becton Dickinson Diagnostic Systems &reg; MD, USA. C&oacute;digo. 231141) en mortero y su mezcla con adyuvante incompleto de Freund (Incomplete Freund´s adjuvant, IFA, Becton Dickinson Diagnostic Systems &reg; MD, USA, Codigo. 263910) hasta una concentraci&oacute;n final de 4 mg/ml. Posteriormente, se prepar&oacute; la emulsi&oacute;n de CII/CFA para la inmunizaci&oacute;n y de CII/IFA para el refuerzo (13).</p>     <p> <i>Protocolo de inmunizaci&oacute;n</i>: se realiz&oacute; v&iacute;a intrad&eacute;rmica en la base de la cola. El d&iacute;a cero se inyectaron 50 <i>u</i>L de la emulsi&oacute;n del ant&iacute;geno (CII/CFA, 100 <i>u</i>g de CII) y se administr&oacute; dosis de refuerzo en la semana 6 de la emulsi&oacute;n CII 50 <i>u</i>g en IFA (13Rosloniec) a un lote de 40 ratones.  </p>     <p><i>Administraci&oacute;n de sustancias a evaluar</i>: durante las ocho semanas de inducci&oacute;n se evalu&oacute; el desarrollo de artritis mediante la escala visual de severidad de artritis (16) para cada extremidad (0 si no hay evidencia de edema ni eritema; 4 si eritema y edema severo alrededor del tobillo, pata y dedos). En la semana 9 se distribuyeron al azar los animales que presentaron signos de artritis en grupos, para la administraci&oacute;n oral diaria durante dos semanas de la fracci&oacute;n seleccionada (ML fracci&oacute;n rica en terpenos disuelta en veh&iacute;culo, 100 mg/kg) con grupo patr&oacute;n blanco y control veh&iacute;culo (coprecipitado de polivinilpirrolidona (PVP) (1:4), glicerina, polietilenglicol y tween), dando por terminado el estudio en la semana 10.</p>     <p> <b>Par&aacute;metros de evaluaci&oacute;n de actividad antiartr&iacute;tica</b> </p>     <p><i>Desplazamiento de volumen de patas traseras</i>: se emple&oacute; pletism&oacute;metro digital (Ugo Basile 7140) para cuantificar el desplazamiento de la soluci&oacute;n conductora contenida en el recept&aacute;culo donde se introduce la pata sumergida, hasta que el tobillo estuviera a la altura de la l&iacute;nea inferior impresa en el recept&aacute;culo. Se midi&oacute; el volumen de las dos patas por duplicado. El grado de desplazamiento de volumen se relaciona con el grado de edema de cada pata. Se registraron datos previos al inicio de la administraci&oacute;n de extractos, y luego cada dos d&iacute;as durante la administraci&oacute;n de las sustancias evaluadas. Los resultados se expresaron como desplazamiento volum&eacute;trico (mL).</p>     <p> <i>Peso corporal</i>: cada dos d&iacute;as se registr&oacute; el peso corporal en la balanza de platillo externo (Triple Beam Balance OHAUS&reg;). </p>     <p><i>Evaluaci&oacute;n histopatol&oacute;gica</i>: una vez finalizado el periodo de administraci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de actividad antiartr&iacute;tica (semana 10), se sacrificaron los animales por dislocaci&oacute;n cervical y se obtuvieron muestras de patas mediante disecci&oacute;n siguiendo el protocolo de manejo y env&iacute;o de muestras del Laboratorio de Patolog&iacute;a, Facultad de Medicina de la Universidad Nacional de Colombia. El material para estudio histopatol&oacute;gico se fijo en formalina bufferada al 4%, se realiz&oacute; procesamiento automatizado del tejido en procesador automatizado de tejidos Citadel 2000&reg;, con deshidrataci&oacute;n mediante alcohol et&iacute;lico en concentraci&oacute;n ascendente, aclaramiento con xilol e imbibici&oacute;n en parafina de punto de fusi&oacute;n controlado (56 a 58 grados cent&iacute;grados) y posterior inclusi&oacute;n y corte del tejido para obtener l&aacute;minas histol&oacute;gicas de 3 a 4 micras de espesor que se colorearon con hematoxilina-eosina. El material se mont&oacute; en medio resinoso y se interpret&oacute; con un microscopio &oacute;ptico Nikon YS100.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <i>Inmunohistoqu&iacute;mica para TNF alfa</i>: se emple&oacute; un anticuerpo policlonal anti-factor de necrosis tumoral elaborado en conejo. Se realizaron cortes de los bloques de parafina en l&aacute;minas cargadas, recuperaci&oacute;n antig&eacute;nica mediante el uso de calor, bloqueo de la peroxidasa end&oacute;gena con per&oacute;xido de hidr&oacute;geno al 3% en metanol, incubaci&oacute;n del tejido con el anticuerpo primario por una hora y lavados con buffer fosfato de pH 7. El sistema de visualizaci&oacute;n utilizado fue el crom&oacute;geno aminoetil carbazol. Se realiz&oacute; contratinci&oacute;n con hematoxilina de Mayer y se mont&oacute; en medio resinoso. Se montaron paralelos a todo el procedimiento los correspondientes controles positivos y negativos de la t&eacute;cnica. La interpretaci&oacute;n de la inmunorreactividad se hizo con un microscopio &oacute;ptico Nikon YS100 estableciendo el tipo de c&eacute;lula presente. </p>     <p>La evaluaci&oacute;n histopatol&oacute;gica e inmunohistoqu&iacute;mica se realiz&oacute; por un pat&oacute;logo experimentado quien realiz&oacute; una lectura ciega del material histol&oacute;gico, usando una escala semicuantitativa mediante cuatro par&aacute;metros: infiltraci&oacute;n de c&eacute;lulas inflamatorias, hiperplasia sinovial, da&ntilde;o de cart&iacute;lago y erosi&oacute;n &oacute;sea (0: ausente, 1: leve, 2: moderada, 3: severa).</p>     <p> <b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b> </p>     <p>Los resultados se expresaron como media &plusmn; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar. Para los datos de delta de peso de orejas (EATPA) y delta de volumen de patas (EPC), se realiz&oacute; an&aacute;lisis de varianza univariado seguido de prueba Tukey para comparaciones m&uacute;ltiples. Respecto a par&aacute;metros del modelo CIA, para comparar los cambios dependientes del tiempo para el desplazamiento volum&eacute;trico de patas traseras y peso corporal, se emple&oacute; el an&aacute;lisis de varianza de medidas repetidas que eval&uacute;a tanto el efecto del tiempo (d&iacute;a de medici&oacute;n) como el efecto de las sustancias evaluadas, con posterior prueba de Tukey de comparaciones m&uacute;ltiples. El puntaje histopatol&oacute;gico se analiz&oacute; con estad&iacute;stica no param&eacute;trica (prueba de Kruskal-Wallis). Se consideraron valores P&lt;0,05 como significativos. Los datos fueron analizados empleando el programa SPSS 18.0 &reg;.</p>      <p> <b>Consideraciones &eacute;ticas</b> </p>     <p>Todos los experimentos se realizaron cumpliendo con los requerimientos acerca del empleo de animales con fines experimentales en la legislaci&oacute;n colombiana vigente y con la normativa de la Universidad Nacional de Colombia.</p>     <p align="center"><font size="3"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p>En el modelo EATPA en rat&oacute;n, los extractos con mayor actividad antiinflamatoria fueron ML etan&oacute;lica total, CP terpenos y CA terpenos (<a href="#t1">Tabla 1</a>), confirmando dicha actividad en un tercer ensayo obteni&eacute;ndose similar actividad antiinflamatoria (alrededor del 81% de inhibici&oacute;n). Para el modelo EPC en rata, los extractos evaluados no mostraron actividad antiinflamatoria significativa al comparar con veh&iacute;culo (P&gt;0,05). La fracci&oacute;n que mostr&oacute; el menor desplazamiento de volumen correspondi&oacute; a ML fracci&oacute;n rica en terpenos en la quinta hora (&Delta; volumen = 242&plusmn;23), aunque no present&oacute; diferencias significativas respecto al control veh&iacute;culo (&Delta; volumen = 370&plusmn;57). Esta fracci&oacute;n fue seleccionada para evaluaci&oacute;n sobre el modelo CIA. La incidencia de artritis (% de animales que dentro de cada grupo desarroll&oacute; cualquier signo de artritis sin importar la severidad) en la semana 8 despu&eacute;s de la primera inmunizaci&oacute;n fue de 50% (20 de 41). Durante las dos semanas de evaluaci&oacute;n de actividad antiartr&iacute;tica, no se observaron diferencias significativas en el desplazamiento de volumen de patas traseras ni en el peso corporal entre tratamientos (P&lt;0,05). El an&aacute;lisis histopatol&oacute;gico present&oacute; puntajes sin diferencia significativa entre tratamientos (ver <a href="#t2">Tabla 2</a>) al igual que la tinci&oacute;n para TNF alfa por inmunohistoqu&iacute;mica, la cual evidenci&oacute; inmunorreactividad en macr&oacute;fagos, fibroblastos y algunas c&eacute;lulas endoteliales presentes en los cortes respectivos.</p>     <p>     <center><a name="t1"><img src="img/revistas/biosa/v10n1/v10n1a01t1.jpg"></a></center> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>     <center><a name="t2"><img src="img/revistas/biosa/v10n1/v10n1a01t2.jpg"></a></center> </p>     <p>Los ratones recibieron v&iacute;a oral el tratamiento durante 15 d&iacute;as despu&eacute;s de la instauraci&oacute;n del proceso artr&iacute;tico. n = 4-5. * Cada par&aacute;metro histopatol&oacute;gico se valor&oacute; siguiendo una escala de severidad de 0 (ausente) a 3 (severo), evaluaci&oacute;n realizada por un pat&oacute;logo ciego al tratamiento de cada esp&eacute;cimen. Los valores correspondientes tanto a la tinci&oacute;n por hematoxilina-eosina como por TNF alfa por inmunohistoqu&iacute;mica son similares. Datos presentados como media &plusmn; desviaci&oacute;n est&aacute;ndar. No diferencias significativas seg&uacute;n Kruskal-Wallis. ML: <i>Myrcianthes leucoxila</i>.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p>Los extractos de CA y CP ricos en terpenos y ML etan&oacute;lico, mostraron buena actividad antiinflamatoria en el modelo EATPA similar a lo referido en estudios previos (9, 10, 18) en un rango comparable a la indometacina. La aplicaci&oacute;n de TPA en la oreja de rat&oacute;n se relaciona con activaci&oacute;n de fosfolipasa A2, producci&oacute;n de prostaglandinas y leucotrienos (17, 19), mediadores que podr&iacute;an intervenir en el efecto hallado para dichos extractos. En estudios previos sobre CA se refiere la presencia de triterpenos con capacidad captadora de radicales libres (8). Se ha comunicado para otras especies de <i>Calea</i> la presencia de sesquiterpenlactonas,  que podr&iacute;a estar relacionada con dicha actividad (9, 20). Asimismo, para otras especies de <i>Calea</i> se ha reportado actividad antiinflamatoria en otros biomodelos de inflamaci&oacute;n aguda y subaguda (21, 22). En relaci&oacute;n a extractos etan&oacute;licos de ML se describe actividad  antiinflamatoria en modelos de inflamaci&oacute;n aguda (10), y actividad antioxidante e inhibidora de la v&iacute;a cl&aacute;sica y terminal del sistema del complemento (23), mecanismos que podr&iacute;an vincularse con el potencial antiinflamatorio/inmunomodulador de dichas sustancias.</p>     <p> Se ha descrito el perfil de mediadores implicados en cada fase para el modelo EPC, con liberaci&oacute;n inicial de serotonina e histamina, en la fase intermedia predominio de cininas y con participaci&oacute;n de prostaglandinas en la tercera fase (18). La literatura reporta para otras especies de <i>Calea</i> actividad importante sobre este modelo (21, 22). En el presente estudio, ninguna de las sustancias evaluadas mostr&oacute; actividad antiinflamatoria. El extracto que mostr&oacute; la mayor actividad, aunque no significativa, en la quinta hora correspondi&oacute; a la fracci&oacute;n terp&eacute;nica de ML, la cual se consider&oacute; que por su mayor concentraci&oacute;n en terpenos tendr&iacute;a un mayor potencial antiinflamatorio y fue evaluada en el modelo CIA. </p>     <p>En el modelo CIA se observ&oacute; una incidencia de artritis menor y m&aacute;s tard&iacute;a a la reportada en la literatura (13, 24, 25), a pesar del seguimiento del protocolo usualmente empleado para la inducci&oacute;n de CIA, que incluy&oacute; en el desarrollo de este estudio aspectos como empleo de una cepa de rat&oacute;n susceptible, tipo de CII, protocolo de inmunizaci&oacute;n, condiciones de mantenimiento de los animales, entre otros. La severidad de artritis cl&iacute;nica y de inflamaci&oacute;n tisular, no se afect&oacute; frente a la administraci&oacute;n diaria de 100 mg/kg de la fracci&oacute;n terp&eacute;nica de ML. No se encontraron reportes de evaluaci&oacute;n sobre modelos de artritis cr&oacute;nica en las fuentes consultadas para ML. La literatura refiere que el modelo CIA tiene como ventaja especial el ser empleado para la evaluaci&oacute;n de inhibidores de citoquinas, que han incluido evaluaci&oacute;n de inhibidores de interleucina 1 (IL-1), IL-4 y factor de necrosis tumoral (TNF), entre otros (16), constituy&eacute;ndose en uno de los modelos base de evaluaci&oacute;n de potenciales antiartr&iacute;ticos para el empleo en humanos de terapias biol&oacute;gicas en AR, al demostrarse que el bloqueo de TNF-<i>a</i> e IL-1<i>B</i> disminuye la severidad cl&iacute;nica e histol&oacute;gica de la enfermedad en otros estudios (26). En el presente estudio, la expresi&oacute;n tisular de TNF-<i>a</i> no fue afectada por el extracto de ML, demostrando que no posee actividad inmunomoduladora frente a esta citoquina en el modelo de artritis autoinmune empleado.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>CONCLUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p>Este estudio demostr&oacute; actividad antiinflamatoria en el modelo EATPA de las fracciones ricas en terpenos de CP, CA y fracci&oacute;n etan&oacute;lica total de ML. No mostraron las muestras evaluadas actividad sobre el modelo edema plantar por carragenina, y la fracci&oacute;n terp&eacute;nica de ML no present&oacute; efecto antiartr&iacute;tico sobre el modelo artritis inducida por col&aacute;geno en rat&oacute;n.</p>      <p align="center"><font size="3"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El presente trabajo se desarroll&oacute; como parte de las actividades del proyecto de investigaci&oacute;n: &quot;Estudio farmacol&oacute;gico de posibles antiartr&iacute;ticos de origen natural en un modelo murino&quot;, financiado por la Divisi&oacute;n de Investigaci&oacute;n de Bogot&aacute; de la Universidad Nacional de Colombia (UNC) (Proyecto QUIPU 20301007495).</p> <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p>1. Van Vollenhoven RF. Treatment of rheumatoid arthritis: state of the art 2009. Nat Rev Rheumatol 2009 Oct; 5(10):531-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S1657-9550201100010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 2. Patwardhan B, Gautam M. Botanical immunodrugs: scope and opportunities. Drug Discov Today 2005 Apr 1; 10(7):495-502. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S1657-9550201100010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Zhang P, Li J, Han Y, Yu XW, Qin L. Traditional Chinese medicine in the treatment of rheumatoid arthritis: a general review. Rheumatol Int. 2010 Apr; 30(6):713-8. Epub 2010 Mar 5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S1657-9550201100010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 4. Garc&iacute;a Barriga H. Flora Medicinal Colombiana. Bot&aacute;nica m&eacute;dica. Colciencias; 1975. Tomo II, p. 207, 303. Tomo III, p. 33, 83, 303. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S1657-9550201100010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Rodr&iacute;guez M, Vergel N, Ospina LF, Calle J y Pinz&oacute;n R. Evaluaci&oacute;n de actividades enzim&aacute;ticas elastasa y mieloperoxidasa como marcadores de degranulaci&oacute;n leucocitaria en modelos de inflamaci&oacute;n aguda. Rev. Col. Cienc. Qu&iacute;m. Farm. 2004; 34: 35-45.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S1657-9550201100010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 6. Franco LA, Matiz GE, Calle J, Pinz&oacute;n R, Ospina LF. Actividad antinflamatoria de extractos y fracciones obtenidas de c&aacute;lices de <i>Physalis peruviana</i> L. Biom&eacute;dica 2007; 27:110-5. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S1657-9550201100010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Mart&iacute;nez W, Ospina LF, Granados D, Delgado G. <i>In vitro</i> studies on the relationship between the antiinflammatory activity of <i>Physalis peruviana</i> extracts and the phagocytic process. Immunopharmacol Immunotoxicol 2010 Mar; 32(1):63-73.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S1657-9550201100010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 8. Duarte E, Casta&ntilde;eda JA. Estudio fitoqu&iacute;mico y de la actividad inmunomoduladora de las fracciones m&aacute;s activas obtenidas del extracto etan&oacute;lico de la corteza de <i>Curatella americana</i> (Tesis). Bogot&aacute;, Colombia: Universidad Nacional de Colombia; 2003. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S1657-9550201100010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Ospina LF, Cardozo CM, Mora AC, Calle J, Pinz&oacute;n R. Screening de actividades antioxidante y antiinflamatoria de plantas medicinales colombianas. En: Fresquet JL, Aguirre CP, eds. 5&deg; Coloquio Europeo de Etnofarmacolog&iacute;a - El Mestizaje cultural en etnofarmacolog&iacute;a: de los saberes ind&iacute;genas a los cient&iacute;ficos. Revista de Fitoterapia 2005; 5(Supl.1): 212.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S1657-9550201100010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 10. Gonz&aacute;lez MC, Ospina LF, Calle J, Rinc&oacute;n J. Evaluaci&oacute;n de extractos y fracciones de plantas colombianas en modelos de inflamaci&oacute;n aguda, subcr&oacute;nica y cr&oacute;nica Rev. Colomb. Cienc. Qu&iacute;m. Farm. 2007; 36(2):166-174. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S1657-9550201100010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Kerwar SS, Oronsky AL. Rheumatoid arthritis, experimental models. In: Roitt IM, Delves PJ, eds. Encyclopedia of immunology. London: Academic Press; 1992. p. 1332-36.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S1657-9550201100010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 12. Crofford LJ, Wilder RL. Arthritis and autoimmunity in animals. In: McCarty DJ, Koopman WJ, eds. Arthritis and allied conditions. A textbook of rheumatology. Philadelphia: Lea &amp; Febiger; 1993. p. 525-531. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S1657-9550201100010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Rosloniec EF, Cremer M, Kang A, Myers LK. Collagen-induced arthritis. In: Current protocols in immunology. New York: John Wiley and Sons; 1996. p. 15.5.1-15.5.24.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S1657-9550201100010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 14. Myers LK, Rosloniec EF, Cremer MA, Kang AH. Collagen-induced arthritis, an animal model of autoimmunity. Life Sci. 1997; 61(19):1861-78. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S1657-9550201100010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Holmdahl R, Bockermann R, Bäcklund J, Yamada H. The molecular pathogenesis of collagen-induced arthritis in mice- a model for rheumatoid arthritis. Ageing Res Rev 2002 Feb; 1(1):135-47.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S1657-9550201100010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 16. Wooley PH. The usefulness and the limitations of animal models in identifying targets for therapy in arthritis. Best Pract Res Clin Rheumatol 2004 Feb; 18(1):47-58. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S1657-9550201100010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Garc&iacute;a MD, Fern&aacute;ndez MA, &Aacute;lvarez A, S&aacute;enz MT. Antinociceptive and anti-inflammatory effect of the aqueous extract from leaves of <i>Pimenta racemosa</i> var. ozua (Mirtaceae). J Ethnopharmacol 2004 Mar; 91(1):69-73.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S1657-9550201100010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 18. Alexandre-Moreira MS, Piuvezam MR, Ara&uacute;jo CC, Thomas G. Studies on the anti-inflammatory and analgesic activity of <i>Curatella americana</i> L. J Ethnopharmacol 1999 Nov 1; 67(2):171-7. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S1657-9550201100010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Hern&aacute;ndez V, Recio MC, M&aacute;&ntilde;ez S, Giner RM, R&iacute;os JL. Effects of naturally occurring dihydroflavonols from Inula viscosa on inflammation and enzymes involved in the arachidonic acid metabolism. Life Sciences 2007; 81:480-8.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S1657-9550201100010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 20. Bork PM, Schmitz ML, Kuhnt M, Escher C, Heinrich M. Sesquiterpene lactone containing Mexican Indian medicinal plants and pure sesquiterpene lactones as potent inhibitors of transcription factor NF-?B. FEBS Lett 1997; 402:85-90. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S1657-9550201100010000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Venegas-Flores H, Segura-Cobos D, V&aacute;zquez-Cruz B. 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Garnica Monroy C. Contribuci&oacute;n al estudio fitoqu&iacute;mico y de la actividad inmunomoduladora del extracto etan&oacute;lico de las hojas de <i>Myrcianthes leucoxila</i> (Tesis). Bogot&aacute;, Colombia: Universidad Nacional de Colombia; 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S1657-9550201100010000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p> 24. Shin SS, Jin M, Jung HJ, Kim B, Jeon H, Choi JJ, et al. Suppressive effects of PG201, an ethanol extract from herbs, on collagen-induced arthritis in mice. 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