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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EL CUERPO LÚTEO: UNA VISIÓN INMUNOLÓGICA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The aim of the present review is to describe the current concepts of the local mechanism for the cascade of development and regression of the corpus luteum (CL) as regulated by macrophages, immunological cells and cytokines. The cow CL is a dynamic organ which has a life time of approximately 17-18 days. The main function of the CL is to secrete a large amount of progesterone (P4). As the CL matures, the steroidogenic cells establish contact with many capillaries and the matured CL is composed of many vascular endothelial cells that account for up to 50 % of all CL cells. In cattle and other species, the CL plays a central role in the regulation of cyclicity and maintenance of pregnancy. In many species, luteal regression is initiated by uterine release of PGF2&alpha;, which inhibits steroidogenesis and may launch a cascade of events leading to the tissue final disappearance. Immune cells, primarily macrophages and T lymphocites are important for ingestion of cellular remnants that result from the death of luteal cells. Macrophages are multifunctional cells that play key roles in the immune response and are abundant throughout female reproductive tissues. Their specific localization and variations in distribution in the ovary during different stages of the cycle, suggest that macrophages play diverse roles in intra-ovarian events including folliculogenese, tissue restructuring at ovulation and CL formation and regression.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">          <p align="center"><font size="4"><b>EL CUERPO L&Uacute;TEO: UNA VISI&Oacute;N INMUNOL&Oacute;GICA</b></font></p>          <p align="center"><font size="3"><b>CORPUS LUTEUM: AN INMUNOLOGICAL VIEW</b></font></p>              <p align="right">Luis Fernando Uribe-Vel&aacute;squez<sup>1</sup>    <br> Jos&eacute; Henry Osorio<sup>2</sup>    <br> Adriana Correa-Orozco<sup>3</sup></p>          <p><i><sup>1</sup> Ph.D., Profesor Asociado, Departamento de Salud Animal, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Caldas. E-mail: <a href="mailto:lfuribe@ucaldas.edu.co">lfuribe@ucaldas.edu.co</a>.    <br>   <sup>2</sup> Ph.D., Profesor Titular, Departamento de Ciencias B&aacute;sicas, Facultad de Ciencias para la Salud, Universidad de Caldas.     <br> <sup>3</sup> MVZ, M.Sc., Joven Investigador COLCIENCIAS, Grupo de Investigaci&oacute;n en Ciencias Veterinarias: CIENVET, Universidad de Caldas.</i></p>     <p>Recibido: septiembre 22 de 2011 - Aceptado: octubre 7 de 2011</p> <hr size="1" />                ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="3"><b>RESUMEN</b></font></p>       <p>El objetivo de la presenta revisi&oacute;n es describir los conceptos actuales sobre el mecanismo local de la cascada de desarrollo y regresi&oacute;n del cuerpo l&uacute;teo (CL) regulado por macr&oacute;fagos, c&eacute;lulas inmunol&oacute;gicas y citoquinas. El CL de la vaca es un &oacute;rgano din&aacute;mico, el cual tiene una vida media de aproximadamente 17 a 18 d&iacute;as. La principal funci&oacute;n del CL es secretar grandes cantidades de progesterona (P<sub>4</sub>). Cuando el CL madura, las c&eacute;lulas esteroidog&eacute;nicas establecen contacto con muchos capilares. Adem&aacute;s, el CL maduro est&aacute; compuesto de muchas c&eacute;lulas endoteliales vasculares, las cuales pueden alcanzar hasta el 50 % de todas las c&eacute;lulas del CL. En el ganado bovino y otras especies, el CL juega un papel central en la regulaci&oacute;n de la ciclicidad y en el mantenimiento de la pre&ntilde;ez. En muchas especies, la regresi&oacute;n luteal es iniciada por la liberaci&oacute;n uterina de prostaglandina F<sub>2&alpha;</sub> (PGF<sub>2&alpha;</sub>), la cual inhibe la esteroidog&eacute;nesis, desencadenando una cascada de eventos que llevan a la desaparici&oacute;n final del tejido. Las c&eacute;lulas inmunes, principalmente los macr&oacute;fagos y los linfocitos T, son importantes para la ingesti&oacute;n de los restos celulares que resultan de la muerte de las c&eacute;lulas luteales. Los macr&oacute;fagos son c&eacute;lulas multifuncionales que juegan un papel clave en la respuesta inmune y son abundantes en todo el tejido reproductivo de la hembra. Su localizaci&oacute;n espec&iacute;fica y las variaciones de la distribuci&oacute;n en el ovario durante los diferentes estados del ciclo, sugieren que los macr&oacute;fagos juegan diversas funciones en los eventos intraov&aacute;ricos, lo que incluye: la foliculog&eacute;nesis, la reestructuraci&oacute;n del tejido en la ovulaci&oacute;n y la formaci&oacute;n y regresi&oacute;n del CL.</p>          <p><i>PALABRAS CLAVE</i>: ciclo estral, endotelinas, factor de necrosis tumoral-&alpha;, macr&oacute;fagos, ovario, progesterona.</p> <hr size="1" />                <p align="center"><font size="3"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p>The aim of the present review is to describe the current concepts of the local mechanism for the cascade of development and regression of the corpus luteum (CL) as regulated by macrophages, immunological cells and cytokines. The cow CL is a dynamic organ which has a life time of approximately 17-18 days. The main function of the CL is to secrete a large amount of progesterone (P<sub>4</sub>). As the CL matures, the steroidogenic cells establish contact with many capillaries and the matured CL is composed of many vascular endothelial cells that account for up to 50 % of all CL cells. In cattle and other species, the CL plays a central role in the regulation of cyclicity and maintenance of pregnancy. In many species, luteal regression is initiated by uterine release of PGF<sub>2&alpha;</sub>, which inhibits steroidogenesis and may launch a cascade of events leading to the tissue final disappearance. Immune cells, primarily macrophages and T lymphocites are important for ingestion of cellular remnants that result from the death of luteal cells. Macrophages are multifunctional cells that play key roles in the immune response and are abundant throughout female reproductive tissues. Their specific localization and variations in distribution in the ovary during different stages of the cycle, suggest that macrophages play diverse roles in intra-ovarian events including folliculogenese, tissue restructuring at ovulation and CL formation and regression.</p>          <p><i>KEY WORDS</i>: estrous cycle, endothelin, tumor necrosis factor-&alpha;, macrophages, ovary, progesterone.</p>  <hr size="1" />                <p align="center"><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>Los nuevos avances relacionados con la comprensi&oacute;n de la inmunolog&iacute;a de la reproducci&oacute;n animal extienden las fronteras de la Medicina Veterinaria y abren las puertas hacia nuevas estrategias terap&eacute;uticas, de diagn&oacute;stico y de monitoreo de los problemas reproductivos de origen inmunol&oacute;gico en los animales dom&eacute;sticos. El sistema inmune tiene un importante papel en la regulaci&oacute;n de los ejes endocrinos, participando activamente en diferentes niveles y localmente en el ovario.</p>     <p>  El ciclo ov&aacute;rico est&aacute; caracterizado por patrones repetidos de proliferaci&oacute;n celular, diferenciaci&oacute;n y transformaci&oacute;n que acompa&ntilde;an el desarrollo folicular, la formaci&oacute;n y regresi&oacute;n del cuerpo l&uacute;teo (CL). El CL es una gl&aacute;ndula endocrina transitoria, secretora de progesterona (P<sub>4</sub>), la cual juega un papel importante en el mantenimiento de la pre&ntilde;ez en los mam&iacute;feros dom&eacute;sticos (<a href="#1">1</a>). Adem&aacute;s, el CL tambi&eacute;n secreta en cantidades menores: estr&oacute;genos, relaxina, oxitocina, neurofisina I, inhibina y vasopresina. Las gonadotrofinas derivadas de la hip&oacute;fisis y la hormona del crecimiento (GH), son las principales reguladoras de la maduraci&oacute;n folicular final y de la funci&oacute;n del CL. Existen tambi&eacute;n, otros factores de origen extra e intraov&aacute;ricos que modulan la respuesta local de estas hormonas o poseen funciones directas espec&iacute;ficas. La formaci&oacute;n del CL, es iniciada por una serie de cambios morfol&oacute;gicos y bioqu&iacute;micos en las c&eacute;lulas de la teca interna y de la granulosa del fol&iacute;culo preovulatorio. Durante el desarrollo inicial hasta la mitad de la fase luteal, la oxitocina, las prostaglandinas y la P<sub>4</sub> estimulan la proliferaci&oacute;n de las c&eacute;lulas luteales, cuya funci&oacute;n es soportada por la acci&oacute;n luteotr&oacute;fica de un gran n&uacute;mero de factores de crecimiento. La expresi&oacute;n de RNAm, la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas y los diferentes factores de crecimiento, de los cuales se puede citar el factor de crecimiento endotelial vascular (VEGF); los factores de crecimiento de fibroblastos 1 y 2 (FGF-1 y el FGF-2) y los factores de crecimiento tipo insulina (IGFs) presentes en el citoplasma de las c&eacute;lulas luteales, sugieren un papel importante en el control luteal. Adem&aacute;s de ello, los IGFs est&aacute;n involucrados en la foliculog&eacute;nesis, la esteroidog&eacute;nesis ov&aacute;rica y en la funci&oacute;n luteal (<a href="#2">2</a>). En la ausencia de pre&ntilde;ez, se presenta la lute&oacute;lisis del CL. En bovinos y otros animales dom&eacute;sticos, la vida media del CL es controlada principalmente por las hormonas luteol&iacute;ticas uterinas, como: la prostaglandina F<sub>2&alpha;</sub> (PGF<sub>2&alpha;</sub>), la oxitocina y la GH (Hormona del crecimiento), afectando la duraci&oacute;n del ciclo estral (<a href="#3">3</a>). La misma P<sub>4</sub> regula el intervalo interovulatorio, por su influencia al momento de la se&ntilde;alizaci&oacute;n luteol&iacute;tica de la PGF<sub>2&alpha;</sub> desde el endometrio (<a href="#1">1</a>). La presente revisi&oacute;n pretende explorar, a trav&eacute;s de los diferentes trabajos experimentales, los avances m&aacute;s relevantes relacionados con las c&eacute;lulas inmunol&oacute;gicas involucradas en el proceso de formaci&oacute;n, regulaci&oacute;n y mantenimiento del CL.</p>      <p><b>FORMACION DEL CUERPO LUTEO</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  La ecograf&iacute;a transrectal permite la observaci&oacute;n y la evaluaci&oacute;n del CL ovino y bovino durante el ciclo estral. Las im&aacute;genes ecogr&aacute;ficas y el tama&ntilde;o del CL var&iacute;an desde la ovulaci&oacute;n hasta la lute&oacute;lisis, siendo el tama&ntilde;o correlacionado con el d&iacute;a del ciclo estral y los niveles plasm&aacute;ticos de P<sub>4</sub>. La presencia de una cavidad central dentro del CL no muestra efectos sobre la duraci&oacute;n del ciclo estral o en las concentraciones plasm&aacute;ticas de P<sub>4</sub> (<a href="#4">4</a>). A trav&eacute;s de la t&eacute;cnica ecogr&aacute;fica, ha sido observado por lo menos un CL en la mitad de la fase luteal en ovejas. El CL, ha sido observado desde el tercer d&iacute;a despu&eacute;s de la ovulaci&oacute;n en hembras ovinas (<a href="#5">5</a>) y tambi&eacute;n durante todo el ciclo estral en ovejas sincronizadas con prostaglandinas (<a href="#6">6</a>). Se ha evidenciado en bovinos (<a href="#7">7</a>) que CL cavitarios (son los que presentan una cavidad central llena de liquido), est&aacute;n acompa&ntilde;ados de mayores fol&iacute;culos preovulatorios, sin afectar la fertilidad (<a href="#8">8</a>), los cuales tienen una importante participaci&oacute;n en la secreci&oacute;n de P<sub>4</sub>.</p>     <p>  El CL es un tejido heterog&eacute;neo, conformado por c&eacute;lulas endoteliales, miocitos (musculatura lisa), por c&eacute;lulas inmunes, por fibroblastos y por c&eacute;lulas luteales grandes, que ocupan el 40.2 &plusmn; 7 % del tejido luteal y por las c&eacute;lulas luteales peque&ntilde;as esteroidog&eacute;nicas, en un porcentaje del 27.7 &plusmn; 6.3 % (<a href="#9">9</a>). Las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas de las c&eacute;lulas luteales en la mitad del ciclo del CL en varias especies dom&eacute;sticas, son mostradas en la <a href="#tab1">tabla 1</a> (<a href="#10">10</a>, <a href="#11">11</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/biosa/v10n2/v10n2a09tab1.gif"><a name="tab1"></a></p>     <p>  Las c&eacute;lulas luteales son derivadas de las c&eacute;lulas de la teca y de la granulosa del fol&iacute;culo ov&aacute;rico, las cuales se diferencian en c&eacute;lulas luteales peque&ntilde;as y grandes, respectivamente. Las c&eacute;lulas luteales peque&ntilde;as, son estructuralmente m&aacute;s condicionadas para las funciones esteroidog&eacute;nicas, mientras que las c&eacute;lulas luteales grandes secretan adem&aacute;s de esteroides, p&eacute;ptidos reguladores (<a href="#11">11</a>).</p>     <p>  El CL en los animales dom&eacute;sticos es un &oacute;rgano din&aacute;mico que depende del crecimiento c&iacute;clico y de la regresi&oacute;n. Con la maduraci&oacute;n del CL, la angiog&eacute;nesis, o sea la formaci&oacute;n de nuevos vasos sangu&iacute;neos, es intensa e indispensable para el r&aacute;pido crecimiento luteal (<a href="#12">12</a>). En la mitad de la fase luteal, la mayor&iacute;a de las c&eacute;lulas esteroidog&eacute;nicas est&aacute;n adyacentes a uno o m&aacute;s capilares, permitiendo el aumento del flujo sangu&iacute;neo (<a href="#13">13</a>). Aunque las principales hormonas luteotr&oacute;picas y luteol&iacute;ticas en hembras bovinas, son la hormona luteinizante (LH) (<a href="#14">14</a>) y la PGF<sub>2&alpha;</sub> (<a href="#15">15</a>); respectivamente, algunos p&eacute;ptidos ov&aacute;ricos tambi&eacute;n son importantes reguladores paracrinos del desarrollo y regresi&oacute;n del CL. Por ejemplo, con respecto a la regulaci&oacute;n de la perfusi&oacute;n luteal y secreci&oacute;n de P<sub>4</sub>, los factores angiog&eacute;nicos y vasoactivos juegan un papel importante (<a href="#12">12</a>). Los principales factores de crecimiento angiog&eacute;nicos a ser considerados son el VEGF y el FGF2 (factor de crecimiento de fibroblastos), los cuales son potentes estimulantes de la proliferaci&oacute;n de las c&eacute;lulas endoteliales y de la migraci&oacute;n (<a href="#16">16</a>, <a href="#17">17</a>). Sus actividades biol&oacute;gicas est&aacute;n mediadas por los receptores del factor de crecimiento endotelial vascular (VEGFR) y por los receptores del FGFR, respectivamente (<a href="#18">18</a>). Una sustancia vasoactiva ejemplar con gran relevancia para la angiog&eacute;nesis luteal es el factor vasodilatador &oacute;xido n&iacute;trico (NO), el cual es liberado desde el lugar de la inflamaci&oacute;n aguda (<a href="#19">19</a>, <a href="#20">20</a>). Cabe anotar que, las concentraciones en el fluido folicular del NO, var&iacute;an tambi&eacute;n de acuerdo al tama&ntilde;o folicular, estado funcional y fase del ciclo estral, sugiriendo su importancia fisiol&oacute;gica durante el ciclo estral en rumiantes (<a href="#21">21</a>).</p>      <p><b>REGULACI&Oacute;N DE LA FUNCI&Oacute;N DEL CUERPO L&Uacute;TEO</b></p>     <p>  La funci&oacute;n luteal intr&iacute;nseca es controlada por la interacci&oacute;n de varios factores luteotr&oacute;ficos que incluyen gonadotropinas (LH y la gonadotropina cori&oacute;nica equina -eCG-), prolactina, PGF<sub>2&alpha;</sub> y estr&oacute;geno. La hormona luteotr&oacute;pica primaria en la mayor&iacute;a de las especies es la LH. Dicha gonadotropina, es esencial para la inducci&oacute;n de la ovulaci&oacute;n y el inicio del proceso de luteinizaci&oacute;n. En los rumiantes dom&eacute;sticos, las principales hormonas luteotr&oacute;ficas que soportan el desarrollo y funci&oacute;n del CL son la LH y la GH (Hormona del crecimiento) (<a href="#1">1</a>). La s&iacute;ntesis de P<sub>4</sub>, est&aacute; dada por las hormonas luteotr&oacute;ficas, principalmente, la LH, adem&aacute;s de la hormona fol&iacute;culo estimulante (FSH) y el estradiol, aunque en algunas especies como los roedores, la prolactina ha desempe&ntilde;ado este papel.</p>     <p>  El CL bovino se desarrolla r&aacute;pidamente dos &oacute; tres d&iacute;as despu&eacute;s de la ovulaci&oacute;n, fen&oacute;meno que es acompa&ntilde;ado por la angiog&eacute;nesis y la vascularizaci&oacute;n desde el fol&iacute;culo preovulatorio (<a href="#18">18</a>). Adem&aacute;s, el CL bovino posee un gran potencial para producir un n&uacute;mero importante de factores angiog&eacute;nicos. El VEGF, el principal factor regulador de la angiog&eacute;nesis, es un potente mit&oacute;geno para las c&eacute;lulas endoteliales (<a href="#22">22</a>)	y un estimulante de la permeabilidad capilar (<a href="#23">23</a>).</p>     <p>  La producci&oacute;n de P<sub>4</sub> por el CL bovino, es regulada por la actividad de diferentes enzimas esteroidog&eacute;nicas, incluyendo la citocromo P450 que rompe la cadena lateral del colesterol (P450<sub>scc</sub>) (<a href="#24">24</a>). Para el control de la s&iacute;ntesis de P<sub>4</sub> en el CL, existen, por lo menos, dos tipos de c&eacute;lulas esteroidog&eacute;nicas, las cuales son diferentes morfol&oacute;gica y bioqu&iacute;micamente en el CL de hembras bovinas y ovejas, y en la mayor&iacute;a de las especies mam&iacute;feras (<a href="#25">25</a>). En ovejas, las c&eacute;lulas luteales peque&ntilde;as poseen 12-20 &micro;m de di&aacute;metro, originarias de las c&eacute;lulas de la teca folicular con receptores para la LH, responden a LH o al AMP c&iacute;clico (AMPc) incrementando la producci&oacute;n de P<sub>4</sub>. Las c&eacute;lulas luteales grandes (&gt; 20 &micro;m), son originadas de las c&eacute;lulas de la granulosa, las cuales secretan altas concentraciones basales de P<sub>4</sub> y aunque tienen receptores para LH, dichas c&eacute;lulas no responden a LH o al AMPc para aumentar las concentraciones de P<sub>4</sub>, dependiendo entonces de una gran cantidad de receptores para GH, los cuales son responsables por el 80 % de la producci&oacute;n total de P<sub>4</sub> (<a href="#1">1</a>). En la <a href="#fig1">figura 1</a>, se puede observar el modelo de regulaci&oacute;n de las c&eacute;lulas luteales grandes y peque&ntilde;as (<a href="#26">26</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/biosa/v10n2/v10n2a09fig1.gif"><a name="fig1"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  El CL es una gl&aacute;ndula transitoria que, en ausencia de apropiadas se&ntilde;ales embrionarias, sufre lute&oacute;lisis. En la mayor&iacute;a de las especies, la regresi&oacute;n luteal es iniciada por la liberaci&oacute;n de la PGF<sub>2&alpha;</sub> desde el &uacute;tero, lo que provoca una cascada de eventos dentro del CL (<a href="#fig2">figura 2</a>). La lute&oacute;lisis en mam&iacute;feros se compone de una fase de regresi&oacute;n funcional y otra estructural. As&iacute;, una disminuci&oacute;n en la secreci&oacute;n de P<sub>4</sub> se presenta antes de las se&ntilde;ales bioqu&iacute;micas de la lute&oacute;lisis estructural, provocando una disminuci&oacute;n en la morfolog&iacute;a del CL (<a href="#27">27</a>). Los cambios funcionales y estructurales observados durante la lute&oacute;lisis inducida por la PGF<sub>2&alpha;</sub> dependen de los factores paracrinos y endocrinos producidos por el CL (<a href="#28">28</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/biosa/v10n2/v10n2a09fig2.gif"><a name="fig2"></a></p>      <p><b>C&Eacute;LULAS INMUNES DEL CUERPO L&Uacute;TEO</b></p>     <p>  En ausencia de pre&ntilde;ez, las c&eacute;lulas inmunes han sido implicadas en el proceso de la regresi&oacute;n luteal. Los neutr&oacute;filos, macr&oacute;fagos y linfocitos T, predominan en el CL alrededor del momento de la lute&oacute;lisis y est&aacute;n directamente involucrados en la destrucci&oacute;n de las c&eacute;lulas luteales, con la subsecuente disminuci&oacute;n en la secreci&oacute;n de P<sub>4</sub> (<a href="#29">29</a>, <a href="#30">30</a>). Despu&eacute;s de la inflamaci&oacute;n, los mecanismos antiinflamatorios interact&uacute;an con los procesos inflamatorios propios de la ovulaci&oacute;n. Este proceso es mediado en parte por los glucocorticoides originados desde la adrenal, actuando a trav&eacute;s del receptor NR3C1 (Receptor nuclear subfamilia 3, grupo C, miembro 1), expresado en las c&eacute;lulas epiteliales de la superficie ov&aacute;rica. Las citoquinas proinflamatorias, como la interleuquina-1 (IL-1), pueden producir durante la ovulaci&oacute;n incrementos de la expresi&oacute;n de la enzima hidroxiesteroide deshidrogenasa (11-P) en el epitelio ov&aacute;rico, la cual convierte la cortisona a cortisol antiinflamatorio (<a href="#31">31</a>, <a href="#32">32</a>). Consecuentemente, el cortisol se une al NR3C1 e inactiva la se&ntilde;al antiinflamatoria (<a href="#33">33</a>). Los niveles circulantes de cortisol son relativamente constantes durante el ciclo estral bovino, hormona que es sintetizada desde la gl&aacute;ndula adrenal. Estudios han reportado que el cortisol inhibe la apoptosis inducida por TNF-IFNG (Factor de necrosis tumoral-Interfer&oacute;n gama) <i>in vitro</i>, reduciendo las se&ntilde;ales de apoptosis v&iacute;a CASP8 (Caspasa 8) y CASP3 (Caspasa 3) en el CL bovino. De modo que, el incremento en la secreci&oacute;n del cortisol es resultante del aumento de la HSD11B1 (11beta-hidroxiesteroide deshidrogenasa tipo 1) en las fases iniciales y media del CL, facilitando la funci&oacute;n luteal y suprimiendo la apoptosis de las c&eacute;lulas luteales (<a href="#34">34</a>).</p>     <p>  En un gran n&uacute;mero de especies, la poblaci&oacute;n de las c&eacute;lulas inmunes dentro del CL fluct&uacute;a a trav&eacute;s del ciclo estral o menstrual, siendo involucradas en el mantenimiento y la regresi&oacute;n del CL (<a href="#35">35</a>). La quimioquina MCP-1 (prote&iacute;na quimioatrayente de monocitos), es una de las mol&eacute;culas m&aacute;s potentes que provoca reclutamiento de monocitos y macr&oacute;fagos. La s&iacute;ntesis y secreci&oacute;n de la MCP-1 en el CL puede ser estimulada por la administraci&oacute;n ex&oacute;gena de hormonas luteol&iacute;ticas (<a href="#36">36</a>, <a href="#37">37</a>), como la PGF<sub>2&alpha;</sub>. El reclutamiento de macr&oacute;fagos hacia el CL de ratas, conejos y hembras bovinas es regulado probablemente, por la expresi&oacute;n de la MCP-1 (<a href="#38">38</a>). La expresi&oacute;n de esta prote&iacute;na y la relativa distribuci&oacute;n de las c&eacute;lulas inmunes en el CL bovino, han sido estudiados durante el ciclo estral. La expresi&oacute;n MCP-1 fue evidente en los d&iacute;as 6, 12 y 18 despu&eacute;s de la ovulaci&oacute;n durante el ciclo estral bovino (d&iacute;a cero = ovulaci&oacute;n). El incremento en la expresi&oacute;n de la MCP-1 fue acompa&ntilde;ada por el ac&uacute;mulo de c&eacute;lulas inmunes en el CL bovino, resultados que soportan la hip&oacute;tesis que, la MCP-1 promueve el reclutamiento de las c&eacute;lulas inmunes hacia el CL facilitando la regresi&oacute;n (<a href="#35">35</a>).</p>     <p>  Las primeras descripciones de la presencia de las c&eacute;lulas blancas en el CL bovino fueron en 1968 (<a href="#39">39</a>). Estos autores observaron que los linfocitos est&aacute;n presentes en el tejido conectivo rodeando el &aacute;rea vascular luteal en el d&iacute;a 14 del ciclo estral. Durante los d&iacute;as 15 a 17, los linfocitos est&aacute;n infiltrados entre las c&eacute;lulas luteales grandes y peque&ntilde;as, pudi&eacute;ndose visualizar los macr&oacute;fagos en el d&iacute;a 19. Las c&eacute;lulas inmunes m&aacute;s abundantes en el CL bovino, son la l&iacute;nea monocito/macr&oacute;fago, seguidos por los linfocitos T CD8<sup>+</sup> y CD4<sup>+</sup>. &Eacute;stos &uacute;ltimos han sido detectados en el CL en todas las fases del ciclo estral (<a href="#35">35</a>). Se ha observado un incremento en la cantidad de linfocitos y macr&oacute;fagos en el CL al momento de la lute&oacute;lisis. La mayor&iacute;a de los linfocitos T en el CL migran hacia el tejido, pero en algunos casos la proliferaci&oacute;n de los linfocitos se presenta dentro del tejido. La presencia e incremento de los linfocitos al momento de la lute&oacute;lisis implica que estas c&eacute;lulas pueden estar involucradas en el proceso que facilita la regresi&oacute;n (<a href="#40">40</a>). Parte de la adquisici&oacute;n de la capacidad luteol&iacute;tica, se debe al incremento en la MCP-1, incluyendo adem&aacute;s, el marcado acumulo de c&eacute;lulas inmunes en el CL en este periodo. Este concepto se extiende tambi&eacute;n al periodo de reconocimiento materno de la pre&ntilde;ez. La pre&ntilde;ez suprime los mecanismos de la respuesta inmune, evitando la regresi&oacute;n del CL (<a href="#35">35</a>). Otros autores (<a href="#41">41</a>) sugieren que, las c&eacute;lulas inmunes dentro del CL, contribuyen con alguna toxicidad provocando p&eacute;rdida embrionaria temprana en bovinos. Las citoquinas, las PGF<sub>2&alpha;</sub> y otros productos originados desde las c&eacute;lulas inmunes podr&iacute;an ser responsables de tales efectos t&oacute;xicos.</p>     <p>  Los macr&oacute;fagos son importantes para la ingesti&oacute;n de residuos celulares resultantes de la muerte de c&eacute;lulas luteales. Las c&eacute;lulas inmunes est&aacute;n involucradas directamente en la destrucci&oacute;n de las c&eacute;lulas luteales, adem&aacute;s de la p&eacute;rdida de la esteroidog&eacute;nesis (<a href="#29">29</a>).</p>      <p><b>CARACTER&Iacute;STICAS GENERALES Y FUNCIONES DE LOS MACR&Oacute;FAGOS EN EL TEJIDO OV&Aacute;RICO</b></p>     <p>  Los macr&oacute;fagos son c&eacute;lulas multifuncionales que juegan un rol importante en la respuesta inmune, siendo muy abundantes en el tejido reproductivo de la hembra. Los macr&oacute;fagos se identifican en los tejidos ejecutando diversas funciones, incluyendo fagocitosis y degradaci&oacute;n de ant&iacute;genos extra&ntilde;os; disoluci&oacute;n y remodelaci&oacute;n de la matriz; y producci&oacute;n y secreci&oacute;n de citoquinas, quimoquinas y factores de crecimiento. La presencia de los macr&oacute;fagos en el ovario, ha sido establecida hace varios a&ntilde;os. Su identificaci&oacute;n fue el resultado de estudios realizados en 1964, examinando la distribuci&oacute;n de los macr&oacute;fagos en el ovario de la rata (<a href="#42">42</a>). Su localizaci&oacute;n espec&iacute;fica y distribuci&oacute;n en el ovario durante las fases del ciclo estral, sugieren que los macr&oacute;fagos juegan diversos papeles en los eventos intraov&aacute;ricos, incluyendo la foliculog&eacute;nesis y la reestructuraci&oacute;n de los tejidos, as&iacute; como en la formaci&oacute;n y regresi&oacute;n del CL. De la misma forma, los macr&oacute;fagos participan en la regulaci&oacute;n del eje hip&oacute;fisis-g&oacute;nadas encontr&aacute;ndose en diversos &oacute;rganos como son: el ovario, &uacute;tero y gl&aacute;ndula mamaria. Cada una de las principales funciones de los macr&oacute;fagos en las diferentes fases del ciclo ov&aacute;rico y su impacto son mostradas en la <a href="#fig3">figura 3</a> (<a href="#43">43</a>).</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/biosa/v10n2/v10n2a09fig3.gif"><a name="fig3"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  Una selecci&oacute;n de los productos de los macr&oacute;fagos y sus funciones se ilustran en la <a href="#fig4">figura 4</a>. En general, la producci&oacute;n y liberaci&oacute;n de estas prote&iacute;nas secretoras, est&aacute; regulada temporalmente y de una manera tejido-espec&iacute;fica, por mecanismos paracrinos y autocrinos.</p>     <p align="center"><img src="img/revistas/biosa/v10n2/v10n2a09fig4.gif"><a name="fig4"></a></p>     <p>  Los macr&oacute;fagos secretan una gran cantidad de citoquinas que incluyen: interleuquinas (IL)-1-6-10 y 12 e interfer&oacute;n &alpha; (IFN&alpha;), adem&aacute;s de una variedad de factores de crecimiento, que contienen el factor de crecimiento epidermal (EGF); el IGF; el VEGF; el factor estimulante de colonias de granulocitos y macr&oacute;fagos (GM-CSF); y el factor de crecimiento de transformaci&oacute;n (TGF) &alpha; y &beta;; tambi&eacute;n el factor de necrosis tumoral (TNF<sub>&alpha;</sub>), cada uno de ellos con un papel importante dentro de la funci&oacute;n ov&aacute;rica (<a href="#44">44</a>). El TNF<sub>&alpha;</sub> se origina desde las c&eacute;lulas endoteliales, el oocito, la teca y la granulosa de los fol&iacute;culos preovulatorios, con un papel relevante en el desarrollo y diferenciaci&oacute;n celular, as&iacute; como en los mecanismos de debilidad y ruptura ov&aacute;rica. De igual forma, es una citoquina implicada en la regulaci&oacute;n reproductiva, mediada por sus efectos sobre las c&eacute;lulas esteroidog&eacute;nicas (<a href="#45">45</a>). El TNF<sub>&alpha;</sub> es un importante factor local en la atresia o en el proceso inflamatorio que resulta de la ovulaci&oacute;n. En la fase luteal, reduce la secreci&oacute;n de estradiol. No obstante, es de fundamental importancia en la luteog&eacute;nesis y en la lute&oacute;lisis, debido al control sobre la secreci&oacute;n de las prostaglandinas E y F y, consecuentemente, interviniendo en los niveles de la P<sub>4</sub>. Las diferencias en las respuestas celulares pueden depender de las interrelaciones entre los mecanismos de la cascada, que pueden coexistir dentro de un tipo particular de c&eacute;lulas (<a href="#46">46</a>). Recientemente (<a href="#47">47</a>), se ha encontrado que el TNF<sub>&alpha;</sub> est&aacute; presente, tanto en las c&eacute;lulas luteales grandes, como en las peque&ntilde;as y en las c&eacute;lulas inmunes en el CL bovino, a lo largo del ciclo estral y que su concentraci&oacute;n es mayor en el estado de regresi&oacute;n luteal (19 a 21 d&iacute;as despu&eacute;s de la ovulaci&oacute;n) que en los estados inicial (2 a 4 d&iacute;as), medio (8 a 11 d&iacute;as) y final (14 a 16 d&iacute;as).</p>     <p>  El TNF<sub>&alpha;</sub> es liberado localmente en el CL durante la lute&oacute;lisis inducida por prostaglandinas F<sub>2&alpha;</sub> o de forma espont&aacute;nea y su fisiolog&iacute;a depende de la interacci&oacute;n con los diferentes tipos celulares dentro del CL (<a href="#48">48</a>, <a href="#49">49</a>). Se ha sugerido que el TNF<sub>&alpha;</sub> secretado por las c&eacute;lulas luteales e inmunes, juegan un papel autocrino o paracrino en la regulaci&oacute;n de la funci&oacute;n luteal a lo largo del ciclo estral en el ganado bovino, v&iacute;a sus receptores espec&iacute;ficos tipo I (TNF-RI) y tipo II (TNFRII) (<a href="#47">47</a>). La mayor&iacute;a de los estudios <i>in vitro</i>, han indicado que el TNF<sub>&alpha;</sub> induce la lute&oacute;lisis solamente en combinaci&oacute;n con el interfer&oacute;n o con otros factores intraluteales como el NO (<a href="#50">50</a>). Las acciones de la dosis luteol&iacute;tica del TNF<sub>&alpha;</sub> en la vida media del CL bovino, son completamente bloqueadas por la administraci&oacute;n del N (G)-nitro-L-arginina metil &eacute;ster (un inhibidor no selectivo en la actividad de la s&iacute;ntesis del NO) en la aorta abdominal. Lo que indica que el NO puede jugar un importante rol como mediador de la acci&oacute;n del TNF<sub>&alpha;</sub>, a trav&eacute;s de la fase luteal del ciclo estral (<a href="#51">51</a>).</p>     <p>Los macr&oacute;fagos tambi&eacute;n tienen la capacidad de producir y liberar significativamente un n&uacute;mero elevado de enzimas proteol&iacute;ticas (<a href="#52">52</a>), las cuales son capaces de degradar la matriz extracelular, adem&aacute;s de activar o inhibir cascadas de proteasas, alterando prote&iacute;nas bioactivas, como las mol&eacute;culas adherentes de leucocitos (<a href="#53">53</a>).</p>      <p><b>REGULACION DE LA FORMACION Y REGRESI&Oacute;N DEL CUERPO L&Uacute;TEO POR LOS MACR&Oacute;FAGOS</b></p>     <p>  El ovario est&aacute; compuesto por fol&iacute;culos atr&eacute;sicos y en crecimiento, por el CL en desarrollo y en regresi&oacute;n, adem&aacute;s de tejido intersticial y estroma. Todos los componentes est&aacute;n presentes en el ovario adulto, lo cual puede variar en sus proporciones dependiendo de la fase del ciclo estral (<a href="#43">43</a>).</p>     <p>  La habilidad de los macr&oacute;fagos para regular la proliferaci&oacute;n celular ov&aacute;rica, inflamaci&oacute;n y esteroidog&eacute;nesis, implica que estas c&eacute;lulas son importantes reguladores de la funci&oacute;n ov&aacute;rica. Despu&eacute;s de la ovulaci&oacute;n, es requerida una completa reorganizaci&oacute;n de la ruptura del fol&iacute;culo para la formaci&oacute;n del CL. Este proceso es caracterizado por la diferenciaci&oacute;n terminal (luteinizaci&oacute;n) de las c&eacute;lulas de la granulosa, migraci&oacute;n de leucocitos incluyendo macr&oacute;fagos hacia el fol&iacute;culo luteinizado y la nueva vascularizaci&oacute;n del CL en desarrollo. La activaci&oacute;n de los macr&oacute;fagos parece ser importante para ejercer sus funciones efectoras dentro del CL. As&iacute;, los macr&oacute;fagos podr&iacute;an facilitar el establecimiento vascular del CL v&iacute;a secreci&oacute;n de VEGF, EGF y del factor de crecimiento fibrobl&aacute;stico b&aacute;sico (bFGF), estando implicados en la angiog&eacute;nesis (<a href="#44">44</a>).</p>     <p>  De la misma forma, la activaci&oacute;n de los macr&oacute;fagos por las c&eacute;lulas T puede ser un evento adicional, un mediador indirecto involucrado en la regresi&oacute;n luteal, fen&oacute;meno que merece ser estudiado en trabajos posteriores. Los procesos de lute&oacute;lisis y de regresi&oacute;n son conocidos; involucrando &eacute;stos el aumento en la s&iacute;ntesis de la PGF<sub>2&alpha;</sub>, disminuyendo la producci&oacute;n de la P<sub>4</sub>, produciendo la apoptosis de las c&eacute;lulas luteales, eventos donde los macr&oacute;fagos pueden estar interviniendo.</p>     <p>  Se ha encontrado tambi&eacute;n, que los macr&oacute;fagos incrementan la producci&oacute;n de P<sub>4</sub> por parte del CL formado. Contradictoriamente, hay reportes que muestran que, la secreci&oacute;n de P<sub>4</sub> es inhibida marcadamente en co-cultivos de c&eacute;lulas de la granulosa con macr&oacute;fagos peritoneales (<a href="#43">43</a>).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  Los diferentes estudios experimentales demuestran como los macr&oacute;fagos, citoquinas y factores de crecimiento son importantes en la formaci&oacute;n, regulaci&oacute;n y mantenimiento del CL. Por tanto, el sistema inmune tiene un rol autocrino, paracrino y endocrino en la regulaci&oacute;n de la reproducci&oacute;n animal en los diferentes eventos relacionados con la actividad luteal.</p>      <p align="center"><b><font size="3">CONCLUSI&Oacute;N</font></b></p>     <p>  La presente revisi&oacute;n refleja la importante intervenci&oacute;n de una gran cantidad de elementos en la fisiolog&iacute;a inmune del CL, lo cual requiere de la cooperaci&oacute;n de muchos factores y sistemas regulatorios. Un incremento en la expresi&oacute;n de la MCP-1 se observa en el CL bovino en los &uacute;ltimos d&iacute;as de la fase luteal (d&iacute;as 12-18 posovulaci&oacute;n), proceso que est&aacute; asociado con el ac&uacute;mulo de monocitos luteales, macr&oacute;fagos y linfocitos T. Los macr&oacute;fagos ovarianos, son importantes reguladores de la compleja comunicaci&oacute;n entre el sistema inmune y el sistema reproductivo. Estas c&eacute;lulas presentan cambios en su cantidad y morfolog&iacute;a dependiendo de la fase del ciclo estral, adem&aacute;s de secretar una gran cantidad de mol&eacute;culas bioactivas que impactan la reproducci&oacute;n. Los macr&oacute;fagos son capaces de regular la proliferaci&oacute;n, la diferenciaci&oacute;n y la apoptosis, participando activamente en la producci&oacute;n esteroidal, vascularizaci&oacute;n y remodelaci&oacute;n del tejido durante el crecimiento folicular, ovulaci&oacute;n y luteinizaci&oacute;n.</p> <hr>      <p align="center"><font size="3"><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></font></p>     <!-- ref --><p><a name="1">1</a>.	Schams D, Berisha, B. Regulation of corpus luteum function in cattle - an overview. Reprod Dom Anim 2004; 39:241-251.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566659&pid=S1657-9550201100020000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="2">2</a>.	Souza MIL, Ram&iacute;rez GFB, Uribe-Vel&aacute;squez LF. Papel del factor de crecimiento semejante a insulina-1 (IGF-1) en la regulaci&oacute;n de la funci&oacute;n ov&aacute;rica. Biosalud 2007; 6:149-59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566661&pid=S1657-9550201100020000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="3">3</a>.	Milvae RA. Inter-relationships between endothelin and prostaglandin F<sub>2a</sub> in corpus luteum function. Rev Reprod 2000; 5:1-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566663&pid=S1657-9550201100020000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><a name="4">4</a>.	Gonzalez de Bulnes A, Moreno JS, Gomez A, Lopez Sebastian A. Relationship between ultrasonographic assesment of the corpus luteum and plasma progesterone concentration during the oestrous cycle in monovular ewes. Reprod Dom Anim 2000; 35:65-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566665&pid=S1657-9550201100020000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="5">5</a>.	Uribe-Vel&aacute;squez LF, Oba E, Souza MIL. Poblaci&oacute;n folicular y concentraciones plasm&aacute;ticas de progesterona (P<sub>4</sub>) en ovejas sometidas a diferentes protocolos de sincronizaci&oacute;n. Arch Med Vet 2008; 40:83-88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566667&pid=S1657-9550201100020000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="6">6</a>.	Fierro S, Olivera-Muzante J, Gil J, Vi&ntilde;oles C. Effects of prostaglandin administration on ovarian follicular dynamics, conception, prolificacy, and fecundity in sheep. Theriogenology 2011; 76:630-639.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566669&pid=S1657-9550201100020000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="7">7</a>.	Peter AT, Levine H, Drost M, Bergfelt DR. Compilation of classical and contemporary terminology used to describe morphological aspects of ovarian dynamics in cattle. Theriogenology 2009; 71:1343-1357.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566671&pid=S1657-9550201100020000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="8">8</a>.	Perez-Mar&iacute;n C. Formation of corpora lutea and central luteal cavities and their relationship with plasma progesterone levels and other metabolic parameters in dairy cattle. Reprod Dom Anim 2009; 44:384-389.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566673&pid=S1657-9550201100020000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><a name="9">9</a>.	O'Shea JD, Rodgers RJ, D'Occhio MJ. Celular composition of the cyclic corpus luteum of the cow. J Reprod Fert 1989; 85:483-487.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566675&pid=S1657-9550201100020000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="10">10</a>.	Selvaraju S, Raghavendra BS, Siva Subramani T, Priyadharsini R, Reddy IJ, Ravindra JP. Changes in luteal cells distribution, apoptotic rate, lipid peroxidation levels and antioxidant enzyme activities in buffalo (<i>Bubalus bubalis</i>) corpus luteum. Anim Reprod Sci 2010; 120:39-46.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566677&pid=S1657-9550201100020000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="11">11</a>.	Sangha GK, Sharma RK, Guraya SS. Biology of corpus luteum in small ruminants. Small Rumin Res 2002; 43:53-64.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566679&pid=S1657-9550201100020000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="12">12</a>.	L&uuml;ttgenau J, Ulbrich SE, Beindorff N, Honnens A, Herzog K, Bollwein H. Plasma progesterone concentrations in the mid-luteal phase are dependen on luteal size, but independent of luteal blood flow and gene expression in lactating dairy cows. Anim Reprod Sci 2011; 125:20-29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566681&pid=S1657-9550201100020000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="13">13</a>.	Reynolds LP, Grazul-Bilska AT, Redmer DA. Angiogenesis in the corpus luteum. Endocrine 2000; 12:1-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566683&pid=S1657-9550201100020000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><a name="14">14</a>.	Rekawiecki R, Kowalik MK, Slonina D, Kotwica J. Regulation of progesterone synthesis and action in bovine corpus luteum. J Physiol Pharmacol Suppl 2008; 59:75-89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566685&pid=S1657-9550201100020000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="15">15</a>.	Ginther OJ, Araujo RR, Palhao MO, Rodrigues BL, Beg MA. Necessity of sequencial pulses of prostaglandin F2-alpha for complete physiologic luteolysis in cattle. Biol Reprod 2009; 80:641-648.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566687&pid=S1657-9550201100020000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="16">16</a>.	Ferrara N, Gerber HP, LeCouter J. The biology of VEFG and its receptors. Nat Med 2003; 9:669-676.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566689&pid=S1657-9550201100020000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="17">17</a>.	Wiedlocha A, Sorensen V. Signaling, internalization and intracellular activity of fibroblast growth factor. Curr Top Microbiol Immunol 2004; 286:45-79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566691&pid=S1657-9550201100020000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="18">18</a>.	Miyamoto A, Shirasuna K, Sasahara K. Local regulation of corpus luteum development and regression in the cow: impact of angiogenic and vasoactive factors. Domest Anim Endocrinol 2009; 37:159-169.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566693&pid=S1657-9550201100020000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><a name="19">19</a>.	Rosiansky-Sultan M, Klipper E, Spanel-Borowski K, Meidan R. Inverse relationship between nitric oxide synthases and endothelin-1 synthesis in bovine corpus luteum: interactions at the level of luteal endothelial cell. Endocrinology 2006; 147:5228-5235.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566695&pid=S1657-9550201100020000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="20">20</a>.	Ialenti A, Ianaro A, Moncada S, Di Rosa M. Modulation of acute inflammation by endogenous nitric oxide. Eur J Pharmacol 1992; 211:177-182.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566697&pid=S1657-9550201100020000900020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="21">21</a>.	Khan FA and Dan GK. Follicular fluid nitric oxide and ascorbic acid concentrations in relation to follicle size, functional status and stage of estrous cycle in buffalo. Anim Reprod Sci 2011; 125:62-68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566699&pid=S1657-9550201100020000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="22">22</a>.	Ferrara N, Davis-Smyth T. The biology of vascular endothelial growth factor. Endocr Rev 1997; 18:4-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566701&pid=S1657-9550201100020000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="23">23</a>.	Connolly DT. Vascular permeability factor: a unique regulator of blood vessel function. J Cell Biochem 1991; 47:219-223.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566703&pid=S1657-9550201100020000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><a name="24">24</a>.	Neuvians TP, Schams D, Berisha B, Pfaffl MW. Involvement of pro-inflammatory cytokines, mediators of inflammation, and basic fibroblast growth factor in prostaglandin F<sub>2a</sub> - Induced luteolysis in bovine corpus luteum. Biol Reprod 2004; 70:473-480.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566705&pid=S1657-9550201100020000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="25">25</a>.	Niswender GD and Nett TM. Corpus luteum and its control in infraprimate species. In: The Physiology of Reproduction. Vol. 1. New York: E Knobil and JD Neill Raven Press Eds.; 1994. p. 781-816.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566707&pid=S1657-9550201100020000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="26">26</a>.	Niswender GD. Molecular control of luteal secretion of progesterone. Reproduction 2002; 123:333-339.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566709&pid=S1657-9550201100020000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="27">27</a>.	McCracken JA, Custer EE, Lamsa JC. Luteolysis: a neuroendocrine-mediated event. Physiol Rev 1999; 79:263-323.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566711&pid=S1657-9550201100020000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="28">28</a>.	Jaroszewski JJ, Hansel W. Intraluteal administration of a nitric oxid synthase blocker stimulates progesterone and oxytocin secretion and prolongs the lifespan in the bovine corpus luteum. Proc Soc Exp Biol Med 2000; 224:50-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566713&pid=S1657-9550201100020000900028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><a name="29">29</a>.	Pate JL, Keyes PL. Immune cells in the corpus luteum: friends or foes? Reproduction 2001; 122:665-676.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566715&pid=S1657-9550201100020000900029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="30">30</a>.	Lea RG, Sandra O. Immunoendocrine aspects of endometrial function and implantation. Reproduction 2007; 134:389-404.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566717&pid=S1657-9550201100020000900030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="31">31</a>.	Rae MT, Niven D, Critchley HO, Harlow CR, Hillier SG. Antiinflamatory steroid action in human ovarian surface epithelial cells. J Clin Endocrinol Metab 2004; 89:389-404.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566719&pid=S1657-9550201100020000900031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="32">32</a>.	Wang M. The role of glucocorticoid action in the pathophysiology of the metabolic syndrome. Nutr Metab 2005; 2:3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566721&pid=S1657-9550201100020000900032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="33">33</a>.	Rae MT, Hillier SG. Steroid signaling in the ovarian surface epithelium. Trends Endocrinol Metab 2005; 16:327-333.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566723&pid=S1657-9550201100020000900033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><a name="34">34</a>.	Komiyama J, Nishimura R, Lee HY, Sakumoto R, Tetsuka M, Acosta TJ, Skarzynski DJ, Okuda K. Cortisol is a suppressor of apoptosis in bovine corpus luteum? Biol Reprod 2008; 78: 888-95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566725&pid=S1657-9550201100020000900034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="35">35</a>.	Townson DH, O'Connor CL, Pru JK. Expression of monocyte chemoattractant protein-1 and distribution of immune cell population in the bovine corpus luteum throughout the estrous cycle. Biol Reprod 2002; 66:361-366.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566727&pid=S1657-9550201100020000900035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="36">36</a>.	Penny LA, Armstrong DG, Baxter G, Hogg C, Kindahl H. Expression of monocyte chemoattractant protein-1 in the bovine corpus luteum around the time of natural luteolysis. Biol Reprod 1998; 59:1464-1469.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566729&pid=S1657-9550201100020000900036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="37">37</a>.	Bowen JM, Towns R, Warren JS, Keyes PL. Luteal regression in the normally cycling rat: apoptosis, monocyte chemoattractant protein-1 and inflammatory cell involvement. Biol Reprod 1999; 60:740-746.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566731&pid=S1657-9550201100020000900037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="38">38</a>.	Penny LA. Monocyte chemoattractant protein-1 in luteolysis. Rev Reprod 2000; 5:63-66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566733&pid=S1657-9550201100020000900038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><a name="39">39</a>.	Lobel BL, Levy E. Enzymatic correlates of development, secretory function and regression of follicles and corpora lutea in the bovine ovary. II Formation, development and involution of corpora lutea. Acta Endoc 1968; 132:35-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566735&pid=S1657-9550201100020000900039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="40">40</a>.	Bauer M, Reibiger I, Spanel-Borowski K. Leukocyte proliferation in the bovine corpus luteum. Reproduction 2001; 121:297-305.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566737&pid=S1657-9550201100020000900040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="41">41</a>.	Buford WI, Ahmad N, Schrick FN, Butcher RL, Lewis PE. Embryotoxiciy of a regressing corpus luteum in beef cows supplemented with progestogen. Biol Reprod 1996; 54:531-537.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566739&pid=S1657-9550201100020000900041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="42">42</a>.	Bulmer D. The histochemystry of ovarian macrophages in the rat. J Anat 1964; 98:313-319.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566741&pid=S1657-9550201100020000900042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="43">43</a>.	Wu R, Van der Hoek KH, Ryan NK, Norman RJ, Robker RL. Macrophage contributions to ovarian function. Hum Reprod Update 2004; 2:119-133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566743&pid=S1657-9550201100020000900043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><a name="44">44</a>.	Katabuchi H, Fukumatsu Y, Araki M, Suenaga, Y, Ohtake H, Okamura H. Role of macrophages in ovarian follicular development. Horm Res 1996; 46:45-51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566745&pid=S1657-9550201100020000900044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="45">45</a>.	Szostek AZ, Lukasik K, Majewska M, Bah MM, Znaniecki R, Okuda K, Skarzynski DJ. Tumor necrosis factor-a inhibits the stimulatory effect of luteinizing hormone and prostaglandin E<sub>2</sub> on progesterone secretion by the bovine corpus luteum. Dom Anim Endoc 2011; 40:183-191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566747&pid=S1657-9550201100020000900045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="46">46</a>.	Souza MIL, Uribe-Velasquez LF. O fator de necrose tumoral-A (TNF-A) na reprodu&ccedil;&atilde;o de f&ecirc;meas - Revis&atilde;o de literatura. Arq Cien Vet Zool Unipar 2008; 1:47-53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566749&pid=S1657-9550201100020000900046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="47">47</a>.	Sakumoto R, Vermehren M, Kenngott RA, Okuda K, Sinowatz F. Localization of gene and protein expressions of tumor necrosis factor-a and tumor necrosis factor receptor types I and II in the bovine corpus luteum during the estrous cycle. J Anim Sci 2011; 89:3040-3047.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566751&pid=S1657-9550201100020000900047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="48">48</a>.	Benyo DF, Pate JL. Tumor necrosis factor-a alters bovine luteal cell synthetic capacity and viability. Endocrinology 1992; 130:751-756.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566753&pid=S1657-9550201100020000900048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><a name="49">49</a>.	Petroff MG, Petroff BK, Pate JL. Mechanism of cytokine-induced death of cultured bovine luteal cells. Reproduction 2001; 121:753-760.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566755&pid=S1657-9550201100020000900049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="50">50</a>.	Meidan R, Milvae RA, Weiss S, Levy S, Friedman A. Intraovarian regulation of luteolysis. J Reprod Fert Suppl 1999; 54:217-228.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566757&pid=S1657-9550201100020000900050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="51">51</a>.	Skarzynski DJ, Woclawek-Potocka I, Korzekwa AJ. Infusion of exogenous tumor necrosis factor-a dose dependently alters the length of the luteal phase in cattle: differential responses to treatment with indomethacin and L-NAME, a nitric oxide synthase inhibitor. Biol Reprod 2007; 76:619-627.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566759&pid=S1657-9550201100020000900051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="52">52</a>.	Owen CA, Campbell EJ. The cell biology of leukocyte-mediated proteolysis. J Leukoc Biol 1999; 65:137-150.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566761&pid=S1657-9550201100020000900052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  </p>     <!-- ref --><p><a name="53">53</a>.	Bauvois B. Transmembrane proteases in focus: diversity and redundancy? J Leukoc Biol 2001; 70:11-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=4566763&pid=S1657-9550201100020000900053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>     ]]></body>
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