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<journal-title><![CDATA[Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial]]></journal-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Some useful microorganisms and pathogenic bacteria such as Pseudomonas, Vibrio, Escherichia, Salmonella, Listeria, Streptococcus, Staphylococcus, Mycobacterium, have the ability to adhere and grow in food and/or surfaces in contact with them. In this context, the biofilms are significantly important in the food industry because they cause serious problems that impede and impair the operations and processes to generate energy losses, reduced flow (in pipes) and heat transfer, and plugging of membrane pores, among others. This document considers the biological and physicochemical aspects related to training and development of biofilms, which, together with the development of methods for diagnosis and identification, will help develop strategies for prevention and control of pollution in the food industry to maintain biofilm-free systems and promote the quality and food safety]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Alguns microorganismos úteis e bactérias patogênicas, como Pseudomonas, Vibrio, Escherichia, Salmonella, Listeria, Streptococcus, Staphylococcus, Micobactéria, têm a capacidade de aderir e crescer em alimentos e/ou as superfícies em contato com eles. Neste contexto, os biofilmes são significativamente importantes na alimentação, porque podem causar problemas graves que impedem e dificultam as operações e processos para gerar perdas de energia, fluxo reduzido (tubos) e transferência de calor, e entupimento de poros da membrana, entre outros. Este documento considera a aspectos biológicos e físico-químicas relacionadas à formação e desenvolvimento de biofilmes, que, juntamente com o desenvolvimento de métodos para o diagnóstico e identificação, ajudará a desenvolver estratégias de prevenção e controle da poluição na indústria de alimentos para manter os sistemas de biofilme livre e promover a qualidade e segurança alimentar.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="2">      <center>     <p><font size="4"><b>LAS BIOPEL&Iacute;CULAS EN LA INDUSTRIA DE ALIMENTOS</b></font></p>     <p><font size="3"><b>BIOFILMS IN THE FOOD INDUSTRY</b></font></p>     <p><font size="3"><b>BIOFILMES NA IND&Uacute;STRIA DE ALIMENTOS</b></font></p>     <p>DIANA PAOLA NAVIA<a name="1"></a><a href="#1a"><sup>1</sup></a>, H&Eacute;CTOR SAMUEL VILLADA<a name="2"></a><a href="#2a"><sup>2</sup></a>, SILVIO ANDR&Eacute;S MOSQUERA<a name="3"></a><a href="#3a"><sup>3</sup></a></p> </center>      <p><sup><a name="1a"></a><a href="#1">1</a></sup> Ingeniera Agroindustrial, Universidad del Cauca, Facultad Ciencias Agropecuarias, Grupo CYTBIA. Popay&aacute;n-Colombia</p>     <p><sup><a name="2a"></a><a href="#2">2</a></sup> Ph.D Ingenier&iacute;a de Alimentos. Docente Titular. Universidad del Cauca, Facultad Ciencias Agropecuarias, Departamento de Agroindustria. Popay&aacute;n-Colombia</p>     <p><sup><a name="3a"></a><a href="#3">3</a></sup> Ingeniero Industrial de Alimentos. Especialista en Gerencia de Producci&oacute;n. Mag&iacute;ster en Ingenier&iacute;a. Docente Titular Departamento de Agroindustria, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad del Cauca. Popay&aacute;n-Colombia</p>      <p><b>Correspondencia: </b><a href="mailto:dnavia@unicauca.edu.co">dnavia@unicauca.edu.co</a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Recibido para evaluaci&oacute;n</b>: 6/08/2010 <b>Aprobado para publicaci&oacute;n</b>: 2/11/2010</p>      <br><hr>     <p><font size="3"><b>RESUMEN</b></font></p>      <p><i>Algunos microorganismos &uacute;tiles y bacterias pat&oacute;genas como por ejemplo Pseudomonas, Vibrio, Escherichia, Salmonella, Listeria, Streptococcus, Staphylococcus, Mycobacteria, tienen la capacidad de adherirse y crecer en los alimentos y/o en las superficies que est&aacute;n en contacto con ellos formando biopel&iacute;culas. Estas son significativamente importantes en el campo alimentario porgue causan serios problemas que dificultan y perjudican las operaciones y los procesos al generar p&eacute;rdidas de energ&iacute;a, reducci&oacute;n del flujo (en tuber&iacute;as) y transferencia de calor, y taponamiento de poros de membranas, entre otros. Este documento considera los aspectos biol&oacute;gicos y fisicoqu&iacute;micos relacionados con la formaci&oacute;n y desarrollo de las biopel&iacute;culas, lo cual, unido al desarrollo de metodolog&iacute;as de diagn&oacute;stico e identificaci&oacute;n, permitir&aacute;n desarrollar estrategias gue faciliten la prevenci&oacute;n y control de la contaminaci&oacute;n en la industria de alimentos para mantener los sistemas libres de biopel&iacute;culas y favorecer la calidad y seguridad de los alimentos.</i></p>      <p><b>PALABRAS CLAVE:</b></p>      <p>Biopel&iacute;cula, Adhesi&oacute;n bacteriana, Procesamiento de alimentos, Saneantes.</p>      <br>     <p><font size="3"><b>ABSTRACT</b></font></p>      <p><i>Some useful microorganisms and pathogenic bacteria such as Pseudomonas, Vibrio, Escherichia, Salmonella, Listeria, Streptococcus, Staphylococcus, Mycobacterium, have the ability to adhere and grow in food and/or surfaces in contact with them. In this context, the biofilms are significantly important in the food industry because they cause serious problems that impede and impair the operations and processes to generate energy losses, reduced flow (in pipes) and heat transfer, and plugging of membrane pores, among others. This document considers the biological and physicochemical aspects related to training and development of biofilms, which, together with the development of methods for diagnosis and identification, will help develop strategies for prevention and control of pollution in the food industry to maintain biofilm-free systems and promote the quality and food safety</i></p>      <p><b>KEYWORDS:</b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Biofilm, Bacterial adhesi&oacute;n, Food processing, Sanitizers.</p>      <br>     <p><font size="3"><b>RESUMO</b></font></p>      <p>Alguns microorganismos &uacute;teis e bact&eacute;rias patog&ecirc;nicas, como Pseudomonas, Vibrio, Escherichia, Salmonella, Listeria, Streptococcus, Staphylococcus, Micobact&eacute;ria, t&ecirc;m a capacidade de aderir e crescer em alimentos e/ou as superf&iacute;cies em contato com eles. Neste contexto, os biofilmes s&atilde;o significativamente importantes na alimenta&ccedil;&atilde;o, porque podem causar problemas graves que impedem e dificultam as opera&ccedil;&otilde;es e processos para gerar perdas de energia, fluxo reduzido (tubos) e transfer&ecirc;ncia de calor, e entupimento de poros da membrana, entre outros. Este documento considera a aspectos biol&oacute;gicos e f&iacute;sico-qu&iacute;micas relacionadas &agrave; forma&ccedil;&atilde;o e desenvolvimento de biofilmes, que, juntamente com o desenvolvimento de m&eacute;todos para o diagn&oacute;stico e identifica&ccedil;&atilde;o, ajudar&aacute; a desenvolver estrat&eacute;gias de preven&ccedil;&atilde;o e controle da polui&ccedil;&atilde;o na ind&uacute;stria de alimentos para manter os sistemas de biofilme livre e promover a qualidade e seguran&ccedil;a alimentar.</p>      <p><b>PALAVRAS-CHAVE:</b></p>     <p>Biofilme, Ades&atilde;o bacteriana, Processamento de alimentos, Sanitizantes.</p>      <br>     <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>      <p>La mayor&iacute;a de las c&eacute;lulas se pueden adaptar porque se adhieren a superficies con presencia de sustratos, que generalmente est&aacute;n contenidos dentro de una matriz org&aacute;nica polim&eacute;rica de origen microbiano. Una biopel&iacute;cula se considera como una matriz biol&oacute;gicamente activa formada por c&eacute;lulas de una o varias especies y sustancias extracelulares en asociaci&oacute;n con una superficie s&oacute;lida (Ver Figura 1), incluyendo superficies minerales, tejidos vivos o muertos de animales o plantas, pol&iacute;meros sint&eacute;ticos, cer&aacute;micas y aleaciones de metales &#91;1&#93;.</p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="g_01"></a><img src="img/revistas/bsaa/v8n2/v8n2a15g01.jpg"></center></p>      <p>A lo largo de la historia de la microbiolog&iacute;a, investigadores han encontrado que las bacterias crecen en forma diferente despu&eacute;s de su adhesi&oacute;n en superficies y posterior formaci&oacute;n de biopel&iacute;culas. En 1964, Mitchell y Kevin Marshall examinaron los primeros estados de formaci&oacute;n de biopel&iacute;culas por bacterias y diferenciaron la adsorci&oacute;n reversible e irreversible, esta &uacute;ltima constituyendo el primer estado de formaci&oacute;n de las biopel&iacute;culas &#91;1&#93;. Aunque las descripciones de las biopel&iacute;culas han variado a trav&eacute;s de los a&ntilde;os, las caracter&iacute;sticas fundamentales se han mantenido.</p>      <p>Las biopel&iacute;culas que se encuentran en la naturaleza consisten en comunidades de microorganismos primarios viables y no viables protegidos por sustancias pol&iacute;meros extracelulares (EPS) poliani&oacute;nicas fijadas a la superficie &#91;2&#93;. Las EPS pueden contener polisac&aacute;ridos, prote&iacute;nas, fosfol&iacute;pidos, &aacute;cidos nucleicos, &aacute;cidos teicoicos y otras sustancias pol&iacute;meros hidratadas con un porcentaje de agua entre 85 y 95&#37; &#91;2&#93;. Las EPS protegen a los microorganismos que hacen parte de la biopel&iacute;cula contra agentes antimicrobianos, previenen al acceso de biocidas, secuestrantes met&aacute;licos, toxinas, evitan la deshidrataci&oacute;n, refuerzan la resistencia de la biopel&iacute;cula al estr&eacute;s ambiental y permiten a los microorganismos capturar los nutrientes &#91;3&#93;. Dependiendo del tipo de c&eacute;lulas involucradas en la biopel&iacute;cula, las microcolonias pueden estar compuestas por 10-25&#37; de c&eacute;lulas y 75-90&#37; de matriz EPS &#91;4&#93;. Los requisitos para el crecimiento de la biopel&iacute;cula son la presencia de microorganismos y el sustrato; si alguno de estos no se encuentra disponible, la biopel&iacute;cula no se formar&aacute; &#91;4&#93;. La sinergia existente dentro de la comunidad de la biopel&iacute;cula, es el factor que permite que &eacute;sta soporte condiciones adversas y pueda sobrevivir.</p>      <p>Es importante considerar la formaci&oacute;n de biopel&iacute;culas, ya que durante las &uacute;ltimas d&eacute;cadas se han presentado tanto a nivel industrial, en sectores como mar&iacute;timo, alimentos, aceites, papel, odontol&oacute;gico, medicina, tratamiento de aguas &#91;4&#93;, como dom&eacute;stico, y desafortunadamente en la mayor&iacute;a de los casos su crecimiento y formaci&oacute;n es perjudicial, causando problemas como corrosi&oacute;n, olores desagradables, taponamiento de tuber&iacute;as, fallas en equipos y deficiencia en la transmisi&oacute;n de calor (ej. Intercambiadores de calor) &#91;6&#93;, lo que resulta en elevados costos de limpieza y mantenimiento. Las esponjas h&uacute;medas utilizadas en la preparaci&oacute;n de alimentos, en las cuales se depositan com&uacute;nmente los microorganismos, son un ejemplo de estas fuentes de contaminaci&oacute;n. Esponjas contaminadas con <i>Staphylococus aureus</i>, <i>Salmonella enteritidis</i> y <i>Campylobacter jejuni</i> fueron capaces de transferir pat&oacute;genos a las superficies de acero inoxidable, en donde el <i>S. aureus</i> sobrevivi&oacute; por m&aacute;s de 4 d&iacute;as &#91;7&#93;. En tanto que otras bacterias como el <i>Bacillus cereus</i> pueden sobrevivir en condiciones extremas y multiplicarse en forma de esporas, las cuales pueden germinar y crecer sobre superficies y alimentos procesados &#91;8&#93;.</p>      <p>De otro lado, las biopel&iacute;culas pueden ser ben&eacute;ficas, como por ejemplo el <i>Bacillus subtilis</i> y sus especies afines que son utilizados como agentes de biocontrol antif&uacute;ngico en cultivos, como inhibidores de la corrosi&oacute;n causada por bacterias en materiales como el acero y como agentes de limpieza de un lugar contaminado, ya sea <i>in situ</i> o <i>ex situ</i>, este &uacute;ltimo conocido como biorremediaci&oacute;n &#91;9&#93;.</p>      <p>As&iacute;, una mayor comprensi&oacute;n de los mecanismos utilizados por los microorganismos en sus procesos de adhesi&oacute;n a las diferentes superficies, proporcionar&aacute; una base para el desarrollo de mejores materiales, m&eacute;todos y estrategias que permitan remover, prevenir o potenciar activamente la formaci&oacute;n de biopel&iacute;culas, seg&uacute;n sea la necesidad.</p>      <br>     <p><font size="3"><b>BASES QU&Iacute;MICAS Y FISICOQU&Iacute;MICAS</b></font></p>      <p>El proceso de formaci&oacute;n de las biopel&iacute;culas inicia con la adherencia de c&eacute;lulas a la superficie, formando microcolonias por la activaci&oacute;n de sus genes, con la producci&oacute;n de EPS y una subsecuente maduraci&oacute;n de la biopel&iacute;cula, como se muestra en la figura 2.</p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="g_02"></a><img src="img/revistas/bsaa/v8n2/v8n2a15g02.jpg"></center></p>      <p>El mecanismo de adhesi&oacute;n al sustrato puede ser activo o pasivo dependiendo de la motilidad de las c&eacute;lulas. Una adhesi&oacute;n pasiva se da por la gravedad, difusi&oacute;n y din&aacute;mica del fluido. En una adhesi&oacute;n activa la superficie de la c&eacute;lula bacteriana facilita el proceso. Los flagelos, permiten la movilidad de las c&eacute;lulas hasta el sitio espec&iacute;fico de adhesi&oacute;n y los pili, prote&iacute;nas de adhesi&oacute;n, c&aacute;psulas y carga de las superficies, facilitan el proceso de agregaci&oacute;n y adhesi&oacute;n &#91;2&#93;.</p>      <p>Por medio de observaciones de microscop&iacute;a en fase de contraste, se ha encontrado que antes de la adhesi&oacute;n, las c&eacute;lulas bacteriales exploran el &aacute;rea donde se van a fijar &#91;1&#93;, y generalmente se localizan donde se encuentran c&eacute;lulas de las mismas especies, si las hay, formando monocapas de c&eacute;lulas sobre la superficie colonizada.</p>      <p>Estas observaciones directas de las c&eacute;lulas demuestran que las mismas pueden percibir su proximidad a la superficie. A continuaci&oacute;n, las c&eacute;lulas inician su estado de adhesi&oacute;n y formaci&oacute;n de biopel&iacute;cula, y deben producir nuevo material exopolisac&aacute;rido para consolidar su adhesi&oacute;n a la superficie y a otras c&eacute;lulas bacteriales. En el proceso de adhesi&oacute;n inicial de las c&eacute;lulas, existe un estado reversible, seguido de uno irreversible. La fase reversible involucra fuerzas f&iacute;sicas como las electrost&aacute;ticas y est&eacute;ricas, Van der Waals e interacciones hidrof&oacute;bicas, conocidas en conjunto como la DVLO (Derjaguin, Verwey, Landau y Overbeek) &#91;4&#93;. &Eacute;sta ha sido usada para describir la interacci&oacute;n neta entre la c&eacute;lula y la superficie plana como un balance entre dos factores aditivos. Las interacciones de Van der Waals son de atracci&oacute;n y las interacciones de repulsi&oacute;n se dan por la superposici&oacute;n entre el sustrato y la c&eacute;lula (doble capa el&eacute;ctrica). Este amplio rango de fuerzas es conocido como fisisorcl&oacute;n &#91;4&#93;. En este estado, la bacteria muestra un movimiento browniano y puede ser f&aacute;cilmente removida. Las c&eacute;lulas microbianas planct&oacute;nicas suspendidas en el flujo, son trasportadas hasta la superficie por dichas fuerzas f&iacute;sicas o por ap&eacute;ndices bacterianos como los flagelos. Factores como la energ&iacute;a disponible, la funcionalidad de la superficie, orientaci&oacute;n bacterial, condiciones de temperatura y presi&oacute;n, son variables locales del ambiente que contribuyen a la adhesi&oacute;n bacterial. Si las fuerzas de repulsi&oacute;n son mayores que las de atracci&oacute;n, la bacteria se separa de la superficie, lo que podr&iacute;a ocurrir probablemente antes del acondicionamiento del sustrato &#91;4&#93;.</p>      <p>En la segunda fase, un n&uacute;mero de c&eacute;lulas adsorbidas, reversiblemente, permanecen inmovilizadas y se adsorben irreversiblemente por los ap&eacute;ndices f&iacute;sicos de la bacteria (flagelos, pili y fimbrias) que superan las fuerzas f&iacute;sicas repulsivas de la doble capa el&eacute;ctrica. Adem&aacute;s, el contacto de los ap&eacute;ndices estimula las reacciones qu&iacute;micas de oxidaci&oacute;n e hidrataci&oacute;n, permitiendo la formaci&oacute;n de enlaces con la superficie &#91;11&#93;. Por lo anterior, se requiere un mayor esfuerzo para remover la bacteria por la formaci&oacute;n de fibrillas polim&eacute;ricas, las cuales forman un puente entre la c&eacute;lula bacterial y el sustrato &#91;11&#93;, y habilitan la asociaci&oacute;n irreversible con la superficie. Este tipo de uniones toman entre 20 minutos hasta cuatro horas para formarse, a una temperatura de 20&deg;C &#91;2&#93;, pero son tan fuertes que impiden la remoci&oacute;n de estas colonias ya formadas. Por ello los medios para removerlas requieren tratamientos qu&iacute;micos fuertes, aplicaci&oacute;n de enzimas, detergentes, sanitizantes, surfactantes y/o condiciones de calor extremas.</p>      <br>     <p><font size="3"><b>CIN&Eacute;TICA Y ESTABILIDAD</b></font></p>      <p>En fase estacionaria, las c&eacute;lulas se dividen (divisi&oacute;n binaria), y las c&eacute;lulas hijas cubren el exterior e interior del punto de adhesi&oacute;n hasta formar un grupo &#91;12&#93;. Tales interacciones y crecimiento dentro de la biopel&iacute;cula, forman una estructura similar a la de un hongo. Esta estructura, permite el paso de nutrientes a la bacteria hasta el interior de la biopel&iacute;cula. Despu&eacute;s de iniciar la fase de adaptaci&oacute;n, se presenta un r&aacute;pido incremento de la poblaci&oacute;n, correspondiente al crecimiento en fase exponencial &#91;4&#93;. El r&aacute;pido crecimiento ocurre por el aprovechamiento de los nutrientes del fluido o del sustrato. En este estado, la contribuci&oacute;n f&iacute;sica y qu&iacute;mica de la adhesi&oacute;n final y los procesos biol&oacute;gicos prevalecen. La liberaci&oacute;n de polisac&aacute;ridos de adhesi&oacute;n intercelular (PIA) y la presencia de cationes divalentes, permiten la interacci&oacute;n fuerte entre las c&eacute;lulas&#91;4&#93;.</p>      <p>La fase de crecimiento estacionarla describe la fase donde la velocidad de divisi&oacute;n es igual a la velocidad de muerte celular. A una alta concentraci&oacute;n de c&eacute;lulas, una serie de mecanismos de se&ntilde;alizaci&oacute;n celular son empleados por las blopel&iacute;culas, donde un n&uacute;mero de sistemas de autoinducci&oacute;n son usados para estimular la expresi&oacute;n gen&eacute;tica de procesos mec&aacute;nicos y enzim&aacute;ticos de producci&oacute;n de alginatos, los cuales forman parte fundamental de la matriz extracelular &#91;1,4&#93;.</p>      <p>La fase de muerte se relaciona con el desprendimiento de la biopel&iacute;cula. Las enzimas son producidas por los mismos microorganismos, para el rompimiento de los polisac&aacute;ridos de la biopel&iacute;cula, activando el desprendimiento de la superficie de la bacteria para la colonizaci&oacute;n de sustrato fresco. La alginato liasa producida por <i>Pseudomonas fluorecens</i> y <i>Pseudomonas aeruginosa</i>, N-acetyl-heparosan liasa por <i>Escherlchia coli</i> y hialurodinasa por <i>Streptococcus equi</i> son ejemplos de enzimas encargadas del rompimiento de la matriz de la biopel&iacute;cula &#91;4&#93;.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Con respecto a las t&eacute;cnicas que permiten el seguimiento del crecimiento microbiano (que es uno de los aspectos m&aacute;s importantes en la determinaci&oacute;n de la cin&eacute;tica de formaci&oacute;n de los microorganismos), y para evaluar la adhesi&oacute;n de bacterias, se puede usar un m&eacute;todo colorim&eacute;trico, en el cual por medio de la tinci&oacute;n de las c&eacute;lulas fijas con cristal violeta o safranina y su posterior lavado, se analizan varias cepas, en un tiempo de al menos 24 a 48 horas para estimar la adherencia de las c&eacute;lulas te&ntilde;idas despu&eacute;s de la etapa de lavado. El uso de pruebas r&aacute;pidas ha sido reportado para evaluar la formaci&oacute;n de la biopel&iacute;cula. Estas pruebas han sido validadas en cepas de <i>Listeria monocytogenes</i>, <i>E. coli</i>, <i>Staphylococcus xylosus</i>, y <i>Staphylococcus carnosus</i>, las cuales tienen habilidad para formar biopel&iacute;culas en acero inoxidable, poliestireno y vidrio &#91;13&#93;.</p>      <p>Los m&eacute;todos que se podr&iacute;an emplear para evaluar la adhesi&oacute;n bacterial son: an&aacute;lisis de microscop&iacute;a, t&eacute;cnicas en placa, fracci&oacute;n a&eacute;rea de superficie de cobertura, entre otros. La ventaja de estas t&eacute;cnicas es que son estandarizadas internacionalmente y permiten la comparaci&oacute;n directa. Las t&eacute;cnicas est&aacute;ticas permiten el crecimiento del medio con pocas fluctuaciones mec&aacute;nicas y t&eacute;rmicas. Los m&eacute;todos din&aacute;micos, incluyen el crecimiento de biopel&iacute;culas usando flujo de l&iacute;quidos, donde la atracci&oacute;n del microorganismo con la superficie es forzada. De esta forma el nutriente y otros constituyentes qu&iacute;micos del medio, pueden ser constantemente monitoreados y mantenidos con el tiempo &#91;13&#93;.</p>      <p>Una de las t&eacute;cnicas usadas para observar y medir la adhesi&oacute;n de la biopel&iacute;cula es el background. En el background, la medida de la adhesi&oacute;n de la bacteria se realiza por el establecimiento sobre una superficie de vidrio en una c&aacute;mara sellada, el recuento se lleva a cabo con un microscopio &#91;14&#93;. Despu&eacute;s de un periodo de tiempo la c&aacute;mara es girada al rev&eacute;s, las c&eacute;lulas no adheridas se desprenden de la superficie por la aplicaci&oacute;n de esfuerzos de corte y finalmente las c&eacute;lulas que permanecen adheridas son recontadas &#91;14&#93;. Recientemente, la medida de adhesi&oacute;n de las bacterias ha sido mejorada por tecnolog&iacute;as sofisticadas de micromanipulaci&oacute;n, microscop&iacute;a de fuerza at&oacute;mica y pinzas &oacute;pticas &#91;15,16&#93;. En estas t&eacute;cnicas se usan equipos como el microscopio de barrido electr&oacute;nico (SEM), microscopio &oacute;ptico y microscopio de l&aacute;ser confocal &#91;13,17,18,&#93;, los cuales permiten la adquisici&oacute;n de im&aacute;genes con gran resoluci&oacute;n, para su posterior an&aacute;lisis. La microscop&iacute;a &oacute;ptica y electr&oacute;nica de barrido son netamente de observaci&oacute;n y no miden directamente la adhesi&oacute;n de la poblaci&oacute;n bacterial. Las t&eacute;cnicas para determinar la fuerza cr&iacute;tica, como la microscop&iacute;a de fuerza at&oacute;mica y micromanipulaci&oacute;n determinan directamente la fuerza requerida para que la bacteria pueda ser removida, esta &uacute;ltima desarrollada por el Grupo de Micromanipulacl&oacute;n de la Universidad Birmingham, Inglaterra, y permite medir las propiedades mec&aacute;nicas de la c&eacute;lula &#91;19&#93;.</p>      <p>De otro lado, algunos autores presentan la incidencia de m&eacute;todos de control como aplicaci&oacute;n de ozono, agua electrolizada oxidizada, &aacute;cido l&aacute;ctico y emulsiones entre otras, en la disminuci&oacute;n y eliminaci&oacute;n de las biopel&iacute;culas &#91;20, 21, 22, 23, 24, 25&#93;.</p>      <br>     <p><font size="3"><b>MODELOS DE PREDICCI&Oacute;N</b></font></p>      <p>Varios modelos han sido propuestos para explicar el desarrollo y propiedades de las biopel&iacute;culas.</p>      <p>Teor&iacute;a de monocapa de la biopel&iacute;cula. La primera teor&iacute;a de la estructura de biopel&iacute;cula, es un modelo continuo, que describe las biopel&iacute;culas como lisas, planas y homog&eacute;neas &#91;2,26&#93;.</p>      <p>Teor&iacute;a estructural en 3D: Teor&iacute;a Multicapa. El modelo continuo fue adecuado por predicciones ingenieriles, pero las observaciones usaron microscop&iacute;a de contraste diferencial de interferencia (DIC), indicando una estructura heterog&eacute;nea. El modelo de Kreft o swarm describe las biopel&iacute;culas como un mosaico heterog&eacute;neo con microorganismos agrupados sostenidos por EPS &#91;26&#93;.</p>      <p>Teor&iacute;a actual. Est&aacute; basada primariamente en la evidencia entregada por el microscopio de barrido con l&aacute;ser confocal. Este instrumento ha permitido visualizar una estructura como un hongo en la biopel&iacute;cula con estructuras a&eacute;reas denominadas torres, pedestales y canales de agua. La porci&oacute;n m&aacute;s elevada es el hongo formado por un tallo estrecho penetrado por canales. Este modelo propone que el crecimiento celular en la periferia es r&aacute;pido y lento en el interior. Las torres o porciones del hongo pueden romperse y repoblar otros lugares. Se ha demostrado que el rango de la porosidad de las biopel&iacute;culas maduras en la parte superior es de 89&#37; y del 5&#37; en la capa del fondo &#91;27&#93;, evidencia que confirma este modelo.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se ha descrito la estructura de la biopel&iacute;cula en un rango de monocapas de c&eacute;lulas simples dispersadas en fragmentos de c&eacute;lulas, las cuales son esparcidas a lo largo de la mucosa de las capas en tres dimensiones &#91;28&#93;, en las cuales los organismos pueden competir, operar independientemente, cooperar o ser predadores.</p>      <br>     <p><font size="3"><b>CONTROL Y REMOCI&Oacute;N DE LAS BIOPEL&Iacute;CULAS</b></font></p>      <p>Los nutrientes, el agua limitante, el dise&ntilde;o de equipos y el control de temperatura son aspectos importantes en el control de la biopel&iacute;cula. Es muy frecuente, que las variables mencionadas anteriormente, no se puedan cambiar, por tanto el control de la biopel&iacute;cula queda reducido a la efectividad de la limpieza que se realice sobre las &aacute;reas y equipos de proceso. La limpieza puede estar acompa&ntilde;ada por el uso de qu&iacute;micos o la combinaci&oacute;n de efectos f&iacute;sicos y qu&iacute;micos. Los agentes qu&iacute;micos de limpieza suspenden y disuelven residuos de los alimentos por la disminuci&oacute;n de la tensi&oacute;n superficial, emulsificaci&oacute;n de grasas y peptizaci&oacute;n de las prote&iacute;nas &#91;29&#93;.</p>      <p>En la mayor&iacute;a de las plantas de proceso de alimentos, las superficies de contacto con los alimentos son limpiadas y sanitizadas diariamente, sin embargo muchas otras superficies como los tanques de almacenamiento y los exteriores de las bombas, paredes y techos no presentan un plan de limpieza efectivo. Estos aspectos generan una oportunidad para la formaci&oacute;n de biopel&iacute;culas en presencia de humedad. Para el caso de la remoci&oacute;n de biopel&iacute;culas de Bacillus, esta se encuentra influenciada por la velocidad de flujo, tiempo y temperatura de limpieza, agentes alcalinos, presencia de quelantes, especialmente EDTA. Estos han mostrado ser m&aacute;s efectivos en la remoci&oacute;n de blopel&iacute;culas que la limpieza con agentes &aacute;cidos. Otros tratamientos como la esterilizaci&oacute;n con vapor, son &uacute;tiles en este aspecto; se ha reportado que la exposici&oacute;n a vapor (125&deg;C x 30 min) de material contaminado con biopel&iacute;culas, es un m&eacute;todo de limpieza altamente efectivo &#91;30&#93;.</p>      <p>La formaci&oacute;n de aerosoles es frecuentemente, la principal fuente de dispersi&oacute;n de los microorganismos. Estos son formados durante el lavado de las superficies y drenajes, o cuando las biopel&iacute;culas se secan y liberan material particulado. La inundaci&oacute;n de los desag&uuml;es de los pisos, produce un aerosol que incrementa la microflora en el aire. Se ha demostrado que despu&eacute;s de 210 minutos de la generaci&oacute;n de un aerosol, <i>L. monocytogenes</i> era detectable en el aire &#91;31&#93;. Es as&iacute;, como la implementaci&oacute;n y cumplimiento de sistemas de calidad como las Buenas Pr&aacute;ticas Agr&iacute;colas (BPA), Buenas Pr&aacute;cticas de Manufactura (BPM), An&aacute;lisis de Peligros y Puntos Cr&iacute;ticos de Control (HACCP), sistemas ISO (9000, 14000, 22000), disminuyen los eventos de correcci&oacute;n dados por pr&aacute;cticas deficientes en el proceso. Tanto el consumidor como la industria, exigen metodolog&iacute;as que garanticen la inocuidad de los alimentos. El n&uacute;mero de regulaciones t&eacute;cnicas y est&aacute;ndares de calidad y competitividad se est&aacute;n incrementando en la mayor&iacute;a de los pa&iacute;ses.</p>      <br>     <p><font size="3"><b>GENERALIDADES EN LA INDUSTRIA L&Aacute;CTEA</b></font></p>      <p>El da&ntilde;o de leche pasteurlzada por bacterias Gram positivas y de esporas termoresistentes es bien reconocido &#91;32&#93;, su presencia se da por su resistencia a tratamientos t&eacute;rmicos as&iacute; como inadecuados m&eacute;todos de limpieza y desinfecci&oacute;n de superficies. El incremento del transporte de leche cruda refrigerada desde las fincas productoras hasta las f&aacute;bricas se ha incrementado en las &uacute;ltimas d&eacute;cadas, gener&aacute;ndose problemas de contaminaci&oacute;n con <i>Bacillus cereus</i>, el cual promueve alteraciones de las prote&iacute;nas de la leche y l&iacute;pidos por proteasas y lipasas, disminuyendo la vida &uacute;til de los productos &#91;33&#93;; se ha encontrando que las superficies de equipos post-pasteurizaci&oacute;n, as&iacute; como otros equipos implicados en la cadena l&aacute;ctea son reservorios de este microorganismo &#91;34&#93;.</p>      <p>Con respecto a los problemas generados en las diferentes operaciones del procesamiento l&aacute;cteo, la formaci&oacute;n de dep&oacute;sitos en intercambiadores de calor, es un problema que causa la reducci&oacute;n de la eficiencia y el aumento de la ca&iacute;da de presi&oacute;n, afectando la econom&iacute;a de las plantas de procesamiento. Como resultado de la formaci&oacute;n de estos dep&oacute;sitos existe la posibilidad del deterioro en la calidad del producto porque el fluido no se puede calentar a la temperatura requerida y a que los dep&oacute;sitos desalojados por el flujo del fluido pueden causar contaminaci&oacute;n. Al ser la leche un fluido biol&oacute;gico complejo, las respuestas t&eacute;rmicas de sus constituyentes difieren uno del otro, pudi&eacute;ndose clasificar los dep&oacute;sitos en dos tipos. El tipo A, corresponde a prote&iacute;na y se llevan a cabo a temperaturas entre 75-11O&deg;C. Estos dep&oacute;sitos son blancos, suaves y esponjosos y su composici&oacute;n es de 50- 70&#37; de prote&iacute;nas, 30-40&#37; de minerales y 4-8&#37; de grasa. Los dep&oacute;sitos tipo B, corresponden a minerales y se presentan a temperaturas superiores a 110&deg;C. Los dep&oacute;sitos son duros, de color gris, y su composici&oacute;n es de 70-80&#37; de minerales, 15-20&#37; de prote&iacute;nas y 4-8&#37; de grasa &#91;32&#93;. La formaci&oacute;n de estos dep&oacute;sitos promueve la adhesi&oacute;n de microorganismos a la superficie de la transferencia de calor, form&aacute;ndose una bioincrustaci&oacute;n. La presencia de microorganismos en el flujo del proceso y/o en la capa de dep&oacute;sitos no solo afecta la calidad del producto, sino que tambi&eacute;n tiene influencia en el proceso &#91;35&#93;.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Entre los mecanismos de remoci&oacute;n de estas biopel&iacute;culas se pueden usar el ozono, el agua electrolizada y el lavado hidr&aacute;ulico, entre otros.</p>      <p><b>Ozono</b>. El inter&eacute;s en el ozono como alternativa al cloro y otros desinfectantes qu&iacute;micos en operaciones de limpieza y desinfecci&oacute;n, se basa en su alto poder biocida, amplio espectro microbiano, ausencia de productos que pueden causar da&ntilde;o a la salud, habilidad para aplicarse <i>in situ</i>, y sus ventajas ambientales que permiten a las empresas el cumplimiento de obligaciones legales &#91;36&#93;.</p>      <p>El ozono fue decretado por un panel de expertos del Departamento de Agricultura de Estados Unidos (USDA) en el a&ntilde;o 1998, como una sustancia segura (GRAS) para usarse como desinfectante o sanitizante en la industria de alimentos en acuerdo con la FDA, instituci&oacute;n que tambi&eacute;n lo aprob&oacute; &#91;37&#93;.</p>      <p>El ozono puede aplicarse como gas o en agua ozonizada y en diferentes superficies y materiales entre los que se encuentra el acero inoxidable usado en la industria de alimentos.</p>      <p><b>Agua Electrolizada</b>. El agua electrolizada oxidizada (EO), tambi&eacute;n conocida como agua electrolizada fuertemente acida (SAEW) o soluci&oacute;n acuosa electrolizada fuertemente acida (ESAAS), es un nuevo agente antimicrobiano que ha sido usado en Jap&oacute;n por varios a&ntilde;os, y que tiene aplicaci&oacute;n sobre gran variedad de microorganismos. El EO, es producida por el paso de una soluci&oacute;n salina diluida a trav&eacute;s de una celda electrol&iacute;tica, dentro de la cual el &aacute;nodo y el c&aacute;todo est&aacute;n separados por una membrana &#91;38&#93;.</p>      <p>Se ha demostrado que el agua EO, es un efectivo agente antimicroblano en aplicaciones en canales de aves de corral, huevos, semillas de alfalfa, peras, manzanas, melocot&oacute;n, tomates, fresas y equipos de procesamiento de alimentos &#91;39&#93;. Los brotes de listeriosis se han asociado con el procesamiento de alimentos y la formaci&oacute;n de biopel&iacute;culas de <i>L. monocytogenes</i> en el ambiente de procesamiento como una fuente de contaminaci&oacute;n primaria &#91;40&#93;. Se ha reportado que con tratamientos de EO durante 30-120 seg, se logr&oacute; reducir hasta 4.3-5.2 log ufc (en 2-5 cm) las poblaciones de bacterias viables de <i>L. monocytogenes</i> en biopel&iacute;culas sobre superficies de acero inoxidable &#91;41&#93;, y que el EO tiene un gran potencial para ser usada como agente de limpieza y sanitizaci&oacute;n para limpieza <i>in situ</i> en sistemas de orde&ntilde;o &#91;42&#93;.</p>      <p><b>Lavado Hidr&aacute;ulico</b>. El Lavado Hidr&aacute;ulico (LH), o flushing, es una de las t&eacute;cnicas disponibles para mejorar la calidad del agua y la capacidad hidr&aacute;ulica del sistema de distribuci&oacute;n de un acueducto, quitando la arena, los sedimentos, y las biopel&iacute;culas de las paredes de la tuber&iacute;a &#91;43&#93;.</p>      <p>El Lavado Hidr&aacute;ulico Unidireccional (LHU) es un m&eacute;todo mejorado del LH convencional, y se lleva a cabo a velocidades de aproximadamente 1.8 m/s, las cuales pueden ser adecuadas para el retiro de la biopel&iacute;cula y de los productos de la corrosi&oacute;n y otros desechos unidos a las paredes de la tuber&iacute;a &#91;44&#93;.</p>      <p>Por otra parte, en lo referente a la superficie de materiales, investigaciones recientes demostraron que la supervivencia de <i>Yersinla spp.</i>, <i>Enterobaccteria spp.</i>, <i>Aeromonas spp.</i>, depositadas en vidrio y acero inoxidable era dependiente de la humedad relativa &#91;44,45&#93;. El an&aacute;lisis de imagen digital y Microscop&iacute;a de Epifluorescencla directa (DEM) es un m&eacute;todo usado para cuantificar microorganismos viables y no viables, que puede llevarse a cabo en 15 minutos. Se ha estudiado el efecto de varios ambientes en la supervivencia de <i>Enterobacter cloacae</i>, <i>Pseudomonas aeruginosa</i> y <i>S. aureus</i> sobre superficies de acero inoxidable &#91;45&#93;, usando DEM y el m&eacute;todo convencional de cultivo. Tambi&eacute;n se demostr&oacute; que pat&oacute;genos como el <i>S. aureus</i> siguen siendo viables en la superficie de acero, a&uacute;n si est&aacute; seca &#91;45&#93;. Esto confirma la importancia de secar r&aacute;pidamente las superficies de acero inoxidable, despu&eacute;s del proceso de limpieza y desinfecci&oacute;n, para disminuir la proliferaci&oacute;n de las bacterias, ya que el agua es un factor que potencia el crecimiento microbiano y la formaci&oacute;n de la biopel&iacute;cula.</p>      <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>ASPECTOS EN VEGETALES FRESCOS</b></font></p>      <p>Los vegetales frescos han sido identificados como medios de transporte de bacterias pat&oacute;genas altamente importantes en salud p&uacute;blica, tales como <i>Salmonella</i> &#91;46&#93;, <i>Shigella</i> &#91;47&#93;, <i>Listeria monocytogenes</i> &#91;48&#93;, <i>Escherichia coli</i>, entre otros. Las bacterias no pat&oacute;genas pueden constituir comunidades de biopel&iacute;culas en vegetales como lechuga y tomate y los microorganismos potencialmente pat&oacute;genos pueden llegar a ser retenidos y protegidos dentro de estas biopel&iacute;culas &#91;49&#93;. Por el contrario de las c&eacute;lulas planct&oacute;nicas, las biopel&iacute;culas bacterianas sobre las superficies de las plantas son m&aacute;s resistentes a los sanitizantes y detergentes, lo que se atribuye a la producci&oacute;n de enzimas que degradan las sustancias antimicrobianas &#91;50&#93;. Se demostr&oacute;, que &aacute;cido l&aacute;ctico al 0.2&#37;, seguido de cloro a 200ppm y cloruro de lauril dimetil bencil amonio al 0.1 mg/ml fue el tratamiento de sanitizantes m&aacute;s eficiente con reducciones de 5.08, 4.7 y 4.21 log ufe en tomates contaminados con <i>Y. enterocolitica</i> &#91;51&#93;. Este tratamiento puede ser efectivo en la reducci&oacute;n de poblaciones de <i>E. coli</i> y <i>Y. enterocolitica</i> en vegetales dependiendo del tama&ntilde;o de in&oacute;culo, tipo de vegetal y el tiempo transcurrido entre la sanitizaci&oacute;n y el consumo.</p>      <p>La FDA (Food and Drug Administration) ha propuesto que los tratamientos con sanitizantes en vegetales frescos deben ser capaces de reducir la carga de pat&oacute;genos a m&iacute;nimo 5 log ufe sin afectar las caracter&iacute;sticas sensoriales del producto tratado.</p>      <br>     <p><font size="3"><b>ASPECTOS EN LA INDUSTRIA DE C&Aacute;RNICOS</b></font></p>      <p>La microflora de aves incluye pat&oacute;genos tales como <i>Salmonella sp.</i>, <i>Campylobacter jejuni</i>, <i>L. monocytogenes</i> y <i>E. coli</i>, esta &uacute;ltima formando parte de la microflora intestinal. Con la aparici&oacute;n de <i>E. coli</i> enterohemorr&aacute;gica 0157:H7 en la comida china, &eacute;sta se ha convertido en una fuente de contaminaci&oacute;n m&aacute;s importante que la causada por <i>Salmonella</i>. Estos microorganismos pueden atacar fuertemente tanto la piel como los m&uacute;sculos de las aves, y las superficies de los equipos de procesamiento. En este &aacute;mbito, se han realizado investigaciones sobre m&eacute;todos sinerg&iacute;sticos contra este tipo de biopel&iacute;culas, es as&iacute; como una combinaci&oacute;n biocida de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno, bisulfato de sodio y timol fue eficaz contra <i>iE. coli</i> y <i>S. typhimurium</i> adheridas a la piel de pollos &#91;52&#93;.</p>      <p>El uso de tales combinaciones biocidas brinda un m&eacute;todo f&aacute;cil, efectivo y seguro para desinfecci&oacute;n de aves de corral, al mismo tiempo ofrece buenas perspectivas en esterilizaci&oacute;n de materiales de empaque, sanitizantes para huevos incubados, y desinfectantes de frutas y vegetales. Con garant&iacute;as econ&oacute;micas, esta combinaci&oacute;n puede ser un sustituto seguro y efectivo de los antibi&oacute;ticos comunes usados en el procesamiento de aves de corral.</p>      <p>La contaminaci&oacute;n de carne en el ambiente de proceso puede ocurrir en cualquier estado, desde el sacrificio hasta el embalaje. Se ha reportado que las c&eacute;lulas de la biopel&iacute;cula, podr&iacute;an interactuar con prote&iacute;nas (flbronectina, laminina y col&aacute;geno) de la carne y adherirse exitosamente a su superficie &#91;53&#93;.</p>      <p><b>Dise&ntilde;o Sanitario</b>. De acuerdo con &#91;54&#93;, los principios para el dise&ntilde;o de equipos e instalaciones deben permitir el control sobre los riesgos de contaminaci&oacute;n durante el procesamiento de productos de carne y pollo listos para comer (RTE), la construcci&oacute;n de nuevas instalaciones y la renovaci&oacute;n de las existentes.</p>      <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>TENDENCIAS</b></font></p>      <p>Teniendo en cuenta que un gran n&uacute;mero de industrias se est&aacute;n viendo afectadas por la formaci&oacute;n de biopel&iacute;culas y considerando tambi&eacute;n que actualmente existen restricciones en algunos tipos de biocidas, es probable que las investigaciones mantengan un inter&eacute;s industrial que permita prever las circunstancias futuras. La adhesi&oacute;n de las bacterias y la formaci&oacute;n de las biopel&iacute;culas, no est&aacute;n completamente entendidas en t&eacute;rminos de gen&eacute;tica y efectos ambientales; es probable que las t&eacute;cnicas como la micromanipulaci&oacute;n y la microscop&iacute;a de fuerza at&oacute;mica, sean mucho m&aacute;s exploradas, ya que actualmente no est&aacute;n ampliamente disponibles. Se han dise&ntilde;ado sistemas que se pueden montar <i>in situ</i>, para observar las condiciones de flujo de la biopel&iacute;cula, sus propiedades el&aacute;sticas, y otras caracter&iacute;sticas utilizando microscop&iacute;a de barrido con l&aacute;ser confocal (CLMS)&#91;4&#93;. Este tipo de t&eacute;cnicas permite analizar el comportamiento antes, durante y despu&eacute;s de una superficie, expuesta a diferentes compuestos qu&iacute;micos para evaluar la reducci&oacute;n de la adhesividad de las bacterias y consecuente formaci&oacute;n de las biopel&iacute;culas. Ser&iacute;a importante que el sector agroalimentario pueda acceder a este tipo de tecnolog&iacute;as, en beneficio de las empresas y los consumidores.</p>      <p>En Colombia, aunque los reportes de listeriosis y la presencia de <i>Listeria monocytogenes</i> en leche cruda no se encuentra reglamentado, hay una considerable incidencia de este pat&oacute;geno en este tipo de alimentos debido a que el procesamiento de productos derivados como quesos y helados pueden ser preparados usando leche contaminada. Se ha reportado la incidencia de pat&oacute;genos en el 37&#37; de leche cruda y en el 2&#37; de la leche pasterizada, con una incidencia del 29.2&#37; y del 22.8&#37; en quesos tipo suaves colombianos &#91;55&#93;. En hospitales de tercer nivel, en la ciudad de Cali (Colombia), se registraron 19 casos fatales relacionados con este sector, desde 1994 hasta 1999. Por otra parte, el consumo de leche cruda a nivel nacional es muy alto; en el Departamento de Boyac&aacute;, cerca del 95&#37; de los habitantes compran este tipo de leche a personal no autorizado, aduciendo mejor contenido nutricional comparado con la leche pasterizada. Hoy d&iacute;a, varios grupos de investigaci&oacute;n se encuentran desarrollando t&eacute;cnicas de detecci&oacute;n y control con el fin de disminuir la incidencia de contaminaci&oacute;n por formaci&oacute;n de biopel&iacute;culas en este sector agroindustrlal &#91;55&#93;.</p>      <br>     <p><font size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>      <p>Las biopel&iacute;culas generalmente est&aacute;n asociadas a procesos de contaminaci&oacute;n en la industria de alimentos, sin embargo, el desarrollo de nuevas tecnolog&iacute;as permite la aplicaci&oacute;n en procesos ben&eacute;ficos como fermentaciones y biorremediaci&oacute;n.</p>      <p>La falta de control y prevenci&oacute;n en la formaci&oacute;n de biopel&iacute;culas puede generar problemas de salubridad y p&eacute;rdidas econ&oacute;micas por da&ntilde;os en instalaciones, equipos y aditamentos.</p>      <p>Los problemas ocasionados por la formaci&oacute;n de biopel&iacute;culas en la industria de alimentos pueden ser prevenidos mediante la correcta implementaci&oacute;n y aplicaci&oacute;n de sistemas de calidad y el uso de t&eacute;cnicas de remoci&oacute;n tales como ozono, agua electrolizada oxidizada, lavado hidr&aacute;ulico, entre otros.</p>      <br><hr>     <p><font size="3"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A la Universidad del Cauca por los recursos facilitados.</p>      <br>     <p><font size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p>&#91;1&#93; COSTERTON, J. Introduction to biofilm: Discussion. Int J Antimicrob Ag., 11, 217-221,1999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S1692-3561201000020001500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;2&#93; CHMIELEWSKI, R. and FRANK, J. Biofilm Formation and Control in food Processing Facilities, Compr Rev Food Sel Food Sal, 2, 22-32, 2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S1692-3561201000020001500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;3&#93; CARPENTIER, B. and CERF, 0. Biofilms and their consequences, with particular reference to hygiene in the food industry: Review. J Appl Bacteriol., 75, 499-511,1993.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S1692-3561201000020001500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;4&#93; GARRETT, T.; BHAKOO, M. and ZHANG, Z. Bacterial adhesi&oacute;n and biofilms on surfaces, Review, Prog Nat Sci., 18; 1049-1056, 2008.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S1692-3561201000020001500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;5&#93; SANDASI, M.; LEONARD, C. and VILJOEN, A. The effect of five common essential of five components on Listona monocytogenes biofilms, Food Control, 19,1070-1075,2008.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S1692-3561201000020001500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;6&#93; POULSEN, L Microbial Biofilm in Food Processing. Review. Lebensm Wiss Technol, 32, 321-326. 1999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S1692-3561201000020001500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;7&#93; SHARMA M.; EASTRIDGE, J. and MUDD, C. Effective household disinfection method of kitchen sponges, Food Control, 20, 310-313, 2009.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S1692-3561201000020001500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;8&#93; ABEE, T. et al. Germination and outgrowth of spores of Bacillus cereus group members: Diversity and role of germinant receptors. Food Microbiol., In Press.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S1692-3561201000020001500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;9&#93; MORIKAWA, M. Beneficial Biofilm Formation by Industrial Bacteria Bacillus subtills and Related Species: Review. J Biosci Bioeng., 101,1-8,2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S1692-3561201000020001500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;10&#93; STEPHENS, C. Microbiology: Breaking Down Biofilms, Curr Biol., 12, R132-R134, 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S1692-3561201000020001500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;11 &#93; KUMAR, G. and ANAND, S. Significance of microbial biofilms in food industry: A review,. Int J Food Microbiol, 42, 9-27,1998.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S1692-3561201000020001500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;12&#93; HALL-STOODLEY, L. and STOODLEY, R. Developmental regulation of microbial biofilms, Curr Opin Biotech.,13, 228-233, 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S1692-3561201000020001500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;13&#93; CHAVANT, P. et al. A new device for rapid evaluation of biofilm formation potential by bacteria, J Microbiol Meth., 68, 605-612, 2007.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S1692-3561201000020001500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;14&#93; SHAHEEN, R. et al. Persistence strategies of Bacillus cereus spores isolated from dairy silo tanks, Food Microbiol., 27, 347-355, 2010.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S1692-3561201000020001500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;15&#93; FANG, H.; CHAN, K. and XU, L. Quantification of bacterial adhesi&oacute;n forces using atomic force microscopy (AFM), J Microbiol Meth., 40, 89-97, 2000.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S1692-3561201000020001500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;16&#93; BOYD, R. et al. Use of the atomic force microscope to determine the effect of substratum surface topography on bacterial adhesion, Langmuir., 18, 2343-2346, 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S1692-3561201000020001500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;17&#93; PERNI, S. et al. Biofilm development by Listeria innocua in turbulent flow regimes, Food Control., 17,875-883,2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S1692-3561201000020001500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;18&#93; GARC&Iacute;A-ALMEND&Aacute;REZ, B. et al. Effect of Lactococcus lactis UQ2 and its bacteriocin on Listeria monocytogenes biofilms, Food Control., 19, 670-680, 2008.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S1692-3561201000020001500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;19&#93; LIU, W. et al. Development and use of a micromanipulation technique for measuring the force required to disrupt and remove fouling deposits, Food Bioprod Process, 80; 286-291, 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S1692-3561201000020001500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;20&#93; AL-ADHAM, I.S.I. et al. Microemulsions are highly effective anti-biofilm agents, Appl Microbiol., 36, 97-100,2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S1692-3561201000020001500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;21&#93; BIRKS, S. Ozone technology gets a clean break, Food Manuf., 78, 63-64, 2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S1692-3561201000020001500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;22&#93; SIM&Otilde;ES, M., SIM&Otilde;ES, L. and VIEIRAB, M. A review of current and emergent biofilm control strategies, Food Sel Technol., 43, 573-583, 2010.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S1692-3561201000020001500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;23&#93; OKULL, D. and LABORDE, L. Activity of electrolyzed oxidizing water against Penicilium expansum on suspensi&oacute;n and on wounded apples, J Food Sci, 69, 23-27, 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S1692-3561201000020001500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;24&#93; OZER, N. and DEMIRCI, A. Electrolyzed oxldizing water treatment for decontamination of raw salmon inoculated with Escherichia coli 0157:H7 and Listeria monocytogenes Scott A and response surface modeling. J Food Eng., 72, 234-241, 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S1692-3561201000020001500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;25&#93; RUSSELL, S. The effect of electrolyzed oxidative water applied using electrostatic spraying on pathogenic and indicator bacteria on the surface of eggs. Poultry Sci, 82,158-162, 2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S1692-3561201000020001500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;26&#93; BISHOP, P. Biofilm structure and kinetics, Water Sci Technol., 36, 287-294,1997.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S1692-3561201000020001500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;27&#93; ZHANG, T. and BISHOP, P. Structure, activity and composition of biofilm, Water Sci Technol., 29, 335-344,1994.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S1692-3561201000020001500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;28&#93; DAVEY M. and O'TOOLE, G. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics, Microbiol Mol Biol R., 64, 847-867, 2000.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S1692-3561201000020001500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;29&#93; SERRA, G. P. Estudio del Biofilm: Formaci&oacute;n y Consecuencias. Escola de Prevenci&oacute; I Seguretat Integral, 2003. Available: <a href="http://www.adiveter.com/ftp/articles/A1070308.pdf" target="_blank">http://www.adiveter.com/ftp/articles/A1070308.pdf</a> &#91;citado 1 de Noviembre de 2010&#93;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S1692-3561201000020001500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;30&#93; WIRTANEN, G.; HUSMARK, U. and MATILLA-SANDHOLM, T. Microbial evaluation of the biotransfer potential from surfaces with Bacillus biofilms after rinsing and cleaning procedures in closed food processing systems. J Food Protect., 59,727-733,1996.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S1692-3561201000020001500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;31&#93; ZHANG, G. Aerosol Studies with Listeria innocua and Listeria monocytogenes. J Food Protect., 70; 1857-1865,2007.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S1692-3561201000020001500031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;32&#93; BANSAL, B. and CHEN, X. A critical review of milk fouling in heat exchangers, Compr Rev Food Sci Food Saf., 5, 27-47, 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S1692-3561201000020001500032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;33&#93; FROMM, H. and BOOR, K. Characterization of pasteurized fluid milk shelf-life attributes, J Food Sci., 69, 207-214, 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S1692-3561201000020001500033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;34&#93; SALUSTIANO, V. Contamination of milk with Bacillus cereus by post-pasteurization surface exposure as evaluated by automated ribotyping, Food Control., 20, 439-442, 2009.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S1692-3561201000020001500034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;35&#93; YOO, J.-A., HARDIN, M. and CHEN, X. The influence of milk composition on the growth of Bacillus sterothermophilus. J Food Eng., 77, 96-102,2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S1692-3561201000020001500035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;36&#93; PASCUAL, A. et al. Use of ozone in food industries for reducing the environmental impact of cleaning and disinfection activities. Trends Food Sel Tech., 18, S29-S35, 2007.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S1692-3561201000020001500036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;37&#93; GUZEL-SEYDIM, Z., GREENE, A. and SEYDIM, A. Use of ozone in the food industry, Lebensm Wiss Technol., 37, 453-460, 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S1692-3561201000020001500037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;38&#93; HSU, S. Effects of flow rate, temperature and salt concentration on chemical and physical properties of electrolyzed oxidizing water. J Food Eng., 66,171-176,2005.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S1692-3561201000020001500038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;39&#93; HUANG, Yu. et al. Application of elecrolyzed water in the food industry. Food Control 19(4); 329-345. 2008.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S1692-3561201000020001500039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;40&#93; CARPENTIER, B. and CHASSAING, D. Interactions in biofilms between Listeria monocytogenes and resident microorganisms from food industry premises. Int J Food Microbiol., 97,111-122,2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S1692-3561201000020001500040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;41&#93; AYEBAH, B. and HUNG, Y.C. Electrolyzed water and its corrosiveness on various surface materials commonly found in food processing facilities. J. Food Process Eng., 28, 247-264, 2005.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S1692-3561201000020001500041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;42&#93; WALKER, S. CIP cleaning of a pipeline milking system using electrolyzed oxidizlng water. Int J Dairy Technol., 58, 65-73, 2005.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S1692-3561201000020001500042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;43&#93; CARVAJAL, L; G&Oacute;MEZ, A. y OCHOA S. Hydraulic flushing modeling in pipes to control of biofilm growth. 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Food Control., 18, 1272-1276,2007.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S1692-3561201000020001500052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;53&#93; CHEN, J., ROSSMAN, M. and PAWARD, D. Attachment of enterohemorrhagic Escherichia coli to the surface of beef and a culture medium. Food Sel Technol., 40, 249-254, 2007.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S1692-3561201000020001500053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;54&#93; SEWARD, S. Sanitary design of ready to eat meat and poultry processing equipment and facilities. 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