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<journal-title><![CDATA[Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[BACTERIAS NATIVAS SOLUBILIZADORES DE FOSFATOS PARA INCREMENTAR LOS CULTIVOS EN EL DEPARTAMENTO DE CÓRDOBA-COLOMBIA]]></article-title>
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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[BACTÉRIA NATIVO SOLUBILIZER DE FOSFATOS AO AUMENTO DAS COLHEITAS NO DEPARTAMENTO DE CORDOVA-COLÔMBIA]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The aim of this study was to characterize and evaluate native phosphate solubilizing microorganisms from soil samples in the rural area of Cordoba. Primary isolation was performed in the middle SMRS1 in which we observed the appearance of halos of solubilization, at the same time there was a macroscopic and microscopic characterization of the colonies. Was observed, as gram-negative bacilli predominant population at a rate of 93&#37;. We performed qualitative analysis of the strains isolated NBRIP supplemented, at this stage were selected for strains that showed greater than 3 mm IS strains selected for their ability to solubilize phosphate were reviewed using the API 20 E and API 20 NE. The isolated bacteria were: Burkoldelia cepacia, Enterobacter cloacae, Pantoea sp, Aeromonas hydrophila, Enterobacter Nakasaki. Burkoldelia cepacia was the microorganism most phosphate solubilizing capacity and was used to conduct a small trial in radish (Rhapanus sativus) seeds. It was found that a concentration of 108 CFUI mL the results were favorable for growth and fresh weight of the plant]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[0 objetivo deste estudo foi caracterizar e avaliar nativa microrganismos solubilizadores de fosfato a partir de amostras do solo na área rural de Córdoba. Isolamento primário foi realizado no SMRS1 meio em que se observou o aparecimento de halos de solubilização, ao mesmo tempo, houve uma caracterização macroscópica e microscópica das colônias. Observou-se, como gram-negativos população bacilar predominante, a uma taxa de 93&#37;. Foi realizada uma análise qualitativa das cepas isoladas NBRIP completados, nesta etapa foram selecionados para as estirpes que apresentaram maior do que 3 mm é cepas selecionadas por sua capacidade de solubilização foram analisados utilizando a API 20 E e API 20 NE. As bactérias isoladas foram: Burkoldelia cepacia, Enterobacter cloacae, Pantoea sp, Aeromonas, Enterobacter Nakasaki. Cepacia Burkoldelia foi o microrganismo mais capacidade de solubilização de fosfato e foi usado para realizar um pequeno teste em sementes de rabanete (Rhapanus sativus). Verificou-se que uma concentração de 108 UFC/mL, os resultados foram favoráveis para o crescimento eo peso fresco da planta.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="Verdana" size="2">      <center>      <p><b><font size="4">BACTERIAS NATIVAS SOLUBILIZADORES DE FOSFATOS PARA INCREMENTAR LOS CULTIVOS EN EL DEPARTAMENTO DE C&Oacute;RDOBA-COLOMBIA</font></b></p>      <p><b><font size="3">NATIVE PHOSPHATE SOLUBILIZING BACTERIA TO INCREASE THE CROPS IN THE DEPARTMENT OF CORDOVA-COLOMBIA</font></b></p>      <p><b><font size="3">BACT&Eacute;RIA NATIVO SOLUBILIZER DE FOSFATOS AO AUMENTO DAS COLHEITAS NO DEPARTAMENTO DE CORDOVA-COL&Ocirc;MBIA</font></b></p>      <p><b>CECILIA LARA<a name="1"></a><a href="#1a"><sup>1</sup></a>, LINA M ESQUIVEL AVILA<a name="2"></a><a href="#2a"><sup>2</sup></a>, JORGE L NEGRETE PE&Ntilde;ATA<a name="3"></a><a href="#3a"><sup>3</sup></a></b></p>  </center>      <p><sup><a name="1a"></a><a href="#1">1</a></sup> Ph.D. Qu&iacute;mica. Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a. GRUBIODEQ. Universidad de C&oacute;rdoba.</p>     <p><sup><a name="2a"></a><a href="#2">2</a></sup> Bacteri&oacute;loga. Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a. GRUBIODEQ Universidad de C&oacute;rdoba.</p>     <p><sup><a name="3a"></a><a href="#3">3</a></sup> Bacteri&oacute;logo. Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a. GRUBIODEQ Universidad de C&oacute;rdoba.</p>      <p><b>Correspondencia</b>: <a href="mailto:lara_mantilla_cecilia@hotmail.co">lara_mantilla_cecilia@hotmail.co</a></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Recibido para evaluaci&oacute;n</b>: 28/02/2011. <b>Aprobado para publicaci&oacute;n</b>: 01/07/2011</p> <hr>    <br>      <p><b><font size="3">RESUMEN</font></b></p>      <p><i>El objetivo del presente trabajo fue caracterizar y evaluar microorganismos nativos fosfato solubilizadores a partir de muestras de suelo en zona rural del departamento de C&oacute;rdoba. Se realiz&oacute; un aislamiento primario en medio SMRS1 en el cual se observ&oacute; la aparici&oacute;n de halos de solubilizaci&oacute;n; al mismo tiempo se realiz&oacute; una caracterizaci&oacute;n macrosc&oacute;pica y microsc&oacute;pica de las colonias. Se observ&oacute;, como poblaci&oacute;n predominante bacilos Gram negativos con un porcentaje del 93&#37;. Se realiz&oacute; el an&aacute;lisis cualitativo de la cepas instaladas en el medio NBRIP, en esta fase fueron seleccionadas las cepas que presentaran IS mayores de 3 mm. Las cepas seleccionadas por su capacidad fosfato solubilizadora fueron analizadas mediante el sistema API 20 E y API 20 NE. Las bacterias aisladas correspondieron a: Burkoldelia cepacia, Enterobacter cloacae, Pantoea sp, Aeromonas hydrophila, Enterobacter nakasaki. Burkoldelia cepacia fue el microorganismo con mayor capacidad fosfato solubilizadora y fue utilizado para realizar un peque&ntilde;o ensayo en semillas de r&aacute;bano (Rhapanus sativus). Se encontr&oacute; que a una concentraci&oacute;n de 10<sup>8</sup> UFC/mL los resultados fueron favorables en el crecimiento y en el peso fresco de la planta.</i></p>      <p><b>PALABRAS CLAVE</b>:    <br>  <i>Burkoldelia cepacia, bacterias solubilizadores de fosfatos, r&aacute;bano (Rhapanus sativus).</i></p>     <br>      <p><b><font size="3">ABSTRACT</font></b></p>      <p><i>The aim of this study was to characterize and evaluate native phosphate solubilizing microorganisms from soil samples in the rural area of Cordoba. Primary isolation was performed in the middle SMRS1 in which we observed the appearance of halos of solubilization, at the same time there was a macroscopic and microscopic characterization of the colonies. Was observed, as gram-negative bacilli predominant population at a rate of 93&#37;. We performed qualitative analysis of the strains isolated NBRIP supplemented, at this stage were selected for strains that showed greater than 3 mm IS strains selected for their ability to solubilize phosphate were reviewed using the API 20 E and API 20 NE. The isolated bacteria were: Burkoldelia cepacia, Enterobacter cloacae, Pantoea sp, Aeromonas hydrophila, Enterobacter Nakasaki. Burkoldelia cepacia was the microorganism most phosphate solubilizing capacity and was used to conduct a small trial in radish (Rhapanus sativus) seeds. It was found that a concentration of 108 CFUI mL the results were favorable for growth and fresh weight of the plant.</i></p>      <p><b>KEYWORDS</b>:    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  <i>Burkoldelia cepacia, Phosphate solubilizing bacteria, radish (Rhapanus sativus).</i>     <br>      <p><b><font size="3">RESUMO</font></b></p>      <p><i>0 objetivo deste estudo foi caracterizar e avaliar nativa microrganismos solubilizadores de fosfato a partir de amostras do solo na &aacute;rea rural de C&oacute;rdoba. Isolamento prim&aacute;rio foi realizado no SMRS1 meio em que se observou o aparecimento de halos de solubiliza&ccedil;&atilde;o, ao mesmo tempo, houve uma caracteriza&ccedil;&atilde;o macrosc&oacute;pica e microsc&oacute;pica das col&ocirc;nias. Observou-se, como gram-negativos popula&ccedil;&atilde;o bacilar predominante, a uma taxa de 93&#37;. Foi realizada uma an&aacute;lise qualitativa das cepas isoladas NBRIP completados, nesta etapa foram selecionados para as estirpes que apresentaram maior do que 3 mm &eacute; cepas selecionadas por sua capacidade de solubiliza&ccedil;&atilde;o foram analisados utilizando a API 20 E e API 20 NE. As bact&eacute;rias isoladas foram: Burkoldelia cepacia, Enterobacter cloacae, Pantoea sp, Aeromonas, Enterobacter Nakasaki. Cepacia Burkoldelia foi o microrganismo mais capacidade de solubiliza&ccedil;&atilde;o de fosfato e foi usado para realizar um pequeno teste em sementes de rabanete (Rhapanus sativus). Verificou-se que uma concentra&ccedil;&atilde;o de 108 UFC/mL, os resultados foram favor&aacute;veis para o crescimento eo peso fresco da planta.</i></p>      <p><b>PALAVRAS-CHAVE</b>:    <br> <i>Burkoldelia cepacia, microrganismo solubiliza&ccedil;&atilde;o de fosfato, rabanete (Rhapanus sativus).</i></p>     <br>      <p><b><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>      <p>El f&oacute;sforo (P) es un nutriente esencial para el desarrollo de las plantas; desempe&ntilde;a un papel fundamental en la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas, bios&iacute;ntesis de l&iacute;pidos, s&iacute;ntesis de clorofila, compuestos carotenoides, metabolismos de los &aacute;cidos org&aacute;nicos, biog&eacute;nesis de los gl&uacute;cidos, entre otros &#91;1&#93;. El f&oacute;sforo es el segundo elemento limitante en las cosechas, despu&eacute;s del nitr&oacute;geno, debido a su gran insolubilidad; para que pueda ser asimilado, es necesario que se encuentre como una de las formas de ortofosfato: P0<sub>4</sub>H<sub>2</sub><sup>-</sup> o P0<sub>4</sub>H<sup>-2</sup> en la disoluci&oacute;n del suelo. La mayor parte del f&oacute;sforo inorg&aacute;nico es absorbido en las plantas en forma de P0<sub>4</sub>H<sub>2</sub><sup>-</sup> y en menor proporci&oacute;n como PO &#91;1,2&#93;.</p>      <p>Algunas especies microbianas del suelo tienen la capacidad de convertir las formas insolubles del f&oacute;sforo en formas asimilables para las plantas; la acci&oacute;n de solubilizaci&oacute;n puede generarse a trav&eacute;s de procesos como producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos, quelaci&oacute;n e intercambio de reacciones &#91;3&#93;. El &aacute;cido ox&aacute;lico producido por microorganismos pueden quelar el Ca<sup>2+</sup> , Mg<sup>2+</sup> y Fe<sup>3+</sup>, desestabilizando as&iacute; el mineral de procedencia del fosfato para finalmente solubilizarlo &#91;4&#93;. El mecanismo m&aacute;s usado por las poblaciones microbianas para solubilizar el fosfato es a trav&eacute;s de la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos, los cuales act&uacute;an sobre formas insolubles, fosfato tric&aacute;lclco, fosfato dic&aacute;lcico, hidroxiapatita y roca fosf&oacute;rica.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los &aacute;cidos org&aacute;nicos permiten que haya solubilizaci&oacute;n debido a que la presencia de estos implica un descenso en el pH hasta valores aproximados a 2; valores necesarios para que se pueda llevar a cabo la solubilizaci&oacute;n. La producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos a partir de la fermentaci&oacute;n de la glucosa da como resultado la acidificaci&oacute;n de las c&eacute;lulas y sus alrededores &#91;5&#93;.</p>      <p>Las bacterias que solubilizan activamente el f&oacute;sforo representan un 10&#37; de la poblaci&oacute;n microbiana del suelo. Un mecanismo indirecto ocurre cuando los microorganismos asimilan directamente los fosfatos insolubles acumul&aacute;ndose en sus c&eacute;lulas y liber&aacute;ndolos posteriormente. Dentro de los g&eacute;neros encontrados se conocen los hongos como <i>Aspergillus, Fusarium </i>y <i>Sclerotium</i>. Un segundo grupo lo constituyen los <i>Actinomycetes</i>, y las bacterias entre las que se pueden mencionar a <i>Bacillus, Flavobacterium, Burkholderia, rizhobium</i> y <i>Pseudomonas</i> &#91;6&#93;.</p>      <p>El departamento de C&oacute;rdoba al igual que otros departamentos de Colombia basa gran parte de su econom&iacute;a en el sector agr&iacute;cola, siendo sus cultivos m&aacute;s importantes coco, sorgo, ma&iacute;z, arroz, pl&aacute;tano, yuca y algod&oacute;n; estos suelos tropicales no escapan de la problem&aacute;tica ocasionada por la deficiencias en el f&oacute;sforo y por esta raz&oacute;n los agricultores se ven en la necesidad de recurrir a los fertilizantes qu&iacute;micos aumentando los costos en la producci&oacute;n.</p>      <p>Conociendo la importancia del f&oacute;sforo para el &oacute;ptimo desarrollo de las plantas y la problem&aacute;tica que envuelve su deficiencia en los cultivos, el objetivo del presente trabajo de investigaci&oacute;n fue caracterizar y evaluar microorganismos nativos fosfato solubilizadores a partir de muestras de suelo en el departamento de C&oacute;rdoba.</p>     <br>      <p><b><font size="3">M&Eacute;TODO</font></b></p>      <p><b>Sitio de muestreo</b></p>      <p>Se realiz&oacute; un muestreo aleatorio de los suelos, en la finca "Las Guayabas" ubicada en sector rural del municipio de Monter&iacute;a; altura promedio de 20 msnm, precipitaci&oacute;n 1200 - 1300 mm, humedad relativa 80 - 90 &#37; y temperatura, 25-32&deg;C. Se escogieron al azar muestras de suelo (riz&oacute;sfera) de cultivo de guayaba agria (<i>Psidium araca</i>), zonas sin cultivar (rastrojos), maleza y materia org&aacute;nica en descomposici&oacute;n. Se midi&oacute; de pH a las muestras de suelos obtenidas.</p>      <p><b>Aislamiento de las bacterias solubilizadoras</b></p>      <p>Se tomaron 4g de muestra previamente homogenizadas y se adicionaron a 36 mL de soluci&oacute;n salina (0.85&#37;); a partir de &eacute;sta se realizaron diluciones seriadas de 10<sup>-1</sup> a 10<sup>-5</sup>. Las bacterias fueron aisladas usando medio SMRS1 que conten&iacute;a p&uacute;rpura de bromocresol como indicador de pH, sulfato de amonio y extracto de levadura como fuente de nitr&oacute;geno, cloruro de sodio y potasio para regular la presi&oacute;n osm&oacute;tica y otros componentes como sulfato de magnesio, sulfato de hierro como cofactores enzim&aacute;ticos &#91;7&#93;.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las condiciones de crecimiento fueron: temperatura de 27&deg;C y tiempo de incubaci&oacute;n de 48 a 72 horas hasta observar crecimiento y presencia de solubilizaci&oacute;n alrededor de las colonias. Se seleccionaron las colonias que presentaron halos de solubilizaci&oacute;n y se realizaron pases celulares en medio SMRS1, por la t&eacute;cnica de agotamiento en placa, a temperatura de 27&deg;C durante 72 horas, con el objetivo de obtener cepas puras.</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n cualitativa de la solubilizaci&oacute;n de fosfato</b>      <p>La capacidad cualitativa de solubilizaci&oacute;n se determin&oacute; en medio NBRIP &#91;8&#93;. Las cajas de NBRIP inoculadas con cada una de las cepas puras se incubaron a 28&deg;C durante 7 d&iacute;as hasta la aparici&oacute;n de halos claros. El tama&ntilde;o de los halos se calcul&oacute; seg&uacute;n el &iacute;ndice de solubilizaci&oacute;n: IS=A/B (A: di&aacute;metro de la colonia &#43; di&aacute;metro del halo y B: di&aacute;metro de la colonia) &#91;9&#93; y se seleccionaron las cepas que mostraron &iacute;ndices de solubilizaci&oacute;n mayores a los 3 mm; las mediciones se realizaron a los 3 y 7 d&iacute;as respectivamente despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n, con el fin de evaluar el comportamiento de las cepas a trav&eacute;s de los d&iacute;as.</p>      <p>Todos los ensayos se realizaron por triplicado.</p>      <p><b>Caracterizaci&oacute;n macrosc&oacute;pica y microsc&oacute;pica de las colonias.</b></p>      <p>Se realiz&oacute; la identificaci&oacute;n de las colonias teniendo en cuenta caracter&iacute;sticas macrosc&oacute;picas de forma, color, tama&ntilde;o y consistencia utilizando medios selectivos. Se identific&oacute; la morfolog&iacute;a microsc&oacute;pica mediante tinci&oacute;n de Gram y caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas y bioqu&iacute;micas de acuerdo al manual Bergey's &#91;10&#93;; se realiz&oacute; prueba catalasa y oxidasa. Se utilizaron adem&aacute;s los kit de identificaci&oacute;n API20NE y API20E (bloM&eacute;rieux) y el programa Inform&aacute;tico de Identificaci&oacute;n APIWEB&trade;.</p>      <p><b>Ensayos preliminares en plantas de r&aacute;bano</b></p>      <p>Para la prueba se escogi&oacute; la bacteria que mejor resultado demostr&oacute; cualitativamente en la solubilizaci&oacute;n de fosfato es decir la de mayor IS; se prepararon diferentes concentraciones del microorganismo: 106, 107 y 108 UFC en caldo nutritivo a temperatura ambiente (28&plusmn;2&deg;C), manteniendo una agitaci&oacute;n constante de 150 rpm en un shaker por un per&iacute;odo de 24 horas; a estos preparados se les llam&oacute; Bioinoculantes.</p>      <p>Se utiliz&oacute; la semilla comercial 'R&aacute;bano Crimson Giant Variedad' (Instituto Colombiano Agropecuario, ICA). Las plantas de r&aacute;bano se desarrollaron en predios de la Universidad de C&oacute;rdoba, a temperatura promedio de 29&deg;C y humedad relativa de 79&#37;; el suelo utilizado fue de textura arcillosa &#91;11&#93;. No se utiliz&oacute; ning&uacute;n tipo de plaguicida.</p>      <p>Durante un tiempo de 60 minutos las semillas fueron embebidas en los bioinoculantes hasta cubrirlas y posteriormente fueron sembradas; se realizaron cuatro tratamientos como son:</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Tratamiento 1 (control)</b>: Semillas sin ning&uacute;n tipo de tratamiento.    <br> <b>Tratamiento 2</b>: Semillas tratadas con el bioinoculante 10<sup>6</sup> UFC/mL.    <br> <b>Tratamiento 3</b>: Semillas tratadas con el bioinoculante 10<sup>7</sup> UFC/mL.    <br> <b>Tratamiento 4</b>: Semillas tratadas con el bioinoculante 10<sup>8</sup> UFC/mL.</p>      <p>Posterior al tratamiento aplicado a las semillas, se realiz&oacute; la siembra de &eacute;stas en canastas las cuales presentan 30 divisiones cada una, usando media canasta (15 divisiones) para cada tratamiento. Las semillas fueron sembradas a 1 cent&iacute;metro de profundidad, colocando una semilla en el centro de cada espacio de la canasta, para un total de 30 semillas por caja.</p>      <p>Al finalizar el ensayo preliminar a los 8 d&iacute;as se evaluaron los siguientes par&aacute;metros biom&eacute;tricos &#91;12, 13&#93;: a) longitud de la planta (cm): se midi&oacute; desde la base del tallo hasta la hoja m&aacute;s larga de cada una de las plantas muestreadas; b) Longitud de la ra&iacute;z (cm): se realiz&oacute; la medici&oacute;n de la ra&iacute;z principal de cada planta muestreada; c) peso fresco de la planta (mg): se pes&oacute; en una balanza anal&iacute;tica cada una de las plantas muestreadas, reci&eacute;n extra&iacute;das del suelo.    <p>     <br>      <p><b><font size="3">RESULTADOS</font></b></p>      <p>Los resultados obtenidos de pH indicaron valores entre 6.6 - 7.4. Las condiciones en que se encuentra el pH del suelo son determinantes para la solubilizaci&oacute;n del fosfato; cuando los suelos presentan pH muy &aacute;cidos, la solubilidad del aluminio y el hierro es elevada, y estos elementos se precipitan con el f&oacute;sforo en forma de compuestos insolubles, no aprovechables para las plantas; a su vez, con un pH alcalino tambi&eacute;n es limitada la disponibilidad del f&oacute;sforo por la formaci&oacute;n de fosfatos de calcio (apatitas) insolubles. A valores de pH cercanos a la neutralidad se presume una din&aacute;mica alta de los fosfatos de caldo apat&iacute;tico y no-apat&iacute;tico, que se solubilizan con mayor facilidad &#91;14&#93;; tambi&eacute;n los microorganismos realizan la mayor mineralizaci&oacute;n del fosforo org&aacute;nico &#91;14&#93;.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Bacterias aisladas</b></p>      <p>Se obtuvieron un total de 61 bacterias con capacidad solubilizadora de fosfato. (Figura 1)</p>      <p>    <center><a name="g_01"></a><img src="img/revistas/bsaa/v9n2/v9n2a13g01.jpg"></a></center></p>      <p>Las bacterias que solubilizan activamente el f&oacute;sforo representan un 10&#37; de la poblaci&oacute;n microbiana del suelo. Se trata fundamentalmente de microorganismos como <i>Bacillus, Micrococcus, Mycobacterium, Pseudomonas</i> y algunos hongos &#91;6&#93;. Mediante el uso de la coloraci&oacute;n de Gram, se logr&oacute; evidenciar que la mayor&iacute;a de las bacterias aisladas correspond&iacute;an a bacilos Gram negativos (93&#37;); este dato concuerda con estudios realizados por otros autores &#91;15&#93;; de manera similar &#91;16&#93; en suelos amaz&oacute;nicos se reportan bacterias como <i>Pseudomonas</i> spp, <i>P. cepacea, P. gladioli, Xanthomonas</i> spp, <i>X. maltophilia, Enterobacter agglomerans</i>, todas estas bacilos Gram negativos.</p>      <p>En la investigaci&oacute;n tambi&eacute;n se encontraron bacilos Gram positivos (5&#37;) y cocos Gram positivos (2&#37;).</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n cualitativa de la solubilizaci&oacute;n de fosfato</b></p>      <p>Los resultados tras la medici&oacute;n de los &iacute;ndices de solubilizaci&oacute;n (IS), arrojaron valores desde 1.5 hasta 4.2 mm. Los halos de solubilizaci&oacute;n fueron medidos al tercer y s&eacute;ptimo d&iacute;a respectivamente. Se observ&oacute; que para algunas cepas este intervalo de tiempo era de gran provecho pues el halo total aumentaba de tama&ntilde;o y el tama&ntilde;o de la colonia se conservaba, obteni&eacute;ndose de esta manera buenos &iacute;ndices de solubilizaci&oacute;n. Caso contrario ocurr&iacute;a con algunas cepas que se deten&iacute;an en la formaci&oacute;n del halo total y en algunos casos aumentaba el tama&ntilde;o de la colonia obteni&eacute;ndose entonces &iacute;ndices de solubilizaci&oacute;n muy bajos. Se escogieron las cepas con los mayores IS (20 bacterias) comprendidos entre 3.0 y 4.2 mm (tabla 1).</p>      <p>    <center><a name="t_01"></a><img src="img/revistas/bsaa/v9n2/v9n2a13t01.jpg"></a></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se identificaron las bacterias de mayor IS como <i>Burkholderia cepacia, Pantoea</i> sp, <i>Pseudomona putida, Pseudomona luteola, Aeromona hydrophilia, Enterobacter Sakasaki</i> y <i>Enterobacter cloacae</i>. Algunas de estas bacterias fueron identificadas y concuerdan con las obtenidas por otros autores &#91;17,18,20&#93;, como es el caso de <i>Burkholderia cepacia</i> y <i>Aeromonas hidrophyla</i>.</p>      <p><b>Ensayo preliminar en plantas de r&aacute;bano</b></p>      <p>La bacteria utilizada para el ensayo fue <i>Burkholdelia cepacia</i>. El r&aacute;bano (<i>Raphanus sativus</i>) fue empleado como planta modelo porque presenta un crecimiento r&aacute;pido, es gen&eacute;ticamente homog&eacute;neo, produce cosechas en un tiempo corto y realiza una gran absorci&oacute;n de f&oacute;sforo del suelo &#91;19&#93;.</p>      <p>Transcurridos 8 d&iacute;as despu&eacute;s de las siembra de las semillas de r&aacute;bano (<i>Raphanus sativus</i>), se observ&oacute; crecimiento en todos los tratamientos y se realiz&oacute; entonces la medici&oacute;n de los par&aacute;metros biom&eacute;tricos establecidos para este ensayo. La Longitud de la planta (cm) y la Longitud de la ra&iacute;z, denotaron valores m&aacute;s altos para los tratamientos T2 y T4, sin embargo no se observaron diferencias estad&iacute;sticamente significativas. Para el caso del Peso fresco (mg), se evidenciaron mejores resultados en las plantas de T4 y T2, estad&iacute;sticamente significativos, seguidos por valores relativamente semejantes en T2 y T1. (Ver Figura 2)</p>      <p>    <center><a name="g_02"></a><img src="img/revistas/bsaa/v9n2/v9n2a13g02.jpg"></a></center></p>      <p>Los resultados preliminares de este ensayo evidencian el comportamiento inicial de las plantas de r&aacute;bano frente a los diferentes tratamientos utilizando la bacteria solubilizadora de fosfato m&aacute;s representativa; pese a que no se cont&oacute; con un tiempo adecuado para realizar un estudio m&aacute;s completo debido a las condiciones climatol&oacute;gicas durante el ensayo, que se presentaron con lluvias fuertes y repetitivas, los resultados demuestran el efecto ben&eacute;fico de la bacteria solubilizadora de fosfato.</p>      <p>Los resultados de esta investigaci&oacute;n contribuyen al conocimiento de microorganismos aut&oacute;ctonos con potencial en la solubilizaci&oacute;n de fosfatos, que a futuro pueden ser evaluados y utilizados como biofertillzante, para mejorar la productividad de los cultivos, acorde con las necesidades del sector agr&iacute;cola de C&oacute;rdoba; sustituyendo &oacute; minimizando la utilizaci&oacute;n de productos qu&iacute;micos, minimizando los costos y contribuyendo a mejorar la fertilidad del suelo.</p>     <br>      <p><b><font size="3">CONCLUSIONES</font></b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se comprob&oacute; el efecto biofertilizante de la bacteria nativa <i>Burkholdelia cepacia</i>, solubilizadora de fosfato, sobre el crecimiento de plantas de r&aacute;bano.</p>      <p>El conocimiento de bacterias nativas eficientes en la solubilizaci&oacute;n de fosfatos representa un potencial para mejorar la productividad en los cultivos en la regi&oacute;n de C&oacute;rdoba, permitiendo un mayor beneficio para los agricultores.</p> <hr>    <br>      <p><b><font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b></p>      <p>A la Universidad de C&oacute;rdoba por financiar el presente proyecto de investigaci&oacute;n.</p>     <br>      <p><b><font size="3">REFERENCIAS</font></b></p>      <!-- ref --><p>&#91;1&#93; NAVARRO, S. and NAVARRO, G. Qu&iacute;mica Agr&iacute;cola, Editorial Ediciones Mundi-prensa. Madrid Espa&ntilde;a, p 232-250. 2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S1692-3561201100020001300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;2&#93; HAMEEDA, B., HARINI, G., RUPELA, 0., WANI, P. and REDDY, G. Growth promotion of maize by phosphate - solubilizing bacteria isolated from compost and macrofauna. Microbial Research., 53, 65-71. 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S1692-3561201100020001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;3&#93; BEGONIA, M., BEGONIA, G., MILLER, G., GILLIARD, D. and YOUNG, C. Phosphatase Activity and Populations of Microorganisms from Cadmium and Lead Contaminated Soil. Bull. Environ. Contam. Toxicol., 73,1025-1032. 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S1692-3561201100020001300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;4&#93; RASHID, M., KHALIL, S., AYUB, N., ALAM, S. and LATIF, F. Organic Adds Production and Phosphate Solubilization by phosphate solubilizing microorganisms (PSM) under <i>in vitro</i> Conditions. Pakistan Journal of Biological Sciences., 7(2), 187-196. 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S1692-3561201100020001300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;5&#93; HALDER, A.K. and CHAKRABARTTY, P.K. Solubilization of inorganic phosphates by <i>Rhizobium</i>. Folia Microbiol., 38,325-330.1993.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S1692-3561201100020001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;6&#93; COYNE, M. Microbiolog&iacute;a del Suelo: Un enfoque exploratorio. Ed. Paraninfo. Cap&iacute;tulo 16. 2000.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S1692-3561201100020001300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;7&#93; OT&Aacute;LORA J., PATI&Ntilde;O, L., MART&Iacute;NEZ, M. y PEDROZA, A. Estandarizaci&oacute;n de una t&eacute;cnica cualitativa de producci&oacute;n de fosfatasas producidas a trav&eacute;s de microorganismos solubilizadores de fosfato. Tesis Microbiolog&iacute;a Industrial. Pontificia Universidad Javeriana. Bogot&aacute;, p 21-30. 2003.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S1692-3561201100020001300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;8&#93; NAUTIYAI, C.S. An efficient microbiological growth medium for screening phosphate solubilizing microorganisms. FEMS Microbiol. Lett, 170, 265-270. 1999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S1692-3561201100020001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;9&#93; KUMAR, V. and NARULA, N. Solubilization of organic phosphates and growth emergence of wheat as affected by <i>Azotobacter chroococum</i> mutans. Boil. Fertile. Soils., 28, 301-305.1999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S1692-3561201100020001300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;10&#93; BUCHANAN, R.E. and GIBBONNS, N.E. Bergey's Manual of Determinative Bacteriology, 9th de Baltimore: Williams and Wilkins Company, p 135-136. 1994.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S1692-3561201100020001300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;11&#93; DEGIOVANNI, V., G&Oacute;MEZ, J. y SIERRA, J. An&aacute;lisis de crecimiento y etapas de desarrollo de tres variedades de arroz (<i>Oryza sativa</i> L.) en Monter&iacute;a, C&oacute;rdoba. Temas Agrarios. 9(1). Enero - Junio, p 21-29. 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S1692-3561201100020001300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;12&#93; HERN&Aacute;NDEZ, A. Obtenci&oacute;n de un biopreparado a partir de rizobacteria asociadas al cultivo del ma&iacute;z (<i>Zea Mays</i> L). Tesis de Doctorado en Ciencias Biol&oacute;gicas. Universidad de La Habana HAMEEDA, p 45-67. 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S1692-3561201100020001300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;13&#93; RAM&Iacute;REZ P.R. y P&Eacute;REZ A.M. Evaluaci&oacute;n del potencial de los bios&oacute;lidos procedentes del tratamiento de aguas residuales para uso agr&iacute;cola y su efecto sobre el cultivo de r&aacute;bano rojo (<i>Raphanus sativus</i> L). Rev. Fac. Nal. Agr. Medell&iacute;n. 59 (2), p 3543-3556. 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S1692-3561201100020001300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;14&#93; CLAVIJO, J. et al. Fertilidad de los Suelos, Diagn&oacute;stico y Control. Sociedad Colombiana de la Ciencia del Suelo. Editorial Guadalupe LTDA. 2ed Bogot&aacute;, p 32. 2001.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S1692-3561201100020001300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;15&#93; BOBADILLA, C. y RINC&Oacute;N, S. Aislamiento y producci&oacute;n de bacterias fosfato solubilizadoras partir de compost obtenido de residuos de la plaza. Tesis Microbiolog&iacute;a Industrial. Pontificia Universidad Javeriana, p 10-23. 2008.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S1692-3561201100020001300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;16&#93; USECHE, Y., VALENCIA, H. y P&Eacute;REZ, H. Caracterizaci&oacute;n de bacterias y hongos solubilizadores de fosfato bajo tres usos de suelo en el sur del trapecio Amaz&oacute;nico. Acta Biol&oacute;gica Colombiana, 9 (2), 42-45. 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S1692-3561201100020001300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;17&#93; RIVILLAS, C.A. Microorganismos del suelo de la zona cafetera colombiana, su diversidad y valor como controladores biol&oacute;gicos. Foro Internacional Caf&eacute; y Biodiversidad. Chinchin&aacute; (Colombia), 2000.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S1692-3561201100020001300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;18&#93; LOPEZ, M. et al. Evaluaci&oacute;n de un medio de cultivo no comercial para la producci&oacute;n de un biofertilizante empleado en un cultivo de flores. Tesis Microbiolog&iacute;a Industrial. Pontificia Universidad Javeriana, p 70-83. 2006.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S1692-3561201100020001300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;19&#93; HEWITSON, J. and PRICE, R. Plant mineral nutrition in the classroom. School Science Review, 76 (274), 45-55. 1994.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S1692-3561201100020001300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;20&#93; RDRESH D.L., SHIVAPRAKASH, M.K. and PRASAD, R.D. Effect of combined application of Rhizobium, phosphate solubilizing bacterium and <i>Trichoderma</i> spp. on growth, nutrient uptake and yield of chickpea (<i>Cicer aritenium</i> L.). Applied Soil Ecology. 28,139-146. 2004.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S1692-3561201100020001300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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