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<journal-title><![CDATA[Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Taller Editorial Universidad del Cauca]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[SIMBIOSIS MICORRIZICA ARBUSCULAR Y ACUMULACIÓN DE ALUMINIO EN Brachiaria decumbens Y Manihot esculenta]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[ARBUSCULAR MYCORRHIZAL SYMBIOSIS AND ACUMULATION OF ALUMINUM Brachiaria decumbens AND Manihot esculenta]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[SIMBIOSE MICORRIZICA ARBUSCULAR E ACUMULAÇÃO DE ALUMÍNIO EM Brachiaria decumbens E Manihot esculenta]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Oil palm (Elaeis guineensis Jacq) soils from-Santander Puerto Wilches-Colombia, have low fertility, high aluminum saturation and low density of mycorrhizal fungal spores. Behavior mycorrhizal symbiosis was evaluated using native soils with mycorrhizae (MA +) and sterile soils without mycorrhizae (MA -) using Brachiaria decumbens and Manihot esculenta, both plants have high mycotrophy and ion binding capacity of aluminum. Variables were spore density, percentage of mycorrhizal colonization, biomass and root length, concentration of aluminum at leaf and root. Was performed (ANOVA) with a two-way general linear model. There were mycorrhizal colonization rates exceeding 70% in B. decumbens in soils with concentrations of 0,6 and 1,4 meq/100 g of aluminum. M. esculenta established mycorrhization at 50% in all four soils. Spores were increased up to 200% in the two hosts plants. Aluminum concentrations were higher in mycorrhizal roots, while leaf-level values were lower.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Solos dedicados à monocultura de Elaeis guineensis Jacq em Puerto Wilches-Santander apresentam baixa fertilidade, alta saturação de alumínio e baixa densidade de esporos de fungos micorrízicos. Avaliaram-se o comportamento da simbiose micorrízica usando solos nativos com fungos micorrízicos (MA+) e sem fungos micorrízicos (MA-), na Brachiaria decumbens e Manihot esculenta, plantas com alto grau de micotrofia e capacidade de retenção de íons de alumínio. Considerou-se as variáveis: densidade de esporos, porcentagem de colonização micorrízica, biomassa seca, longo da raiz e concentração de alumínio nas folhas e raízes. Realizou-se uma (ANOVA) de duas vias com o modelo linear geral. Observou-se porcentagens de colonização micorrízica acima de 70% na B. decumbens em solos com concentrações de 0,6 e 1,4 meq/100g de alumínio, na M. esculenta apresentam 50% de simbiose micorrízica em todos os tipos de solo. Os esporos nativos foram aumentados até 200% nas duas plantas. As concentrações de alumínio ao nível de raiz foram maiores nas plantas micorrizadas, enquanto que ao nível de folha os valores foram menores. Estes resultados indicam que os hospedeiros usados foram altamente micótrofos e podem ser recomendados para a propagação de fungos micorrízicos em solos de baixa fertilidade, embora a simbiose varie de acordo com a saturação de alumínio presente nos solos estudados.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Plantas hiperacumuladoras de aluminio]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Incremento de propágulos micorrizicos]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Infección micorrizal en hospederos]]></kwd>
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<kwd lng="pt"><![CDATA[Aumento propágulos micorrízicos]]></kwd>
<kwd lng="pt"><![CDATA[monocultivo palmeira de óleo africana]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="2">     <center>      <p><b><font size="4">SIMBIOSIS MICORRIZICA ARBUSCULAR Y ACUMULACI&Oacute;N DE  ALUMINIO EN <i>Brachiaria decumbens</i> Y <i>Manihot esculenta</i></font></b></p>      <p><b><font size="3">ARBUSCULAR MYCORRHIZAL SYMBIOSIS AND ACUMULATION OF ALUMINUM <i>Brachiaria decumbens</i> AND <i>Manihot esculenta</i></font></b></p>      <p><b><font size="3">SIMBIOSE MICORRIZICA ARBUSCULAR  E ACUMULA&Ccedil;&Atilde;O DE ALUM&Iacute;NIO EM <i>Brachiaria decumbens</i> E <i>Manihot esculenta</i></font></b></p>      <p>BEATRIZ ELENA GUERRA  S.<a name="1"></a><a href="#1a"><sup>1</sup></a>, MARTHA ROCIO CHAC&Oacute;N V.<a name="2"></a><a href="#2a"><sup>2</sup></a></p> </center>      <p><sup><a name="1a"></a><a href="#1">1</a></sup> Bacteri&oacute;loga. MSc. PhD(c). Profesora Titular Programa de Microbiolog&iacute;a Industrial. Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a Agroambiental. Facultad de Ciencias Exactas F&iacute;sicas y Naturales. Universidad de Santander.Bucaramanga.Santander-Colombia.</p>      <p><sup><a name="2a"></a><a href="#2">2</a></sup> Bi&oacute;loga. MSc. Profesora Titular Facultad de Ciencias Exactas F&iacute;sicas y Naturales. Universidad de Santander. Bucaramanga. Santander-Colombia.</p>      <p><b>Correspondencia</b>: <a href="mailto:bguerra@udes.edu.co">bguerra@udes.edu.co</a></p>      <p><b>Recibido para evaluaci&oacute;n</b>: 16/02/2012. <b>Aprobado para publicaci&oacute;n</b>: 17/06/2012</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br><hr>      <p><b><font size="3">RESUMEN</font></b></p>     <br>      <p><i>Suelos dedicados al  monocultivo de Elaeis guineensis Jacq en Puerto Wilches-Santander-Colombia, presentan baja fertilidad, altas saturaciones de aluminio y baja densidad de esporas de hongos micorrizicos. Se evalu&oacute; el comportamiento de la simbiosis micorrizica utilizando suelos nativos con micorrizas (MA&#43;) y sin micorrizas (MA-), en Brachiaria decumbens y Manihot esculenta, quienes poseen alta micotrofia y capacidad  de retenci&oacute;n del i&oacute;n aluminio. Se consideraron  las  variables densidad  de  esporas, porcentaje de colonizaci&oacute;n micorrizica, biomasa seca y longitud radicular, concentraci&oacute;n de aluminio foliar y radicular.  Se realiz&oacute; una (ANOVA) de dos v&iacute;as con un modelo lineal general. Se observaron porcentajes de colonizaci&oacute;n micorrizica superiores al 70&#37; en B. decumbens en suelos con concentraciones de 0,6 y 1,4 meq/100 g de Aluminio. M. esculenta presento 50 &#37; de simbiosis micorrizica, en todos los tipos de suelo. Se incrementaron las esporas nativas de palma aceitera hasta un 200&#37; en las dos plantas huesp&eacute;d. Las concentraciones de aluminio a nivel radicular fueron mayores en plantas micorrizadas, mientras que a nivel foliar los valores fueron m&aacute;s bajos.</i></p>      <p><b>PALABRAS CLAVE</b>: Plantas hiperacumuladoras de aluminio, Incremento de prop&aacute;gulos micorrizicos, Infecci&oacute;n micorrizal en hospederos, Monocultivo de palma.</p>     <br>      <p><b><font size="3">ABSTRACT</font></b></p>      <p><i>Oil palm (Elaeis guineensis Jacq) soils from-Santander Puerto Wilches-Colombia, have low fertility, high aluminum saturation and low density of mycorrhizal fungal spores. Behavior mycorrhizal symbiosis was evaluated using native soils with mycorrhizae (MA &#43;) and sterile soils without mycorrhizae (MA -) using Brachiaria decumbens and Manihot esculenta, both plants have high mycotrophy and ion binding capacity of aluminum. Variables were spore density, percentage of mycorrhizal colonization, biomass and root length, concentration of aluminum at leaf and root. Was performed (ANOVA) with a two-way general linear model. There were mycorrhizal colonization rates exceeding 70&#37; in B. decumbens in soils with concentrations of 0,6 and 1,4 meq/100 g of aluminum.  M. esculenta established mycorrhization at 50&#37; in all four soils. Spores were increased up to 200&#37; in the two hosts plants. Aluminum concentrations were higher in mycorrhizal roots, while leaf-level values were lower. </i></p>      <p><b>KEYWORDS</b>:  Aluminum hyperaccuumulators plants, Increased mycorrhizal propagles, Oil Palm monoculture.</p>     <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">RESUMO</font></b></p>      <p><i>Solos dedicados &agrave; monocultura de Elaeis guineensis Jacq em Puerto Wilches-Santander apresentam baixa fertilidade, alta satura&ccedil;&atilde;o de alum&iacute;nio e baixa densidade de esporos de fungos micorr&iacute;zicos. Avaliaram-se o comportamento da simbiose micorr&iacute;zica usando solos nativos com fungos micorr&iacute;zicos (MA&#43;) e sem fungos micorr&iacute;zicos (MA-), na Brachiaria decumbens e Manihot esculenta, plantas com alto grau de micotrofia e capacidade de reten&ccedil;&atilde;o de &iacute;ons de alum&iacute;nio. Considerou-se as vari&aacute;veis: densidade de esporos, porcentagem de coloniza&ccedil;&atilde;o micorr&iacute;zica, biomassa seca, longo da raiz e concentra&ccedil;&atilde;o de  alum&iacute;nio nas folhas e ra&iacute;zes. Realizou-se uma (ANOVA) de duas vias com o modelo linear geral.  Observou-se porcentagens de coloniza&ccedil;&atilde;o micorr&iacute;zica acima de 70&#37; na B. decumbens em solos com concentra&ccedil;&otilde;es de 0,6 e 1,4 meq/100g de alum&iacute;nio, na M. esculenta apresentam 50&#37; de simbiose micorr&iacute;zica em todos os tipos de solo. Os esporos nativos foram aumentados at&eacute; 200&#37; nas duas plantas. As concentra&ccedil;&otilde;es de alum&iacute;nio ao n&iacute;vel de raiz foram maiores nas plantas micorrizadas, enquanto que ao n&iacute;vel de folha os valores foram menores.  Estes resultados indicam que os hospedeiros usados foram altamente mic&oacute;trofos e podem ser recomendados para a propaga&ccedil;&atilde;o de fungos micorr&iacute;zicos em solos de baixa fertilidade, embora a simbiose varie de acordo com a satura&ccedil;&atilde;o de alum&iacute;nio presente nos solos estudados. </i></p>      <p><b>PALAVRAS- CHAVE</b>: Plantas hiperacumuladoras  de  alum&iacute;nio, Aumento prop&aacute;gulos micorr&iacute;zicos,  monocultivo palmeira de &oacute;leo africana.</p>     <br>       <p><b><font size="3">INTRODUCCION</font></b></p>     <br>      <p>Los suelos de la regi&oacute;n de Puerto Wilches, Santander Colombia, son suelos destinados en un alto porcentaje al cultivo de palma aceitera (<i>Elaeis guineensis Jacq</i>), se caracterizan por ser &aacute;cidos, con alto contenido de aluminio y de baja fertilidad.</p>      <p>De Igual manera en oxixoles, ultisoles y a&uacute;n en inceptisoles &oacute;xicos, se presenta un alto contenido de aluminio(Al) en la soluci&oacute;n del suelo, cuando su pH est&aacute; por debajo de 5,3 y generalmente su Capacidad de Intercambio Cati&oacute;nico (CIC) est&aacute; saturada en un alto porcentaje por Al intercambiable &#91;1&#93;. </p>      <p>Se ha  se&ntilde;alado  que cuando el pH en el suelo disminuye por debajo de 5,0, el Al es parcialmente solubilizado a Al&#43;3; condici&oacute;n que lo vuelve m&aacute;s fitot&oacute;xico, y la concentraci&oacute;n de &eacute;ste elemento muestra un marcado incremento con la disminuci&oacute;n del pH &#91;2&#93;. La presencia del i&oacute;n aluminio en los suelos &aacute;cidos, es uno de los principales factores  que limitan la productividad y el crecimiento de las plantas, pues afecta el tama&ntilde;o de la ra&iacute;z y provoca un cambio profundo en toda la arquitectura de la misma &#91;3&#93;. Debido al establecimiento de complejos que forma el aluminio y el f&oacute;sforo (Al-Pi), se afecta seriamente la absorci&oacute;n no solo del fosforo sino tambi&eacute;n el ingreso de otros minerales como Calcio, Magnesio, Cobre y Zinc a las plantas. El banco de an&aacute;lisis de suelos de Cenipalma-Colombia ha mostrado que en la Zona Oriental m&aacute;s del 40&#37; de las muestras de suelo analizadas registran saturaci&oacute;n de Al mayor del 50&#37; y en la Zona Central, correspondiente a la regi&oacute;n de Puerto Wilches, el 30&#37; de las muestras presentan de igual forma los mismos niveles de saturaci&oacute;n &#91;4&#93;. Sin embargo especies vegetales hiperacumuladoras soportan altas concentraciones de aluminio y son capaces de desarrollarse y crecer en suelos &aacute;cidos debido a diferentes mecanismos tales como la capacidad que tienen de ligar el Al intracelularmente, haci&eacute;ndolo menos t&oacute;xico. </p>      <p>Se han reportado algunas sustancias que act&uacute;an como quelantes para la detoxificaci&oacute;n del aluminio entre ellas se destacan el citrato, oxalacetato y catequina &#91;5,6&#93;. En general los mecanismos que est&aacute;n implicados en la capacidad que tienen algunas plantas para tolerar aluminio son diversos tales como incremento del pH en la zona pr&oacute;xima a las ra&iacute;ces, modificaciones en la morfolog&iacute;a radicular, reducci&oacute;n del paso del aluminio desde las ra&iacute;ces a los brotes, acumulaci&oacute;n de aluminio en los brotes sin que se vea afectado el metabolismo de la planta y mecanismos para impedir la inhibici&oacute;n de la asimilaci&oacute;n de nutrientes (Ca, Mg, P). Otros autores  consideran que los mecanismos  de las plantas para tolerar niveles de aluminio del suelo pueden ser clasificados como externos, cuando la ra&iacute;z es capaz de mantener el aluminio fuera de ella o poseer mecanismos internos cuando la planta es capaz de tolerar la presencia de aluminio en su interior &#91;7,8&#93;. <i>Brachiaria decumbens</i> (Stapf) y <i>Manihot esculenta</i> Crantz, se han reportado como especies vegetales que tienen la capacidad para hiperacumular metales  &#91;9,10&#93;, los mecanismos espec&iacute;ficos que utilizan para la acumulaci&oacute;n de metales no han sido muy estudiados. Estas especies vegetales al igual que la gran mayor&iacute;a de cultivos tropicales y subtropicales de inter&eacute;s agron&oacute;mico realizan simbiosis con hongos micorrizicos arbusculares &#91;11&#93; que favorecen la adquisici&oacute;n de nutrientes presentes en el suelo de una forma m&aacute;s eficiente , como el f&oacute;sforo, nitr&oacute;geno, calcio, potasio, magnesio, azufre, cobre, molibdeno, hierro y manganeso, debido a que el hongo funciona como una extensi&oacute;n del sistema radical de la planta, facilitando a trav&eacute;s de su red de hifas una mayor absorci&oacute;n de &eacute;stos en el suelo &#91;12&#93;, de otro lado el  microsimbionte toma carbohidratos almacenados en las c&eacute;lulas mesod&eacute;rmicas y de los exudados radicales de las plantas. Ciertos factores del suelo podr&iacute;an no ser adecuados para el establecimiento de la simbiosis micorrizica tales como: altos niveles de  aluminio, inadecuado contenido de nutrientes del suelo  y pH no favorable. Sin embargo varios estudios han demostrado que los hongos micorrizicos tienen la capacidad de adaptarse a tales condiciones y ejercen un papel protector a las plantas frente a la toxicidad del aluminio &#91;13,14,15,16,17&#93;. Recientemente se ha demostrado que los hongos micorrizicos arbusculares (HMA), almacenan grandes cantidades de aluminio en sus paredes celulares y n&uacute;cleos &#91;18&#93;. <i>M. esculenta</i> posee elevada susceptibilidad a la  colonizaci&oacute;n micorrizica con esporas procedentes de diferentes cultivos &#91;19&#93;, <i>B. decumbens</i> es una especie vegetal con una dependencia micorrizica de aproximadamente 80&#37; &#91;20&#93;, caracter&iacute;sticas particulares  que permitieron seleccionar estas especies vegetales con el fin de propagar bajo condiciones de invernadero hongos micorrizicos  nativos de cuatro suelos &aacute;cidos, con diferentes contenidos de aluminio  y evaluar el comportamiento de la simbiosis asi como la capacidad de retenci&oacute;n del ion aluminio .</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <p><b><font size="3">METODO</font></b></p>     <br>      <p><b>Zona de  muestreo</b>. Se tomaron muestras de suelo rizosf&eacute;rico de cultivos establecidos de palma aceitera (<i>Elaeis guineensis</i> Jacq) de la regi&oacute;n del municipio de Puerto Wilches (Santander), ubicado sobre la margen derecha del rio Magdalena 07&deg; 20' 88'' N y 73&deg; 54' 22'' W a una altura de 80 msnm, con precipitaci&oacute;n acumulada anual de 2600 mm, temperaturas promedia m&iacute;nima de 27,5&deg;C y m&aacute;xima de 39&deg;C y un brillo solar acumulado de 2400 hr sol/a&ntilde;o. Se colectaron cuatro tipos de suelos de diferentes  cultivos de palma aceitera de tres a cinco a&ntilde;os de edad, las muestras se tomaron  al azar durante dos periodos del a&ntilde;o que coincidieron con &eacute;poca seca y de lluvias. Para cada tipo de suelo se muestrearon 15 plantas, tomando tres submuestras por planta, utilizando un tubo de PVC de 3,8 cm de di&aacute;metro y 25 cm de longitud, a una profundidad entre 0-20 cm, y en el &aacute;rea de crecimiento radical (proyecci&oacute;n de la copa sobre el suelo) y en la parte media tomada desde el  tronco de la planta  hasta una distancia de 30 cm. Las submuestras de cada suelo se mezclaron y se obtuvieron muestras compuestas de 5kg aproximadamente, que fueron utilizadas para los estudios f&iacute;sico-qu&iacute;micos y estudio de  HMA nativos. La investigaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo en las instalaciones del laboratorio de tejidos vegetales e invernadero de experimentaci&oacute;n del grupo de investigaci&oacute;n en Biotecnolog&iacute;a agroambiental Microbiota de la Universidad de Santander.</p>      <p><b>An&aacute;lisis Fisicoqu&iacute;mico del suelo y determinaci&oacute;n de la densidad de esporas de Hongos micorrizicos arbusculares (HMA)</b>. Para la caracterizaci&oacute;n f&iacute;sico-qu&iacute;mica se tomaron  500 g de cada suelo. El an&aacute;lisis f&iacute;sico de la clase textural se realizo por el m&eacute;todo de Bouyocous, el contenido de Nitr&oacute;geno por el m&eacute;todo de Kjeldalh, la determinaci&oacute;n de aluminio intercambiable  mediante  an&aacute;lisis volum&eacute;trico utilizando  KCl 1N, seg&uacute;n NTC 5263  y  espectrofotometr&iacute;a de absorci&oacute;n at&oacute;mica, (Espectrofot&oacute;metro, AA, Unicom 969), los dem&aacute;s an&aacute;lisis fisicoqu&iacute;micos se realizaron en el laboratorio de suelos y consultas industriales de la Universidad Industrial de Santander. La densidad de esporas se realiz&oacute; para cada tipo de suelo  por triplicado, al inicio del experimento y durante los tres periodos de observaci&oacute;n: treinta, sesenta y noventa d&iacute;as, mediante el m&eacute;todo  de tamizaje h&uacute;medo y centrifugaci&oacute;n en soluci&oacute;n saturada de az&uacute;car &#91;21&#93;. El n&uacute;mero  de esporas para cada muestra de suelo,  se determin&oacute; por triplicado en 100g de suelo seco, bajo un microscopio estereosc&oacute;pico, marca Nikon modelo SMZ445. El criterio  para  cuantificar la densidad de esporas nativas de HMA de cada suelo se realiz&oacute; as&iacute;, bajos: < 1 espora / g de suelo seco, medios: 1-10 esporas/g de suelo seco y altos > 10 esporas/g de suelo seco &#91;22&#93;.</p>      <p><b>Caracterizaci&oacute;n de morfotipos de esporas de HMA</b>. La identificaci&oacute;n de las esporas hasta g&eacute;nero se realiz&oacute; al final del experimento donde se pudo evidenciar la mayor&iacute;a de esporas en diferentes estadios, en un microscopio &oacute;ptico Nikon 80 i (400 a 1000x,mediante descripciones consultadas en &#91;23&#93; y &#91;24&#93;.  Los par&aacute;metros  para la identificaci&oacute;n de las esporas fueron: forma, color, n&uacute;mero de paredes, tama&ntilde;o, y conexi&oacute;n hifal de la espora en preparaciones permanentes con  polivinil-lactoglicerol (PVLG) y la mezcla del reactivo de Melzer en PVLG 1:1. Las esporas, l&aacute;minas y fotograf&iacute;as correspondientes se registraron  en la colecci&oacute;n de hongos micorrizicos arbusculares de la regi&oacute;n del Magdalena medio Santandereano que se lleva a cabo en el Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a  Agroambiental de la Universidad de Santander (LIIBAAM_UDES), Colombia. </p>      <p><b>Plantas hospedantes y an&aacute;lisis de la simbiosis</b>. Semillas pregerminadas de B.decumbens y estacas de <i>M. esculenta</i> de aproximadamente 20 cm de longitud, se sembraron directamente en los cuatro sustratos de suelos nativos mas arena (2:1) en bolsas de capacidad 5 kg, paralelamente se mont&oacute; un ensayo similar, utilizando la mezcla de suelo y arena totalmente est&eacute;ril que sirvi&oacute; como el control de los tratamientos sin micorrizar. Todos los tratamientos se regaron peri&oacute;dicamente con agua destilada para mantenerlos cerca del 100 &#37; de capacidad de campo. La fertilizaci&oacute;n se realiz&oacute; solo cuando se observaron  deficiencias nutricionales en las plantas con una soluci&oacute;n m&iacute;nima de nutrientes, compuesta por: NO<sub>3</sub> (1,0 mM), NH<sub>4</sub> (0,2mM), K (0,60 mM), Ca (0,50 mM), Mg (0,20 mM), SO<sub>4</sub> (0,15 mM), H<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> (15 mM), Fe (20 mM), B (20 mM), Mn (4,5 mM), Zn (0,35mM), Cu (0,16 mM), y Mo (0,06 mM). Cada vez que se adiciono  la soluci&oacute;n nutritiva, se ajust&oacute; previamente el PH con soluci&oacute;n de HCL 0,1 N y la concentraci&oacute;n de Al, con  Al2 (SO4)3.18 H<sub>2</sub>O, de acuerdo a las caracter&iacute;sticas  particulares de cada suelo (cuadro 1), se llev&oacute; a cabo un monitoreo regular del pH de cada suelo ensayado. La acumulaci&oacute;n de aluminio se midi&oacute; en ra&iacute;ces y hojas al final del experimento, para las pl&aacute;ntulas micorrizadas y sin micorrizar utilizando la t&eacute;cnica de absorci&oacute;n at&oacute;mica &#91;25&#93;.  El porcentaje de colonizaci&oacute;n de HMA, se determin&oacute; por triplicado para cada muestra de  ra&iacute;ces, utilizando la coloraci&oacute;n de azul tripano &#91;26&#93;, tanto para B.decumbens como M. esculenta  y se hall&oacute; el porcentaje de colonizaci&oacute;n  micorrizica  por observaci&oacute;n directa al microscopio de luz en aumento de 40X.Al final del experimento se midi&oacute; la longitud radicular en tejidos frescos de las pl&aacute;ntulas micorrizadas comparadas con las que no fueron micorrizadas, el tama&ntilde;o se expres&oacute; en cent&iacute;metros. La biomasa  seca de ra&iacute;ces y hojas se determin&oacute; despu&eacute;s de un secado en horno a 60&deg;C por 48 h y se expres&oacute; en gramos. </p>      <p>    <center><a name="t_01"></a><a href="img/revistas/bsaa/v10n2/v10n2a11t01.jpg", target="_blank">Cuadro 1</a></center></p>      <p><b>Dise&ntilde;o del experimento y an&aacute;lisis estad&iacute;stico</b>. El experimento se organiz&oacute; en bloques al azar y un dise&ntilde;o factorial, 10 unidades experimentales  y tres replicas por tratamiento. Los factores fueron  dos plantas hospederas (<i>B.decumbens</i>, <i>M. esculenta</i>); dos  niveles de micorrizaci&oacute;n: suelo con micorrizas nativas: (MA&#43;), suelo nativo sin micorrizas (MA-), esterilizado por el m&eacute;todo fraccionado en autoclave  a 120 0C durante una hora por 2 d&iacute;as consecutivos, cuatro concentraciones de aluminio en la soluci&oacute;n del suelo y tres observaciones . Las variables medidas fueron densidad de esporas, porcentaje de colonizaci&oacute;n micorrizica, biomasa seca de la ra&iacute;z, longitud radicular, concentraci&oacute;n de aluminio detectado en hojas y ra&iacute;z.  Los datos fueron descritos como media ± desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (DS).  Posteriormente, para analizar los efectos de los factores se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) de  dos v&iacute;as tipo modelo lineal general  (MLG), verificando previamente los supuestos de normalidad (prueba de Kolmogorov) y homogeneidad de varianzas (prueba de Levene). Los datos expresados como (&#37;) fueron transformados a la ra&iacute;z del arco-seno. Se utiliz&oacute; la prueba de Tukey para comparar las medias entre los diferentes tratamientos, como prueba a posteriori luego de establecer diferencias significativas. El criterio de significancia fue p&lt;0,05. Los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos fueron realizados usando el programa SPSS 13.0.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <p><b><font size="3">RESULTADOS </font></b></p>     <br>      <p><b>An&aacute;lisis Fisicoqu&iacute;mico de suelos</b>. Los an&aacute;lisis f&iacute;sico-qu&iacute;micos de los suelos de la regi&oacute;n de Puerto Wilches, dedicados al monocultivo de palma aceitera y utilizados para este estudio, se muestran en el <a href="#t_01">cuadro 1</a>, indicando en general que son suelos &aacute;cidos  y con niveles  de saturaci&oacute;n medio y alto de aluminio a excepci&oacute;n del suelo uno, donde no se encontraron trazas de aluminio intercambiable. El contenido de nutrientes no fue homog&eacute;neo, como dato com&uacute;n para todos los suelos se resalta el bajo contenido de calcio, de igual forma el contenido de materia org&aacute;nica en general, fue bajo a excepci&oacute;n del suelo tres. El contenido de magnesio present&oacute; niveles altos en los cuatro suelos, en el rango desde 0,33 a 1,04, mientras que el contenido de f&oacute;sforo disponible en estos suelos fue variable: muy bajo para el suelo uno, bajo para el suelo dos, moderado para el suelo tres y alto para el suelo cuatro. </p>      <p>El an&aacute;lisis f&iacute;sico de la clase textural por el m&eacute;todo de Bouyoucos se clasifico en general como Franco arenoso, a excepci&oacute;n del suelo uno que se clasific&oacute; como franco. </p>      <p><b>Densidad de esporas de HMA y caracterizaci&oacute;n de morfotipos</b>. Al inicio del experimento, todos los suelos se tamizaron y se les determin&oacute; la densidad  esporas por triplicado, obteniendo valores de densidades bajos entre 140 y 170 esporas/100 g de suelo (cuadro 2), estas densidades podr&iacute;an estar asociadas a diversos factores, entre ellos las alteraciones que ocasiona el monocultivo en la distribuci&oacute;n y composici&oacute;n de las comunidades microbianas de la micorrizosfera &#91;27&#93;. Se ha se&ntilde;alado que la reducci&oacute;n de la diversidad vegetal del ecosistema, afecta concomitantemente la distribuci&oacute;n y composici&oacute;n de la comunidad de hongos micorr&iacute;zicos arbusculares. Otro factor que podr&iacute;a influenciar la baja densidad de esporas de HMA nativos de los suelos palmeros estar&iacute;a referida a la clase textural franco-arenosa predominante en la regi&oacute;n geogr&aacute;fica de este estudio, esto coincide con otros investigadores&#91;11&#93;, quienes han expresado que los suelos franco-arenosos no favorecen  la simbiosis micorrizica que pueda establecerse  con diversos hospederos, mientras que  suelos arcillosos   incrementan  favorablemente  la simbiosis y la densidad de los hongos micorrizicos. En la fase final del experimento, se identificaron cuatro especies y seis morfotipos de esporas de HMA (cuadro 2).</p>      <p>    <center><a name="t_02"></a><a href="img/revistas/bsaa/v10n2/v10n2a11t02.jpg", target="_blank">Cuadro 2</a></center></p>      <p>La especie de HMA, m&aacute;s abundante  en los cuatro tipos de suelo fue <i>G. rubiforme</i> (<a href="#g_01">Figura 1</a>), las esporas  de esta especie se presentaron de color marr&oacute;n-rojizo brillante y se encontraron en el suelo formando esporocarpos, la forma m&aacute;s predominante de las esporas fue ovoide de 110-180x 190-300 &micro;m, &#91;28&#93;, aunque tambi&eacute;n se encontraron algunas formas globosas de 200-250 &micro;m, con hifas subtendidas amarillo p&aacute;lido a marr&oacute;n brillante rectas y algunas se presentaron curvadas, los esporocarpos que se observaron estaban formados por cuatro a diez esporas ovoides de 50x70 &micro;m de color amarillo p&aacute;lido a marr&oacute;n intenso. Se conoce que el g&eacute;nero Glomus en particular se encuentra con frecuencia en suelos &aacute;cidos y espec&iacute;ficamente en Colombia se reporta &eacute;ste g&eacute;nero micorr&iacute;zico como predominante en suelos, seguido por <i>Acaulospora</i> y <i>Gigaspora</i> en suelos de loma y terraza &#91;29&#93;. El incremento de las esporas de HMA nativas de los suelos dedicados al cultivo de palma se muestra en la <a href="#g_02">Figura 2</a>, en todos los suelos utilizados como sustratoa y las dos plantas que sirvieron como hospedantes.</p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="g_01"></a><img src="img/revistas/bsaa/v10n2/v10n2a11g01.jpg">Figura 1</a></center></p>      <p>    <center><a name="g_02"></a><a href="img/revistas/bsaa/v10n2/v10n2a11g02.jpg", target="_blank">Figura 2</a></center></p>        <p>Se aprecia que en <i>M. esculenta</i> se dio una mejor respuesta en el incremento de esporas en los suelos dos y tres. Contrariamente en  la segunda y &uacute;ltima observaci&oacute;n del experimento hubo en general un descenso en el incremento de esporas de HMA, con relaci&oacute;n a los primeros treinta d&iacute;as, resultados  que podr&iacute;an  estar relacionados  con  alg&uacute;n tipo de  estr&eacute;s fisiol&oacute;gico  por parte  de las plantas  ensayadas. En general  se alcanz&oacute; un incremento en el n&uacute;mero total de esporas de HMA, en m&aacute;s de 200&#37;, en todos los tipos de suelo y en las dos plantas hospederas con relaci&oacute;n a las densidades de esporas encontradas al inicio del experimento  (cuadro 2), estos resultados sugieren que las esporas de los HMA, se adaptan a las condiciones particulares de cada suelo y los resultados  concuerdan  con lo expresado por otros investigadores quienes corroboraron  en sus trabajos  la buena respuesta  a la micorrizaci&oacute;n  de los hospederos cuando son llevados a suelos de baja fertilidad &#91;30,31&#93;.</p>      <p><b>Determinaci&oacute;n  de los porcentajes de colonizaci&oacute;n.</b> Los valores  encontrados  de  la  colonizaci&oacute;n micorr&iacute;zica en las dos plantas hospederas a trav&eacute;s de todo el per&iacute;odo de observaci&oacute;n se aprecian en la figura 3.</p>      <p>    <center><a name="g_03"></a><a href="img/revistas/bsaa/v10n2/v10n2a11g03.jpg", target="_blank">Figura 3</a></center></p>      <p>Las dos especies de plantas utilizadas como plantas hospederas son reconocidas por su alta micotrofia y crecen normalmente en suelos &aacute;cidos de baja fertilidad. Sin embargo la colonizaci&oacute;n micorrizica, se vio disminuida a los 60 d&iacute;as en los dos plantas hospederas siendo m&aacute;s notorio para <i>M. esculenta</i> y alcanzando un descenso del 50&#37; en la colonizaci&oacute;n. Esto podr&iacute;a explicarse de alguna manera por las condiciones del experimento manipulaci&oacute;n de las plantas, las cuales pudieron presentar estr&eacute;s que pudo influir en las poblaciones de HMA y su interacci&oacute;n simbi&oacute;tica con cada una de las plantas hospederas. Sin embargo las muestras de ra&iacute;ces micorrizadas de  B.decumbens, procesadas en el laboratorio a los 90 d&iacute;as, mostraron valores promedios de colonizaci&oacute;n del 70&#37; y 80&#37; (figura 4), en los suelos dos y tres respectivamente, los cuales  corresponden a los suelos que presentaron niveles de f&oacute;sforo  disponible medio con  contenidos de aluminio en el rango de saturaci&oacute;n de 35&#37; a 55&#37;, mientras en <i>M. esculenta</i> se hallaron niveles de colonizaci&oacute;n superiores del 50&#37; en todos los tipos de suelo ensayados. </p>      <p>    <center><a name="g_04"></a><img src="img/revistas/bsaa/v10n2/v10n2a11g04.jpg"></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las diferencias encontradas frente a la micorrizaci&oacute;n de <i>M. esculenta</i> y <i>B. decumbens</i> coinciden con los argumentos emitidos en otros estudios, donde se indican que tanto la micorrizaci&oacute;n, la captaci&oacute;n de nutrientes y la productividad vegetal var&iacute;an en funci&oacute;n del tipo de planta y de los hongos que interaccionan &#91;32,33&#93;.</p>      <p><b>Evaluaci&oacute;n de la biomasa seca y longitud radicular de las plantas hu&eacute;sped.</b> En el cuadro 3, se muestran los valores promedios obtenidos al final del experimento. </p>      <p>    <center><a name="t_03"></a><a href="img/revistas/bsaa/v10n2/v10n2a11t03.jpg", target="_blank">Cuadro 3</a></center></p>      <p>La biomasa seca se expres&oacute; en g &#37; y la longitud radicular en cm, tanto para las plantas micorrizadas y no micorrizadas de <i>B. decumbens</i> y <i>M. esculenta</i>. Los resultados mostraron en general incrementos de estas dos variables en las plantas micorrizadas y especialmente en  los suelos con concentraciones de aluminio de 0,6 y 1,4mEq/100g de suelo, correspondientes a las muestras dos y tres respectivamente. Estos resultados estar&iacute;an demostrando los beneficios que ofrece la simbiosis, en la captaci&oacute;n de nutrientes minerales del suelo, la transferencia de carbono a trav&eacute;s de las hifas extraradicales como lo han expresado otros investigadores &#91;34&#93;. El incremento de biomasa encontrado en plantas expuestas a los prop&aacute;gulos micorrizicos es significativa como se ha reportado en otros trabajos &#91;35,36&#93;, aunque en este trabajo no se midi&oacute; la concentraci&oacute;n de P en los tejidos y &aacute;rea foliar de las plantas, se conoce que el i&oacute;n  Al limita la captaci&oacute;n del P y otros elementos  como el  calcio y el magnesio, lo cual podr&iacute;a  explicar de alguna manera  los bajos valores de biomasa encontrados en las ra&iacute;ces de las plantas  hospedantes que no se  micorrizaron en este experimento. Por el contrario se pudo  apreciar el efecto sobre el incremento de la biomasa, que ejerci&oacute; la presencia de los prop&aacute;gulos micorrizicos en las  dos plantas hospedantes , resultados  que podr&iacute;an estar relacionados a su vez con los cambios e incremento del pH que se suceden en la riz&oacute;sfera , disminuyendo los efecto toxico del i&oacute;n Aluminio en la adquisici&oacute;n y traslocaci&oacute;n suficiente de fosforo, Calcio y Magnesio en las plantas ,como lo han reportado otros investigadores &#91;37&#93;,  Sin embargo no es bien conocido aun el mecanismo por el cual las plantas micorrizadas tienen mejor respuesta en el incremento de la biomasa, con relaci&oacute;n a las plantas no micorrizadas.</p>       <p><b>Evaluaci&oacute;n del contenido de aluminio en ra&iacute;z y hojas en las plantas hu&eacute;sped al final del experimento</b>. En las Figuras 5 y 6 se aprecia el comportamiento de la retenci&oacute;n del ion aluminio en hojas y ra&iacute;ces en las plantas ensayadas, la cantidad de retenci&oacute;n del aluminio en los tejidos radiculares no mostr&oacute; una relaci&oacute;n directa con las concentraciones de Al, presentes en cada tipo de suelo.</p>      <p>    <center><a name="g_05"></a><a href="img/revistas/bsaa/v10n2/v10n2a11g05.jpg", target="_blank">Figura 5</a></center></p>      <p>    <center><a name="g_06"></a><a href="img/revistas/bsaa/v10n2/v10n2a11g06.jpg", target="_blank">Figura 6</a></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En general en el &aacute;rea foliar se presentaron menores niveles de aluminio en las pl&aacute;ntulas micorrizadas con relaci&oacute;n a las pl&aacute;ntulas que crecieron sin micorrizas y las ra&iacute;ces de las plantas micorrizadas, en general almacenaron m&aacute;s aluminio que las plantas no micorrizadas. Estos resultados sugieren de alguna manera que adem&aacute;s de la ra&iacute;z, los hongos micorrizicos tendr&iacute;an la capacidad de capturar el i&oacute;n Al del suelo, disminuyendo su translocaci&oacute;n desde la ra&iacute;z  a la parte a&eacute;rea de la planta y aliviando la  toxicidad por aluminio presente en estos suelos. Sin embargo, se present&oacute;  un comportamiento diferente en las dos plantas hospedantes cuando crecieron en el suelo 3 (figuras <a href="#g_05">5</a> y <a href="#g_06">6</a>), se observ&oacute; una disminuci&oacute;n de acumulaci&oacute;n de aluminio en las hojas y un aumento en la zona radicular; este comportamiento se evidenci&oacute;  tanto en las pl&aacute;ntulas micorrizadas y no micorrizadas, sugiriendo que podr&iacute;an  existir  otros factores que estar&iacute;an influyendo en la din&aacute;mica y acumulaci&oacute;n de aluminio tanto en el &aacute;rea radicular y foliar de las plantas.</p>     <br>      <p><b><font size="3">CONCLUSIONES</font></b></p>     <br>      <p>En este trabajo se demostr&oacute; que las densidades iniciales de esporas de hongos micorrizicos nativos de suelos dedicados al monocultivo de palma se incrementaron en m&aacute;s de 200&#37;, utilizando <i>B. decumbens</i> y <i>M.esculenta</i>, como plantas hospederas, la din&aacute;mica de la colonizaci&oacute;n micorrizica vario a trav&eacute;s del tiempo para las dos plantas en cada uno de los suelos ensayados, sin embargo se demostr&oacute; que la simbiosis micorrizica en  <i>B. decumbens</i> es superior  al 70 &#37;  en suelos con concentraciones de 0,6 y 1,4 meq/100 g de Aluminio y <i>M. esculenta</i> alcanz&oacute; interacci&oacute;n simbi&oacute;tica del 50&#37; en todos los suelos, demostrando que la simbiosis podr&iacute;a estar relacionada con el tipo de hospedero. Todas las plantas micorrizadas mostraron incremento en el desarrollo radicular y biomasa seca, mayor capacidad  de retenci&oacute;n  de  aluminio  en ra&iacute;ces, con disminuci&oacute;n de aluminio en la parte foliar. Los mecanismos que utilizan estas especies vegetales para acumular aluminio en simbiosis con micorriza arbuscular deben seguir siendo estudiados.</p>     <br><hr>       <p><b><font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b></p>     <br>       <p>A la Universidad de Santander UDES por los recursos de financiaci&oacute;n para este proyecto, a Manuel Guti&eacute;rrez por su valiosa contribuci&oacute;n en la recolecci&oacute;n de las muestras de suelos de la regi&oacute;n palmera de Puerto Wilches, a Amelia Gonz&aacute;lez, Andrea Gallo, Mayerly Cano en el proceso de tamizaje de los suelos, a Sergio Villamizar por su valiosa labor en el invernadero, a Yoland&eacute; Dalp&eacute; por su valiosa contribuci&oacute;n en la identificaci&oacute;n de las esporas de hongos micorrizicos, y a Patrice Di&oacute;n por sus comentarios.</p>     <br>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b><font size="3">REFERENCIAS  </font></b></p>     <br>      <!-- ref --><p>&#91;1&#93; MUNEVAR,F. Problem&aacute;tica de los Suelos Cultivados con Palma de Aceite en  Colombia. Palmas.19, 1998, p.218-228.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S1692-3561201200020001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>&#91;2&#93; KINRAIDE,T.B. Identity of the rhizotoxic aluminum species. Plant soil.134, 1991, p.167-178.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S1692-3561201200020001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;3&#93; CLARKSON, D. T. Metabolic aspects of aluminum toxicity and some possible mechanisms for resistance. 1969, p. 38– 397. In:  Rorison IH, ed.  Ecological Aspects of the Mineral Nutrition in Plants. Oxford: Blackwell.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S1692-3561201200020001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>&#91;4&#93; CUELLAR, M.,  MUN&Eacute;VAR, F. Control de calidad de los resultados anal&iacute;ticos en el Laboratorio de An&aacute;lisis Foliares y de Suelos de Cenipalma. Palmas 21, 2000, p. 92-98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S1692-3561201200020001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>&#91;5&#93; MA, J.F. Role of organic acids in detoxification of aluminum in higher plants. Plant and Cell Physiology, 41, 2000, p. 383-390.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S1692-3561201200020001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;6&#93; BARCELO, J., POSCHENRIEDER, C. Fast root growth responses, root exudates, and internal detoxification as clues to the mechanisms of aluminum toxicity and resistance: A review. Environ. Exp. Bot. 48, 2002, p.75–92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S1692-3561201200020001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;7&#93; KOCHIAN, L. Cellular mechanisms of aluminum toxicity and resistance in plants. Annual Review of plant Physiology (EEUU) 46, 1995, p. 237-260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S1692-3561201200020001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;8&#93;TAYLOR, G., MC DONALD-Stephens, J., HUNTER, D., BERTSCH, P., ELMORE, D., RENGEL, Z. Direct measurement of aluminum uptake and distribution in single cells of Chara corallina. Plant Physiol 123, 2000, p. 987-996.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S1692-3561201200020001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;9&#93; BROOKS,R. Plants that hyperaccumulate heavy metals. New York (EEUU): Cabi, 1998.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S1692-3561201200020001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>&#91;10&#93; REEVES, R.D.  Hyper accumulation of trace elements by plants,  2006. p. 25–52: In Morel JL, Echevarria G, Goncharova  N (eds.) Phytoremediation of metal contaminates soils. Nato Science Series: IV: Earth and environmental sciences. Springer, Heidelberg.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S1692-3561201200020001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;11&#93; SIEVERDING, E. Vesicular-arbuscular mycorrhizal management in tropical agroecosystems. Deutsche Gesellschaft fur Technische Zusammenarbeit, Eschborn, Alemania.1991.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S1692-3561201200020001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;12&#93; READ, D.J. Mycorrhiza. The state of the art. En: Mycorrhiza 2nd. (A. Varma y B. Hock,eds). Springer - Verlag, Berlin, Heidelberg 1999, p. 3-34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S1692-3561201200020001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>&#91;13&#93; ELLIS, J.R., LARSEN, H.J., BOOSALIS, M.G. Drought resistance of wheat plants inoculated with vesicular arbuscular mycorrhizae. Plant Soil: 86, 1985, p. 369-378.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S1692-3561201200020001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>&#91;14&#93; MARSCHNER, H. Mineral nutrition of higher plants. Academic .San Diego. 2 Ed. USA Mc Graw Hill Book Company, 1995.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S1692-3561201200020001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>&#91;15&#93; RUFYIKIRI, G., S. DECLERCK., J.E DUFEY., and DELVAUX. Arbuscular mycorrhizal fungi might alleviate aluminum toxicity in banana plants. New Phytol.148, 2000, p.343-352.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S1692-3561201200020001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;16&#93; CUENCA, G.,  Z. DE ANDRADE.,  and E. MENESES. The presence of aluminum in arbuscular mycorrhizas of Clusia multiflora exposed to increased acidity. Plant Soil. 231, 2001, p.233-241.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S1692-3561201200020001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;17&#93; CUMMING, R.J and J. NING. Arbuscular mycorrhizal fungi enhance aluminum resistance of broomsedge (Andropogon virginicus L). J.  Exp. Bot. 54, 2003, p. 1447- 1459.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S1692-3561201200020001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;18&#93; GUERRA, B.,  DION, P, dato no publicado.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S1692-3561201200020001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;19&#93; POTTY, V.P.  Cassava as an alternate host for multiplication of VAM fungi. Plant and Soil. 88, 1985, 135-137.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S1692-3561201200020001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>&#91;20&#93; HOWELER, R.H., C.J. ASHER., and D.G. Edwards. Establishment of an effective endomycorrhizal association on cassava in flowing solution culture and its effect on phosphorus nutrition.  New Phytol. 90, 1982, p.229-238&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S1692-3561201200020001100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>&#91;21&#93; GERDEMAN, J.W and T. NICOLSON. Spores of mycorrhizal Endogone species extracted from soil by wet sieving and decanting. Transactions British Mycological Soc. 46, 1963, p.235-244.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000124&pid=S1692-3561201200020001100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>&#91;22 &#93;SIEVERDING, E. Manual de m&eacute;todos para la investigaci&oacute;n de la micorriza ves&iacute;culo arbuscular en el laboratorio. Palmira, Valle, Centro Internacional de Agricultura Tropical, CIAT. 1983.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000126&pid=S1692-3561201200020001100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;23&#93; SCHENCK, N.C., Y. P&Eacute;REZ. Manual for the identification of VA mycorrhizal fungi. 3th Edition.1990. Synergistic Publications. Gainsville.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000128&pid=S1692-3561201200020001100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;24&#93; INVAM.International culture collection of vesicular arbuscular mycorrhizal fungi. &#91;Online&#93;. Available: <a href="http://invam.caf.wvu.edu", target="_blank">http://invam.caf.wvu.edu</a> &#91;citado12 de agosto de 2011&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S1692-3561201200020001100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;25&#93; KENNETH HELRICH. AOAC Official Method 980.03 Metals in Plants. Virginia, EEUU. 2006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S1692-3561201200020001100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;26&#93; PHILLIPS, J.M and D.S. HAYMAN. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Trans.Br. Mycol. Soc. 55, 1970, p.158-161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S1692-3561201200020001100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;27&#93; JOHNSON, NC., D, TILMAN and D WEDIN. Plant and soil controls on mycorrhizal fungi. Ecology 73, 1992, p. 2034.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S1692-3561201200020001100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;28&#93; DALP&Eacute; ,Y. (Comunicaci&oacute;n personal).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S1692-3561201200020001100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;29&#93; HABTE, M. Dependency of cassava (Manihot esculenta Crantz) on vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi. Mycorrhiza  4, 1994, p. 241-245.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S1692-3561201200020001100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;30&#93; POTTY, V.P.  Cassava as an alternate host for multiplication of VAM fungi. Plant and Soil. 88, 1985, p.135-137.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S1692-3561201200020001100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;31&#93; ARCOS, A.L.. Distribuci&oacute;n de la asociaci&oacute;n micorrizica arbuscular en ecosistemas   naturales e intervenidos. En: Aspectos ambientales para el ordenamiento territorial del Trapecio Amaz&oacute;nico. Instituto Geogr&aacute;fico Agust&iacute;n Codazzi (IGAC), 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S1692-3561201200020001100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;32&#93; HELGASON, T., MERRY WEATHER, J. W., DENISON, J., WILSON, P., YOUNG, J.P.W ,and  FITTER, A.H. Selectivity and functional diversity in arbuscular mycorrhizas of co-ocurring fungi and plants from a temperate deciduous  woodland., J. Ecol. 90,  2002, p.371-384.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S1692-3561201200020001100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>&#91;33&#93; MOORA, M., OPIK, M., CEN, R and ZOBEL, M. Native influence the seedling performance of rare and common Pulsatilla. Species fuctional ecology, 18, 2004, p.574-562.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S1692-3561201200020001100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;34&#93; SIMARD, S., DURALL, D. Mycorrhizal networks: a review of their extent, function  and importance. Can J Bot. 82,2004, 1140-65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S1692-3561201200020001100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;35&#93; PLENCHETTE, C., J.A. FORTIN. and  V. FURLAN. Growth response of several plant species to mycorrhizae in a soil of moderate P-fertility. Mycorrhizal dependency under field conditions. Plant and Soil.70, 1983, p.199- 209.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S1692-3561201200020001100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;36&#93;CABELLO, M.N. 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