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<journal-title><![CDATA[Biotecnología en el Sector Agropecuario y Agroindustrial]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Taller Editorial Universidad del Cauca]]></publisher-name>
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<article-id pub-id-type="doi">10.18684/BSAA(14)19-26</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[PRODUCCIÓN DE POLIHIDROXIALCANOATOS (PHAs) A PARTIR DE Ralstonia eutropha EN UN MEDIO CON HARINA DE YUCA COMO FUENTE DE CARBONO]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[PRODUCTION OF POLYHYDROXYALKANOATES (PHAs) FROM Ralstonia eutropha IN A MEDIUM OF CASSAVA FLOUR AS CARBON SOURCE]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[PRODUÇÃO DE POLIHIDROXIALCANOATOS(PHAS) UTILIZANDO Ralstonia eutropha NUM MEIO COM FARINHA DE MANDIOCA COMO FONTE DE CARBONO]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The Polyhydroxyalkanoates (PHAs) are intracellular polyesters synthesized by different bacterial species. PHAs are accumulated as granules when bacterias don't find conditions for their growth, like oxygen and essential nutrients (nitrogen, carbon). PHA is biodegradable and depending on its chemical and structural composition can be used in similar applications to polymers &#91;1&#93;. At present this type of biopolymers have a higher cost compared to petroleum, but the use of renewable sources friendly to the environment or the use of agro-products for generating new products is a practice of global importance. The present investigation studied the production of polyhydroxyalkanoates (PHA) by bacterial fermentation of glucose obtained from HMC1 cassava flour using Ralstonia eutropha, using five different ratios carbon/nitrogen (12:1, 16:1, 20:1, 24:1, 28:1). The result showed the carbon/nitrogen ratio of 20 is the most favorable to the intracellular accumulation of biopolymer, with which a production of 0,62 g/L of PHA. The PHA was characterized PHA by differential scanning calorimetry (DSC), thermogravimetric Analysis (TGA), Infrared Spectroscopy with Fourier Transform (FT-IR) and scanning electron microscopy, obteining as conclusión that the polymer synthesized was polyhydroxybutyrate (PHB).]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Os polihidroxialcanoatos (PHAs) são poliésteres intracelulares sintetizados por diferentes espécies bacterianas, as quais acumula-os como grânulos quando encontram-se em condições limitantes de nutrientes essenciais para seu crescimento como o Oxigênio, Nitrogênio e Carbono. São biodegradáveis e dependendo da sua composição química e estrutural podem ser utilizados em aplicações semelhantes aos polímeros &#91;1&#93;. Na atualidade, este tipo de biopolímeros apresentam um maior custo comparado com os derivados do petróleo, mas o uso de fontes amigáveis com o meio ambiente ou o aproveitamento dos subprodutos agroindustriais para a geração de novos produtos é uma prática de importância mundial. Nesta pesquisa estudou-se a produção de polihidroxialcanoatos (PHA) através de fermentação bacteriana de glucose, obtida a partir da farinha de mandioca HMC1 utilizando Ralstonia eutropha num meio com cinco razões carbono/nitrogênio diferentes (12:1, 16:1, 20:1, 24:1, 28:1). Obteve-se que a razão Carbono/Nitrogênio de 20 é a mais favorável na acumulação intracelular de biopolímero, alcançando uma produção de 0,62 g/L de PHA. O PHA sintetizado caracterizou-se através de Calorimetría diferencial de barrido (DSC), Análises Termogravimetrico (TGA), Espectroscopia de Infrarrojo com Transformada de Fourier (IR-FT) e Microscopia electrónica de Barrido (SEM), concluindo assim que o biopolímero obtido foi o polihidroxibutirato (PHB).]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="Verdana" size="2">      <p><B>DOI: <a href="http://dx.doi.org/10.18684/BSAA(14)19-26" target="_blank">http://dx.doi.org/10.18684/BSAA(14)19-26</a></B></p>     <center>      <p><b><font size="4">PRODUCCI&Oacute;N DE POLIHIDROXIALCANOATOS (PHAs) A PARTIR DE <i>Ralstonia eutropha</i> EN UN MEDIO CON HARINA DE YUCA COMO FUENTE DE CARBONO</font></b></p>      <p><b><font size="3">PRODUCTION OF POLYHYDROXYALKANOATES (PHAs) FROM <i>Ralstonia eutropha</i> IN A MEDIUM OF CASSAVA FLOUR AS CARBON SOURCE</font></b></p>      <p><b><font size="3">PRODU&Ccedil;&Atilde;O DE POLIHIDROXIALCANOATOS (PHAS) UTILIZANDO <i>Ralstonia eutropha</i> NUM MEIO COM FARINHA DE MANDIOCA COMO FONTE DE CARBONO</font></b></p>      <p><b>ELIZABETH ROJAS FERN&Aacute;NDEZ<a name="1"></a><a href="1a"><sup>1</sup></a> , JOS&Eacute; LUIS HOYOS CONCHA<a name="2"></a><a href="2a"><sup>2</sup></a>, SILVIO ANDR&Eacute;S MOSQUERA S&Aacute;NCHEZ<a name="3"></a><a href="3a"><sup>3</sup></a></b></p> </center>       <p><sup><a name="1a"></a><a href="#1">1</a></sup>Universidad del Cauca, Facultad de Ciencias Agrarias, Grupo de investigaci&oacute;n Aprovechamiento de subproductos y residuos agroindustriales (ASUBAGROIN). Ingeniera agroindustrial. Popay&aacute;n, Colombia.</p>      <p><sup><a name="2a"></a><a href="#2">2</a></sup>Universidad del Cauca, Facultad de Ciencias Agrarias. Grupo de investigaci&oacute;n Aprovechamiento de subproductos y residuos agroindustriales (ASUBAGROIN). Magister en Ingenier&iacute;a de alimentos, Especialista en Biotecnolog&iacute;a, Ingeniero Agroindustrial. Popay&aacute;n, Colombia.</p>      <p><sup><a name="3a"></a><a href="#3">3</a></sup>Universidad del Cauca, Facultad de Ciencias Agrarias, Grupo de investigaci&oacute;n Ciencia y Tecnolog&iacute;a de Biomol&eacute;culas de Inter&eacute;s Agroindustrial (CYTBIA). Ing. Industrial de Alimentos, M.SC. Ingenier&iacute;a. Popay&aacute;n, Colombia.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Correspondencia</b>: <a href="mailto:jlhoyos@unicauca.edu.co">jlhoyos@unicauca.edu.co</a></p>     <P><b>Recibido para evaluaci&oacute;n</b>: 20 de Noviembre de 2015. <b>Aprobado para publicaci&oacute;n</b>: 31 de Mayo del 2016.</P>     <br>      <p><b><font size="3">RESUMEN</font></b></p>      <p><i>Los polihidroxialcanoatos (PHAs) son poli&eacute;steres intracelulares sintetizados por diferentes especies bacterianas, las cuales los acumulan como gr&aacute;nulos cuando se encuentran en condiciones limitantes de nutrientes esenciales para su crecimiento como el ox&iacute;geno, nitr&oacute;geno y carbono, son biodegradables y, dependiendo de su composici&oacute;n qu&iacute;mica y estructural, pueden ser empleados en aplicaciones semejantes a los pol&iacute;meros &#91;1&#93;. En la actualidad, este tipo de biopol&iacute;meros presentan un mayor costo comparado con los derivados del petr&oacute;leo, pero el uso de fuentes renovables y el aprovechamiento de subproductos agroindustriales para la generaci&oacute;n de nuevos productos es una alternativa ecol&oacute;gica de importancia mundial. En la presente investigaci&oacute;n se estudi&oacute; la producci&oacute;n de polihidroxialcanoatos (PHA) mediante fermentaci&oacute;n bacteriana de glucosa, obtenida a partir de harina de yuca HMC1 empleando Ralstonia eutropha en un medio con cinco relaciones carbono/nitr&oacute;geno (12:1, 16:1, 20:1, 24:1, 28:1). Se obtuvo como resultado, que la relaci&oacute;n carbono/nitr&oacute;geno de 20 es la que m&aacute;s favorece la acumulaci&oacute;n intracelular de biopol&iacute;mero, con la cual se alcanza una producci&oacute;n de 0,62 g/L de PHA. El PHA sintetizado se caracteriz&oacute; por  medio de calorimetr&iacute;a diferencial de barrido (DSC), An&aacute;lisis Termogravimetrico (TGA), Espectroscop&iacute;a de Infrarrojo con Transformada de Fourier (IR-FT) y Microscop&iacute;a electr&oacute;nica de Barrido (SEM), concluyendo que el biopol&iacute;mero obtenido fue  polihidroxibutirato (PHB).</i></p>      <p><b>PALABRAS CLAVE:</b>Biopol&iacute;mero, Fermentaci&oacute;n, Carbono, Nitr&oacute;geno, Polihidroxibutirato (PHB).</p>       <br>      <p><b><font size="3">ABSTRACT</font></b></p>      <p><i>The Polyhydroxyalkanoates (PHAs) are intracellular polyesters synthesized by different bacterial species. PHAs are accumulated as granules when bacterias don't find conditions for their growth, like oxygen and essential nutrients (nitrogen, carbon). PHA is biodegradable and depending on its chemical and structural composition can be used in similar applications to polymers &#91;1&#93;. At present this type of biopolymers have a higher cost compared to petroleum, but the use of renewable sources friendly to the environment or the use of agro-products for generating new products is a practice of global importance. The present investigation studied the production of polyhydroxyalkanoates (PHA) by bacterial fermentation of glucose obtained from HMC1 cassava flour using Ralstonia eutropha, using five different ratios carbon/nitrogen (12:1, 16:1, 20:1, 24:1, 28:1). The result showed the carbon/nitrogen ratio of 20 is the most favorable to the intracellular accumulation of biopolymer, with which a production of 0,62 g/L of PHA. The PHA was characterized PHA by differential scanning calorimetry (DSC), thermogravimetric Analysis (TGA), Infrared Spectroscopy with Fourier Transform (FT-IR) and scanning electron microscopy, obteining as conclusi&oacute;n that the polymer synthesized was polyhydroxybutyrate (PHB).</i></p>      <p><b>KEY WORDS:</b>Biopolymer, Fermentation, Carbon, Nitron, Polyhydroxybutyrate (PHB).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <p><b><font size="3">RESUMO</font></b></p>      <p><i>Os polihidroxialcanoatos (PHAs) s&atilde;o poli&eacute;steres intracelulares sintetizados por diferentes esp&eacute;cies bacterianas, as quais acumula-os como gr&acirc;nulos quando encontram-se em condi&ccedil;&otilde;es limitantes de nutrientes essenciais para seu crescimento como o Oxig&ecirc;nio, Nitrog&ecirc;nio e Carbono. S&atilde;o biodegrad&aacute;veis e dependendo da sua composi&ccedil;&atilde;o qu&iacute;mica e estrutural podem ser utilizados em aplica&ccedil;&otilde;es semelhantes aos pol&iacute;meros &#91;1&#93;. Na atualidade, este tipo de biopol&iacute;meros apresentam um maior custo comparado com os derivados do petr&oacute;leo, mas o uso de fontes amig&aacute;veis com o meio ambiente ou o aproveitamento dos subprodutos agroindustriais para a gera&ccedil;&atilde;o de novos produtos &eacute; uma pr&aacute;tica de import&acirc;ncia mundial. Nesta pesquisa estudou-se a produ&ccedil;&atilde;o de polihidroxialcanoatos (PHA) atrav&eacute;s de fermenta&ccedil;&atilde;o bacteriana de glucose, obtida a partir da farinha de mandioca HMC1 utilizando Ralstonia eutropha num meio com cinco raz&otilde;es carbono/nitrog&ecirc;nio diferentes (12:1, 16:1, 20:1, 24:1, 28:1). Obteve-se que a raz&atilde;o Carbono/Nitrog&ecirc;nio de 20 &eacute; a mais favor&aacute;vel na acumula&ccedil;&atilde;o intracelular de biopol&iacute;mero, alcan&ccedil;ando uma produ&ccedil;&atilde;o de 0,62 g/L de PHA. O PHA sintetizado caracterizou-se atrav&eacute;s de Calorimetr&iacute;a diferencial de barrido (DSC), An&aacute;lises Termogravimetrico (TGA), Espectroscopia de Infrarrojo com Transformada de Fourier (IR-FT) e Microscopia electr&oacute;nica de Barrido (SEM), concluindo assim que o biopol&iacute;mero obtido foi o polihidroxibutirato (PHB).</i></p>      <p><b>PALAVRAS-CHAVE:</b>Biopol&iacute;meros, Fermenta&ccedil;&atilde;o, Carbono, Nitrog&ecirc;nio, Polihidroxibutirato (PHB).</p>     <br>    <hr>        <p><b><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></p>     <br>      <p>Los pl&aacute;sticos derivados del petr&oacute;leo (sint&eacute;ticos, no biodegradables), han sido utilizados desde la d&eacute;cada de los 40, solo en Estados Unidos en el a&ntilde;o 2009 se generaron 31 millones de toneladas entre pl&aacute;sticos, objetos duraderos, como electrodom&eacute;sticos y objetos no duraderos como platos y tazas &#91;2&#93;. Los polihidroxialcanoatos (PHAs) son biopol&iacute;meros sintetizados por numerosas bacterias, son biodegradables y presentan propiedades termopl&aacute;sticas y altos grados de polimerizaci&oacute;n, por lo que pueden ser moldeados como los pol&iacute;meros no biodegradables, sin embargo cabe anotar que la producci&oacute;n de biopl&aacute;sticos frente a la producci&oacute;n de pl&aacute;sticos derivados del petr&oacute;leo tiene una gran desventaja con respecto a los costos de producci&oacute;n. Para 2005, producir por fermentaci&oacute;n bacteriana un kilogramo de PHA costaba 15 d&oacute;lares, mientras que; hacer un kilogramo de pl&aacute;stico convencional costaba s&oacute;lo un d&oacute;lar &#91;3&#93;, es por esta raz&oacute;n que a trav&eacute;s de los a&ntilde;os se han propuesto diversos tipos de sustrato como una estrategia para reducir los costos de producci&oacute;n. En esta investigaci&oacute;n se evalu&oacute; harina de yuca como sustrato, debido a que este producto forma parte de una de las cadenas productivas que existen en la regi&oacute;n, es una materia prima de bajo costo y posee caracter&iacute;sticas composicionales que ofrece al microorganismo la cantidad de energ&iacute;a requerida para sus procesos metab&oacute;licos &#91;4&#93;.</p>      <p>Entre los pl&aacute;sticos biodegradables m&aacute;s estudiados actualmente son los PHAs, y dentro de los cuales se encuentra el polihidroxibutirato PHB, como el m&aacute;s com&uacute;n. La Ralstonia eutropha es una de las bacterias m&aacute;s utilizadas en la producci&oacute;n de PHA, debido a que es capaz de almacenar hasta un 96&#37; de este material en peso seco; con la ventaja de emplear fuentes de carbono y energ&iacute;a renovables como la fructosa y la glucosa, provenientes de subproductos agroindustriales &#91;1&#93;.</p>      <p>La presente investigaci&oacute;n tuvo como objetivos la obtenci&oacute;n de polihidroxialcanoatos (PHAs) obtenidos a partir de Ralstonia eutropha en un sustrato elaborado con harina de yuca HMC1 y su respectiva caracterizaci&oacute;n t&eacute;rmica y microsc&oacute;pica. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <p><b><font size="3">M&Eacute;TODO</font></b></p>     <br>      <p><b>Materiales</b></p>      <p><b>Harina de Yuca.</b>Se emple&oacute; Harina de yuca variedad HCM1, proveniente de la empresa Deriyuca, ubicada en la vereda la Agustina, municipio de Santander de Quilichao, con un tama&ntilde;o de part&iacute;cula de 150 &micro;m y una humedad entre 11 y 13&#37;.</p>      <p><b><i>Ralstonia eutropha.</i></b>  Cepa bacteriana crioconservada en las instalaciones del Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a de la Universidad del Cauca.</p>      <p><b>M&eacute;todos</b></p>      <p><b>Activaci&oacute;n y crioconservaci&oacute;n de Ralstonia eutopha.</b> microorganismo acumulador se emple&oacute; la bacteria Ralstonia eutropha, la cual se activ&oacute; en medio Tripticasa Soya (Triptona 17 g/L, Soytona o peptona de soya 3 g/L, Glucosa 2,5 g/L, Cloruro de sodio 5,0 g/L, Fosfato dipot&aacute;sico de hidr&oacute;geno 2,5 g/L), bas&aacute;ndose en la metodolog&iacute;a descrita por Betancur &#91;1&#93;, a condiciones de incubaci&oacute;n de 32&deg;C por 48 h. La crioconservaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo en glicerol al 15&#37; para llevarse a temperaturas inferiores a 0&deg;C &#91;5&#93;.</p>      <p><b>Obtenci&oacute;n de glucosa a partir de harina de yuca por hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica.</b> Para la obtenci&oacute;n de glucosa a partir de harina de yuca se realiz&oacute; una hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica. Las enzimas utilizadas fueron BAN 480L con actividad de alfa – amilasa y DEXTROZIME GA del tipo Glucoamilasa (glucano 1,4 alfa-glucosidasa), con el objetivo de  liberar el almid&oacute;n retenido en la matriz compleja de fibra &#91;6&#93;. </p>      <p>Se realiz&oacute; una mezcla de harina en agua al 20&#37; b.s., el pH de la mezcla fue 5,7 valor &oacute;ptimo de pH, con adici&oacute;n de cloruro de calcio como cofactor, esta hidr&oacute;lisis se mantuvo por 90 min a 65&deg;C. Despu&eacute;s de inactivar esta primera enzima por efecto de pH,  se ajust&oacute; nuevamente el pH a 4,3 como condici&oacute;n &oacute;ptima para la glucoamilasa empleada en la segunda etapa, donde se mantuvo a 62&deg;C con agitaci&oacute;n constante durante 18 horas.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El jarabe fue purificado empleando una columna con carb&oacute;n activado para  posteriormente determinar la cantidad de glucosa mediante el m&eacute;todo DNS &#91;7&#93;.</p>      <p><b>Fermentaci&oacute;n bacteriana con <i>Ralstonia eutropha</i>.</b> La fermentaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo durante 36 horas en un medio mineral m&iacute;nimo de sales (MSM) &#91;1&#93; a 30&deg;C, agitaci&oacute;n de 150 rpm, utilizando como in&oacute;culo la bacteria cultivada  en el medio enriquecido tripticasa soya (TSB) al 10&#37;, la cual se centrifug&oacute; y lav&oacute; por duplicado con una soluci&oacute;n isot&oacute;nica al 0,9&#37; durante 30 minutos a 4500 rpm.  Como variables de respuesta se emplearon las pruebas de conteo en placa por el m&eacute;todo NMP y turbidez para determinar biomasa y an&aacute;lisis mediante la t&eacute;cnica de DNS para consumo de sustrato.</p>       <p>Con el fin de inducir la formaci&oacute;n intracelular del biopol&iacute;mero en la bacteria se estableci&oacute; una limitaci&oacute;n nutricional en el medio, en este caso se limit&oacute; la fuente de nitr&oacute;geno y se suministr&oacute; un exceso de fuente de carbono. A partir del balance de electrones y teniendo en cuenta las condiciones estequiom&eacute;tricas para desarrollar el proceso, se determinaron como relaciones a evaluar 12:1, 16:1, 20:1, 24:1, 28:1, usando como fuente de carbono jarabe de glucosa obtenido de la hidr&oacute;lisis de harina de yuca y como fuente de nitr&oacute;geno sulfato de amonio.</p>       <p><b>Prueba de turbidez.</b>Se realiz&oacute; un seguimiento por espectofotometr&iacute;a, midiendo la turbidez de cada muestra a 500 nm cada 3 horas, relacion&aacute;ndolo con la densidad poblacional obtenida en la t&eacute;cnica de n&uacute;mero m&aacute;s probable.</p>      <p><b>T&eacute;cnica de n&uacute;mero m&aacute;s probable.</b>Para esta prueba la placa de Petri se dividi&oacute; en cinco zonas de igual tama&ntilde;o, en cada zona se sembraron 5 microgotas de 3 &micro;L cada una, de cinco diluciones consecutivas, incub&aacute;ndolas a 30&deg;C por 2 d&iacute;as. La poblaci&oacute;n estimada se determin&oacute; con base a la tabla de n&uacute;mero m&aacute;s probable para series de diluciones en r&eacute;plicas de cinco por nivel de diluci&oacute;n &#91;8&#93;, aplicando la f&oacute;rmula correspondiente para calcular densidad poblacional de la muestra.</p>      <p><b>Determinaci&oacute;n de consumo de sustrato mediante DNS.</b>Este protocolo se emple&oacute; para determinar la concentraci&oacute;n de az&uacute;cares reductores, para ello  se emple&oacute; 1mL de la muestra obtenida de la fermentaci&oacute;n a intervalos de 3 horas, llevada a una concentraci&oacute;n de 800 ppm, luego se agreg&oacute; 1 mL del reactivo de DNS y finalmente se agregaron 3 mL de agua destilada, los tubos se agitaron en vortex por 30 seg, se llevaron a ebullici&oacute;n por 5 minutos y se detuvo la reacci&oacute;n en ba&ntilde;o de hielo durante 10 minutos, con el fin de realizar la lectura de las muestras en espectrofot&oacute;metro SHIMADZU UV-1800 a una longitud de onda de 500nm.</p>       <p><b>Extracci&oacute;n del biopol&iacute;mero obtenido.</b>Para la extracci&oacute;n del PHA se centrifug&oacute; el medio fermentado a 4500 rpm durante 15 min. La extracci&oacute;n se realiz&oacute; empleando 5mL de &aacute;cido sulf&uacute;rico 0,1 M, se llev&oacute; a ebullici&oacute;n durante 1h, para nuevamente centrifugar y ajustar el pH a 10 con NaOH a una concentraci&oacute;n de 5N &#91;9&#93;. Las muestras se secaron por 10 horas a 30&deg;C &#91;10&#93;. El biopol&iacute;mero fue decolorado con hipoclorito de sodio al 3&#37;.</p>      <p><b>Caracterizaci&oacute;n t&eacute;rmica.</b> Se realiz&oacute; por Calorimetr&iacute;a de Barrido Diferencial (DSC), para determinar el tipo de pol&iacute;mero, las muestras fueron sometidas a un barrido t&eacute;rmico &#91;11&#93;. Se emple&oacute; un equipo de Calorimetr&iacute;a de Barrido Diferencial &#91;TA Instruments, Q20, USA&#93;. Se tomaron 5 mg del material y se depositaron en una c&aacute;psula de aluminio, una vez verificada la calidad del sellado en la c&aacute;psula, se someti&oacute; al ciclo de enfriamiento y calentamiento entre -50&deg;C y 250&deg;C a 20&deg;C/min.</p>      <p>El an&aacute;lisis termogravim&eacute;trico (TGA) se llev&oacute; a cabo bajo una atm&oacute;sfera controlada en un equipo TGA TA Instruments, Q50, USA, teniendo en cuenta la norma ASTM E 2402 a una tasa de calentamiento de  20&deg;C/min desde 25 a 400&deg;C.</p>      <p><b>Caracterizaci&oacute;n estructural.</b> Para la prueba de Infrarrojo Espectral con Transformada de Fourier (IR-FT), se prepararon pastillas transparentes por medio de prensado, las cuales est&aacute;n compuestas por bromuro de potasio (secado a 100&deg;C) y PHA altamente macerado. La pastilla se coloc&oacute; en el compartimiento del equipo (Thermo Fisher Scientific, Niccolet 200. USA) y se procedi&oacute; a hacer un barrido en toda la franja de infrarrojo. Finalmente se obtuvo el espectro para su posterior an&aacute;lisis.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Para la Microscop&iacute;a electr&oacute;nica de barrido (SEM) se cortaron y prepararon los pellets activos en una doble capa de bronce y luego se cubrieron con una fina capa de oro (40-50 nm), para observar el corte de la secci&oacute;n transversal de las diferentes superficies. Las muestras se examinaron usando un acelerador de voltaje de 5 kV y se mantuvieron a una humedad relativa constante de 68&#37; y 23&deg;C.</p>     <br>      <p><b><font size="3">RESULTADOS</font></b></p>      <p><b>Activaci&oacute;n de la bacteria</b></p>      <p>Transcurrido el tiempo de incubaci&oacute;n, se evidenci&oacute; en  el medio TSB la formaci&oacute;n de colonias de Ralstonia eutropha. El an&aacute;lisis microsc&oacute;pico se determin&oacute; por medio de tinci&oacute;n de Gram, donde se identific&oacute; la morfolog&iacute;a de bacilo Gram negativo, a nivel macrosc&oacute;pico las colonias eran uniformes, de buen tama&ntilde;o, color beige, bordes redondeados y trasl&uacute;cidas.</p>      <p><b>Jarabe de glucosa a partir de la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica de harina de yuca</b></p>      <p>En las diferentes reacciones de hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica de harina, se observ&oacute; un cambio de color, de blanco a caf&eacute; claro, a medida que transcurr&iacute;a el tiempo;  debido a la generaci&oacute;n de dextrosas y algunos carbohidratos producto de la reacci&oacute;n de hidr&oacute;lisis &#91;6&#93;.</p>       <p>El mayor grado de hidr&oacute;lisis se alcanza en condiciones &oacute;ptimas de trabajo para las dos enzimas empleadas, durante las cuales la hidr&oacute;lisis alcanza entre un 10 y 12&#37; de equivalente de dextrosa en primera fase (reacci&oacute;n enzim&aacute;tica con &alpha;-amilasa), posteriormente se observa una velocidad de conversi&oacute;n m&aacute;s lenta mostrando estabilidad luego de 16 horas y  alcanzando el mayor grado de hidr&oacute;lisis en la hora 18, con esto se determin&oacute; el mejor tiempo de reacci&oacute;n. Por lo tanto los factores m&aacute;s importantes en la obtenci&oacute;n de glucosa a partir de harina de yuca por v&iacute;a enzim&aacute;tica son la concentraci&oacute;n de enzima y el tiempo de reacci&oacute;n, la temperatura no influy&oacute; de forma directa, debido a que se trabaj&oacute; en el rango de acci&oacute;n enzim&aacute;tica, alcanzando as&iacute; un equivalente de dextrosa del 79&#37;.</p>      <p><b>Fermentaci&oacute;n bacteriana y extracci&oacute;n del biopol&iacute;mero</b></p>      <p>Los pesos obtenidos en la extracci&oacute;n del biopol&iacute;mero de cada uno de los tratamientos, se evaluaron mediante un dise&ntilde;o completamente al azar, donde el factor a evaluar fue la relaci&oacute;n carbono/nitr&oacute;geno. La prueba de promedios de Tukey para los cinco tratamientos, realizada mediante el programa SPSS 20,0. Arroj&oacute; tres subconjuntos homog&eacute;neos, los cuales presentaron diferencias estad&iacute;sticamente significativas con un &alpha;=0,05, tal como se muestra en el <a href="#t_01">Cuadro 1</a>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="t_01"></a><img src="img/revistas/bsaa/v14n1/v14n1a03t01.jpg"></center></p>      <p>Entre los tratamientos evaluados, la mejor relaci&oacute;n de C/N fue 20, con mayor producci&oacute;n de biopol&iacute;mero de 0,62 g/L, la cual es bastante significativa al ser comparada con la producci&oacute;n reportada por autores de 0,28 g/L de sustrato &#91;12&#93;.</p>      <p><b>Prueba de turbidez.</b> Durante esta prueba se estableci&oacute; que durante las primeras 8 horas de fermentaci&oacute;n la bacteria se adapta al medio MSM iniciando su fase exponencial y el consumo de sustrato, al tiempo empieza la acumulaci&oacute;n del biopol&iacute;mero (<a href="#g_01">Figura 1</a>) debido a la limitaci&oacute;n del nitr&oacute;geno y el exceso de glucosa como fuente de carbono presente en el medio.</p>      <p>    <center><a name="g_01"></a><img src="img/revistas/bsaa/v14n1/v14n1a03g01.jpg"></center></p>      <p><b>T&eacute;cnica de n&uacute;mero m&aacute;s probable.</b> En las diferentes relaciones C/N, se inici&oacute; con una concentraci&oacute;n celular de 7,67x10<sup>6</sup> cel/mL, al cabo de las 20 horas cuando se inicia la fase estacionaria el n&uacute;mero m&aacute;ximo de c&eacute;lulas generadas es de 9,00x10<sup>9</sup> cel/mL luego de este tiempo, la cantidad de c&eacute;lulas viables se mantuvo y descendi&oacute; paulatinamente, tal como se observa en la <a href="#g_02">Figura 2</a>.</p>      <p>    <center><a name="g_02"></a><img src="img/revistas/bsaa/v14n1/v14n1a03g02.jpg"></center></p>      <p><b>Determinaci&oacute;n de consumo de sustrato mediante DNS.</b> Luego de 20 horas de fermentaci&oacute;n, la bacteria inicia la fase estacionaria en la cual se di&oacute; un equilibrio entre las bacterias generadas y las c&eacute;lulas no viables, por tal raz&oacute;n las bacterias que permanecen, consumen la fuente de carbono r&aacute;pidamente con el fin de sobrevivir y generar reservas en su organismo (PHA). Como se evidencia en la <a href="#g_03">Figura 3</a>, a las 36 horas persiste la glucosa en el medio, sin embargo la turbidez muestra que la bacteria lleva 16 horas en fase estacionaria, lo cual indica que si se contin&uacute;a con el proceso de fermentaci&oacute;n es posible que la R. eutropha empiece a utilizar las reservas que tiene en su organismo para sobrevivir, lo cual no es conveniente, ya que las reservas de la bacteria son el material polim&eacute;rico que se desea obtener.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="g_03"></a><img src="img/revistas/bsaa/v14n1/v14n1a03g03.jpg"></center></p>      <p><b>Caracterizaci&oacute;n t&eacute;rmica</b></p>      <p>El polihidroxialcanoato extra&iacute;do y purificado presenta un color opaco atribuido al tipo de sustrato utilizado en su obtenci&oacute;n y al tipo de cristalinidad. El resultado de la calorimetr&iacute;a diferencial de barrido se muestra en la <a href="#g_04">Figura 4</a>. La totalidad de las muestras presentaron una temperatura de transici&oacute;n v&iacute;trea alrededor 146&deg;C con lo cual se deduce la presencia de un pol&iacute;mero, al realizar la comparaci&oacute;n con lo reportado en la literatura &#91;13&#93;. Se observa que el material obtenido es similar a polihidroxibutirato, uno de los tipos m&aacute;s conocidos de polihidroxialcanoatos.</p>      <p>    <center><a name="g_04"></a><img src="img/revistas/bsaa/v14n1/v14n1a03g04.jpg"></center></p>      <p>El termograma permiti&oacute; encontrar la temperatura de fusi&oacute;n del polihidroxibutirato, integrando el &aacute;rea bajo la curva se encontr&oacute; que la temperatura de fusi&oacute;n del biopol&iacute;mero fue de 168,58&deg;C, correspondiente a P(3HB), el cual tiene una temperatura de fusi&oacute;n de 170&deg;C, como se observa en la <a href="#g_05">Figura 5</a>, la l&iacute;nea negra representa el DSC para un patr&oacute;n  de PHB. Este resultado se atribuye al tipo de microorganismo empleado.</p>      <p>    <center><a name="g_05"></a><img src="img/revistas/bsaa/v14n1/v14n1a03g05.jpg"></center></p>      <p>El an&aacute;lisis termogravim&eacute;trico o TGA (<a href="#g_06">Figura 6</a>) muestra las temperaturas de descomposici&oacute;n debido a la tensi&oacute;n t&eacute;rmica, el polihidroxibutirato obtenido, arroj&oacute; como resultado que el biopol&iacute;mero presenta una temperatura de descomposici&oacute;n de 274,12&deg;C, con una curva en ca&iacute;da que comienza a 245&deg;C y termina en 410&deg;C, en la curva no se muestra picos u hombros diferentes a lo esperado ni reportado hasta el momento, por lo tanto, se deduce que es inexistente la presencia de impurezas o compuestos ajenos al PHB. La temperatura de descomposici&oacute;n de los PHBs se encuentra a 277&deg;C, temperatura similar con la obtenida experimentalmente, la poca variaci&oacute;n que existe se debe al tipo de microorganismo utilizado y a la complejidad del sustrato &#91;14&#93;.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>    <center><a name="g_06"></a><img src="img/revistas/bsaa/v14n1/v14n1a03g06.jpg"></center></p>      <p><b>Caracterizaci&oacute;n estructural</b></p>      <p>En la <a href="#g_07">Figura 7</a> se presenta el espectro FTIR del PHB, el cual muestra las bandas m&aacute;s importantes para biopol&iacute;mero a 1726 cm<sup>-1</sup>, teniendo caracter&iacute;sticas similares del estiramiento del enlace C=O en compuestos org&aacute;nico (carbon&iacute;licos), adem&aacute;s se observaron una serie de bandas intensas entre 1000 y 1300 cm<sup>-1</sup>, producidas por estiramiento del enlace C-O del grupo &eacute;ster, los cuales conforman los mon&oacute;meros de &eacute;steres. Asimismo, se presentaron bandas intensas a 1456 cm<sup>-1</sup>; debida a la deformaci&oacute;n asim&eacute;trica del enlace CH3, las otras bandas en el rango de 1000 a 1500 cm<sup>-1</sup> son ocasionadas  por vibraciones o al estiramiento del enlace CH2, se observ&oacute; adem&aacute;s una banda ancha entre 3000 y 3300 cm<sup>-1</sup>, ocasionada por mol&eacute;culas de agua &#91;9&#93;.</p>      <p>    <center><a name="g_07"></a><img src="img/revistas/bsaa/v14n1/v14n1a03g07.jpg"></center></p>      <p>El an&aacute;lisis de las muestras obtenidas por FTIR permiti&oacute; confirmar el material obtenido es PHB, debido a las coincidencias que se encontraron en las bandas caracter&iacute;sticas del biopol&iacute;mero con los hallazgos de otros investigadores, adem&aacute;s, coincidi&oacute; con el an&aacute;lisis de la caracterizaci&oacute;n t&eacute;rmica &#91;15, 16&#93;.</p>       <p>La prueba de Microscopia electr&oacute;nica de barrido (SEM), permiti&oacute; determinar, la forma, tama&ntilde;o y distribuci&oacute;n del material lo cual es &uacute;til para seguir una cin&eacute;tica de formaci&oacute;n, dispersi&oacute;n y compatibilidad de las fases presentes y estudios de degradaci&oacute;n del biopol&iacute;mero. En la <a href="#g_08">Figura 8</a>, se muestra la microfotograf&iacute;a del polihidroxibutirato obtenido por medio de fermentaci&oacute;n a partir de hidrolizado de  harina de yuca, donde se aprecian los granos de PHB de forma sim&eacute;trica, con un tama&ntilde;o aproximado de 1-2&micro;m de longitud, fusionados entre s&iacute; formando una matriz polim&eacute;rica dispersa.</p>      <p>    <center><a name="g_08"></a><img src="img/revistas/bsaa/v14n1/v14n1a03g08.jpg"></center></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <p><b><font size="3">CONCLUSIONES</font></b></p>      <p>Mediante el proceso de hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica, para la obtenci&oacute;n de jarabe de glucosa a partir de harina de yuca, se logr&oacute; obtener un equivalente de dextrosa del 79&#37;, corroborando el alto para el establecimiento y crecimiento de la bacteria en el medio de fermentaci&oacute;n.</p>      <p>La producci&oacute;n de PHA utilizando jarabe de glucosa, se di&oacute; en mayor proporci&oacute;n al emplear una relaci&oacute;n carbono/nitr&oacute;geno de 20, con la cual se obtuvieron 0,62 g/L del biopol&iacute;mero, una cantidad considerable ya que en otras investigaciones se reportan valores de hasta 0,28 g/L.</p>      <p>El pol&iacute;mero sintetizado por R. eutropha, usando como fuente de carbono hidrolizado de harina de yuca es un tipo PHA, el cual fue caracterizado por calorimetr&iacute;a de barrido diferencial y espectroscop&iacute;a de infrarrojo, con lo que se puede concluir que es del tipo polihidroxibutirato.</p>     <br>      <p><b><font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b></p>      <p>A la Universidad del Cauca y al Departamento Administrativo de Ciencia, Tecnolog&iacute;a e Innovaci&oacute;n (Colciencias).</p>      <br>     <p><b><font size="3">REFERENCIAS</font></b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>&#91;1&#93; BETANCUR, M. y AGUDELO, L.M. Producci&oacute;n de biopol&iacute;meros (polihidroxialcanoatos - PHAs) a partir de una cepa comercial empleando sustratos no convencionales &#91;Tesis Maestr&iacute;a en Ingenier&iacute;a&#93;. Medell&iacute;n (Colombia): Universidad de Antioquia, Facultad de Ingenier&iacute;a, 2011, 103 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=585416&pid=S1692-3561201600010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;2&#93; SERRANO, J. Polihidroxialcanoatos (PHAs): Biopol&iacute;meros producidos por microorganismos, una soluci&oacute;n frente a la contaminaci&oacute;n del medio ambiente. Teor&iacute;a y praxis investigativa, 5(2), 2010, p. 79-84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=585418&pid=S1692-3561201600010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;3&#93; MEDINA, R. Pl&aacute;sticos Biodegradables &#91;online&#93;. 2005. Disponible: <a href"http://www.cientec.or.cr/ambiente/pdf/plasticos_biodegradables2005-CIENTEC.pdf" target="_blank">http://www.cientec.or.cr/ambiente/pdf/plasticos_biodegradables2005-CIENTEC.pdf</a>. &#91;citado 10 de marzo de 2015&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=585420&pid=S1692-3561201600010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;4&#93; ALARCON, F. y DUFOUR, D. Almid&oacute;n agrio de yuca en Colombia &#91;online&#93;. 2002. Disponible: <a href"http://webapp.ciat.cgiar.org/agroempresas/pdf/almidon_agrio_1.pdf" target="_blank"> http://webapp.ciat.cgiar.org/agroempresas/pdf/almidon_agrio_1.pdf</a>. &#91;Citado Septiembre 10 de 2015&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=585422&pid=S1692-3561201600010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</p>      <!-- ref --><p>&#91;5&#93; SIMIONE, F. Cryopreservation manual.  New York (USA): Nalge Nunc International Corp., 1998.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=585424&pid=S1692-3561201600010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>&#91;6&#93; BEN&Iacute;TEZ. R, et al. Hidrolizados de prote&iacute;na: procesos y aplicaciones. Acta Bioqu&iacute;mica Cl&iacute;nica Latinoamericana, 42(2), 2008, p. 27-36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=585426&pid=S1692-3561201600010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;7&#93; MILLER G.L. Use of Dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar.  Analytical Chemistry, 31, 1959, p. 426-428.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=585428&pid=S1692-3561201600010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;8&#93; S.A. Enumeraci&oacute;n bacteriana: El numero mas probable &#91;online&#93;. 2013. Disponible: <a href="http://www.uprm.edu/biology/profs/massol/manual/p4-nmpenumeracion.pdf" target="_blank">http://www.uprm.edu/biology/profs/massol/manual/p4-nmpenumeracion.pdf</a>. &#91;citado 20 de enero de 2016&#93;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=585430&pid=S1692-3561201600010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>      <!-- ref --><p>&#91;9&#93; ABHISHEK, D.T., SURESH, K.S. and RAVI, P.S. Statistical optimization of physical process variables for bio-plastic (PHB) production by Alcaligenes sp. Biomass and bioenergy, 55, 2013, p. 243– 250.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=585432&pid=S1692-3561201600010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      <!-- ref --><p>&#91;10&#93; PATNAIK P. Enhancement of PHB biosynthesis by ralstonia eutropha in fed-batch cultures by neural filtering and control. Food and Bioproducts Processing, 84, 2012, p. 150–156.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=585434&pid=S1692-3561201600010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>      ]]></body>
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