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<publisher-name><![CDATA[Editorial Universidad del Rosario]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Biocirugía: utilización de larvas de insectos necrófagos en la curación de heridas. La terapia larval]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Biosurgery: using necrophagous larvae for healing wounds. Larval therapy]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Larval therapy is a technique that allows the use of larva of some diptera species on chronic wounds or localized infected focuses, in order to promote the affected tissue restoration. The treatment velocity and efficacy, with almost no healthy tissue loses during the process, have made larval therapy (sometimes called biosurgery) a viable alternative for healing wounds associated with entities as diabetic foot, venous ulcers, cutaneous chronic ulcers and burns, and some benign tumors, abscesses and osteomyelitis. Although modern medicine has been, in many cases, reticent on the application of this kind of therapies, events as antibiotic resistance and alterations in cicatrization process in chronic wounds, have modified the respective initial point of view of many doctors.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="3">    <p align="center"><b>Biocirug&iacute;a: utilizaci&oacute;n de larvas de insectos necr&oacute;fagos en la curaci&oacute;n de heridas. La terapia larval</b></p></font> <font face="Verdana" size="2">    <p align="center"><b><i>Biosurgery: using necrophagous larvae  for healing wounds. Larval therapy</i></b></p>     <p>Magda Carolina S&aacute;nchez*, Lili&aacute;n Chuaire**, Ra&uacute;l Narv&aacute;ez***, Nidya Alexandra Segura****</p>     <p>* Licenciada en qu&iacute;mica e instructora asociada del Instituto de Ciencias B&aacute;sicas, Facultad de Medicina, Universidad del Rosario. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:mcsanche@urosario.edu.co">mcsanche@urosario.edu.co</a>.    <br> ** MSc, profesora asistente del Instituto de Ciencias B&aacute;sicas, Facultad de Medicina, Universidad del Rosario. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:lchuaire@urosario.edu.co">lchuaire@urosario.edu.co</a>.    <br> *** M&eacute;dico, MSc e instructor asistente del Instituto de Ciencias B&aacute;sicas, Facultad de Medicina, Universidad del Rosario. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:rnarvaez@claustro.urosario.edu.co">rnarvaez@claustro.urosario.edu.co</a>.    <br> **** Licenciada en biolog&iacute;a y joven investigadora Colciencias del Instituto de Ciencias B&aacute;sicas, Facultad de Medicina, Universidad del Rosario. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:alexandrasegura@yahoo.es">alexandrasegura@yahoo.es</a>.</p>     <p>Recibido: junio de 2004 Aceptado: julio de 2004</p> <hr>     <p><b>Resumen</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La terapia larval es una t&eacute;cnica que permite aplicar las larvas de algunas especies de d&iacute;pteros sobre heridas cr&oacute;nicas o sobre focos de infecci&oacute;n localizados, con la finalidad de restaurar el tejido afectado. La velocidad y la eficacia del tratamiento, sumadas a la casi nula p&eacute;rdida de tejido sano durante el proceso de reparaci&oacute;n tisular, han hecho de la terapia larval o biocirug&iacute;a una alternativa viable para la curaci&oacute;n de heridas asociadas con entidades como pie diab&eacute;tico, &uacute;lceras venosas, &uacute;lceras cr&oacute;nicas de la piel y quemaduras, as&iacute; como de ciertos tipos de tumores benignos, abscesos y osteomielitis. Aunque la medicina moderna ha sido, en muchos casos, reticente a la aplicaci&oacute;n de terapias de esta &iacute;ndole, eventos como la resistencia a los antibi&oacute;ticos y las alteraciones en el proceso de cicatrizaci&oacute;n en las heridas cr&oacute;nicas han permitido modificar la posici&oacute;n inicial de muchos m&eacute;dicos al respecto.</p>     <p><b>Palabras clave:</b>  insectos, cirug&iacute;a, terapia, historia, larva.</p>     <p><b>Abstract</b></p>     <p>Larval therapy is a technique that allows the use of larva of some diptera species on chronic wounds or localized infected focuses, in order to promote the affected tissue restoration. The treatment velocity and efficacy, with almost no healthy tissue loses during the process, have made larval therapy (sometimes called biosurgery) a viable alternative for healing wounds associated with entities as diabetic foot, venous ulcers, cutaneous chronic ulcers and burns, and some benign tumors, abscesses and osteomyelitis.</p>     <p>Although modern medicine has been, in many cases, reticent on the application of this kind of therapies, events as antibiotic resistance and alterations in cicatrization process in chronic wounds, have modified the respective initial point of view of many doctors.</p>     <p><b>Key words:</b>  Insects, surgery, therapy, history, larva.</p> <hr>     <p><b>HISTORIA DE LA TERAPIA LARVAL</b></p>     <p>La utilizaci&oacute;n de larvas de insectos en la curaci&oacute;n de heridas data de &eacute;pocas inmemoriales. Sus efectos ben&eacute;ficos en la curaci&oacute;n de heridas han sido reportados en libros tan antiguos como la Biblia (Job 7:5) y el <i>Hortus sanitatus</i>, manual m&eacute;dico publicado en Maguncia, Alemania, en 1491.</p>     <p>En algunas sociedades primitivas, como las tribus Ngemba de Nuevo Gales, Australia (1), y los indios Mayas en Centroam&eacute;rica, se acostumbraba aplicar las larvas de ciertas moscas sobre tumores superficiales y heridas gangrenadas. Al cabo de unos d&iacute;as, cuando las lesiones sanaban, las larvas eran retiradas (1-2).</p>     <p>En 1557, Ambroise Par&eacute;, m&eacute;dico personal de Carlos IX y Henry II, observ&oacute; los efectos ben&eacute;ficos de los gusanos cuando eran aplicados sobre las lesiones de los soldados heridos en combate. Seg&uacute;n los relatos de las guerras napole&oacute;nicas (2) y de la Guerra Civil estadounidense (3), cuando los soldados llegaban al hospital despu&eacute;s de permanecer m&aacute;s de siete d&iacute;as en el campo de batalla, sus heridas no s&oacute;lo se encontraban llenas de gusanos, sino que, sorprendentemente, las zonas circundantes presentaban tejido de granulaci&oacute;n y una regeneraci&oacute;n de cerca de un 75% a un 80%.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Sin embargo, el verdadero pionero del uso de las larvas para el tratamiento de heridas fue William Baer, profesor de ortopedia en la Escuela de Medicina Johns Hopkins, de Maryland (4). En su &eacute;poca de estudiante, durante la Primera Guerra Mundial, el doctor Baer atendi&oacute; soldados con heridas que sanaron r&aacute;pidamente. La caracter&iacute;stica principal de las lesiones era el estar infestadas de gusanos. Bas&aacute;ndose en estas observaciones, el doctor Baer trat&oacute; a cuatro ni&ntilde;os con osteomielitis y a m&aacute;s de setenta pacientes con &uacute;lceras cr&oacute;nicas en las piernas (5-6). Infortunadamente, como las larvas no eran est&eacute;riles, algunos de sus pacientes contrajeron t&eacute;tanos. Este hecho hizo que, en los a&ntilde;os siguientes, se dedicara a desarrollar un m&eacute;todo eficaz para producir larvas est&eacute;riles (7). Una vez lo consigui&oacute;, el uso de la terapia larval se difundi&oacute; r&aacute;pidamente, y existen reportes de su utilizaci&oacute;n en m&aacute;s de 300 hospitales de Estados Unidos y Canad&aacute; (8).</p>     <p>Hacia los a&ntilde;os cuarenta, con la aparici&oacute;n de las sulfamidas y de la penicilina, por una parte, y de t&eacute;cnicas quir&uacute;rgicas novedosas, por otra, la terapia larval cay&oacute; en desuso (5, 9-10). En los a&ntilde;os ochenta la utilizaci&oacute;n de larvas fue retomada por el doctor Ronald Sherman, de la Universidad de California, quien las aplic&oacute; en pacientes con &uacute;lceras cr&oacute;nicas, motivado por la escasa eficacia de los tratamientos convencionales sobre este tipo de lesiones (4). Otro factor que incidi&oacute; en el retorno a dicha terapia fue la aparici&oacute;n de la resistencia a los antibi&oacute;ticos por parte de ciertas bacterias como el <i>Staphylococcus aureus</i>  (11-13).</p>     <p>En los &uacute;ltimos a&ntilde;os se ha popularizado de tal manera la terapia larval que algunas compa&ntilde;&iacute;as dedicadas a la producci&oacute;n de insumos para laboratorio est&aacute;n cultivando y comercializando las larvas est&eacute;riles de la mosca <i>Lucilia sericata</i>, una de las especies m&aacute;s utilizadas en biocirug&iacute;a. En la actualidad, la terapia larval es de uso habitual en pa&iacute;ses como Israel, Alemania, Suiza, Suecia, Australia, Ucrania, Tailandia, Canad&aacute;, M&eacute;xico, Brasil y Per&uacute; (14-16).</p>     <p><b>SELECCI&Oacute;N DE ESPECIES PARA LA TERAPIA LARVAL</b></p>     <p>No todas las especies de insectos necr&oacute;fagos son aptas para la terapia larval. No obstante, debido a su amplia distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica y a su eficacia terap&eacute;utica, <i>Lucilia sericata</i>  es la especie necr&oacute;faga m&aacute;s usada en la cl&iacute;nica (17-18). Su ciclo de vida comprende cuatro estados: huevo, etapa larval (a su vez con tres estados o instares), pupa y forma adulta (<a href="#f1">Figura 1</a>).</p>     <p><b><a name="f1"></a>Figura 1</b>. <b>Ciclo de vida de<i>Lucilia sericata</i></b></p>     <p><img src="/img/revistas/recis/v2n2/v2n2a6f1.jpg"></p>     <p>La mosca adulta presenta una coloraci&oacute;n verde met&aacute;lico. Esta especie es una de las primeras colonizadoras de los tejidos en descomposici&oacute;n. Frecuentemente la mosca deposita sus huevos en las heridas o en los orificios naturales de los cad&aacute;veres. Los huevos son de color crema, miden aproximadamente dos mil&iacute;metros de longitud y siempre se agrupan para formar una masa. El primer estado se inicia entre las 18 y 24 horas despu&eacute;s de la colonizaci&oacute;n, cuando los huevos eclosionan. La secreci&oacute;n de enzimas proteol&iacute;ticas comienza cuando la larva empieza a alimentarse (19). Debido a su fototropismo negativo, las larvas se concentran en los agujeros del cuerpo y se desplazan sobre el tejido, gracias a la ayuda de los ganchos presentes en su aparato bucal, que usualmente utilizan para alimentarse. En este momento alcanzan el segundo estado. Durante el tercer estado, de tres a cinco d&iacute;as de duraci&oacute;n (var&iacute;a de acuerdo con la temperatura), la larva alcanza una longitud de ocho a diez cent&iacute;metros, y se convierte en pupa. En este estado no se alimentan y se esconden en la tierra, desde donde emergen como moscas adultas, en un per&iacute;odo de dos a cuatro semanas, seg&uacute;n las condiciones medioambientales.</p>     <p>Cuando se desea tratar una herida mediante la terapia larval, las larvas est&eacute;riles de primer estado son depositadas sobre la lesi&oacute;n (20-21). Tres d&iacute;as despu&eacute;s, las larvas son retiradas e incineradas con el fin de evitar contaminaci&oacute;n.</p>     <p><b>CICATRIZACI&Oacute;N NORMAL DE LAS HERIDAS</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Durante la cicatrizaci&oacute;n normal de las heridas ocurren fen&oacute;menos complejos de quimiotaxis, divisi&oacute;n celular, neovascularizaci&oacute;n, s&iacute;ntesis de componentes de una nueva matriz extracelular, as&iacute; como de formaci&oacute;n y remodelaci&oacute;n del tejido cicatrizal. El proceso es regulado por la acci&oacute;n de ciertos mediadores solubles, como factores de crecimiento, citocinas y metaloproteinasas de la matriz extracelular (22), y culmina con la reparaci&oacute;n de los tejidos lesionados.</p>     <p>El proceso de cicatrizaci&oacute;n comprende cuatro fases: hemostasis, inflamaci&oacute;n, proliferaci&oacute;n y remodelaci&oacute;n. La hemostasis comienza con la aparici&oacute;n de la herida. Inicialmente, en el &aacute;rea afectada se produce vasoconstricci&oacute;n y despu&eacute;s de algunos minutos ocurre la vasodilataci&oacute;n y la agregaci&oacute;n plaquetaria. A continuaci&oacute;n, las plaquetas se disgregan y comienzan a secretar diversas sustancias. &Eacute;stas incluyen mediadores necesarios para la formaci&oacute;n del co&aacute;gulo de fibrina, factores de crecimiento —factor de crecimiento plaquetario (PDGF), factor de crecimiento insul&iacute;nico tipo 1 (IGF-1), factor de crecimiento epid&eacute;rmico (EGF) y factor de crecimiento transformante &acirc; (TGF-&acirc;)—, as&iacute; como ciertos factores quimiot&aacute;cticos que atraen a los neutr&oacute;filos y a los macr&oacute;fagos hacia la herida. Una vez estas c&eacute;lulas emigran hacia el sitio de la lesi&oacute;n, comienzan a fagocitar bacterias y a retirar el tejido necr&oacute;tico. Adem&aacute;s, inducen la formaci&oacute;n de tejido de reparaci&oacute;n mediante la secreci&oacute;n de factores como el factor de crecimiento transformante &aacute; (TGF-&aacute;), el factor de crecimiento epid&eacute;rmico ligado a la heparina (HB-EGF) y el factor de crecimiento fibrobl&aacute;stico. Los fibroblastos, adem&aacute;s de estimular a&uacute;n m&aacute;s este proceso inflamatorio, tambi&eacute;n secretan enzimas proteol&iacute;ticas de tipo metaloproteinasas y serinproteinasas, que act&uacute;an como facilitadoras de la conducta fagoc&iacute;tica de los neutr&oacute;filos y de los macr&oacute;fagos (23).</p>     <p>En la fase de proliferaci&oacute;n, la continua secreci&oacute;n de factores de crecimiento y de factores quimiot&aacute;cticos estimula la migraci&oacute;n de las c&eacute;lulas epiteliales y endoteliales, de macr&oacute;fagos, de queratinocitos y de fibroblastos hacia la zona de la lesi&oacute;n, donde estas c&eacute;lulas inician procesos de mitosis. En esta etapa, los fibroblastos secretan col&aacute;geno y elastina, as&iacute; como los componentes amorfos de la matriz (24). La matriz provisional toma forma cuando aparecen nuevos vasos sangu&iacute;neos, gracias a la acci&oacute;n del factor de crecimiento endotelial (VEGF) (25). A continuaci&oacute;n, el tejido comienza a sufrir un proceso de remodelaci&oacute;n. Los fibroblastos contin&uacute;an con su secreci&oacute;n de los componentes formes y amorfos de la matriz extracelular, mientras que los vasos reci&eacute;n formados invaden la herida y se organizan en un entramado microvascular que atraviesa al tejido de granulaci&oacute;n. A medida que se acumula el col&aacute;geno en el tejido de granulaci&oacute;n, la densidad de la red microvascular disminuye. Por otro lado, los fibroblastos secretan metaloproteinasas y serinproteinasas, coadyuvantes en la remodelaci&oacute;n y la formaci&oacute;n de la cicatriz madura (26).</p>     <p>En este orden de ideas, la cicatrizaci&oacute;n ser&aacute; un proceso que equilibra la degradaci&oacute;n de la matriz lesionada y la s&iacute;ntesis de nueva matriz y donde uno de los mayores protagonistas es el fibroblasto. La fase de remodelaci&oacute;n puede durar varios meses, al cabo de los cuales aparece la cicatriz madura.</p>     <p><b>CICATRIZACI&Oacute;N DE LAS HERIDAS CR&Oacute;NICAS</b></p>     <p>En las heridas cr&oacute;nicas, el proceso de cicatrizaci&oacute;n est&aacute; alterado en una o m&aacute;s de sus fases (27), generalmente en la inflamatoria o en la proliferativa. Hallazgos recientes han demostrado que en este tipo de heridas la concentraci&oacute;n de citocinas proinflamatorias est&aacute; elevada, mientras que la actividad mit&oacute;tica se encuentra disminuida con relaci&oacute;n a la encontrada en pacientes con heridas de cicatrizaci&oacute;n normal (28-30). Otros estudios han revelado que los radicales libres derivados del ox&iacute;geno son los responsables de fen&oacute;menos indeseables asociados con las heridas cr&oacute;nicas como la ulceraci&oacute;n venosa y la resistencia a la cicatrizaci&oacute;n (31). As&iacute; es como el &oacute;xido n&iacute;trico (NO), cuando se combina con radicales libres hidroxilados, forma un compuesto llamado peroxinitrato, que causa destrucci&oacute;n tisular y que cuando est&aacute; presente en las &uacute;lceras venosas provoca retardo en la curaci&oacute;n, pues interfiere de modo importante con procesos como la angiogenia, la fase inflamatoria y el dep&oacute;sito de col&aacute;geno (32).</p>     <p>Otro aspecto que se debe tener en cuenta en el tratamiento de las heridas cr&oacute;nicas es la incapacidad de las c&eacute;lulas para responder adecuadamente a los reguladores moleculares. Las investigaciones han demostrado que los fibroblastos presentes en las &uacute;lceras de piel resistentes a la cicatrizaci&oacute;n no responden ante factores de crecimiento de tipo PDF y TGF (33). Por otra parte, las c&eacute;lulas localizadas en &uacute;lceras venosas que persisten durante tres a&ntilde;os o m&aacute;s se multiplican m&aacute;s lentamente y algunas se vuelven senescentes (34-35).</p>     <p>Los hechos descritos hacen que las terapias utilizadas para la cicatrizaci&oacute;n de heridas cr&oacute;nicas derivadas de la diabetes, la insuficiencia vascular o la isquemia est&eacute;n enfocadas hacia la eliminaci&oacute;n de las barreras locales que impiden la reparaci&oacute;n tisular.</p>     <p><b>Mecanismo de acci&oacute;n larval</b></p>     <p>En las heridas, las larvas act&uacute;an mediante la ejecuci&oacute;n de tres funciones primordiales, a saber:</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<li>Limpieza del tejido necr&oacute;tico.</li>     <li>Eliminaci&oacute;n de bacterias y microorganismos.</li>     <li>Estimulaci&oacute;n del crecimiento del tejido de granulaci&oacute;n.</li>     <p>El tejido necr&oacute;tico presente en una herida cr&oacute;nica es generalmente el producto de un inadecuado aporte sangu&iacute;neo local. Contiene c&eacute;lulas muertas o no viables, y est&aacute; asociado con material purulento, fibrina y otras prote&iacute;nas. Tales caracter&iacute;sticas determinan que el tejido necr&oacute;tico sea un promotor de la colonizaci&oacute;n de bacterias y que retarde e incluso evite la cicatrizaci&oacute;n de la herida. Las larvas necr&oacute;fagas act&uacute;an mediante un proceso de digesti&oacute;n extracorp&oacute;rea del tejido muerto. Ellas secretan enzimas proteol&iacute;ticas como colagenasa, tripsina y quimotripsina, que digieren la matriz extracelular e incrementan el grado de oxigenaci&oacute;n tisular (16-17) de manera que el tejido necr&oacute;tico es eliminado.</p>     <p>Se ha comprobado que las larvas promueven la desinfecci&oacute;n de las heridas por medio de dos mecanismos:</p>     <li>Dentro del intestino larval se aloja el comensal <i>Proteus mirabilis</i>, que secreta &aacute;cido fenilac&eacute;tico y fenilacetaldeh&iacute;do, compuestos de reconocida acci&oacute;n antimicrobiana (36).</li>     <li>Las larvas secretan hacia el medio ambiente externo amoniaco y algunos de sus derivados, como el bicarbonato de amonio, que elevan el pH por encima de 7, lo que permite la eliminaci&oacute;n de las bacterias (37-38).</li>     <p>Una vez efectuada la limpieza y la preparaci&oacute;n de la herida para la remodelaci&oacute;n, son activados los fibroblastos y las c&eacute;lulas endoteliales, de modo que se forma una matriz provisional y, por lo tanto, un tejido de granulaci&oacute;n. Estos eventos determinan tanto el progreso de la cicatrizaci&oacute;n como su culminaci&oacute;n, representada por la curaci&oacute;n total de la herida (39-40).</p>     <p><b>CONCLUSIONES</b></p>     <p>La terapia larval constituye una estrategia terap&eacute;utica bien documentada, destinada a solucionar problemas cl&iacute;nicos asociados con ciertas alteraciones moleculares y del entorno celular, que impiden o retrasan la cicatrizaci&oacute;n de las heridas cr&oacute;nicas. Debido a que reduce la carga bacteriana y es eficaz en el control del exudado, favorece la resoluci&oacute;n de los procesos celulares y bioqu&iacute;micos que se encuentran alterados. Las larvas no s&oacute;lo digieren bacterias, sino tambi&eacute;n combaten infecciones causadas por g&eacute;rmenes resistentes a los antibi&oacute;ticos. Adicionalmente, secretan enzimas digestivas al medio ambiente externo e incrementan el pH, de modo que permiten la oxigenaci&oacute;n del tejido y estimulan a los fibroblastos y a las c&eacute;lulas endoteliales con el fin de formar tejido de granulaci&oacute;n.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La aplicaci&oacute;n de la terapia larval presenta beneficios que la han convertido en una opci&oacute;n terap&eacute;utica muy valorada, pues permite una r&aacute;pida eliminaci&oacute;n de la infecci&oacute;n, as&iacute; como limpieza y control del olor eficaces. Otras ventajas son su bajo costo, la ausencia de efectos secundarios y su pr&aacute;ctica ambulatoria. Sin embargo, a pesar de sus bondades, algunos pacientes rechazan la aplicaci&oacute;n de la terapia, debido al escozor que producen las larvas en las heridas, o bien a una valoraci&oacute;n psicol&oacute;gica negativa, por lo que ellos consideran una t&eacute;cnica con caracter&iacute;sticas est&eacute;ticas indeseables. Por este motivo, es necesario informar claramente al paciente sobre los detalles de la terapia y su probada eficacia. Igualmente, deben divulgarse sus excelentes resultados a toda la comunidad, para que &eacute;sta pueda tomarla en cuenta sin prejuicios de ninguna &iacute;ndole.</p>     <p>Otro aspecto poco difundido de la terapia larval es su aplicaci&oacute;n en la veterinaria, especialmente en el ganado vacuno y equino. Usualmente las heridas del ganado son tratadas con antibi&oacute;ticos, de manera que cuando se producen fen&oacute;menos de resistencia a los antibi&oacute;ticos, &eacute;sta puede ser transmitida a los consumidores de carne o de leche y sus derivados. En los caballos, por ejemplo, el uso de los antibi&oacute;ticos contribuye a la p&eacute;rdida de la flora bacteriana y como resultado produce colitis, una de las enfermedades equinas m&aacute;s frecuentes.</p> <hr>     <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>1. Dunbar GK. Notes on the Ngemba tribe of the Central Darling River of Western New South Wales. Mankind 1944;3(5).&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S1692-7273200400020000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Weil GC, Simon RJ, Sweadner WR. A biological, bacteriological and clinical study of larval or maggot therapy in the treatment of acute and chronic pyogenic infections. Am J Surg 1933;19:36-46.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S1692-7273200400020000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Thomas S, Jones M, Shutler S, Andrews A. Making friends with maggots. Nursing Times 1996;92(5):76-82.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S1692-7273200400020000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Sherman RA, Wyle F, Vulpe M, Leuse L, Castillo L. The utility of maggot therapy for treating chronic wounds. Am J Trop Med Hyg 1993;49(Suppl):266.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S1692-7273200400020000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Baer WS. The treatment of chronic osteomyelitis with the maggot (larva of the blow fly). J Bone Joint Surg 1931;13:438-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S1692-7273200400020000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Livingston SK, Prince LH. The treatment of chronic osteomyelitis with special reference to the use of the maggot active principle. J American Med Ass 1932;98:1145-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S1692-7273200400020000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Robinson W, Norwood VH. The role of surgical maggots in the disinfection of osteomyelitis and other infected wounds. J Bone Joint Surg 1933;15:409-12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S1692-7273200400020000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Mulder JB. The medical marvels of maggots. JAMA 1989;195:1497-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S1692-7273200400020000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Stewart MA. The role of Lucilia sericata meig: larvae in osteomyelitis wounds. Ann Trop Med Parasitol 1934;28:445-60.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S1692-7273200400020000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Thomas S, Jones M, Shutler S, Jones S. Using larvae in modern wound management. J Wound Care 1996;5(2):60-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S1692-7273200400020000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Thomas S, Andrews A, Jones M. Maggot are useful in treating infected or necrotic wounds. Br Med J 1999;318(7186):807.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S1692-7273200400020000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Mumcuoglu KY, Lipo M, Ioffe-Uspensky I, Miller J, Turkeltaub I. Maggot therapy for the treatment of gangrene and osteomyelitis. Herefuah 1997;132(5):323-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S1692-7273200400020000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Sherman RA. Maggot therapy for treating diabetic foot ulcers unresponsive to conventional therapy. Diabetes Care 2003;26(2):446-51.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S1692-7273200400020000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Mumcuoglu KY, Ingber A, Gilead L, Stessman J, Friedmann R, Bichucher H et al. Maggot therapy for the treatment of intractable wounds. Diabetes Care 1998;21(11):2030-1.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S1692-7273200400020000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Mumcuoglu KY, Miller J, Mumcuoglu M, Friger M, Tarshis M. Destruction of bacteria in the digestive tract of the maggot of Lucilia sericata (Diptera: Calliphoridae). J Med Entomol 2001;38(2):161-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S1692-7273200400020000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Sherman RA, Pechter EA. Maggot therapy: a review of the therapeutic applications of fly larvae in human medicine, especially for treating osteomyelitis. Med Vet Entomol 1988;2(5):225-30.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S1692-7273200400020000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Leclercq M. Utilisation de larves de Dipteres —maggot therapy— en medicine: Historique et actualit&eacute;. Bull Inst R Sci Nat Belg Ent 1990; 126:41-50.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S1692-7273200400020000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Vistnes LM, Lee RK, Sander GA. Proteolytic activity of blowfly larvae secretions in experimental burns. Surgery 1981;90(5):835-41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S1692-7273200400020000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Murdoch FF, Smart TL. A method of producing sterile blowfly larvae for surgical use. United States Naval Medical Bulletin 1931;27(2):406-17.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S1692-7273200400020000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Simmons SW. Sterilization of blowfly eggs. Am J Surg 1934;25:140-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S1692-7273200400020000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Bennett NT, Schultz GS. Growth factors and wound healing: biochemical properties of growth factors and their receptors. Am J Surg 1993;165(6):728-37.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S1692-7273200400020000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Slavin J. Fibroblast growth factors: At the heart angiogenesis. Cell Biol Int 1995;19(5):431-4.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S1692-7273200400020000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Tonnesen MG, Feng X, Clark RA. Angiogenesis in wound healing. J Invest Dermatol Symp Proc 2000;5(1):40-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S1692-7273200400020000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Martin P, Hopkinson Woolley J, McCluskey J. Growth factors and cutaneous wound repair. Prog Growth Factor Res 1992;4(1):25-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S1692-7273200400020000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Overall CM. Regulation of tissue inhibitor of matrix metalloproteinase expression In: Greenwald RA, Golub LM, editors. Inhibition of matrix metalloproteinases: therapeutic potencial. Ann NY Acad Sci 1994;732:51-64.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S1692-7273200400020000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Lazarus GS, Cooper DM, Knighton DR, Margolis DJ, Pecorarp RE, Rodeheaver G. Definitions and guidelines for assessment of wounds and evaluation of healing. Arch Dermatol 1994;130(4):489-93.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S1692-7273200400020000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Barone EJ, Yager DR, Pozez AL, Olutoye OO, Crossland MC, Diegelmann RF et al. Interleukin-1 alpha and collagenase activity are elevated in chronic wounds. Plast Reconstr Surg 1998;102(4):1023-7.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S1692-7273200400020000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Bucalo B, Eaglstein WH, Falanga V. Inhibition of cell proliferation by chronic wound fluid. Wound Repair Regen 1993;1:181-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S1692-7273200400020000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Harris IR, Yee KC, Walters CE, Cunliffe WJ, Kearney JN, Wood EJ et al. Cytokine and protease levels in healing and non-healing chronic venous leg ulcers. Exper Dermatol 1995;4(6):342-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S1692-7273200400020000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Salim AS. The role of oxygen-derived free radicals in the management of venous (varicose) ulceration: a new approach. World J Surg 1991;15(2):264-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S1692-7273200400020000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Abd EL, Aleen SA, Ferguson MWJ, Appleton I, Kairsingh S, Jude EB et al. Expression of nitric oxide synthase isoforms and arginase in normal human skin and chronic venous leg ulcers. J Pathol 2000;191(4):434-42.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S1692-7273200400020000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Agren MS, Steenfos HH, Dabelsteen S, Hansen JB, Dabelsteen E. Proliferation and mitogenic response to PDGF-BB of fibroblasts isolated from chronic leg ulcers is ulcer-age dependent. J Invest Dermatol 1999;112(4):463-9.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S1692-7273200400020000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. M&eacute;ndez MV, Stanley AC, Park HY, Shon K, Phillips T. Fibroblasts cultured from venous ulcers display cellular characteristiscs of senescence. J Vasc Surg 1998;28876-83.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S1692-7273200400020000600033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. M&eacute;ndez MV, Raffetto JD, Phillips T, Park HY, Menzoian JO. The proliferative capacity of neonatal skin fibroblasts is reduced after exposure to venous ulcer wound fluid: a potential mechanism for senescence in venous ulcers. J Vasc Surg 1999;30(4):734-43.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S1692-7273200400020000600034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Erdmann GR, Khalil SK. Isolation and identification of two antibacterial agents produced by strain of Proteus mirabilis isolated from larvae the screwworm. J Med Entomol 1986;23(2):208-11.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S1692-7273200400020000600035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Reames MK, Christensen C, Luce EA. The use of maggots in wound debridement. Ann Plastic Surg 1988;21(4):388-91.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S1692-7273200400020000600036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Fear N. The use of maggots as a new treatment in the community. Nurs Times 2004;100:48-50.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S1692-7273200400020000600037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Sealby N. The use of maggot therapy in the treatment of a malignant foot wound. 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