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<journal-title><![CDATA[Revista Ciencias de la Salud]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Editorial Universidad del Rosario]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Exposición aguda a fentión en juveniles de cachama blanca (Pioroctus brachypomus): efectos tóxicos, cambios en actividad colinesterasa y uso potencial en monitoreo ambiental]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Acute exposure to fenthion in juveniles of white cachama(Piaractus brachypomus): toxic effects, changes in cholinesterase activity and potential use in environmental monitoring]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Exposição aguda a fentião em juvenis de pirapitinga (Piaractus brachypomus): efeitos tóxicos, mudanças na atividade de colinesterase e uso potencial no controle ambiental]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Fenthion is an organophosphate insecticide used worldwide that may pollute waters after its application causing potential problems in public health and poisoning in domestic and wildlife animals. Objective: to evaluate toxic effects, butyrylcholinesterase activity (BChE) and use in environmental monitoring, 34 juveniles of white cachama (Piaractus brachypomus) were distributed in 3 groups (control, 0,13 ppm and 2 ppm fenthion) for 96 h. Materials and methods: fish were exposed in 10-gallon tanks; symptoms, gross lesions post-mortem, viscerosomatic index (VSI) and plasma BChE activity were evaluated. Mean comparisons for each variable among treatments were performed (ANOVA, a=0,05). Results: severe signs were seen in 3 specimens (3/11) of 2 ppm fenthion between 11 and 34 h of exposure. These signs were frantic swimming, muscle tremors and loss of swimming axis. In 0,13 ppm, mild to moderate signs (tremors and caudal fin flapping) were observed in some of the fish. The VSI (control = 5,3 ± 0,5; 0,13 ppm = 6,9 ± 0,3 and 2 ppm = 7,3 ± 0,6) was significantly different between exposed to fenthion and controls. BChE activity (control = 185,0 ± 20,4; 0,13 ppm = 12,5 ± 2,3 and 2 ppm = 9,8 ± 1,8 nmoles / ml plasma / min) showed significant inhibition in exposed to fenthion as compared to controls. Conclusions: the present work confirmed the toxic effects of fenthion in white cachama juveniles. Results found in BChE activity suggest its use in environmental monitoring as a good biomarker of organophosphates waterborne exposure.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[O fentião é um inseticida organofosforado utilizado no mundo todo cuja aplicação pode derivar em contaminação de águas e efeitos potenciais em saúde humana e animal. Objetivos: para avaliar os efeitos tóxicos, a atividade da colinesterase plasmática tipo butirilo (BChE) e o uso potencial em controle ambiental se distribuíram ao acaso trinta e quatro juvenis de pirapitinga (Piaractus brachypomus) em três tratamentos (controle, 0,13 ppm e 2 ppm fentião) por um período de 96 horas. Metodologia: os exemplares foram expostos ao fetião em tanques de dez galões, avaliando sintomatologia, mudanças post-mortem, índice viscero-somático (IVS) e atividade BChE. Compararam-se as médias de cada variável para determinar significância estadística ANAVA, a=0,05). Resultados: apresentaram-se signos clínicos severos (nado frenético, tremores musculares e perda de eixo de nado) em três indivíduos (2 ppm) às 11 e 34 horas. Em 0,13 ppm houve signos leves e moderados (tremores e movimento de nadadeira caudal). Os IVS (controle = 5,3 ± 0,5; 0,13 ppm = 6,9 ± 0,3 y 2 ppm = 7,3 ± 0,6) foram significativamente diferentes entre os expostos a fentião e os controles. A atividade BChE (controle = 185,0 ± 20,4; 0,13 ppm = 12,5 ± 2,3 y 2 ppm = 9,8 ±1,8 nmoles / ml plasma / min) mostrou inibição significativa nos expostos a fentião em relação a controles. Conclusões: se demonstraram os efeitos tóxicos agudos do fentião em juvenis de pirapitinga. Os resultados em BChE mostraram sua utilidade em controle ambiental por exposição a inseticidas organofosforados.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font face="verdana" size="2">  <font size="4">     <p align="center"><b>Exposici&oacute;n aguda a fenti&oacute;n en juveniles de cachama blanca</b><i> (</i><i><b>Pioroctus brachypomus):</b> </i><b>efectos t&oacute;xicos, cambios en actividad colinesterasa y uso potencial en monitoreo ambiental</b></p></font>  <font size="3">     <p align="center"><b>Acute exposure to fenthion in juveniles of white cachama(<i>Piaractus brachypomus): </i>toxic effects, changes in cholinesterase activity and potential use in environmental monitoring</b></p>      <br>    <p align="center"><b>Exposi&ccedil;&atilde;o aguda a fenti&atilde;o em juvenis de pirapitinga (<i>Piaractus brachypomus): </i>efeitos t&oacute;xicos, mudan&ccedil;as na atividade de colinesterase e uso potencial no controle ambiental.</b></p></font>      <p>Javier F. Borb&oacute;n, MD Vet<a name="a1"></a><a href="#a_1"><sup>1</sup></a>, Jaime Fernando Gonz&aacute;lez Mantilla, MD Vet, MsC, PhD<a name="a1"></a><a href="#a_1"><sup>1</sup></a></p>      <p><a name="a_1"></a><a href="#a1"><sup>1</sup></a> Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia, Universidad Nacional de Colombia. Correspondencia: <a href="mailto:jaimefgonzalez@gmail.com"> jaimefgonzalez@gmail.com</a></p>      <p>Recibido: julio 22 de 2011 &bull; Aprobado: enero 25 de 2012</p>      <p>Para citar este art&iacute;culo: Borb&oacute;n JF, Gonz&aacute;lez JF. Exposici&oacute;n aguda a fenti&oacute;n en juveniles de cachama blanca<i> (</i><i>Piaractus brachypomus): </i>efectos t&oacute;xicos, cambios en actividad colinesterasa y uso potencial en monitoreo ambiental. Rev. Cienc. Salud 2012; 10(Especial): 43-51.</p>  <hr>      <p><i><b>Resumen</b></i></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El fenti&oacute;n es un insecticida organofosforado usado en todo el mundo cuya aplicaci&oacute;n puede derivar en contaminaci&oacute;n de aguas y efectos potenciales en salud humana y animal. <i>Objetivos: </i>para evaluar los efectos t&oacute;xicos, la actividad colinesterasa plasm&aacute;tica tipo butiril (BChE) y el uso potencial en monitoreo ambiental se distribuyeron al azar treinta y cuatro juveniles de cachama blanca <i>(Piaractus brachypomus) </i>en tres tratamientos (control, 0,13 ppm y 2 ppm fenti&oacute;n) por un per&iacute;odo de 96 horas. <i>Materiales y m&eacute;todos: </i>los ejemplares fueron expuestos al fenti&oacute;n en tanques de diez galones, evaluando sintomatolog&iacute;a, cambios <i>post-mortem, </i>&iacute;ndice viscero-som&aacute;tico (IVS) y actividad BChE. Se compararon las medias de cada variable para determinar significancia estad&iacute;stica (ANAVA, a=0,05). <i>Resultados: </i>se presentaron signos cl&iacute;nicos severos (nado fren&eacute;tico, tremores musculares y p&eacute;rdida de eje de nado) en tres individuos (2 ppm) hacia las 11 y 34 horas. En 0,13 ppm hubo signos leves a moderados (tremores y movimiento de aleta caudal). Los IVS (control = 5,3 &plusmn; 0,5; 0,13 ppm = 6,9 &plusmn; 0,3 y 2 ppm = 7,3 &plusmn; 0,6) fueron significativamente diferentes entre los expuestos a fenti&oacute;n y los controles. La actividad BChE (control = 185,0 &plusmn; 20,4; 0,13 ppm = 12,5 &plusmn; 2,3 y 2 ppm = 9,8 &plusmn; 1,8 nmoles / ml plasma / min) mostr&oacute; inhibici&oacute;n significativa en los expuestos a fenti&oacute;n con respecto a controles. <i>Conclusiones: </i>se demostraron los efectos t&oacute;xicos agudos del fenti&oacute;n en juveniles de cachama blanca. Los resultados en BChE mostraron su utilidad en monitoreo ambiental por exposici&oacute;n a insecticidas organofosforados.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: <i>colinesterasa, peces, intoxicaci&oacute;n, fenti&oacute;n.</i></p>  <hr>      <P><i><b>Abstract</b></i></p>      <p>Fenthion is an organophosphate insecticide used worldwide that may pollute waters after its application causing potential problems in public health and poisoning in domestic and wildlife animals. <i>Objective: </i>to evaluate toxic effects, butyrylcholinesterase activity (BChE) and use in environmental monitoring, 34 juveniles of white cachama <i>(Piaractus brachypomus) </i>were distributed in 3 groups (control, 0,13 ppm and 2 ppm fenthion) for 96 h. <i>Materials and methods: </i>fish were exposed in 10-gallon tanks; symptoms, gross lesions <i>post-mortem, </i>viscerosomatic index (VSI) and plasma BChE activity were evaluated. Mean comparisons for each variable among treatments were performed (ANOVA, a=0,05). <i>Results: </i>severe signs were seen in 3 specimens (3/11) of 2 ppm fenthion between 11 and 34 h of exposure. These signs were frantic swimming, muscle tremors and loss of swimming axis. In 0,13 ppm, mild to moderate signs (tremors and caudal fin flapping) were observed in some of the fish. The VSI (control = 5,3 &plusmn; 0,5; 0,13 ppm = 6,9 &plusmn; 0,3 and 2 ppm = 7,3 &plusmn; 0,6) was significantly different between exposed to fenthion and controls. BChE activity (control = 185,0 &plusmn; 20,4; 0,13 ppm = 12,5 &plusmn; 2,3 and 2 ppm = 9,8 &plusmn; 1,8 nmoles / ml plasma / min) showed significant inhibition in exposed to fenthion as compared to controls. <i>Conclusions: </i>the present work confirmed the toxic effects of fenthion in white cachama juveniles. Results found in BChE activity suggest its use in environmental monitoring as a good biomarker of organophosphates waterborne exposure.</p>      <p><b>Keywords</b>: <i>cholinesterase, fish, poisoning, fenthion.</i></p>  <hr>      <p><i><b>Resumo</b></i></p>      <p>O fenti&atilde;o &eacute; um inseticida organofosforado utilizado no mundo todo cuja aplica&ccedil;&atilde;o pode derivar em contamina&ccedil;&atilde;o de &aacute;guas e efeitos potenciais em sa&uacute;de humana e animal. <i>Objetivos: </i>para avaliar os efeitos t&oacute;xicos, a atividade da colinesterase plasm&aacute;tica tipo butirilo (BChE) e o uso potencial em controle ambiental se distribu&iacute;ram ao acaso trinta e quatro juvenis de pirapitinga <i>(Piaractus brachypomus) </i>em tr&ecirc;s tratamentos (controle, 0,13 ppm e 2 ppm fenti&atilde;o) por um per&iacute;odo de 96 horas. <i>Metodologia: </i>os exemplares foram expostos ao feti&atilde;o em tanques de dez gal&otilde;es, avaliando sintomatologia, mudan&ccedil;as post-mortem, &iacute;ndice viscero-som&aacute;tico (IVS) e atividade BChE. Compararam-se as m&eacute;dias de cada vari&aacute;vel para determinar signific&acirc;ncia estad&iacute;stica ANAVA, a=0,05). <i>Resultados: </i>apresentaram-se signos cl&iacute;nicos severos (nado fren&eacute;tico, tremores musculares e perda de eixo de nado) em tr&ecirc;s indiv&iacute;duos (2 ppm) &agrave;s 11 e 34 horas. Em 0,13 ppm houve signos leves e moderados (tremores e movimento de nadadeira caudal). Os IVS (controle = 5,3 &plusmn; 0,5; 0,13 ppm = 6,9 &plusmn; 0,3 y 2 ppm = 7,3 &plusmn; 0,6) foram significativamente diferentes entre os expostos a fenti&atilde;o e os controles. A atividade BChE (controle = 185,0 &plusmn; 20,4; 0,13 ppm = 12,5 &plusmn; 2,3 y 2 ppm = 9,8 &plusmn;1,8 nmoles / ml plasma / min) mostrou inibi&ccedil;&atilde;o significativa nos expostos a fenti&atilde;o em rela&ccedil;&atilde;o a controles. <i>Conclus&otilde;es: </i>se demonstraram os efeitos t&oacute;xicos agudos do fenti&atilde;o em juvenis de pirapitinga. Os resultados em BChE mostraram sua utilidade em controle ambiental por exposi&ccedil;&atilde;o a inseticidas organofosforados.</p>      <p><b>Palavras chave</b>: <i>colinesterase, peixes, intoxica&ccedil;&atilde;o, fenti&atilde;o.</i></p>  <hr>      <p><i><b>Introducci&oacute;n</b></i></p>      <p>La contaminaci&oacute;n de las aguas con plaguicidas es un fen&oacute;meno de alto riesgo dado su constante uso y la naturaleza hidrosoluble de muchos de estos compuestos. Colombia es uno de los mayores usuarios de estos productos en Am&eacute;rica Latina ocupando los primeros lugares en ventas y comercializaci&oacute;n (1). Sin embargo, el uso masivo de plaguicidas no siempre va acompa&ntilde;ado de medidas de protecci&oacute;n ambiental para evitar la contaminaci&oacute;n de fuentes h&iacute;dricas. La presencia de plaguicidas en las aguas de abastecimiento para asentamientos humanos y poblaciones animales puede conducir a eventos de intoxicaciones masivas y otros efectos adversos por exposiciones subletales. Dentro de los efectos t&oacute;xicos de los insecticidas organofosforados reportados en humanos y animales se tienen: inhibici&oacute;n de la actividad colinesterasa (7), polineuropat&iacute;a diferida (15, 17), estr&eacute;s oxidativo (16) y disrupci&oacute;n endocrina con alteraciones de la funci&oacute;n reproductiva(18) , entre otros.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El fenti&oacute;n &#91;O,O-dimetil-0-(4-metilmercapto)-3-metilfeniltiofosfato&#93; es un insecticida y acaricida tio-eter organofosforado, desarrollado hacia 1960 y utilizado en el mundo entero(19) . Su proceso de biotransformaci&oacute;n ocurre principalmente en el h&iacute;gado (sulfo-oxidaci&oacute;n), reacci&oacute;n de fase I que disminuye su capacidad para inhibir la actividad colinesterasa. Junto con otros organofosforados ha sido se&ntilde;alado como uno de los principales contaminantes tipo plaguicida de cuerpos de agua. Debido a esto, en las &uacute;ltimas d&eacute;cadas se ha considerado de mucha importancia el uso de especies bioindicadoras de esta contaminaci&oacute;n, como los peces (2-3).</p>      <p>Entre las especies pisc&iacute;colas de importancia comercial de Colombia y pa&iacute;ses vecinos se encuentra la cachama blanca <i>(Piaractus brachypomus), </i>especie nativa comercializada en el pa&iacute;s. Esta especie es de f&aacute;cil adaptaci&oacute;n a las condiciones de laboratorio y por ello de gran importancia y futuro promisorio como biomodelo en estudios de toxicolog&iacute;a.</p>      <p>El presente estudio tuvo como objetivo principal utilizar la especie pisc&iacute;cola cachama blanca en exposici&oacute;n controlada al insecticida fenti&oacute;n, con el prop&oacute;sito de estudiar sus efectos t&oacute;xicos, la medici&oacute;n de actividad colinesterasa plasm&aacute;tica como biomarcador de exposici&oacute;n y efecto, as&iacute; como evaluar el uso potencial de la especie como bioindicadora de contaminaci&oacute;n de aguas con este tipo de plaguicidas.</p>      <p><i><b>Materiales y m&eacute;todos</b></i></p>      <p>Manejo de animales, fase experimental y an&aacute;lisis de colinesterasa: treinta y cuatro juveniles de cachama blanca (10,0 &plusmn; 0,3 g; 8,8 &plusmn;0,1 cm) fueron trasladados desde la estaci&oacute;n pisc&iacute;cola La Terraza (Villavicencio, Colombia) y adaptados por un per&iacute;odo de tres semanas a la condiciones del laboratorio de Toxicolog&iacute;a Acu&aacute;tica, de la Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia, en la Universidad Nacional de Colombia, sede Bogot&aacute;. Durante este tiempo los peces fueron mantenidos en tanques de 120 L, suministrando alimento <i>ad libitum </i>y manteniendo condiciones f&iacute;sico-qu&iacute;micas apropiadas para el agua. Luego, los ejemplares fueron distribuidos al azar en tres tratamientos: control = 0 ppm fenti&oacute;n (n=11), 0,13 ppm fenti&oacute;n (n=12) y 2 ppm fenti&oacute;n (n=11). La exposici&oacute;n a fenti&oacute;n (Tiguvon<sup>&reg;</sup>, 20% C.E.) se hizo durante 96 horas utilizando tres tanques de diez galones cada uno por cada tratamiento experimental. Durante la fase experimental los acuarios se mantuvieron a una temperatura promedio de 25,5 &deg;C, pH entre 6,9 y 7,2 y dureza de 34,2 mg/L. Al cabo de las 96 horas de exposici&oacute;n o en caso de presentarse signos cl&iacute;nicos severos durante la misma, los peces fueron anestesiados con metasulfonato de tricaina (1:5.000) (MS-222<sup>&reg;</sup>), registrando peso, longitud corporal y tomando muestras de sangre de la vena caudal con jeringas previamente heparinizadas. Las muestras de sangre fueron centrifugadas (5000 rpm / 10 min) utilizando el plasma obtenido para determinar la actividad butirilcolinesterasa (BChE) mediante la t&eacute;cnica modificada de Ellman y otros autores (4). Esta t&eacute;cnica se fundamenta en la cuantificaci&oacute;n del &aacute;cido 5-tio-2-nitrobenzoico como producto de la reacci&oacute;n a partir del sustrato yoduro de butiriltiocolina. La absorbancia del producto de la reacci&oacute;n se cuantific&oacute; a 405 nm de longitud de onda usando el espectrofot&oacute;metro Stat Fax 3300&reg;. La actividad butirilcolinesterasa total se calcul&oacute; con un coeficiente de extinci&oacute;n de 13.400 para el &aacute;cido nitrobenzoico, ajustando a 1 ml de plasma y a 1 minuto la duraci&oacute;n de la reacci&oacute;n enzim&aacute;tica. Luego los individuos fueron sacrificados por medio de corte cef&aacute;lico para practicar la necropsia y registrar cambios macrosc&oacute;picos de sus &oacute;rganos. Las v&iacute;sceras de cada ejemplar fueron pesadas (balanza anal&iacute;tica, OHAUS Adventurer&trade;) para c&aacute;lculo del &iacute;ndice viscerosom&aacute;tico (IVS) = (&#91;peso v&iacute;sceras / peso corporal&#93; x 100) (5).</p>        <p><i>An&aacute;lisis de resultados y estad&iacute;stica: </i>las medias de las variables actividad BChE e IVS fueron comparadas con un an&aacute;lisis de varianza mediante contrastes ortogonales (a=0,05). Se utiliz&oacute; el programa estad&iacute;stico SAS V8.</p>      <p><i>Protocolos de manejo de animales: </i>los animales experimentales fueron manejados siguiendo la normatividad proferida por la Sociedad Mundial de Toxicolog&iacute;a, SOT, en lo referente a n&uacute;mero y muestreo de ejemplares experimentales, acciones frente a presentaci&oacute;n de sintomatolog&iacute;a extrema y otras consideraciones &eacute;ticas en experimentaci&oacute;n toxicol&oacute;gica (6). Los protocolos experimentales fueron estudiados y aprobados por el Comit&eacute; de Bio&eacute;tica de la Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia de la Universidad Nacional de Colombia, seg&uacute;n la normatividad aplicable a la experimentaci&oacute;n con animales.</p>      <p><i><b>Resultados</b></i></p>      <p><i>Signos cl&iacute;nicos, hallazgos post-mortem e &iacute;ndice viscerosom&aacute;tico (IVS): </i>durante la fase experimental se presentaron signos cl&iacute;nicos severos en tres individuos del grupo 2 ppm fenti&oacute;n. Estos casos se presentaron a las 11, a las 28 y a las 34 horas posteriores al inicio de la exposici&oacute;n. Los ejemplares mostraron nado err&aacute;tico, cambio a postura ventro-dorsal del eje de nado y nado en torneo (giros alrededor de su eje). En la necropsia fue notoria la acumulaci&oacute;n de l&iacute;quidos y gases en las asas intestinales y la congesti&oacute;n leve a moderada de los l&oacute;bulos olfatorios y &oacute;pticos del cerebro. En los ejemplares expuestos a 0,13 ppm se presentaron signos cl&iacute;nicos leves, como ligera inclinaci&oacute;n de eje de nado en dos ejemplares (a las 56 horas); movimientos laterales de aleta caudal y tremores musculares esquel&eacute;ticos. Hacia las 72 horas se presentaron signos cl&iacute;nicos entre leves y moderados en los ejemplares de 0,13 ppm (eje de nado inclinado y disminuci&oacute;n en la actividad motora) y 2 ppm (sin respuesta a est&iacute;mulos externos y m&iacute;nimo movimiento). No se evidenciaron cambios en comportamiento ni signos cl&iacute;nicos en los controles en ninguna fase del experimento.</p>      <p>Los valores encontrados para el IVS estuvieron entre 5,2 y 6,7 para el grupo control; 5,2 y 8,9 para 0,13 ppm y 4,8 y 11,7 para 2 ppm. Los promedios y errores est&aacute;ndar para cada tratamiento se observan en la <a href="img/revistas/recis/v10s1/v10s1a05t01.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>. En estos se encontr&oacute; una diferencia significativa entre los ejemplares expuestos a 0,13 y 2 ppm con respecto al grupo control (p &lt; 0,05). Aunque se observ&oacute; una tendencia de aumento en el IVS a mayor concentraci&oacute;n del insecticida, no se encontraron diferencias estad&iacute;sticas significativas entre los expuestos a fenti&oacute;n (p &gt; 0,05).</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Actividad butirilcolinesterasa (BChE) plasm&aacute;tica: </i>los valores de BChE expresados en nmoles de sustrato hidrolizado / ml plasma / minutos obtenidos para los tres tratamientos, tuvieron como rangos para el grupo control valores entre 92 y 282, con un promedio y error est&aacute;ndar de 185,0 &plusmn; 20,4; para el grupo 0,13 ppm, entre 6 y 26, con un promedio y error est&aacute;ndar de 12,5 &plusmn; 2,3 y para el grupo 2 ppm entre 0 y 18, con un promedio y error est&aacute;ndar de 9,8 &plusmn; 1,8 (<a href="img/revistas/recis/v10s1/v10s1a05f01.jpg" target="_blank">Figuras 1</a>). En la actividad BChE se encontr&oacute; una significativa disminuci&oacute;n en los ejemplares expuestos a 0,13 y 2 ppm de fenti&oacute;n respecto a los controles (p &lt; 0,05). Pese a que se observ&oacute; una tendencia a la disminuci&oacute;n de actividad BChE conforme se aument&oacute; la concentraci&oacute;n del insecticida, no se encontraron diferencias estad&iacute;sticas significativas entre estos dos tratamientos expuestos al fenti&oacute;n (p &gt; 0,05).</p>      <p><i><b>Discusi&oacute;n</b></i></p>      <p>Los signos cl&iacute;nicos presentados por los ejemplares expuestos al fenti&oacute;n corresponden a la estimulaci&oacute;n muscar&iacute;nica y nicot&iacute;nica t&iacute;picas resultantes del mecanismo de acci&oacute;n de los insecticidas organofosforados. Estas corresponden a la persistencia del neurotransmisor acetilcolina sobre sus receptores al inhibirse la actividad catal&iacute;tica de la acetilcolinesterasa. Dichos s&iacute;ntomas incluyen est&iacute;mulo a la secreci&oacute;n glandular (hipersecreci&oacute;n), aumento en la motilidad de la musculatura lisa, tremores musculares esquel&eacute;ticos y respuestas neuromotoras exacerbadas ante est&iacute;mulos menores (7-9). En el caso de intoxicaci&oacute;n aguda en peces tambi&eacute;n se ha reportado una alteraci&oacute;n en el patr&oacute;n de nado con p&eacute;rdida del eje y movimientos abruptos dentro del acuario o estanque donde se encuentren ubicados (10). Los animales que murieron en la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta del insecticida (2 ppm) tambi&eacute;n mostraron esta conducta. La sintomatolog&iacute;a observada en los peces de 0,13 ppm fue menor, mostrando como aspecto m&aacute;s relevante los tremores musculares esquel&eacute;ticos. Todos los ejemplares de este tratamiento sobrevivieron durante el per&iacute;odo experimental. Las diferencias en el cuadro cl&iacute;nico de intoxicaci&oacute;n entre las dos concentraciones del insecticida usadas en el presente experimento fueron marcadas.</p>      <p>El hallazgo <i>post-mortem </i>m&aacute;s significativo en los peces expuestos al fenti&oacute;n fue la acumulaci&oacute;n de secreci&oacute;n l&iacute;quida en el tracto gastrointestinal. Esto fue evidenciado macrosc&oacute;picamente con distensi&oacute;n marcada del est&oacute;mago y de las asas intestinales, as&iacute; como con el c&aacute;lculo del IVS. El incremento en la secreci&oacute;n se confirm&oacute; al encontrar IVS mayores en los expuestos a fenti&oacute;n con respecto a los controles. Es importante se&ntilde;alar que, seg&uacute;n la fase de la intoxicaci&oacute;n en la que se eval&uacute;e este par&aacute;metro, el resultado puede variar, ya que parte del mecanismo de los insecticidas consiste en aumentar la motilidad gastrointestinal, lo cual se manifiesta en los mam&iacute;feros con episodios de diarrea (8-9), situaci&oacute;n que no es f&aacute;cil de evidenciar en los peces. Cuando se evac&uacute;a la secreci&oacute;n acumulada en el tracto intestinal por la hipermotilidad gastrointestinal, el IVS no tendr&aacute; diferencias significativas entre controles y expuestos al organofosforado. En otros estudios con peces se ha reportado la presencia de gas y el aumento de secreci&oacute;n l&iacute;quida en est&oacute;mago e intestino como hallazgos en la necropsia; tal es el caso de guppys <i>(Poecilia reticulata) </i>que fueron expuestos a concentraciones bajas de clorpirifos, otro insecticida organofosforado muy usado en Colombia y en el mundo (11).</p>      <p>La actividad BChE plasm&aacute;tica de los controles fue 185,0 &plusmn; 20,4 nmoles / mL plasma / min. Estos resultados son ligeramente menores a los reportados por Parra y otros autores (12), quienes encontraron una actividad media de 249,1 &plusmn; 13,3 en la misma especie; sin embargo, difieren a los obtenidos por Su&aacute;rez y Gonz&aacute;lez (13), quienes encontraron una actividad media de 36,5 &plusmn; 7,0 nmoles / mL de plasma / min . Si bien en los tres estudios se utiliz&oacute; la misma t&eacute;cnica para actividad colinesterasa, las diferencias entre los resultados podr&iacute;an atribuirse a factores dietarios, de manejo e inclusive de tipo gen&eacute;tico entre los grupos de animales seleccionados para cada estudio. La actividad BChE se inhibi&oacute; de manera significativa tanto en los expuestos a 0,13 ppm como a 2,0 ppm de fenti&oacute;n. Esta inhibici&oacute;n fue casi de 95% con respecto a la actividad de los controles para los dos tratamientos expuestos al insecticida. A pesar de que los cuadros cl&iacute;nicos fueron muy diferentes en cuanto a intensidad entre las dos concentraciones de insecticida, la inhibici&oacute;n de la actividad BChE s&iacute; fue marcada en los dos casos, lo cual abre posibilidades importantes de aplicaci&oacute;n en el campo de biomarcadores y bioindicadores como se discutir&aacute; a continuaci&oacute;n. Valores similares de inhibici&oacute;n de colinesterasa han sido reportados en otras especies pisc&iacute;colas como el bagre de canal <i>(Ictalurus punctatus), </i>en la que se registr&oacute; inhibici&oacute;n de actividad colinesterasa cerebral mayor a 90% luego de ser expuesta a varios tipos de organofosforados, siendo esta inhibici&oacute;n compatible con la supervivencia de los animales (14).</p>      <p>El uso de peces como bioindicadores de contaminaci&oacute;n es cada d&iacute;a m&aacute;s frecuente. Esto permite un control de la calidad de las aguas de consumo y la utilizaci&oacute;n en otras especies animales y la especie humana. Varios municipios en el pa&iacute;s han establecido estos sistemas bi&oacute;ticos de vigilancia en acueductos, adem&aacute;s del an&aacute;lisis f&iacute;sico-qu&iacute;mico de las aguas.Dado el alto riesgo de contaminaci&oacute;n por plaguicidas de las aguas en Colombia y en el mundo la utilizaci&oacute;n de especies bioindicadoras es muy necesaria (20). La cachama blanca es de f&aacute;cil manejo en laboratorio y adem&aacute;s puede ser pensada para monitoreo en cuerpos de agua naturales con temperaturas por encima de 23 <sup>o</sup>C, acogi&eacute;ndose a la normatividad sobre mantenimiento de especies pisc&iacute;colas en las cuencas autorizadas. Este estudio mostr&oacute; que la facilidad de manejo de la cachama blanca y la sensibilidad de la actividad colinesterasa tipo butiril frente a la exposici&oacute;n a concentraciones letales o subletales de un organofosforado como el fenti&oacute;n permiten su aplicaci&oacute;n en estudios de toxicolog&iacute;a y en programas ambientales.</p>      <p><i><b>Conclusiones</b></i></p>  <ul>     <li>    <p> El presente estudio demostr&oacute; los efectos t&oacute;xicos de la exposici&oacute;n aguda a fenti&oacute;n en juveniles de cachama blanca.</p></li>      <li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p> La inhibici&oacute;n de la actividad colinesterasa fue un buen marcador del efecto t&oacute;xico del insecticida aun a concentraciones subletales de exposici&oacute;n.</p></li>      <li>    <p> Los resultados de la presente investigaci&oacute;n permiten sugerir a la cachama blanca como una especie bioindicadora de los efectos de la contaminaci&oacute;n de las aguas con insecticidas organofosforados como el fenti&oacute;n.</p></li>     </ul>      <p><i><b>Descargos de responsabilidad</b></i>      <P>Esta investigaci&oacute;n fue llevada a cabo a partir de un proyecto original planteado por Aqu&aacute;tica, grupo de Investigaci&oacute;n en Toxicolog&iacute;a Acu&aacute;tica y Ambiental, sin conflicto de intereses por parte de los autores en el desarrollo del mismo.</p>      <p><i><b>Agradecimientos</b></i></p>      <p>Aqu&aacute;tica agradece a la Vicerrector&iacute;a de Investigaci&oacute;n de la Universidad Nacional de Colombia por su apoyo financiero para la realizaci&oacute;n de este proyecto. Tambi&eacute;n agradece al profesor Miguel &Aacute;ngel Landines por su ayuda en la consecuci&oacute;n de los ejemplares experimentales.</p>      <p><i><b>Bibliograf&iacute;a</b></i></p>      <!-- ref --><p>1. Diccionario de Especialidades Agroqu&iacute;micas. 17<sup>a</sup> ed. Bogot&aacute;: Thomson - PLM; 2007. p. 816.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000052&pid=S1692-7273201200040000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Rand GM. Fish toxicity studies. En: Di Giulio RT y Hinton DE, eds. The toxicology of fishes. Boca Raton: CRC Press; 2008. p. 659-81.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000053&pid=S1692-7273201200040000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Schlenk D, Handy R, Steinert S, Depledge MH y Benson W. Biomarkers. En: Di Giulio RT y Hinton DE, eds. The toxicology of fishes. Boca Raton: CRC Press; 2008. p. 683-731.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000054&pid=S1692-7273201200040000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Ellman GL, Courtney KD, Andres V, Featherstone RM. A  new and rapid colorimetric determination of acetylcholinesterase activity. Biochem Pharmacol 1961; 7 (2):88-95.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000055&pid=S1692-7273201200040000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Barton BA, Morgan JD, Vijayan MM. Physiological and condition-related indicators of environmental stress in fish. En: Marshall Adams S, ed. Biological indicators of aquatic ecosystem stress. AmericanFisheries Society: Bethesda; 2002. p. 111-48.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000056&pid=S1692-7273201200040000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Guiding principles in the use of animals in toxicology. &#91;Consultado el 1 de julio de 2011&#93;. Disponible en: <a href="http://www.toxicology.org/ms/air6.asp"target="_blank">http://www.toxicology.org/ms/air6.asp</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000057&pid=S1692-7273201200040000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Osweiler GD. Insecticides and molluscicides. En: Toxicology. Lippincott Williams &amp; Wilkins: Philadelphia; 1996. p. 231-57.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000058&pid=S1692-7273201200040000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Gupta RC. Organophosphates and carbamates. En: Gupta RC, ed. Veterinary toxicology: basic and clinical principles. Academic Press: San Francisco; 2007. p. 477-88.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000059&pid=S1692-7273201200040000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Meerdink GL. Anticholinesterase insecticides. En: Plumlee KH, ed. Clinical veterinary toxicology. Mosby: Saint Louis; 2004. p. 178-80.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000060&pid=S1692-7273201200040000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Reebs S. Fish behavior in the aquarium and in the wild. Cornell University Press: Nueva York; 2001.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000061&pid=S1692-7273201200040000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Silva P, Samayawardhena L. A. Low concentrations of Lorsban in water result in far reaching behavioral and histological effects in early life stages in guppy <i>(Poecilia reticulata). </i>Ecotoxicol.Environ. Saf. 2002; 53 (2):248-54.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000062&pid=S1692-7273201200040000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Parra L, Figueredo D, Gonz&aacute;lez JF. Actividad tipo colinesterasa plasm&aacute;tica en juveniles de cachama blanca <i>(Piaractus brachypomus) </i>aclimatados bajo condiciones de laboratorio. Rev Med Vet Zoot 2007; 54 (2):225.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000063&pid=S1692-7273201200040000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Su&aacute;rez R, Gonz&aacute;lez JF. Actividad colinesterasa cerebral, muscular, hep&aacute;tica y plasm&aacute;tica en juveniles de cachama blanca <i>(Piaractus brachypomus): </i>efecto inhibidor del clorpirifos (Lorsban 4EC<sup>&reg;</sup>). Rev. Med Vet Zoot 2007; 54 (2):180.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000064&pid=S1692-7273201200040000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Carr RL, Straus DL, Chambers JE. Inhibition and aging of channel catfish brain acetylcholinesterase following exposure to two phosphorothionate insecticides and their active metabolites. J Toxicol Environ Health 1995; 45 (3):325-36.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000065&pid=S1692-7273201200040000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Peter JV, Prabhakar AT, Pichamuthu K. Delayed-onset encephalopathy and coma in acute organophosphate poisoning in humans. Neurotoxicology 2008; 29 (2): 335-42.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S1692-7273201200040000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Sevgiler Y, Piner P, Durmaz H, &Uuml;ner N. Effects of N-acetylcysteine on oxidative responses in the liver of fenthion-exposed <i>Cyprinus carpio. </i>Pest. Biochem. Physiol. 2007; 87 (3):248-54.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S1692-7273201200040000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Jokanovic M, Kosanovic M, Brkic D, Predrag Vukomanovic P. Induced delayed polyneuropathy in man: an overview. Clin. Neurol. Neurosurg. 2011; 113 (1):7-10.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S1692-7273201200040000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Peiris-John RJ, Wickremasinghe R. Impact of low-level exposure to organophosphates on human reproduction and survival. Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg. 2008; 102 (3):239-45.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S1692-7273201200040000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Tomlin C. The pesticide manual. Crop. Protection  Publications: Gran Breta&ntilde;a; 1994, p. 1341.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S1692-7273201200040000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Brahmi N, Mokline A, Kouraichi N, Ghorbel H, Blel Y, Thabet H et al. Prognostic value of human erythrocyte acetyl cholinesterase in acute organophosphate poisoning. Am. J Emerg. Med. 2006; 24(7):822-27.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S1692-7273201200040000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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