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<journal-title><![CDATA[Revista Lasallista de Investigación]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Producción de lacasa utilizando Pleurotus ostreatus sobre cáscaras de plátano y bagazo de caña]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Production of locase using Pleurotus ostreatus on plantain peel and sugar cane bagasse]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Produção de lacasa utilizando Pleurotus ostreatus sobre cascas de plátano e bagazo de cana]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional de Colombia Facultad de Ciencias Agropecuarias Departamento de Ingeniería Agrícola y Alimentos]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction. Plantain peel for industrial purposes represents from 35% to 40% of the total fruit weight, becoming a considerable quantity of waste which could be used to produce enzymatic complexes. Objective. To investigate the potential green and mature plantain peel of "Dominico-Hartón" as a supportsubstrate to produce laccase extracellular enzyme by the use of Pleurotus ostreatus fungus. Materials and Methods. Pleurotus ostreatus fungus was cultivated in different mixtures, as follows: Green plantain peel (GPP), mature plantain peel (MPP) green plantain peel-cane bagasse (50/50) (GPPCB), mature plantain peel-cane bagasse (50/50) MPPCB). Fermentation units were kept at pH 4.8, 28°C and a 63% humidity. The determination of the laccase enzyme was carried out by ABTS oxidation. Results. In the substrates used, a maximum laccase activity was achieved in the 24th day, except in the mature plantain treatment, which achieved it in the 34th day. MPPCB substrate had the highest production of laccase with 19.4 U/mL concentration. Conclusion. Plantain peel can be a good substrate when is supplemented with other lignocellulosic wastes, such as sugar cane bagasse. Laccase can be used as a morphogenetic indicator because it shows the maximum growth of the mycelium.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Introdução. A casca de plátano de uso industrial representa do 35% ao 40%, do peso total do fruto, sendo uma quantidade considerável de resíduos que se poderiam aproveitar para a produção de complexos enzimáticos. Objetivo. Pesquisar o potencial que tem a casca de plátano (verde e madura) variedade Dominico-Hartón como substrato para a produção da enzima extracelular lacasa utilizando o fungo Pleurotus ostreatus. Materiais e métodos. O fungo Pleurotus ostreatus se cultivou em diferentes misturas assim: Cascas de plátano verde (PV), cascas de plátano maduro (PM), cascas de plátano verde-baguaçu de cana (50/50) (PVB), cascas de plátano maduro-baguaçu de cana (50/50) (PMB). As unidades de fermentação se mantiveram a um PH de 4.8, uma temperatura de 28°C e um conteúdo de umidade de 63%. A determinação da enzima lacasa se levou a cabo pela oxidação ABTS. Resultados. Nos substratos utilizados se obtiveram um máximo de atividade lacasa o dia 24; com exceção do tratamento com PM que o atinge no dia 34. O substrato PMB teve a maior produção de lacasa com uma concentração de 19.4 Ou/ml. Conclusão. A casca de plátano pode ser um bom substrato quando se suplementa com outros resíduos lignocelulósicos como, por exemplo, o baguaçu de cana. A lacasa pode ser um indicador morfogenético ao mostrar o máximo crescimento do micélio.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font size="2" face="verdana">      <p><b>Art&iacute;culo original / Original article / Artigo original</b></p>      <p align="center"><font size="4"><b>Producci&oacute;n de lacasa utilizando <i>Pleurotus ostreatus</i> sobre c&aacute;scaras de pl&aacute;tano y bagazo de ca&ntilde;a</font></p>      <p align="center"><font size="3">Production of locase using <i>Pleurotus ostreatus</i> on plantain peel and sugar cane bagasse</font></p>      <p align="center"><font size="3">Produ&ccedil;&atilde;o de lacasa utilizando <i>Pleurotus ostreatus</i> sobre cascas de pl&aacute;tano e bagazo de cana</b></font></p>       <p>    <center>Katerine Manjarr&eacute;s<sup>*</sup>, Adriana Castro<sup>**</sup>, Eduardo Rodr&iacute;guez Sandoval<sup>***</sup></center></p>     <br>      <p><sup>*</sup> Ingenier&iacute;a de Alimentos. Candidata a Maestr&iacute;a en Ciencia y Tecnolog&iacute;a de Alimentos Universidad Nacional de Colombia. Medell&iacute;n. Antioquia.    <br>  <sup>**</sup> Ingeniera de Alimentos. Master en Administraci&oacute;n de Negocios (MBA). Universidad de los Andes. Bogot&aacute;.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  <sup>***</sup> Ingeniero Qu&iacute;mico. Ph D. en Ingenier&iacute;a de Alimentos. Docente Asociado. Departamento de Ingenier&iacute;a Agr&iacute;cola y Alimentos. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad Nacional de Colombia. Medell&iacute;n. Antioquia.</p>      <p>Correspondencia: Eduardo Rodr&iacute;guez Sandoval. e-mail: <a href="mailto:edrodriguezs@unal.edu.co">edrodriguezs@unal.edu.co</a>.</p>      <p>Art&iacute;culo recibido: 16/12/2009; art&iacute;culo aprobado: 3/12/2010</p>  <hr>      <br>      <p><font size="3"><b>Resumen</b></font></p>      <p><b>Introducci&oacute;n</b>. La c&aacute;scara de pl&aacute;tano de uso industrial representa del 35% al 40%, del peso total del fruto, siendo una cantidad considerable de residuos que se podr&iacute;an aprovechar para la producci&oacute;n de complejos enzim&aacute;ticos. <b>Objetivo</b>. Investigar el potencial que tiene la c&aacute;scara de pl&aacute;tano (verde y madura) variedad Dominico-Hart&oacute;n como sustrato para la producci&oacute;n de la enzima extracelular lacasa utilizando el hongo <i>Pleurotus ostreatus</i>. <b>Materiales y m&eacute;todos</b>. El hongo <i>Pleurotus ostreatus</i> se cultiv&oacute; en diferentes mezclas as&iacute;: C&aacute;scaras de pl&aacute;tano verde (PV), c&aacute;scaras de pl&aacute;tano maduro (PM), c&aacute;scaras de pl&aacute;tano verde-bagazo de ca&ntilde;a (50/50) (PVB), c&aacute;scaras de pl&aacute;tano maduro-bagazo de ca&ntilde;a (50/50) (PMB). Las unidades de fermentaci&oacute;n se mantuvieron a un pH de 4.8, una temperatura de 28°C y un contenido de humedad de 63%. La determinaci&oacute;n de la enzima lacasa se llev&oacute; a cabo por la oxidaci&oacute;n ABTS. <b>Resultados</b>. En los sustratos utilizados se obtuvieron un m&aacute;ximo de actividad lacasa el d&iacute;a 24; con excepci&oacute;n del tratamiento con PM que lo alcanza en el d&iacute;a 34. El sustrato PMB tuvo la mayor producci&oacute;n de lacasa con una concentraci&oacute;n de 19.4 U/ml. <b>Conclusi&oacute;n</b>. La c&aacute;scara de pl&aacute;tano puede ser un buen sustrato cuando se suplementa con otros residuos lignocelul&oacute;sicos como por ejemplo el bagazo de ca&ntilde;a. La lacasa puede ser un indicador morfogen&eacute;tico al mostrar el m&aacute;ximo crecimiento del micelio.</p>      <p><b>Palabras clave</b>: c&aacute;scara de pl&aacute;tano, bagazo de ca&ntilde;a, <i>Pleurotus ostreatus</i>, lacasa.    <p>  <hr>  <font size="3">    <p><b>Abstract</b></font></p>      <p><b>Introduction</b>. Plantain peel for industrial purposes represents from 35% to 40% of the total fruit weight, becoming a considerable quantity of waste which could be used to produce enzymatic complexes. <b>Objective</b>. To investigate the potential green and mature plantain peel of "Dominico-Hart&oacute;n" as a supportsubstrate to produce laccase extracellular enzyme by the use of <i>Pleurotus ostreatus</i> fungus. <b>Materials and Methods</b>. <i>Pleurotus ostreatus</i> fungus was cultivated in different mixtures, as follows: Green plantain peel (GPP), mature plantain peel (MPP) green plantain peel-cane bagasse (50/50) (GPPCB), mature plantain peel-cane bagasse (50/50) MPPCB). Fermentation units were kept at pH 4.8, 28°C and a 63% humidity. The determination of the laccase enzyme was carried out by ABTS oxidation. <b>Results</b>. In the substrates used, a maximum laccase activity was achieved in the 24<sup>th</sup> day, except in the mature plantain treatment, which achieved it in the 34<sup>th</sup> day. MPPCB substrate had the highest production of laccase with 19.4 U/mL concentration. <b>Conclusion</b>. Plantain peel can be a good substrate when is supplemented with other lignocellulosic wastes, such as sugar cane bagasse. Laccase can be used as a morphogenetic indicator because it shows the maximum growth of the mycelium.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Key words</b>: plantain cane, cane bagasse, <i>Pleurotus ostreatus</i>, laccase.</p>  <hr>  <font size="3">    <p><b>Resumo</b></font></p>      <p><b>Introdu&ccedil;&atilde;o</b>. A casca de pl&aacute;tano de uso industrial representa do 35% ao 40%, do peso total do fruto, sendo uma quantidade consider&aacute;vel de res&iacute;duos que se poderiam aproveitar para a produ&ccedil;&atilde;o de complexos enzim&aacute;ticos. <b>Objetivo</b>. Pesquisar o potencial que tem a casca de pl&aacute;tano (verde e madura) variedade Dominico-Hart&oacute;n como substrato para a produ&ccedil;&atilde;o da enzima extracelular lacasa utilizando o fungo <i>Pleurotus ostreatus</i>. <b>Materiais e m&eacute;todos</b>. O fungo <i>Pleurotus ostreatus</i> se cultivou em diferentes misturas assim: Cascas de pl&aacute;tano verde (PV), cascas de pl&aacute;tano maduro (PM), cascas de pl&aacute;tano verde-bagua&ccedil;u de cana (50/50) (PVB), cascas de pl&aacute;tano maduro-bagua&ccedil;u de cana (50/50) (PMB). As unidades de fermenta&ccedil;&atilde;o se mantiveram a um PH de 4.8, uma temperatura de 28&deg;C e um conte&uacute;do de umidade de 63%. A determina&ccedil;&atilde;o da enzima lacasa se levou a cabo pela oxida&ccedil;&atilde;o ABTS. <b>Resultados</b>. Nos substratos utilizados se obtiveram um m&aacute;ximo de atividade lacasa o dia 24; com exce&ccedil;&atilde;o do tratamento com PM que o atinge no dia 34. O substrato PMB teve a maior produ&ccedil;&atilde;o de lacasa com uma concentra&ccedil;&atilde;o de 19.4 Ou/ml. <b>Conclus&atilde;o</b>. A casca de pl&aacute;tano pode ser um bom substrato quando se suplementa com outros res&iacute;duos lignocelul&oacute;sicos como, por exemplo, o bagua&ccedil;u de cana. A lacasa pode ser um indicador morfogen&eacute;tico ao mostrar o m&aacute;ximo crescimento do mic&eacute;lio.</p>      <p><b>Palavras importantes</b>: casca de pl&aacute;tano (Banana da Terra), Bagua&ccedil;u de cana, Pleurotus ostreatus, lacasa.</p>  <hr>      <p><font size="3">    <p><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>      <p>El cultivo de pl&aacute;tano en Colombia tiene gran importancia socioecon&oacute;mica como generador de empleo y de seguridad alimentaria, entendida esta &uacute;ltima como la disponibilidad estable y suficiente de alimentos. El pl&aacute;tano (de consumo interno y exportaci&oacute;n) alcanz&oacute; un &aacute;rea total de cultivo de 346.524 ha y un nivel de producci&oacute;n de 2.699.099 ton en el 2008<sup>1</sup>. Actualmente, cerca de un 4% de la producci&oacute;n nacional de pl&aacute;tano se destina al mercado de exportaci&oacute;n, el restante se dirige hacia el consumo interno en fresco y una muy peque&ntilde;a proporci&oacute;n, menos del 1%, se destina como materia prima para la agroindustria nacional. Se estima que el mercado industrial del pl&aacute;tano absorbe aprox. 12 mil ton/a&ntilde;o y se destinan a productos procesados para consumo humano y concentrados para consumo animal<sup>2</sup>, donde se generan grandes residuos ricos en lignina y celulosa.</p>      <p>La lignocelulosa es uno de los recursos bioenerg&eacute;ticos renovables m&aacute;s abundantes en la naturaleza, el cual se compone de celulosa, hemicelulosa y lignina. Sin embargo, su utilizaci&oacute;n como fuente de energ&iacute;a se ve limitada en el presente porque la lignina es dif&iacute;cil de degradar y transformar a glucosa<sup>3</sup>. El porcentaje en peso de c&aacute;scara de las variedades de uso industrial puede estar entre un 35% a 40%, el cual es una cantidad considerable de residuos durante el procesamiento del pl&aacute;tano<sup>4</sup>. La c&aacute;scara contiene celulosa (10.5%) y hemicelulosa (14%) y lignina (17%)<sup>5</sup>. Por esta raz&oacute;n, se podr&iacute;a utilizar para la producci&oacute;n de complejos enzim&aacute;ticos. Se han realizado diversas investigaciones sobre la obtenci&oacute;n de enzimas ligninol&iacute;ticas y celulol&iacute;ticas con diferentes clases de hongos empleando como sustrato residuos de pl&aacute;tano (hojas, tallos, c&aacute;scaras). Reddy et al. (2003),<sup>6</sup> investigaron la obtenci&oacute;n de lacasa, lignina peroxidasa, xilanasa, CMCasa y Fpasa sobre residuos de banano utilizando <i>Pleurotus ostreatus y Pleurotus sajorcaju</i>. Osma et al. (2007),<sup>7</sup> investigaron la producci&oacute;n de lacasa a partir de c&aacute;scara de banano con el hongo <i>Trametes pubescens</i>. Otros estudios se han enfocado en la evaluaci&oacute;n de lacasa, manganeso peroxidasa y ligninoperoxidasa utilizando <i>Pleurotus djamor y Lentinus crinitus</i> en residuos de pl&aacute;tano y aserr&iacute;n<sup>8-9</sup>.</p>      <p>Los hongos del g&eacute;nero <i>Pleurotus</i> son basidiomicetos de pudrici&oacute;n blanca, con un alto valor nutricional, propiedades terap&eacute;uticas y variadas aplicaciones biotecnol&oacute;gicas. El hongo <i>Pleurotus ostreatus (P. ostreatus)</i> posee la capacidad de degradar grandes pol&iacute;meros (lignina y celulosa) que constituyen el substrato vegetal, as&iacute; como contaminantes ambientales mediante la secreci&oacute;n de un complejo enzim&aacute;tico. La efectividad de esta degradaci&oacute;n depende en gran medida de las oxidoreductasas extracelulares y los metabolitos secundarios de bajo peso molecular<sup>3</sup>. Seg&uacute;n estudios previos, el hongo <i>P. ostreatus</i> es capaz de crecer sobre sustratos muy econ&oacute;micos como los residuos agr&iacute;colas<sup>10</sup>.</p>      <p>La importancia biotecnol&oacute;gica de la enzima lacasa radica en su habilidad para oxidar los compuestos fen&oacute;licos y los relacionados con la lignina, como tambi&eacute;n degrada ciertos contaminantes ambientales<sup>7</sup>. La lacasa se ha utilizado como agente blanqueador en la pulpa de madera y la industria de papel, en la desinfecci&oacute;n con cloro y en la eliminaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos de las aguas residuales. En lo referente al sector alimenticio esta enzima hace parte indispensable de los an&aacute;lisis de fenoles en los jugos naturales; adem&aacute;s tiene aplicaciones como biosensor para la determinaci&oacute;n de los catecoles de los polifenoles en el t&eacute;. La lacasa inmovilizada se ha utilizado para eliminar fenoles del zumo de manzana y del vino<sup>11</sup>. Teniendo en cuenta lo anterior, esta propuesta plantea la evaluaci&oacute;n de la actividad enzim&aacute;tica de lacasa producida mediante el cultivo <i>Pleurotus ostreatus</i> sobre c&aacute;scaras de pl&aacute;tano verdes y maduras, y bagazo de ca&ntilde;a como fuente de carbono en fermentaci&oacute;n s&oacute;lida.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      <p><font size="3"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>      <p><b>Materia prima</b></p>      <p>Los pl&aacute;tanos verde y maduro variedad Dominico-Harton, fueron adquiridos en un supermercado local de la ciudad de Bogot&aacute; D.C y almacenados a temperatura ambiente hasta su posterior uso. Las c&aacute;scaras fueron retiradas de los pl&aacute;tanos y desinfectadas con hipoclorito de sodio al 1% en agua y cortadas en l&aacute;minas de aproximadamente 2 cm x 2cm. El bagazo de ca&ntilde;a adquirido por la Universidad Jorge Tadeo Lozano fue cortado en trozos de 2 cm x 2cm y mezclado con la c&aacute;scara verde y madura en diferentes proporciones. Los sustratos utilizados en la experimentaci&oacute;n fueron los siguientes: c&aacute;scaras de pl&aacute;tano verde (PV) (100%), c&aacute;scaras de pl&aacute;tano maduro (PM) (100%), c&aacute;scaras de pl&aacute;tano verde-bagazo de ca&ntilde;a (PVB) (50/50), c&aacute;scaras de pl&aacute;tano maduro-bagazo de ca&ntilde;a (PMB) (50/50).</p>      <p><b>Cultivo de <i>Pleurotus ostreatus</i></b></p>      <p>Los in&oacute;culos de <i>Pleurotus ostreatus</i> se obtuvieron de semillas de trigo cultivada con esta cepa utilizando una relaci&oacute;n de 4% (p/p en base h&uacute;meda) para cada unidad de fermentaci&oacute;n. Las unidades de fermentaci&oacute;n fueron bolsas de polipropileno biorientado (esterilizables), con tap&oacute;n de algod&oacute;n y capacidad de 500g, pero solo empleando 200 g en cada una de ellas. La fermentaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo a 28&deg;C, en oscuridad, y ajustando la humedad a 63%, condiciones apropiadas para el crecimiento del organismo y la producci&oacute;n de enzimas<sup>3</sup>.</p>      <p><b>Medici&oacute;n de la actividad enzim&aacute;tica lacasa (Lcc)</b></p>      <p>Los extractos enzim&aacute;ticos de cada cultivo se obtuvieron con buffer de acetato 0.05 M, pH 4.8, en una relaci&oacute;n 0.25 g de sustrato/mL de buffer. Se agitaron vigorosamente y se centrifugaron a 4000 rpm durante una hora. El sobrenadante se filtr&oacute; sobre gasa y se centrifug&oacute; de nuevo a 4000 rpm durante 30 min y se almacen&oacute; a 4&deg;C para una posterior medici&oacute;n de su actividad enzim&aacute;tica.</p>      <p>La determinaci&oacute;n de la enzima lacasa se llev&oacute; a cabo por la oxidaci&oacute;n ABTS &#91;2,2'- Azinobis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)&#93; al cati&oacute;n ABTS<sup>+</sup> con un volumen de reacci&oacute;n de 2 ml que comprende a 200 &mu;l de ABTS 1 mM, 600 &mu;l de buffer acetato de sodio 0.1M, pH 5 y 1200 &mu;l de extracto enzim&aacute;tico<sup>12</sup>. La absorbancia se tom&oacute; a una longitud de onda de 420 nm en un espectofotometr&oacute; (Unicam Helios B NC 9432 UVB 1000E, Termo Spectronic, Rochester NY), realizando medidas al inicio de la reacci&oacute;n y tres minutos despu&eacute;s, para obtener un delta de absorbancia &uacute;til en los c&aacute;lculos, donde se utiliz&oacute; un coeficiente de extinci&oacute;n de 36000 M<sup>-1</sup> cm<sup>-1 12-13</sup>. Una unidad enzima se define como 1 &mu;mol de producto formado por minuto (U = &mu;mol / min), bajo las condiciones del ensayo. Las unidades enzim&aacute;ticas (U/L) de lacasa se calculan utilizando la <a href="#ecua1">Ecuaci&oacute;n 1</a>.</p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="ecua1"><img src="img/revistas/rlsi/v7n2/v7n2a02e1.jpg"></center></p>      <p>Donde, &Delta;ABS es la lectura de absorbancia final - lectura de absorbancia inicial, Vr es el volumen total de la reacci&oacute;n, &xi; es el coeficiente de extinci&oacute;n que tiene un valor de 36000 mol<sup>-1</sup> cm<sup>-1</sup>, Vm es el volumen de la muestra.<sup>14</sup></p>      <p><b>Dise&ntilde;o experimental y an&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p>      <p>Para este estudio se aplic&oacute; un dise&ntilde;o experimental aleatorio de medidas repetidas, con los siguientes factores: tiempo de fermentaci&oacute;n (5 niveles) y tipo de sustrato (4 niveles). El tiempo de medici&oacute;n de la fermentaci&oacute;n fue en los d&iacute;as 12, 24, 34, 41 y 45. Los sustratos utilizados fueron c&aacute;scaras de pl&aacute;tano verde (PV), c&aacute;scaras de pl&aacute;tano maduro (PM), c&aacute;scaras de pl&aacute;tano verde-bagazo de ca&ntilde;a (PVB), c&aacute;scaras de pl&aacute;tano maduro-bagazo de ca&ntilde;a (PMB). Los tratamientos se realizaron por triplicado, en total fueron 60 tratamientos. La variable de respuesta fue la actividad lacasa. Los datos experimentales se analizaron mediante un ANOVA y las diferencias significativas se establecieron utilizando la prueba de Duncan. El an&aacute;lisis se realiz&oacute; mediante Statgraphics plus<sup>&reg;</sup> de Microsoft.</p>      <p><font size="3"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>      <p>En los ensayos preliminares se observaron diferentes intensidades de color amarillo en los extractos de cada uno de los tratamientos, los cuales se utilizaron para la cuantificaci&oacute;n de la actividad lacasa (<a href="#fig1">Figura 1</a>). Durante el tiempo de experimentaci&oacute;n la coloraci&oacute;n de los extractos enzim&aacute;ticos aumentaba lo que se atribuye al estado de maduraci&oacute;n del sustrato en el momento de hacer las mediciones. Amaga et al (2008)<sup>18</sup> establecieron que se incrementa el porcentaje de lignina (14.3–15.4%) a medida que las c&aacute;scaras de pl&aacute;tano maduran, y si se tiene en cuenta que la lignina es utilizada por los hongos filamentosos para producir enzimas ligninasas como la lacasa, se podr&iacute;a afirmar que las c&aacute;scaras de pl&aacute;tano maduro pueden tener una mayor producci&oacute;n de lacasa.</p>      <p>    <center><a name="fig1"><img src="img/revistas/rlsi/v7n2/v7n2a02f1.jpg"></center></p>      <p>En la <a href="#fig2">figura 2</a> se presenta el comportamiento de la actividad lacasa para los diferentes tratamientos durante el tiempo de experimentaci&oacute;n. A partir del d&iacute;a 12 de cultivo se observa un peque&ntilde;o valor en la producci&oacute;n de lacasa. En los sustratos utilizados se obtiene un m&aacute;ximo de actividad lacasa el d&iacute;a 24; sin embargo, el tratamiento PM alcanza su m&aacute;ximo en el d&iacute;a 34. Luego comienza a descender, aunque en el d&iacute;a 45 hay un leve aumento de esta actividad para el tratamiento con sustrato PMB. Este comportamiento es similar al reportado por Murrieta et al. (2002)<sup>15</sup>, quienes evaluaron la producci&oacute;n de lacasa utilizando <i>Pleurotus pulmonarius</i> y <i>Trichoderma viride</i> sobre pulpa de caf&eacute;.</p>      <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="fig2"><img src="img/revistas/rlsi/v7n2/v7n2a02f2.jpg"></center></p>      <p>La mayor actividad de lacasa en el estudio de Murrieta et al. (2002)<sup>15</sup> se obtuvo en el d&iacute;a 12 con un valor de 34.69 U/g sustrato y descendi&oacute; en el d&iacute;a 16, debido a que el sustrato estaba cubierto completamente con el micelio (masa de hifas que constituye el cuerpo vegetativo de un hongo), lo que indica el inicio de la fructificaci&oacute;n. En esta etapa la producci&oacute;n de lacasa disminuye y comienza la producci&oacute;n de celulasas que se relaciona con el desarrollo de los primordios (cuerpos fruct&iacute;feros en las primeras etapas de desarrollo)<sup>16</sup>. En el presente estudio se encontr&oacute; un comportamiento parecido, donde la m&aacute;xima actividad enzim&aacute;tica coincide con el m&aacute;ximo crecimiento del micelio durante la fase vegetativa y decrece hasta aparecer los cuerpos fruct&iacute;feros del hongo. Esta enzima puede utilizarse como un indicador morfogen&eacute;tico al mostrar el m&aacute;ximo crecimiento del micelio, y de esta manera obtener el tiempo que debe comenzar a fructificar el <i>P. ostreatus</i>.</p>      <p>Los valores de la actividad lacasa obtenidos por ml de extracto (U/ml) para cada uno de los tratamientos de cultivo durante 45 d&iacute;as se muestran en la <a href="#tab1">Tabla 1</a>. Los resultados de la actividad lacasa tuvieron diferencias significativas entre tratamientos. El sustrato PMB result&oacute; ser el m&aacute;s adecuado para la producci&oacute;n de lacasa, teniendo una mayor concentraci&oacute;n de esta en un tiempo de 24 d&iacute;as (19.4 U/ml), seguido del sustrato PVB que al mismo tiempo report&oacute; un valor de 17.6 U/ml. Los PV y PM obtuvieron las actividades m&aacute;s bajas con valores entre 12-12.6 U/ml para ese mismo tiempo de cultivo (24 d&iacute;as). Si se comparan estos dos &uacute;ltimos sustratos se puede apreciar que se produce m&aacute;s lacasa cuando se utiliza sustrato de c&aacute;scaras de pl&aacute;tano maduro (PM), lo cual pudo contribuir a la mayor actividad de esta enzima empleando bagazo de ca&ntilde;a (PMB).</p>      <p>    <center><a name="tab1"><img src="img/revistas/rlsi/v7n2/v7n2a02t1.jpg"></center></p>      <p>La lignina es un componente estructural de la pared celular de los vegetales, junto con la celulosa, la hemicelulosa y las pectinas. Adem&aacute;s, la lignina es una cadena de compuestos fen&oacute;licos conformado por aldeh&iacute;do sir&iacute;ngico, alcoholes conifer&iacute;licos, sinap&iacute;licos y cumar&iacute;licos<sup>17</sup>. El principal componente de la c&aacute;scara de pl&aacute;tano es la lignina con un contenido entre 12%-16.8%, de acuerdo al estado de madurez y al genotipo de la variedad<sup>18-19</sup>. Durante la maduraci&oacute;n del pl&aacute;tano, el contenido de lignina aumenta contrario a lo que sucede con la c&aacute;scara de banano. Adicionalmente, se ha reportado que el incremento de la glucosa en la c&aacute;scara de pl&aacute;tano se debe a la hidr&oacute;lisis del almid&oacute;n y a la degradaci&oacute;n de la hemicelulosa presente en este material vegetal<sup>18</sup>. Los cambios din&aacute;micos en la matriz de la superficie del sustrato pueden afectar los resultados de la actividad enzim&aacute;tica<sup>3</sup>. Esto podr&iacute;a explicar el comportamiento de la actividad lacasa cuando se emplea c&aacute;scara de pl&aacute;tano maduro. El incremento del contenido de lignina y la deficiencia de hemicelulosa en la c&aacute;scara a medida que se madura el pl&aacute;tano podr&iacute;a contribuir al aumento en la producci&oacute;n de enzimas ligninol&iacute;ticas como la lacasa.</p>      <p>Las condiciones de crecimiento constituyen un factor importante que influye en la eficiencia de los hongos para producir lacasa. Por ejemplo, cuando se suplementan las c&aacute;scaras de cacahuete con diferentes sustratos ricos en nitr&oacute;geno a una raz&oacute;n de 9:1, la productividad de lacasa aumenta de 2.2 a 49.2 U/g de sustrato seco<sup>20</sup>. Los niveles de la actividad lacasa se pueden mejorar despu&eacute;s de optimizar las condiciones de cultivo y de adicionar inductores (fuentes de nitr&oacute;geno y xilidina). Reddy et al. (2003)<sup>6</sup> encontraron valores de lacasa entre 0.11 y 1.66 U/mg de prote&iacute;na de sustrato despu&eacute;s del d&iacute;a 10 de cultivo con <i>P. ostreatus</i> y <i>P. sajor-caju</i> sobre residuos agr&iacute;colas de banano. Ramirez et al. (2003)<sup>21</sup> reportaron valores de 20 U/ml de actividad lacasa utilizando P. ostreaus en un sustrato de vinaza y salvado de trigo (1:1). Sin embargo, estos resultados son particulares para cada sistema y dependen del sustrato y las condiciones de cultivo.</p>      <p>Membrillo et al. (2008)<sup>22</sup> sugirieron que el tama&ntilde;o de part&iacute;cula y la geometr&iacute;a del bagazo de ca&ntilde;a de az&uacute;car afectan los niveles de lacasa producidos con <i>P. ostreatus</i>. Teniendo en cuenta lo expuesto anteriormente, es posible sugerir que el sustrato conformado por pl&aacute;tano maduro y bagazo de ca&ntilde;a de az&uacute;car (PMB) genera un complemento que aumenta la actividad lacasa del <i>P. ostreatus</i> con las condiciones propuestas en este estudio. La c&aacute;scara de pl&aacute;tano puede ser un buen sustrato cuando se suplementa con otro tipo de residuo lignocelul&oacute;sico, como por ejemplo el bagazo de ca&ntilde;a.</p>      <p><font size="3"><b>Conclusiones</b></font></p>      <p>El <i>Pleurotus ostreatus</i> es un hongo comestibles que tiene la capacidad de producir complejos enzim&aacute;ticos con actividad lignol&iacute;tica, como la lacasa. El estudio de la producci&oacute;n de este tipo de enzimas, de gran inter&eacute;s para la industria alimentaria, ambiental y qu&iacute;mica, a partir de c&aacute;scaras de pl&aacute;tano de diferentes estados de maduraci&oacute;n y bagazo de ca&ntilde;a es una buena alternativa para el aprovechamiento de residuos org&aacute;nicos por medio de procesos biotecnol&oacute;gicos. Durante el desarrollo de este trabajo, se encontr&oacute; que el <i>Pleurotus ostreatus</i> produce mayor cantidad de lacasa (19.4 U/ml) en el d&iacute;a 24 de cultivo utilizando como sustrato c&aacute;scara de pl&aacute;tano maduro y suplementado con bagazo de ca&ntilde;a (50/50). Adem&aacute;s, cuando se desarrolla completamente el micelio se presenta la mayor actividad de la lacasa, y posteriormente desciende debido al desarrollo de los cuerpos fruct&iacute;feros del hongo. Se recomienda estudiar el efecto de otros suplementos lignocelul&oacute;sicos y otras condiciones de proceso (pH, temperatura) para encontrar mayores producciones de la enzima lacasa.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>Agradecimientos</b></font></p>      <p>Se reconoce la ayuda ofrecida por el laboratorio de biotecnolog&iacute;a de la Universidad Jorge Tadeo Lozano. Adem&aacute;s se agradece los aportes realizados por la Ingeniera Yineth Pi&ntilde;eros para desarrollar este estudio.</p>  <hr>      <p><font size="3"><b>Referencias</b></font></p>      <!-- ref --><p>1. AGRONET. &Aacute;rea y producci&oacute;n agr&iacute;cola y pecuaria. An&aacute;lisis y Estad&iacute;sticas. &#91;en l&iacute;nea&#93;. Bogot&aacute;: Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, 2008. &#91;Citado 15 de diciembre 2009&#93;. URL disponible en:  &lt;<a href="http://www.agronet.gov.co" target="_blank">http://www.agronet.gov.co</a>&gt;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000066&pid=S1794-4449201000020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. COLOMBIA. MINISTERIO DE AGRICULTURA Y DESARROLLO RURAL. La cadena del pl&aacute;tano en Colombia. Documento de trabajo N&deg; 102. Bogot&aacute;: El Ministerio, 2006. 40 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000067&pid=S1794-4449201000020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. LIU, Lihua; et al. Fermentation optimization and characterization of the laccase from <i>Pleurotus ostreatus</i> strain 10969. <u>En</u>: Enzyme and Microbial Technology. 2009. Vol. 44, no. 6-7, p. 426–433.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S1794-4449201000020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. DUFOUR, Dominique; et al. Diversidad del pl&aacute;tano de cocci&oacute;n consumido en Colombia. <u>En</u>: Congreso Iberoamericano de Ingenier&iacute;a de Alimentos. (7: 6-9, septiembre: Bogot&aacute;). Memorias. Bogot&aacute;: Universidad de la Sabana, 2009.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S1794-4449201000020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. LY, J. Bananas y pl&aacute;tanos para alimentar cerdos: aspectos de la composici&oacute;n qu&iacute;mica de las frutas y de su palatabilidad. <u>En</u>: Revista Computadorizada de Producci&oacute;n Porcina. 2004. Vol. 11, no. 3, p. 5-24.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S1794-4449201000020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. REDDY, G.V.; et al. Utilization of banana waste for the production of lignolytic and cellulolytic enzymes by solid substrate fermentation using two <i>Pleurotus</i> species (<i>P. ostreatus</i> and <i>P. sajor-caju</i>). <u>En</u>: Process Biochemistry. 2003. Vol. 38, no. 10, p. 1457-1462.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S1794-4449201000020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. OSMA, J Johann F.; TOCA HERRERA, Jos&eacute; L. y RODR&Iacute;GUEZ-COUTO, Susana. Banana skin: A novel waste for laccase production by <i>Trametes pubescens</i> under solid-state conditions. Application to synthetic dye decolouration. <u>En</u>: Dyes and Pigments. 2007. Vol. 75, no. 1 p. 32-37.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S1794-4449201000020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. GRANDA, Diana M.; MEJ&Iacute;A, Amanda y JIM&Eacute;NEZ, Gloria. Utilizaci&oacute;n de residuos de pl&aacute;tano para la producci&oacute;n de metabolitos secundarios por fermentaci&oacute;n en estado s&oacute;lido con el hongo <i>Lentinus crinitus</i>. <u>En</u>: Vitae, Revista de la Facultad de Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica. 2005. Vol. 12, no. 2, p. 13-20.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S1794-4449201000020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. MOTATO, Karina; MEJ&Iacute;A, Amanda y LE&Oacute;N, Angela. Evaluaci&oacute;n de los residuos agroindustriales de pl&aacute;tano (<i>Musa paradis&iacute;aca</i>) y aserr&iacute;n de abarco (<i>Cariniana piriformes</i>) como sustratos para el cultivo del hongo <i>Pleurotus djamor</i>. <u>En</u>: Vitae, Revista de la Facultad de Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica. 2006. Vol. 13, no. 1, p. 24-29.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S1794-4449201000020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. RODR&Iacute;GUEZ, Suy&eacute;n; et al. Tratamiento de efluentes industriales coloreados con <i>Pleurotus</i> spp. <u>En</u>: Revista Iberoamericana de Micolog&iacute;a. 2003. Vol. 20, p. 164-168.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S1794-4449201000020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. WHITAKER R. Handbook of Food Enzymology. New York, NY, USA: Marcel Dekker Inc., p 526. 2002.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S1794-4449201000020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. BUSWELL, J.A.; CAI, Yijin y CHANG, Shu-Ting. Effect of nutrient nitrogen and manganeso on manganeso peroxidase and lacase production by <i>Lentinula (Lentinus) edodes</i>. <u>En</u>: FEMS Microbiolology Letter. 1995. Vol. 128, no. 1, p. 81-88.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S1794-4449201000020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. CAVALLAZI, J. R.; DE ALMEIDA, M. G. y MEGUMI, K. M. Laccase production by <i>Lepista sordida</i>. <u>En</u>: Brazilian Journal of Microbiology. 2004. Vol. 34, p. 261-263.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S1794-4449201000020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. L&Oacute;PEZ, C.; et al. Producci&oacute;n de la enzima lacasa por el hongo <i>clasdosporiumc clasdoporioides</i> en presencia de fenantreno. <u>En</u>: VI Congreso de la Sociedad Cubana de Bioingenier&iacute;a. Habana, Cuba: Sociedad Cubana de Bioingenier&iacute;a, 2005. p. 2-6.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S1794-4449201000020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. MURRIETA-HERNADEZ, Dulce Mar&iacute;a; MATA, Gerardo y IGLESIAS-ANDREU, Lourdes. Cambios en la producci&oacute;n de lacasa por el hongo <i>Pleurotus pulmonarius (FR) qu&eacute;l</i>. cultivado en pulpa de caf&eacute; en confrontaci&oacute;n con <i>Trichoderma viride pers</i>., un hongo contaminante. <u>En</u>: Foresta Veracruzana. 2002. 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