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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Design of recombinant vaccines for Gumboro, Newcastle and Avian Infectious Laryngotracheitis]]></article-title>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Diseño de vacunas recombinantes en las enfermedades de Gumboro, Newcastle y Laringotraqueítis Infecciosa Aviar]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[La industria avícola ha experimentado un crecimiento significativo en los últimos años a nivel mundial. Igualmente, el sector avícola colombiano se ha consolidado como una industria dinámica y promisoria con altos rendimientos y una importante participación en el producto interno bruto (PIB). Sin embargo, este desarrollo se ha afectado por las amenazas o los retos a los que la avicultura se enfrenta. Dos de los grandes desafíos que esta industria debe enfrentar son la prevención y el control de las enfermedades infecciosas y la inocuidad de los productos avícolas. En los últimos años, los mayores esfuerzos se han centrado en el control de los agentes infecciosos causantes de pérdidas económicas por medio del uso de planes profilácticos con biológicos seguros, eficaces y prácticos. Estos inóculos usados para la inmunización se han modificado con la evolución de la ingeniería genética dando como resultado el diseño de vacunas de ADN recombinante. En este artículo se presenta una actualización sobre el diseño de las vacunas recombinantes y su uso para el control de las enfermedades de Gumboro, Newcastle y laringotraqueítis infecciosa aviar, abordando temas asociados con los principios de la vacunación en avicultura, la descripción y la aplicación de este tipo de inmunógenos, así como las ventajas y las desventajas de dicho grupo de vacunas.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[A indústria avícola tem experimentado um crescimento significativo nos últimos anos ao redor do mundo. Igualmente, o setor avícola colombiano tem se consolidado como uma indústria dinâmica e promissória com maiores rendimentos e uma importante participação no produto interno bruto (PIB). Embora, este desenvolvimento tem se visto afetado pelas ameaças ou os desafios que apresenta a avicultura. Dois dos grandes desafios que esta indústria tem que enfrentar são a prevenção e o controle das doenças infecciosas e a inocuidade dos produtos avícolas. Nos últimos anos, os maiores esforços têm se centrado no controle de agentes infecciosos causantes de perdas econômicas por médio do uso de planos profiláticos com biológicos seguros, eficazes e práticos. Esses inoculos usados para a imunização tem sido modificados com a evolução da engenharia genética gerando como resultado o desenho de vacinas de DNA recombinante. Neste artigo, apresenta-se uma atualização sobre o desenho de vacinas recombinantes e sua utilização para o controle das doenças: Gumboro, Newcastle e Laringotraqueite infecciosa aviar, abordando temas associados com os princípios de vacinação em avicultura, a descrição e aplicação deste tipo de imunógenos, assim como as vantagens e desvantagens deste grupo de vacinas]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2">     <p align="center"><font size="4"><b>Design of recombinant vaccines for Gumboro, Newcastle and Avian Infectious Laryngotracheitis</b></font><Sup>&curren;</Sup></p>     <p align="center"><font size="3"><b><I>Dise&ntilde;o de vacunas recombinantes en las enfermedades de Gumboro, Newcastle y Laringotraque&iacute;tis Infecciosa Aviar</I></b></font></p>     <p align="center"><font size="3"><b><I>Desenho de vacinas recombinantes nas doen&ccedil;as de Gumboro, Newcastle e Laringotraqueite infecciosa aviar</I></b></font></p>     <p align="center">Andr&eacute;s Felipe Santander Torres<Sup>1</Sup>, MV, MSc(c); Diana Claudia Marcela &Aacute;lvarez Espejo<Sup>2</Sup>, MV, MSc; Javier Andr&eacute;s Jaimes-Olaya<Sup>3</Sup>, MV, MSc, MBA; Arlen Patricia G&oacute;mez Ram&iacute;rez<Sup>4</Sup>, MV, PhD; Luis Carlos Villamil Jim&eacute;nez<Sup>5</Sup>*, MV, MSc, PhD.</p>     <p><Sup>&curren;</Sup>Para citar este art&iacute;culo: Santander Torres AF, &Aacute;lvarez Espejo DCM, Jaimes-Olaya JA, G&oacute;mez Ram&iacute;rez AP, Villamil Jim&eacute;nez LC. Dise&ntilde;o de vacunas recombinantes en las enfermedades de Gumboro, Newcastle y Laringotraque&iacute;tis Infecciosa Aviar. Rev CES Med Zootec. 2014; Vol 9(2): 262-280.</p>     <p><I>*Autor para correspondencia: Luis Carlos Villamil Jim&eacute;nez. Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de La Salle, Cr. 7 No. 172-85 Bogot&aacute;, Colombia.  E-mail: <a href="mailto:luvillamil@unisalle.edu.co">luvillamil@unisalle.edu.co</a></I></p>     <p><Sup>1</Sup> Estudiante Maestr&iacute;a en Ciencias Veterinarias. Grupo de Investigaci&oacute;n Epidemiolog&iacute;a y Salud P&uacute;blica. Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de La Salle. Bogot&aacute;, Colombia.    <br> <Sup>2</Sup> Investigadora. Grupo de Investigaci&oacute;n Epidemiolog&iacute;a y Salud P&uacute;blica. Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de La Salle. Bogot&aacute;, Colombia.    <br> <Sup>3</Sup> Docente asistente, Programa de Medicina Veterinaria, Grupo de Investigaci&oacute;n Epidemiolog&iacute;a y Salud P&uacute;blica. Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de La Salle. Bogot&aacute;, Colombia.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <Sup>4</Sup> Docente asociada, Programa de Medicina Veterinaria, Grupo de Investigaci&oacute;n Epidemiolog&iacute;a y Salud P&uacute;blica. Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de La Salle. Bogot&aacute;, Colombia.    <br> <Sup>5</Sup> *Docente titular, Programa de Medicina Veterinaria, Grupo de Investigaci&oacute;n Epidemiolog&iacute;a y Salud P&uacute;blica. Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de La Salle, Cr. 7 No. 172-85 Bogot&aacute;, Colombia. Email: <a href="mailto:luvillamil@unisalle.edu.co">luvillamil@unisalle.edu.co</a></p>     <p align="center"><I>(Recibido: 22 de enero, 2014; aceptado: 10 de octubre, 2014)</I></p> <hr>     <p><b>Abstract</b></p>     <p>The poultry industry worldwide has experienced significant growth in recent years. Likewise, the Colombian poultry sector has become a dynamic and promising industry with high yields and a significant share of the gross domestic product (GDP). However, this development has not been exempt of threats and challenges. Two of the biggest challenges faced by the industry are the prevention and control of infectious diseases and the safety of poultry products. In recent years, major efforts have focused on the control of infectious agents that cause economic losses by implementing prophylactic plans with safe, effective and practical vaccines. These immunizing inocula have changed with genetic engineering developments resulting in the design of recombinant DNA vaccines. This article provides an update on the design of recombinant vaccines and their use for controlling Gumboro, Newcastle and avian infectious laryngotracheitis. It addresses issues such as poultry vaccination principles, description and application of immunogens, and the advantages and disadvantages of this group of vaccines. </p>     <p><b>Key words</b>: <I>Avian infectious laryngotracheitis, Gumboro disease, poultry, Newcastle disease, recombinant vaccines. </I></p> <hr>     <p><b>Resumen</b></p>     <p>La industria av&iacute;cola ha experimentado un crecimiento significativo en los &uacute;ltimos a&ntilde;os a nivel mundial. Igualmente, el sector av&iacute;cola colombiano se ha consolidado como una industria din&aacute;mica y promisoria con altos rendimientos y una importante participaci&oacute;n en el producto interno bruto (PIB). Sin embargo, este desarrollo se ha afectado por las amenazas o los retos a los que la avicultura se enfrenta. Dos de los grandes desaf&iacute;os que esta industria debe enfrentar son la prevenci&oacute;n y el control de las enfermedades infecciosas y la inocuidad de los productos av&iacute;colas. En los &uacute;ltimos a&ntilde;os, los mayores esfuerzos se han centrado en el control de los agentes infecciosos causantes de p&eacute;rdidas econ&oacute;micas por medio del uso de planes profil&aacute;cticos con biol&oacute;gicos seguros, eficaces y pr&aacute;cticos. Estos in&oacute;culos usados para la inmunizaci&oacute;n se han modificado con la evoluci&oacute;n de la ingenier&iacute;a gen&eacute;tica dando como resultado el dise&ntilde;o de vacunas de ADN recombinante. En este art&iacute;culo se presenta una actualizaci&oacute;n sobre el dise&ntilde;o de las vacunas recombinantes y su uso para el control de las enfermedades de Gumboro, Newcastle y laringotraque&iacute;tis infecciosa aviar, abordando temas asociados con los principios de la vacunaci&oacute;n en avicultura, la descripci&oacute;n y la aplicaci&oacute;n de este tipo de inmun&oacute;genos, as&iacute; como las ventajas y las desventajas de dicho grupo de vacunas.</p>     <p><b>Palabras clave</b>: <I>Avicultura, enfermedad de Gumboro, enfermedad de Newcastle, Laringotraque&iacute;tis Infecciosa Aviar, vacunas recombinantes.</I></p> <hr>     <p><b>Resumo</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A ind&uacute;stria av&iacute;cola tem experimentado um crescimento significativo nos &uacute;ltimos anos ao redor do mundo. Igualmente, o setor av&iacute;cola colombiano tem se consolidado como uma ind&uacute;stria din&acirc;mica e promiss&oacute;ria com maiores rendimentos e uma importante participa&ccedil;&atilde;o no produto interno bruto (PIB). Embora, este desenvolvimento tem se visto afetado pelas amea&ccedil;as ou os desafios que apresenta a avicultura. Dois dos grandes desafios que esta ind&uacute;stria tem que enfrentar s&atilde;o a preven&ccedil;&atilde;o e o controle das doen&ccedil;as infecciosas e a inocuidade dos produtos av&iacute;colas. Nos &uacute;ltimos anos, os maiores esfor&ccedil;os t&ecirc;m se centrado no controle de agentes infecciosos causantes de perdas econ&ocirc;micas por m&eacute;dio do uso de planos profil&aacute;ticos com biol&oacute;gicos seguros, eficazes e pr&aacute;ticos. Esses inoculos usados para a imuniza&ccedil;&atilde;o tem sido modificados com a evolu&ccedil;&atilde;o da engenharia gen&eacute;tica gerando como resultado o desenho de vacinas de DNA recombinante. Neste artigo, apresenta-se uma atualiza&ccedil;&atilde;o sobre o desenho de vacinas recombinantes e sua utiliza&ccedil;&atilde;o para o controle das doen&ccedil;as: Gumboro, Newcastle e Laringotraqueite infecciosa aviar, abordando temas associados com os princ&iacute;pios de vacina&ccedil;&atilde;o em avicultura, a descri&ccedil;&atilde;o e aplica&ccedil;&atilde;o deste tipo de imun&oacute;genos, assim como as vantagens e desvantagens deste grupo de vacinas.</p>     <p><b>Palavras-chave</b>: <I>Avicultura, doen&ccedil;a de Gumboro, doen&ccedil;a de Newcastle, Laringotraqueite infecciosa aviar, vacinas recombinantes. </I></p> <hr>     <p><b>Introducci&oacute;n</b></p>     <p>Desde hace m&aacute;s de 60 a&ntilde;os, la producci&oacute;n av&iacute;cola mundial ha experimentado un crecimiento de manera r&aacute;pida y constante. Entre los a&ntilde;os 2000 al 2010, la tasa de crecimiento anual en producci&oacute;n de carne de pollo y de huevo fue en promedio de 3,9 (<a href="#f1">Figura 1</a>) y  2,1% (<a href="#f2">Figura 2</a>), respectivamente <Sup>97</Sup>. En Colombia, el inicio de la avicultura comercial se present&oacute; entre los a&ntilde;os 1940 a 1960, &eacute;poca en la cual solo exist&iacute;an producciones de traspatio. Desde este periodo el progreso en el sector se ha presentado gracias a que los avicultores han implementado estrategias de desarrollo, enfocadas principalmente en la comercializaci&oacute;n, la integraci&oacute;n vertical de la cadena productiva y la renovaci&oacute;n tecnol&oacute;gica de las explotaciones <Sup>80</Sup>. Algunas zonas del pa&iacute;s como Cundinamarca, Santander, Valle, Antioquia y Tolima poseen caracter&iacute;sticas aptas para la producci&oacute;n y la distribuci&oacute;n de los productos av&iacute;colas, es por esto que estas regiones se han consolidado en las &aacute;reas de mayor productividad para los avicultores <Sup>3, 5,6</Sup>. </p>     <p align="center"><a name="f1"></a><img src="img/revistas/cmvz/v9n2/v9n2a11f1.jpg"></p>     <p align="center"><a name="f2"></a><img src="img/revistas/cmvz/v9n2/v9n2a11f2.jpg"></p>     <p>La avicultura desempe&ntilde;a un papel fundamental en la econom&iacute;a colombiana, generando cerca de 240.000 empleos <Sup>80</Sup> y una alta participaci&oacute;n en el producto interno bruto nacional (PIB) (<a href="#f3">Figura 3</a>) <Sup>3</Sup>. En los &uacute;ltimos 20 a&ntilde;os el sector av&iacute;cola se ha consolidado en la producci&oacute;n pecuaria m&aacute;s din&aacute;mica dentro del pa&iacute;s, con un crecimiento promedio del 6% entre los a&ntilde;os 2006 a 2009 <Sup>81</Sup>, 4,6 % en el a&ntilde;o 2010 y 3,8 % en el 2011, posicionando al pollo como el tipo de carne con el mayor consumo per c&aacute;pita de Colombia (<a href="#f4">Figura 4</a>). En el 2012 se report&oacute; un encasetamiento de 633.399 pollos de engorde y 32.628.184 de ponedora comercial<Sup>6,90,97</Sup>, demostrando que en las &uacute;ltimas d&eacute;cadas Colombia ha seguido la tendencia mundial de crecimiento constante de la industria <Sup>4, 86</Sup>. </p>     <p align="center"><a name="f3"></a><img src="img/revistas/cmvz/v9n2/v9n2a11f3.jpg"></p>     <p align="center"><a name="f4"></a><img src="img/revistas/cmvz/v9n2/v9n2a11f4.jpg"></p>     <p>El crecimiento del sector se ha visto condicionado por dos aspectos de importancia: la sanidad de la producci&oacute;n aviar y la inocuidad de los productos av&iacute;colas. Dentro del tema de sanidad cabe resaltar tres enfermedades de control oficial: la influenza aviar (el pa&iacute;s fue declarado libre por el Instituto Colombiano Agropecuario - ICA, que efectu&oacute; la autodeclaraci&oacute;n por medio de la Resoluci&oacute;n 1610 de 2011), la enfermedad de Newcastle (end&eacute;mica declarada de prioridad sanitaria en la Ley 1255 de 2008) y la Salmonelosis aviar (zoon&oacute;tica). Tambi&eacute;n existe el grupo de enfermedades que representan p&eacute;rdidas econ&oacute;micas para los productores, tales como la enfermedad de Gumboro, la Micoplasmosis aviar, la Bronquitis Infecciosa, la Laringotraque&iacute;tis Infecciosa Aviar, entre otras. En cuanto a la inocuidad de los productos, los datos son inciertos; el ICA cuenta con una normatividad vigente para el control de los residuos qu&iacute;micos, sin embargo no es com&uacute;n el uso de la caracterizaci&oacute;n de estos productos o de posibles pat&oacute;genos, exceptuando a la <I>Salmonella</I> spp. en pollo crudo, la cual en algunos estudios se ha determinado una prevalencia cercana al 7% <Sup>89</Sup>. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Entre las estrategias empleadas para la prevenci&oacute;n y el control de las enfermedades infecciosas en la industria av&iacute;cola est&aacute;n la bioseguridad y la vacunaci&oacute;n; &eacute;sta &uacute;ltima es importante dado que diversas enfermedades infecciosas tienen una distribuci&oacute;n mundial o en el caso de algunos pat&oacute;genos se transportan a trav&eacute;s del aire ("<I>airborne pathogens</I>"), lo que dificulta su control incluso con medidas de bioseguridad <Sup>21</Sup>. Adicionalmente, se debe considerar que las caracter&iacute;sticas de algunos virus pueden modificar la respuesta a los desinfectantes utilizados en las granjas. Los derivados fen&oacute;licos poseen un efecto limitado sobre virus desnudos, mientras que se ha demostrado que la cetrimida, el cloruro de benzalconio, la clorhexidina y el yodo povidona si son efectivos contra virus como el de la inmunodeficiencia humana y el Herpes Virus tipo 1 <Sup>95</Sup>. En el caso del virus de la enfermedad de Gumboro se ha reportado la baja sensibilidad a procesos de eliminaci&oacute;n con &eacute;ter, cloroformo y fenol y a desinfectantes como amonios cuaternarios. La formalina al 0,5 % y los yodados son capaces de reducir la infectividad del virus pero no lo elimina, lo cual ha favorecido su persistencia en las granjas <Sup>58</Sup>.</p>      <p>A pesar de la continua implementaci&oacute;n de las estrategias mencionadas anteriormente, se siguen presentando brotes de algunas enfermedades infecciosas en las aves comerciales. Es por esto que el estudio de los agentes infecciosos y su neutralizaci&oacute;n o atenuaci&oacute;n ha continuado a trav&eacute;s de los a&ntilde;os. Los recientes avances en la biolog&iacute;a molecular, la ingenier&iacute;a gen&eacute;tica recombinante y la inmunolog&iacute;a han generado un cambio en el dise&ntilde;o de vacunas empleadas en medicina veterinaria, mejorando de forma significativa la seguridad, la eficacia y el costo de las mismas <Sup>8, 98</Sup>. Es as&iacute; como actualmente se reconocen tres generaciones en el dise&ntilde;o de inmun&oacute;genos. Las vacunas de primera generaci&oacute;n son aquellas que requieren el cultivo de los agentes pat&oacute;genos, los cuales son administrados en forma atenuada (vacunas vivas atenuadas) o inerte (vacunas muertas o inactivadas). Las vacunas de segunda generaci&oacute;n se producen utilizando s&oacute;lo la parte espec&iacute;fica del pat&oacute;geno que estimula la respuesta inmune, mientras que las de tercera generaci&oacute;n utilizan el ADN de los agentes de manera directa o indirecta en un virus o una bacteria recombinante. </p>      <p>Dentro de estas nuevas generaciones de biol&oacute;gicos se incluyen vacunas de p&eacute;ptidos sint&eacute;ticos (secuencias de amino&aacute;cidos de prote&iacute;nas antig&eacute;nicas), vacunas antiidiotipo (anticuerpos que reproducen la morfolog&iacute;a del ant&iacute;geno), vacunas de prote&iacute;nas y p&eacute;ptidos recombinantes (a trav&eacute;s de la producci&oacute;n de prote&iacute;nas por inserci&oacute;n del ADN en sistemas de expresi&oacute;n como bacterias) y vacunas g&eacute;nicas (material gen&eacute;tico del pat&oacute;geno como ADN desnudo o en vectores v&iacute;ricos o bacterianos) <Sup>57,65</Sup>.<Sup>67</Sup> En la industria av&iacute;cola se han empleado de forma rutinaria las vacunas de primera generaci&oacute;n; sin embargo, en la actualidad se est&aacute; implementado el uso de los biol&oacute;gicos de tercera generaci&oacute;n como las vacunas de ADN recombinante. </p>      <p>En algunos estudios realizados en pa&iacute;ses como China, B&eacute;lgica, Italia, Francia y Estados Unidos, se presentan resultados relacionados con los porcentajes de cobertura de aves vacunadas con este tipo de biol&oacute;gicos. En el estudio de Rong <I>et al. </I>en el 2007 se utiliz&oacute; una vacuna recombinante con la prote&iacute;na VP2 contra la enfermedad de Gumboro, donde la tasa de protecci&oacute;n medida a trav&eacute;s de la detecci&oacute;n de anticuerpos oscil&oacute; entre 72 y 95%. De la misma manera, otro estudio en campo en el que se compar&oacute; la efectividad de una vacuna recombinante comercial contra la misma enfermedad (Vaxxitek<Sup>&reg;</Sup>) frente a vacunas tradicionales elaboradas con cepas intermedias, se evidenci&oacute; que los t&iacute;tulos de anticuerpos se mantuvieron altos (&gt;6.000) en los grupos que recibieron la vacuna recombinante. En contraste, los t&iacute;tulos de anticuerpos fueron bajos (&lt;4.000) en aves vacunadas con las cepas intermedias, los cuales s&oacute;lo aumentaron despu&eacute;s del d&iacute;a 42 <Sup>77</Sup>. Este tipo de investigaciones no han sido exclusivas para la enfermedad de Gumboro, en estudios similares se obtuvieron seroconversiones y respuestas inmunes efectivas frente a retos en el 75 al 92% de las aves para el caso de vacunas recombinantes contra laringotraque&iacute;tis infecciosa aviar <Sup>91</Sup> y del 70% cuando se emplearon vacunas recombinantes para el control de la enfermedad de Newcastle <Sup>80</Sup>. </p>      <p>El uso de este tipo de vacunas se ha extendido en el pa&iacute;s, sin embargo a&uacute;n se desconocen algunos aspectos relacionados con la tecnolog&iacute;a utilizada y con los resultados de estos productos en campo. Por lo anterior, el objetivo de esta revisi&oacute;n de literatura es describir los principios y las aplicaciones de las vacunas de ADN recombinante dise&ntilde;adas para el control de las enfermedades infecciosas en avicultura, haciendo &eacute;nfasis en los estudios realizados con los virus de Gumboro, Newcastle y laringotraque&iacute;tis infecciosa aviar.</p>     <p><b>Principios de la vacunaci&oacute;n en avicultura</b></p>     <p>Para contrarrestar y disminuir la morbilidad y la mortalidad de las diferentes enfermedades infecciosas, existen diferentes m&eacute;todos de intervenci&oacute;n dentro de los cuales uno de los m&aacute;s exitosos ha sido la vacunaci&oacute;n. &Eacute;sta se fundamenta en estimular la respuesta inmune natural que genera un microorganismo dentro del hospedero. La inoculaci&oacute;n de estos agentes no debe causar enfermedad pero debe ser potente y eficaz. El conocimiento inmunol&oacute;gico es la base para la producci&oacute;n de diferentes tipos de vacunas, cada una con ventajas y desventajas ante los pat&oacute;genos que combate <Sup>98</Sup>. Convencionalmente se consideraban vacunas aquellos biol&oacute;gicos elaborados a partir de pat&oacute;genos atenuados (convertido en no patog&eacute;nicos por pasajes simult&aacute;neos en huevos embrionados o cultivo de tejidos) o pat&oacute;genos muertos (inactivados por calor o por desnaturalizaci&oacute;n qu&iacute;mica). </p>      <p>Las vacunas con agentes muertos son las menos utilizadas en el control de las enfermedades de origen viral en avicultura, ya que presentan una menor efectividad haci&eacute;ndose necesarias dosis repetidas para estimular correctamente al sistema inmune, a pesar de su alto nivel de seguridad (entendida como la probabilidad de generar enfermedad por la vacunaci&oacute;n). Sin embargo, las vacunas atenuadas tambi&eacute;n pueden presentar desventajas como el riesgo de revertir su patogenicidad, especialmente en individuos con compromiso inmunol&oacute;gico <Sup>97, 91, 98</Sup>. </p>      <p>Este evento se ha relacionado con la restituci&oacute;n de las mutaciones generadas durante el proceso de atenuaci&oacute;n del virus parental, lo cual puede resultar en cambios del genotipo mutante al original <Sup>18</Sup>. Tambi&eacute;n se ha reportado la reversi&oacute;n de la virulencia de cepas vacunales durante el proceso de replicaci&oacute;n en el individuo o durante la diseminaci&oacute;n del virus en la poblaci&oacute;n vacunada <Sup>59</Sup>. En el caso de los virus ARN se reportan tasas altas de mutaci&oacute;n por ciclo de replicaci&oacute;n asociadas a la ARN polimerasa dependiente de ARN,  lo cual se evidenci&oacute; en los virus causantes de la estomatitis vesicular <Sup>24</Sup> y la enfermedad de Gumboro <Sup>79</Sup>. </p>      <p>En la industria av&iacute;cola se hacen necesarios m&eacute;todos efectivos de vacunaci&oacute;n masiva con el fin de atenuar o disminuir los efectos de un pat&oacute;geno espec&iacute;fico que pueda afectar la producci&oacute;n de un lote de aves. Las vacunas con virus atenuados son las m&aacute;s utilizadas en el sector, ya que presentan la versatilidad de diferentes medios de administraci&oacute;n individual o colectiva <Sup>97</Sup>. Entre los m&eacute;todos de administraci&oacute;n individual se encuentran la gota ocular o nasal, la administraci&oacute;n oral y la inyecci&oacute;n subcut&aacute;nea, intramuscular o <I>in ovo</I>. En los m&eacute;todos masivos se destacan la administraci&oacute;n en el agua de bebida y la aplicaci&oacute;n por aspersi&oacute;n (<I>spray</I>) <Sup>97</Sup>. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Como se mencion&oacute; anteriormente, uno de los &uacute;ltimos avances en el campo de la vacunaci&oacute;n en medicina humana y veterinaria corresponde al dise&ntilde;o de las vacunas de ADN recombinante. Este tipo de agentes inmunizantes presenta algunas de las caracter&iacute;sticas que son deseadas en un inmun&oacute;geno; entre &eacute;stas se destacan la generaci&oacute;n de memoria inmunol&oacute;gica y la producci&oacute;n de inmunidad adaptativa. Otra caracter&iacute;stica relevante es la seguridad, debido a que no producen la enfermedad y los efectos secundarios generados por la vacunaci&oacute;n son m&iacute;nimos. Tambi&eacute;n est&aacute; la eficacia, debido a que protegen al individuo contra la enfermedad producida por el pat&oacute;geno espec&iacute;fico, y la practicidad ya que el costo de la vacuna es relativamente asequible, su estabilidad durante el almacenamiento es mayor y son consideradas de f&aacute;cil administraci&oacute;n<Sup>26</Sup>. En resumen, las vacunas de ADN recombinante tienen la ventaja de la seguridad de las vacunas inactivadas combinada con la eficacia de los inmun&oacute;genos vivos atenuados<Sup>21</Sup>.  Con estas vacunas tambi&eacute;n se han probado otras formas de inmunizaci&oacute;n como la vacunaci&oacute;n <I>in ovo</I>, especialmente para el control de las enfermedades de Marek y Gumboro, administrando el agente en huevos f&eacute;rtiles a trav&eacute;s de la membrana corioalantoidea entre los d&iacute;as 17 y 19 <Sup>80, 92, 98</Sup>. </p>      <p>A nivel mundial hasta el 2005, este tipo de vacunas solo estaba autorizado para prevenir el virus del oeste del Nilo en los caballos y el virus de la necrosis hematopoy&eacute;tica infecciosa del salm&oacute;n<Sup>89</Sup>. Hoy en d&iacute;a se encuentran diferentes estudios enfocados a las vacunas de ADN recombinante en varias &aacute;reas y sobre diferentes enfermedades infecciosas. En avicultura se destaca su utilidad en la prevenci&oacute;n y el control de los virus de la enfermedad de Gumboro, Newcastle y laringotraque&iacute;tis infecciosa aviar <Sup>89, 98</Sup>.</p>      <p>Sin embargo, estos estudios demuestran que los resultados para el control de pat&oacute;genos son prometedores m&aacute;s no concluyentes, debido a que existen otros factores que pueden influenciar su efectividad. Lo anterior, justifica la realizaci&oacute;n de estudios que validen la forma como se realiza la evaluaci&oacute;n de la eficiencia de este tipo de vacunas, debido a que cada inmun&oacute;geno recombinante posee una estructura diferente, as&iacute; como una composici&oacute;n variable de los adyuvantes y diversas rutas de administraci&oacute;n generando una respuesta inmune la cual no es predecible f&aacute;cilmente <Sup>85</Sup>. Entre los factores que pueden influenciar su efectividad tambi&eacute;n se destaca el estado inmunol&oacute;gico de las aves en casos que exista inmunidad previa contra el vector viral, fallas humanas en la administraci&oacute;n debido a que este tipo de vacunas com&uacute;nmente se aplican <I>in ovo</I> mediante procedimientos intensivos y el dise&ntilde;o del inmun&oacute;geno puesto que se reportan problemas de seguridad relacionados con la replicaci&oacute;n del vector viral que pueden generar respuestas inmunol&oacute;gicas potentes similares al genotipo de origen y eventos de recombinaci&oacute;n y/o reversi&oacute;n de la virulencia <Sup>47</Sup>. </p>     <p><b>Vacunas de ADN recombinante y su aplicaci&oacute;n en la industria av&iacute;cola</b></p>     <p>Las vacunas de ADN recombinante est&aacute;n compuestas por organismos vivos los cuales han sido modificados, es decir los genes virulentos han sido eliminados y reemplazados por genes de otros pat&oacute;genos contra los cuales se desea inmunizar. Este tipo de vacunaci&oacute;n se conoce tambi&eacute;n como "<I>carrier system</I>" debido al uso de un virus o una bacteria para llevar o transportar el ant&iacute;geno del cual se quiere generar inmunidad <Sup>89,97</Sup>. El proceso para la realizaci&oacute;n de las vacunas de ADN recombinante consiste en una amplificaci&oacute;n inicial del genoma del agente infeccioso a trav&eacute;s de la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) con el reconocimiento del gen que codifica la prote&iacute;na inmunog&eacute;nica, luego este fragmento se inserta dentro de un pl&aacute;smido eucariota o en un virus apropiado para la expresi&oacute;n, la replicaci&oacute;n o el clonaje de esta prote&iacute;na en una bacteria. Por &uacute;ltimo se realiza la purificaci&oacute;n de los pl&aacute;smidos con las prote&iacute;nas, las cuales se inoculan y generan una respuesta inmune al tener contacto con las c&eacute;lulas del hospedero (<a href="#f5">Figura 5</a>) <Sup>81,89,94</Sup>. </p>     <p align="center"><a name="f5"></a><img src="img/revistas/cmvz/v9n2/v9n2a11f5.jpg"></p>     <p>Cada microorganismo usado como vector para la creaci&oacute;n de vacunas de ADN recombinante posee caracter&iacute;sticas espec&iacute;ficas que le permiten comportarse de diferentes maneras dentro del organismo. El herpesvirus de pavo (HVT por sus siglas en ingl&eacute;s <I>Herpesvirus of Turkey</I>) es uno de los virus m&aacute;s utilizados para la elaboraci&oacute;n de estos biol&oacute;gicos, teniendo como particularidad la latencia y la habilidad de reactivarse sin importar la respuesta adaptativa inmunol&oacute;gica espec&iacute;fica del hospedero. As&iacute; mismo todos los virus de la familia <I>Herpesviridae</I> poseen un genoma de tama&ntilde;o grande, con la opci&oacute;n de ampliarse mediante la inclusi&oacute;n de fragmentos de otros agentes. Adicionalmente estos virus poseen genes de virulencia que no son esenciales para su replicaci&oacute;n <I>in vitro </I>e<I> in vivo</I>, los cuales son importantes para convertirlos en potenciales vectores para las vacunas <Sup>11,12</Sup>. Es por esto que el HVT se replica constantemente expresando el ant&iacute;geno y re-estimulando al sistema inmunitario <Sup>98</Sup>.</p>      <p>Entre las ventajas que presenta este tipo de vacunaci&oacute;n se encuentran:</p> <ol>     <p>1.	La disminuci&oacute;n de la presentaci&oacute;n de reacciones posvacunales. Lo anterior se evidenci&oacute; posterior a la aplicaci&oacute;n de una vacuna recombinante contra la enfermedad de Gumboro, la cual no gener&oacute; lesiones en la bursa de Fabricio en comparaci&oacute;n con las vacunas vivas atenuadas <Sup>44</Sup>. </p>     <p>2.	La disminuci&oacute;n en la interferencia inmunol&oacute;gica que se puede presentar al inocular otras vacunas; esta es una consecuencia de la liberaci&oacute;n constante del virus vacunal cuando se usan vectores como el HVT.</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[</ol>     <p>En algunos casos, se evita la necesidad de revacunaci&oacute;n<Sup>97</Sup>. </p> <ol>     <p>3.	La inducci&oacute;n de respuestas de tipo humoral y celular con la producci&oacute;n sist&eacute;mica de c&eacute;lulas T y c&eacute;lulas CD4 y CD8 <Sup>47</Sup>. En vectores virales como Vaccinia y <I>poxvirus</I> la respuesta inmune es de tipo celular con la producci&oacute;n LT citot&oacute;xicos (LTc) y ayudadores (LTh). En el caso del <I>Adenovirus </I>se presenta respuesta inmune de tipo humoral con formaci&oacute;n de anticuerpos y celular con LTh; los <I>Alfavirus y Poliovirus </I>estimulan la producci&oacute;n de anticuerpos y LTc, mientras que los <I>herpesvirus </I>solo estimulan la generaci&oacute;n de anticuerpos <Sup>87</Sup>. </p>    </ol>     <p>Dentro de las desventajas de este tipo de vacunas se incluyen: </p> <ol>    <p>1.	Una menor protecci&oacute;n inicial, por tener una respuesta inmunol&oacute;gica lenta adicional a una duraci&oacute;n de inmunidad desconocida. </p>     <p>2.	En algunos casos, biol&oacute;gicos generados contra la laringotraque&iacute;tis infecciosa aviar/viruela, pueden llegar a causar neumon&iacute;a en los animales a los cuales se les administra la vacuna <Sup>97</Sup>.</p>     <p>3.	La respuesta inmune de tipo adaptativo puede reducir o bloquear la generaci&oacute;n de la respuesta contra el ant&iacute;geno vacunal <Sup>47</Sup>.</p>     </ol>     <p>En el &aacute;mbito mundial, existen diversos grupos de investigaci&oacute;n que se dedican al estudio de las aplicaciones y la eficacia de las vacunas recombinantes elaboradas con diferentes cepas del mismo pat&oacute;geno. Las pruebas realizadas en Australia, Brasil, China, Europa, Norte Am&eacute;rica y otros lugares del mundo demuestran las ventajas e intentan encontrar los posibles efectos adversos que estos nuevos biol&oacute;gicos pueden causar en los individuos en los que se administran. Los resultados de estos estudios han permitido el desarrollo de diversas combinaciones de vectores y agentes para la generaci&oacute;n de vacunas de ADN  recombinante eficaces y seguras. El estudio de las vacunas basadas en ADN ha evolucionado desde la vacuna contra la hepatitis B creada con plasma humano en 1976 hasta lograr la disponibilidad comercial de vacunas recombinantes seguras en vectores como los Poxvirus <Sup>89, 89, 97</Sup>. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En avicultura algunas de estas mezclas gen&eacute;ticas se han dise&ntilde;ado para la prevenci&oacute;n de diferentes enfermedades como la enfermedad de Gumboro, la laringotraque&iacute;tis infecciosa aviar y la enfermedad de Newcastle. Igualmente se han desarrollado vacunas de ADN recombinante para el control de dos agentes etiol&oacute;gicos en un mismo biol&oacute;gico como es el caso de la vacuna de ADN recombinante para la influenza aviar combinada con la laringotraque&iacute;tis infecciosa aviar, y la enfermedad de Marek junto a la influenza aviar. Estas vacunas han sido dise&ntilde;adas en agentes replicadores donde los m&aacute;s comunes son <I>Salmonella ent&eacute;rica,</I> el adenovirus y el HVT <Sup>80,89, 96</Sup>.</p>      <p>La entrada de estos biol&oacute;gicos a Colombia fue autorizada despu&eacute;s de una extensa revisi&oacute;n por los entes de control. Luego de pasar las pruebas de bioseguridad comprobando que tienen m&iacute;nimas probabilidades de reversi&oacute;n a un estado virulento del agente, se les permiti&oacute; la entrada y posterior comercializaci&oacute;n previa solicitud de las compa&ntilde;&iacute;as farmac&eacute;uticas y de biol&oacute;gicos solicitantes <Sup>89,90</Sup>. Actualmente Colombia cuenta con la comercializaci&oacute;n de ocho vacunas recombinantes, de las cuales tres son para uso av&iacute;cola y est&aacute;n indicadas en el control de las enfermedades de Gumboro, laringotraque&iacute;tis infecciosa aviar, Newcastle y Marek usando como vector el HVT <Sup>81</Sup>. A continuaci&oacute;n se realiza una descripci&oacute;n de tres de estos agentes infecciosos y del uso de vacunas de ADN recombiante para la prevenci&oacute;n de los mismos.</p>      <p><I>Enfermedad de Gumboro</I></p>     <p>La enfermedad de Gumboro (IBD por sus siglas en ingl&eacute;s <I>Infectious Bursal Disease</I>) es causada por un virus de la familia<I> Birnaviridae</I>, g&eacute;nero <I>Avibirnavirus</I> el cual posee dos serotipos (1 y 2); los miembros de esta familia poseen un genoma que consiste en dos segmentos de una doble  cadena de RNA <Sup>2, 80, 81</Sup>. Es un viri&oacute;n sin envoltura (desnudo) con nucleoc&aacute;pside de simetr&iacute;a icosa&eacute;drica y un di&aacute;metro que var&iacute;a entre 55 - 65 nm <Sup>1, 84</Sup>, caracter&iacute;sticas que confieren resistencia al medio ambiente y una alta variabilidad gen&eacute;tica y antig&eacute;nica del virus <Sup>84</Sup>. El genoma viral posee dos segmentos (A y B); el segmento A tiene 2 marcos de lectura abierta (ORF), codificando el primer fragmento para las prote&iacute;nas estructurales entre las que se encuentran las prote&iacute;nas virales VP2 (por sus siglas en ingl&eacute;s <I>viral protein</I>), VP3, VP4 y otras prote&iacute;nas precursoras como la VPX, y el segundo para la prote&iacute;na VP5 <Sup>84, 81</Sup>. La VP2 se reconoce como la principal prote&iacute;na antig&eacute;nica del virus <Sup>89, 94</Sup>. </p>      <p>Este agente es de gran importancia econ&oacute;mica para la industria av&iacute;cola, debido a que afecta al sistema inmunol&oacute;gico de las aves generando una tasa alta de mortalidad causada por infecciones secundarias <Sup>90</Sup>. El virus de la enfermedad de Gumboro (IBDV por sus siglas en ingl&eacute;s <I>Infectious Bursal Disease Virus</I>) tiene tropismo por linfocitos B, principalmente en la bursa de Fabricio, lo cual genera un estado de inmunosupresi&oacute;n predisponiendo al hospedero a infecciones por microorganismos oportunistas y a respuestas deficientes ante los planes profil&aacute;cticos vacunales <Sup>89, 89, 90</Sup>. La infecci&oacute;n con el IBDV en aves menores de tres semanas de edad puede causar da&ntilde;o severo en la bursa de Fabricio,, caracterizado por la depleci&oacute;n de c&eacute;lulas B que expresan IgM lo cual afecta la respuesta primaria de anticuerpos. En pollitos de un d&iacute;a de edad se report&oacute; la disminuci&oacute;n de c&eacute;lulas B en el bazo <Sup>83</Sup>. La bursa de Fabricio puede regenerarse por proliferaci&oacute;n de linfocitos, en contraste con la respuesta primaria de anticuerpos la cual permanece disminuida durante 7 semanas post infecci&oacute;n y es dependiente de la edad de las aves y la virulencia de la cepa <Sup>93</Sup>.  Se ha reportado que la regeneraci&oacute;n de este &oacute;rgano se relaciona con el desarrollo de fol&iacute;culos formados despu&eacute;s de la recuperaci&oacute;n del ave <Sup>83</Sup>. </p>      <p>Desde hace m&aacute;s de treinta a&ntilde;os se han utilizado las vacunas vivas atenuadas para el control del IBDV <Sup>89, 98, 98</Sup>. Sin embargo, el surgimiento de nuevas cepas del agente con mayor potencial patog&eacute;nico como lo son las de tipo muy virulento (vv por sus siglas en ingl&eacute;s <I>very virulent</I>), descubiertas en Europa y Reino Unido en 1987, sumado a la continua aparici&oacute;n de cepas variantes no han permitido una protecci&oacute;n completa ante los brotes de campo con las vacunas convencionales permitiendo la introducci&oacute;n y el uso de las vacunas de ADN recombinante en la pr&aacute;ctica <Sup>84,89</Sup>. En Colombia, la enfermedad de Gumboro es considerada end&eacute;mica, present&aacute;ndose brotes con cepas de tipo muy virulento (vvIBDV), las cuales pueden generar mortalidades entre el 60 y 100% <Sup>10,68,78</Sup>. Norte de Santander ha sido una de las regiones m&aacute;s afectadas por cepas muy virulentas, donde el laboratorio regional del ICA report&oacute; 26 casos de virus muy virulento en el a&ntilde;o 2003 y 25 casos en el a&ntilde;o 2004, con una mortalidad promedio del 17 y 14% respectivamente <Sup>60,68</Sup>.</p>      <p>Para el dise&ntilde;o de las vacunas de ADN recombinante para el control del IBDV se ha utilizado de forma com&uacute;n el HVT como vector de la prote&iacute;na VP2 <Sup>80, 90 84</Sup>. Tambi&eacute;n se ha utilizado el poxvirus como vector de la misma, desarrollando la vacuna de ADN recombinante fpIBD1 <Sup>84</Sup>. En estudios realizados por Villegas <I>et al.</I> en 2008, se utiliz&oacute; la levadura <I>Pichia pastoris</I> como  vector de la prote&iacute;na VP2 obtenida de la cepa Edgar de la enfermedad de Gumboro. En este trabajo se emplearon aves libres de pat&oacute;genos espec&iacute;ficos (SPF por sus siglas en ingl&eacute;s <I>Specific Patogen Free</I>) las cuales fueron vacunadas con diferentes productos y desafiadas con la cepa hom&oacute;loga (cepa Edgar), para evaluar la protecci&oacute;n desarrollada frente al agente. En el grupo inmunizado con la vacuna de ADN recombinante no se observ&oacute; morbilidad o mortalidad, obteniendo un mejor resultado comparada con el 30% de mortalidad obtenido en las aves vacunadas con la regi&oacute;n hipervariable de la prote&iacute;na (hvVP2) y con el 90% de mortalidad observado en los controles no vacunados y desafiados <Sup>80, 94</Sup>.</p>      <p>En otra investigaci&oacute;n en aves SPF se comprob&oacute; la efectividad de otra vacuna de ADN recombinante utilizando el HVT como vector de la VP2 proveniente de una cepa est&aacute;ndar del IBDV (cepa Faragher 52/70). Para la evaluaci&oacute;n de la efectividad de este biol&oacute;gico, se analizaron los valores de la proporci&oacute;n entre el peso corporal y el peso de la bursa, y los hallazgos histopatol&oacute;gicos en los principales &oacute;rganos linfoides. Despu&eacute;s de la inmunizaci&oacute;n, las aves fueron infectadas con la variante E del IBDV. Las aves vacunadas demostraron una adecuada protecci&oacute;n e inmunocompetencia por los &iacute;ndices de la bursa significativamente mayores a los del grupo control, indicando que la infecci&oacute;n no indujo da&ntilde;os tisulares ni involuci&oacute;n de la bolsa de Fabricio. Adicionalmente no se observaron signos cl&iacute;nicos postdesaf&iacute;o en las aves que se vacunaron a los 18 y 28 d&iacute;as de edad. Estos resultados demuestran que incluso usando una vacuna recombinante con un segmento del genoma (VP2) que pertenece a una cepa est&aacute;ndar del pat&oacute;geno, se confiere protecci&oacute;n contra variantes espec&iacute;ficas de la enfermedad (variante E) <Sup>97</Sup>. En el estudio realizado por Villegas <I>et al.</I> (2008) se obtuvieron resultados similares a los de las investigaciones realizadas por Perozo <I>et al.</I> (2009), donde el grupo de aves vacunadas con la prote&iacute;na VP2 completa alcanzaron &iacute;ndices de la bursa significantemente mayores que las aves no vacunadas o vacunadas con la porci&oacute;n hipervariable hvVP2 del agente <Sup>94</Sup>.</p>      <p>En el estudio realizado por Le Gros <I>et al.</I> en el 2009 se prob&oacute; la efectividad de las vacunas de ADN recombinante para el control de la enfermedad de Gumboro utilizando dos grupos de pollos de engorde. En el primer grupo se administr&oacute; una vacuna recombinante v&iacute;a subcut&aacute;nea a pollitos de un d&iacute;a, mientras que en el segundo se suministr&oacute; una vacuna viva atenuada a los 17 y 24 d&iacute;as de edad v&iacute;a oral. En los d&iacute;as 26 y 45 se realiz&oacute; la titulaci&oacute;n de anticuerpos contra el virus de la enfermedad de Gumboro mediante el uso de dos kits comerciales de ELISA. En los d&iacute;as seleccionados, los t&iacute;tulos de anticuerpos en el primer grupo fueron significativamente mayores a los del segundo <Sup>98</Sup>.</p>      <p>As&iacute; mismo se ha evaluado la eficacia de la prote&iacute;na VP2 expresada en <I>Escherichia coli</I> para proteger del IBDV. En un ensayo realizado por Omar<I> et al.</I> en el 2006 solo el 10% de los pollos que no recibieron ninguna medida preventiva sobrevivi&oacute; a la exposici&oacute;n al agente. Este estudio tambi&eacute;n compar&oacute; diferentes tipos de inmunizaci&oacute;n para conocer los porcentajes de supervivencia de los individuos, obteniendo como resultado que la totalidad de las aves inmunizadas con IBDV inactivado con calor sobrevivi&oacute;, el 57% de los animales vacunados con 150 &micro;g de prote&iacute;na VP2 cruda lograron combatir la infecci&oacute;n y el menor porcentaje de sobrevivencia lo obtuvo el grupo vacunado con prote&iacute;na recombinante de <I>E. coli</I> con una efectividad reportada del 28% <Sup>92</Sup>. De la misma forma algunas pruebas realizadas previamente sobre la prote&iacute;na VP2 en vacunas recombinantes usando como vector <I>E. coli</I>, confirman la capacidad de inducir s&iacute;ntesis de anticuerpos contra IBDV. Sin embargo, estos anticuerpos generados por la inmunizaci&oacute;n reaccionan espec&iacute;ficamente con partes virales desnaturalizadas y no contra el virus completo o intacto <Sup>92,98</Sup>.</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A pesar de que la prote&iacute;na v&iacute;rica VP2 del IBDV ha sido expresada en diferentes agentes (<I>E. coli</I>, virus de la viruela aviar o poxvirus, vaculovirus, levaduras, virus de la enfermedad de Marek, entre otros), a&uacute;n no existe una vacuna recombinante l&iacute;der en el &aacute;mbito comercial <Sup>81, 84</Sup>. Esto se debe posiblemente a su efectividad variable, lo cual hace necesario la aplicaci&oacute;n en conjunto con vacunas vivas atenuadas. </p>      <p><I>Laringotraque&iacute;tis Infecciosa Aviar</I></p>     <p>El virus de la Laringotraque&iacute;tis Infecciosa Aviar (ILTV por sus siglas en ingl&eacute;s <I>Infectious Laryngotracheitis Virus</I>) pertenece al orden <I>Herpesvirales,</I> familia <I>Herpesviridae, </I>subfamilia<I> Alphaherpesvirinae</I>, g&eacute;nero <I>Iltovirus</I>, especie <I>Gallid Herpesvirus I, </I>el cual afecta a ponedoras y pollos de engorde principalmente, caus&aacute;ndoles graves afecciones respiratorias que pueden terminar con la muerte <Sup>9, 97, 81</Sup>. La fase inicial de la enfermedad dura de 1 a 2 semanas donde se pueden observar problemas con el crecimiento, as&iacute; como en  la producci&oacute;n de huevo o signos relacionados a las v&iacute;as respiratorias como el jadeo, la tos, la expectoraci&oacute;n de moco con sangre y otros como la depresi&oacute;n y la conjuntivitis. Luego de esta fase el hospedero pasa a ser un portador latente asintom&aacute;tico <Sup> 90,97</Sup>.</p>      <p>El genoma del virus est&aacute; conformado por una doble cadena lineal de ADN con dos regiones &uacute;nicas (U<Sub>L</Sub> y U<Sub>S</Sub>) y dos secuencias repetidas inversas (IR y TR). Estas estructuras permiten la formaci&oacute;n de dos is&oacute;meros del genoma con diferente orientaci&oacute;n; la regi&oacute;n U<Sub>S </Sub>se ha encontrado y reconocido en diferentes alphaherpesvirus. Adicionalmente la codificaci&oacute;n y la s&iacute;ntesis de glicoprote&iacute;nas hom&oacute;logas como gB, gC, gH, gJ, gN, gM, gD, gE, gI, gG, gK y gL ocurren en la regi&oacute;n espec&iacute;fica U<Sub>S</Sub> de genes conservados del ILTV <Sup>81</Sup>. </p>      <p>Dentro de las vacunas m&aacute;s usadas para la inmunizaci&oacute;n en granjas, se encuentran las vacunas con virus vivo atenuado. Estos preparados son altamente eficaces pero poco seguros, debido al potencial de latencia del ILTV, por lo que se han asociado con una serie de efectos adversos, como es la diseminaci&oacute;n de cepas vacunales a galpones no vacunados (virulencia residual). Para evitar estas posibles complicaciones con las vacunas convencionales, se ha propuesto la eliminaci&oacute;n de la glicoprote&iacute;na B (gB) en los virus atenuados, ya que se ha identificado como la principal prote&iacute;na con potencial de virulencia expresada luego de la inmunizaci&oacute;n. Otras prote&iacute;nas que se expresan con la administraci&oacute;n de vacunas vivas atenuadas son gJ, gD, gI y gN <Sup>81, 84, 97</Sup>. </p>      <p>En cuanto a las vacunas de ADN recombinante desarrolladas para el control de esta enfermedad, se ha utilizado com&uacute;nmente como vector el HVT, con el cual la acci&oacute;n de la respuesta inmune celular y humoral es generada por la glicoprote&iacute;na B (gB) altamente conservadas en los herpesvirus, otorgando una mejor respuesta antig&eacute;nica contra el gen de ILTV insertado en este vector. Tambi&eacute;n se han generado mezclas de gB e interleucina - 18 de pollo con el genoma del ILTV en mezclas conocidas como vectores de expresi&oacute;n bicistr&oacute;nicos para aumentar la respuesta de c&eacute;lulas T, siendo de mayor eficiencia por promover una respuesta inmunol&oacute;gica sin&eacute;rgica <Sup>97</Sup>. </p>      <p>Entre las ventajas del uso de inmun&oacute;genos recombinantes en el control del ILTV se encuentran la expresi&oacute;n simult&aacute;nea de dos genes de glicoprote&iacute;nas (gI y gD), dando como resultado una protecci&oacute;n del 97% de las aves vacunadas con una sola dosis administrada v&iacute;a <I>in ovo</I> <Sup>97</Sup>. Tambi&eacute;n se ha demostrado que las vacunas recombinantes no afectan el rendimiento de las aves, no causan reacciones posvacunales y no hay posibilidad de reversi&oacute;n de la virulencia. Adicionalmente estas vacunas pueden ser administradas <I>in ovo</I> a los 18 d&iacute;as en los embriones o al nacimiento por v&iacute;a subcut&aacute;nea <Sup>80, 97</Sup>.</p>      <p>En un estudio realizado para evaluar la forma de administraci&oacute;n de las vacunas de ADN recombinante para contrarrestar el ILTV se dise&ntilde;aron tres experimentos con una vacuna que usa como vector el HVT y que contiene las glicoprote&iacute;nas I y D; en el experimento 1 se utilizaron aves SPF a las cuales se les inocul&oacute; v&iacute;a <I>in ovo</I> el biol&oacute;gico; en el experimento 2 la aplicaci&oacute;n de la vacuna se realiz&oacute; el primer d&iacute;a de vida de las aves SPF, por &uacute;ltimo en el experimento tres se sigui&oacute; el procedimiento de vacunaci&oacute;n de la misma manera que en el grupo experimental anterior pero con aves comerciales. Los resultados que present&oacute; esta investigaci&oacute;n fueron variables, debido a que la detecci&oacute;n del ADN de la vacuna (rHVT-LT) en tejidos de los animales sacrificados estuvo entre el 80 y 100% en el caso de las aves de los experimentos 1 y 2, a diferencia del experimento tres en el cual las muestras positivas no super&oacute; el 50% pudi&eacute;ndose atribuir a la interacci&oacute;n con anticuerpos maternos <Sup>97, 81</Sup>. </p>      <p>En otro estudio se conformaron cuatro grupos experimentales cada uno con 10 aves SPF y 20 aves comerciales, los cuales recibieron los siguientes tratamientos: grupo 1 no vacunado (grupo control), grupo 2 vacunados con rFPV-ILTVgB (vacuna recombinante con vector poxvirus), grupo 3 inmunizados con vacuna comercial contra ILTV y grupo 4 vacunados con FPV 017 (cepa vacunal de viruela aviar). De la semana 1 a la 6 las aves no presentaron signos cl&iacute;nicos respiratorios. A la semana 6 todos los grupos fueron desafiados con una dosis letal de ILTV, encontr&aacute;ndose una mortalidad del 100% en las aves SPF sin importar el biol&oacute;gico usado, aunque en los animales comerciales la efectividad del in&oacute;culo comercial fue de 85% y de la vacuna vectorizada del 100% <Sup>90</Sup>.</p>      <p>Asimismo, en otras investigaciones se compararon dos vacunas vivas atenuadas aplicadas a dosis completa con una vacuna vectorizada administrada a dosis media en aves comerciales. Las vacunas tradicionales se administraron a los 14 d&iacute;as de edad por medio de gota ocular y la vacuna recombinante se aplic&oacute; v&iacute;a <I>in ovo</I> y subcut&aacute;nea al nacimiento. Los animales fueron desafiados con el ILTV (cepa virulenta aislada de campo 63140) a los 35 y 57 d&iacute;as de edad. Se analizaron diferentes variables observ&aacute;ndose que la ganancia de peso diario fue menor en los animales vacunados <I>in ovo </I>en comparaci&oacute;n con las aves inmunizados tradicionalmente, as&iacute; como los anticuerpos espec&iacute;ficos contra la prote&iacute;na gI y gB fueron mejor expresados en los animales inmunizados con vacunas de ADN (75-92%) en comparaci&oacute;n con los animales vacunados tradicionalmente (8%) <Sup>91</Sup>. Los resultados a pesar de ser positivos exigen un mayor an&aacute;lisis y posiblemente un mayor n&uacute;mero de estudios que eval&uacute;en los m&eacute;todos de inmunizaci&oacute;n y los planes vacunales con los cuales se optimice el uso de este tipo de biol&oacute;gicos. </p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><I>Enfermedad de Newcastle</I></p>     <p>El virus de la enfermedad de Newcastle (NDV por sus siglas en ingl&eacute;s <I>Newcastle Disease Virus</I>) posee un genoma RNA y pertenece al orden <I>Mononegavirales,</I> familia <I>Paramyxoviridae, </I>subfamilia<I> Paramyxovirinae,</I> g&eacute;nero <I>Avulavirus</I>. El NDV contiene seis genes principales los cuales codifican para las prote&iacute;nas estructurales y dos prote&iacute;nas no estructurales W y V generadas por la modificaci&oacute;n transcripcional de RNAm que codifica para una prote&iacute;na estructural; es un virus de morfolog&iacute;a casi esf&eacute;rica con un di&aacute;metro entre 100 a 500 nm en el cual en ocasiones es posible observar part&iacute;culas de filamentos con un tama&ntilde;o cercano a los 100 nm. El viri&oacute;n est&aacute; envuelto con una membrana de bicapa lip&iacute;dica integrada con dos glicoprote&iacute;nas diferentes: una hemaglutinina - neuroaminidasa (HN) la cual posee actividades tanto de hemaglutinina (HA) a causa de la absorci&oacute;n del virus por receptores espec&iacute;ficos en los gl&oacute;bulos rojos (permite identificaci&oacute;n del agente), como de neuroaminidasa (NA) generada por la hidr&oacute;lisis de la uni&oacute;n entre los &aacute;cidos neuroam&iacute;nicos en el hospedero. </p>     <p>La segunda glicoprote&iacute;na es la de fusi&oacute;n (F) encargada de determinar la virulencia del agente (cepas de alta y baja virulencia). Luego de la membrana lip&iacute;dica est&aacute; ubicada una prote&iacute;na relativamente hidr&oacute;foba y no glicosilada llamada de matriz (M) la cual desempe&ntilde;a un papel importante en el ensamblaje del virus mediante la interacci&oacute;n con la nucleoc&aacute;pside, la bicapa lip&iacute;dica y las regiones de las glicoprote&iacute;nas de superficie que se encuentran en la parte interna de la membrana <Sup>96</Sup>. Las prote&iacute;nas no estructurales pueden resultar de una diferencia en la iniciaci&oacute;n o la transcripci&oacute;n del gen P del RNAm. Seg&uacute;n la severidad de la presentaci&oacute;n, la enfermedad se clasifica en 3 patotipos: lentog&eacute;nica o respiratoria, mesog&eacute;nica y velog&eacute;nica (viscerotr&oacute;pico - Forma Doyle; Neurotr&oacute;pico - Forma Beach) <Sup>1, 88</Sup>. </p>      <p>Este virus es de importancia econ&oacute;mica en la avicultura mundial por su elevada morbilidad y mortalidad, las bajas tasas en la producci&oacute;n as&iacute; como por los altos costos que representa su prevenci&oacute;n y tratamiento derivado de las enfermedades concomitantes que se pueden presentar <Sup>80</Sup>, por estas razones se requiere un estricto control a trav&eacute;s de la vacunaci&oacute;n o el establecimiento de protocolos de cuarentena al presentarse los brotes <Sup>89</Sup>. La enfermedad se ha detectado en todo el mundo,  aunque actualmente est&aacute; controlada en aves dom&eacute;sticas en pa&iacute;ses como Canad&aacute;, Estados Unidos y parte de Europa occidental, con una continua presentaci&oacute;n en partes de &Aacute;frica, Asia y Sudam&eacute;rica <Sup>90</Sup>. No obstante, seg&uacute;n esta misma fuente, pa&iacute;ses como Chile, Argentina y Brasil no presentan brotes de Newcastle al menos desde enero de 2005. Las cepas velog&eacute;nicas son end&eacute;micas en Asia, Medio Oriente, &Aacute;frica, Am&eacute;rica Central, Am&eacute;rica del Sur y algunas regiones de M&eacute;xico, en contraste con las cepas virulentas que se encuentran en EE.UU y Canad&aacute; las cuales est&aacute;n end&eacute;micas solo en animales silvestres. As&iacute; mismo las cepas lentog&eacute;nicas se encuentran en aves de corral en todo el mundo, al igual que las cepas mesog&eacute;nicas siendo poco frecuentes <Sup>98</Sup>. En Colombia, los primeros casos de la enfermedad de Newcastle fueron reportados en junio de 1950, desde entonces la enfermedad se considera end&eacute;mica, presentando focos que alcanzan un total de 394 casos en todo el territorio nacional desde el 2006 hasta el 2009 <Sup>80, 89</Sup>. En el 2008 el Congreso de Colombia declar&oacute; el control y la erradicaci&oacute;n del NDV como prioridad sanitaria, convirti&eacute;ndose en una patolog&iacute;a de inter&eacute;s social-nacional <Sup>80</Sup>.</p>      <p>La vacunaci&oacute;n contra la enfermedad de Newcastle ha tenido un impacto positivo desde 1940, por lo que se considera la primera medida para el control y la erradicaci&oacute;n de la enfermedad. La mayor&iacute;a de las vacunas se elaboran con las cepas lentog&eacute;nicas (LaSota o B1) o mesog&eacute;nicas (Beaudette o VG/GA) producidas en huevos SPF. En pollos de engorde frecuentemente se administra una vacuna antes de que el individuo sea expuesto a una cepa de campo, debido a que estas pueden ser m&aacute;s agresivas y los t&iacute;tulos de anticuerpos que se generan pueden interferir con la inmunidad que provee la vacuna <Sup>7, 90</Sup>. En Colombia existen tres vacunas de ADN recombinante contra la enfermedad de Newcastle aprobadas para la administraci&oacute;n en aves comerciales <Sup>81</Sup>. </p>      <p>A lo largo de los a&ntilde;os se han realizado varios estudios con el fin de conocer las ventajas y las desventajas del uso de las vacunas de ADN recombinante contra el NDV <Sup>97, 98, 80, 81</Sup>. En un estudio en el que se administr&oacute; una vacuna de ADN recombinante dise&ntilde;ada con el virus de viruela como vector, se observ&oacute; que el 90% de los pollos que fueron inmunizados obtuvieron inmunidad protectiva; adicionalmente se estableci&oacute; que la v&iacute;a intraocular fue la mejor alternativa para la administraci&oacute;n de este tipo de vacunas <Sup>7, 81, 89</Sup>.</p>      <p>En otro estudio en pollos de engorde, se emplearon los virus de la influenza aviar y de la enfermedad de Newcastle para la creaci&oacute;n de un biol&oacute;gico vectorizado. Luego de una inmunizaci&oacute;n con este biol&oacute;gico se desafiaron las aves con virus de alta patogenicidad (influenza aviar) y de patotipo velog&eacute;nico viscerotr&oacute;pico (enfermedad de Newcastle) conociendo previamente el nivel de los anticuerpos maternos. Luego del periodo de evaluaci&oacute;n se obtuvo como resultado la protecci&oacute;n del 100% de las aves vacunados con rNDV-LS/AI-H5 <Sup>90, 82</Sup>. </p>      <p>En otro estudio se dise&ntilde;&oacute; una vacuna recombinante a partir de la cepa LaSota de la enfermedad de Newcastle como vector para la expresi&oacute;n de la glicoprote&iacute;na (G) del subgrupo C del metapneumovirus (MPV por sus siglas en ingl&eacute;s <I>metapneumovirus -</I> aMPV-C), generando as&iacute; una vacuna bivalente. La expresi&oacute;n de la prote&iacute;na G se detect&oacute; por inmunofluorescencia en c&eacute;lulas infectadas <I>in vitro. </I>A los animales en los que se prob&oacute; esta vacuna, se les administr&oacute; una dosis &uacute;nica de la vacuna  rLS/aMPV-C G. Los resultados demostraron que la cepa LaSota del NDV es un vector seguro y eficaz para la expresi&oacute;n de la prote&iacute;na G del aMPV-C. De igual forma luego de un desaf&iacute;o con un patotipo velog&eacute;nico de la enfermedad de Newcastle se comprob&oacute; la protecci&oacute;n completa contra el NDV y una protecci&oacute;n parcial contra aMPV-C induciendo respuestas inmunes moderados pero espec&iacute;ficas contra estos agentes <Sup>97; 99</Sup>. </p>      <p>Rauw<I> et al.</I> en el 2010 no solo experiment&oacute; con vacunas recombinantes, sino que propuso como coadyuvante las vacunas vivas atenuadas. El experimento se realiz&oacute; con cuatro grupos organizados as&iacute;: un grupo fue inmunizado con la vacuna recombinante <I>in ovo</I> y el otro grupo se qued&oacute; sin tratamiento (grupo control). En el d&iacute;a de la eclosi&oacute;n cada grupo se dividi&oacute; en dos, los grupos 1 y 2 fueron los originalmente no tratados mientras que los grupos 3 y 4 fueron los vacunados v&iacute;a <I>in ovo</I>. A las aves de los grupos 2 y 4 se les administr&oacute; una vacuna viva atenuada contra NDV v&iacute;a oculo-nasal. Luego del desaf&iacute;o con la cepa velog&eacute;nica viscerotr&oacute;pica Chimalhuacan del NDV, los resultados mostraron que las aves no inmunizadas murieron al d&iacute;a 6, mientras que las aves vacunadas con la combinaci&oacute;n rHVT-ND/vacuna atenuada estaban totalmente protegidas, sin evidenciar morbilidad ni mortalidad. El grupo inmunizado solo con la vacuna viva atenuada tuvo un porcentaje de sobrevivencia entre el 80 y el 90% mientras que los animales que recibieron el rHVT-ND solo el 70% obtuvo protecci&oacute;n. A pesar de los resultados variables de las investigaciones que utilizan las vacunas de ADN recombinante para el control del NDV, es necesario realizar nuevos estudios que permitan evaluar la eficacia de este tipo de vacunas en el sector av&iacute;cola. </p>     <p><b>Conclusiones</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La avicultura es una industria de crecimiento constante, el cual est&aacute; sujeto a dos aspectos de importancia: la inocuidad de los productos av&iacute;colas y la sanidad de la producci&oacute;n aviar. Uno de los principales factores que frena el desarrollo del sector son las p&eacute;rdidas econ&oacute;micas por brotes de enfermedades infecciosas, para las cuales entre las estrategias m&aacute;s adecuadas para su control y prevenci&oacute;n se encuentran las medidas de bioseguridad y la vacunaci&oacute;n. Con la evoluci&oacute;n de las &aacute;reas del conocimiento y sus diferentes aplicaciones, se han desarrollado nuevas t&eacute;cnicas para la creaci&oacute;n y el mejoramiento de las vacunas disponibles en el mercado como las recombinantes, teniendo como meta una mayor eficacia, seguridad y practicidad. Actualmente Colombia cuenta con la comercializaci&oacute;n de ocho vacunas recombinantes, de las cuales cuatro son para uso av&iacute;cola en el control de las enfermedades de Gumboro, laringotraque&iacute;tis infecciosa aviar, Newcastle y Marek. Aunque estos inmun&oacute;genos tienen la ventaja de la seguridad de las vacunas inactivadas combinada con la eficacia de las vacunas vivas atenuadas, requieren de estudios futuros que permitan evaluar y cuantificar sus ventajas y desventajas especialmente en el &aacute;mbito colombiano. </p>     <p>Es necesario tener en cuenta que estos nuevos desarrollos en tecnolog&iacute;as vacunales, deben acompa&ntilde;arse de una infraestructura diagn&oacute;stica que responda a la posibilidad de evaluar la efectividad de este tipo de biol&oacute;gicos debido a que en diversos contextos el estado inmunitario de los lotes no se eval&uacute;a a satisfacci&oacute;n, las coberturas vacunales son diversas y el concepto de riesgo no es claro. Luego del an&aacute;lisis de la informaci&oacute;n, se concluye que las vacunas recombinantes se proyectan para ofrecer una alta efectividad, sin embargo se siguen presentando inc&oacute;gnitas al momento de usarlas, debido a que existen otros factores como la respuesta inmune y el dise&ntilde;o mismo de las vacunas, los cuales pueden influenciar el comportamiento y la efectividad de las mismas. Por &uacute;ltimo, se hace evidente la necesidad de continuar la investigaci&oacute;n en el &aacute;rea av&iacute;cola, para optimizar los m&eacute;todos e in&oacute;culos que se usan para la prevenci&oacute;n de enfermedades infecciosas teniendo en cuenta los retos de campo, la normatividad del pa&iacute;s, los requerimientos de la industria y los costos de producci&oacute;n.</p>     <p><b>Agradecimientos</b></p>     <p>Los autores agradecen al estudiante V&iacute;ctor Valencia Casta&ntilde;o y a los Doctores Jaime Romero, Efra&iacute;n Benavides y Diego Soler del Programa de Medicina Veterinaria de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad de La Salle por el apoyo en el marco del proyecto titulado: "Evaluaci&oacute;n de la vacunaci&oacute;n como estrategia para el control de las enfermedades virales en explotaciones av&iacute;colas" financiado por Colciencias (C&oacute;digo 1243-521-28381). </p> <hr>     <p><b>Referencias</b></p>     <!-- ref --><p>1.	Alexander, D. Newcastle y otras infecciones por paramyxoviridae. En Diseases of poultry, Calnek, B. Editorial Manual Moderno; 2000. Segunda edici&oacute;n.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S1900-9607201400020001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>2.	Alfonso, J. Reovirus y Birnavirus. En: Manual de Microbiolog&iacute;a Veterinaria. Editado por Vadillo, S., S. P&iacute;riz, E. Mateos. Primera edici&oacute;n. McGraw - Hill Interamericana; 2002. 639 - 650.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S1900-9607201400020001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>3.	Avicultores. Indicadores av&iacute;colas. Federaci&oacute;n Nacional de Avicultores de Colombia - Fenavi, 2011a. Edici&oacute;n 189.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S1900-9607201400020001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>4.	Avicultores. Indicadores av&iacute;colas. Federaci&oacute;n Nacional de Avicultores de Colombia - Fenavi, 2011b. Edici&oacute;n 190.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S1900-9607201400020001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>5.	Avicultores. Indicadores av&iacute;colas. Revista Avicultores. Revista de la Federaci&oacute;n Nacional de Avicultores de Colombia - Fenavi 2012; 202:46-48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S1900-9607201400020001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>6.	Avicultores. Indicadores av&iacute;colas. Revista Avicultores. Revista de la Federaci&oacute;n Nacional de Avicultores de Colombia - Fenavi 2013; 207:46-48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S1900-9607201400020001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>7.	Awan, M. A. Otte, M. J. James, A. D. The epidemiology of Newcastle disease in rural poultry: a review. Avian Pathol 1994; 23:405-423.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S1900-9607201400020001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>8.	Babiuk, L. A. Gomis, S. Hecker, R. Molecular Approaches to Disease Control. Poult Sci 2003; 82:870-875.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000112&pid=S1900-9607201400020001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>9.	Bagust, T. Guy, J. Laringotraque&iacute;tis. En Diseases of poultry, Calnek, B. Editorial Manual Moderno; 2000. Segunda edici&oacute;n.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S1900-9607201400020001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>10.	Banda, A. y Villegas P. (2004). "Genetic Characterization of Very Virulent Infectious Bursal Disease Viruses from Latin America". Avian Diseases 48: 540-549.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S1900-9607201400020001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>11.	Br&aring;ve A, Ljungberg K, Wahren B, Liu MA. Vaccine delivery methods using viral vectors. Mol Pharm. 2007 Jan-Feb;4(1):18-32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S1900-9607201400020001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>12.	Brown, M. Skinner, M. Coding sequences of both genome segments of a European very virulent infectious bursal disease virus. Virus Res 1996; 40:1-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S1900-9607201400020001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>13.	Brun, Alejandro. Albina, Emmanuel. Barret, Tom. Chapman, David A.G.  Czub, Markus. Dixon, Linda K. Keil, Gunther M.  Klonjkowski, Bernard. Le Potier, Marie-Frederique. Libeau, Genevieve. Ortego, Javier. Richardson, Jennifer . Takamatsu, Haru-H. Antigen delivery systems for veterinary vaccine development Viral-vector based delivery systems. Vaccine 26 (2008) 6508-6528&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000122&pid=S1900-9607201400020001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14.	Bublot, M. Pritchard, N. Le Gros, F.-X. Goutebroze, S. Use of a Vectored Vaccine against Infectious Bursal Disease of Chickens in the Face of High-Titred Maternally Derived Antibody. J Comp Path 2007; 137:S81-S84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S1900-9607201400020001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>15.	Chen, H. Zhao, L. Wei, Z. Cui, B. Wang, Z. Li, X. Xia, P. Liu, J. Enhancement of the immunogenicity of an infectious laryngotracheitis virus ADN vaccine by a bicistronic plasmid encoding glycoprotein B and interleukin-18. Antiviral Res 2010; 87:235-241.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S1900-9607201400020001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>16.	CONPES 3468. Pol&iacute;tica nacional de sanidad e inocuidad para la cadena av&iacute;cola, 2007. Versi&oacute;n aprobada.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S1900-9607201400020001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>17.	Corbanie, E. Development of a dry powder vaccine for mass vaccination of poultry. Thesis submitted to obtain the degree of Doctor in pharmaceutical sciences. Faculty of pharmaceutical sciences. Ghent University 2007.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S1900-9607201400020001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>18.	Condit, R.  Principles of virology. In D.M. Knipe, P.M. Howley, D.E. Griffin, R.A. Lamb, M.A. Martin, B. Roizman &amp; S.E. Straus (Eds.), Fields Virology, 4th edn (pp. 19 _/51). 2001.  Philadelphia, PA: Lippincott Williams &amp; Wilkins.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S1900-9607201400020001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>19.	Cottinghama, M. Carroll, M. Recombinant MVA vaccines: dispelling the myths. Vaccine 2013; 6;31(39):4247-51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S1900-9607201400020001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>20.	Creelan, J. Calvert, V. Graham, D. McCullough, S. Rapid detection and characterization from field cases of infectious laryngotracheitis virus by real-time polymerase chain reaction and restriction fragment length polymorphism. Avian Pathol 2006; 35:173-179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S1900-9607201400020001100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>21.	Cserep, T. Vaccines and vaccination in poultry diseases. Editado por Pattison, M. McMullin, P. Bradburry, J. Alexander, D. Sixth edition ElSevier. 2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S1900-9607201400020001100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>22.	Devlin, J. Browning, G. Hartley, C. Gilkerson, J. Glycoprotein G deficient infectious laryngotracheitis virusis a candidate attenuated vaccine. Vaccine 2007; 25:3561-3566.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S1900-9607201400020001100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>23.	Diallo, I. Taylor, J. Gibson, J. Hoad, J. Jong, A. Hewitson, G. Corney, B. Rodwell, B. Diagnosis of a naturally occurring dual infection of layer chickens with fowlpox virus and gallid herpesvirus 1 (infectious laryngotracheitis virus). Avian Pathol 2010; 39:25-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S1900-9607201400020001100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>24.	Eigen, M. Natural selection: a phase transition? Biophysical Chemistry. 2000.  85 , 101 -123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S1900-9607201400020001100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>25.	Faostat Food and agriculture organization of the united nations. (2012). Producci&oacute;n. Ganader&iacute;a. Online <a href="http://faostat.fao.org/site/573/default.aspx#ancor" target="_blank">http://faostat.fao.org/site/573/default.aspx#ancor</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S1900-9607201400020001100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>26.	Flint, S. J., L. W. Enquist, V. R. Racaniello, y A. M. Skalka. Principles of virology. 2004. Segunda edici&oacute;n. ASM Press. Pp 918.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S1900-9607201400020001100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>27.	Francois, A. Chevalier, C. Delmas, B. Eterradossi, N. Toquin, D. Rivallan, G. Langlois, P. Avian adenovirus CELO recombinants expressing VP2 of infectious bursal disease virus induce protection against bursal disease in chickens. Vaccine 2004; 22:2351-2360.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S1900-9607201400020001100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>28.	Fuchs, W. Veits, J. Helferich, D. Granzow, H. Teifke, J. Mettenleiter, T. Molecular biology of avian infectious laryngotracheitis virus. Vet Res 2007; 38:261-279.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S1900-9607201400020001100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>29.	Gao, H. Li, K. Gao, L. Qi, X. Gao, Y. Qin, L. Wang, Y. Wang, X. ADN prime-protein boost vaccination enhances protective immunity against infectious bursal disease virus in chickens. Vet Microbiol 2013; 164:9-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S1900-9607201400020001100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>30.	Garc&iacute;a, M. Volkening, J. Riblet, S. Spatz, S. Genomic sequence analysis of the United States infectious laryngotracheitis vaccine strains chicken embryo origin (CEO) and tissue culture origin (TCO). Virology 2013; 440:64-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S1900-9607201400020001100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>31.	Gimeno, I. Cortes, A. Guy, J. Turpin, E. Williams, C. Replication of recombinant herpesvirus of turkey expressing genes of infectious laryngotracheitis virus in specific pathogen free and broiler chickens following in ovo and subcutaneous vaccination. Avian Pathol 2011; 40:395-403.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S1900-9607201400020001100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>32.	G&oacute;mez, E. Lucero, M. Zotha, S. Carballeda, J. Gravisaco, M. Berinstein, A. Transient expression of VP2 in Nicotiana benthamiana and its use as a plant-based vaccine against Infectious Bursal Disease Virus. Vaccine 2013; 31:2623- 2627.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S1900-9607201400020001100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>33.	G&oacute;mez, M. Cabal, M. Torres, J. Private initiatives on food safety: the case of the Colombian poultry industry. Food Control 2002; 13:83-86.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S1900-9607201400020001100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>34.	Gonz&aacute;lez, M.  Coroas, L. Fern&aacute;ndez,   A. Noda,   J.   Perera, C.  Ramos, E.   Alfonso, P. Obtenci&oacute;n de una cepa viral recombinate FowlPox - Gumboro. Revista Salud Animal. 2003; 25:20-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S1900-9607201400020001100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>35.	Gu&eacute;rin, N. History of vaccination: from empiricism towards recombinant vaccines. Rev Med Interne 2007; 28:3-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S1900-9607201400020001100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>36.	Hardin, Y.    Palya, V.  Cazaban, C. Lozano, F. Alva, B. Moore, K. Vaccines and vacinations against Gumboro Disease: The key points. Memories of XXII latin America poultry congress 2011. Buenas Aires, Argentina.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S1900-9607201400020001100036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>37.	Hu, H. Roth, J. Estevez, C. Zsak, L. Liub, B. Yu, Q. Generation and evaluation of a recombinant Newcastle disease virus expressing the glycoprotein (G) of avian metapneumovirus subgroup C as a bivalent vaccine in turkeys. Vaccine 2011; 29:8624- 8633.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S1900-9607201400020001100037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>38.	Huang, Z. Elankumaran, S. Panda, A. Samal, S. K. Recombinant Newcastle Disease Virus as a Vaccine Vector. Poult Sci 2003; 82:899-906.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S1900-9607201400020001100038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>39.	ICA Instituto Colombiano Agropecuario. Gu&iacute;a para la prevenci&oacute;n, control y erradicaci&oacute;n de la enfermedad de Newcastle. Subgerencia de protecci&oacute;n animal. Produmedios 2009; Primera edici&oacute;n.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S1900-9607201400020001100039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>40.	ICA Instituto Colombiano Agropecuario. Ministerio de Agricultura y Desarrollo rural.  Productos biol&oacute;gicos con registro vigente a 15 marzo de 2011. Subgerencia de Protecci&oacute;n Animal Direcci&oacute;n T&eacute;cnica de Inocuidad e Insumos Veterinarios.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S1900-9607201400020001100040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>41.	ICA Instituto Colombiano Agropecuario. Resoluci&oacute;n n&uacute;mero 1250 de 2010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S1900-9607201400020001100041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> Gerente general encargado: Jos&eacute; Sanmiguel.</p>     <!-- ref --><p>42.	ICA Instituto Colombiano Agropecuario. Resoluci&oacute;n n&uacute;mero 1253 de 2010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S1900-9607201400020001100042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> Gerente general encargado: Jos&eacute; Sanmiguel.</p>     <!-- ref --><p>43.	Imler, J. Adenovirus vectors as recombinant viral vaccines. Vaccine 1995; 13:1143-1151.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S1900-9607201400020001100043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>44.	Iowa State University., OIE. Enfermedad de Newcastle Infecci&oacute;n por Paramixovirus Aviar, Infecci&oacute;n por Paramixovirus del Ganso 2008. Disponible online en: <a href="http://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/enfermedad_de_newcastle.pdf" target="_blank">http://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/enfermedad_de_newcastle.pdf</a>. Ultima consulta, Febrero 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S1900-9607201400020001100044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>45.	Jaimes-Olaya, J. A., &Aacute;lvarez, D. C., Jaime, J., Vera V. J. Aspectos determinantes en la presentaci&oacute;n de la enfermedad infecciosa de la bursa. Revista de Medicina Veterinaria Universidad de La Salle 2009; Vol. 17: 11 - 22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S1900-9607201400020001100045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>46.	Jaimes-Olaya, J. A., G&oacute;mez, A. P., &Aacute;lvarez, D. C., Soler, D., Romero, J. R., Villamil, L. C. Las enfermedades infecciosas y su importancia en el sector av&iacute;cola. Revista de Medicina Veterinaria Universidad de La Salle 2010; Vol. 20:49 - 61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S1900-9607201400020001100046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>47.	Jacquet, A. Recombinant Vaccines. 2011. Disponible en: <a href="http://grad.md.chula.ac.th/english/data/PEP_2011_13_Recombinant%20vaccine_secure.pdf" target="_blank">http://grad.md.chula.ac.th/english/data/PEP_2011_13_Recombinant%20vaccine_secure.pdf</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S1900-9607201400020001100047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>48.	Jiao, H. Pan, Z. Yin, Y. Geng, S. Sun, L. Jiao, X. Oral and Nasal ADN Vaccines Delivered by Attenuated <I>Salmonella enterica </I>Serovar Typhimurium Induce a Protective Immune Response against Infectious Bronchitis in Chickens. Clin Vaccine Immunol 2011; 18:1041-1045.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S1900-9607201400020001100048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>49.	Johnson, M. Pooley, C. Ignjatovic, J. Tyack, S. A recombinant fowl adenovirus expressing the <I>S1 </I>gene of infectious bronchitis virus protects against challenge with infectious bronchitis virus. Vaccine 2003; 21:2730-2736.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000193&pid=S1900-9607201400020001100049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>50.	Krishnan, B.Current status of ADN vaccines in veterinary medicine. Adv Drug Deliv Rev 2000; 43:3-11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S1900-9607201400020001100050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>51.	Le Gros, F.X. Dancer, A. Giacomini, C. Pizzoni, L. Bublot, M. Grazianic, M. Prandini, F. Field efficacy trial of a novel HVT-IBD vector vaccine for 1-day-old broilers. Vaccine 2009; 27:592-596.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000197&pid=S1900-9607201400020001100051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>52.	Lee, K. Lillehoj, H. Jang, S. Pag&egrave;s, M. Bautista, D. Pope, C. Ritter, D. Lillehoj, E. Neumann, A. Siragusa, G. Effects of <I>in ovo</I> vaccination and anticoccidials on the distribution of Eimeria spp. in poultry litter and serum antibody titers against coccidia in broiler chickens raised on the used litters. Res Vet Sci 2012; 93:177-182.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000199&pid=S1900-9607201400020001100052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>53.	Legionea, A. Coppoa, M. Lee, S. Noormohammadib, A. Hartleya, C. Browninga, G. Gilkersona, J. O'Rourkeb, D. Devlina, J. Safety and vaccine efficacy of a glycoprotein G deficient strain of infectious laryngotracheitis virus delivered <I>in ovo</I>. Vaccine 2012; 30:7193-7198.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000201&pid=S1900-9607201400020001100053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>54.	Li, K. Gao, H. Gao, L. Qi, X. Gao, Y. Qin, L. Wang, Y. Wang, Y. Adjuvant effects of interleukin-18 in ADN vaccination against infectious bursal disease virus in chickens. Vaccine 2013; 31:799- 1805.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000203&pid=S1900-9607201400020001100054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>55.	Li, Y. Reddy, K. Reid, S. Cox, W. Brown, I. Britton, P. Nair, V. Iqbal, M. Recombinant herpesvirus of turkeys as a vector-based vaccine against highly pathogenic H7N1 avian influenza and Marek's disease. Vaccine 2011; 29:8257- 8266.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000205&pid=S1900-9607201400020001100055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>56.	Liu, J. Chen, P. Jiang, Y. Deng, G. Shi, J. Wu, L. Lin, Y. Bu, Z. Chen, H. Recombinant duck enteritis virus works as a single-dose vaccine in broilers providing rapid protection against H5N1 influenza infection. Antiviral Res 2012; 97:329-333.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000207&pid=S1900-9607201400020001100056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>57.	Lopez, M. Mallorquin, P. Pardo, R. Vega, M. Vacunas de nueva generaci&oacute;n informe de vigilancia tecnologica. Fundaci&oacute;n Espa&ntilde;ola para el desarrollo de la investigaci&oacute;n genomica y proteomica. 2004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000209&pid=S1900-9607201400020001100057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>58.	Lukert, P., Saif, Y. Infectious Bursal Disease. En: Diseases of Poultry. Editado por Y. Saif. Und&eacute;cima edici&oacute;n. Iowa State Press. 2003. P&aacute;ginas 161-179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000211&pid=S1900-9607201400020001100058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>59.	MacLachlan, J., Dubovi, E. Antiviral Immunity and Prophylaxis. In: Fenner's Veterinary Virology. Fourth Edition. Academic Press London NW1 7BY, UK. 2011.   Pp. 87 - 92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000213&pid=S1900-9607201400020001100059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>60.	Mateus, H. Desplazamiento de Gumboro muy virulento: experiencia Colombiana- Norte De Santander. Universidad Nacional de Colombia- Universidad Francisco de Paula Santander. (2005).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000215&pid=S1900-9607201400020001100060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>61.	Mebatsion T. Melson, L. Hein, R. A Novel HVT-Based Recombinant Vaccine (INNOVAX-ILT) to Simultaneously Control Infectious Laryngotracheitis and Marek's Disease in Chickens 2008. Memorias del 23rd World Poultry Congress. Brisbane, Australia.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000217&pid=S1900-9607201400020001100061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>62.	Meulemans, G. Letellier, C. Gonze, M. Carlier, M.C. Burny, A. Newcastle disease virus f glycoprotein expressed from a recombinant vaccinia virus vector protects chickens against live-virus challenge. Avian Pathol 1988; 17:821-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000219&pid=S1900-9607201400020001100062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>63.	Mojica, A. Paredes, J. Caracteristicas del Sector Avicola Colombiano y su Reciente Evolucion en el Departamento de Santander. Ensayos Sobre Economia Regional 2005. Centro Regional de estudios Econ&oacute;micos Bucaramanga.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000221&pid=S1900-9607201400020001100063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>64.	M&uuml;ller, H., Islam, Md. R., Raue, R. Research on infectious bursal disease- the past, the present and the future. Vet Microbiol 2003; 97:153-165.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000223&pid=S1900-9607201400020001100064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>65.	Nascimento, I.P. and Leite, L.C.C. Recombinant vaccines and the development of new vaccine strategies. Braz J Med Biol Res, December 2012, Volume 45(12) 1102-1111&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000225&pid=S1900-9607201400020001100065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>66.	Negash, T. Liman, M. Rautenschlein, S. Mucosal application of cationic poly(d,l-lactide-co-glycolide) microparticles as carriers of ADN vaccine and adjuvants to protect chickens against infectious bursal disease. Vaccine 2013; 31:3656- 3662.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000226&pid=S1900-9607201400020001100066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>67.	O'Hagan, D. New Generation Vaccine Adjuvants. Novartis Vaccines and Diagnostics Inc. 2007. Siena, Italy. doi: 10.1002/9780470015902.a0020177&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000228&pid=S1900-9607201400020001100067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>68.	Ochoa, L., Osorio, N. H., Palya, V. y Gardin, Y. Presencia del virus muy virulento de enfermedad infecciosa de la bolsa (vvIBDV) en Colombia. Revista Plumazos 23. (2005): 10-14.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000229&pid=S1900-9607201400020001100068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>69.	OIE World Organisation for Animal Health. Boletin n. 2010 - 4. 78.a Sesi&oacute;n General: un fortalecimiento estrat&eacute;gico 2010. P&aacute;gina 47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000231&pid=S1900-9607201400020001100069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>70.	OIE World Organisation for Animal Health. Fichas de informaci&oacute;n general sobre enfermedades animales enfermedad de Newcastle 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000233&pid=S1900-9607201400020001100070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> Disponible online en: <a href="http://www.oie.int/fileadmin/Home/esp/Media_Center/docs/pdf/Disease_cards/NEWCAS-ES.pdf" target="_blank">http://www.oie.int/fileadmin/Home/esp/Media_Center/docs/pdf/Disease_cards/NEWCAS-ES.pdf</a>. Ultima consulta, Febrero 2012.</p>     <!-- ref --><p>71.	Oldoni, I. Garc&iacute;a, M. Characterization of infectious laryngotracheitis virus isolates from the United States by polymerase chain reaction and restriction fragment length polymorphism of multiple genome regions. Avian Pathol 2007; 36:167-176.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000235&pid=S1900-9607201400020001100071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>72.	Omar, A.R. Kim, C.L. Bejo, M.H. Ideris, A. Efficacy of VP2 protein expressed in  <I>E. coli</I>  for protection against highly virulent infectious bursal disease virus. J Vet Sci 2006; 7:241-247.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000237&pid=S1900-9607201400020001100072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>73.	Oshop, G.L. Elankumaran, S. Heckert, R.A. ADN vaccination in the avian. Vet Immunol Immunopathol 2002; 89:1-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000239&pid=S1900-9607201400020001100073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>74.	Pavlova, S. Veits, J. Mettenleiter, T. Fuchs, W. Live vaccination with an H5-hemagglutinin-expressing infectious laryngotracheitis virus recombinant protects chickens against different highly pathogenic avian influenza viruses of the H5 subtype. Vaccine 2009; 27:5085-5090.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000241&pid=S1900-9607201400020001100074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>75.	Perozo, F. Villegas, A.P. Fernandez, R. Cruz, J. Pritchard, N. Efficacy of single dose recombinant herpesvirus of turkey infectious bursal disease virus (IBDV) vaccination against a variant IBDV strain. Avian Dis 2009; 53:624-628.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000243&pid=S1900-9607201400020001100075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>76.	Pitcovski<I>, </I>J. Gutter, B. Gallili, G. Goldway, M. Perelman, B. Gross, G. Krispel, S. Barbakov, M. Michael, A. Development and large-scale use of recombinant VP2 vaccine for the prevention of infectious bursal disease of chickens. Vaccine 2003; 21:4736-4743.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000245&pid=S1900-9607201400020001100076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>77.	Prandini, F. Bublot, M. Le Gros, F.-X. Dancer, A. Pizzoni, L. Lamichhane. C. Assessment of the immune response in broilers and pullets using two ELISA kits after in ovo or day-old vaccination with a vectored HVT + IBD vaccine (VAXXITEK&reg; HVT+IBD). Zootecnia international (2008) 21:19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000247&pid=S1900-9607201400020001100077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>78.	Pulido, M. y Villegas, P. (2006). "Mesa de discusi&oacute;n sobre la problem&aacute;tica sanitaria actual". Revista Plumazos.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000249&pid=S1900-9607201400020001100078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>79.	Raue, R.,  Islam, M. R.,  Islam, M. N. , Islam, K. M. Badhy, S. C., Das, P. M., Muller, H. Reversion of molecularly engineered, partially attenuated, very virulent infectious bursal disease virus during infection of commercial chickens. Avian Pathology 2004.  33(2), 18 - 189.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000251&pid=S1900-9607201400020001100079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>80.	Rauw, F. Gardin, Y. Palya, V. Anbari, S. Lemaire, S. Boschmans, M. Berg, T. Lambrecht, B. Improved vaccination against Newcastle disease by an in ovo recombinant HVT-ND combined with an adjuvanted live vaccine at day-old. Vaccine 2010; 28:823-833.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000253&pid=S1900-9607201400020001100080&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>81.	Reddy, S.K. Sharma, J.M. Ahmad, J. Reddy, D.N. McMillent, J.K. Cookf, S.M. Wild, M.A. Schwartz, R.D. Protective efficacy of a recombinant herpesvirus of turkeys as an irz ovo vaccine against Newcastle and Marek's diseases in specific-pathogen-free chickens. Vaccine 1996; 14:469-477.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000255&pid=S1900-9607201400020001100081&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>82.	Sarfati-Mizrahi, D. Lozano-Dubernard, B. Soto-Priante, E. Castro-Peralta, F. Flores-Castro, R. Loza-Rubio, E. Gay-Guti&eacute;rrez, M. Protective Dose of a Recombinant Newcastle Disease LaSota-Avian Influenza Virus H5 Vaccine Against H5N2 Highly Pathogenic Avian Influenza Virus and Velogenic Viscerotropic Newcastle Disease Virus in Broilers with High Maternal Antibody Levels. Avian Dis 2010; 54:239-241.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000257&pid=S1900-9607201400020001100082&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>83.	Schat, K., Skinner, M. Avian Immunosuppressive Diseases and Immune Evasion. En: Avian Inmnunology. Edited by Fred Davison, Bernd Kaspers, Karel A. Schat.  Academic Press . London WC1X 8RR, UK. First edition 2008. Pp 301 - 303.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000259&pid=S1900-9607201400020001100083&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>84.	Shaw, I. Davison, T.F. Protection from IBDV-induced bursal damage by a recombinant fowlpox vaccine, fpIBD1, is dependent on the titre of challenge virus and chicken genotype. Vaccine 2000; 18:3230-3241.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000261&pid=S1900-9607201400020001100084&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>85.	Soler, E.,  Houdebine, L. Preparation of recombinant vaccines. Biotechnology Annual Review. Volume 13. 2007.  . Pages 65-94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000263&pid=S1900-9607201400020001100085&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>86.	Soriano, J. La producci&oacute;n av&iacute;cola en Colombia. Connotaciones. Facultad de Ciencias Agropecuarias Universidad Nacional de Colombia sede Medell&iacute;n 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000265&pid=S1900-9607201400020001100086&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>87.	Souza, A., Haut, L., Reyes-Sandoval, A. Pinto, A. Recombinant viruses as vaccine against viral diseases. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 2005.  38: 509-522.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000267&pid=S1900-9607201400020001100087&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>88.	Takaaki, N. Cros, J. Park, M. Nakaya, Y. Zheng, H. Sagrera, A. Villar, E. Garcia-Sastre, A. Palese, P. Recombinant Newcastle Disease virus as a vaccine vector. J Virol 2001; 75:11868-11875.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000269&pid=S1900-9607201400020001100088&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>89.	Taylor, J. Edbauer, C. Rey-Senelonge, A. Bouquet, J. F. Norton, E. Goebel, S. Desmettre, P. Paoletti, E. Newcastle disease virus fusion protein expressed in a fowlpox virus recombinant confers protection in chickens. J Virol 1990; 64:1441-1450.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000271&pid=S1900-9607201400020001100089&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>90.	Tong, G. Zhang, S. Meng, S. Wang, L. Qiu, H. Wang, Y. Yu, L. Wang, M. Protection of chickens from infectious laryngotracheitis with a recombinant fowlpox virus expressing glycoprotein B of infectious laryngotracheitis virus<I>. </I>Avian Pathol 2011; 30:143- 148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000273&pid=S1900-9607201400020001100090&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>91.	Vagnozzi, A. Zavala, G. Riblet, S. Mundt, A. Garc&iacute;a, M. Protection induced by commercially available liveattenuated and recombinant viral vector vaccines against infectious laryngotracheitis virus in broiler chickens. Avian Pathol 2012; 41:21-31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000275&pid=S1900-9607201400020001100091&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>92.	Vermeulen, B. De Backer, P. Remon, J.P. Drug administration to poultry. Adv Drug Deliv Rev 2002; 54:795-803.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000277&pid=S1900-9607201400020001100092&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>93.	Vervelde, L. and Davison, T.F. Comparison of the in situ changes in lymphoid cells during infection with infectious bursal disease virus in chickens of different ages. 1997. Avian Pathol. 26, 803-821.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000279&pid=S1900-9607201400020001100093&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>94.	Villegas, P. Hamoud, M. Purvis, L.B. Perozo, F. Infectious bursal disease subunit vaccination. Avian Dis 2008; 52:670-674.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000281&pid=S1900-9607201400020001100094&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>95.	Wood, A. and Payne, D. The action of three antiseptics/disinfectants against enveloped and non-enveloped viruses. Jouvnul of Hospital Infwtion (1998) 38, 283-295.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000283&pid=S1900-9607201400020001100095&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>96.	Yusoff, K. Tan, W. Newcastle disease virus: macromolecules and opportunities. Avian Pathol 2001; 30:439- 455.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000285&pid=S1900-9607201400020001100096&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </p>     <!-- ref --><p>97.	Zavala, G. Estrategias en el control de Laringotraque&iacute;tis infecciosa. Memorias del 22rd Latin America Poultry Congress 2011. Buenos Aires, Argentina. Disponible online <a href="http://www.engormix.com/MA-avicultura/sanidad/articulos/laringotraque&iacute;tis-infecciosa-t3643/165-p0.htm" target="_blank">http://www.engormix.com/MA-avicultura/sanidad/articulos/laringotraque&iacute;tis-infecciosa-t3643/165-p0.htm</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000287&pid=S1900-9607201400020001100097&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>98.	Zepp, F. Principles of vaccine design-Lessons from nature. Vaccine 2010; 28S;C14-C24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000288&pid=S1900-9607201400020001100098&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>99.	Zhou, H. Min,  J. Zhao, Q. Gu, Q. Cong, H. Li, Y. He, S. Protective immune response against Toxoplasma gondii elicited by a recombinant ADN vaccine with a novel genetic adjuvant. Vaccine 2012; 30:1800- 1806.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000290&pid=S1900-9607201400020001100099&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </font>      ]]></body><back>
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