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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[EVALUACIÓN DEL EFECTO SANITIZANTE DE UN EXTRACTO BIODEGRADABLE OBTENIDO DE LA ESPECIE Solanum marginatum, DE USO ETNOBOTÁNICO EN BOYACÁ]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Plants of the genus Solanum, within which the "Lulo perro" (Solanum marginatum) is found and is considered as a weed species, contain saponins which have fat emulsifying properties similar to soap. This feature was used to evaluate the sanitizing power of the alcoholic extract of the fruit as a biodegradable cleaner which is very useful for industrial purposes. The sanitizing potential of the cleaner preparation was assessed using the procedure described by Carrascal, Páez y Burbano (1998), and it was found to have optimum antimicrobial effectiveness conditions: a 10% concentration and a 6 minute contact time over gram negative bacilli microorganisms which represent a maximum inhibition of 99 58%. When comparing the effectiveness of the product against two well-known commercial sanitizers. (Mat-98® and Germigel®), a similar response was found. Using crude hydrolysis of saponin, present sapogenins were released, the crystals obtained were analyzed using infrared spectroscopy, and melting point was determined. These results coincided with the Hecogenin.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <center><font face="verdana" size="3"><b>EVALUACI&Oacute;N DEL EFECTO SANITIZANTE DE UN EXTRACTO BIODEGRADABLE OBTENIDO DE LA ESPECIE Solanum marginatum, DE USO ETNOBOT&Aacute;NICO EN BOYAC&Aacute;    <br>    <br> EVALUATION OF THE SANITIZER EFFECT OF A BIODEGRADABLE EXTRACT OF ETHNOBOTANICAL USE IN BOYAC&Aacute;, OBTAINED FROM THE Solanum marginatum SPECIES</b></font></center> <font face="verdana" size="2">     <p>     <center>MAURICIO GARC&Iacute;A COLMENARES<a href="#n1"><sup>1</sup></a>    <br> MAR&Iacute;A CRISTINA CASTELLANOS CORREDOR<a href="#n1"><sup>2</sup></a></center> </p>     <p> <a name="n1"><sup>1</sup></a> Estudiante de Qu&iacute;mica de Alimentos. Semillero de investigaci&oacute;n en Qu&iacute;mica Ambiental, Grupo GIQUA. Facultad de Ciencias. Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:fabrycy08@gmail.com">fabrycy08@gmail.com</a>.    <br> <a name="n2"><sup>2</sup></a> Docente Escuela de Ciencias Qu&iacute;micas. Coordinadora Grupo de investigaci&oacute;n en Qu&iacute;mica Ambiental, GIQUA. Facultad de Ciencias. Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:mcristi.castellanos@gmail.com">mcristi.castellanos@gmail.com</a> </p>     <p> Manizales, 2010-09-01 (Rev. 2010-10-11) </p> <b>RESUMEN</b>     <p> Las plantas del g&eacute;nero <i>Solanum</i>, dentro del que se encuentra el &quot;lulo de perro&quot; (<i>Solanum marginatum</i>), especie considerada una maleza, contienen saponinas, las cuales tienen propiedades de emulsionar la grasa, similares al jab&oacute;n. Esta caracter&iacute;stica fue aprovechada para evaluar el poder sanitizante del extracto alcoh&oacute;lico del fruto, en calidad de limpiador biodegradable, de gran utilidad en la industria. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El potencial sanitizante del limpiador preparado se evalu&oacute; seg&uacute;n el procedimiento descrito por Carrascal, P&aacute;ez y Burbano (1998), y se encontr&oacute; como condiciones &oacute;ptimas de efectividad antimicrobial: una concentraci&oacute;n del 10% y un tiempo de contacto de 6 minutos sobre microorganismos bacilos gram negativos, que presentan un m&aacute;ximo de inhibici&oacute;n de 99,58%. Al comparar la efectividad del producto obtenido contra la de dos conocidos sanitizantes comerciales (Mat-98&reg; y Germigel&reg;), se encontr&oacute; una respuesta similar. </p>     <p> Por hidr&oacute;lisis del crudo de saponina se liberaron las sapogeninas presentes, los cristales obtenidos se analizaron por espectroscop&iacute;a infrarroja y se les determin&oacute; el punto de fusi&oacute;n, coincidiendo los resultados con la Hecogenina. </p> <b>PALABRAS CLAVE:</b>     <p> <i>Solanum marginatum</i>, saponinas, sapogeninas, sanitizante natural, desinfectante. </p> <b>ABSTRACT</b>     <p> Plants of the genus <i>Solanum</i>, within which the "Lulo perro&quot; (<i>Solanum marginatum</i>) is found and is considered as a weed species, contain saponins which have fat emulsifying properties similar to soap. This feature was used to evaluate the sanitizing power of the alcoholic extract of the fruit as a biodegradable cleaner which is very useful for industrial purposes. </p>     <p> The sanitizing potential of the cleaner preparation was assessed using the procedure described by Carrascal, P&aacute;ez y Burbano (1998), and it was found to have optimum antimicrobial effectiveness conditions:  a 10% concentration and a 6 minute contact time over gram negative bacilli microorganisms which represent a maximum inhibition of 99 58%. When comparing the effectiveness of the product against two well-known commercial sanitizers. (Mat-98&reg; and Germigel&reg;), a similar response was found. </p>     <p> Using crude hydrolysis of saponin, present sapogenins were released, the crystals obtained were analyzed using infrared spectroscopy, and melting point was determined. These results coincided with the Hecogenin. </p> <b>KEY WORDS:</b>     <p> <i>Solanum marginatum</i>, saponins, sapogenins, natural sanitizer, disinfectant. </p> </font> <hr>    <br> <font face="verdana" size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font> <font face="verdana" size="2">     <p> Las saponinas son gluc&oacute;sidos naturales ampliamente distribuidas en el reino vegetal y hasta el presente se las ha detectado en m&aacute;s de 500 g&eacute;neros de plantas, como las <i>Solanum</i>, dentro de la que se encuentra el &quot;lulo de perro&quot; (<i>Solanum marginatum</i>), objeto del presente estudio. Se caracterizan por tener propiedades similares al jab&oacute;n, al producir espuma cuando son agitados en agua (Fieser, 1959) y emulsionar la grasa; adem&aacute;s de producir hem&oacute;lisis de variada potencia, son t&oacute;xicas para animales de sangre fr&iacute;a e irritantes de la mucosa nasal y far&iacute;ngea. </p>     <p> En algunas regiones de Latinoam&eacute;rica, se ha reportado el uso etnobot&aacute;nico de especies <i>Solanum</i> como agentes limpiadores. En Colombia se han realizado estudios sobre la composici&oacute;n del fruto, evaluando y caracterizando ciertos alcaloides (Herrera & Kec&aacute;n, 1970; Sanabria, 1974); sin embargo, no se han encontrado reportes sobre la evaluaci&oacute;n de la especie &quot;lulo de perro&quot; como agente limpiador, la cual es utilizada tradicionalmente por las comunidades campesinas para tal fin, en la Provincia de Norte del departamento de Boyac&aacute;. Para evaluar el efecto sanitizante de esta planta, considerada una &quot;maleza&quot;, se recolectaron los frutos silvestres, se lavaron, desinfectaron y secaron. El material seco fue triturado, homogenizado y tamizado, y se procedi&oacute; a realizar la extracci&oacute;n de las saponinas. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El procedimiento para la extracci&oacute;n de saponinas de matrices vegetales ha sido evaluado y reportado en la bibliograf&iacute;a siguiendo m&uacute;ltiples rutas, pero dada la naturaleza ampliamente polar de estos compuestos, todos los m&eacute;todos coinciden en la extracci&oacute;n en caliente o en frio, con agua o alcoholes de bajo peso molecular como metanol, etanol y butanol o mezclas acuosas de &eacute;stos en diversas proporciones (Mart&iacute;nez, 2001). </p>     <p> La extracci&oacute;n de las saponinas se inici&oacute; con etanol al 70% y se continu&oacute; hasta agotamiento, con n-butanol. Mediante ensayos cualitativos espec&iacute;ficos sobre el extracto hidroalcoh&oacute;lico, se comprob&oacute; la presencia de saponinas, las cuales consisten en el principio activo que act&uacute;a como limpiador biodegradable, inter&eacute;s fundamental de este trabajo. Por hidr&oacute;lisis de las saponinas se obtuvieron cristales de sapogenina, cuya estructura qu&iacute;mica, elucidada mediante espectroscopia infrarroja y punto de fusi&oacute;n, coincide con la hecogenina. </p>     <p> La evaluaci&oacute;n del potencial sanitizante del extracto obtenido se hizo con la prueba est&aacute;ndar de desinfecci&oacute;n (Carrascal, P&aacute;ez & Burbano, 2003), mediante la cual se cuantifica el porcentaje de inhibici&oacute;n de microorganismos (bacilos gram negativos). Los resultados fueron comparados con dos limpiadores comerciales de uso com&uacute;n en la industria alimentaria: Mat-98&reg; y Germigel&reg;. </p> </font> <font face="verdana" size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font> <font face="verdana" size="2">     <p> <b><i>Recolecci&oacute;n y preparaci&oacute;n de la muestra</i></b>    <br>    <br> Los frutos de <i>Solanum marginatum</i>, &quot;lulo de perro&quot;, se recolectaron quincenalmente durante los meses de octubre, noviembre y febrero, de plantas crecidas en forma silvestre en la ciudad de Tunja. La pulpa del fruto se separ&oacute; manualmente de la corteza y semillas, y se redujo a trozos de 0,5 cm, las cuales se secaron en horno MLW a 45ºC durante 9 d&iacute;as. El material seco fue triturado en molino mec&aacute;nico (corona) y homogenizado a un tama&ntilde;o de part&iacute;cula de 100 µm con la ayuda de un tamiz 17 N-100; adem&aacute;s, se mantuvo en desecador con silica gel a temperatura ambiente, hasta su procesamiento. </p>     <p> <b><i>Extracci&oacute;n del crudo de saponinas</i></b>    <br>    <br> La pulpa seca se macer&oacute; en etanol al 70% durante 48 horas, siguiendo el procedimiento descrito por Wall (1952), y el extracto se filtr&oacute; y reserv&oacute;. Se repiti&oacute; la extracci&oacute;n con n-butanol durante 24 horas. Se reunieron los extractos y se concentraron en rotaevaporador (B&Ucirc;CHI R-205), el residuo se coloc&oacute; en embudo de separaci&oacute;n y se desengras&oacute; con &eacute;ter de petr&oacute;leo, la fracci&oacute;n acuosa de disolvi&oacute; en 40 ml de agua destilada y se extrajo hasta m&aacute;ximo agotamiento con n-butanol con ayuda de embudo de separaci&oacute;n, y se concentr&oacute; en rotaevaporador hasta obtener un residuo pastoso de color rojo oscuro con olor acaramelado, correspondiente al crudo de saponinas. </p>     <p> <b><i>Identificaci&oacute;n de saponinas</i></b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>    <br> La presencia de saponinas en el extracto hidroalcoh&oacute;lico concentrado se comprob&oacute; mediante ensayos qu&iacute;micos cualitativos: Espuma, Hem&oacute;lisis, Liebermann-Burchard, Salkowski, Molish, Antrona, Rosemheim y Vainillina, todos con resultados positivos. </p>     <p> <b><i>Hidr&oacute;lisis de saponinas</i></b>    <br>    <br> La hidr&oacute;lisis de saponinas se realiz&oacute; siguiendo el procedimiento descrito por Segal, Mansour y Saitschek (1966), el cual consisti&oacute; en disolver 2 g del crudo de saponinas en 50 ml de etanol al 50%. A esta disoluci&oacute;n se adicionaron 10 ml de soluci&oacute;n de KOH 1mol/L en metanol, y se mantuvieron en reflujo durante 2 horas. La soluci&oacute;n se refresc&oacute; y acidific&oacute; ligeramente con soluci&oacute;n de HCl 0,5 mol/L y se evapor&oacute; el solvente con corriente de aire a temperatura ambiente. El residuo se lav&oacute; dos veces con peque&ntilde;os vol&uacute;menes de agua y se cristaliz&oacute; en metanol. </p>     <p> <b><i>Asignaci&oacute;n de estructura qu&iacute;mica</i></b>    <br>    <br> El residuo obtenido de la hidr&oacute;lisis de saponinas corresponde a cristales de sapogeninas, los cuales se identificaron por medio de espectroscopia infrarroja y punto de fusi&oacute;n. Los resultados se compararon con dos patrones (diosgenina y hecogenina) y se asign&oacute; la estructura qu&iacute;mica correspondiente. </p>     <p> <b><i>Evaluaci&oacute;n del efecto sanitizante del extracto de saponinas</i></b>    <br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> El extracto hidroalcoh&oacute;lico de saponinas se prob&oacute; sobre superficies de mesones de trabajo de la cocina del restaurante estudiantil de la Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia - UPTC. Se sigui&oacute; el proceder descrito por Carrascal, P&aacute;ez y Burbano (1998), para evaluar el porcentaje de inhibici&oacute;n de microorganismos: bacilos gram negativos. Adem&aacute;s, fue comparada su efectividad frente a dos conocidos desinfectantes comerciales: Mat-98&reg; y Germigel&reg;. </p>     <p> <b><i>Dise&ntilde;o experimental</i></b>    <br>    <br> La evaluaci&oacute;n de la variable de respuesta: porcentaje de inhibici&oacute;n de bacilos gram negativos, se hizo en un modelo totalmente al azar, por tener unidades experimentales homog&eacute;neas, bajo el modelo Y<sub>ij</sub> = m + t j + e ij, con asignaci&oacute;n de tratamientos en dise&ntilde;o balanceado multifactorial 3*32 con dos factores de tratamiento: el factor A, correspondiente a los tres compuestos evaluados (extracto de lulo, Germigel&reg; y Mat-98&reg;), y el factor B, que corresponde a tres tiempos (2, 5 y 10 minutos) de contacto del extracto y los desinfectantes comerciales. Se determinaron los diferentes par&aacute;metros y se analizaron los resultados para los factores A, B y AB por anova, con un nivel de confianza del 95%. </p> </font> <font face="verdana" size="3"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font> <font face="verdana" size="2">     <p> <b><i>Materia seca</i></b>    <br>    <br> Para el estudio se parti&oacute; de 42,55% &plusmn; 0,27% de pulpa fresca, de la cual se obtuvo el 4,06% &plusmn; 0,97% de pulpa seca. Luego de tamizado el material se redujo en 1%. El contenido de humedad y otras sustancias vol&aacute;tiles en el fruto alcanza el nivel del 95,64 &ndash; 96,8109%, lo que incide en el bajo rendimiento del material seco y explica la dr&aacute;stica reducci&oacute;n de peso en el material seco del 38,49%. </p>     <p> <b><i>Obtenci&oacute;n del crudo de saponinas</i></b>    <br>    <br> Los extractos hidroalcoh&oacute;licos obtenidos por maceraci&oacute;n de la pulpa seca y posterior concentraci&oacute;n mostraron consistencia densa, color negro y olor a caramelo. El residuo obtenido con n-butan&oacute;ico mostr&oacute; consistencia pastosa y color rojo quemado, dando un rendimiento de 4,06% &plusmn; 0,97 con respecto al fruto fresco y de 79% &plusmn; 1,2% con respecto al material seco. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b><i>Identificaci&oacute;n de saponinas</i></b>    <br>    <br> Las pruebas cualitativas para confirmaci&oacute;n de presencia de saponinas con resultados positivos se incluyen en la <a href="#t1">Tabla 1</a>. </p>     <center><a name="t1"><img src="img/revistas/luaz/n32/n32a01t1.GIF"></a></center>     <p> En la prueba de espuma, luego de agitar la muestra durante 2 minutos, se present&oacute; una capa de espuma densa de 2,2 cm, la cual se mantuvo estable por m&aacute;s de 6 horas. Debido a que esta prueba es solo presuntiva, se confirm&oacute; presencia de saponinas mediante la prueba de la hem&oacute;lisis, aprovechando su sensibilidad de facilidad de discernimiento. Al adicionar el extracto sobre medio de cultivo agar-sangre, se present&oacute; lisis evidente de los gl&oacute;bulos rojos en el &aacute;rea afectada. Mediante la prueba de antrona se present&oacute; un leve anillo azul en la interfase, el cual indica una reacci&oacute;n ligeramente positiva. Los ensayos m&aacute;s espec&iacute;ficos para triterpenos y esteroides, tales como Liebermann-Burchard, Salkowski y Rosemheim, fueron francamente positivos. Para el primer caso, present&oacute; formaci&oacute;n de tres fases, y al final de la reacci&oacute;n se obtuvo una coloraci&oacute;n negra, que indica la presencia de cantidades importantes del analito de inter&eacute;s. La coloraci&oacute;n azul verdosa indica la presencia de saponinas de estructura esteroidal. Para el caso caracter&iacute;stico de sapogeninas (vainillina), la reacci&oacute;n con el extracto present&oacute; una aparici&oacute;n de colores variables que indica una reacci&oacute;n positiva. </p>     <p> <b><i>Hidr&oacute;lisis del crudo de saponinas</i></b>    <br>    <br> A partir de 5 g de crudo de saponinas, por hidr&oacute;lisis se obtuvieron 1,265 g de sapogeninas, y se logr&oacute; un rendimiento del 24,1% con respecto al crudo. Respecto al material biol&oacute;gico present&oacute; un rendimiento de 0,103% &plusmn; 0,12%; es relativamente bajo, ya que el fruto presenta un 39,846% de semillas, un 17,62% de corteza y solo un 42,55% de pulpa, que es donde se encuentra el analto de inter&eacute;s. </p>     <p> <b><i>Identificaci&oacute;n de la sapogenina</i></b>    <br>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Para la identificaci&oacute;n de las sapogeninas, se tuvieron como referencia los patrones de dos de ellas, teniendo como base los reportes bibliogr&aacute;ficos, por ser las de mayor presencia en las especies vegetales de la familia analizada: diosgenina y hecogenina. Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis por espectroscopia infrarroja en equipo shimadzu prestige. En el espectro obtenido (ver <a href="#sp1">espectro 1</a>), se pueden observar claramente bandas pronunciadas y limpias, las cuales indican la alta pureza del producto obtenido. Se observan las siguientes bandas de vibraci&oacute;n y tensi&oacute;n: grupo OH a una longitud de onda de 3304,06 cm-1; reporte te&oacute;rico: 3500-2500 cm-1; grupos CH a 2927,94-2852,72 cm-1; reporte te&oacute;rico: 2850-3095 cm-1; grupo carbonilo C=O a 1726,29 cm-1; reporte te&oacute;rico: 1690-1760 cm-1. Igualmente, se confirma la presencia de los grupos CH: CH, CH2 y CH3, en una longitud de onda de: 1606,92, 1446,61 y 1360,60 cm-1. Hacia 1202,66 cm-1 hay una tensi&oacute;n del grupo C-O, reporte te&oacute;rico de: 1050 - 1300 cm-1. Este espectro comparado con el patr&oacute;n hecogenina de la biblioteca del equipo, tiene una similitud de un 99%. El punto de fusi&oacute;n determinado del analito de inter&eacute;s fue 255-258ºC. Comparado con los patrones se asemeja m&aacute;s a la hecogenina, la cual tiene P.f de 258-262ºC. Se puede concluir que probablemente la sapogenina presente en mayor proporci&oacute;n en la especie <i>Solanum marginatum</i> es la hecogenina (<a href="#f1">Imagen 1</a>). </p>     <center><a name="sp1"><img src="img/revistas/luaz/n32/n32a01f1.JPG"></a></center>    <br>     <center><a name="f1"><img src="img/revistas/luaz/n32/n32a01i1.GIF"></a></center>     <p> <b><i>Evaluaci&oacute;n del porcentaje de inhibici&oacute;n</i></b>    <br>    <br> Los resultados de las pruebas de efectividad para medir el potencial sanitizante del extracto biodegradable, comparado con dos desinfectantes comerciales, son presentados en la <a href="#g1">Gr&aacute;fica 1</a>. </p>     <center><a name="g1"><img src="img/revistas/luaz/n32/n32a01g1.JPG"></a></center>     <p> El porcentaje de inhibici&oacute;n sobre los microorganismos gram negativos depende de la concentraci&oacute;n del biosanitizante y del tiempo de contacto sobre estos. En el extracto bajo, prueba que el mayor porcentaje de inhibici&oacute;n se present&oacute; a partir de los 6 minutos a una concentraci&oacute;n del 10%, logrando un m&aacute;ximo de 99,58% de inhibici&oacute;n, tiempo a partir del cual la efectividad de todos los sanitizantes evaluados es muy similar. </p>     <p> El pH afecta tanto la carga neta de las bacterias como el grado de ionizaci&oacute;n del agente. En general, las formas ionizadas de los agentes pasan mejor a trav&eacute;s de las membranas biol&oacute;gicas, y por lo tanto, son m&aacute;s efectivos. El biosanitizante obtenido es un agente ani&oacute;nico con el grupo carbonilo como porci&oacute;n hidrof&iacute;lica y un pH &aacute;cido de 4,5. Los desinfectantes comerciales (Mat-98&reg; y Germigel&reg;) son agentes cat&iacute;onicos, con pH 11,7 y 11,9, respectivamente. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <b><i>Estandarizaci&oacute;n del proceso</i></b>    <br>    <br> El rendimiento de los productos en las diferentes fases del proceso de obtenci&oacute;n de hecogenina realizadas por triplicado, se muestra en la <a href="#t2">Tabla 2</a>. </p>     <center><a name="t2"><img src="img/revistas/luaz/n32/n32a01t2.GIF"></a></center>     <p> Los resultados obtenidos son alentadores, y por eso es importante continuar el perfeccionamiento de la metodolog&iacute;a para la extracci&oacute;n del principio activo de inter&eacute;s, adem&aacute;s de avanzar en la revalorizaci&oacute;n de residuos agr&iacute;colas, mediante el ensayo con otros materiales vegetales de riqueza potencial, escasa o nulamente aprovechados. Tambi&eacute;n se podr&aacute; continuar con la optimizaci&oacute;n del producto hacia un escalamiento industrial. Con ello se pretende brindar una alternativa, para el proceso de limpieza, con m&iacute;nimo impacto ambiental, a sectores tan importantes como el de la industria alimentaria. </p> </font> <font face="verdana" size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font> <font face="verdana" size="2">     <p> &bull; El biosanitizante preparado presenta mayor eficiencia sobre los microorganismos gram negativos a una concentraci&oacute;n del 10% y un tiempo de acci&oacute;n despu&eacute;s de 6 minutos, y presenta un porcentaje m&aacute;ximo de inhibici&oacute;n de 99,58%    <br> &bull; Los sanitizantes comerciales (Mat-98&reg; y Germigel&reg;) presentan un porcentaje de inhibici&oacute;n ligeramente superior, pero generan productos insolubles, que deterioran el medio ambiente y causan problemas de salud a quienes lo manipulan. El biosanitizante extra&iacute;do compensa la poca diferencia de inhibici&oacute;n (0,412%) con su particularidad de cuidar el entorno ambiental.    <br> &bull; El agente activo responsable del efecto sanitizante de la especie <i>Solanum marginatum</i>, seg&uacute;n P.f. y I.R., corresponde a la sapogenina conocida como hecogenina.    <br> &bull; El rendimiento logrado de hecogenina en frutos de la especie <i>Solanum marginatum</i> fue de 0,103% con respecto al material biol&oacute;gico, y de 24,1% con respecto al material seco.    <br> &bull; Se recomienda probar la extracci&oacute;n del compuesto activo de esta especie en base h&uacute;meda, y comparar su rendimiento y eficiencia frente a la ruta utilizada en base seca. </p> </font> <font face="verdana" size="3"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font> <font face="verdana" size="2">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> El autor del presente art&iacute;culo expresa unos sinceros agradecimientos a las personas que colaboraron en el desarrollo del mismo: Mar&iacute;a Cristina Castellanos y Julia Reyes, docentes de Qu&iacute;mica; Luz Marina Lizarazo, docente de Microbiolog&iacute;a; Edilma D&iacute;az Tamayo, auxiliar de laboratorio de microbiolog&iacute;a, y al personal administrativo del restaurante estudiantil de la Universidad Pedag&oacute;gica y Tecnol&oacute;gica de Colombia, que me permitieron realizar los ensayos con el producto sanitizante. </p> </font> <hr>    <br> <font face="verdana" size="3"><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></font> <font face="verdana" size="2">     <!-- ref --><p> &bull; Carrascal, A. K.; P&aacute;ez, A. & Burbano, M. (2003). <i>Manual de laboratorio: microbiolog&iacute;a de alimentos</i>. Colombia: CEJA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S1909-2474201100010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> &bull; Fieser, L. (1959). &quot;Saponinas esteroidales&quot;. <i>Revista cubana de farmacia</i>, 18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S1909-2474201100010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> &bull; Herrera, A. & Kec&aacute;n, G. (1970). &quot;An&aacute;lisis fitoqu&iacute;mico y farmacol&oacute;gico del solanum marginatum&quot;. <i>Rev. Colombiana ciencias qu&iacute;mico-farmac&eacute;uticas</i>, 3, 81-87.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S1909-2474201100010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> &bull; Hern&aacute;ndez, R. R. (1997). Obtenci&oacute;n de crudos de saponinas. <i>Rev Cubana Med Milit</i>, 26(1):55-62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S1909-2474201100010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> &bull; Hostettman, K. & Marston, A. (1995). &quot;Chemistry and pharmacology of natural products&quot;. <i>Journald of natural products</i>, 26. &#91;New York&#93;.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S1909-2474201100010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> &bull; Mart&iacute;nez, M. A. (2001). Saponinas esteroides. <i>Rev. Universitaria de Antioquia</i>, 52, 469-497. &#91;Colombia&#93;.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S1909-2474201100010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> &bull; Wall, M. E. (1952). Saponinas esteroidales y triterp&eacute;nicas. <i>Anal Chem</i>, 24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S1909-2474201100010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> &bull; Sanabria, A. (1974). Alcaloides del solanum marginatum. <i>Revista colombiana de ciencia qu&iacute;mico-farmaceuticas</i>, 38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S1909-2474201100010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> &bull; Saponins. (1995). <i>Studies in Natural Products Chemistry</i>: Volumen 21, Parte 2 - P&aacute;gina 678.  New York: Cambridge University Press.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S1909-2474201100010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><br> &bull; Segal, R.; Mansour, N. & Saitschek, D. V. (1996). Effect of ester groups on the e haemolytic ofsome saponins and sapogenins. <i>Journald biochem bharmacol<i>, 15,1411-16. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S1909-2474201100010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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