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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Respuesta de las plantas a estrés por inundación. Una revisión]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Plant responses to stress due to flooding. A review]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Flooding has a negative effect on the majority of terrestrial plants due to a reduction of growth and the resulting senescence. Oxygen deficiency, the main effect of flooding, can change plant metabolism, inducing the alternative anaerobic pathway, an inefficient mechanism for energy production. Equally, the oxygen deficit increases the production of reactive oxygen species (ROS) both in chloroplasts and mitochondria. In response to increasing ROS, plants see a rise in their antioxidant defense system, which is considered, along with the fermentation pathway, a short-term response. When plants are submitted to long periods of flooding, they present morphological changes, such as aerenchyma formation, which is considered a longterm response. In this article, we review the short and long term responses of plants to water stress caused by flooding.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  &nbsp; <font size="2" face="verdana">     <p><font size="4">    <center> <b>Respuesta de las plantas a estr&eacute;s por inundaci&oacute;n.   Una revisi&oacute;n</b> </center></font></p> &nbsp;     <p>   <font size="3">    <center> <b>Plant responses to stress due to flooding. A review</b> </center></font></p> &nbsp;     <p>    <center> <b>Juan de la Cruz Jim&eacute;nez S.<sup>1,3</sup>,    Liz Patricia Moreno F.<sup>2</sup>,  Stanislav Magnitskiy<sup>2</sup></b> </center></p>     <p><sup>1</sup> Facultad de Agronom&iacute;a, Programa de Maestr&iacute;a en Ciencias Agrarias con &eacute;nfasis en Fisiolog&iacute;a de Cultivos, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;; Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), Cali (Colombia).    <br> <sup>2</sup> Facultad de Agronom&iacute;a, Departamento de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute; (Colombia).    <br> <sup>3</sup> Autor para correspondencia. <a href="mailto:jcjimenezser@unal.edu.co">jcjimenezser@unal.edu.co</a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Fecha de recepci&oacute;n: 26-01-2012 Aprobado para publicaci&oacute;n: 29-05-2012</p> <hr size="1">     <p><b>Resumen</b></p>     <p>   La inundaci&oacute;n tiene un efecto negativo sobre la mayor&iacute;a de plantas terrestres debido a que reduce su crecimiento   e induce la senescencia. La deficiencia de ox&iacute;geno, efecto principal de la inundaci&oacute;n, cambia el metabolismo   de la planta induciendo la v&iacute;a anaer&oacute;bica o fermentativa como mecanismo alterno, aunque poco   eficiente para la producci&oacute;n de energ&iacute;a. Igualmente el d&eacute;ficit de ox&iacute;geno aumenta la producci&oacute;n de especies   reactivas de ox&iacute;geno (ROS), tanto en la mitocondria como en el cloroplasto. Como respuesta al incremento de   ROS hay un aumento en el sistema de defensa antioxidante de la planta, el cual es considerado, junto con la   inducci&oacute;n de la v&iacute;a fermentativa, como una respuesta a corto plazo. Cuando la planta est&aacute; sometida a largos   periodos de inundaci&oacute;n se presentan, adicionalmente, cambios morfol&oacute;gicos, como la formaci&oacute;n de aer&eacute;nquima,   los cuales son considerados respuestas a largo plazo. En este art&iacute;culo se revisan las respuestas, tanto a   corto como a largo plazo, de las plantas a la condici&oacute;n de estr&eacute;s h&iacute;drico por inundaci&oacute;n.</p>     <p><b>Palabras clave adicionales:</b> respiraci&oacute;n anaer&oacute;bica, defensa antioxidante, aer&eacute;nquima, estr&eacute;s abi&oacute;tico.</p> <hr size="1">     <p><b>Abstract</b></p>     <p>   Flooding has a negative effect on the majority of terrestrial plants due to a reduction of growth and the   resulting senescence. Oxygen deficiency, the main effect of flooding, can change plant metabolism, inducing   the alternative anaerobic pathway, an inefficient mechanism for energy production. Equally, the oxygen   deficit increases the production of reactive oxygen species (ROS) both in chloroplasts and mitochondria.   In response to increasing ROS, plants see a rise in their antioxidant defense system, which is considered,   along with the fermentation pathway, a short-term response. When plants are submitted to long periods of   flooding, they present morphological changes, such as aerenchyma formation, which is considered a longterm   response. In this article, we review the short and long term responses of plants to water stress caused   by flooding.</p>     <p><b>Additional keywords:</b> anaerobic respiration, antioxidant defense, aerenchyma, abiotic stress.</p> <hr size="1"> &nbsp;     <p><b>Abreviaciones:</b> AEC: carga energ&eacute;tica del adenilato, ACC: &aacute;cido 1-aminociclopropano-1-carbox&iacute;lico, ADH: alcohol deshidrogenasa,   AsA: ascorbato, APX: ascorbato peroxidasa, CAT: Catalasa, DHA: dehidroascorbato, DHAR: dehidroascorbato reductasa,   GR: glutati&oacute;n reductasa, GSH: glutati&oacute;n, GSSG: glutati&oacute;n oxidado, MDA: malondihaldeh&iacute;do, MDHA: monodehidroascorbato,   MDHR: monodehidroascorbato reductasa, NAD: nicotinamide adenine dinucleotide, NADPH: nicotinamide adenine dinucleotide   phosphate, LDH: lactato deshidrogenasa, PDC: piruvato decarboxilasa, POD: peroxidasa, ROL: (radial oxygen loss) p&eacute;rdida radial de ox&iacute;geno, ROS: (reactive oxygen species) especies reactivas del ox&iacute;geno, SOD: super&oacute;xido dismutasa.</p>     <p><font size="3"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p>Ciertos fen&oacute;menos meteorol&oacute;gicos extremos,   asociados al cambio clim&aacute;tico, permiten predecir   niveles elevados de vulnerabilidad de pa&iacute;ses   tanto desarrollados como subdesarrollados ante   sequ&iacute;as, ondas de calor e inundaciones (IPCC,   2007). El estr&eacute;s h&iacute;drico por inundaci&oacute;n es un   factor limitante en la producci&oacute;n de algunos   cultivos como ma&iacute;z (<i>Zea mays</i> L.) (Zaidi <i>et al</i>.,   2002; Bin <i>et al</i>., 2010; Yong-Zhong <i>et al</i>., 2010),   br&oacute;coli (<i>Brassica oleracea</i>), nabo (<i>Brassica rapa</i>)   (Issarakraisila <i>et al</i>., 2006), canola (<i>Brassica napus</i>)   (Gutierrez <i>et al</i>., 1996; Yong <i>et al</i>., 2010;   Leul y Zhou, 1998; Zhou y Lin, 1995), c&iacute;tricos   (<i>Citrus</i> sp.) (Hossain <i>et al</i>., 2009), fr&iacute;jol mungo   (<i>Vigna radiata</i>) (Sairam <i>et al</i>., 2008; Ahmed <i>et al</i>.,   2006), crisantemo (<i>Chrysanthemum</i> sp.) (Yin <i>et al</i>., 2009), trigo (<i>Triticum aestivum</i> L.) (Dickin y   Wright, 2007; Zheng <i>et al</i>., 2009), algod&oacute;n (<i>Gossypium   hirsutum</i> L.) (Milroy <i>et al</i>., 2009; Bange <i>et al</i>., 2003), girasol (<i>Helianthus annuus</i> L.) (Grassini <i>et al</i>., 2006), garbanzo (<i>Cicer arietinum</i> L.) (Palta <i>et al</i>., 2010), cebolla larga (<i>Allium fistulosum</i> L.)   (Yin <i>et al</i>., 2009), manzana (<i>Malus</i> sp.) (Bai <i>et al</i>., 2010) y uchuva (<i>Physalis peruviana</i> L.) (Garc&iacute;a y Aldana, 2011).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   En Am&eacute;rica Latina alrededor de 11,3% de las   tierras cultivables presentan drenajes pobres   principalmente porque la fisiograf&iacute;a promueve   inundaci&oacute;n, niveles fre&aacute;ticos altos o aguas superficiales   estancadas (Wood <i>et al</i>., 2000).</p>     <p>   En suelos inundados, el potencial redox se disminuye   (Balakhina <i>et al</i>., 2010 Ryser et al., 2011;   Abbaspour, 2012) lo cual es un indicador del bajo   nivel de ox&iacute;geno presente (Unger <i>et al</i>., 2009a),   adem&aacute;s se afecta la disponibilidad de nutrientes   para las plantas (Unger <i>et al</i>., 2009b). La inundaci&oacute;n   inhibe la actividad de enzimas como la   <font face="symbol">b</font>-D-glucosidasa y la fosfatasa, involucradas en los ciclos del carbono, nitr&oacute;geno, f&oacute;sforo y azufre   (Xiao-Chang y Qin, 2006) y se aumenta la   concentraci&oacute;n de etileno (Malik <i>et al</i>., 2003). Estas   condiciones cambiantes en el suelo generan   efectos negativos en el crecimiento y desarrollo   de las plantas.</p>     <p>   Cuando el ox&iacute;geno es deficiente en el suelo se   generan formas reducidas de nitr&oacute;geno, f&oacute;sforo,   manganeso, hierro o azufre que pueden   modificar la solubilidad del elemento (Unger <i>et al</i>., 2009b) afectando su disponibilidad (Taiz   y Zeiger, 2010). La difusi&oacute;n de ox&iacute;geno en suelos   inundados es muy baja, aproximadamente   10.000 veces m&aacute;s baja que en el aire (Koppitz,   2004), y el intercambio de gases entre la ra&iacute;z   sumergida y el ambiente es muy limitado. Bajo   inundaci&oacute;n, el aire en los poros del suelo es reemplazado   por el agua y el ox&iacute;geno es consumido   r&aacute;pidamente por la respiraci&oacute;n de las ra&iacute;ces y   la actividad microbial (Koppitz, 2004).</p>     <p>   El d&eacute;ficit de ox&iacute;geno inhibe la respiraci&oacute;n mitocondrial,   la oxidaci&oacute;n y los procesos de oxigenaci&oacute;n   (Koppitz, 2004), vi&eacute;ndose notablemente   afectado el metabolismo de la planta (Kulichikin <i>et al</i>., 2008; Sairam <i>et al</i>., 2008). El ox&iacute;geno es el   aceptor de los electrones en la cadena transportadora   de electrones en la mitocondria y su ausencia   causa saturaci&oacute;n de esta, por lo que se acumula   NADH disminuy&eacute;ndose la producci&oacute;n de ATP   (Lin <i>et al</i>., 2008). En ausencia del aceptor de electrones,   la oxidaci&oacute;n de NADH se bloquea y no   se genera el NAD<sup>+</sup> necesario para glicolisis, esto   disminuye la producci&oacute;n de la energ&iacute;a necesaria   para soportar los procesos metab&oacute;licos de la planta   (Taiz y Zeiger, 2010).</p>     <p>   Como respuesta al estr&eacute;s por inundaci&oacute;n en la   planta se inducen v&iacute;as de se&ntilde;ales de transducci&oacute;n   que llevan al desarrollo de la v&iacute;a metab&oacute;lica   de la fermentaci&oacute;n y posteriormente, de acuerdo   con la especie, a la generaci&oacute;n de cambios morfol&oacute;gicos   y formaci&oacute;n de ra&iacute;ces adventicias (Yin <i>et al</i>., 2010).</p>     <p>   Los cambios bioqu&iacute;micos en las plantas son   usualmente inducidos por un periodo corto de   inundaci&oacute;n mientras que los cambios anat&oacute;micos   y morfol&oacute;gicos est&aacute;n involucrados con aclimataci&oacute;n   a largos periodos de inundaci&oacute;n (Chen <i>et al</i>.,   2002). En esta revisi&oacute;n se presentan las adaptaciones   de las plantas tanto a corto como a largo   plazo en respuesta al estr&eacute;s por inundaci&oacute;n.</p>     <p><b>   RESPUESTA BIOQU&Iacute;MICA</b></p>     <p>   Las plantas expuestas a condiciones anaer&oacute;bicas   pueden cambiar su metabolismo de respiraci&oacute;n   aer&oacute;bica a la v&iacute;a de la fermentaci&oacute;n, como un   mecanismo adaptativo a la carencia de ox&iacute;geno   (Fukao <i>et al</i>., 2003; Pe&ntilde;a-Fronteras <i>et al</i>., 2008).   En ausencia de ox&iacute;geno, el ciclo del &aacute;cido c&iacute;trico   y la fosforilaci&oacute;n oxidativa no funcionan y   la glicolisis se detiene por la limitaci&oacute;n en el   contenido de NAD<sup>+</sup>. Cuando se agota el NAD<sup>+</sup>,   necesario para la primera reacci&oacute;n de la fase de   conservaci&oacute;n de energ&iacute;a de la glicolisis, la planta   metaboliza piruvato por la v&iacute;a fermentativa   para obtener NAD<sup>+</sup> (Taiz y Zeiger, 2010). Las   plantas realizan dos tipos de fermentaci&oacute;n: alcoh&oacute;lica   y del &aacute;cido l&aacute;ctico, estas dos v&iacute;as metab&oacute;licas   utilizan como substrato el piruvato, producido   en la glicolisis (Kulichikhin <i>et al</i>., 2008)   (<a href="#f1">figura 1</a>). En la fermentaci&oacute;n del &aacute;cido l&aacute;ctico,   la enzima lactato deshidrogenasa (LDH) utiliza   NADH para reducir piruvato a lactato y regenerar   NAD<sup>+</sup> (Kato-Noguchi, 2000; Taiz y Zeiger,   2010). Lo mismo ocurre en la fermentaci&oacute;n alcoh&oacute;lica,   donde la enzima alcohol deshidrogenasa   (ADH) utiliza NADH para reducir acetaldeh&iacute;do   a etanol y regenerar NAD<sup>+</sup>. La acumulaci&oacute;n de   lactato causa una disminuci&oacute;n del pH citoplasm&aacute;tico   (Kato-Noguchi, 2000; Taiz y Zeiger,   2010), lo que es com&uacute;n en plantas susceptibles   a la anoxia (Couldwell <i>et al</i>., 2009). Cuando se   acidifica el citoplasma, se suprime la s&iacute;ntesis de   prote&iacute;nas, se detiene la glicolisis y se presenta   un d&eacute;ficit extremo de energ&iacute;a en la planta (Kulichikhin <i>et al</i>., 2008).</p>     <p>    <center><a name="f1"><img src="img/revistas/rcch/v6n1/v6n1a10f1.jpg"></a></center></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La disminuci&oacute;n en el pH inhibe la actividad de la   LDH (Kulichikhin <i>et al</i>., 2008) y activa la ADH y   la piruvato decarbixilasa (PDC). La enzima PDC   cataliza la conversi&oacute;n de piruvato a acetaldeh&iacute;do   en el primer paso en la v&iacute;a de la fermentaci&oacute;n alcoh&oacute;lica   (Yin <i>et al</i>., 2009). Luego el acetaldeh&iacute;do   es reducido a etanol en una reacci&oacute;n catalizada   por la ADH, donde el NADH es oxidado (<a href="#f1">figura 1</a>) (Kato-Noguchi <i>et al</i>., 2000; Pe&ntilde;a-Fronteras <i>et al</i>., 2008), la producci&oacute;n de etanol es menos   t&oacute;xica para la planta ya que este puede difundir   fuera de la c&eacute;lula (Taiz y Zeiger, 2010). La   fermentaci&oacute;n etan&oacute;lica no necesita ser precedida   por la fermentaci&oacute;n del lactato (Kato-Noguchi <i>et al</i>., 2000; Mohanty y Ong, 2001) y el factor   m&aacute;s limitante para esta v&iacute;a, bajo condiciones de   d&eacute;ficit de ox&iacute;geno, no es la ADH sino la cantidad reducida de PDC (Kato-Noguchi <i>et al</i>., 2000).</p>     <p>   La cantidad de ATP generada durante la fermentaci&oacute;n   es de 2 mol&eacute;culas de ATP por mol&eacute;cula   de glucosa, producidas por fosforilaci&oacute;n de substrato   (Stryer, 1995; Aschi-Smiti, 2003; Taiz y   Zeiger, 2010), mientras que durante la fosforilaci&oacute;n   oxidativa se producen 32 mol&eacute;culas de ATP   (Mohanty y Ong, 2001). La baja producci&oacute;n de   energ&iacute;a en la fermentaci&oacute;n se debe a que mucha   de la energ&iacute;a disponible en la sacarosa es conservada   en el producto, lactato o etanol (Taiz y Zeiger,   2010). Dada la baja eficiencia de generaci&oacute;n   de energ&iacute;a por la fermentaci&oacute;n, es necesario un   incremento en la tasa de la glicolisis para producir   el ATP que necesita la c&eacute;lula para sobrevivir   (Taiz y Zeiger, 2010).</p>     <p>   El aumento en la tasa glicol&iacute;tica contribuye a   mejorar el estado energ&eacute;tico de la planta y el uso   eficiente de los carbohidratos para la producci&oacute;n   de energ&iacute;a (Aschi-Smiti, 2003). Dado que la fermentaci&oacute;n   utiliza la glucosa como sustrato, un   adecuado suministro de az&uacute;cares fermentables,   un aumento en la degradaci&oacute;n de almid&oacute;n o el   almacenamiento de carbohidratos como az&uacute;cares   simples, puede ser un mecanismo importante   para sobrevivir a las condiciones de anegamiento   (Pe&ntilde;a-Fronteras <i>et al</i>., 2008). Igualmente, la   disponibilidad de carbohidratos fermentables   aparece como un par&aacute;metro bioqu&iacute;mico relacionado   con la tolerancia a inundaci&oacute;n en cereales   (Guglielminetti <i>et al</i>., 2001) ya que estos son   utilizados por la planta bajo anoxia. Durante   el primer d&iacute;a de inundaci&oacute;n, el nivel de los az&uacute;cares   fermentables disminuye (Guglielminetti <i>et al</i>., 2001), pero posteriormente este aumenta   probablemente por la degradaci&oacute;n de almid&oacute;n   (Guglielminetti <i>et al</i>., 2001).</p>     <p>   Las plantas de trigo, cebada y arroz presentan   una alta producci&oacute;n de etanol durante el primer   d&iacute;a de inundaci&oacute;n, de estas solo el arroz tiene   la capacidad para fermentar durante periodos   largos de anoxia (Guglielminetti <i>et al</i>., 2001).   El primer d&iacute;a de anoxia, la tasa de producci&oacute;n   de etanol en pl&aacute;ntulas de arroz es cercana a 2   (conversi&oacute;n completa de carbohidrato a etanol,   2 moles de etanol por mol de hexosa), despu&eacute;s   incrementa r&aacute;pidamente a valores que no son   comparables con los cambios en el contenido de   carbohidratos, en contraste en trigo y cebada es   menos de 2 moles de etanol por mol de hexosa   (Guglielminetti <i>et al</i>., 2001).</p>     <p>   Los cambios en la ruta metab&oacute;lica se producen   r&aacute;pidamente despu&eacute;s del estr&eacute;s por inundaci&oacute;n.   En plantas de lechuga, se encontr&oacute; un aumento   en la concentraci&oacute;n de etanol y acetaldeh&iacute;do   despu&eacute;s de 30 min de anoxia, el etanol a las   primeras 6 h incrementa ocho veces m&aacute;s que en   condiciones aer&oacute;bicas, mientras que la actividad   de la ADH y la PDC aumenta en 2,8 y 2,9 veces   respectivamente, m&aacute;s que en condiciones de normal   aireaci&oacute;n o normoxia (Kato-Noguchi <i>et al</i>.,   2000). En genotipos de fr&iacute;jol mungo tolerantes   a la inundaci&oacute;n, se observan incrementos de 15   a 20 veces en la actividad de la ADH 8 d despu&eacute;s   de la inundaci&oacute;n, sin embargo los genotipos   susceptibles solo presentan un aumento a los 4   d de inundaci&oacute;n y despu&eacute;s una disminuci&oacute;n de   la actividad (Sairam <i>et al</i>., 2008). En genotipos   de Dendranthema nankingense y D. zawadskii tolerantes   a inundaci&oacute;n la actividad de la ADH   fue el doble en comparaci&oacute;n con los genotipos susceptibles, en contraste la actividad de la LDH   fue tres veces mayor en las especies susceptibles   durante un periodo de 6 d de inundaci&oacute;n (Yin <i>et al</i>., 2010). La actividad de la ADH y la PDC   en rizomas de Cyperus rotundus aumenta significativamente   cuando se someten a condiciones   de hipoxia por 24 h despu&eacute;s de la germinaci&oacute;n   (Pe&ntilde;a-Fronteras <i>et al</i>., 2008).</p>     <p><b>   RESPUESTAS DEL SISTEMA   ANTIOXIDANTE DE LA PLANTA</b></p>     <p>   El estr&eacute;s por inundaci&oacute;n genera en la planta cambios   que pueden ser irreversibles como disminuci&oacute;n   de la permeabilidad de las membranas, peroxidaci&oacute;n   de l&iacute;pidos, degradaci&oacute;n de prote&iacute;nas   clorofilas, disminuci&oacute;n de la expansi&oacute;n foliar y   cierre estom&aacute;tico. El cierre estom&aacute;tico causa disminuci&oacute;n del CO2 en los espacios intercelulares y   disminuci&oacute;n en la fotos&iacute;ntesis (Lin <i>et al</i>., 2006),   esto induce la formaci&oacute;n de las especies reactivas   de ox&iacute;geno (ROS) (Mittler, 2002).</p>     <p>   La sobreproducci&oacute;n de ROS bajo estr&eacute;s por   inundaci&oacute;n est&aacute; directamente relacionada con   la disminuci&oacute;n en la tasa fotosint&eacute;tica bajo esta   condici&oacute;n de estr&eacute;s (Hossain <i>et al</i>., 2009), ya que   menor asimilaci&oacute;n de CO<sub>2</sub> causa un desacople   entre las reacciones del tilacoide y el ciclo de   Calvin (Lin <i>et al</i>., 2008). Las ROS son formas   parcialmente reducidas del ox&iacute;geno atmosf&eacute;rico   (O<sub>2</sub>) y se pueden generar por la excitaci&oacute;n del   O<sub>2</sub> a la forma simple (1O<sub>2</sub>) o por la transferencia   de uno, dos o tres electrones de la forma O<sub>2</sub> al   radical super&oacute;xido (O<sub>2</sub> <sup>-</sup>), per&oacute;xido de hidr&oacute;geno   (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>) o al radical hidroxilo (OH<sup>-</sup>) respectivamente   (Lin <i>et al</i>., 2008; Mittler, 2002).</p>     <p>Las ROS son un indicador celular de estr&eacute;s, un   mensajero involucrado en respuestas a estr&eacute;s   (Mittler, 2002; Fukao y Bailey-Serres, 2004;   Cheeseman, 2007; Lin <i>et al</i>., 2008) y adem&aacute;s   est&aacute; involucrado en la muerte celular bajo estr&eacute;s   abi&oacute;tico (Evans, 2003). Las ROS se generan en   compartimentos celulares y su producci&oacute;n es   resultado del metabolismo en todos los organismos   vivos (Mubarakshina <i>et al</i>., 2006). En   plantas son producidas en cloroplastos, mitocondrias   y peroxisomas, durante estr&eacute;s la tasa   de producci&oacute;n se incrementa notablemente (Suzuki   y Mittler, 2006). Las ROS pueden causar   mutaciones, disfunci&oacute;n de prote&iacute;nas, oxidaci&oacute;n   de l&iacute;pidos, da&ntilde;os en membranas, inhibici&oacute;n de la   s&iacute;ntesis de clorofila y, por tanto, disminuci&oacute;n en la tasa fotosint&eacute;tica (Ella <i>et al</i>., 2003).</p>     <p>   Las plantas presentan compuestos antioxidantes   enzim&aacute;ticos y no enzim&aacute;ticos que les   permiten contrarrestar los efectos fitot&oacute;xicos   causados por ROS (Alscher <i>et al</i>., 1997). Los antioxidantes   enzim&aacute;ticos son: la super&oacute;xido dismutasa   (SOD), la ascorbato peroxidasa (APX),   la catalasa (CAT) (Yin <i>et al</i>., 2010; Yordanova <i>et al</i>., 2004), la monodehidroascorbato reductasa   (MDHAR), la dehidroascorbato reductasa   (DHAR), la glutati&oacute;n reductasa (GR) (Hossain <i>et al</i>., 2009; Ella <i>et al</i>., 2003) y la glutati&oacute;n peroxidasa   (GPX). Los antioxidantes no enzim&aacute;ticos   incluyen los carotenoides, el ascorbato (AsA)   (Bin <i>et al</i>., 2010), el glutati&oacute;n (GSH) (Bai <i>et al</i>.,   2010), los compuestos fen&oacute;licos y los tocoferoles   (Yordanova <i>et al</i>., 2004).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   La SOD representa el primer nivel de defensa   contra los radicales O<sub>2</sub><sup>-</sup> (Hossain <i>et al</i>., 2009) a   trav&eacute;s de la formaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> y O<sub>2</sub> (Yordanova <i>et al</i>., 2004; Bin <i>et al</i>., 2010), el H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> es menos   t&oacute;xico y es convertido en H2O por una serie   de reacciones subsecuentes (Bin <i>et al</i>., 2010). La   APX es la primer enzima que elimina H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> (Bai <i>et al</i>., 2010) para producir H<sub>2</sub>O, la POD puede   estar involucrada en la eliminaci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> y   OH<sup>-</sup> (Yong-Zhong <i>et al</i>., 2010). Igualmente, la   enzima CAT est&aacute; involucrada en la regulaci&oacute;n   de los niveles intracelulares de H2O2 (Bin <i>et al</i>.,   2010) convirti&eacute;ndolo en O<sub>2</sub> y la enzima GPX   convirtiendo el H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> en H<sub>2</sub>O (<a href="#f2">figura 2</a>).</p>     <p>    <center><a name="f2"><img src="img/revistas/rcch/v6n1/v6n1a10f2.jpg"></a></center></p>       <p>   En el ciclo del glutati&oacute;n-ascorbato, el per&oacute;xido   de hidr&oacute;geno es convertido a agua, el agente reductor   en la primera reacci&oacute;n catalizada por la   APX es el ascorbato (AsA) el cual se oxida en   monodehidroascorbato (MDA). Posteriormente,   la MDA reductasa (MDAR) reduce el MDA a   ascorbato con la ayuda del NAD(P)H. El dehidroascorbato   (DHA) se produce espont&aacute;neamente   por MDA y puede ser reducido a ascorbato   por la DHA reductasa (DHAR) con la ayuda   del glutati&oacute;n (GSH) que es oxidado a glutati&oacute;n   oxidado (GSSG). El ciclo se cierra cuando el   glutati&oacute;n reductasa (GR) convierte el GSSG en   GSH con el agente reductor NAD(P)H. El ciclo   del glutati&oacute;n peroxidasa convierte el per&oacute;xido   de hidr&oacute;geno en agua usando equivalentes de   reducci&oacute;n del GSH, el GSSG de nuevo es convertido   a GSH por GR y el agente reducido NAD(P)   H (Apel y Hirt, 2004) (<a href="#f2">figura 2</a>).</p>     <p>   El aumento en la concentraci&oacute;n de enzimas   antioxidantes en la planta bajo condiciones de   hipoxia es un par&aacute;metro de tolerancia al estr&eacute;s   por inundaci&oacute;n. Durante hipoxia en plantas de   manzana, la actividad de la SOD, la POD y la   GR aument&oacute; (Bai <i>et al</i>., 2010), mientras que en   plantas de ma&iacute;z, sometidas a inundaci&oacute;n, se increment&oacute;   significativamente la actividad de la   APX, la SOD y la CAT (Bin <i>et al</i>., 2010). Igualmente,   especies de Dendranthema spp. tolerantes   a inundaci&oacute;n, presentaron mayores niveles de   SOD, APX y CAT que las especies susceptibles   (Yin <i>et al</i>., 2010). Se ha encontrado que las enzimas   SOD y CAT muestran respuestas tempranas   a la hipoxia, mientras la APX presenta   una respuesta tard&iacute;a (Hossain <i>et al</i>., 2009). El   aumento de antioxidantes sugiere que el sistema   de defensa act&uacute;a en conjunto para proteger a la   planta del da&ntilde;o oxidativo causado por las ROS   (Mittler, 2002).</p>     <p>Bajo inundaci&oacute;n, la capacidad de la planta para   eliminar ROS disminuye y hay acumulaci&oacute;n   de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> que causa peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica, incrementos   en la permeabilidad de la membrana   y aceleraci&oacute;n de la senescencia foliar (Yong-   Zhong <i>et al</i>., 2010). El malondialdehido (MDA)   es el primer producto de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica   de la membrana y es considerado como un indicador   del da&ntilde;o oxidativo en la planta (Bai <i>et al</i>., 2010).</p>     <p>   En genotipos de ma&iacute;z tolerantes, el contenido de   MDA en hojas y ra&iacute;ces no fue alterado por un   periodo de inundaci&oacute;n de 6 d, en contraste con   los genotipos susceptibles donde aument&oacute; significativamente   en hojas y ra&iacute;ces (Bin <i>et al</i>., 2010).   En plantas de trigo sometidas a un periodo de   inundaci&oacute;n de 10 d, el contenido de MDA en   cloroplastos se increment&oacute; (Zheng <i>et al</i>., 2009),   mientras que en c&iacute;tricos se encontr&oacute; que el nivel   de MDA increment&oacute; continuamente a medida   que aumentaba el periodo de inundaci&oacute;n (Hossain <i>et al</i>., 2009). En plantas de Dendranthema   spp. susceptibles a inundaci&oacute;n, el contenido de   MDA es mayor que en plantas tolerantes (Yin <i>et al</i>., 2010). Una disminuci&oacute;n en la actividad de las   enzimas antioxidantes puede resultar en la acumulaci&oacute;n   de altos niveles de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> y en un incremento   en la peroxidaci&oacute;n de l&iacute;pidos, de tal modo   que aumenta el contenido de MDA y se induce   da&ntilde;o en membranas (Bin <i>et al</i>., 2010). Los cambios   en la actividad de las enzimas antioxidantes   y el contenido de MDA son muy variables entre   especies y dependen en gran medida de la duraci&oacute;n   del estr&eacute;s (Bin <i>et al</i>., 2010).</p>     <p>   Durante un periodo corto de inundaci&oacute;n, la regulaci&oacute;n   del sistema antioxidante es una respuesta   de protecci&oacute;n contra ROS; no obstante,   durante un periodo de inundaci&oacute;n prolongada el   mecanismo regulador del estr&eacute;s no tiene la capacidad   para reparar el da&ntilde;o oxidativo y como   consecuencia ocurre la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica (Balakhina <i>et al</i>., 2010).</p>     <p><b>ADAPTACIONES MORFOL&Oacute;GICAS   Y ANAT&Oacute;MICAS</b></p>     <p>  Despu&eacute;s del ajuste metab&oacute;lico, la planta genera   cambios morfol&oacute;gicos internos para sobrevivir   bajo largos periodos de hipoxia. Kolb y Joly   (2009) se&ntilde;alan que en plantas de Tabebuia cassinoides   la disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n de etanol,   despu&eacute;s de unos d&iacute;as de inundaci&oacute;n, coincidi&oacute; con la aparici&oacute;n de ra&iacute;ces nuevas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   En plantas de &aacute;lamo (<i>Populus deltoides</i> Marsh.),   como respuesta a la inundaci&oacute;n hay formaci&oacute;n   de lenticelas hipertrofiadas y generaci&oacute;n de ra&iacute;ces   adventicias. Gradualmente, los tallos sumergidos   comienzan a hincharse despu&eacute;s de 10 d de   inundaci&oacute;n, las lenticelas hipertrofiadas aparecen   de 10 a 15 d y las ra&iacute;ces adventicias a los 20 d   de inundaci&oacute;n (Cao y Conner, 1999). Igualmente   en plantas de Himatanthus sucuuba se induce la   formaci&oacute;n de lenticelas hipertrofiadas y ra&iacute;ces   adventicias 15 d despu&eacute;s de iniciarse la inundaci&oacute;n   (Ferreira <i>et al</i>., 2009). Las lenticelas son   estructuras que facilitan el transporte de ox&iacute;geno   a las ra&iacute;ces, contribuyendo a la recuperaci&oacute;n   y mantenimiento de la respiraci&oacute;n aer&oacute;bica en   plantas sometidas a inundaci&oacute;n (Ferreira <i>et al</i>.,   2009), adem&aacute;s ayudan en la liberaci&oacute;n de compuestos   t&oacute;xicos (Cao y Conner, 1999).</p>     <p>   El principal cambio a nivel morfol&oacute;gico en condiciones   de inundaci&oacute;n, es la formaci&oacute;n de aer&eacute;nquima,   un tejido vegetal con espacios largos   e interconectados llenos de gas (Koppitz, 2004).   La formaci&oacute;n de aer&eacute;nquima es espec&iacute;fica de algunas   especies y puede diferir entre genotipos   dentro de una misma especie (Colmer, 2003). El   aer&eacute;nquima ofrece a la planta una v&iacute;a interna de   baja resistencia para el movimiento de ox&iacute;geno   (Colmer <i>et al</i>., 2006; Aschi-Smiti, 2003), facilitando   su transporte desde la parte a&eacute;rea hasta la   ra&iacute;z (Aschi-Smiti, 2003; Kolb y Joly, 2009).   El ox&iacute;geno que llega a la ra&iacute;z v&iacute;a aer&eacute;nquima mejora   significativamente el estado energ&eacute;tico de la   planta, permitiendo la sobrevivencia en ausencia   de ox&iacute;geno externo (Aschi-Smiti, 2003). Segmentos   de ra&iacute;ces adventicias de plantas crecidas   durante 15 d en condiciones de hipoxia presentan   mayor AEC (carga energ&eacute;tica del adenilato)   que segmentos de plantas crecidas aer&oacute;bicamente   (Aschi-Smiti, 2003).</p>     <p>   Cuando el aer&eacute;nquima es abundante en la ra&iacute;z,   la planta puede presentar metabolismo aer&oacute;bico   (Blom, 1999). En plantas de canola durante un   periodo de inundaci&oacute;n prolongada se forman   ra&iacute;ces laterales peque&ntilde;as, carnosas y porosas,   con alto contenido de aer&eacute;nquima (Zhou y Lin   1995). En tr&eacute;bol blanco (<i>Trifolium repens</i>), Huber <i>et al</i>. (2009) encontraron que bajo condiciones de   inundaci&oacute;n la porosidad de la ra&iacute;z incrementa   60% en comparaci&oacute;n con condiciones de buen   drenaje. Igualmente, las ra&iacute;ces de plantas de trigo   que son expuestas a inundaci&oacute;n presentan de   cuatro a cinco veces m&aacute;s porosidad que las de   plantas crecidas en suelos bien drenados (Malik <i>et al</i>., 2003).</p>     <p>   El desarrollo de aer&eacute;nquima tambi&eacute;n facilita el   movimiento de gases desde el tejido a la atm&oacute;sfera,   siendo un proceso importante para la detoxificaci&oacute;n   y eliminaci&oacute;n de gases como metano y   etileno que se acumulan en cantidades t&oacute;xicas   bajo condiciones de estr&eacute;s por inundaci&oacute;n (Colmer,   2003).</p>     <p>   El aer&eacute;nquima puede ser constitutivo en especies   tolerantes a inundaci&oacute;n como el arroz (<i>Oriza   sativa</i> L.) o su formaci&oacute;n puede ser inducida   por factores como presencia de zonas deficientes   de O<sub>2</sub>, el transporte interno de &aacute;cido 1-aminociclopropano-   1-carbox&iacute;lico, precursor del etileno,   o la acumulaci&oacute;n de etileno en el suelo (Malik <i>et al</i>., 2003).</p>     <p>   En general, las especies que tienen aer&eacute;nquima   constitutivo presentan ventaja competitiva en   condiciones de inundaci&oacute;n frente a las especies   que no lo tienen. Las especies de tierras h&uacute;medas   que presentan aer&eacute;nquima constitutivo son   capaces de incrementar la porosidad r&aacute;pidamente cuando se exponen a condiciones deficientes   de ox&iacute;geno (Visser <i>et al</i>., 2000). Igualmente, los   genotipos que producen ra&iacute;ces secundarias, en   condiciones de buen drenaje, tienden a ser m&aacute;s   productivos durante la inundaci&oacute;n que los genotipos   que producen pocas o ninguna ra&iacute;z en   condiciones &oacute;ptimas de crecimiento (Huber <i>et al</i>., 2009).</p>     <p>   Adem&aacute;s, el aer&eacute;nquima ayuda al crecimiento y   producci&oacute;n de ra&iacute;ces en condiciones de anoxia   (Aguilara <i>et al</i>., 1999; Malik <i>et al</i>., 2003). Bajo   inundaci&oacute;n tambi&eacute;n se incrementa la proporci&oacute;n   de ra&iacute;ces nodales con aer&eacute;nquima, facilitando la   difusi&oacute;n de O<sub>2</sub> y la elongaci&oacute;n de la ra&iacute;z (Suralta   y Yamauchi, 2008). Las especies con alta porosidad   en la ra&iacute;z forman ra&iacute;ces m&aacute;s profundas   que mejoran la exploraci&oacute;n del suelo durante la   inundaci&oacute;n y ofrecen una ventaja competitiva en   el crecimiento, al finalizar el periodo de inundaci&oacute;n   (Colmer, 2003). El aer&eacute;nquima se desarrolla   mejor en ra&iacute;ces localizadas en el agua, arriba   de la superficie del suelo que en ra&iacute;ces ubicadas   dentro del suelo (Polthanee <i>et al</i>., 2008). Factores   morfol&oacute;gicos y anat&oacute;micos como la formaci&oacute;n   de aer&eacute;nquima en las ra&iacute;ces y el desarrollo de ra&iacute;ces   adventicias son considerados como una de las   principales respuestas de las plantas para sobrevivir   a largos periodos de anoxia (Aschi-Smiti,   2003; Malik <i>et al</i>., 2003; Saqib <i>et al</i>., 2005; Mano <i>et al</i>., 2006; Suralta y Yamauchi, 2008).</p>     <p>   El aer&eacute;nquima puede ser esquizog&eacute;nico, desarrollado   como resultado de la separaci&oacute;n de las c&eacute;lulas   (Kolb y Joly, 2009) o lisog&eacute;nico, producido   por muerte celular (Evans, 2003). El esquizog&eacute;nico   es usualmente constitutivo, mientras que el   lisog&eacute;nico es generalmente inducido y presenta   una estructura menos regular (Evans, 2003). La   muerte selectiva de las c&eacute;lulas para formar aer&eacute;nquima   est&aacute; asociada con el aumento de la   actividad de enzimas proteol&iacute;ticas (Aschi-Smiti,   2003) o con la acumulaci&oacute;n de etileno (Colmer,   2003). Especies tolerantes a inundaci&oacute;n del g&eacute;nero   Dendranthema presentan aer&eacute;nquima lisog&eacute;nico,   mientras que los genotipos susceptibles   carecen de este (Yin <i>et al</i>., 2010), indicando que   este rasgo puede ser importante en la tolerancia   a inundaci&oacute;n (Mano <i>et al</i>., 2006).</p>     <p>   Otro mecanismo desarrollado por algunas plantas   para hacer eficiente el uso del ox&iacute;geno bajo   inundaci&oacute;n es la formaci&oacute;n de una barrera que   impide la p&eacute;rdida radial de ox&iacute;geno (ROL) desde   la ra&iacute;z a la riz&oacute;sfera (Colmer, 2003). La barrera   para impedir la ROL en la zona basal de la ra&iacute;z   puede mejorar la difusi&oacute;n longitudinal de O<sub>2</sub> desde   la parte a&eacute;rea hacia el &aacute;pice de la ra&iacute;z (Colmer,   2003). Igualmente, la ROL inhibe la metanog&eacute;nesis,   promueve la oxidaci&oacute;n del metano (CH<sub>4</sub>) y   reduce el flujo potencial de CH<sub>4</sub> (Li <i>et al</i>., 2006).   La barrera que evita la ROL es producto de una   resistencia f&iacute;sica (componente dominante), causada   por una pared secundaria en las capas de la hipodermis,   y de la actividad respiratoria en la capa   hipodermis/epidermis (Garthwaite <i>et al</i>., 2008).</p>     <p>   Plantas como Hordeum marinum forman lignina,   suberina y otros compuestos fen&oacute;licos en   la pared de las c&eacute;lulas bajo condiciones de inundaci&oacute;n   (Garthwaite <i>et al</i>., 2008). En plantas de   Imatanthus sucuuba hay cutinizaci&oacute;n de la pared   celular (Ferreira <i>et al</i>., 2009), lo que lleva a la formaci&oacute;n   de la barrera como un mecanismo para   evitar la p&eacute;rdida del O<sub>2</sub> en la ra&iacute;z. La permeabilidad   del O<sub>2</sub> a trav&eacute;s de la capa externa de c&eacute;lulas   radicales, generada por la barrera, fue reducida   en promedio 27 veces en plantas sometidas a   inundaci&oacute;n, en comparaci&oacute;n con las plantas crecidas   en condiciones aer&oacute;bicas (Garthwaite <i>et al</i>.,   2008).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>   En plantas de <i>Hordeum marinum</i> que crecieron   bajo anoxia, la estela ocupa 26% del total de una   secci&oacute;n del corte de la ra&iacute;z (Garthwaite <i>et al</i>.,   2008), en Vetiveria filipes, el porcentaje que ocupa   la estela es de 27,3 en suelos aireados y 20,2 en   suelos estancados, en Sorghum bicolor es de 35,5 y   26,4 respectivamente, en Cenchrus ciliaris el porcentaje   de la estela es de 33,3 y 24,9 en suelos aireados   y anegados respectivamente (McDonald <i>et al</i>., 2002), mientras que en plantas de &aacute;lamo (<i>Populus deltoides</i> Marsh.) el tallo sumergido fue   m&aacute;s delgado que el de las pl&aacute;ntulas en condiciones   de normoxia (Cao y Conner, 1999), estas   modificaciones le permiten a la planta tener   menores tasas de agotamiento de O<sub>2</sub> en la ra&iacute;z.   En pl&aacute;ntulas de <i>Tabebuia cassinoides</i> sometidas a   inundaci&oacute;n hay cambios en la morfolog&iacute;a radicular   form&aacute;ndose nuevas ra&iacute;ces de forma rectil&iacute;nea   y menos ramificada (Kolb y Joly, 2009), lo que le   permite explorar mayor &aacute;rea en busca de ox&iacute;geno   en el suelo.</p>     <p>   En manglares (<i>Avicennia marina</i> &#91;Forsk.&#93; Vierh.)   hay un aumento en el di&aacute;metro de tallo, el grosor   del c&oacute;rtex y el di&aacute;metro de la m&eacute;dula a medida   que aumenta el periodo de inundaci&oacute;n, mientras   que el di&aacute;metro tangencial de los vasos, el   grosor de la pared y el grosor de los vasos disminuyen   significativamente (Xiao <i>et al</i>., 2009).   Esto puede relacionarse con un mecanismo de   reducci&oacute;n de los espacios intercelulares para   evitar la p&eacute;rdida de ox&iacute;geno, as&iacute; mismo Colmer   (2003) se&ntilde;ala que las ra&iacute;ces con el di&aacute;metro de la   estela m&aacute;s grande tienden a tener mayores tasas   de agotamiento de O<sub>2</sub>.</p>     <p>   Usualmente, los &aacute;rboles sometidos a estr&eacute;s por   inundaci&oacute;n pueden abastecer la demanda de O<sub>2</sub> para la respiraci&oacute;n de sus ra&iacute;ces v&iacute;a lenticelas   en los tallos, sistemas conductores de aire o v&iacute;a   neumat&oacute;foros (Parolin, 2009). Los neumat&oacute;foros   son ra&iacute;ces que crecen verticalmente desde el suelo   inundado hacia la superficie en busca de aire,   son epigeas con geotropismo negativo, provistas   de aberturas parecidas a lenticelas cuya funci&oacute;n   es proporcionar aire a las ra&iacute;ces que se encuentran   en lugares pantanosos (Curran, 1985; Garc&iacute;a,   2007).</p>     <p>   Cuando los neumat&oacute;foros son completamente   cubiertos por agua, la presi&oacute;n interna de gas disminuye   como consecuencia del consumo de ox&iacute;geno   en la respiraci&oacute;n de las c&eacute;lulas radiculares   (Medina, 1999). La presi&oacute;n desarrollada en este   proceso es alrededor de 0,5 bares, pero el agua   no puede entrar a los neumat&oacute;foros porque la   presi&oacute;n hidrost&aacute;tica no es suficiente para romper   la tensi&oacute;n superficial a este nivel. A bajos niveles   del agua, el aire penetra f&aacute;cilmente a trav&eacute;s de   los poros suministrando ox&iacute;geno para la respiraci&oacute;n   celular (Medina, 1999).</p>     <p>   Adem&aacute;s de los neumat&oacute;foros, las &aacute;rboles en los   bosques h&uacute;medos tropicales pueden generar   otras adaptaciones morfol&oacute;gicas que favorecen la   difusi&oacute;n de ox&iacute;geno a&eacute;reo a la ra&iacute;z como las ra&iacute;ces   tablares y f&uacute;lcreas (Parolin y Wittman, 2010).   Las tablares son compactas, amplias y expandidas   en formas de l&aacute;minas. Las f&uacute;lcreas son como   &quot;anclas&quot; que crecen desde el tallo arque&aacute;ndose   hacia el suelo. Tanto los neumat&oacute;foros como las   ra&iacute;ces tablares se forman por las condiciones de   alta humedad del suelo y por la poca acumulaci&oacute;n   de materia org&aacute;nica (Garc&iacute;a, 2007).</p>     <p><b>   CONCLUSIONES Y PERSPECTIVAS</b></p>     <p>   La investigaci&oacute;n de los mecanismos de tolerancia   a estr&eacute;s h&iacute;drico por inundaci&oacute;n en plantas se   ha convertido en un objetivo importante en la   agricultura, debido a las recientes olas de inundaci&oacute;n   presentadas en diferentes zonas del mundo.   Entender c&oacute;mo la planta responde a la deficiencia   de ox&iacute;geno es b&aacute;sico para los programas de   mejoramiento que buscan crear plantas capaces   de tolerar ciertos periodos de anegamiento, esto   se plantea como una necesidad imperativa para   hacer frente al cambio clim&aacute;tico. Es importante   conocer los rasgos fisiol&oacute;gicos que expresan las   plantas sometidas a inundaci&oacute;n y los genes que   regulan la expresi&oacute;n de dichos rasgos, con el fin   de entender cu&aacute;l es la base de las diferencias entre   las plantas tolerantes y sensibles y entre especies.</p>     <p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Agradecemos a Juan Andr&eacute;s Cardoso Arango por sus comentarios sobre el art&iacute;culo.</p> &nbsp;     <p><font size="3"><b>Referencias bibliogr&aacute;ficas</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Abbaspour, A. 2012. Fractionation of copper in soils as   influenced by waterlogging and application of crop   residues. Iranian J. Soil Res. (Soil and Water Sci.) 25(4), 295-306.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S2011-2173201200010001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Aguilara, E.A., D.W. Turnera y K. Sivasithamparam. 1999.   Aerenchyma formation in roots of four banana   (<i>Musa</i> spp.) cultivars. Sci. Hortic. 80, 57-72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S2011-2173201200010001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Ahmed, S., E. Nawat y T. Sakuratani. 2006. Changes of   endogenous ABA and ACC, and their correlations   to photosynthesis and water relations in mungbean   (<i>Vigna radiata</i> (L.) Wilczak cv. KPS1) during waterlogging.   Environ. Exp. Bot. 57, 278-284.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S2011-2173201200010001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Alscher, R.G., J.L. Donahue y C.L. Cramer. 1997. Reactive   oxygen species and antioxidants: Relationships in   green cells. Physiol. Plant. 100, 224-233.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S2011-2173201200010001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Apel, K. y H. Hirt. 2004. Reactive oxygen species: Metabolism,   oxidative stress, and signal transduction.   Annu. Rev. Plant Biol. 55, 373-99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S2011-2173201200010001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Aschi-Smiti, S., W. Chai&egrave;bi, R. Brouquisse, B. Ricard y P.   Saglio. 2003. Assessment of enzyme induction and   aerenchyma formation as mechanisms for flooding   tolerance in Trifolium subterraneum 'Park'. Ann. Bot.   91, 195-204.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S2011-2173201200010001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Bai, T., C. Li, F. Ma, F. Feng y H. Shu. 2010. Responses   of growth and antioxidant system to root-zone   hypoxia stress in two <i>Malus</i> species. Plant Soil 327,   95-105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S2011-2173201200010001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Balakhnina, T.I., P. Bennicelli, Z. Stepniewska, W.   Stepniewski e I.R. Fomina. 2010. Oxidative damage   and antioxidant defense system in leaves of <i>Vicia   faba major</i> L. cv. Bartom during soil flooding and   subsequent drainage. Plant Soil 327, 293-301.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S2011-2173201200010001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Bange, M.P., S.P. Milroy y P. Thongbai. 2003. Growth and   yield of cotton in response to waterlogging. Field   Crops Res. 88, 129-142.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S2011-2173201200010001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Bin, T., X. Shang-Zhong, Z. Xi-Ling, Z. Yong-Lian y Q.   Fa-Zhan. 2010. Changes of antioxidative enzymes and lipid peroxidation in leaves and roots of waterlogging-   tolerant and waterlogging-sensitive maize   genotypes at seedling stage. Agr. Sci. China 9(5),   651-661.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S2011-2173201200010001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Blom, C.W.P.M. 1999. Adaptations to flooding stress:   From plant community to molecule. Plant Biol. 1,   261-273.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S2011-2173201200010001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Cao, F.L. y W.H. Conner. 1999. Selection of flood-tolerant   Populus deltoides clones for reforestation projects in   China. For. Ecol. Manage. 117, 211-220&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S2011-2173201200010001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>   Cheeseman, J.M. 2007. Hydrogen peroxide and plant stress:   A challenger relationship. Plant Stress 1(1), 4-15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S2011-2173201200010001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Chen, H., R. G. Qualls y G.C. Miller. 2002. Adaptive responses   of Lepidium latifolium to soil flooding: biomass   allocation, adventitious rooting, aerenchyma   formation and ethylene production. Environ. Exp.   Bot. 48, 119-128.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S2011-2173201200010001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Colmer, T.D. 2003. Long-distance transport of gases in   plants: a perspective on internal aeration and radial   oxygen loss from roots. Plant Cell Environ. 26,   17-36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S2011-2173201200010001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Colmer, T.D., M.C.H. Cox y L.A.C.J. Voesenek. 2006.   Root aeration in rice (<i>Oryza sativa</i>): evaluation of   oxygen, carbon dioxide, and ethylene as possible   regulators of root acclimatizations. New Phytol.   170, 767-778.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S2011-2173201200010001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Couldwell, D.L., R. Dunford, N.J. Kruger, D.C. Lloyd,   R.G. Ratcliffe y A.M.O. Smitdh. 2009. Response   of cytoplasmic pH to anoxia in plant tissues with   altered activities of fermentation enzymes: application   of methyl phosphonate as an NMR pH probe.   Ann. Bot. 103, 249-258.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S2011-2173201200010001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Curran, M. 1985. Gas movements in the roots of <i>Avicennia   marina</i> (Forsk.) Vierh. Aust. J. Plant Physiol. 12,   97-108.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S2011-2173201200010001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Dickin, E. y D. Wright. 2007. The effects of winter waterlogging   and summer drought on the growth and yield of winter wheat (<i>Triticum aestivum</i> L.). Eur. J.   Agron. 28, 234-244.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000108&pid=S2011-2173201200010001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Ella, E.S., N. Kawano y O. Ito. 2003. Importance of active   oxygen-scavenging system in the recovery of rice   seedlings after submergence. Plant Sci. 165, 85-93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S2011-2173201200010001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->   Evans, D.E. 2003. Aerenchyma formation. New Phytol.   161, 35-49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S2011-2173201200010001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Ferreira, C.S., M.T.F. Piedade, A.C. Franco, J.F. Carvalho   Goncalves y W.J. Junk. 2009. Adaptive strategies to   tolerate prolonged flooding in seedlings of floodplain   and upland populations of <i>Himatanthus sucuuba</i>, a   Central Amazon tree. Aquatic Bot. 90, 246-252.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S2011-2173201200010001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Fukao, T., R.A. Kennedy, Y. Yamasue y M.E. Rumpho.   2003. Genetic and biochemical analysis of anaerobically   induced enzymes during seed germination of     <i>Echinochloa crusgalli</i> varieties tolerant and intolerant   of anoxia. J. Exp. Bot. 54, 1421-1429.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S2011-2173201200010001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Fukao, T. y J. Bailey-Serres. 2004. Plant responses to hypoxia   - is survival a balancing act?. Trends Plant Sci.   9(9), 490-494.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S2011-2173201200010001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Garc&iacute;a, F.J. 2007. Biolog&iacute;a y bot&aacute;nica, Tema 6b: Modificaciones   y adaptaciones de la ra&iacute;z. Unidad docente   de bot&aacute;nica. ETSMRE, Universidad Polit&eacute;cnica de   Valencia, Valencia, Espa&ntilde;a.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S2011-2173201200010001000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Garc&iacute;a, P.N. y F. Aldana. 2011. Efecto del estr&eacute;s por anegamiento   sobre el crecimiento, desarrollo y fisiolog&iacute;a   de uchuva (<i>Physalis peruviana</i> L.) bajo condiciones   de invernadero. Trabajo de grado. Facultad de Agronom&iacute;a,   Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S2011-2173201200010001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Garthwaite, A.J., W. Armstrong y T.D. Colmer. 2008. Assessment   of O<sub>2</sub> diffusivity across the barrier to radial   O<sub>2</sub> loss in adventitious roots of Hordeum marinum.   New Phytol. 179, 405-416.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S2011-2173201200010001000027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Grassini, P., G.V. Indaco, M. L&oacute;pez, A.J. Hall y N. Tr&aacute;pani.   2006. Responses to short-term waterlogging   during grain filling in sunflower. Field Crops Res.   101, 352-363.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S2011-2173201200010001000028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Guglielminetti, L., H.A. Busilacchi, P. Perata y A. Alpi.   2001. Carbohydrate-ethanol transition in cereal   grains under anoxia. New Phytol. 151, 607-612.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S2011-2173201200010001000029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Gutierrez, B.F.H., R.S. Lavado y C.A. Porcelli. 1996. Note   on the effects of winter and spring waterlogging on   growth, chemical composition and yield of rapeseed.   Field Crops Res. 47, 175-179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S2011-2173201200010001000030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Hossain, Z., M.F. L&oacute;pez-Climent, V. Arbona, R.M. P&eacute;rez-   Clemente y A. G&oacute;mez-Cadenas. 2009. Modulation   of the antioxidant system in citrus under waterlogging   and subsequent drainage. J. Plant Physiol. 166,   1391-1404.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000131&pid=S2011-2173201200010001000031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Huber, H., E. Jacobs y E.J.W. Visser. 2009. Variation in   flooding-induced morphological traits in natural populations   of white clover (<i>Trifolium repens</i>) and their   effects on plant performance during soil flooding.   Ann. Bot. 103, 377-386.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000133&pid=S2011-2173201200010001000032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   IPCC. 2007. Climate change 2007: Contribution of working   group I to the fourth assessment report of the   intergovernmental panel on climate change. Cambridge   University Press, Cambridge, UK.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000135&pid=S2011-2173201200010001000033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Issarakraisila, M., Q. Ma y D.W. Turner. 2006. Photosynthetic   and growth responses of juvenile Chinese   kale (<i>Brassica oleracea</i> var. <i>alboglabra</i>) and Caisin   (<i>Brassica rapa</i> subsp. <i>parachinensis</i>) to waterlogging   and water deficit. Sci. Hortic. 111, 107-113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000137&pid=S2011-2173201200010001000034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Kato-Noguchi, H. 2000. Evaluation of the importance of   lactate for the activation of ethanolic fermentation   in lettuce roots in anoxia. Physiol. Plant. 109, 28-33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000139&pid=S2011-2173201200010001000035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Kolb, R.M. y C.A. Joly. 2009. Flooding tolerance of <i>Tabebuia   cassinoides</i>: Metabolic, morphological and   growth responses. Flora 204, 528-535.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000141&pid=S2011-2173201200010001000036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Koppitz, H. 2004. Effects of flooding on the amino acid   and carbohydrate patterns of <i>Phragmites australis</i>.   Limnologica 34, 37-47.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000143&pid=S2011-2173201200010001000037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Kulichikhin, K.Y., T.V. Chirkova y K. Fagerstedt. 2008.   Intracellular pH in rice and wheat root tips under   hypoxic and anoxic conditions. Plant Signal. Behav.   3, 240-242.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000145&pid=S2011-2173201200010001000038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Leul, M. y W. Zhou. 1998. Alleviation of waterlogging   damage in winter rape by application of uniconazole:   Effects on morphological characteristics,   hormones and photosynthesis. Field Crops Res. 59,   121-127.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000147&pid=S2011-2173201200010001000039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Li, S., S.R. Pezeshki y F.D. Shields. 2006. Partial flooding   enhances aeration in adventitious roots of black   willow (<i>Salix nigra</i>) cuttings. J. Plant Physiol. 163,   619-628.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000149&pid=S2011-2173201200010001000040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Lin, K.H., P.Y. Chao, S.Y. Yang, W.C. Chen, H.F. Lo y T.R   Chang. 2006. The effects of flooding and drought   stresses on the antioxidant constituents in sweet   potato leaves. Bot. Studies 47, 417-426.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000151&pid=S2011-2173201200010001000041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Lin, K.H., Y.K. Chiou, S.Y. Hwang, L.F.O. Chen y H.F. Lo.   2008. Calcium chloride enhances the antioxidative   system of sweet potato (<i>Ipomoea batatas</i>) under   flooding stress. Ann. Appl. Biol. 152, 157-168.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000153&pid=S2011-2173201200010001000042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Malik, A.I., T.D. Colmer, H. Lambers y M. Schortemeyer.   2003. Aerenchyma formation and radial O<sub>2</sub> loss   along adventitious roots of wheat with only the apical root portion exposed to O<sub>2</sub> deficiency. Plant   Cell Environ. 26, 1713-1722.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000155&pid=S2011-2173201200010001000043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Mano, Y., F. Omori, T. Takamizo, B. Kindiger, R. McBird y   C.H. Loaisiga. 2006. Variation for root aerenchyma   formation in flooded and non-flooded maize and   teosinte seedlings. Plant Soil 281, 269-279.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000157&pid=S2011-2173201200010001000044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Medina, E. 1999. Mangrove physiology: the challenge of   salt, heat, and light stress under recurrent flooding,   pp. 109-126. En: Y&aacute;&ntilde;ez-Arancibia, A. y A.L. Lara-   Dom&iacute;nguez (eds.). Ecosistemas de Manglar en   Am&eacute;rica Tropical. Instituto de Ecolog&iacute;a, M&eacute;xico;   UICN/ORMA, Costa Rica; NOAA/NMFS, Silver   Spring, MD.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000159&pid=S2011-2173201200010001000045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   McDonald, M.P., N.W. Galwey y T.D. Colmer. 2002.   Similarity and diversity in adventitious root anatomy   as related to root aeration among a range of   wetland and dryland grass species. Plant Cell Environ.   25, 441-451.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000161&pid=S2011-2173201200010001000046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Milroy, S.P., M.P. Bange y P. Thongbai. 2009. Cotton leaf   nutrient concentrations in response to waterlogging   under field conditions. Field Crops Res. 113,   246-255.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000163&pid=S2011-2173201200010001000047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Mittler, R. 2002. Oxidative stress, antioxidants and stress   tolerance. Trends Plant Sci. 7(9), 405-410.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000165&pid=S2011-2173201200010001000048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Mohanty, B. y B. Ong. 2001. Contrasting effects of   submergence in light and dark on pyruvate decarboxylase   activity in roots of rice lines differing in   submergence tolerance. Ann. Bot. 91, 291-300.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000167&pid=S2011-2173201200010001000049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Mubarakshina, M., S. Khorobrykh y B. Ivanov. 2006.   Oxygen reduction in chloroplast thylakoids results   in production of hydrogen peroxide inside the membrane.   Biochim. Biophys. Acta 1757, 1496-1503.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000169&pid=S2011-2173201200010001000050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Palta, J.A., A. Ganjeali, N.C. Turner, K.H.M. Siddique.   2010. Effects of transient subsurface waterlogging   on root growth, plant biomass and yield of chickpea.   Agr. Water Manage. 97, 1469-1476.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000171&pid=S2011-2173201200010001000051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Parolin, P. 2009. Submerged in darkness: adaptations to   prolonged submergence by woody species of the   Amazonian floodplains. Ann. Bot. 103, 359-376.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000173&pid=S2011-2173201200010001000052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Parolin, P. y F. Wittman. 2010. Struggle in the flood: tree   responses to flooding stress in four tropical floodplain   systems. En: h<a href="ttp://www.ncbi.nlm.nih.gov/ pmc/articles/PMC29650 40/pdf/plq003.pdf" target="_blank">ttp://www.ncbi.nlm.nih.gov/   pmc/articles/PMC29650 40/pdf/plq003.pdf</a>; consulta:   mayo de 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000175&pid=S2011-2173201200010001000053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Pe&ntilde;a-Fronteras, J.T., M.C. Villalobos, A.M. Baltazar, F.E.   Merca, A.M. Ismail y D.E. Johnson. 2008. Adaptation   to flooding in upland and lowland ecotypes of   <i>Cyperus rotundus</i>, a troublesome sedge weed of rice:   tuber morphology and carbohydrate metabolism.   Ann. Bot. 103, 295-302.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000177&pid=S2011-2173201200010001000054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Polthanee, A., T. Changdee, J. Abe y S. Morita. 2008.   Effects of flooding on growth, yield and aerenchyma   development in adventitious roots in four cultivars   of Kenaf (<i>Hibiscus cannabinus</i> L.). Asian J. Plant   Sci. 7(6), 544-550.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S2011-2173201200010001000055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Ryser, P., K.G. Harneet y J.B. Collin. 2011. Constraints   of root response to waterlogging in <i>Alisma triviale</i>.   Plant Soil 343, 247-260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S2011-2173201200010001000056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Sairam, R.K., K. Dharmar, V. Chinnusamy y R.C. Meena.   2008. Waterlogging-induced increase in sugar mobilization,   fermentation, and related gene expression   in the roots of mung bean (<i>Vigna radiata</i>). J. Plant   Physiol. 166, 602-616.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S2011-2173201200010001000057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Saqib, M., J. Akhtar y R.H. Qureshi. 2005. Na<sup>+</sup> exclusion   and salt resistance of wheat (<i>Triticum aestivum</i>) in   saline-waterlogged conditions are improved by the   development of adventitious nodal roots and cortical   root aerenchyma. Plant Sci. 169, 125-130.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S2011-2173201200010001000058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Stryer, L. 1995. Bioqu&iacute;mica. 4&ordf; ed. Editorial Revert&eacute; S.A.,   Barcelona, Espa&ntilde;a.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S2011-2173201200010001000059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Suralta, R. y A. Yamauchi A. 2008. Root growth, aerenchyma   development, and oxygen transport in rice   genotypes subjected to drought and waterlogging.   Environ. Exp. Bot. 64, 75-82.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S2011-2173201200010001000060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Suzuki, N. y R. Mittler. 2006. Reactive oxygen species   and temperature stresses: A delicate balance between   signaling and destruction. Physiol. Plant.   126, 45-51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S2011-2173201200010001000061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Taiz, L. y E. Zeiger. 2010. Plant physiology. 5<sup>th</sup> ed. Sinauer   Associates, Sunderland, MA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000193&pid=S2011-2173201200010001000062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Unger, I.M., P.P. Motavalli y R.-M. Muzika. 2009a.   Changes in soil chemical properties with flooding:   A field laboratory approach. Agr. Ecosyst. Environ.   131, 105-110.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S2011-2173201200010001000063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Unger, I.M., A.C. Kennedy y R.M. Muzika. 2009b. Flooding   effects on soil microbial communities. Appl. Soil   Ecol. 42, 1-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000197&pid=S2011-2173201200010001000064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Visser, E.J.W., T.D. Colmer, C.W.P.M. Blom y   L.A.C.J.Voesenek. 2000. Changes in growth, porosity,   and radial oxygen loss from adventitious roots   of selected mono- and dicotyledonous wetland species   with contrasting types of aerenchyma. Plant   Cell Environ. 23, 1237-1245.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000199&pid=S2011-2173201200010001000065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Wood, S., K. Sebastian y S. Scherr. 2000. Soil resource   condition. pp. 45-54. En: Pilot analysis of global   ecosystems: Agroecosystems. International Food Policy Research Institute and the World Resources   Institute, Washington, D.C.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000201&pid=S2011-2173201200010001000066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Xiao-Chang, W. y L. Qin. 2006. Effect of waterlogged and   aerobic incubation on enzyme activities in paddy   soil. Pedosphere 16(4), 532-539.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000203&pid=S2011-2173201200010001000067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Xiao, Y., Z. Jie, M. Wanga, G. Lin y W. Wang. 2009. Leaf   and stem anatomical responses to periodical waterlogging   in simulated tidal floods in mangrove <i>Avicennia   marina</i> seedlings. Aquatic Bot. 91, 231-237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000205&pid=S2011-2173201200010001000068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Yin, D., S. Chen, F. Chen, Z. Guan y W. Fang. 2009. Morphological   and physiological responses of two <i>chrysanthemum</i> cultivars differing in their tolerance to   waterlogging. Environ. Exp. Bot. 67, 87-93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000207&pid=S2011-2173201200010001000069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Yin, D., S. Chen, F. Chen, Z. Guan y W. Fang. 2010. Morpho-   anatomical and physiological responses of two     <i>Dendranthema</i> species to waterlogging. Environ.   Exp. Bot. 68, 122-130.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000209&pid=S2011-2173201200010001000070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Yordanova, R., K.N. Christov, L.P. Popova. 2004. Antioxidative   enzymes in barley plants subjected to soil   flooding. Environ. Exp. Bot. 51, 93-101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000211&pid=S2011-2173201200010001000071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>   Yong, C., G. Min, C. Ye, Z. Chong-Shun, Z. Xue-Kun y W.   Han-Zhong. 2010. Combining ability and genetic   effects of germination traits of <i>Brassica napus</i> l. under   waterlogging stress condition. Agr. Sci. China   9(7), 951-957.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000213&pid=S2011-2173201200010001000072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Yong-Zhong L., T. Bin, Z. Yong-Lian, M. Ke-Jun, X. Shang-   Zhong y Q. Fa-Zhan. 2010. Screening methods for   waterlogging tolerance at maize (<i>Zea mays</i> L.) seedling   stage. Agr. Sci. China 9(3), 362-369.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000215&pid=S2011-2173201200010001000073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Zaidi, P.H., S. Rafique y N.N. Singh. 2002. Response of   maize (<i>Zea mays</i> L.) genotypes to excess soil moisture   stress: morpho-physiological effects and basis   of tolerance. Eur. J. Agron. 19, 383-399.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000217&pid=S2011-2173201200010001000074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Zheng, C., D. Jiang, F. Liu, T. Dai, Q. Jing y W. Cao. 2009.   Effects of salt and waterlogging stresses and their   combination on leaf photosynthesis, chloroplast   ATP synthesis, and antioxidant capacity in wheat.   Plant Sci. 176, 575-582.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000219&pid=S2011-2173201200010001000075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>   Zhou, E. y X. Lin. 1995. Effects of waterlogging at different   growth stages on physiological characteristics   and seed yield of winter rape (<i>Brassica napus</i> L.).   Field Crops Res. 44, 103-1l0&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000221&pid=S2011-2173201200010001000076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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