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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Mecanismos de adaptación a sequía en caupí (Vigna unguiculata (L.) Walp.). Una revisión]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This article presents a review of the drought adaptation mechanisms observed in the cowpea bean, providing the morphological responses, water and gas exchange ratios, osmotic adjustment, antioxidant system and molecular activity. Furthermore, the indicators that allow for the diagnosis of the plant stress level are described, such as the root / shoot ratio, density and root depth, root dry-matter, specific leaf area, number of leaves and flowers, leaf senescence and abscission, yield components, stomatal conductance, transpiration, water-use efficiency, contents of the osmolytes: proline, glycine-betaine and sugars; activity of antioxidant enzymes involved in the detoxification processes of the oxygen-reactive species: catalase, ascorbate peroxidase, superoxide dismutase and glutathione reductase, as well as the visualization of the knowledge-frontiers in this area that are of great importance to the improvement of the species and advances in molecular biology.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> &nbsp;     <p><font size="4">    <center> <b>Mecanismos de adaptaci&oacute;n a sequ&iacute;a en caup&iacute; (<i>Vigna unguiculata</i> (L.) Walp.). Una revisi&oacute;n</b> </center></font></p> &nbsp;     <p>  <font size="3">    <center> <b>Drought adaptation mechanisms in the cowpea (<i>Vigna unguiculata</i> (L.)Walp.). A review</b> </center></font></p> &nbsp;     <p>    <center> <b>CARLOS CARDONA-AYALA<sup>1, 2, 3</sup>,  ALFREDO JARMA-OROZCO<sup>1</sup>, HERMES ARAM&Eacute;NDIZ-TATIS<sup>1</sup></b> </center></p>     <p><sup>1</sup> Facultad de Ciencias Agr&iacute;colas, Universidad de C&oacute;rdoba, Monter&iacute;a (Colombia).    <br>   <sup>2</sup> Doctorado en Ciencias Naturales para el Desarrollo, Instituto Tecnol&oacute;gico de Costa Rica, Cartago (Costa Rica).    <br> <sup>3</sup> Autor para correspondencia. <a href="mailto:ccardonaayala@yahoo.com">ccardonaayala@yahoo.com</a>.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Fecha de recepci&oacute;n: 01-09-2013 Aprobado para publicaci&oacute;n: 31-10-2013</p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>  Este art&iacute;culo presenta una revisi&oacute;n de los mecanismos de adaptaci&oacute;n a sequ&iacute;a observados en fr&iacute;jol caup&iacute;, mostrando  las respuestas morfol&oacute;gicas, las relaciones h&iacute;dricas e intercambio gaseoso, el ajuste osm&oacute;tico, el sistema  antioxidante y la actividad molecular. Se describen algunos indicadores que permiten la aproximaci&oacute;n a un  diagn&oacute;stico del nivel de estr&eacute;s de las plantas tales como la relaci&oacute;n ra&iacute;z/parte a&eacute;rea, densidad y profundidad  de ra&iacute;ces, materia seca radical, &aacute;rea foliar espec&iacute;fica, n&uacute;mero de hojas y flores, senescencia foliar y abscisi&oacute;n  foliar, componentes del rendimiento, conductancia estom&aacute;tica, transpiraci&oacute;n, eficiencia en el uso del agua,  contenido de osmolitos: prolina, glicina beta&iacute;na y azucares; actividad de enzimas antioxidantes involucradas  en procesos de detoxificaci&oacute;n de las especies reactivas de ox&iacute;geno: catalasa, ascorbato peroxidasa, super&oacute;xido  dismutasa y glutati&oacute;n reductasa, as&iacute; como la visualizaci&oacute;n de la frontera del conocimiento en este aspecto de  gran importancia para el mejoramiento de la especie y los avances en biolog&iacute;a molecular.</p>     <p><b>Palabras clave adicionales:</b> tolerancia a sequ&iacute;a, osmoregulaci&oacute;n, ra&iacute;ces, conductancia estom&aacute;tica.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>  This article presents a review of the drought adaptation mechanisms observed in the cowpea bean, providing  the morphological responses, water and gas exchange ratios, osmotic adjustment, antioxidant system and  molecular activity. Furthermore, the indicators that allow for the diagnosis of the plant stress level are  described, such as the root / shoot ratio, density and root depth, root dry-matter, specific leaf area, number  of leaves and flowers, leaf senescence and abscission, yield components, stomatal conductance, transpiration,  water-use efficiency, contents of the osmolytes: proline, glycine-betaine and sugars; activity of antioxidant  enzymes involved in the detoxification processes of the oxygen-reactive species: catalase, ascorbate peroxidase,  superoxide dismutase and glutathione reductase, as well as the visualization of the knowledge-frontiers in  this area that are of great importance to the improvement of the species and advances in molecular biology.</p>     <p><b>Additional key words:</b> drought tolerance, osmoregulation, roots, stomatal conductance.</p> <hr size="1"> &nbsp;     <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>El frijol caup&iacute; es una leguminosa muy importante  (Fabaceae) usada como alimento y forraje en  las sabanas semi-&aacute;ridas tropicales, debido a su  tolerancia a sequ&iacute;a y su capacidad para crecer en  suelos de baja fertilidad y es, a la vez, un cultivo  valioso para los agricultores de muchas regiones  del mundo (Timko <i>et al</i>., 2008); sin embargo se  presenta baja productividad, que se atribuye al  uso de cultivares de bajo rendimiento sumado al  ataque de plagas y enfermedades, y a la carencia  de genotipos mejor adaptados a sequ&iacute;a; en esta  especie, el d&eacute;ficit h&iacute;drico reduce la conductancia  estom&aacute;tica, el potencial h&iacute;drico foliar y la productividad  de granos, present&aacute;ndose amplia variabilidad  en tolerancia a sequ&iacute;a de acuerdo con el grado de d&eacute;ficit h&iacute;drico (DoNascimento, 2009).</p>     <p>  En las regiones semi&aacute;ridas de &Aacute;frica, la frecuencia  e intensidad de las sequ&iacute;as han aumentado  en los &uacute;ltimos 30 a&ntilde;os (Hall <i>et al</i>., 2003) debido  al cambio clim&aacute;tico, evidenciado en el n&uacute;mero  de d&iacute;as con precipitaci&oacute;n y cantidad de precipitaci&oacute;n  por d&iacute;a (Wahid <i>et al</i>., 2007). Esto ha provocado  un cambio a cultivos m&aacute;s tolerantes a la  sequ&iacute;a como es el caso del caup&iacute; (Van Duivenbooden  <i>et al</i>., 2002).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  El conocimiento sobre los procesos y mecanismos  de tolerancia a factores de estr&eacute;s de tipo  abi&oacute;tico (sequ&iacute;a) y los efectos perjudiciales en  especies cultivadas, particularmente en aquellas  sometidas a condiciones secas, ayudar&aacute; a mejorar  su comportamiento agron&oacute;mico mediante  la incorporaci&oacute;n de caracter&iacute;sticas relacionadas  con tolerancia a sequ&iacute;a en los nuevos cultivares  (Singh y Reddy, 2011; Beebe <i>et al</i>., 2013)</p>     <p>  Considerando la gran importancia del fr&iacute;jol caup&iacute;  en la seguridad alimentaria en pa&iacute;ses tropicales  y subtropicales en v&iacute;a de desarrollo, se presenta  esta revisi&oacute;n con el objetivo de visualizar  los avances m&aacute;s recientes de los mecanismos y  estrategias defensivas que presenta esta especie  al ser sometida a d&eacute;ficit h&iacute;drico, hoy con m&aacute;s  relevancia ante el impacto negativo en la agricultura  del cambio clim&aacute;tico (Nelson <i>et al</i>., 2009).</p> &nbsp;      <p><font size="3"><b>MODIFICACIONES DEL CRECIMIENTO Y DESARROLLO DE LA PLANTA</b></font></p>     <p>  Se ha observado que los mecanismos de tolerancia  a sequ&iacute;a en caup&iacute; est&aacute;n fuertemente relacionados  con el sistema radical. As&iacute; pues, densidad  de ra&iacute;ces, profundidad de enraizamiento y materia  seca radical por unidad de &aacute;rea, son par&aacute;metros  que pueden ser utilizados como criterios de  tolerancia a sequ&iacute;a, junto con el &aacute;rea foliar espec&iacute;fica  (Matsui y Singh, 2003).</p>     <p>  En este mismo sentido, Polan&iacute;a <i>et al</i>. (2012), en  fr&iacute;jol com&uacute;n (<i>Phaseolus vulgaris</i> L.) mostraron  que la longitud de la ra&iacute;z est&aacute; correlacionada positivamente  con la producci&oacute;n de biomasa a&eacute;rea,  de tal manera que los genotipos que presentan  mayor profundidad radical est&aacute;n mejor adaptados  a periodos de sequ&iacute;a prolongada, puesto que  pueden explorar un mayor volumen de suelo y  extraer agua de perfiles inferiores.</p>     <p>  Por las mismas razones, la relaci&oacute;n ra&iacute;z/parte a&eacute;rea  es tambi&eacute;n una caracter&iacute;stica importante en estudios  sobre adaptaci&oacute;n a sequ&iacute;a, ya que la absorci&oacute;n  de agua puede ser mejorada a trav&eacute;s de un sistema  radical m&aacute;s extenso y profundo (Reis y Hall, 1987).</p>     <p>  La altura de planta, el n&uacute;mero de hojas y el n&uacute;mero  de flores por planta, disminuyen en la medida  en que se agota el agua aprovechable del  suelo. Adem&aacute;s, con altos niveles de estr&eacute;s h&iacute;drico  se incrementan la senescencia y la abscisi&oacute;n de  las hojas (Abayome y Abidoye, 2009; Ichi <i>et al</i>.,  2013); tambi&eacute;n se reduce el tama&ntilde;o de las hojas  y, por consiguiente, el &aacute;rea foliar y el peso seco  de la parte a&eacute;rea, incluyendo las vainas (Qasem  y Biftu, 2010; Okon, 2013).</p>     <p>  La etapa reproductiva es la m&aacute;s sensible al d&eacute;ficit  h&iacute;drico (Ahmed y Suliman, 2010); ya que se ven  afectados algunos de los componentes del rendimiento  (Ishiyaku y Aliyu, 2013). Estos autores  encontraron que el n&uacute;mero de vainas y el n&uacute;mero  de semillas por planta se vieron afectados, y,  por consiguiente, el rendimiento de grano.</p>     <p>  El escape a sequ&iacute;a representado en precocidad  en d&iacute;as a floraci&oacute;n y maduraci&oacute;n ha sido usado  para desarrollar cultivares en regiones donde las  lluvias escasean; sin embargo, cuando tales variedades  son expuestas a sequ&iacute;a intermitente en  las etapas vegetativas o reproductivas, los rendimientos  disminuyen significativamente (Agbicodo  <i>et al</i>., 2009). As&iacute; mismo, la evitaci&oacute;n a sequ&iacute;a  se relaciona con el mantenimiento de altos  potenciales h&iacute;dricos en los tejidos de la planta,  a pesar de la escasez de agua en el suelo, lo que  obedece a una mayor profundizaci&oacute;n de las ra&iacute;ces,  incremento de la conductividad hidr&aacute;ulica,  disminuci&oacute;n de la conductancia estom&aacute;tica, movimiento  foliar para disminuir la absorci&oacute;n de  luz y disminuci&oacute;n del &aacute;rea foliar. La tolerancia a  sequ&iacute;a se atribuye al ajuste osm&oacute;tico, incremento  en la elasticidad celular, disminuci&oacute;n del tama&ntilde;o  de las c&eacute;lulas y resistencia del protoplasma  a la desecaci&oacute;n (Beebe <i>et al</i>., 2013).</p>     <p>  Un buen indicador de tolerancia a sequ&iacute;a es la  senescencia foliar tard&iacute;a, que puede evaluarse en  etapa juvenil, junto con otras variables, utilizando  el m&eacute;todo de la caja de madera (Agbicodo et  al., 2009).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  La senescencia foliar tard&iacute;a concede resistencia  a sequ&iacute;a, puesto que permite la recuperaci&oacute;n  postsequ&iacute;a y un segundo flujo de vainas compensa  el bajo rendimiento del primero (Hall,  2004). Tambi&eacute;n, la marchitez es el signo m&aacute;s  com&uacute;n de estr&eacute;s h&iacute;drico en plantas y puede evaluarse  como &iacute;ndice de marchitez foliar, con la  proporci&oacute;n entre el n&uacute;mero de hojas marchitas  y el n&uacute;mero total de hojas por planta; existe una  fuerte correlaci&oacute;n positiva entre este &iacute;ndice y tolerancia  a sequ&iacute;a (Pungulani <i>et al</i>., 2013).</p>     <p>  Se ha reportado alta variabilidad entre genotipos  en cuanto a potencial y estabilidad del rendimiento;  algunos genotipos presentan buen comportamiento  sin estr&eacute;s y con estr&eacute;s, mientras  que otros presentan rendimientos buenos, bajo  estr&eacute;s h&iacute;drico, pero malos, sin estr&eacute;s (Abayome  y Abidoye, 2009).</p>     <p>La reducci&oacute;n del rendimiento de semilla, en  ensayos bajo sequ&iacute;a, tambi&eacute;n puede ser atribuido  a la abscisi&oacute;n de estructuras reproductivas  (Abayome y Abidoye, 2009; Ahmed y Suliman,  2010); genotipos de caup&iacute; de alto rendimientos  de semilla, bajo condiciones de estr&eacute;s h&iacute;drico,  son importantes en la producci&oacute;n de este cultivo (Dadson <i>et al</i>., 2005).</p>     <p>  Por otro lado, en l&iacute;neas de caup&iacute; altamente tolerantes  a sequ&iacute;a, la mayor cantidad de materia  seca se distribuy&oacute; hacia las ra&iacute;ces y la menor  proporci&oacute;n hacia la formaci&oacute;n de vainas, al contrario  de las l&iacute;neas altamente susceptibles. Esta  caracter&iacute;stica de las l&iacute;neas tolerantes pareci&oacute; ser  muy ventajosa para colectar agua residual de las  capas m&aacute;s profundas del suelo y con ello producir  m&aacute;s en la estaci&oacute;n seca (Watanabe <i>et al</i>., 1998).</p> &nbsp;      <p>  <font size="3"><b>RELACIONES H&Iacute;DRICAS E INTERCAMBIO GASEOSO</b></font></p>     <p>  El potencial h&iacute;drico foliar es un indicador muy  utilizado como medida del estado h&iacute;drico en las  plantas, se mide, principalmente, antes del amanecer  cuando la planta ha podido recuperar el  agua perdida en el d&iacute;a y por tanto, est&aacute; en equilibrio  con el contenido de agua del suelo (Tardieu  y Simonneau, 1998; Sellin, 1999).</p>     <p>  El potencial h&iacute;drico se basa en el potencial  qu&iacute;mico del agua que es una expresi&oacute;n cuantitativa  de la energ&iacute;a libre asociada con el agua  o, m&aacute;s bien, el trabajo que se debe realizar  para llevar una unidad de masa de agua, ligada  al agua misma o al suelo hasta un estado  de referencia cero, que es el agua pura (Taiz y  Zeiger, 2010). Se han reportado valores aproximados  de potenciales h&iacute;dricos foliares letales  en las plantas entre -1,4 a -6,0 MPa; en el  fr&iacute;jol caup&iacute; se han registrado entre -1,5 y -2,5  MPa, lo que ha permitido clasificarla como  una especie moderadamente tolerante al d&eacute;ficit  de agua en el suelo (Boyer, 1978).</p>     <p>  DoNascimento (2009), encontr&oacute; que de un total  de 20 genotipos de fr&iacute;jol caup&iacute;, solo tres presentaron  potenciales h&iacute;dricos foliares mayores de  -1,52 MPa, evidenciando con ello un mayor control  de la apertura estom&aacute;tica, caracter&iacute;stica asociada  a tolerancia a sequ&iacute;a en esta especie. En el  mismo estudio report&oacute; que uno de los genotipos  registr&oacute; un potencial h&iacute;drico de -2,05 MPa; posiblemente  el m&aacute;s bajo reportado en esta especie.</p>     <p>  Tambi&eacute;n se observ&oacute; que el contenido h&iacute;drico relativo  de la hoja est&aacute; asociado con la disminuci&oacute;n  del contenido de humedad del suelo, present&aacute;ndose  amplia variaci&oacute;n entre genotipos (Kumar  <i>et al</i>., 2008; Pungulani <i>et al</i>., 2013). No obstante,  para Singh y Reddy (2011) tal asociaci&oacute;n no  fue encontrada al evaluar 15 genotipos de caup&iacute;.  Tampoco se ha encontrado correlaci&oacute;n entre la  conductancia estom&aacute;tica y el contenido h&iacute;drico  relativo de la hoja, sugiriendo la existencia de  una comunicaci&oacute;n entre las ra&iacute;ces y los brotes,  independiente del estado h&iacute;drico foliar (Agbicodo  <i>et al</i>., 2009).</p>     <p>  En general, el CO<sub>2</sub> atmosf&eacute;rico se difunde a trav&eacute;s  de estomas hacia los espacios intercelulares,  constituyendo la limitaci&oacute;n estom&aacute;tica; luego, el  CO<sub>2</sub> se difunde a trav&eacute;s del mes&oacute;filo (limitaci&oacute;n  mesofilar) en los sitios de carboxilaci&oacute;n; esta,  junto con la limitaci&oacute;n bioqu&iacute;mica, constituye la  limitaci&oacute;n no estom&aacute;tica de la fotos&iacute;ntesis, principalmente  bajo estr&eacute;s severo, que est&aacute; relacionada  con impedimentos metab&oacute;licos tales como  limitaciones a la fosforilaci&oacute;n, la regeneraci&oacute;n de  la 1,5 ribulosa bifosfato (RuBp) y con la actividad  de la rubisco (Singh y Reddy, 2011).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  La limitaci&oacute;n estom&aacute;tica utilizada para evitar la  sequ&iacute;a podr&iacute;a explicarse, parcialmente, por un  mecanismo eficiente que transfiere la informaci&oacute;n  de las ra&iacute;ces a las hojas (Bates y Hall, 1981;  Moreno, 2009). Se ha reportado que el cierre estom&aacute;tico  como resultado de la disminuci&oacute;n del  contenido de humedad del suelo, mediado por  cambios en el estado h&iacute;drico de la ra&iacute;z, constituye una respuesta al d&eacute;ficit h&iacute;drico en caup&iacute; y var&iacute;a  con el genotipo (Cruz de Carvalho <i>et al</i>., 1998;  Anyia and Herzog, 2004; Hamidou <i>et al</i>., 2007;  Singh y Reddy, 2011).</p>     <p>  La disminuci&oacute;n de la conductancia estom&aacute;tica,  como consecuencia del cierre estom&aacute;tico, ocurre  cuando el mes&oacute;filo comienza a sufrir deshidrataci&oacute;n  y est&aacute; regulada por el &aacute;cido absc&iacute;sico (Moreno,  2009). El contenido de ABA en la hoja se  incrementa debido a su s&iacute;ntesis en las ra&iacute;ces y  su transporte v&iacute;a apoplasto con la corriente de  transpiraci&oacute;n hacia las c&eacute;lulas guarda, donde es  liberado; tambi&eacute;n ocurre una redistribuci&oacute;n del  ABA desde los cloroplastos de las c&eacute;lulas del mes&oacute;filo  (Zhang y Outlaw, 2001; Moreno, 2009).</p>     <p>  El ABA causa p&eacute;rdida de potasio, cloro o malato  en las c&eacute;lulas guarda, lo que provoca disminuci&oacute;n  del volumen celular por la salida de agua  del citoplasma, dando lugar al cierre estom&aacute;tico  (Moreno, 2009; Taiz y Zeiger, 2010).</p>     <p>  Se ha reportado que los genotipos que se marchitan  temprano mantienen sus estomas abiertos  durante la fase inicial del estr&eacute;s, mientras que los  que se marchitan tarde, los cierran (Agbicodo et  al., 2009). A medida que avanza el estr&eacute;s, los genotipos  tolerantes a sequ&iacute;a sobreviven por el cierre  estom&aacute;tico (Pungulani <i>et al</i>., 2013). Estudios  realizados por Oliveira <i>et al</i>. (2005) muestran  que la conductancia estom&aacute;tica es un indicador  de estr&eacute;s h&iacute;drico en fr&iacute;jol caup&iacute; y reporta valores  entre 14 y 165 mmol m<sup>-2</sup> s<sup>-1</sup> de H<sub>2</sub>O, que var&iacute;an  seg&uacute;n la fase fenol&oacute;gica y seg&uacute;n el tiempo transcurrido  desde la suspensi&oacute;n del suministro de  agua. No obstante, al comparar genotipos sometidos  a estr&eacute;s h&iacute;drico, los valores m&aacute;s altos indican  mayor tolerancia a sequ&iacute;a (DoNascimento,  2009).</p>     <p>  Ensayos realizados en etapas tempranas, muestran  que algunas plantas cierran sus estomas y  detienen el crecimiento, mientras que otras adem&aacute;s  de cerrar parcialmente sus estomas, hacen  ajuste osm&oacute;tico y contin&uacute;an su crecimiento lentamente;  las primeras evitan la sequ&iacute;a, mientras  que las segundas la toleran, este parece ser el  mecanismo m&aacute;s efectivo (Agbicodo <i>et al</i>., 2009).</p>     <p>  En este mismo sentido, la reducci&oacute;n en la transpiraci&oacute;n,  regulada por el cierre estom&aacute;tico, es  una respuesta com&uacute;n de las plantas al estr&eacute;s  por sequ&iacute;a que permite incrementar la eficiencia  intr&iacute;nseca en el uso del agua (A/gs) (Singh y  Reddy, 2011). En efecto, la A/gs ha sido reconocida  como una medida de la ganancia de carbono  por unidad de agua perdida y es inversamente  proporcional a la proporci&oacute;n de las concentraciones  de CO2 intercelular y ambiental (Ci/Ca).  Es evidente que una mayor eficiencia en el uso  del agua y una mayor tasa fotosint&eacute;tica, junto  a una mayor movilizaci&oacute;n de fotoasimilados  hacia los &oacute;rganos de cosecha, pueden mejorar el  rendimiento de los cultivos bajo estr&eacute;s h&iacute;drico  (Condon <i>et al</i>., 2004; Parry <i>et al</i>., 2005; Singh y  Reddy, 2011).</p>     <p>  La eficiencia de transpiraci&oacute;n (A/E) a nivel de la  hoja, es m&aacute;s alta en genotipos tolerantes a sequ&iacute;a  bajo condiciones de estr&eacute;s h&iacute;drico y tambi&eacute;n  puede ser medida por discriminaci&oacute;n isot&oacute;pica  de carbono (<font face="symbol" size="3">D</font><sup>13</sup>C) en granos (Parry <i>et al</i>., 2005;  Blum, 2009). Bajo estr&eacute;s h&iacute;drico severo, varias  l&iacute;neas de caup&iacute; tolerantes a sequ&iacute;a, mostraron  conductancia estom&aacute;tica y eficiencia de transpiraci&oacute;n  m&aacute;s altas que las sensibles (Belko <i>et al</i>.,  2012).</p>     <p>  El cierre parcial de estomas condujo tambi&eacute;n a  un aumento de la temperatura de la zona meristem&aacute;tica  de la hoja, pero permaneci&oacute; constante  a pesar del incremento del d&eacute;ficit de presi&oacute;n de  vapor entre la hoja y el aire (Ben Haj Salah y Tardieu,  1997; Tardieu y Simonneau, 1998).</p>     <p>  En relaci&oacute;n con la limitaci&oacute;n bioqu&iacute;mica, el  transporte de electrones parece ser muy resistente  a la inhibici&oacute;n bajo d&eacute;ficit h&iacute;drico, mientras  que la fosforilaci&oacute;n y el metabolismo fotosint&eacute;tico parecen ser m&aacute;s sensibles a la deshidrataci&oacute;n  (Flexas <i>et al</i>., 2006). El rendimiento cu&aacute;ntico  m&aacute;ximo fotoqu&iacute;mico no fue afectado por el estr&eacute;s  h&iacute;drico en <i>Prunus salicina</i> Lindh, indicativo  de que la cadena de transporte de electrones es  resistente a la deshidrataci&oacute;n, de tal manera que  la raz&oacute;n F<sub>V</sub>/<sub>FM</sub> no es un indicador efectivo de estr&eacute;s  (Martinazzo <i>et al</i>., 2013).</p>     <p>  La fosforilaci&oacute;n puede ser sensible a los efectos  t&oacute;xicos de la alta concentraci&oacute;n de magnesio que  acompa&ntilde;a la remoci&oacute;n de agua del cloroplasto en  hojas deshidratadas (Kozlowski y Pallardy 1997;  Taiz y Zeiger, 2010).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  Por otro lado, cuando las plantas que pasan por  un periodo de d&eacute;ficit h&iacute;drico son irrigadas, la tasa  de fotos&iacute;ntesis puede o no retornar a los niveles  anteriores, dependiendo del material gen&eacute;tico,  severidad, duraci&oacute;n de la sequ&iacute;a y la humedad relativa;  las que consiguen recuperarse y vuelven a  fotosintetizar como antes del estr&eacute;s, poseen una  mayor tolerancia al d&eacute;ficit h&iacute;drico (Kozlowski  y Pallardy, 1997). No obstante, los mecanismos  protectores que permiten mantener el aparato  fotosint&eacute;tico del caup&iacute;, bajo estr&eacute;s h&iacute;drico, a&uacute;n  no son bien conocidos (Anyia y Herzog, 2004;  Singh y Reddy, 2011).</p>     <p>  Se ha encontrado que los efectos perjudiciales  de la sequ&iacute;a en el aparato fotosint&eacute;tico pueden  durar d&iacute;as, semanas o hasta meses; por lo que la  capacidad de las plantas estresadas de recuperar  su capacidad fotosint&eacute;tica puede estar asociada  a la capacidad de los estomas de reabrirse parcial  o totalmente y a la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas para  superar el da&ntilde;o sufrido por el aparato fotosint&eacute;tico  (Kozlowski y Pallardy, 1997; Pompelli <i>et al</i>.,  2010).</p>     <p>  Cruz de Carvalho <i>et al</i>. (1998) demostraron que  la conductancia estom&aacute;tica (gs) y la tasa neta  de asimilaci&oacute;n (A, mmol m<sup>-2</sup> s<sup>-1</sup> de CO<sub>2</sub> medidas  durante y despu&eacute;s del tratamiento de estr&eacute;s h&iacute;drico  son par&aacute;metros confiables para identificar tolerancia a sequ&iacute;a en <i>Phaseolus vulgaris</i> y <i>Vigna unguiculata</i>.</p> &nbsp;     <p>  <font size="3"><b>AJUSTE OSM&Oacute;TICO Y BIOMOL&Eacute;CULAS RELACIONADAS</b></font></p>     <p>  El ajuste osm&oacute;tico consiste en una disminuci&oacute;n  del potencial h&iacute;drico en los tejidos vegetales,  lo que permite la entrada de agua e impide la  disminuci&oacute;n en el turgor o en la actividad fotosint&eacute;tica;  se origina a trav&eacute;s de la bios&iacute;ntesis  de osmolitos org&aacute;nicos de bajo peso molecular  y por la acumulaci&oacute;n de iones, especialmente  K<sup>+</sup> (Cushman, 2001; Gonz&aacute;lez Rodr&iacute;guez <i>et al</i>.,  2011).</p>     <p>  La acumulaci&oacute;n de iones durante el ajuste osm&oacute;tico  ocurre principalmente en la vacuola, mientras  que en el citoplasma se acumulan solutos  compatibles que no afectan negativamente la  funcionalidad de macromol&eacute;culas celulares (Taiz  y Zeiger 2010). Estos solutos son mol&eacute;culas org&aacute;nicas  de bajo peso molecular (osmolitos) como  el amino&aacute;cido prolina, alcoholes-az&uacute;car como  el sorbitol y el manitol y una amina cuaternaria  llamada glicina-beta&iacute;na (Rodr&iacute;guez, 2006;  Moreno, 2009). Diferentes tipos de organismos  como plantas, bacterias, hongos y animales presentan  osmolitos compatibles que se caracterizan  por no alterar la estructura y funci&oacute;n de las  macromol&eacute;culas, cuando se acumulan en altas  concentraciones (Taiz y Zeiger, 2010).</p>     <p>  La acumulaci&oacute;n de osmolitos compatibles  tambi&eacute;n tiene como consecuencia la osmoprotecci&oacute;n,  que est&aacute; dada por la capacidad estabilizadora  de algunos de estos solutos sobre macromol&eacute;culas  como las prote&iacute;nas y los sistemas  de membrana celulares. Mol&eacute;culas como prolina  y glicina-beta&iacute;na, mediante la formaci&oacute;n de  puentes de hidr&oacute;geno, pueden inducir la formaci&oacute;n  de puentes de hidr&oacute;geno alrededor de prote&iacute;nas,  preservando su estado original (Kavi-  Kishor <i>et al</i>., 2005).</p>     <p>En general, la osmorregulaci&oacute;n permite a las  plantas tolerar condiciones de escasez de agua  y salinidad elevadas, e involucra mecanismos  adaptativos que evitan la disminuci&oacute;n de la fotos&iacute;ntesis,  las alteraciones en la traslocaci&oacute;n y la  distribuci&oacute;n de fotoasimilados, y la p&eacute;rdida de rendimiento (Rodr&iacute;guez, 2006).</p>     <p>  En plantas de caup&iacute; sometidas a d&eacute;ficit h&iacute;drico,  se reportaron significativos incrementos de prolina  que propiciaron ajuste osm&oacute;tico (Lobato et  al., 2008). No obstante, para algunos autores, el  aumento en el contenido de prolina, no est&aacute; claro  si contribuye al ajuste osm&oacute;tico, dado que su  papel en caup&iacute; ha sido reportado como s&iacute;ntoma  de lesiones en las hojas (Bates y Hall, 1981; Singh  y Reddy, 2011).</p>     <p>  Tambi&eacute;n se ha reportado en caup&iacute;, bajo estr&eacute;s h&iacute;drico,  incrementos de carbohidratos y amino&aacute;cidos  totales, y disminuci&oacute;n de la cantidad de prote&iacute;na  total (Costa <i>et al</i>., 2008; Farouk y Amani,  2012). Adem&aacute;s, reducciones significativas en clorofila  total (Lobato <i>et al</i>., 2009; Abass y Mohamed,  2011; Farouk y Amani, 2012), y carotenoides,  considerados t&iacute;picos indicadores de estr&eacute;s oxidativo  atribuidos a la fotooxidaci&oacute;n de pigmentos  y a la degradaci&oacute;n o deficiencia en la s&iacute;ntesis de  clorofilas, conducentes a minimizar la absorci&oacute;n  de luz por los cloroplastos (Singh y Reddy, 2011).  Los mismos autores reportaron un aumento  en el contenido de cera epicuticular que podr&iacute;a  contribuir a la disminuci&oacute;n de la transpiraci&oacute;n.</p> &nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  <font size="3"><b>PROCESOS DE DETOXIFICACI&Oacute;N DE ESPECIES REACTIVAS DE OX&Iacute;GENO</b></font></p>     <p>  Las especies reactivas de ox&iacute;geno, tales como  per&oacute;xido de hidr&oacute;geno (H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>), radical hidroxilo  (OH<sup>-</sup>) y ani&oacute;n super&oacute;xido (O<sub>2</sub><sup>-</sup>), aumentan como  producto de la disipaci&oacute;n del exceso de energ&iacute;a,  lo que generalmente ocurre junto con la intensificaci&oacute;n  de las limitaciones estom&aacute;ticas y no  estom&aacute;ticas, frecuentes en &eacute;pocas secas; simult&aacute;neamente,  se activan mecanismos bioqu&iacute;micos  que las contrarrestan (Tausz <i>et al</i>., 2004). En  condiciones de estr&eacute;s h&iacute;drico estos mecanismos  bioqu&iacute;micos pueden contribuir al mantenimiento  de diversos procesos fisiol&oacute;gicos tales como la  apertura estom&aacute;tica, la fotos&iacute;ntesis y la expansi&oacute;n  celular (Lawlor y Cornic, 2002).</p>     <p>  Entre las enzimas del sistema antioxidante involucradas  en procesos de detoxificaci&oacute;n de ROS  est&aacute;n la catalasa CAT, la ascorbato peroxidasa  APX, la super&oacute;xido dismutasa SOD y glutati&oacute;n reductasa  GR, adem&aacute;s de aldeh&iacute;do mal&oacute;nico MDA  (Pompelli <i>et al</i>., 2010). Las enzimas glutati&oacute;n reductasa  y ascorbato peroxidasa desempe&ntilde;an un  papel clave en fr&iacute;jol caup&iacute; (Agbicodo <i>et al</i>., 2009).</p>     <p>  El incremento de la actividad de las enzimas  antioxidantes en plantas sometidas a estr&eacute;s por  sequ&iacute;a, podr&iacute;a contribuir a su capacidad para sobrevivir  en ambientes &aacute;ridos adversos (Pompelli  <i>et al</i>., 2010).</p>     <p>  Se ha indicado que el estr&eacute;s por sequ&iacute;a conduce  a diferentes niveles de expresi&oacute;n de GR en caup&iacute;  y fr&iacute;jol com&uacute;n, seg&uacute;n sus grados de tolerancia a  sequ&iacute;a (Torres-Franklin <i>et al</i>., 2008) y, se ha reportado  la expresi&oacute;n de un gen relacionado con  la enzima homoglutation sintetasa (hGSHS)  en respuesta al estr&eacute;s por sequ&iacute;a en esta especie  (Cruz de Carvalho <i>et al</i>., 2010).</p>     <p>  Por otro lado, las plantas tolerantes a sequ&iacute;a  mantienen la composici&oacute;n lip&iacute;dica de las membranas  celulares, como resultado de mecanismos  antioxidantes eficientes y control de actividades  hidrol&iacute;ticas (Matos <i>et al</i>., 2008). Los &aacute;cidos grasos  poliinsaturados y espec&iacute;ficamente el &aacute;cido linol&eacute;nico  se incrementan en las hojas de plantas de  caup&iacute; tolerantes a sequ&iacute;a, mientras que en las sensibles  disminuyen (Torres-Franklin <i>et al</i>., 2009).</p>     <p>  Se ha indicado que el contenido de MDA, uno  de los &uacute;ltimos productos de la peroxidaci&oacute;n de  l&iacute;pidos por efecto del da&ntilde;o provocado por los radicales libres, es un indicador de da&ntilde;o oxidativo  (Pompelli <i>et al</i>., 2010).</p> &nbsp;     <p> <font size="3"><b>ACTIVIDAD MOLECULAR</b></font></p>     <p>  Adem&aacute;s de las respuestas fisiol&oacute;gicas y bioqu&iacute;micas  inducidas por el estr&eacute;s debido a sequ&iacute;a, las  plantas tambi&eacute;n responden y se adaptan a nivel  celular y molecular, y muchos genes son inducidos  o represados bajo tal condici&oacute;n de estr&eacute;s; recientemente  han sido identificados varios de los  genes inducidos por sequ&iacute;a, utilizando el an&aacute;lisis  de micromatrices (transcript&oacute;mica), tecnolog&iacute;a  que emplea ADNc u oligonucle&oacute;tidos para analizar  la expresi&oacute;n de genes de plantas expuestas  a sequ&iacute;a (Ansari y Lin, 2010).</p>     <p>  Los productos de los genes inducidos por sequ&iacute;a,  identificados con esta t&eacute;cnica, incluyen prote&iacute;nas  chaperonas, prote&iacute;nas LEA (late embryogenesis  abundant), osmotina, enzimas clave para  la bios&iacute;ntesis de osmolitos, prote&iacute;nas canales de  agua, az&uacute;car y transportadores de prolina, enzimas  detoxificantes y varias proteasas; tambi&eacute;n  se producen prote&iacute;nas reguladoras, tales como  kinasas, fosfatasas, enzimas involucradas en el  metabolismo de fosfol&iacute;pidos y otras como la calmodulina  (Ansari y Lin, 2010).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  Por otro lado, con el desarrollo r&aacute;pido de la biolog&iacute;a  molecular, los marcadores moleculares han  sido ampliamente usados en el mejoramiento  gen&eacute;tico de varios cultivos, incluyendo el caup&iacute;  (Tan <i>et al</i>., 2012). Las t&eacute;cnicas moleculares han  permitido importantes logros en mejoramiento  gen&eacute;tico, tales como an&aacute;lisis de diversidad gen&eacute;tica,  construcci&oacute;n de mapas de ligamientos gen&eacute;ticos  y mapeo de QTL (Muchero <i>et al</i>., 2009).</p>     <p>  Para tales prop&oacute;sitos se han aplicado marcadores  RAPD, AFLP y SSR (de uso m&aacute;s frecuente),  mientras que SNP a&uacute;n no han sido usado en  an&aacute;lisis de diversidad gen&eacute;tica en esta especie  (Tan <i>et al</i>., 2012; Patil, 2013). Sin embargo, los  SNP han ganado mucho inter&eacute;s por la comunidad  mejoradora de plantas (Ganal <i>et al</i>., 2009)  y recientemente se report&oacute; que una colecci&oacute;n  mundial de caup&iacute;, compuesta por 422 variedades  locales, procedentes de 56 pa&iacute;ses, fue genotipada  con m&aacute;s de 1.200 SNP, encontr&aacute;ndose dos pools  de genes; el pool 1, mayoritariamente distribuido  al occidente de &Aacute;frica y, el pool 2, m&aacute;s relacionado  con el oriente de &Aacute;frica y parece ser que las  accesiones de Am&eacute;rica est&aacute;n m&aacute;s estrechamente  ligadas al pool 2 (Huynh <i>et al</i>., 2013).</p>     <p>  No obstante, la aplicaci&oacute;n de estos marcadores  est&aacute; a&uacute;n en etapa de exploraci&oacute;n, por lo que es  necesario profundizar en estas t&eacute;cnicas para acelerar  el mejoramiento asistido por marcadores  moleculares. El mapeo de genes candidatos ofrece  una soluci&oacute;n alternativa para identificar los  factores determinantes de caracter&iacute;sticas subyacentes  a QTL de inter&eacute;s (Muchero <i>et al</i>., 2010).</p>     <p>  Al usar estos marcadores moleculares, para la extracci&oacute;n  de ADN de alta calidad se recomienda  aislarlo de hojas j&oacute;venes de pl&aacute;ntulas de caup&iacute;, lo  cual resulta de bajo costo, r&aacute;pido, de alta pureza,  integro, y funcional en la digesti&oacute;n de la endonucleasa  de restricci&oacute;n y en el an&aacute;lisis posterior  basado en PCR (Tan <i>et al</i>., 2013).</p>     <p>  Con estas t&eacute;cnicas se pretende aislar e identificar  las principales v&iacute;as gen&eacute;ticas involucradas en la  respuesta a sequ&iacute;a en caup&iacute;. Al respecto, se han  encontrado altas correlaciones entre el mantenimiento  del color verde del tallo, sobrevivencia,  recuperaci&oacute;n de materia seca y senescencia en  campo, que sugieren un proceso basado en la senescencia  de tejidos presente en la tolerancia a sequ&iacute;a  en pl&aacute;ntulas de caup&iacute;; afirmaci&oacute;n soportada  en ADNc asociado a senescencia, aislado del caup&iacute;  sometido a estr&eacute;s h&iacute;drico (Muchero <i>et al</i>., 2008).</p>     <p>  Por otro lado, QTL (locus de un car&aacute;cter cuantitativo)  asociados con tolerancia a la sequ&iacute;a en estado de pl&aacute;ntula y en la madurez, en l&iacute;neas  endog&aacute;micas de caup&iacute;, fueron identificados por  Muchero <i>et al</i>. (2009) y Tan <i>et al</i>. (2012) y encontraron  alta correlaci&oacute;n entre el estado verde  del tallo a la madurez y el peso seco de la planta,  por lo que la selecci&oacute;n fenot&iacute;pica representa un  mecanismo efectivo para identificar plantas con  tolerancia a sequ&iacute;a como ha sucedido en sorgo  (Subudhi <i>et al</i>., 2000). Posteriormente, se identificaron  5 loci que evidenciaron efecto pleiotr&oacute;pico  entre la permanencia verde de la planta y  la senescencia tard&iacute;a, biomasa y rendimiento de  grano (Muchero <i>et al</i>., 2013).</p>     <p>  M&aacute;s recientemente, se ha encontrado que modificaciones  epigen&eacute;ticas, por metilaci&oacute;n del ADN, y mecanismos  basados en cromatina y peque&ntilde;os ARN,  pueden contribuir, separadamente o en conjunto  con los fenotipos, a regular la expresi&oacute;n de genes en  respuesta al efecto del estr&eacute;s (Grativol <i>et al</i>., 2012).</p> &nbsp;      <p> <font size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p>  Son muchos los aspectos asociados a las respuestas  al d&eacute;ficit h&iacute;drico en las plantas y particularmente  al fr&iacute;jol caup&iacute;. Los estudios enfocados a  seleccionar genotipos con mayores grados de  tolerancia al d&eacute;ficit h&iacute;drico, se han dirigido hacia  cinco grandes aspectos interrelacionados: las  modificaciones del crecimiento y desarrollo de  los &oacute;rganos de la planta, la din&aacute;mica de las relaciones  h&iacute;dricas e intercambio gaseoso, los procesos  bioqu&iacute;micos que incluyen las limitaciones  bioqu&iacute;micas asociadas a prote&iacute;nas y otros procesos,  el ajuste osm&oacute;tico, los procesos de detoxificaci&oacute;n  de especies reactivas de ox&iacute;geno por la actividad  de enzimas antioxidantes y la actividad  molecular. Este &uacute;ltimo aspecto pretende identificar  v&iacute;as gen&eacute;ticas asociadas a caracter&iacute;sticas  morfol&oacute;gicas y fisiol&oacute;gicas que han desarrollado  las plantas a lo largo de su proceso evolutivo.</p> &nbsp;      <p><font size="3"><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Abass, S.M. y H.I. Mohamed. 2011. Alleviation of adverse  effects of drought stress on common bean (<i>Phaseolus  vulgaris</i> L.) by exogenous application of hydrogen peroxide. Bangladesh J. Bot. 41(1), 75-83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S2011-2173201300020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Abayome, Y.A. y T.O. Abidoye. 2009. Evaluation of cowpea  genotypes for soil moisture stress tolerance under  screen house conditions. African J. Plant Sci. 3  (10), 229-237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S2011-2173201300020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Agbicodo, E.M., C.A. Fatokun, S. Muranaka, R.G.F. Visser  y C.G. Linden Van Der. 2009. Breeding drought  tolerant cowpea: constraints, accomplishments,  and future prospects. Euphytica 167, 353-370.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S2011-2173201300020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Ahmed, F.E. y A.S.H. Suliman. 2010. Effect of water  stress applied at different stages of growth on seed  yield and water-use efficiency of cowpea. Agric.  Biol. J. N. Am. 1(4), 534-540.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S2011-2173201300020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Ansari, M.I. y T.P. Lin. 2010. Molecular Analysis of Dehydration  in Plants. Intl. Res. J. Plant Sci. 1(2),  21-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S2011-2173201300020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Anyia, A.O. y H. Herzog. 2004. Genotypic variability  in drought performance and recovery in cowpea  under controlled environment. J. Agron. Crop Sci. 190 (2), 151-159.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S2011-2173201300020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Bates, L.M. y A.E. Hall. 1981. Stomatal closure with soil  water depletion not associated with changes in  bulk leaf water status. Oecologia. 50, 62-65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S2011-2173201300020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Beebe, S.E., I.M. Rao, M.W. Blair y J.A. Acosta-Gallego.  2013. Phenotyping common beans for adaptation  to drought. Front. Physiol. 4, 35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S2011-2173201300020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Belko, N., M. Zaman-Allah, N. Cisse, N.N. Diop, G.  Zombre, J.D. Ehlers y V. Vadez. 2012. Lower soil  moisture threshold for transpiration decline under  water deficit correlates with lower canopy conductance  and higher transpiration efficiency in  drought-tolerant cowpea. Funct. Plant Biol. 39(4),  306-322.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S2011-2173201300020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Ben-Haj-Salah, H. y F. Tardieu. 1997. Control of leaf  expansion rate of droughted maize plants under fluctuating evaporative demand. A superposition  of hydraulic and chemical messages? Plant Physiol.  114, 893-900.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000101&pid=S2011-2173201300020001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  Blum, A. 2009. Effective use of water (EUW) and not  water-use efficiency (WUE) is the target of crop  yield improvement under drought stress. Field  Crop. Res. 112 (2009), 119- 123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S2011-2173201300020001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Boyer, J.S. 1978. Chapter 4: Water deficits and photosynthesis.  pp. 154-191. En: Kozlowski, T. T. (ed.).  Water deficits and plant growth. Academic Press,  N.Y.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000105&pid=S2011-2173201300020001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Condon, A.G., R.A Richards, G.J. Rebetzke y G. D. Farquhar.  2004. Breeding for high water-use efficiency. J. Exp. Bot. 55 (407), 2447-2460.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000107&pid=S2011-2173201300020001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Costa, R.C.L., A.K.S. Lobato, C.F. Oliveira Neto, P.S.P.  Maia, G.A.R. Alves y H.D. Laughinghouse. 2008.  Biochemical and physiological responses in two  <i>Vigna unguiculata</i> (L.) Walp. Cultivars under water stress. J. Agron. 7, 98-101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000109&pid=S2011-2173201300020001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Cruz de Carvalho M.H., D. Laffray y P. Louguet. 1998.  Comparison of the physiological responses of <i>Phaseolus  vulgaris</i> and <i>Vigna unguiculata</i> cultivars  when submitted to drought conditions. Environ. Exp. Bot. 40,197-207.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000111&pid=S2011-2173201300020001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  Cruz de Carvalho, M.H., H. Brunet, I. Kranner, A.D.  Arcy-Lammeta, Y. Zuily-Fodil y D. Cantour-Ansel.  2010. Homoglutathione synthetase and glutathione  synthetase in drought-stressed cowpea leaves:  Expression patterns and accumulation of low-molecular-weight thiols. J. Plant Physiol. 167,480-487.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000113&pid=S2011-2173201300020001200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Cushman, J.C. 2001. Osmoregulation in plants: implications  for agriculture. Am. Zool. 4, 758-769.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000115&pid=S2011-2173201300020001200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Dadson, R.B., F.M. Hashem, I. Javaid, J. Joshi, A.L. Allen  y T.E. Devine. 2005. Effect of water stress on the  yield of cowpea (<i>Vigna unguiculata</i> L. Walp.) genotypes  in the Delmarva region of the United States. J. Agron. Crop Sci. 191, 210-217.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000117&pid=S2011-2173201300020001200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  DoNascimento, S.P. 2009. Efeito do deficit h&iacute;drico em  feij&atilde;o-caupi para entifica&ccedil;&atilde;o gen&oacute;tipos com toler&acirc;ncia  &agrave; seca. Tesis de mestre em agronom&iacute;a.  Agricultural Science Center, Universidad Federal  do Piau&iacute;, Teresina, Brasil.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000119&pid=S2011-2173201300020001200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Farouk, S. y A.R. Amany. 2012. Improving growth and  yield of cowpea by foliar application of chitosan  under water stress. Egypt. J. Biol. 14, 14-26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000121&pid=S2011-2173201300020001200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  Flexas, J., J. Bota, J. Galm&eacute;s, H. Medrano y M. Ribas-  Carb&oacute;. 2006. Keeping a positive carbon balance under  adverse conditions: responses of photosynthesis  and respiration to water stress. Physiol. Plant.  127(3), 343-352.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000123&pid=S2011-2173201300020001200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Ganal, M.W., T. Altman y M.S. Roder. 2009. SNP identification  in crop plants. Curr. Opin. Plant Biol.12,  211-217.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000125&pid=S2011-2173201300020001200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Gonz&aacute;lez-Rodr&iacute;guez, H., I. Cant&uacute;-Silva, R.G. Ram&iacute;rez-  Lozano, M.V. G&oacute;mez-Meza, M. Pando-Moreno y  J.M. L&oacute;pez-Hern&aacute;ndez. 2011. Potencial h&iacute;drico xilem&aacute;tico  en cuatro especies arbustivas nativas del  noreste de M&eacute;xico. Revista Chapingo Serie Ciencias  Forestales y del Ambiente 17, 97-109.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000127&pid=S2011-2173201300020001200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Grativol, C., A.S. Hemerly y P.C.G Gomes Ferreira.  2012. Genetic and epigenetic regulation of stress  responses in natural plant populations. Biochim.  Biophys. Acta 1819, 176-185&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000129&pid=S2011-2173201300020001200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Hall, A. 2004. Breeding for adaptation to drought and  heat in cowpea. Europ. J. Agron. 21, 447-454.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000130&pid=S2011-2173201300020001200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Hall, A.E.; N. Cisse, S. Thiaw, H.O.A Elawad, J.D. Ehlers,  A.M. Ismail, R. Fery, P.A. Roberts, L.W. Kitch, L.L.  Murdock, O. Boukar, R.D. Phillips y K.H Mcwatters.  2003. Development of cowpea cultivars and  germplasm by the Bean/Cowpea CRSP. Field Crop  Res. 82, 103-134.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000132&pid=S2011-2173201300020001200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Hamidou, F., G. Zombre, O. Diouf, N. Diop, S. Guinko,  and S. Braconnier. 2007. Physiological, biochemical  and agromorphological responses of five cowpea  genotypes (<i>Vigna unguiculata</i> (L.) Walp.) to water  deficit under glasshouse conditions. Biotechnol. Agron. Soc. Environ. 11(3), 225-234.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000134&pid=S2011-2173201300020001200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Huynh, B-L., T.J. Close, P.A. Roberts, Z. Hu, S. Wanamaker,  R.M.R Mitchell R. Chiulele, N. Ciss&eacute;,  A. David, S. Hearne, C. Fatokun, N.N. Diop y J.D.  Ehlersthe. 2013. Gene pools and the genetic architecture  of domesticated cowpea. Plant Genet.  6(2), 1-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000136&pid=S2011-2173201300020001200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Ichi, J.O., H.E. Igbadun, S. Miko and A.M. Samndi.  2013. Growth and yield response of selected cowpea  (<i>Vigna unguiculata</i> L. Walp.) variety to irrigation  interval and sowing date. The Pacific J. Sci. Techn. 14 (1), 453-463.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000138&pid=S2011-2173201300020001200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Ishiyaku, M.F. and H. Aliyu. 2013. field evaluation  of cowpea genotypes for drought tolerance and  Striga resistence in the dry savanna of the North-West Nigeria. Int. J. Plant Breed. Genet. 7(1),  47-56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000140&pid=S2011-2173201300020001200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Kavi-Kishor, P.B., Z. Hong, G.H. Miao, C.A.A Hu y  D.P.S. Verma. 1995. Overexpression of D1-pyrroline-5-carboxylate synthetase increases proline production  and confers osmotolerance in transgenic  plants. Plant Physiol. 108, 1387-1394.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000142&pid=S2011-2173201300020001200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Kozlowski, T.T. y S.G. Pallardy . 1997. Physiology of  woody plants. 2<sup>nd</sup> ed. Academic Press. Academic  Press. San Diego, CA. pp. 147-153.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000144&pid=S2011-2173201300020001200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Kumar, A., K.D. Sharma y D. Kumar. 2008. Traits for  screening and selection of cowpea genotypes for  drought tolerance at early stages of breeding. J. Agric. Rur. Develop. Trop. Subtrop. 109(2), 191-199.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000146&pid=S2011-2173201300020001200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Lawlor, D.W. y G. Cornic. 2002. Photosynthetic carbon  assimilation and associated metabolism in relation  to water deficits in higher plants. Plant Cell Environ.  25, 275-294.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000148&pid=S2011-2173201300020001200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Lobato, A.K.S., C.F. Oliveira Neto, R.C.L. Costa, B.G.  Santos-Filho, F.J.R. Cruz y H.D. Laughinghouse.  2008. Biochemical and physiological behavior of  <i>Vigna unguiculata</i> (L.) Walp. under water stress  during the vegetative phase. Asian J. Plant Sci. 7, 44-49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000150&pid=S2011-2173201300020001200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Lobato, A.K.S, R.C.L. Costa, C.F.O. Neto, B.G.S. Filho,  G.A.R. Alves, J.M.N. Freitas, F.J.R. Cruz, C.A. Marochio  y G.K. Coimbra. 2009. Responses of the pigments  and carbon metabolism in <i>Vigna unguiculata</i>  cultivars submitted to water deficit. Res. J. Biol. Sci. 4, 593-598.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000152&pid=S2011-2173201300020001200036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Martinazzo, E.G., A.T. Perboni, P.V. Deoliveira, V.J. Bianchi  y M.A. Bacarin. 2013. Photosynthetic activity  in Japanese plum under water deficit and flooding.  Ci&ecirc;ncia Rural 43(1), 35-41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000154&pid=S2011-2173201300020001200037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Matos, A.R., Gigon, A. Laffray, D. P&ecirc;tres, S. Zuily-Fodil  y A.T. Pham-Thi. 2008. Effects of progressive  drought stress on the expression of patatin-like lipid  acyl hydrolase genes in Arabidopsis leaves. Physiol.  Plant. 134(1), 110-120.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000156&pid=S2011-2173201300020001200038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Matsui, T. y B. Singh. 2003. Root characteristics in cowpea  related to drought tolerance at the seedling  stage. Exp. Agric. 29, 29-38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000158&pid=S2011-2173201300020001200039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Moreno, L.P. 2009. Respuesta de las plantas al estr&eacute;s  por d&eacute;ficit h&iacute;drico. Una revisi&oacute;n. Agron. Colomb.  27(2), 179-191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000160&pid=S2011-2173201300020001200040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Muchero, W., J.D. Ehlers y P.A. Roberts. 2008. Seedling  stage drought-induced phenotypes and droughtresponsive  genes in diverse cowpea genotypes.  Crop Sci. 48, 541-552.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000162&pid=S2011-2173201300020001200041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Muchero, W., J.D. Ehlers, T. Close y P. Roberts. 2009.  Mapping QTL for drought stress-induced premature  senescence and maturity in cowpea (<i>Vigna unguiculata</i> (L.) Walp.). Theor. Appl. Genet. 118, 849-863.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000164&pid=S2011-2173201300020001200042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Muchero, W., J.D. Ehlers y P.A. Roberts. 2010. Restriction  site polymorphism-based candidate gene  mapping for seedling drought tolerance in cowpea  <i>Vigna unguiculata</i> (L.) Walp. Theor. Appl. Genet. 120, 509-518.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000166&pid=S2011-2173201300020001200043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Muchero, W., P.A. Roberts, N.N. Diop, I. Drabo, N. Cisse,  T.J. Close, S. Muranka, O. Boukar y J.D. Ehlers.  2013. Genetic architecture of delayed senescence,  biomass, and grain yield under drought stress in  cowpea. PloS ONE 8(7), e70041.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000168&pid=S2011-2173201300020001200044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Nelson, C., M. Rosegrant, J. Koo, R. Robertson, T. Sulser,  T. Zhu, C. Ringler, S. Msangi, A. Palazo, M.  Batka, M. Magalhaes, R. Valmonte-santos, M. Ewing  y D. Lee. 2009. Cambio clim&aacute;tico: el impacto  en la agricultura y los costos de adaptaci&oacute;n. Instituto  Internacional de Investigaci&oacute;n sobre Pol&iacute;ticas  Alimentarias IPFRI. En: <a href="http://www.fao.org" target="_blank">http://www.fao.org</a>; consulta:  agosto de 2010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000170&pid=S2011-2173201300020001200045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Okon, I.E. 2013. Effect of water stress on some growth  aspect of two varieties of cowpea, <i>Vigna unguiculata</i>  L. Walp. Fabaceae. Bullet. Environ. Pharmacol. Life Sci. 2(5), 69-74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000172&pid=S2011-2173201300020001200046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Oliveira, A. D., E.J. Fernandes y T.J.D. Rodrigues. 2005.  Condut&acirc;ncia estom&aacute;tica como indicador de estresse  h&iacute;drico em Feij&atilde;o. Engenharia Agr&iacute;cola 25(1), 86-95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000174&pid=S2011-2173201300020001200047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Parry, M.A.J., J. Flexas y H. Medrano. 2005. Prospects  for crop production under drought: research priorities  and future directions. Ann. Appl. Biol. 147,  211-226.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000176&pid=S2011-2173201300020001200048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Patil, D.M., N.B. Sawardekar, S.G. Gokhale, S.S. Bhave,  S.A. Sawant, K.A. Sawantdesai, S.N. Lipne, S.N  Sabale y S.N. Joshi. 2013. Genetic diversity analysis  in cowpea (<i>Vigna unguiculata</i> L. Walp.) by using  RAPD markers. Intl. J. Innov. Biotechnol. Biochem. 1(1), 15-23&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000178&pid=S2011-2173201300020001200049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Polan&iacute;a, J.A., I.M. Rao, S. Mej&iacute;a, S.E. Beebe y C. Cajiao.  2012. Caracter&iacute;sticas morfo-fisiol&oacute;gicas del fr&iacute;jol  com&uacute;n (<i>Phaseolus vulgaris</i> L.) relacionadas con la  adaptaci&oacute;n a sequ&iacute;a. Acta Agron. 61(3), 197-206.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000179&pid=S2011-2173201300020001200050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Pompelli, M., R. Barata, H. Vitorino, E. Gon&ccedil;alves, E.  Rolim, M. Santos, J. Almeida, V. Ferreira, E. Lemos  y L. Endres. 2010. Photosynthesis, photoprotection  and antioxidant activity of purging nut under  drought deficit and recovery. Biom. Bioenergy 34  (8), 1207-1215.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000181&pid=S2011-2173201300020001200051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  Pungulani, L.L.M., J.P Millner, W.M. Williams y M.  Banda. 2013. Improvent of leaf wilting scoring in  cowpea (<i>Vigna Sinensis</i> (L.) Walp.): From qualitative  scale to quantitative index. Aust. J. Crop Sci.  7 (9), 1262-1269.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000183&pid=S2011-2173201300020001200052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Qasem, J.R. y K.N. Biftu. 2010. Growth analysis and responses  of cowpea (<i>Vigna Sinensis</i> (L.) Savi ExHassk.  and redroot pigweed (<i>Amaranthus retroflexus</i> L.),  grown in pure and mixed stands, to density and  water stresses. The Open Hortic. J. 2010(3), 21-30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000185&pid=S2011-2173201300020001200053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Reis, G.G. y A.E. Hall. 1987. Rela&ccedil;&otilde;es h&iacute;dricas e atividade  do sistema radicular em <i>E</i><i>ucalyptus camaldulensis</i> Dehn. em condi&ccedil;&otilde;es de campo. Revista &Aacute;rvore  11(1), 43-55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000187&pid=S2011-2173201300020001200054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Rodr&iacute;guez, L. 2006. Implicaciones fisiol&oacute;gicas de la osmorrregulaci&oacute;n  en plantas. Agron. Colomb. 24(1), 28-37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000189&pid=S2011-2173201300020001200055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Sellin A. 1999. Does pre-dawn water potential reflect  conditions of equilibrium in plants and soil water  status? Acta Oecol. 20 (1), 51-59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000191&pid=S2011-2173201300020001200056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>  Singh, S.K. y K.R. Reddy. 2011. Regulation of photosynthesis,  fluorescence, stomatal conductance and  water-use efficiency of cowpea (<i>Vigna unguiculata</i>  (L.) Walp.) under drought. J. Photochem. Photobiol. B: Biol. 105, 40-50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000193&pid=S2011-2173201300020001200057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Subudhi, P.K., D.T. Rosenow y H.T. Nguyen. 2000.  Quantitative trait loci for the stay green trait in  sorghum (<i>Sorghum bicolor</i> L. Moench): consistency  across genetic backgrounds and environments.  Theor. Appl. Genetics. 101,733-741.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000195&pid=S2011-2173201300020001200058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Taiz, L. y E. Zeiger. 2010. Plant physiology. 5<sup>th</sup> ed. Sinauer  Associates, Inc. Redwood City, CA. pp. 644-645.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000197&pid=S2011-2173201300020001200059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Tan, H., M. Tie, Q. Luo, Y. Zhu, J. Lai y H. Li. 2012.  A review of molecular markers applied in cowpea  (<i>Vigna unguiculata</i> L. Walp.) breeding J. Life Sci. 6, 1190-1199&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000199&pid=S2011-2173201300020001200060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>  Tan, H., H. Huang, M. Tie, J. Ma y H. Li. 2013. Comparative  analysis of six DNA extraction methods  in cowpea (<i>Vigna unguiculata</i> L. Walp). J. Agr. Sci. 5(7), 82-90.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000200&pid=S2011-2173201300020001200061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Tardieu, F. y T. Simonneau. 1998. Variability of species  among stomatal control under fluctuating soil water  status and evaporative demand: modeling isohydric  and anisohydric behaviours. J. Exp. Bot. 49, 419-432.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000202&pid=S2011-2173201300020001200062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>  Tausz M., H.S. Ircelj and D. Grill. 2004. The glutathione  system as a stress marker in plant ecophysiology:  is a stress-response concept valid? J. Exp. 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