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<article-id pub-id-type="doi">10.17584/rcch.2016v10i2.5791</article-id>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de la aplicación de reguladores de crecimiento sobre la germinación de semillas de badea (Passiflora quadrangularis L.) en condiciones de invernadero]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of growth regulator application on the germination of badea (Passiflora quadrangularis L.) seeds under greenhouse conditions]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[ABSTRACT Badea is one of the fruits prioritized by the passifloras chain due to its export potential. The seed of this species presents a low germination, leading to require a greater number of seeds and therefore a low efficiency in the production of seedlings. It has been found stimulation in germination with the application of growth regulators with gibberellic acid, indulbutyric acid, zeatin, ethephon and KNO3. The objective of the study was to evaluate the effect of the exogenous application of growth regulators on the germination of badea seeds in greenhouse conditions. The treatments consisted in the application of the following growth regulators: gibberellic acid (400, 800 and 1,200 ppm), indole butyric acid (200, 400 and 600 ppm), zeatin (0.5, 1 and 2 ppm), ethephon (100, 200 and 300 ppm), KNO3 (0.4, 0.6 and 0.8% w/v) and a control. The seeds were established in germination trays with a blonde peat substrate. The percentage of germination (PG), the mean germination time (MGT) and the mean germination rate (MGR) were evaluated. The results showed significant differences within the percentages of germination and the application of 1,200 ppm GA3 and 0.4% potassium nitrate with 54.5% and 59% respectively, the average germination time decreased to 29.4 and 30.3 days and the speed of germination of the badea seed increased to 6.55 and 6.39 seeds/day, respectively. These results will contribute to enhance the application methods with the nurserymen in the propagation of badea in Colombia.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="verdana" size="2"> &nbsp;    <p>Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.17584/rcch.2016v10i2.5791" target="_blank">http://dx.doi.org/10.17584/rcch.2016v10i2.5791</a></p> &nbsp;    <p>    <center> <font size="3"><b>Efecto de la aplicaci&oacute;n de reguladores de crecimiento sobre la germinaci&oacute;n de semillas de badea (<i>Passiflora quadrangularis</i> L.) en condiciones de invernadero</b></font> </center></p> &nbsp;    <p>    <center> <font size="3"><b>Effect of growth regulator application on the germination of badea (<i>Passiflora quadrangularis</i> L.) seeds under greenhouse conditions</b></font> </center></p> &nbsp;    <p>    <center> <b>CARLOS CARRANZA<sup>1,3</sup>,  GERM&Aacute;N CASTELLANOS<sup>1</sup>,  DIEGO DEAZA<sup>1</sup>,  DIEGO MIRANDA<sup>2</sup></b> </center></p>     <p><sup>1</sup> Escuela de Ciencias Agr&iacute;colas, Pecuarias y del Medio Ambiente, Universidad Nacional Abierta y a Distancia (UNAD), Bogot&aacute; (Colombia).    <br><sup>2</sup> Facultad de Ciencias Agrarias, Departamento de Agronom&iacute;a, Universidad Nacional de Colombia, Bogot&aacute; (Colombia).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br><sup>3</sup> Autor para correspondencia: <a href="mailto:carlos.carranza@unad.edu.co">carlos.carranza@unad.edu.co</a></p>     <p>Fecha de recepci&oacute;n: 10-10-2016. Aprobado para publicaci&oacute;n: 24-11-2016.</p> <hr size="1">     <p><b>RESUMEN</b></p>     <p>La badea es una de las frutas priorizadas por la cadena de pasifloras debido a su potencial de exportaci&oacute;n. Las semillas de esta especie presentan una baja germinaci&oacute;n, por lo que se requiere un mayor n&uacute;mero de semillas para cumplir con los pedidos de los viveristas y, por ende, se tiene una baja eficiencia en la producci&oacute;n de pl&aacute;ntulas. Investigaciones sobre el tema han encontrado estimulaci&oacute;n en la germinaci&oacute;n con la aplicaci&oacute;n de fitorreguladores de crecimiento como el &aacute;cido giber&eacute;lico, &aacute;cido indulbutirico, zeatina, ethephon y KNO<sub>3</sub>. El objetivo del estudio fue evaluar el efecto de la aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena de reguladores de crecimiento sobre la germinaci&oacute;n de semillas de badea en condiciones de invernadero. Los tratamientos consistieron en la aplicaci&oacute;n de los siguientes reguladores de crecimiento: &aacute;cido giber&eacute;lico (400, 800 y 1.200 ppm), &aacute;cido indolbutirico (200, 400 y 600 ppm), zeatina (0,5; 1 y 2 ppm), ethephon (100, 200 y 300 ppm), KNO<sub>3</sub> (0,4; 0,6 y 0,8% p/v) y un testigo. Las semillas fueron establecidas en bandejas de germinaci&oacute;n con sustrato turbia rubia. Se evalu&oacute; el porcentaje de germinaci&oacute;n (PG), el tiempo medio de germinaci&oacute;n (TMG) y la velocidad media de germinaci&oacute;n (VMG). La aplicaci&oacute;n de 1.200 ppm de AG3 y nitrato de potasio al 0,4% presentaron los mayores porcentajes de germinaci&oacute;n con 54,5 y 59% respectivamente, disminuyendo el tiempo medio de germinaci&oacute;n con 29,4 y 30,3 d&iacute;as y aumentando la velocidad de germinaci&oacute;n de la semilla de badea con 6,55 y 6,39 semillas/d&iacute;a. Estos resultados contribuir&aacute;n a mejorar la eficiencia de los procesos de reproducci&oacute;n sexual desarrollados por los viveristas que propagan badea en Colombia.</p>     <p><b>Palabras clave adicionales:</b> Passifloraceae, &aacute;cido giber&eacute;lico, nitrato de potasio, exportaci&oacute;n.</p> <hr size="1">     <p><b>ABSTRACT</b></p>     <p>Badea is one of the fruits prioritized by the passifloras chain due to its export potential. The seed of this species presents a low germination, leading to require a greater number of seeds and therefore a low efficiency in the production of seedlings. It has been found stimulation in germination with the application of growth regulators with gibberellic acid, indulbutyric acid, zeatin, ethephon and KNO<sub>3</sub>. The objective of the study was to evaluate the effect of the exogenous application of growth regulators on the germination of badea seeds in greenhouse conditions. The treatments consisted in the application of the following growth regulators: gibberellic acid (400, 800 and 1,200 ppm), indole butyric acid (200, 400 and 600 ppm), zeatin (0.5, 1 and 2 ppm), ethephon (100, 200 and 300 ppm), KNO<sub>3</sub> (0.4, 0.6 and 0.8% w/v) and a control. The seeds were established in germination trays with a blonde peat substrate. The percentage of germination (PG), the mean germination time (MGT) and the mean germination rate (MGR) were evaluated. The results showed significant differences within the percentages of germination and the application of 1,200 ppm GA3 and 0.4% potassium nitrate with 54.5% and 59% respectively, the average germination time decreased to 29.4 and 30.3 days and the speed of germination of the badea seed increased to 6.55 and 6.39 seeds/day, respectively. These results will contribute to enhance the application methods with the nurserymen in the propagation of badea in Colombia.</p>     <p><b>Additional key words:</b> Passifloraceae, gibberellic acid, potassium nitrate, promissory crop, exports.</p> <hr size="1"> &nbsp;    <p><font size="3"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p>Entre las especies de pasifloras en Colombia, la badea (<i>Passiflora quadrangularis</i> L.) se encuentra priorizada por el Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural como fruta promisoria para exportaci&oacute;n por su aceptaci&oacute;n como fruta fresca, jugos y aperitivos dentro de las frutas tropicales. De acuerdo con la FAO (2005), el fruto de badea presenta unas caracter&iacute;sticas de aroma agradable con un sabor dulce y a la vez ligeramente &aacute;cido caracter&iacute;stico de la fruta. El aroma de la badea es dado principalmente por la sustancia geraniol (Montero et al., 2016). En 2013, se present&oacute; en Colombia un &aacute;rea sembrada de 431 ha con una producci&oacute;n de 3.881 t y rendimiento de 14,8 t ha-1 (MADR, 2015).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las hormonas de las plantas incluyen ABA, etileno, auxinas, citoquininas, giber&eacute;linas y brasinoestoroides son sustancias qu&iacute;micas que controlan muchos procesos fisiol&oacute;gicos y bioqu&iacute;micos en plantas (Miransari y Smith, 2014), pueden afectar diferentes actividades en las plantas incluyendo la latencia y germinaci&oacute;n de las semillas (Graeber et al., 2012).</p>     <p>La germinaci&oacute;n de semillas es un proceso en el cual se generan cambios morfol&oacute;gicos y fisiol&oacute;gicos que terminan en el crecimiento del embri&oacute;n (Miransari y Smith, 2014). La germinaci&oacute;n requiere de condiciones espec&iacute;ficas de temperatura, niveles de ox&iacute;geno y luz, con las proporciones adecuadas para cada especie (Corbineau et al., 2014). La semilla absorbe agua, lo que resulta en expansi&oacute;n y elongaci&oacute;n del embri&oacute;n. Cuando la rad&iacute;cula crece fuera de la testa el proceso de germinaci&oacute;n ha terminado (Hermann et al., 2007).</p>     <p>Los compuestos nitrogenados pueden mejorar la germinaci&oacute;n de las semillas en condiciones de salinidad incrementando la absorci&oacute;n de K por ajuste en la relaci&oacute;n K<sup>+</sup>/Na<sup>+</sup> y un incremento en la producci&oacute;n de ATP y en la respiraci&oacute;n en las semillas (Zheng et al., 2009).</p>     <p>La latencia es un mecanismo en el cual las semillas pueden inhibir su germinaci&oacute;n, siendo el embri&oacute;n viable y con las condiciones ambientales favorables. La latencia primaria en algunas ocasiones es causada por el efecto del &aacute;cido absc&iacute;sico durante el desarrollo de la semilla (Miransari y Smith, 2014) las cuales no pueden germinar (Bewley, 1997). La latencia es un rasgo hereditario, pero su intensidad en la cosecha y su mantenimiento despu&eacute;s de la cosecha es regulada por las condiciones ambientales durante el desarrollo y maduraci&oacute;n de semillas en la planta y durante el almacenamiento de semillas (Bewley, 1997). Los par&aacute;metros m&aacute;s importantes que controlan el proceso de latencia en semillas, son cambios a nivel molecular, incluyendo alteraciones de prote&iacute;nas y alteraci&oacute;n hormonal y el balance entre ABA y giber&eacute;linas (Ali-Rachedi et al., 2004; Finch-Savage y Leubner-Metzger 2006; Finkelstein et al., 2008; Graeber et al., 2010). La latencia de las semillas est&aacute; bajo la influencia de las hormonas de las plantas, y de las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas y estructurales de la semilla, tal como, el endospermo, pericarpio del fruto y propiedades de la cubierta seminal (Kucera et al., 2005).</p>     <p>Las giber&eacute;linas son importantes para activar semillas latentes, aunque la hormona no controla la latencia de la semilla (Bewley, 1997; Miransari y Smith, 2009). El ABA puede inhibir la germinaci&oacute;n en ma&iacute;z por afectaci&oacute;n en el ciclo celular (Miransari y Smith, 2014). Por afectar el balance hormonal en la semilla, los par&aacute;metros ambientales incluyendo la salinidad, la acidez, la temperatura y la luz, pueden influenciar la germinaci&oacute;n de las semillas (Ali-Rachedi et al., 2004; Alboresi et al., 2006).</p>     <p>El ABA y las giber&eacute;linas son necesarias para la iniciaci&oacute;n de la latencia y la germinaci&oacute;n de las semillas, respectivamente (Groot y Karssen, 1992; Matilla y Matilla-V&aacute;zquez, 2008). El balance giber&eacute;linas/ABA determina la habilidad de las semillas para germinar o las v&iacute;as necesarias para la germinaci&oacute;n (White et al., 2000; White y Rivin, 2000; Chibani et al., 2006; Finch-Savage y Leubner-Metzger, 2006). El N puede inhibir la latencia en la semilla al disminuir los niveles de ABA en la semilla (Ali-Rachedi et al., 2004; Finkelstein et al., 2008).</p>     <p>De acuerdo con Nascimiento (2000), el etileno estimula la germinaci&oacute;n de semillas y supera la latencia en varias especies. Puede interactuar con la luz y las giberelinas para promover la germinaci&oacute;n de semillas de alfalfa.</p>     <p>El etileno y las giber&eacute;linas afectan el crecimiento de la rad&iacute;cula (Miransari y Smith, 2014). Por otro lado, se ha encontrado que las auxinas presentes en la punta de la rad&iacute;cula de las semillas durante y despu&eacute;s de la germinaci&oacute;n, estimulan un r&aacute;pido crecimiento de las pl&aacute;ntulas (Hentrich et al., 2013). Las auxinas acumuladas en los cotiledones de semillas, son la mayor fuente de auxina durante el crecimiento de las pl&aacute;ntulas (Miransari y Smith, 2014). Aunque las auxinas por s&iacute; solas no son importantes para la germinaci&oacute;n de semillas, su interacci&oacute;n y cruce con las giberelinas y el etileno puede influenciar los procesos de germinaci&oacute;n de semillas y establecimiento (Fu y Harberd, 2003; Chiwocha et al., 2005).</p>     <p>Las giberelinas son necesarias para la producci&oacute;n de la enzima mananasa, la cual es necesaria para la germinaci&oacute;n de la semilla (Wang et al., 2005). Sin embargo, en mutantes deficientes en giberelinas, el etileno puede actuar de manera similar a las giberelinas y las semillas son capaces de germinar completamente en tal situaci&oacute;n (Karssen et al., 1989; Matilla y Matilla-V&aacute;zquez, 2008).</p>     <p>Las citoquininas son hormonas de crecimiento que regulan un amplio rango de comportamientos en la planta incluyendo la germinaci&oacute;n de las semillas. Pueden mejorar la germinaci&oacute;n de las semillas y ayudan a aliviar el estr&eacute;s generado por la salinidad, la sequ&iacute;a, los metales pesados y el estr&eacute;s oxidativo (Khan y Ungar, 1997; Atici et al., 2005; Nikolic et al., 2006; Peleg y Blumwald, 2011).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Las semillas de badea presentan una baja germinaci&oacute;n alrededor del 30% de acuerdo con informaciones suministradas por t&eacute;cnicos y viveristas del departamento del Huila. Puede estar asociada a problemas de latencia ex&oacute;gena (f&iacute;sica y mec&aacute;nica) o fisiol&oacute;gica por altas concentraciones de &aacute;cido absc&iacute;sico (ABA). Esto conlleva a los viveristas a utilizar una mayor cantidad de semillas, para suplir los requerimientos de pl&aacute;ntulas solicitadas por productores de badea en Neiva, Rivera y otros municipios peque&ntilde;os productores de esta fruta, generando retrasos en la entrega de pl&aacute;ntulas y en la siembra de la plantaci&oacute;n de badea.</p>     <p>El objetivo del estudio fue evaluar el efecto de la aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena de reguladores de crecimiento sobre la germinaci&oacute;n de semillas de badea en condiciones de invernadero.</p> &nbsp;    <p><font size="3"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p><b>Ubicaci&oacute;n</b></p>     <p>El ensayo se realiz&oacute; en el invernadero de la Corporaci&oacute;n CEPASS Colombia, ubicado en el municipio de La Plata (Huila). Los frutos fueron recolectados en fincas de productores en el municipio de Neiva y llevados al Laboratorio de Biolog&iacute;a y Microbiolog&iacute;a de la Universidad Nacional Abierta y a Distancia en Bogot&aacute;, se extrajeron las semillas y se dejaron fermentar durante 72 h a temperatura ambiente.</p>     <p><b>Tratamientos y dise&ntilde;o experimental</b></p>     <p>Los tratamientos consistieron en la aplicaci&oacute;n de los siguientes fitorreguladores de crecimiento: &aacute;cido giber&eacute;lico &ge;90% marca SIGMA<sup>&reg;</sup> (400, 800 y 1.200 ppm), &aacute;cido indolbutirico &ge;99% marca SIGMA<sup>&reg;</sup> (200, 400 y 600 ppm), zeatina &ge;95% marca SIGMA<sup>&reg;</sup> (0,5, 1 y 2 ppm), ethephon (Ethrel<sup>&reg;</sup>) (100, 200 y 300 ppm), KNO<sub>3</sub> &ge;95% marca SIGMA<sup>&reg;</sup> (0,4; 0,6 y 0,8% p/v) y un testigo (semillas germinadas con agua destilada). Se estableci&oacute; en un dise&ntilde;o experimental completamente al azar con cuatro repeticiones, la unidad experimental estuvo conformada por 100 semillas.</p>     <p>Las semillas fueron imbibidas en los fitorreguladores a temperatura ambiente por un tiempo de 48 h y sembradas en sustrato turba rubia sin nutrientes (Klasman<sup>&reg;</sup>), en bandejas pl&aacute;sticas de 50 alveolos. Se colocaron en un cuarto oscuro recubierto de pl&aacute;stico negro. Los datos de temperatura y humedad relativa del aire se registraron con un <i>datalogger</i> (marca Extech Instruments<sup>&reg;</sup>). En el cuarto oscuro se present&oacute; una temperatura promedia de 25,2&deg;C y una humedad relativa aire de 92,87%, con un delta de temperatura entre el d&iacute;a y la noche de 15&deg;C. Las bandejas fueron retiradas del cuarto oscuro a los 11 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra (dds) cuando las semillas alcanzaron un 30% de emergencia visible en la superficie del sustrato para as&iacute; evitar etiolaci&oacute;n en las pl&aacute;ntulas y siguiendo las condiciones para la producci&oacute;n de pl&aacute;ntulas, las bandejas se llevaron a un invernadero por tiempo de 40 d&iacute;as con una temperatura promedia de 24,6&deg;C y humedad relativa promedia de 71,4%.</p>     <p><b>Variables medidas</b></p>     <p>Se realiz&oacute; la toma de datos con una frecuencia de 3 d donde se registr&oacute; el n&uacute;mero de semillas germinadas, durante 51 d. Con los datos del muestreo en el tiempo se determinaron los &iacute;ndices: tiempo medio de germinaci&oacute;n (TMG) y velocidad media de germinaci&oacute;n (VMG), siguiendo las ecuaciones (1) y (2), respectivamente.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<center>    <p> <a name="e1"><img src="img/revistas/rcch/v10n2/v10n2a09e1.gif"></a> </p></center>     <p>Donde:    <br> ni = n&uacute;mero de semillas germinadas en la i&eacute;sima toma de datos,    <br> ti = tiempo (d) de la i&eacute;sima toma de datos,    <br> K = tiempo (d) de duraci&oacute;n de la prueba de germinaci&oacute;n,    <br> tomado de Ranal y Santana (2006) y Anjum y Bajwa (2005).</p>     <p>El porcentaje de germinaci&oacute;n (PG) se tom&oacute; como la sumatoria de todas las semillas germinadas en los d&iacute;as del muestreo sobre el total de semillas puestas en la caja de Petri (Anjum y Bajwa, 2005; Ranal y Santana, 2006).</p>     <p><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></p>     <p>Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) y se aplic&oacute; la prueba de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de promedios de Tukey con una confiabilidad del 95%. Para el procesamiento de los datos se utiliz&oacute; el paquete estad&iacute;stico SAS v. 9.2.</p> &nbsp;    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p><b>Porcentaje de germinaci&oacute;n</b></p>     <p>De acuerdo con las condiciones ambientales descritas para el cuarto oscuro y para el invernadero las semillas iniciaron germinaci&oacute;n despu&eacute;s de los 11 d de aplicados los tratamientos. En la <a href="#t1">tabla 1</a>, se presentan los resultados de los tratamientos pregerminativos sobre el porcentaje de germinaci&oacute;n (PG), de semillas de badea. A los 13 dds la AG<sub>3</sub> a 1.200 ppm y el nitrato de potasio 0,4% p/v tuvieron significativamente mayores porcentajes de germinaci&oacute;n: (9,5 y 3%, respectivamente) en comparaci&oacute;n con los tratamientos Zeatina 0,5, 1 y 2 ppm, Etephon 200 y 300 ppm, IBA 400 ppm, nitrato de potasio 0,6% p/v y el testigo.</p>     <center>    <p> <a name="t1"><img src="img/revistas/rcch/v10n2/v10n2a09t1.gif"></a> </p></center>     <p>A los 51 dds el mayor PG de las semillas fue de 59% con el tratamiento con KNO<sub>3</sub> al 0,4% (p/v) seguido por el tratamiento GA<sub>3</sub> 1.200 ppm con 54,5%. Los tratamientos con menor PG fueron Zeatina al 0,5 ppm con el 34% y el testigo con 39%. Aunque estos tratamientos no tuvieron diferencias significativas con el testigo en el &uacute;ltimo muestreo, en la <a href="#f1">figura 1</a> se observa que durante todo el muestreo las semillas tratadas tuvieron mayores PG promedios que el testigo. La baja germinaci&oacute;n de las semillas en todos los tratamientos se puede relacionar con presencia de latencia f&iacute;sica y fisiol&oacute;gica en las semillas, de acuerdo con Ellis et al. (1985) han reportado que las semillas de pasifloras tienen latencia ex&oacute;gena, que es una combinaci&oacute;n de latencia mec&aacute;nica (cubierta seminal restringe el crecimiento radicular) y qu&iacute;mica (inhibidores en la cubierta seminal), por lo cual las semillas tienden a presentar una baja germinaci&oacute;n. Para el caso de las semillas de badea no se observ&oacute; rompimiento de la testa, por lo tanto, se expresa una latencia combinada entre mec&aacute;nica y fisiol&oacute;gica en el cual con la aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena de AG<sub>3</sub> contribuy&oacute; con una mayor germinaci&oacute;n.</p>     <center>     <p><a name="f1"><a href="img/revistas/rcch/v10n2/v10n2a09f1.gif" target="_blank">Figura 1</a></a></p> </center>     <p>El efecto del KNO<sub>3</sub> sobre la germinaci&oacute;n se puede atribuir a que ayuda a romper la latencia en las semillas de badea incrementando la germinaci&oacute;n en un 33% con relaci&oacute;n al testigo. Los nitratos han sido reportados por varios autores como Nonogaki et al. (2010) que los nitratos tambi&eacute;n podr&iacute;an estimular la germinaci&oacute;n a trav&eacute;s de otras v&iacute;as, como las implicadas en el metabolismo de las hormonas o despu&eacute;s de haber sido reducidos a nitrito, pudiendo acelerar el flujo metab&oacute;lico a trav&eacute;s de la v&iacute;a de las pentosas fosfato al incrementar indirectamente la oxidaci&oacute;n de NADPH actuando, as&iacute; como un componente importante de traducci&oacute;n de se&ntilde;ales.</p>     <p><b>Tiempo medio de germinaci&oacute;n</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El tiempo medio de germinaci&oacute;n TMG (<a href="#t2">Tab. 2</a>) fue significativamente menor en los tratamientos con 1.200 ppm AG3 y KNO3. Los tratamientos con mayores TMG fueron los tratamientos con Etephon 4,68&plusmn;0,92 d correspondientes a la concentraci&oacute;n de 100 ppm. La cantidad de etileno incrementa durante la germinaci&oacute;n de muchas semillas de plantas incluyendo trigo, ma&iacute;z, soya y arroz, afectando la tasa de germinaci&oacute;n (Pennazio y Roggero, 1991; Zapata et al., 2004). Algunos estudios indican que durante la etapa final de la germinaci&oacute;n de las semillas el etileno es producido en diferentes especies de plantas y puede contribuir a la germinaci&oacute;n de las semillas despu&eacute;s de la latencia (Miransari y Smith, 2014). Tambi&eacute;n se puede considerar en la respuesta un mecanismo por el cual el etileno inhibe el efecto adverso del ABA sobre la latencia de la semilla puede ser atribuido a la producci&oacute;n de OH en el apoplasma (Chen, 2008; Muller et al., 2009; Graeber et al., 2010). En el experimento las semillas presentaron un mayor TMG con la aplicaci&oacute;n de Etephon, lo cual para el caso de la badea si estimula la germinaci&oacute;n, pero con un mayor tiempo de germinaci&oacute;n.</p>     <center>     <p><a name="t2"><a href="img/revistas/rcch/v10n2/v10n2a09t2.gif" target="_blank">Tabla 2</a></a></p> </center>     <p><b>Velocidad media de germinaci&oacute;n</b></p>     <p>Se present&oacute; una mayor VMG (<a href="#t2">Tab. 2</a>) con la aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena de 1.200 ppm de GA<sub>3</sub> y 0,4% de KNO3 con 6,55 y 6,39 semillas/d&iacute;a respectivamente. En general las aplicaciones de IBA y etephon disminuyeron la velocidad media de germinaci&oacute;n. Las menores VMG se obtuvieron con la aplicaci&oacute;n de IBA 200, 400, y 600 ppm, y etephon a 200 y 300 ppm.</p>     <p>En otras pasifloras como la granadilla se han encontrado que concentraciones de 400 ppm de GA<sub>3</sub> y KNO<sub>3</sub> al 0,1% presentaron los mejores porcentajes de germinaci&oacute;n (C&aacute;rdenas, 2011). El nitrato y las giberelinas son importantes para mejorar la germinaci&oacute;n. El nitrato de potasio puede actuar sobre el funcionamiento del fitocromo en semillas fotobl&aacute;sticas (Murdoch y Elis, 2002). El nitrato de potasio tambi&eacute;n puede actuar como fuente de N y potenciador en la germinaci&oacute;n de semillas (Miransari y Smith, 2014). De acuerdo con Caldeira (1989) la acci&oacute;n del ion nitrato dentro de la planta: en primer lugar, estimula la producci&oacute;n end&oacute;gena de etileno a partir de la reducci&oacute;n de nitratos a la metionina, la segunda explicaci&oacute;n est&aacute; relacionada con altas concentraciones de nitrato que puede causar estr&eacute;s f&iacute;sico y qu&iacute;mico, estimulando la producci&oacute;n end&oacute;gena de etileno.</p>     <p>El NO<sub>3</sub> se reduce para incorporar el N en amino&aacute;cidos y prote&iacute;nas, siendo transformado en enzimas como el nitrito reductasa, nitrato reductasa y glutamina sintetasa. De igual forma, las giberelinas mejoran la germinaci&oacute;n de semillas por inhibici&oacute;n de la actividad de ABA (Miransari y Smith, 2014). Esto es causado por la activaci&oacute;n en el catabolismo de las enzimas e inhibici&oacute;n de las v&iacute;as de bios&iacute;ntesis relacionadas, lo que tambi&eacute;n disminuye las cantidades de ABA (Toyomasu et al., 1994; Atia et al., 2009).</p>     <p>Con la aplicaci&oacute;n de zeatina se present&oacute; una baja respuesta en la VMG con la respuesta de la citoquinina en la germinaci&oacute;n de las semillas se encuentra atribuida a varias funciones de las citoquininas en diferentes tipos de c&eacute;lulas (Werner et al., 2001). Miransari y Smith (2014) indican que la aplicaci&oacute;n de citoquinina N-6 benzil adenina disminuy&oacute; la respuesta de etileno en mutantes resistentes a ABA, lo que indica que no todos los efectos de la citoquinina sobre la germinaci&oacute;n de semillas act&uacute;an sobre la actividad del etileno.</p> &nbsp;    <p><font size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p>Los fitorreguladores de crecimiento giberelinas a 1.200 ppm y nitrato de potasio al 4% aumentaron el porcentaje y la velocidad de germinaci&oacute;n de las semillas de badea.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p>Los autores agradecen a la Universidad Nacional Abierta y a Distancia por la financiaci&oacute;n del proyecto. A la Corporaci&oacute;n CEPASS Huila por facilitar los invernaderos para el desarrollo del ensayo.</p> &nbsp;    <p><font size="3"><b>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></font></p>     <!-- ref --><p>Alboresi, A., C. Gestin, M.T. Leydecker, M. Bedu, C. Meyer y H.N. Truong. 2006. Nitrate a signal relieving seed dormancy in <i>Arabidopsis</i>. Plant Cell Environ. 28, 500-512. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1111/tpj.12186" target="_blank">10.1111/tpj.12186</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044607&pid=S2011-2173201600020000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Ali-Rachedi, S., D. Bouinot, M.H. Wagner, M. Bonnet, B. Sotta, P. Grappin y M. Jullien. 2004. Changes in endogenous abscisic acid levels during dormancy rel&eacute;ase and maintenance of mature seeds: studies with the Cape Verde Islands ecotype the dormant model of <i>Arabidopsis thaliana</i>. Planta 219, 479-488. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1007/s00425-004-1251-4" target="_blank">10.1007/s00425-004-1251-4</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044608&pid=S2011-2173201600020000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Anjum, T. y R. Bajwa. 2005. Importance of germination indices in interpretation of allelochemical effects. Intern. J. Agric. Biol. 7(3), 417-419. Doi: <a href="http://revistas.uptc.edu.co/index.php/ciencias_horticolas/article/view/5791" target="_blank">1560-8530/2005/07-3-417-419</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044609&pid=S2011-2173201600020000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Atia, A., A. Debez, Z. Barhoumi, A. Smaoui y C. Abdelly. 2009. ABA GA3, and nitrate may control seed germination of <i>Crithmum maritimum</i> (Apiaceae) under saline conditions. Com. Rend. Biol. 332, 704-710. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.crvi.2009.03.009" target="_blank">10.1016/j.crvi.2009.03.009</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044610&pid=S2011-2173201600020000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Atici, O., G. Agar y P. Battal. 2005. Changes in phytohormone contents in chickpea seeds germinating under lead or zink stress. Biol. Plant. 49, 215-222. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1007/s10535-005-5222-9" target="_blank">10.1007/s10535-005-5222-9</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044611&pid=S2011-2173201600020000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Bewley, J.D. 1997. Seed germination and dormancy. Plant Cell 9, 1055-1066.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044612&pid=S2011-2173201600020000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Caldeira, M.L. 1989. Indu&ccedil;&atilde;o qu&iacute;mica do florescimento em manga. pp. 63-157. En: Anais Simp&oacute;sio sobre Mangicultura 2. FUNEP, Jaboticabal, Brasil.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044614&pid=S2011-2173201600020000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Corbineau, F., Q. Xia, C. Bailly y H. El-Maarouf-Bouteau. 2014. Ethylene, a key factor in the regulation of seed dormancy. Front. Plant Sci. 5, 1-13. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.3389/fpls.2014.00539" target="_blank">10.3389/fpls.2014.00539</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044616&pid=S2011-2173201600020000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Chen, J., 2008. Heterotrimeric G-proteins in plant development. Front. Biosci. 13, 3321-3333.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044617&pid=S2011-2173201600020000900009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Chibani, K., S. Ali-Rachedi, C. Job, D. Job, M. Jullien y P. Grappin. 2006. Proteomic analysis of seed dormancy in Arabidopsis. Plant Physiol. 142, 1493-1510. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1104/pp.106.087452" target="_blank">10.1104/pp.106.087452</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044619&pid=S2011-2173201600020000900010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Chiwocha, S.D., A.J. Cutler, S.R. Abrams, S.J. Ambrose, J. Yang, A.R. Ross y A.R. Kermode. 2005. The etr1- 2 mutation in <i>Arabidopsis thaliana</i> affects the abscisic acid, auxin, cytokinin and gibberellin metabolic pathways during maintenance of seed dormancy, moistchilling and germination. Plant J. 42, 35-48. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-313X.2005.02359.x" target="_blank">10.1111/j.1365-313X.2005.02359.x</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044620&pid=S2011-2173201600020000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Ellis, R., T. Hong y E. Roberts. 1985. Handbook of seed technology for genebanks. Vol. II: Compendium of specific germination. Information and test recommendations. International Board for Plant Genetic Resources (IBPGR), Roma.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044621&pid=S2011-2173201600020000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>FAO. 2005. Commodities and trade division, Food and Agriculture Organization of the United Nations, Roma.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044623&pid=S2011-2173201600020000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Finch-Savage, W. y G. Leubner-Metzger. 2006. Seed dormancy and the control of germination. New Phytol. 171, 501-523. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1104/pp.106.087452" target="_blank">10.1104/pp.106.087452</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044625&pid=S2011-2173201600020000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Finkelstein, R., W. Reeves, T. Ariizumi y C. Steber. 2008. Molecular aspects of seed dormancy. Ann. Rev. Plant Biol. 59, 387-415. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1146/annurev.arplant.59.032607.092740" target="_blank">10.1146/annurev.arplant.59.032607.092740</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044626&pid=S2011-2173201600020000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Fu, X. y N.P. Harberd. 2003. Auxin promotes Arabidopsis root growth by modulating gibberellin response. Nature 421, 740-743. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1038/nature01387" target="_blank">10.1038/nature01387</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044627&pid=S2011-2173201600020000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Graeber, K., A. Linkies, K. Muller, A. Wunchova, A. Rott y G. Leubner-Metzger. 2010. Cross-species approaches to seed dormancy and germination: conservation and biodiversity of ABA-regulated mechanisms and the Brassicaceae DOG1 genes. Plant Mol. Biol. 73, 67-87. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1007/s11103-009-9583-x" target="_blank">10.1007/s11103-009-9583-x</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044628&pid=S2011-2173201600020000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Graeber, K., K. Nakabayashi, E. Miatton, G. Leubner-Metzger y W. Soppe. 2012. Molecular mechanisms of seed dormancy. Plant Cell Environ. 35, 1769-1786. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-3040.2012.02542.x" target="_blank">10.1111/j.1365-3040.2012.02542.x</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044629&pid=S2011-2173201600020000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Groot, S.P.C. y C.M. Karssen. 1992. Dormancy and germination of abscisic acid deficient tomato seeds: studies with the sitiens mutant. Plant Physiol. 99, 952-958. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1104/pp.99.3.952" target="_blank">10.1104/pp.99.3.952</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044630&pid=S2011-2173201600020000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>Hermann, K., J. Meinhard, P. Dobrev, A. Linkies, B. Pesek, B. He&beta;, I. Machackova, U. Fischer y G. Leubner-Metzger. 2007. 1-Aminocyclopropane-1-carboxylic acid and abscisic acid during the germination of sugar beet (Beta <i>vulgaris</i> L.) - A comparative study of fruits and seeds. J. Exp. Bot. 58, 3047-3060. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1093/jxb/erm162" target="_blank">10.1093/jxb/erm162</a></p>     <!-- ref --><p>Karssen, C.M., S. Zag&oacute;rsky, J. Kepczynski y S.P.C. Groot. 1989. Key role for endogenous gibberellins in the control of seed germination. Ann. Bot. 63, 71-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044632&pid=S2011-2173201600020000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p>Kenanoglu, B.B., I. Demir, K. Mavi, H. Yetisir y D. Keles. 2007. Effect of priming of germination of <i>Lagenaria siceraria</i> genotypes at low temperatures. Tarim Bilimleri Dergisi 12(3), 169-175.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044634&pid=S2011-2173201600020000900022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Khan, A.A. y X.L. Huang. 1988. Synergistic enhancement of ethylene production and germination with kinetin and1-aminocyclopropane-1carboxylic acid in lettuce seeds exposed to salinity stress. Plant Physiol. 87, 847- 852. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1104/pp.87.4.847" target="_blank">10.1104/pp.87.4.847</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044636&pid=S2011-2173201600020000900023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Khan, M.A. e I.A. Ungar. 1997. Alleviation of seed dormancy in the desert forb <i>Zygophyllum simplex</i> L. from Pakistan. Ann. Bot. 80, 395-400. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1006/anbo.1997.0449" target="_blank">10.1006/anbo.1997.0449</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044637&pid=S2011-2173201600020000900024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Kucera, B., M.A. Cohn y G. Leubner-Metzger. 2005. Plant hormone interactions during seed dormancy release and germination. Seed Sci. Res. 15, 281-307. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1079/SSR2005218" target="_blank">10.1079/SSR2005218</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044638&pid=S2011-2173201600020000900025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Hentrich, M., C. Boettcher y P. Duchting. 2013. The jasmonic acid signaling pathway is linked to auxin homeostasis through the modulation of YUCCA8 and YUCCA9 gene expression. Plant J. 74, 626-637. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1111/tpj.12152" target="_blank">10.1111/tpj.12152</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044639&pid=S2011-2173201600020000900026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>MADR. 2015. Bolet&iacute;n cadena de pasifloras. En: Sistema de Informaci&oacute;n de Gesti&oacute;n y Desempe&ntilde;o de Organizaciones de Cadenas. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, Bogot&aacute;    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044640&pid=S2011-2173201600020000900027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->.</p>     <!-- ref --><p>Matilla, A.J. y M.A. Matilla-V&aacute;zquez. 2008. Involvement of ethylene in seed physiology. Plant Sci. 175, 87-97. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.plantsci.2008.01.014" target="_blank">10.1016/j.plantsci.2008.01.014</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044642&pid=S2011-2173201600020000900028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Miransari, M. y D.L. Smith. 2014. Plant hormones and seed germination. Environ. Exp. Bot. 99, 110-121. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.envexpbot.2013.11.005" target="_blank">10.1016/j.envexpbot.2013.11.005</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044643&pid=S2011-2173201600020000900029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Montero, D.AV., M.O.M. Marques, L.M.M. Meletti, M.H. Van Kampen y S.C. Polozzi. 2016. Floral scent of Brazilian <i>Passiflora</i>: five species analised by dynamic headspace. Anais Acad. Bras. Ci&ecirc;nc. 88(3), 1191-1200. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1590/0001-3765201620150285" target="_blank">10.1590/0001-3765201620150285</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044644&pid=S2011-2173201600020000900030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Muller, K., A. Linkies, R.A.M Vreeburg, S.C. Fry, A. Krieger- Liszkay y G. Leubner-Metzger. 2009. In vivo cell wall loosening by hydroxyl radicals during cress (<i>Lepidium sativum</i> L.) seed germination and elongation growth. Plant Physiol. 150, 1855-1865. Doi: <a href="http://revistas.uptc.edu.co/index.php/ciencias_horticolas/article/view/5791" target="_blank">101104/pp.109.139204</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044645&pid=S2011-2173201600020000900031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Murdoch, A.J. y R.H. Ellis. 2000. Dormancy, viability and longevity. pp. 183-214. En: Ferner, M. (ed.). Seeds: the ecology of regeneration in plants communities. CAB Internacional, Wallingford, UK. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1079/9780851994321.0183" target="_blank">10.1079/9780851994321.0183</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044646&pid=S2011-2173201600020000900032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Nascimento, W.M. 2000. Envolvimento do etileno na germina&ccedil;&atilde;o de sementes. Rev. Bras. Fisiol. Veg. 12, 163-174.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044647&pid=S2011-2173201600020000900033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Nikolic, R., N. Mitic, R. Miletic y M. Neskovic. 2006. Effects of cytokinins on in vitro seed germination and early seedling morphogenesis in <i>Lotus corniculatus</i> L. J. Plant Growth Regul. 25, 187-194. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1007/s00344-005-0129-4" target="_blank">10.1007/s00344-005-0129-4</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044649&pid=S2011-2173201600020000900034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Nonogaki, H., G.W. Bassel y D. Bewley. 2010. Germination - still a mystery. Plant Sci. 179, 574-581. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.plantsci.2010.02.010" target="_blank">10.1016/j.plantsci.2010.02.010</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044650&pid=S2011-2173201600020000900035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Peleg, Z. y E. Blumwald. 2011. Hormone balance and abiotic stress tolerance in crop plants. Curr. Opin. Plant Biol. 14, 290-295. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1016/j.pbi.2011.02.001" target="_blank">10.1016/j.pbi.2011.02.001</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044651&pid=S2011-2173201600020000900036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Pennazio, S. y P. Roggero. 1991. Effects of exogenous salicylate on basal and stress induced ethylene formation in soybean. Biol. Plant. 33, 58-65. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1007/BF02873789" target="_blank">10.1007/BF02873789</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044652&pid=S2011-2173201600020000900037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Ranal, M. y D.G. de Santana. 2006. How and why to measure the germination process? Rev. Bras. Bot. 29(1), 1-11. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1590/S0100-84042006000100002" target="_blank">10.1590/S0100-84042006000100002</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044653&pid=S2011-2173201600020000900038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Seo, M., E. Nambara, G. Choi y S. Yamaguchi. 2009. Interaction of light and hormone signals in germinating seeds. Plant Mol. Biol. 69, 463-472. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1007/s11103-008-9429-y" target="_blank">10.1007/s11103-008-9429-y</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044654&pid=S2011-2173201600020000900039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Taiz, L. y E. Zeiger. 2004. Fisiolog&iacute;a vegetal. 3<sup>a</sup> ed. Artmed, Porto Alegre, Brasil.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044655&pid=S2011-2173201600020000900040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Toyomasu, T., H. Yamane, N. Murofushi y Y. Inoue. 1994. Effects of exogenously applied gibberellin and red light on the endogenous levels of abscisic acid in photoblastic lettuce seeds. Plant Cell Physiol. 35, 127-129.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044657&pid=S2011-2173201600020000900041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>     <!-- ref --><p>Wang, A.X., X.F. Wang, Y.F. Ren, X.M. Gong y J.D. Bewley. 2005a. Endo-bmannanase and b-mannosidase activities in rice grains during and following germination, and the influence of gibberellin and abscisic acid. Seed Sci. Res. 15, 219-227. Doi: <a href="http://dx.doi.org/10.1079/SSR2005212" target="_blank">10.1079/SSR2005212</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5044659&pid=S2011-2173201600020000900042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>Wang, X., X. Li, J. Meisenhelder, T. Hunter, S. Yoshida, T. Asami y J. Chory. 2005b. Autoregulation and homodimerization are involved in the activation of the plant steroid receptor BRI1. Develop. Cell 8, 855-865. 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