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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Taking peritoneal fluid cultures during the first surgical intervention in patients with peritonitis is controversial due to its limited clinical utility. It is useful only in epidemiological studies. Our work was done in order to determine which bacteria are more commonly found in community acquired secondary peritonitis and to disclose the resistance patterns of these pathogens to the more commonly used antibiotics at our institution. Materials and methods: Retrospective and descriptive study done in Medellín, Colombia, at Clínica CES on patients that underwent surgery for secondary peritonitis from January 2005 through April 2010. Culture samples analyzed were the ones taken in the first surgical intervention. Results: We reviewed 319 clinical charts; among these, only 83 met the inclusion criteria. The principal cause of peritonitis was acute appendicitis (26%). There was no growth in 49% of the cultures taken. In cultures with bacterial growth, the most common isolate was E. coli (24%). Resistance to the antibiotic empirically used was 16%. E.coli showed high resistance rates to trimetropimsulfamethoxazol, ampicillin, ciprofloxacillin, ampicillin/ sulbactam, and gentamicin. Discussion: Taking samples for culture during the first intervention does not modify the definitive antibiotic therapy, and much frequently many of them do not produce isolate. There were high rates of resistance to trimetropimsulfametoxazol, ampicillin, ciprofloxacillin, ampicillin/sulbactam and gentamicin, thus they should not be used as empiric therapy. Taking samples for culture at first surgical intervention is useful to identify local flora and resistance patterns.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font size="2" face="Verdana">  <h3>    <center>Microbiolog&iacute;a de la peritonitis secundaria adquirida en la comunidad, Cl&iacute;nica CES</center></h3> <h4>    <center>Microbiology of community acquired secondary peritonitis at Clinica CES, Medell&iacute;n, Colombia</center></h4>    <center>       <p>Sergio D&iacute;az<sup>1</sup>, Diana Carolina R&iacute;os<sup>2</sup>, Felipe Sol&oacute;rzano<sup>2</sup>, Carlos Andr&eacute;s Calle<sup>2</sup>, Diego Penagos<sup>2</sup>, Rogelio Matallana<sup>1</sup>, Juan David Mart&iacute;nez<sup>1</sup>, Luis Felipe Vanegas<sup>1</sup></p> </center>     <p><sup>1</sup> M&eacute;dico, especialista en Cirug&iacute;a General; docente universitario,   Cl&iacute;nica CES, Medell&iacute;n, Colombia.    <br>   <sup>2</sup> M&eacute;dico, residente de Cirug&iacute;a General, Universidad CES, Medell&iacute;n, Colombia.</p>     <p><b>Correspondencia</b>: Diana Rios, MD Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:dianar34@hotmail.com">dianar34@hotmail.com</a> Medell&iacute;n, Colombia</p>     <p><b><i>Fecha de recibido</i></b>: 29 de septiembre de 2011. <i><b>Fecha de aprobaci&oacute;n</b></i>: 31 de octubre de 2011.</p> <hr size> <h4>Resumen </h4>     <p><b><i>Introducci&oacute;n</i></b>. La toma de cultivos durante la primera intervenci&oacute;n quir&uacute;rgica en pacientes operados por peritonitis es controvertida, pues su utilidad cl&iacute;nica es limitada, excepto en el &aacute;mbito epidemiol&oacute;gico.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Se llev&oacute; a cabo este trabajo con el objetivo de describir los g&eacute;rmenes aerobios m&aacute;s frecuentemente encontrados en la peritonitis secundaria, adquirida en la comunidad, y determinar su resistencia a los antibi&oacute;ticos usados m&aacute;s com&uacute;nmente en forma emp&iacute;rica. </p>     <p><i><b>Materiales y m&eacute;todos</b></i>. Se trata de un estudio descriptivo, retrospectivo, realizado en la Cl&iacute;nica CES de Medell&iacute;n, en pacientes operados entre enero de 2005 y abril de 2010, con diagn&oacute;stico de peritonitis secundaria. Se analiz&oacute; el resultado del cultivo tomado en la primera cirug&iacute;a. </p>     <p><b><i>Resultados</i></b>. Se revisaron 319 historias. De ellas, 83 cumpl&iacute;an los criterios de inclusi&oacute;n. La principal causa de peritonitis fue la apendicitis aguda (26 %). En el 49 % de los cultivos no creci&oacute; ning&uacute;n germen. Cuando hubo crecimiento, el germen aislado con mayor frecuencia fue Escherichia coli (24 %). La resistencia al antibi&oacute;tico usado en forma emp&iacute;rica fue de 16 %. Escherichia coli present&oacute; altas resistencias a trimetoprim-sulfametoxazol, ampicilina, ampicilina-sulbactam, ciprofloxacina y gentamicina. </p>     <p><b><i>Discusi&oacute;n</i></b>. La toma de cultivos aerobios durante la primera intervenci&oacute;n quir&uacute;rgica, no modifica el tratamiento antibi&oacute;tico definitivo de los pacientes y con mucha frecuencia no se obtiene aislamiento. Se encontraron altas tasas de resistencia a trimetoprim-sulfametoxazol, ampicilina, ampicilina-sulbactam, ciprofloxacina y gentamicina, por lo cual no deben usarse en forma emp&iacute;rica. La toma de cultivos se recomienda para la identificaci&oacute;n de la flora local y su perfil de resistencia.</p>     <p><b><i>Palabras clave</i></b>: peritonitis; infecci&oacute;n; microbiolog&iacute;a; farmacorresistencia bacteriana.</p> <hr size> <h4>Abstract </h4>     <p><b><i>Introduction</i></b>: Taking peritoneal fluid cultures during the first surgical intervention in patients with peritonitis is controversial due to its limited clinical utility. It is useful only in epidemiological studies. Our work was done in order to determine which bacteria are more commonly found in community acquired secondary peritonitis and to disclose the resistance patterns of these pathogens to the more commonly used antibiotics at our institution. </p>     <p><b><i>Materials and methods</i></b>: Retrospective and descriptive study done in Medell&iacute;n, Colombia, at Cl&iacute;nica CES on patients that underwent surgery for secondary peritonitis from January 2005 through April 2010. Culture samples analyzed were the ones taken in the first surgical intervention. </p>     <p><b><i>Results</i></b>: We reviewed 319 clinical charts; among these, only 83 met the inclusion criteria. The principal cause of peritonitis was acute appendicitis (26%). There was no growth in 49% of the cultures taken. In cultures with bacterial growth, the most common isolate was E. coli (24%). Resistance to the antibiotic empirically used was 16%. E.coli showed high resistance rates to trimetropimsulfamethoxazol, ampicillin, ciprofloxacillin, ampicillin/ sulbactam, and gentamicin. </p>     <p><b><i>Discussion</i></b>: Taking samples for culture during the first intervention does not modify the definitive antibiotic therapy, and much frequently many of them do not produce isolate. There were high rates of resistance to trimetropimsulfametoxazol, ampicillin, ciprofloxacillin, ampicillin/sulbactam and gentamicin, thus they should not be used as empiric therapy. Taking samples for culture at first surgical intervention is useful to identify local flora and resistance patterns. </p>     <p><b><i>Key words</i></b>: peritonitis; infection; microbiology; drug resistance, bacterial.</p> <hr size> <h4>Introducci&oacute;n </h4>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La peritonitis corresponde al proceso inflamatorio del peritoneo causado por agentes irritantes como bacterias, hongos, virus, talco, medicamentos, granulomas y cuerpos extra&ntilde;os <sup>1</sup>. Dentro del espectro cl&iacute;nico de la peritonitis, &eacute;sta se puede clasificar de acuerdo con su fisiopatolog&iacute;a, en primaria, secundaria o terciaria. La peritonitis secundaria es el resultado de un proceso inflamatorio en la cavidad peritoneal generado por perforaci&oacute;n, inflamaci&oacute;n o gangrena de una estructura intraabdominal o retroperitoneal <sup>2</sup>. </p>     <p>El estudio de microbiolog&iacute;a de las infecciones intraabdominales complicadas con perforaci&oacute;n visceral, revela predominio de los organismos anaerobios y aerobios polimicrobianos que, generalmente, corresponden a la flora normal del tubo digestivo donde, seg&uacute;n su localizaci&oacute;n, puede aumentar o disminuir la cantidad de microorganismos. En un adulto normal, se encuentra poca concentraci&oacute;n de bacterias en el est&oacute;mago y en el resto de las v&iacute;as digestivas altas (103 a 106 por gramo), que aumenta hacia el intestino distal: en el &iacute;leon terminal (105 a 108 por gramo) y el colon (108 a 1011 por gramo) <sup>3-8</sup>; los anaerobios obligados son unas 100 a 1.000 veces m&aacute;s predominantes que los aerobios <sup>7,9</sup>. </p>     <p>En el manejo integral de la peritonitis secundaria o quir&uacute;rgica, es bien conocida la necesidad de eliminar la causa contaminante, reducir el in&oacute;culo bacteriano y prevenir la persistencia o recurrencia de la sepsis. Sin embargo, esto no s&oacute;lo se logra con el tratamiento quir&uacute;rgico y multidisciplinario, sino tambi&eacute;n, con el adecuado tratamiento antibi&oacute;tico. </p>     <p>Para lograr esto, es importante diferenciar el concepto de peritonitis instaurada en la comunidad versus la hospitalaria, ya que en esta &uacute;ltima se aumenta el riesgo de infecciones con bacterias multirresistentes <sup>10</sup>. Asimismo, debido al aumento de los patrones de resistencia antimicrobiana en las infecciones provenientes de la comunidad, es cada vez m&aacute;s importante conocer las sensibilidades locales a los diferentes antibi&oacute;ticos usados emp&iacute;ricamente. Si la resistencia de un pat&oacute;geno frecuentemente aislado en la comunidad es significativa (de 10 a 20 % de los aislamientos), se recomienda hacer cultivos de rutina en pacientes con peritonitis de bajo riesgo, como por apendicitis perforada <sup>11</sup>. </p>     <p>Por otro lado, en los cultivos de peritonitis, los laboratorios generalmente s&oacute;lo reportan uno o dos microorganismos por muestra, cuando en los estudios de investigaci&oacute;n se pueden encontrar entre 5 y 10 microorganismos <sup>4,12</sup>, el 25 a 50 % de los cultivos no muestran crecimiento alguno y el 50 a 57 % de los aislamientos corresponden a E. coli <sup>7,12</sup>. Adem&aacute;s, en las instituciones hospitalarias no se hacen cultivos para anaerobios de forma rutinaria, los cuales tienen un gran peso en la microbiolog&iacute;a y la fisiopatolog&iacute;a de la enfermedad. </p>     <p>En la Cl&iacute;nica CES no existen estudios particulares encaminados a identificar los g&eacute;rmenes m&aacute;s comunes y las resistencias bacterianas en las peritonitis originadas en el &aacute;mbito extrahospitalario, no se acostumbra tomar cultivos rutinarios para infecciones intraabdominales en casos de bajo riesgo, por el conocimiento de la flora intestinal y la poca influencia en el tratamiento antibi&oacute;tico definitivo, adem&aacute;s de considerarse opcionales, seg&uacute;n las gu&iacute;as de la Infectious Diseases Society of America <sup>11</sup>. Sin embargo, es importante conocer el tipo de microorganismos de la instituci&oacute;n y su sensibilidad a los antibi&oacute;ticos usados en nuestra comunidad para este tipo de infecciones, compararlos con lo encontrado en el resto del mundo y definir si es necesaria la toma de cultivos rutinarios seg&uacute;n los resultados obtenidos. </p> <h4>Materiales y m&eacute;todos </h4>     <p>Se hizo un estudio descriptivo y retrospectivo con todos los pacientes que ingresaron por urgencias a la Cl&iacute;nica CES, de enero de 2005 a abril de 2010, llevados a cirug&iacute;a para drenaje de peritonitis o absceso peritoneal adquiridos en la comunidad. Se realiz&oacute; una revisi&oacute;n manual y detallada de las historias cl&iacute;nicas, recolectando los datos de las variables incluidas en el instrumento de recolecci&oacute;n. </p>     <p>Se excluyeron todos los pacientes en cuyas muestras no se hubiera practicado tinci&oacute;n de Gram y cultivo en la primera intervenci&oacute;n, que tuvieran peritonitis secundaria a un procedimiento quir&uacute;rgico o con alg&uacute;n tipo de intervenci&oacute;n intraabdominal previa, aquellos con m&aacute;s de 48 horas de estancia hospitalaria previa al drenaje de la peritonitis, con trauma penetrante o exposici&oacute;n previa a antibi&oacute;ticos por otras razones. </p>     <p>Por protocolo, las muestras para la tinci&oacute;n de Gram y cultivo se tomaron durante la primera inspecci&oacute;n de la cavidad abdominal, siempre despu&eacute;s de una adecuada asepsia y antisepsia quir&uacute;rgica, para evitar contaminaci&oacute;n por pat&oacute;genos hospitalarios, y se cultivaron en agar sangre y medio de MacConkey para aerobios. </p> <h4>Resultados </h4>     <p>Se revisaron 319 historias de la base de datos de la cl&iacute;nica. Para la inclusi&oacute;n en el trabajo, se tuvo en cuenta el resultado del cultivo de la primera intervenci&oacute;n practicada. De las 319 historias, 83 cumplieron los criterios de inclusi&oacute;n. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>De los pacientes incluidos, 54,2 % eran mujeres y 45,8 %, hombres, con edad promedio de 53,6 a&ntilde;os (DE=21,8). El 50,5 % de los pacientes no ten&iacute;a antecedentes de importancia y el 22,3 % refiri&oacute; hipertensi&oacute;n arterial sist&eacute;mica. </p>     <p>El principal diagn&oacute;stico posoperatorio fue el de apendicitis aguda (26 %); en segundo lugar estuvo la enfermedad p&eacute;lvica inflamatoria (12 %), seguida por la diverticulitis y la obstrucci&oacute;n intestinal, (11 % cada una) (<a href="#figura1">figura 1</a>). </p>     <p>    <center><a name="figura1"></a>       <br> <img src="img/revistas/rcci/v27n1/v27n1a5f1.gif"></center></p>     <p>El 76 % de los pacientes present&oacute; peritonitis purulenta, 66 % de ellos de los cuatro cuadrantes. En todos los casos se usaron antibi&oacute;ticos en forma emp&iacute;rica. El m&aacute;s usado fue ampicilina-sulbactam (69 %) seguido por la combinaci&oacute;n de ciprofloxacina m&aacute;s metronidazol (17 %) (<a href="#figura2">figura 2</a>).</p>     <p>    <center><a name="figura2"></a>    <br> <img src="img/revistas/rcci/v27n1/v27n1a5f2.gif"></center></p>     <p> En 49 % de las coloraciones de Gram, no se observ&oacute; ning&uacute;n microorganismo, en 31 % hubo flora mixta y en 20 % se aisl&oacute; un microorganismo. De estos aislamientos (20 %), 44% correspondi&oacute; a un bacilo Gram negativo y 25 %, a un coco Gram positivo (<a href="#figura3">figura 3</a>). </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="figura3"></a>     <br> <img src="img/revistas/rcci/v27n1/v27n1a5f3.gif"></center>     <p>En el cultivo para aerobios, en 49 % de los casos no se obtuvo crecimiento, en 13 % se obtuvo flora mixta y en 38 % se aisl&oacute;, al menos, un germen. De estos g&eacute;rmenes, el m&aacute;s com&uacute;n fue E. coli (68 %), seguido por Klebsiella pneumoniae (10 %) y, en tercer lugar, Pseudomonas aeruginosa (6 %) y Candida albicans (6 %) (<a href="#figura4">figura 4</a>). </p>     <p>    <center><a name="figura4"></a>    <br> <img src="img/revistas/rcci/v27n1/v27n1a5f4.gif"></center></p>     <p>Si se tiene en cuenta solamente el diagn&oacute;stico de apendicitis (el m&aacute;s com&uacute;n), se encuentra que en 32 % de los cultivos no se aisl&oacute; ning&uacute;n germen. En los que s&iacute; se aisl&oacute;, el m&aacute;s frecuente fue E. coli (32 %), seguido por flora mixta (12 %) y Pseudomonas spp. (8 %). </p>     <p>Analizando solamente los casos de enfermedad p&eacute;lvica inflamatoria, en 80 % no se obtuvo crecimiento. El restante 20 % qued&oacute; dividido entre E. coli (10 %) y flora mixta (10 %). </p>     <p>En los cultivos en que se aisl&oacute;, al menos, un germen (38 %), la resistencia al antibi&oacute;tico usado emp&iacute;ricamente fue de 16 %. De estos cultivos con resistencia, los antibi&oacute;ticos a los que con mayor frecuencia se present&oacute; resistencia fueron: ampicilina (23 %), trimetoprimsulfametoxasol (23 %), ciprofloxacina (16 %) y, en cuarto lugar, ampicilina-sulbactam (10 %) y gentamicina (10 %) (figura 5).</p>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<center><a name="figura5"></a>    <br> <img src="img/revistas/rcci/v27n1/v27n1a5f5.gif"></center></p>     <p>En 12 de 83 cultivos se aisl&oacute; E. coli, 9 de ellos resistentes. Al analizar la resistencia para este germen (el m&aacute;s com&uacute;n), se encontr&oacute; que, con mayor frecuencia, fueron resistentes a trimetoprim-sulfametoxazol, ampicilina, ampicilina-sulbactam, ciprofloxacina y gentamicina (<a href="#figura6">figura 6</a>). Se aisl&oacute; un cultivo con E. coli productor de betalactamasas de espectro extendido (BLEE) (4,7 %). </p>     <p>    <center><a name="figura6"></a>    <br> <img src="img/revistas/rcci/v27n1/v27n1a5f6.gif"></center></p> <h4>Discusi&oacute;n </h4>     <p>La peritonitis es una condici&oacute;n que compromete de manera notoria a los pacientes afectados y, en ocasiones, produce consecuencias catastr&oacute;ficas. Se puede ver afectada directamente por factores independientes que aumentan en forma importante la mortalidad, como un puntaje mayor de 16 en Apache II, la falla org&aacute;nica m&uacute;ltiple, la inestabilidad hemodin&aacute;mica y la necesidad de soporte vital avanzado. El buen estado nutricional del paciente se reconoce como un factor de buen pron&oacute;stico <sup>13</sup>. Es claro que es una enfermedad de elevado 5% Ampicilina Trimetoprim-sulfametoxazol Ciprofloxacina Ampicilina-sulbactam Gentamicina Aztreonam Piperacilina-tazobactam Cefazolina Cefotaxima Ceftazidime 50% 45% 40% 35% 30% 25% 20% 15% 10% 5% 0% 29% 33% 33% 25% 25% 8% 8% 8% 8% 8% 50% 19% 19% 14% 14% 5% 5% 5% 5% Pacientes con Escherichia coli resistente (n=12) Pacientes con Escherichia coli (n=21) Figura 6. Resistencia E. Coli costo, tanto social como econ&oacute;mico para los sistemas de salud y, por esta raz&oacute;n, es de vital importancia que su manejo sea oportuno. </p>     <p>La primera medida en el manejo de esta enfermedad es el inicio de la antibioticoterapia en forma emp&iacute;rica, inclusive antes del tratamiento quir&uacute;rgico, la cual se considera la piedra angular del tratamiento <sup>11</sup>. </p>     <p>Para hacer una buena selecci&oacute;n del antibi&oacute;tico, es necesario conocer los principales organismos que colonizan el tubo digestivo, as&iacute; como la flora local. Para ello, las instituciones deben contar con estudios epidemiol&oacute;gicos que permitan seleccionar el mejor antibi&oacute;tico para uso emp&iacute;rico <sup>11</sup>.</p>     <p> En la literatura cient&iacute;fica es ampliamente reconocido que la utilidad de la toma rutinaria de cultivos durante la primera intervenci&oacute;n, radica en que permite el conocimiento del perfil epidemiol&oacute;gico de los g&eacute;rmenes m&aacute;s com&uacute;nmente involucrados en la peritonitis adquirida en la comunidad. A menudo, sus resultados no modifican el tratamiento antibi&oacute;tico definitivo <sup>7,11,14,15</sup>. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Entre las razones por las cuales la toma rutinaria de cultivos durante la primera intervenci&oacute;n habitualmente no modifica el tratamiento antibi&oacute;tico definitivo, est&aacute; que hasta en 80 % de los cultivos no se a&iacute;sla ning&uacute;n germen; por lo tanto, no sirve como base para dirigir la antibioticoterapia. Esto se debe a que el medio en el cual se cultiva es habitualmente aerobio y la mayor&iacute;a de los pat&oacute;genos involucrados en la peritonitis de la comunidad son anaerobios <sup>7,11,14,15</sup>. </p>     <p>En este estudio y en concordancia con la literatura cient&iacute;fica, se encontr&oacute; que el germen m&aacute;s frecuentemente aislado es E. coli, 4,7 % de las veces productor de BLEE <sup>7,11,14,15.16</sup>. </p>     <p>En la Cl&iacute;nica CES se encontr&oacute; que el antibi&oacute;tico m&aacute;s utilizado en forma emp&iacute;rica es ampicilina-sulbactam. Sin embargo, las tasas de resistencia encontradas hacen que este antibi&oacute;tico no sea el de primera elecci&oacute;n en las peritonitis adquiridas en la comunidad. Llaman la atenci&oacute;n las bajas tasas de resistencia de la cefazolina, lo que lo convertir&iacute;a en un antibi&oacute;tico ideal para las peritonitis provenientes de las v&iacute;as digestivas superiores.</p>     <p> El tiempo ideal para el tratamiento en peritonitis adquiridas en la comunidad ha sido otro asunto de debate en la literatura cient&iacute;fica. Aunque depende mucho de la enfermedad puntual en cada caso, cuando se logra el control del foco de la infecci&oacute;n y el riesgo es leve a moderado, generalmente se utilizan esquemas de 5 a 7 d&iacute;as de tratamiento intravenoso. Sin embargo, en el caso espec&iacute;fico de &uacute;lcera p&eacute;ptica perforada, cuando el manejo es temprano y no hubo uso previo de anti&aacute;cidos, se puede administrar tratamiento hasta por 48 horas <sup>11</sup>. Aunque &eacute;ste no es el objetivo de este estudio, en la literatura cient&iacute;fica se sustenta el control con ex&aacute;menes de laboratorio para definir el tiempo total de antibioticoterapia y, en algunas situaciones, se favorece su uso por un tiempo m&aacute;s corto <sup>17</sup>.</p>     <p>Como conclusi&oacute;n, en la mayor&iacute;a de los cultivos de peritonitis adquiridas en la comunidad no se a&iacute;sla ning&uacute;n germen. Cuando hay aislamiento, el germen m&aacute;s frecuente es E. coli. Se encontraron altas tasas de resistencia a trimetoprim-sulfametoxazol, ampicilina, ampicilina-sulbactam, ciprofloxacina y gentamicina, por lo cual no deben usarse emp&iacute;ricamente en la peritonitis. La toma de cultivos en la primera intervenci&oacute;n quir&uacute;rgica no modifica el tratamiento antibi&oacute;tico definitivo. Los cultivos se recomiendan para identificar la flora local y su perfil de resistencia.</p> <h4>Referencias</h4>     <!-- ref --><p>1. Ord&oacute;&ntilde;ez CA, Puyana JC. Management of peritonitis in the critically ill patient. Surg Clin North Am. 2006;86:1323-49. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000068&pid=S2011-7582201200010000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Wyers SG, Matthews JB. Surgical peritonitis and other Diseases of the peritoneum, mesentery, omentum, and diaphragm. En: Feldman S, Friedman LS, Brandt LJ, editors. Ninth edition. Sleisenger and Fordtran's Gastrointestinal and liver disease: pathophysiology, diagnosis, management. Philadelphia: Saunders Elsevier; 2010. p. 611-23. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000069&pid=S2011-7582201200010000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Brooks GF, Carroll KC. Normal human microbiota. En: Brooks GF, Carroll KC, Butel JS, Morse SA, Mitzner TA, editors. Jawetz, Melnick, and Adelberg's Medical Microbiology. 25th edition. Boston: McGraw Hill; 2010. p. 159-173. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000070&pid=S2011-7582201200010000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Brook I. Microbiology of polymicrobial abscesses and implications for therapy. J Antimicrob Chemother. 2002;50:805-10. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000071&pid=S2011-7582201200010000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Gorbach SL. Intestinal microflora. Gastroenterology. 1971;60:1110-29.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000072&pid=S2011-7582201200010000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Brook I, Frazier EH. Aerobic and anaerobic microbiology in intra-abdominal infections associated with diverticulitis. J Med Microbiol. 2000;49:827-30. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000073&pid=S2011-7582201200010000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Mazuski JE, Solomkin JS. Intra-abdominal infections. Surg Clin North Am. 2009;89:421-37. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S2011-7582201200010000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Mackowiak PA. The normal microbial flora. N Engl J Med. 1982;307:83-93. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000075&pid=S2011-7582201200010000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Langell JT, Mulvihill SJ. Gastrointestinal perforation and the acute abdomen. Med Clin North Am. 2008;92:599-625. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S2011-7582201200010000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Solomkin JS, Mazuski J. Intra-abdominal sepsis: Newer interventional and antimicrobial therapies. Infect Dis Clin North Am. 2009;23:593-608. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S2011-7582201200010000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. Solomkin JS, Mazuski JE, Bradley JS, Rodvold KA, Goldstein EJ, Baron EJ, et al. Diagnosis and management of complicated intra-abdominal infection in adults and children: Guidelines by the Surgical Infection Society and the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 2010;50:133-64. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S2011-7582201200010000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Molina FJ, D&iacute;az CA, Barrera CA, De la Rosa G, Dennis R, Due&ntilde;as C, et al. Microbiological profile of infections in the intensive care units of Colombia (EPISEPSIS Colombia). Med Intensiva. 2011;35:75-83. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S2011-7582201200010000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Berreta J, Kociak D, Balducci A, De Feo F, Laplacette MV, Bellido F, et al. Generalized secondary peritonitis: Predictors of in-hospital mortality and survival and mortality evolutive links. Acta Gastroenterol Latinoam. 2010;40:105-16. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S2011-7582201200010000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Goldstein EJC, Snydman DR. Intra-abdominal infections: Review of the bacteriology, antimicrobial susceptibility and the role of ertapenem in their therapy. J Antimicrob Chemother. 2004;53:29-36. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S2011-7582201200010000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Mazuski JE. Antimicrobial treatment for intra-abdominal infections. Expert Opin Pharmacother. 2007;8:2933-45. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S2011-7582201200010000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Gnocchi CA. Infecci&oacute;n intraabdominal y nuevas quinolonas. Medicina (B. Aires). 1999;59(Supl.1):47-54. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S2011-7582201200010000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Alcocer F, L&oacute;pez E, Calva JJ, Herrera MF. Antibiotic therapy in secondary peritonitis: Towards a definition of its optimal duration. Rev Invest Clin. 2001;53:121-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S2011-7582201200010000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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