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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Inyección intracitoplasmática del espermatozoide (ICSI): una técnica de reproducción asistida con indicaciones]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Intracytoplasmic sperm injection (ICSI): an assisted reproduction technology with indications]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The intracytoplasmic sperm injection (ICSI) from its introduction in humans has let to treat severe male infertility with great results. However, the diffusion of this technology has led to its application in several cases without a clear indication, displacing in many cases the in vitro fertilization (FIV), without enough reasons. This review looks for calling the attention in the physiology of fertilization, recalls the events involved in ICSI which transgress the principles of this physiology and are great enigmas about future development implications. The different findings described by the basic research groups in this area, if they do not give a relation between the ICSI technology and any undesirable effect, they leave the investigation open and let us conclude that ICSI is an assisted reproductive technology with clear indications and should not be used so widely.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p>    <center><b>Inyecci&oacute;n intracitoplasm&aacute;tica del espermatozoide (ICSI) una t&eacute;cnica de reproducci&oacute;n asistida con indicaciones</b></center></p>     <p>    <center>Cecilia Hernandez Leal, M.D. *</center></p>     <p>* M&eacute;dico Gineco-Obstetra. Universidad Colegio Mayor de Nuestra Se&ntilde;ora del Rosario. Bogot&aacute;. Colombia.</p> <b>    <p>RESUMEN</p> </b>    <p>La inyecci&oacute;n intracitoplasm&aacute;tica del espermatozoide (ICSI) ha permitido resolver problemas masculinos severos con excelentes resultados. Sin embargo, la difusi&oacute;n de su t&eacute;cnica llev&oacute; a la aplicaci&oacute;n en casos donde no existe una indicaci&oacute;n clara, desplazando muchas veces a la fertilizaci&oacute;n in vitro (FIV) sin suficientes argumentos. Esta revisi&oacute;n pretende, partiendo de conceptos fisiol&oacute;gicos de fecundaci&oacute;n, llamar la atenci&oacute;n sobre los eventos involucrados en el ICSI que transgreden dicha fisiolog&iacute;a y constituyen grandes enigmas en cuanto a sus implicaciones en el desarrollo futuro. Las diversas observaciones descritas por los grupos de investigaci&oacute;n b&aacute;sica dedicados a estos an&aacute;lisis, si bien no establecen un efecto indeseable inherente a la t&eacute;cnica, dejan abierta la investigaci&oacute;n y permiten concluir que el ICSI es una t&eacute;cnica con claras indicaciones que no debe utilizarse indiscriminadamente.</p>     <p><b>Palabras clave: </b>ICSI, FIV, reproducci&oacute;n asistida, fecundaci&oacute;n.</p> <b>    <p>    <center>Intracytoplasmic sperm injection (ICSI): an assisted reproduction technology with indications</center></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>SUMMARY</p> </b>    <p>The intracytoplasmic sperm injection (ICSI) from its introduction in humans has let to treat severe male infertility with great results. However, the diffusion of this technology has led to its application in several cases without a clear indication, displacing in many cases the in vitro fertilization (FIV), without enough reasons. This review looks for calling the attention in the physiology of fertilization, recalls the events involved in ICSI which transgress the principles of this physiology and are great enigmas about future development implications. The different findings described by the basic research groups in this area, if they do not give a relation between the ICSI technology and any undesirable effect, they leave the investigation open and let us conclude that ICSI is an assisted reproductive technology with clear indications and should not be used so widely.</p>     <p><b>Key Words: </b>ICSI, FIV, assisted reproductive technologies, fertilization.</p>     <p>A partir de 1992, con la introducci&oacute;n de la inyecci&oacute;n intracitoplasm&aacute;tica del espermatozoide (ICSI), se inici&oacute; una nueva era en la medicina reproductiva que hizo posible el manejo de parejas con factor masculino severo. Sin embargo, con la difusi&oacute;n y el dominio del ICSI y con la idea de disminuir al m&aacute;ximo las fallas de fecundaci&oacute;n por medio de la fertilizaci&oacute;n in vitro (FIV), muchos centros de fertilidad han optado por considerar a la ICSI como la t&eacute;cnica de elecci&oacute;n, incluso cuando no existen indicaciones claras para su uso. Es importante considerar que, a pesar de una d&eacute;cada desde la introducci&oacute;n de la t&eacute;cnica, todav&iacute;a no existe informaci&oacute;n suficiente que respalde su utilizaci&oacute;n en forma indiscriminada.</p>     <p>Varios grupos de investigaci&oacute;n contin&uacute;an estudiando los efectos y las alteraciones del ICSI, en relaci&oacute;n con los mecanismos fisiol&oacute;gicos de fecundaci&oacute;n humana y sus posibles implicaciones. <sup>1, 2, 3, 4, 5, 6</sup></p>     <p>Esta revisi&oacute;n presenta las bases fisiol&oacute;gicas del proceso de fecundaci&oacute;n humana, para tomarlas como punto de referencia en el momento de describir los cambios que se suceden en el ICSI. No obstante, a&uacute;n existen grandes enigmas en relaci&oacute;n con la forma como evolucionan los embriones concebidos por esta t&eacute;cnica.</p> <b>    <p>FECUNDACI&Oacute;N</p> </b>    <p>La fecundaci&oacute;n humana constituye un proceso perfectamente coordinado de m&uacute;ltiples pasos, que involucra tanto la interacci&oacute;n del espermatozoide con los recubrimientos ovocitarios, como la penetraci&oacute;n esperm&aacute;tica a trav&eacute;s de dichas estructuras y la fusi&oacute;n de las membranas plasm&aacute;ticas ovocitaria y esperm&aacute;tica, para culminar con la activaci&oacute;n del ovocito.</p>     <p><b>Interacci&oacute;n espermatozoidecumulus y zona pel&uacute;cida</b></p>     <p>Los espermatozoides antes de encontrarse en condiciones para fecundar, deben residir durante un periodo m&iacute;nimo en el tracto genital femenino, en un proceso denominado capacitaci&oacute;n. Este permite la hiperactivaci&oacute;n y remoci&oacute;n de glicoprote&iacute;nas de la superficie esperm&aacute;tica, exponiendo los receptores adecuados para recibir se&ntilde;ales procedentes del ovocito.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Dentro de las c&eacute;lulas del c&uacute;mulus ovocitario se inicia el proceso de reacci&oacute;n acros&oacute;mica esperm&aacute;tica, que implica la fusi&oacute;n de la membrana plasm&aacute;tica y la membrana acrosomal externa, permitiendo la liberaci&oacute;n de enzimas hidrol&iacute;ticas por parte del acrosoma esperm&aacute;tico.</p>     <p>Dentro del c&uacute;mulus los espermatozoides en su mayor&iacute;a ya experimentaron la reacci&oacute;n acros&oacute;mica y completan este proceso cuando ingresan en la zona pel&uacute;cida.<sup>7</sup></p>     <p>Tanto la capacitaci&oacute;n como la reacci&oacute;n acros&oacute;mica son eventos que pueden ser reproducidos <I>in vitro</I>, en ausencia de se&ntilde;ales femeninas.</p>     <p>La reacci&oacute;n acros&oacute;mica es un requisito cr&iacute;tico para la interacci&oacute;n de membranas de los gametos y no s&oacute;lo permite el acceso del espermatozoide al espacio perivitelino sino que tambi&eacute;n expone y modifica regiones de la superficie esperm&aacute;tica que facilitan su interacci&oacute;n.</p>     <p>La zona pel&uacute;cida ovocitaria contiene glicoprote&iacute;nas denominadas ZP 1, ZP 2 y ZP 3, que funcionan como receptores e intervienen en la interacci&oacute;n enzima-sustrato con el espermatozoide.</p>     <p>La uni&oacute;n inicial de membranas lleva a una firme adhesi&oacute;n c&eacute;lula-c&eacute;lula y termina con la fusi&oacute;n para formar una sola.<sup>8</sup></p>     <p><b>Activaci&oacute;n ovocitaria</b></p>     <p>Una vez se fusionan las membranas de los gametos, se desencadena una se&ntilde;al de transducci&oacute;n llamada activaci&oacute;n ovocitaria que conlleva eventos morfol&oacute;gicos y bioqu&iacute;micos, algunos de los cuales suceden en segundos o minutos y otros en el curso de horas.</p>     <p>Uno de los cambios m&aacute;s tempranos es el incremento en los niveles de calcio intracelular, los cuales oscilan en forma repetida durante un periodo de varias horas despu&eacute;s de la fusi&oacute;n de membranas. La elevaci&oacute;n del calcio intracelular ocasiona exocitosis de gr&aacute;nulos corticales, estructuras ubicadas por debajo de la membrana plasm&aacute;tica ovocitaria que al liberar su contenido enzim&aacute;tico al espacio perivitelino, modifican la zona pel&uacute;cida impidiendo el ingreso de otro espermatozoide. Este es uno de los principales mecanismos implicados en el control de la polispermia en humanos.<sup>9</sup></p>     <p>Otro componente cr&iacute;tico de la activaci&oacute;n ovocitaria es el reinicio de la segunda meiosis que implica el ingreso al ciclo celular.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>La detenci&oacute;n del ciclo celular est&aacute; marcada por la actividad coordinada de kinasas. Antes de ser fecundados, los ovocitos maduros detienen su ciclo en la segunda meiosis, gracias al dominio de mol&eacute;culas como: MPF (factor promotor de la maduraci&oacute;n) y MAP (prote&iacute;na mit&oacute;geno activida).</p>     <p>Poco despu&eacute;s de la fusi&oacute;n de gametos y el aumento del calcio intracelular, se produce la inactivaci&oacute;n del MPF y la disminuci&oacute;n del MAP, lo cual representa la se&ntilde;al necesaria para continuar el ciclo celular, fen&oacute;meno evidente desde el punto de vista morfol&oacute;gico por la extrusi&oacute;n del segundo cuerpo polar. En el plano funcional se caracteriza por la capacidad para ensamblar el huso mei&oacute;tico, la condensaci&oacute;n de cromatina ovocitaria, la ruptura de la membrana nuclear y la formaci&oacute;n de las membranas de los pron&uacute;cleos.<sup>10</sup></p>     <p><b>Incorporaci&oacute;n del espermatozoide al ooplasma</b></p>     <p>El contacto inicial de la cabeza esperm&aacute;tica con la membrana plasm&aacute;tica ovocitaria ocurre a trav&eacute;s de la membrana acrosomal interna expuesta despu&eacute;s de la reacci&oacute;n acros&oacute;mica, seguida por el segmento ecuatorial y la parte posterior de la cabeza.</p>     <p>Los movimientos del flagelo esperm&aacute;tico disminuyen y se detienen pocos segundos despu&eacute;s de la fusi&oacute;n de membranas. Hallazgos en microscop&iacute;a electr&oacute;nica muestran que la membrana acrosomal interna se degrada en la membrana ovocitaria siguiendo un proceso similar a la fagocitosis.</p>     <p>La teca perinuclear, estructura &uacute;nica del citoesqueleto esperm&aacute;tico, ubicada entre la membrana acrosomal interna y la envoltura nuclear, es fundamental para la espermiog&eacute;nesis y la estabilizaci&oacute;n de estructuras esperm&aacute;ticas, tal como se ha demostrado mediante inmunofluorescencia de ovocitos humanos inseminados y an&aacute;lisis seriado ultraestructural.</p>     <p>Tales observaciones ponen de manifiesto que la remoci&oacute;n del n&uacute;cleo esperm&aacute;tico despu&eacute;s de la p&eacute;rdida de la membrana plasm&aacute;tica y la interacci&oacute;n con la superficie ovocitaria, es un fen&oacute;meno que involucra microvellosidades ovocitarias ricas en microfilamentos de actina. La desaparici&oacute;n de la teca perinuclear constituye un evento temprano en la fecundaci&oacute;n en humanos, indispensable para la conversi&oacute;n del n&uacute;cleo esperm&aacute;tico en el pron&uacute;cleo masculino.<sup>11</sup></p>     <p>Una vez el espermatozoide ingresa con su flagelo y desprovisto del acrosoma comienza a sufrir cambios en el ooplasma. En la cabeza, despu&eacute;s de la ruptura de la membrana nuclear, la cromatina condensada desde la espermatog&eacute;nesis es descondensada por intercambio de prote&iacute;nas de empaque (protaminas por histonas), proceso inducido por el citoplasma ovocitario que proporciona las histonas necesarias para el intercambio, junto con enzimas que promueven la ruptura de uniones bisulfuro.</p>     <p>A nivel de la pieza intermedia esperm&aacute;tica se encuentra una estructura fundamental que es incorporada al ooplasma: el centr&iacute;olo distal. Este se duplicar&aacute; haciendo uso del material pericentriolar ovocitario, dando origen al centrosoma del cigoto, una estructura que dirigir&aacute; posteriormente el desarrollo de pron&uacute;cleos y la formaci&oacute;n del primer huso mit&oacute;tico.<sup>12</sup></p>     <p>Cuando el flagelo esperm&aacute;tico ingresa al ovocito disocia sus mitocondrias, las cuales vienen marcadas con prote&iacute;nas llamadas ubicuitinas desde la espermatog&eacute;nesis. A trav&eacute;s de ellas son reconocidas y degradadas en el ooplasma, a trav&eacute;s de un proceso mediado por proteosomas. De la misma forma tambi&eacute;n es degradada la vaina fibrosa. As&iacute;, la mayor&iacute;a de estructuras remanentes del flagelo desaparecen r&aacute;pidamente despu&eacute;s de su incorporaci&oacute;n.<sup>13</sup></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Varias horas despu&eacute;s de la fusi&oacute;n de gametos, las oscilaciones de calcio cesan, se forman los pron&uacute;cleos femenino y masculino, y comienza la s&iacute;ntesis de ADN. As&iacute; culmina el proceso de la fecundaci&oacute;n y se inicia la transici&oacute;n del genoma materno hacia la activaci&oacute;n del genoma embrionario.</p>     <p><b>FECUNDACION EN ICSI</b></p>     <p>El proceso de fecundaci&oacute;n en ICSI implica una serie de cambios en los mecanismos fisiol&oacute;gicos descritos <I>in vivo </I>e <I>in vitro</I>, que comienzan desde implicaciones t&eacute;cnicas hasta la abreviaci&oacute;n de los pasos descritos en la interacci&oacute;n de gametos y su consecuencia en los eventos conducentes a la formaci&oacute;n de pron&uacute;cleos.</p>     <p><b>CONSIDERACIONES GENERALES</b></p>     <p><b>Selecci&oacute;n del espermatozoide</b></p>     <p>Esta selecci&oacute;n es arbitraria y al azar, realizada por quien lleva a cabo la t&eacute;cnica y basada fundamentalmente en la observaci&oacute;n de movimiento y morfolog&iacute;a esperm&aacute;ticos y no en su competencia natural.</p>     <p>En segundo lugar, el proceso de selecci&oacute;n y captura del espermatozoide que ser&aacute; inyectado supone la exposici&oacute;n a est&iacute;mulos f&iacute;sicos y qu&iacute;micos no fisiol&oacute;gicos, como el trauma sobre el flagelo para su inmovilizaci&oacute;n, la luz del microscopio y medios de cultivo especiales que frenan su movimiento.<sup>12</sup></p>     <p><b>Determinaci&oacute;n del lugar de inyecci&oacute;n</b></p>     <p>El ovocito antes de ser inyectado se somete a una manipulaci&oacute;n enzim&aacute;tica y mec&aacute;nica para ser desprovisto de las c&eacute;lulas del c&uacute;mulus e identificar su estado de madurez y la ubicaci&oacute;n del primer cuerpo polar.</p>     <p>La descripci&oacute;n de la t&eacute;cnica del ICSI exige tomar como punto de referencia para ubicar el huso mei&oacute;tico ovocitario, el lugar donde se encuentra el primer cuerpo polar. Esta recomendaci&oacute;n busca evitar la inyecci&oacute;n del espermatozoide sobre el huso, previniendo da&ntilde;os sobre tal estructura. Sin embargo, en ocasiones la manipulaci&oacute;n ovocitaria previa puede desplazar la ubicaci&oacute;n original del cuerpo polar y alterar su relaci&oacute;n con el huso, haciendo que esta precauci&oacute;n no sea suficiente para evitar inyecci&oacute;n esta eventualidad.<sup>12</sup></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>ADN ex&oacute;geno unido a la superficie esperm&aacute;tica</b></p>     <p>Se sugiere la posibilidad de incorporar con la inyecci&oacute;n del espermatozoide &iacute;ntegro, AND ex&oacute;geno adherido a la superficie, situaci&oacute;n que es evitada <I>in vivo </I>e <I>in vitro </I>en el proceso de interacci&oacute;n de membranas.<sup>12</sup></p>     <p><b>EVENTOS CELULARES EN OVOCITOS FECUNDADOS POR ICSI VERSUS FIV</b></p>     <p>En ICSI una vez se selecciona el espermatozoide en la pipeta de microinyecci&oacute;n es colocado directamente en el interior del ovocito, atravesando en un solo paso las envolturas de la c&eacute;lula materna e introduciendo el espermatozoide &iacute;ntegro, con el acrosoma y su contenido intactos y la teca perinuclear al ooplasma.<sup>12</sup> Esta maniobra de inyecci&oacute;n sustituye los pasos descritos de interacci&oacute;n entre gametos, como reacci&oacute;n acros&oacute;mica, uni&oacute;n del espermatozoide a la zona pel&uacute;cida, penetraci&oacute;n e interacci&oacute;n de membranas ovocitaria y esperm&aacute;tica.<sup>4</sup></p>     <p>La activaci&oacute;n ovocitaria que se observa en la ICSI, sugiere que ciertos componentes esperm&aacute;ticos pueden desencadenarla, a&uacute;n en ausencia de interacciones de membrana. Sin embargo, existen diferencias en los eventos de activaci&oacute;n cuando se comparan con los descritos en FIV. Una de ellas es el inicio de las oscilaciones de calcio, retrasado de 30 minutos a varias horas.<sup>1</sup> Este hallazgo es consistente con la observaci&oacute;n de otros eventos como emisi&oacute;n del segundo cuerpo polar y formaci&oacute;n pronuclear, altamente variables entre ovocitos que son inyectados en momentos similares.</p>     <p>El retraso puede ser explicado por el mayor tiempo requerido para romper la membrana plasm&aacute;tica del espermatozoide y remover el acrosoma para exponer el factor esperm&aacute;tico activador del ovocito presente dentro de la teca perinuclear. Modelos animales empleando ratones, dise&ntilde;ados para investigar los efectos fisiol&oacute;gicos del retraso en la activaci&oacute;n ovocitaria en ICSI, sugieren que existe una disminuci&oacute;n en la capacidad reproductiva y longevidad de la descendencia resultante.<sup>14</sup></p>     <p>Estudios que realizan FIV e ICSI en ovocitos de h&aacute;mster libres de zona pel&uacute;cida con espermatozoides humanos<sup>15</sup> y estudios de FIV e ICSI en monos rhesus <sup>4,13</sup> han permitido la observaci&oacute;n constante de eventos de fecundaci&oacute;n espec&iacute;ficos del ICSI. Tales trabajos est&aacute;n basados en la observaci&oacute;n de estructuras esperm&aacute;ticas (teca perinuclear, AND y mitocondrias del flagelo) y ovocitarias (ADN y microt&uacute;bulos), marcadas por t&eacute;cnicas de fluorescencia en diferentes momentos de la fecundaci&oacute;n.</p>     <p>Las anteriores observaciones permitieron encontrar diferencias de la fecundaci&oacute;n por ICSI en relaci&oacute;n con FIV, en cuanto a degradaci&oacute;n de estructuras de membrana esperm&aacute;tica, descondensaci&oacute;n de ADN, inicio de s&iacute;ntesis de ADN y formaci&oacute;n de pron&uacute;cleos.</p>     <p>La descondensaci&oacute;n del ADN esperm&aacute;tico ocurre asincr&oacute;nicamente despu&eacute;s del ICSI, comenzando desde la porci&oacute;n basal de la cabeza hasta el segmento apical cubierto por la teca perinuclear.</p>     <p>La formaci&oacute;n del aster esperm&aacute;tico a partir del centrosoma, la organizaci&oacute;n microtubular y la aposici&oacute;n pronuclear despu&eacute;s del ICSI se llevan a cabo a pesar de no haber logrado una descondensaci&oacute;n completa del ADN.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Se&ntilde;ales correspondientes a la teca perinuclear pueden encontrarse en el &aacute;pex de la cabeza, incluso despu&eacute;s de la aposici&oacute;n pronuclear 12 horas despu&eacute;s de la inyecci&oacute;n, momento en que en FIV ha ocurrido una descondensaci&oacute;n completa del ADN. De hecho, es posible detectar restos de la teca perinuclear 20 a 24 horas despu&eacute;s del procedimiento de ICSI. De igual manera, el acrosoma fue encontrado casi intacto a lo largo de las observaciones.</p>     <p>La presencia de cromosomas sexuales en la regi&oacute;n apical de la cabeza esperm&aacute;tica, lugar donde el proceso de descondensaci&oacute;n es retrasado, puede relacionarse con el incremento en la tasa de alteraciones cromos&oacute;micas sexuales sugerido en reci&eacute;n nacidos de ICSI.<sup>16</sup></p>     <p>La s&iacute;ntesis de ADN en ICSI se inicia s&oacute;lo cuando el espermatozoide completa su descondensaci&oacute;n y parece ocurrir de manera sincr&oacute;nica en ambos pron&uacute;cleos. Esto representa un retraso cuando se compara con cigotos obtenidos por t&eacute;cnicas de FIV.</p>     <p>De otro lado, los gr&aacute;nulos corticales que normalmente sufren exocitosis despu&eacute;s de la activaci&oacute;n ovocitaria, pueden ser retenidos dentro del citoplasma despu&eacute;s del ICSI. Aunque son eventualmente degradados o perdidos, se desconoce si la retenci&oacute;n de tales residuos puede ocasionar efectos posteriores en el desarrollo. Igualmente, es incierto el efecto que tiene el ingreso del contenido acros&oacute;mico en el citoplasma ovocitario.</p>     <p><b>EFECTOS DE ICSI VERSUS FIV EN RESULTADOS</b></p>     <p>Dada la tendencia al incremento en ciclos de ICSI con respecto a FIV y a las publicaciones que sugieren la realizaci&oacute;n de esta t&eacute;cnica en todos los casos de concepci&oacute;n <I>in vitro</I>, independiente de su etiolog&iacute;a, surgen inquietudes sobre los riesgos potenciales para los embriones y c&oacute;mo ser&aacute; su desarrollo futuro.</p>     <p>S&oacute;lo cuando se analizan de manera cuidadosa las tasas de fecundaci&oacute;n, de implantaci&oacute;n y de embarazo, entre otras, es posible realizar debates conducentes a respaldar una posici&oacute;n frente a tales interrogantes.</p>     <p>La mayor&iacute;a de publicaciones hacen referencia al ICSI como un procedimiento seguro, afirmaci&oacute;n apoyada en las altas tasas de fecundaci&oacute;n y embarazo y en la incidencia de malformaciones cong&eacute;nitas mayores y menores comparables a las obtenidas en FIV.<sup>17,18</sup> De otro lado, aunque es llamativo el hallazgo de un ligero incremento en la incidencia de alteraciones cromos&oacute;micas <I>de novo </I>en nacidos de ICSI, su causa no ha sido completamente aclarada y no existen argumentos suficientes para establecer una relaci&oacute;n de causa efecto inherente a la t&eacute;cnica.</p>     <p>En estudios que observan la capacidad de progresi&oacute;n de los embriones al estado de blastocisto seg&uacute;n su origen en FIV o ICSI, se informa una disminuci&oacute;n significativa en este potencial en embriones para ICSI, al igual que un menor porcentaje de <I>hatching </I>embrionario en este grupo.<sup>19, 20</sup> Sin embargo, tambi&eacute;n se observa una tendencia no significativa hacia mejores tasas de implantaci&oacute;n en d&iacute;a 2 &oacute; 3 para embriones de ICSI.</p>     <p>De otro lado, investigando la sugerencia del ICSI como posible tratamiento de elecci&oacute;n para todos los casos de concepci&oacute;n <I>in vitro</I>, se reafirma su indicaci&oacute;n en factores masculinos severos y se plantea que en ausencia de esta etiolog&iacute;a, las tasas de fertilizaci&oacute;n son comparables con las de FIV.<sup>21, 22</sup></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Considerando el an&aacute;lisis de costo-beneficio en el uso del ICSI como t&eacute;cnica de elecci&oacute;n rutinaria, se encuentra un incremento en costo-efectividad y costo necesario para tratar.<sup>23</sup></p>     <p>En conclusi&oacute;n, es claro que no hay datos suficientes para sugerir el ICSI como t&eacute;cnica de elecci&oacute;n en todos los casos de concepci&oacute;n <I>in vitro</I>, como tambi&eacute;n es clara su gran utilidad en la resoluci&oacute;n de alteraciones esperm&aacute;ticas severas y en casos con antecedente de falla de fertilizaci&oacute;n.</p>     <p>La ICSI desde su introducci&oacute;n en mam&iacute;feros en 1976, <sup>24</sup> ha sido utilizado en muchas especies hasta su aplicaci&oacute;n en humanos, resolviendo a lo largo de su implementaci&oacute;n muchos interrogantes relacionados con los mecanismos de fecundaci&oacute;n que involucra. Por eso constituye hoy en d&iacute;a un tratamiento razonablemente seguro y efectivo. Sin embargo, el hecho de carecer de informaci&oacute;n acerca de los efectos a largo plazo que tienen los hallazgos descritos a nivel celular, junto con el desconocimiento de otros factores y sus implicaciones moleculares, nos obliga a considerar al ICSI como una t&eacute;cnica con indicaciones precisas, acerca de la cual nos falta mucho por descubrir.</p>     <p><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></p>     <!-- ref --><p>1. Tesarik J, Sousa M, Testart J. Human oocyte activation after intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod. 1994; 9: 511-518.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000077&pid=S0034-7434200300030000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Nagy ZP, Liu J, Joris H. Time-course of oocyte activation, pronucleus formation and cleavage in human oocytes fertilized by intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod. 1994; 9: 1743-1748.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0034-7434200300030000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Nakano Y, Shirakawa H, Mitsuhachi N. Spatiotemporal dynamics of intracellular calcium in the mouse egg injected with a spermatozoon. Mol Hum Reprod. 1997; 3: 1087-1093.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000079&pid=S0034-7434200300030000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Ramalho-Santos J, Sotovsky P, Simerly C, Oko R. ICSI choreography: fate of sperm structures after monospermic rhesus ICSI and first cell cycle implications. Human Reprod. 2000; 15 (12): 2610-2620.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0034-7434200300030000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Yanagida K, Katayose H, Hirata S. Influence of sperm immobilization on onset of Ca oscillations after ICSI. Hum Reprod. 2001; 16: 148-152.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000081&pid=S0034-7434200300030000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. Williams CJ. Signalling mechanisms of mammalian oocyte activation. Human Reprod Update. 2002; 8 (4): 313-321.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0034-7434200300030000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Dale B, Elder K. IVF. 1997. Cambridge University Press: 15-53.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000083&pid=S0034-7434200300030000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Evans JP. The molecular basis of sperm-oocyte membrane interactions during mammalian fertilization. Hum Reprod Update. 2002; 8 (4): 297-311.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0034-7434200300030000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Yanagimachi R. The physiology of reproduction. Mammalian fertilization. In: Knobil, E. and Neill JD. Eds. Raven Press Ltd. New York, USA: 189-317.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000085&pid=S0034-7434200300030000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10.Schultz RM. The molecular foundations of the maternal to zygotic transition in the preimplantation embryo. Hum Reprod Update. 2002; 8 (4): 323-331.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0034-7434200300030000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11.Sutovsky P, Oko R, Hewitson L, Schatten G. The removal of the sperm perinuclear theca and its association with bovine oocyte surface during fertilization. Dev Biol. 1997; 188 (1): 75-84.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000087&pid=S0034-7434200300030000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12.Schatten G. Cytoskeletal aspects of Assisted fertilization. Seminars in Reproductive Medicine. 2000; 18 (2): 151-159.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0034-7434200300030000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13.Sutovsky P, Hewitson L, Simerly CR. Intracytoplasmic sperm injection for rhesus monkey fertilization results in unusual chromatin, cytoskeletal and membrane events, but eventually leads to pronuclear development and sperm aster assembly. Human Reprod. 1996; 11: 1703-1712.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000089&pid=S0034-7434200300030000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14.Tarin JJ, Perez-Albala S, Aguilar A, Minarro J, Cano A. Long-term effects of posovulatory aging of mouse oocytes on offspring: a two-generational study. Biol Reprod. 1999; 61: 1347-1355.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0034-7434200300030000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15.Terada Y, Luetjens CM, Sutovsky P, Schatten G. Atypical decondensation of the sperm nucleus, delayed replication of the male genome, and sex chromosome positioning following intracytoplasmic human sperm injection (ICSI) into golden hamster eggs: Does itself introduce chromosomal anomalies? Fertil Steril. 2000; 74 (3): 454-460.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000091&pid=S0034-7434200300030000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16.Bonduelle M, Wilikens A. A follow up study of children born after ICSI with epididymal and testicular spermatozoa and after replacement of cryopreserved embryos obtained after ICSI. Hum Reprod. 1998; 13 (1): 196-207.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0034-7434200300030000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17.Bonduelle M, Wilikens A, Buysse A. Prospective follow-up study of 877 children born after intracytoplasmic sperm injection (ICSI), with ejaculated epididymal and testicular spermatozoa and after replacement of cryopreserved embryos obtained after ICSI. Hum Reprod. 1996; 11 (4): 131-155.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000093&pid=S0034-7434200300030000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18.Tarlatzis BC, Bili H. Survey on intracytoplasmic sperm injection: report from the ESHRE ICSI Task Force. Human Reprod. 1998; 13 (Suppl 1): 165-177.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0034-7434200300030000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19.Griffiths TA, Murdoch AP, Herbert M. Embryonic development in vitro is compromised by the ICSI procedure. Hum Reprod. 2000; 15 (7): 1592-1596.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000095&pid=S0034-7434200300030000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20.Dumoulin JCM, Coonen E., Bras M. Comparison of in-vitro development of embryos originating from either conventional in-vitro fertilization or intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod. 2000; 15 (2): 402-409.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0034-7434200300030000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21.Fishel S, Aslam I, Lisi F. Should ICSI be the treatment of choice for all cases of in-vitro conception? Hum Reprod. 2000; 15 (6): 1278-1283.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000097&pid=S0034-7434200300030000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22.Oehninger S, Gosden RG. Should ICSI be the treatment of choice for all cases of in-vitro conception? Hum Reprod. 2002; 17 (9): 2237-2242.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0034-7434200300030000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23.Ola B, Afnan M, Sharif K. Should ICSI be the treatment of choice for all cases of in-vitro conception? Hum Reprod. 2001; 16 (12): 2485-2490.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000099&pid=S0034-7434200300030000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24.Uehara T, Yanagimachi R. Microsurgical injection of spermatozoa into hamster eggs with subsequent transformation of sperm nuclei into male pronuclei. Biol Reprod. 1976; 15: 467-470. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000100&pid=S0034-7434200300030000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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